JP5864077B2 - アルコール誘発性肝疾患の治療、予防および回復 - Google Patents
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Description
本発明は、薬物療法の分野にある。詳細には、本発明は、慢性的アルコール摂取によって生じる肝疾患または肝損傷を、少なくとも1つのペルオキシソーム増殖因子活性化受容体(PPAR)アゴニストを投与することによって治療するため、予防するため、または回復させるための方法に関する。
エタノールが成長因子およびサイトカインネットワークの栄養作用に対する肝細胞の感受性を低下させるという証拠が増しつつある。実際に、培養下でエタノールに対して曝露されたラット肝細胞では、インスリンおよび上皮成長因子(EGF)により刺激されるDNA合成に対する応答が著しく低下する。このため、短期的および長期的なエタノール曝露は、インビトロでの肝細胞DNA合成(Carter et al., Biochem. Biophys. Res. Commun. 128:767 (1985);Carter et al., Alcohol Clin. Exp. Res. 12:555 (1988))および肝部分切除術の後に肝臓が再生する能力(Diehl et al., Gastroenterology 99:1105 (1990);Diehi et al., Hepatology 16:1212 (1992);Wands et al., Gastroenterology 77:528 (1979))を障害させる。エタノールが肝細胞増殖を阻害する厳密な分子的機序はほとんど解明されていない。肝再生はいくつかの成長因子およびサイトカインによって調節され、中でも腫瘍壊死因子(TNF)-α、EGF、トランスフォーミング成長因子α(TGF-α、インターロイキン(IL)-6、肝細胞成長因子(HGF)およびインスリンは最も重要と考えられている(Michalopoulos et al., Science 276:60 (1997);Pistoi et al., FASEB J. 10:819 (1996);Fausto, J. Hepatol. 32:19 (2000)。この点に関して、以前の研究は、エタノールが、肝細胞におけるHGF(Saso et al., Alcohol Clin. Exp. Res. 20:330A (1996))、EGF(Zhang et al., J. Clin. Invest. 98:1237 (1996);Higashi et al., J. Biol. Chem. 266:2178 (1991);Saso et al., Gastroenterology 112:2073 (1997))またはTNF-α(Akerman et al., Hepatology 17:1066 (1993))によるシグナル伝達カスケードの活性化およびCa2+媒介性シグナル(Sun et al., Mol. Endocrinol. 11:251 (1997))を妨げることを示唆している。さらに、慢性的エタノール消費は再生中のラット肝臓においてG-タンパク質発現を擾乱させ、サイクリックAMP依存的シグナル伝達を阻害する(Diehi et al., FASEB J. 10:215 (1996);Hoek et al., FASEB J. 6:2386 (1992))。複数の研究者によって示されているように、他のシグナル伝達経路もエタノールに対するインビボ曝露によって有害な影響を受ける。例えば、急性または慢性的エタノール曝露によって、EGF受容体とのGタンパク質の共役が障害され(Zhang et al., Biochem. Pharmacol. 61:1021 (2001));肝部分切除術後のNFκβおよびJNKのTNF-α誘発性発現が変化し(Diehi, Clin. Biochem. 32:571 (1999));p42/44、MAPK、p38MAPKおよびJNKの活性化が低下する(Chen et al., Biochem. J. 334:669 (1998))。
以下に、本発明の基本的な諸特徴および種々の態様を列挙する。
[1]
動物におけるアルコール誘発性肝疾患を治療するため、予防するため、または回復させるための方法であって、該動物に少なくとも1つのペルオキシソーム増殖因子活性化受容体(PPAR)アゴニストの治療的有効量を投与する段階を含む方法。
[2]
動物における慢性的アルコール摂取によって生じる肝損傷を治療するため、予防するため、または回復させるための方法であって、該動物に少なくとも1つのPPARアゴニストの治療的有効量を投与する段階を含む方法。
[3]
肝損傷が酸化ストレスと関連している、[2]記載の方法。
[4]
肝損傷が脂質過酸化と関連している、[2]記載の方法。
[5]
肝損傷がDNA損傷と関連している、[2]記載の方法。
[6]
慢性的アルコール摂取によって生じる、動物の肝臓におけるインスリン抵抗性を治療するため、予防するため、または回復させるための方法であって、該動物に少なくとも1つのPPARアゴニストの治療的有効量を投与する段階を含む方法。
[7]
慢性的アルコール摂取を伴う動物における肝再生応答を刺激するため、または復元させるための方法であって、該動物に少なくとも1つのPPARアゴニストの治療的有効量を投与する段階を含む方法。
[8]
PPARアゴニストがPPAR-α選択的アゴニストである、[1]、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[9]
PPARアゴニストがPPAR-γ選択的アゴニストである、[1]、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[10]
PPARアゴニストがPPAR-δ選択的アゴニストである、[1]、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[11]
2種またはそれ以上のPPARアゴニストが投与される、[1]、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[12]
少なくとも1つのPPARアゴニストが、PPAR受容体の少なくとも2種の異なるサブタイプと結合する、[1]、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[13]
2種またはそれ以上のPPARアゴニストが、PPAR受容体の少なくとも2種の異なるサブタイプと結合する、[11]記載の方法。
[14]
肝疾患が脂肪症、アルコール性肝炎、またはアルコール性肝硬変である、[1]記載の方法。
[15]
慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約0.1gの純アルコール/kg体重/日である、[2]、[6]、および[7]のいずれか一項記載の方法。
[16]
慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約0.5gの純アルコール/kg体重/日である、[15]記載の方法。
[17]
慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約1gの純アルコール/kg体重/日である、[16]記載の方法。
[18]
インスリン抵抗性が、インスリンとインスリン受容体との結合の低下の結果である、[6]記載の方法。
[19]
肝再生応答が、PPARアゴニストの投与の非存在下における応答を10%上回るレベルへと刺激される、[6]記載の方法。
[20]
肝再生応答が、PPARアゴニストの投与の非存在下における応答を50%上回るレベルへと刺激される、[19]記載の方法。
[21]
Long-Evansラットにエタノールを慢性的に与えることによって作製した、アルコール誘発性肝損傷または肝疾患の動物モデル。
[22]
エタノールが毎日の食餌のカロリー含有量の約37%を構成する、[21]記載の動物モデル。
[23]
[21]記載の動物モデルに作用物質(agent)を投与する段階、ならびに作用物質を投与されていない対照動物におけるレベルと比較して肝損傷、インスリン抵抗性および/または肝再生応答のレベルを決定する段階を含む、アルコール誘発性肝損傷または肝疾患の治療、予防または回復のために有用である可能性のある作用物質に関するスクリーニングのための方法であって、作用物質を投与されていない対照動物におけるレベルと比較した際の肝損傷、インスリン抵抗性および/または肝再生応答のレベルの改善により、その作用物質がアルコール誘発性肝損傷または肝疾患の治療、予防または回復のために有用である可能性があることが示される方法。
[24]
[21]記載の動物モデルに可能性のある治療を施す段階、ならびに可能性のある治療を施していない対照動物におけるレベルと比較して肝損傷、インスリン抵抗性および/または肝再生応答のレベルを決定する段階を含む、アルコール誘発性肝損傷または肝疾患に対する、可能性のある治療を試験するための方法であって、可能性のある治療を施していない対照動物におけるレベルと比較した際の肝損傷、インスリン抵抗性および/または肝再生応答のレベルの改善により、その治療がアルコール誘発性肝損傷または肝疾患の治療、予防または回復のために有用である可能性があることが示される方法。
本発明は、アルコール誘発性肝損傷および肝疾患の発生においてインスリン抵抗性の増大が果たす重要な役割、ならびにPPARアゴニストが肝損傷を予防または治療するおよび肝再生応答を復元する能力に関する。アルコールを慢性的に経口摂取した動物に対するPPARアゴニストの投与は、酸化ストレス(例えば、脂質過酸化)およびDNA損傷に起因する損傷を含むアルコール摂取に応じて起こる肝損傷をブロックする。さらに、PPARアゴニストの投与は、慢性的なアルコール摂取中に起こる肝再生応答を阻害を回復させる。このため、本発明は、動物におけるアルコール誘発性肝疾患を治療するため、予防するため、または回復させるための方法であって、前記動物に少なくとも1つのPPARアゴニストの治療的有効量を投与する段階を含む方法に関する。
一般的方法
実験デザイン
これらの試験においては、雄性Long-Evansラットに対して、37%エタノール液体飼料を6週間与えた。同時飼育対照動物には等カロリー(スクロースでエタノールを代用)食を与えた。3週後に、両群のラットに、PPAR-α、γもしくはδアゴニスト、または対照としての食塩水のいずれかを注射した。PPAR-α(GW7647)、PPAR-γ(F-L-Leu)およびPPAR-δ(L-165,041)活性化物質はCalBiochem(Carlsbad, CA)から入手し、それぞれ25μg/kg、20μg/kgおよび2μg/kgの濃度で腹腔内(IP)投与した。マウスにはIP注射を週2回行った。6週時点で動物個体に2/3肝部分切除術を実施した。摘出した肝臓を、以下に述べるように組織学的検査、脂質過酸化、DNA損傷およびインスリン/IGFシグナル伝達の測定のために用いた。2/3肝切除術に続いて、18、24、30および48時間後に、再生応答を評価するために残りの肝臓を採取した。これを行うためには、採取の2時間前にBrdUを動物個体にIP注射し、肝細胞核内へのその取り込みをDNA合成の指標として測定した。BrdUまたは3H-チミジン取り込みにより評価した肝再生は、この動物モデルでは肝部分切除術から24時間後に最大となる(Wands et al., Gastroenterology 77:528(1979))。
パラフィン切片(8μm厚)を、DNA損傷および脂質過酸化を検出するためにそれぞれ8-ヒドロキシデオキシグアノシン(8-OHdG)(Oxis Research)もしくは4-ヒドロキシノネナール(4-hydroxynonenol)(HNE)(Chemicon International, Temecula, CA)に対するモノクローナル抗体で免疫染色した。免疫染色の前に、脱パラフィン処理して再水和させた切片を、リン酸緩衝食塩水(10mMリン酸ナトリウム、0.9%NaCl、pH 7.4;PBS)中の0.1mg/mlサポニンにより室温で20分間処理し、その後に内因性ペルオキシダーゼ活性を消失させるためにメタノール中の3%過酸化水素により10分間処理し、続いて非特異的な結合部位をブロックするためにSuperBlock-TBS(Pierce Chemical Co., Rockford, IL)中にて30分間インキュベートした。組織切片を0.5〜1μg/mlの一次抗体とともに4℃で一晩インキュベートした。免疫反応性は、ビオチン化二次抗体、アビジン-ビオチン-西洋ワサビペルオキシダーゼ複合体(ABC)試薬、および色素原としてのジアミノベンジジンを用いて検出した(Vector Laboratories, Burlingame, CA)(Lam et al., J. Biol. Chem. 269:20648 (1994))。組織切片をヘマトキシリンで対比染色し、カバーガラスの下に保護し、光学顕微鏡法によって検査した。
全RNAを、TRIzol試薬(Invitrogen, Carlsbad, CA)を製造元のプロトコールに従って用いて肝組織から単離した。RNAの濃度および純度を、260nmおよび280nmで測定した吸光度から決定した。RNA(2μg)を、AMV First Strand cDNA合成キット(Roche Diagnostics Corporation, Indianapolis, IN)およびランダムオリゴデオキシヌクレオチドプライマーを用いて逆転写させた。リアルタイム定量的RT-PCRを用いて、インスリン、IGF-IおよびIGF-II成長因子、それらの対応する受容体、1、2および4型のインスリン受容体基質(IRS)、細胞運動性および移動に関与する下流のインスリン/IGF-I応答性遺伝子であるAAHのmRNAレベルを測定した。並行した反応で測定したリボソーム18S RNAのレベルを用いて、mRNA転写物の相対的存在量を算出した(Myers et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:10350 (19929;Baltensperger et al., Science 260:1950 (1993);Yeon et al., Hepatology 38:703 (2003);Pares et al., Hepatology 12:1295 (1990))。PCR増幅は、2.5ngの元のRNAテンプレートから生成されたcDNA、各300μMの遺伝子特異的な順方向および逆方向プライマー(表1)ならびに12.5μlの2×QuantiTect SYBR Green PCR Mix(Qiagen Inc, Valencia, CA)を含む25μlの反応物中で行った。増幅されたシグナルを、BlO-RAD iCycler iQ Multi-Color RealTime PCR検出システム(Bio-Rad, Hercules, CA)を用いて連続的に検出した。用いた増幅プロトコールは以下の通りである:最初に95℃で15分間の変性および酵素活性化、95℃×15秒間、55〜60℃×30秒間および72℃×30秒間を45サイクル。アニーリング温度は、iCyclerソフトウエアに備わっている温度勾配プログラムを用いて最適化した。
未加工の凍結組織(約100mg)を、プロテアーゼ阻害薬(1mM PMSF、0.1mM TPCK、1μg/mlのアプロチニン、1μg/mlのペプスタチンA、0.5μg/mlのロイペプチン、1mM NaF、1mM Na4P2O7)を含む5倍容積のNP-40溶解緩衝液(50mM Tris-HCl、pH 7.5、1% NP-40、150mM NaCl、1mM EDTA、2mM EGTA)中でホモジナイズした。タンパク質濃度をビシンコニン酸(BCA)アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いて決定した。診査的試験により、20%の特異的結合を達成するために必要なタンパク質の量および放射性標識リガンドの濃度を決定した。インスリン受容体結合アッセイは、100μgのタンパク質を用いて行った。IGF-I結合アッセイは試料当たり25μgのタンパク質を必要とし、IGF-II受容体結合アッセイは10μgタンパク質を用いて最適化した。エタノール曝露との関連で成長因子の結合を評価するためには競合的平衡結合アッセイを用いた。全結合量に関しては、2つずつの個々のタンパク質試料を、結合緩衝液(100mM HEPES、pH 8.0、118mM NaCl、1.2mM MgSO4、8.8mMデキストロース、5mM KCl、1%ウシ血清アルブミン)および100nCi/mlの[125I](2000Ci/mmol;50pM)インスリン、IGF-IまたはIGF-IIを含む100μlの反応物中でインキュベートした。非特異的結合の測定のためには、反復試験試料を0.1μMの非標識(非放射性)リガンドの添加の点を除いて全く同じく調製した。
ヒト組換え[125I]インスリン、IGF-IおよびIGF-IIはAmersham Biosciences(Piscataway, NJ)から購入した。非標識ヒトインスリンはSigma-Aldrich(St. Louis, MO)から購入した。組換えIGF-IおよびIGF-IIはBachem(King of Prussia, PA)から入手した。8-OHdGおよびHNEに対するモノクローナル抗体はOxis Scientificから購入した。他のすべての精製化学薬品および試薬は、CalBiochem(Carlsbad, CA)またはSigma-Aldrich(St. Louis, MO)から購入した。
実験は各群当たり9匹のラットを用いて実施した。データはグラフ中に平均±S.E.M.として表した。群間比較はスチューデントのT検定を用いて行った。統計学的分析はNumber Cruncher Statistical System(Kaysville, UT)を用いて行った。有意差および傾向に対応するP値はグラフの上に表示されている。
慢性的にエタノールを与えることは、図1(上のパネル)に示されているように、肝臓の組織像に大きな変化を生じさせた。エタノール摂取群では、肝細胞内に顕著な脂質蓄積がみられる。より重要なこととして、肝細胞障害、細胞脱落および壊死の領域がみられる(挿入図)。小葉構築は歪曲し、炎症および炎症細胞浸潤の領域が明らかである。この病像はヒトおよびALDでみられる肝損傷に一致する。図1の中央パネルは、HNE染色により示される、慢性的エタノール曝露によって誘導される脂質過酸化を表している。加えて、8-OHdG免疫反応性により示される、肝細胞への広範なDNA損傷もみられる(下のパネル)。このように、慢性的エタノール曝露は、肝臓において細胞損傷の2つの主な機序としての酸化ストレスおよびDNA変化を生じさせる。
図5は、2/3肝切除術から24時間後にBrdU免疫染色により評価した肝再生応答に対する、慢性的にエタノールを与えることの顕著な影響を示している。対照動物の肝細胞核ではBrdUの強い取り込みが細胞の60%以上でみられ(左側のパネル)、これに比べてエタノール摂取群では10%未満であったことに注目されたい(右側のパネル)。これらの結果は、肝修復過程に対するエタノールの有害な役割を裏づけている。これに対して、図6に示されているように、エタノールで障害されるDNA合成の、PPARアゴニストによる復旧がみられる。PPAR-α(左下のパネル)およびPPAR-γ(右下のパネル)は、エタノール摂取動物と比較しておよそ20%というBrdU標識のわずかな増加を示していることに注目されたい。慢性的エタノール摂取ラットに対するPPAR-δ処置が、2/3肝切除術後の正常対照動物で認められるレベルへと肝再生を本質的に回復させたことは予想外かつ驚くべきことであった。
一般的方法
慢性的エタノール曝露モデル:
雄性(約200〜250g)の成体Long Evansラット(Harlan Sprague Dawley, Inc., Indianapolis, Indiana)に対して、エタノールがカロリー含有量の0%(対照)または37%(9.2% v/v)を構成する等カロリー液体飼料(BioServ, Frenchtown, NJ)を8週間与えて同時飼育した。実験を開始する前の週には、8%、17%、24%、続いて37%のエタノールを含む食餌を2日ずつ逐次的に与えることにより、ラットをエタノール含有飼料に順応させた。固形飼料を与えた対照ラットも試験対象とした。同等な食物消費および体重の維持を確かなものとするためにラットを毎日モニターした。0%または37%エタノールを含む液体飼料のいずれかで維持されている実験の最後の3週間に、両群のラットに対して、媒体(食塩水)、PPAR-αアゴニスト(GW7647;25μg/kg)、PPAR-δアゴニスト(L-165,041;2μg/kg)またはPPAR-γアゴニスト(F-L-Leu;20μg/kg)(CalBiochem, Carlsbad, CA)の腹腔内(i.p.)注射を週2回(月曜および木曜)投与した。実験の終わりにラットに気化イソフルオラン(SurgiVet, Inc. Waukesha, WI)で麻酔を施し、肝臓および血液を分析のために採取した。肝組織試料をHistochoice(Amresco Corp., Solon, OH)中で浸漬固定してパラフィン中に包埋した。隣接組織切片はヘマトキシリンおよびエオシンで、またはゴモリ-トリクロームで染色し、符号を付した上で検査した。加えて、肝組織試料をドライアイス-メタノール浴中で急速凍結させ、続いて、後のmRNAおよびタンパク質の試験ために-80℃で保存した。実験期間を通じて、ラットは人道的な条件で飼育し、12時間毎の明/暗サイクル下におき、食餌を自由に摂取させた。実験はすべて、米国国立衛生研究所(National Institutes of Health)によって策定された指針に準拠したプロトコールに従って行い、Lifespan-Rhode Island Hospitalの施設内動物管理使用委員会による承認を得た。
全RNAを、TRIzol(登録商標)試薬(Invitrogen, Carlsbad, CA)を製造元のプロトコールに従って用いて肝組織から単離した。RNAの濃度および純度を、260nmおよび280nmで測定した吸光度から決定した。RNA(2μg)を、AMV First Strand cDNA合成キット(Roche Diagnostics Corporation, Indianapolis, IN)およびランダムオリゴデオキシヌクレオチドプライマーを用いて逆転写させた。定量的逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応(qRT-PCR)アッセイを用いて、特定のmRNA転写物の定常レベルを測定した。PCR増幅は、2.5ngの元のRNAテンプレートから生成されたcDNA、各300nMの遺伝子特異的な順方向および逆方向プライマー(表2)ならびに10μlの2×QuantiTect SYBR Green PCR Mix(Qiagen Inc, Valencia, CA)を含む20μlの反応物中で行った。増幅されたシグナルを、Mastercycler ep realplex装置およびソフトウエア(Eppendorf AG, Hamburg, Germany)を用いて連続的に検出した。用いた増幅プロトコールは以下の通りである:最初に95℃で15分間の変性および酵素活性化、95℃×15秒間、55〜60℃×30秒間および72℃×30秒間を45サイクル。アニーリング温度は、Mastercycler ep realplexソフトウエアに備わっている温度勾配プログラムを用いて最適化した。
PPARアゴニストによる処置が、肝臓における、エタノールで障害されるインスリン受容体およびIGF受容体の結合を改善させるか否かを明らかにするために、飽和結合試験を用いた。未加工の凍結肝組織を、50mM Tris-HCl、pH 7.5、1% NP-40、150mM NaCl、1mM EDTA、2mM EGTA+プロテアーゼ阻害薬(1mM PMSF、0.1mM TPCK、1μg/mlのアプロチニン、1μg/mlのペプスタチンA、0.5μg/mlのロイペプチン、1mM NaF、1mM Na4P2O7)およびホスファターゼ阻害薬(2mM Na3VO4)を含む5倍容積の溶解緩衝液中でホモジネート化した。タンパク質濃度はビシンコニン酸(BCA)アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いて決定した。診査的試験により、20%の特異的結合を達成するために必要なタンパク質の量および放射性標識リガンドの濃度を決定した。インスリン受容体結合は、アッセイチューブ当たり100μgのタンパク質を用いて行った。IGF-I結合アッセイは試料当たり25μgのタンパク質を必要とし、IGF-II受容体結合アッセイは反応当たり10μgのタンパク質を必要とした。
タンパク質の発現はウエスタンブロット分析または固相酵素免疫アッセイアッセイ(ELISA)によって調べた。ウエスタンブロット分析はAAHおよびGAPDHの発現を測定するために用いた。加えて、PI3キナーゼのp85サブユニットに対応する免疫反応性も、陰性(ローディング)対照として測定した。ウエスタンブロット分析のためには、肝組織を、プロテアーゼ阻害薬(1mM PMSF、0.1mM TPCK、1mg/mlのアプロチニン、1mg/mlのペプスタチンA、0.5mg/mlのロイペプチン、1mM NaF、1mM Na4P2O7)およびホスファターゼ阻害薬(2mM Na3VO4)を含む、5倍容積の放射性免疫沈降アッセイ(RIPA)緩衝液中(50 mM Tris-HCl、pH 7.5、1% NP-40、0.25% デオキシコール酸ナトリウム、150 mM NaCl、1 mM EDTA、2 mM EGTA)でホモジネート化した。タンパク質濃度はBCAアッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いて決定した。20μgのタンパク質を含む試料をSDS-PAGEによって分画し、PVDF膜に移行させた。非特異的結合部位はSuperBlock-TBS(Pierce, Rockford, IL)でブロックし、膜を一次抗体(0.5〜1μg/ml)とともに、穏やかな架台撹拌下にて4℃で一晩行った。免疫反応性は、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)結合二次抗体、増強化学発光(ECL)試薬(Pierce, Rockford, IL)およびKodak Digital Science Imaging Station(NEN Life Sciences, Boston, MA)を用いて検出した。
PPARアゴニストであるGW7647(PPAR-α)、L165、041(PPAR-δ)およびFmoc-Leu(PPAR-γ)は、Calbiochem(Tecumsula, CA)から購入した。ヒト組換え[125I]インスリン、IGF-IおよびIGF-IIはAmersham Biosciences(Boston, MA)から購入した。非標識ヒトインスリン、組換えIGF-Iおよび組換えIGF-IIはBachem(Torrance, CA)から購入した。QuantiTect SYBR Green PCR MixはQiagen Inc(Valencia, CA)から入手した。GAPDHおよびβ-アクチンに対するモノクローナル抗体は、Chemicon(Tecumsula, CA)から購入した。AAHを検出するために用いたA85G6マウスモノクローナル抗体は、組換えヒトタンパク質を用いて作製した。他のすべてのファインケミカルは、CalBiochem(Carlsbad, CA)またはSigma-Aldrich(St. Louis, MO)から入手した。
データは、各群に関する平均±S.E.M.または平均±95% C.I.L.を表すグラフの形で示した。群間比較は、有意性に関する分散分析(ANOVA)およびpost-hoc Tukey-Kramer検定の反復測定を用いて行った。統計学的分析は、GraphPad Prism 5ソフトウエア(GraphPad Software, Inc., San Diego, CA)を用いて行った。
対照液体飼料または固形飼料のいずれかを与えたラットからの肝臓は、予想通りに非常に組織化された小葉構築を示し、脂肪症、核サイズのばらつき、および肝細胞の脱落という証拠はほとんどみられなかった(図9A、9E、9I)。これに対して、エタノール曝露肝臓は小滴性および大滴性脂肪症を呈し、小葉内リンパ単核細胞炎症の多数の病巣、ならびにアポトーシスおよび/または壊死の散在領域を伴っていた(図10A、10E、10I)。加えて、慢性的にエタノールを与えることは、規則正しい索の損失および肝細胞核のサイズのばらつきの増大を伴う、肝構築の乱れももたらした。エタノール曝露肝臓における線維化の増加、再生中の節形成および肝硬変の証拠はみられなかった。PPAR-αアゴニストで処置した対照ラットは、媒体処置対照と比較して、肝臓における検出可能な組織学的変化を有しなかった(図9B、9F、9J)。これに対して、PPAR-δアゴニスト(図9C、9G、9K)またはPPAR-γアゴニスト(図9D、9H、9L)で処置した対照ラットは、類洞拡張および外見上の肝細胞叢生の増加のために、より組織化されていない肝構築を有していた。加えて、PPAR-δまたはPPAR-γ処置は、肝細胞の核の顕著さの増大および細胞質の微小空胞形成ももたらした。微小空胞形成は過ヨウ素酸Schiff(PAS)染色の増加を伴い、これはグリコーゲン蓄積に一致する。エタノール摂取群において、PPARアゴニストによる処置は、肝臓の組織像に対して、慢性的エタノール曝露によって引き起こされる構築の乱れ、脂肪症および細胞死を減少させるという、さまざまではあるが明白な影響を及ぼした(図10)。PPAR-α、PPAR-δまたはPPAR-γアゴニストによる処置は、構築の混乱を減少させ、肝細胞の索様配列を増大させるとともに、小滴性および大滴性脂肪症のいずれの程度も明らかに低下させた。しかしながら、小さな壊死巣(図10J、挿入図)、炎症(図10G、挿入図および図10H、矢印)およびアポトーシス(図10L、挿入図)は容易に検出されたが、これらの病変は一般に、媒体処置したエタノール曝露肝臓におけるよりも目立たなかった。肝組織像の最も顕著な改善は、PPAR-δアゴニスト(図10Cおよび10K)またはPPAR-γアゴニスト(図10Dおよび10L)で処置されたエタノール摂取ラットで生じた。
qRT-PCRにより、すべての試料を同時に、かつ結果の一貫性を示すために十分な反復を伴って分析することが可能になった。用いた手法によれば、組織から生成されたcDNAの質は、PPARアゴニスト処置の如何にかかわらず、対照エタノール摂取ラットから得られる18S Ct値が同程度であること、および一貫した28S:18S比であることに基づいて優れていると判断される。qRT-PCRの使用は、アンプリコンが小さく(主として<150bp)、その結果、部分的RNA分解と関係する潜在的な問題、例えば、慢性的エタノール曝露および酸化ストレスに伴ってしばしば起こるニッキングが回避されるため、遺伝子発現の厳密な分析のために理想的に適していた。増幅産物の特異性は直接的な核酸シークエンシングによって確かめた。cDNAテンプレートを含めない、RNAを逆転写させない、RNA試料をRT段階の前にRNアーゼAで前処置する、またはゲノムDNAを反応に用いるといった対照試験では、qPCR分析およびアガロースゲル電気泳動によって示されるような検出可能な産物は生じなかった。RT段階の前のDNAアーゼIによるRNA試料の処置は、増幅された遺伝子産物の検出レベルに対して影響を及ぼさなかった。
アルブミン、先端ナトリウム依存性胆汁輸送体タンパク質(ASBT)、グリア酸性線維素タンパク質(GFAP)、クッパー細胞受容体(KCR)、デスミンおよびコラーゲンの肝臓でのmRNAレベルをqRT-PCRによって測定した。アルブミンの発現を、肝細胞存在量/機能の指標として用いた。ASBTは胆管上皮を反映する。GFAPは星細胞活性化の初期マーカーであり、デスミンは肝星細胞の筋線維芽細胞への分化転換を特徴づける。KCRはクッパー細胞のマーカーであり、その発現増大は損傷に対する肝内応答を反映しうると考えられる。コラーゲン遺伝子の発現は線維形成能力または活発な線維形成に対応する。以上を総合して、本発明者らが「細胞プロファイリング」と命名した、肝臓における遺伝子発現に関するこれらの評価により、本発明者らは、肝細胞の種類および機能における、エタノールおよびPPARアゴニストに関連した相対的変移を定量することが可能となった。
QRT-PCR試験により、対照ラットおよびエタノール摂取ラットのいずれの肝臓においても、インスリン、IGF-I、IGF-IIポリペプチド遺伝子、それらの対応する受容体、ならびにIRS-1、IRS-2およびIRS-4の発現が示され(図12)、このことはインスリンおよびIGFシグナル伝達のために必要な上流遺伝子が成体ラット肝臓ですべて発現されることを示している。ポリペプチド遺伝子の中で、インスリンは最も存在量が少なく、続いてIGF-IIであり、IGF-Iは最も存在量が多かった(図12A〜12C)。媒体処置対照およびエタノール曝露肝臓は、インスリン、IGF-IおよびIGF-IIの平均mRNAレベルが同程度であった。対照群では、PPAR-δおよびPPAR-γはインスリン遺伝子の発現を有意に増大させたが、エタノール曝露群では、インスリン遺伝子の発現はPPAR-αまたはPPAR-δ処置によって低下した。インスリン遺伝子の発現は、エタノール曝露させたPPAR-δおよびPPAR-γ処置において、対応する対照肝臓よりも有意に低かった。IGF-I mRNAレベルは対照ラットではPPARアゴニスト処置によって有意には変化しなかったが、エタノール曝露群では、PPARアゴニスト処置は、媒体処置対照およびすべての対応するPPARアゴニスト処置対照と比較してIGF-I発現を有意に低下させた(図12B)。対照において、IGF-II発現はPPARアゴニスト処置によっては同じく有意に変化しなかったが、慢性的にエタノールを与える場合には、PPAR-αまたはPPAR-γ処置はIGF-II mRNAの平均レベルを、媒体処置対照およびすべての対応するPPARアゴニスト処置対照と比較して有意に低下させた(図12C)。
インスリン、IGF-IおよびIGF-II受容体結合に対するエタノールおよびPPARアゴニスト処置の影響を示すために、飽和結合アッセイを用いた。試験は、各サブグループ内の8匹のラット(タンパク質含有量に関して等しい割合)からプールした肝組織試料を用いて行った。結合曲線±95% C.I.L.、Kd(解離定数;親和性)およびBMAX(最大レベルの結合)の算出、ならびに群間の統計学的比較は、Prism Graphics 5ソフトウエアを用いて行った。すべての実験条件において、単一部位モデルで最も高いR2、すなわち最良適合(best fit)が得られた。慢性的にエタノールを与えることは、インスリン受容体結合に関してBMAXを有意に低下させたが、Kdに対する有意な影響は及ぼさなかった(図13A、13Eおよび表3)。対照群において、インスリン受容体結合に関するBMAXは、PPAR-α、PPAR-δまたはPPAR-γアゴニストによる処置によって有意に低下した(図13A〜13Dおよび表3)。PPAR-α処置は、インスリン受容体のBMAXを低下させる点に関して最も顕著な影響を及ぼした。これに対して、PPARアゴニスト処置はインスリン結合に関するKdを有意に変化させなかった。PPAR-α処置はエタノール曝露ラットにおいても媒体と比較してBMAXを弱め、Kdを増大させたが、PPAR-δアゴニストまたはPPAR-γアゴニストによる処置はインスリン受容体のBMAXを増大させてKdを低下させ、このことから媒体処置対照および対応するPPARアゴニスト処置対照肝臓の両方と比較して最大結合レベルがより高く、結合親和性が高いことが示された(図13E〜13Hおよび表3)。
AAHの発現はインスリン、IGF-IまたはIGF-II刺激によって増大し、肝細胞の成長および運動性に対して正の影響を及ぼす(Cantarini et al., Hepatology 44:446 (2006);de la Monte et al., J Hepatol. 44:971 (2006))。GAPDHはグルコース代謝において重要な役割を果たすインスリン応答性遺伝子である。ウエスタンブロット分析により、すべての肝臓試料でAAHおよびGAPDHの免疫反応性が検出された(図16A)。β-アクチンに対するモノクローナル抗体を用いたブロットの再プロービングにより、全レーンでタンパク質ロード量がほぼ等しいことが示された。ウエスタンブロットシグナルのデジタル画像定量により、エタノール曝露させた媒体処置肝臓ではAAHおよびGAPDHのレベルがより低いことが判明した。対照において、PPARアゴニスト処置はAAHの平均レベルに対して検出可能な影響を及ぼさなかったが(図16B)、平均レベルof GAPDH(図16C)およびβ-アクチンの平均レベルは幾分(有意ではないものの)変化させた(図16D)。PPARアゴニスト処置はまた、エタノール摂取群においても肝臓でのAAHおよびGAPDHを有意ではないものの幾分低下させた。AAHおよびGAPDHタンパク質の平均レベルの正味の変移により、AAHおよび/またはGAPDHタンパク質発現に関する有意な群間差は解消された。しかし、PPARアゴニスト処置の影響をさらに精細に検討するために、蛍光レポーター試薬を用いる高感度直接ELISAアッセイを用いた。
Claims (13)
- 動物におけるアルコール誘発性肝疾患を治療するため、予防するため、または回復させるための薬学的組成物であって、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体-δ(PPAR-δ)選択的アゴニストL-165,041の治療的有効量を含む薬学的組成物。
- 動物における慢性的アルコール摂取によって生じる肝損傷を治療するため、予防するため、または回復させるための薬学的組成物であって、PPAR-δ選択的アゴニストL-165,041の治療的有効量を含む薬学的組成物。
- 肝損傷が酸化ストレスと関連している、請求項2記載の薬学的組成物。
- 肝損傷が脂質過酸化と関連している、請求項2記載の薬学的組成物。
- 肝損傷がDNA損傷と関連している、請求項2記載の薬学的組成物。
- 慢性的アルコール摂取を伴う動物における肝再生応答を刺激するため、または復元させるための薬学的組成物であって、PPAR-δ選択的アゴニストL-165,041の治療的有効量を含む薬学的組成物。
- PPAR-α選択的アゴニスト、またはPPAR-γ選択的アゴニストをさらに含む、請求項1、2、および6のいずれか一項記載の薬学的組成物。
- 肝疾患が脂肪症、アルコール性肝炎、またはアルコール性肝硬変である、請求項1記載の薬学的組成物。
- 慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約0.1gの純アルコール/kg体重/日である、請求項2、および6のいずれか一項記載の薬学的組成物。
- 慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約0.5gの純アルコール/kg体重/日である、請求項9記載の薬学的組成物。
- 慢性的アルコール摂取量が平均で少なくとも約1gの純アルコール/kg体重/日である、請求項10記載の薬学的組成物。
- 肝再生応答が、PPARアゴニストの投与の非存在下における応答を10%上回るレベルへと刺激される、請求項6記載の薬学的組成物。
- 肝再生応答が、PPARアゴニストの投与の非存在下における応答を50%上回るレベルへと刺激される、請求項12記載の薬学的組成物
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