JP4709489B2 - 創傷治癒のためのヒドロキシピリドン誘導体の使用 - Google Patents
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Description
Xは、SまたはO、
Yは、水素原子、または2個までの塩素および/もしくは臭素のようなハロゲン原子、
Zは、単結合、または、
a)O、もしくは
b)S、もしくは
c)−C(R5)(R6)−;式中、R5およびR6は、同一もしくは異なって、独立して、水素原子もしくは(C1−C4)−アルキルであり;もしくは
d)他の鎖状の2〜10個の炭素を有する二価の基であって、さらに場合によって1個または2個以上の次の:
i)炭素−炭素二重結合、または
ii)O、S、もしくはその混合物であって、式中、2個もしくはそれ以上のOおよび/もしくはS原子もしくはその混合物が存在する場合には、それぞれのOもしくはS原子は少なくとも2個の炭素原子で離されており;ならびに
いかなる上記の二価の基においても、該二価基の炭素原子の自由結合価(free valence)は水素原子、(C1−C4)−アルキル、もしくはその混合物で飽和されており;ならびに、
Arは、2個までの環を有する芳香環系であって、フッ素、塩素、臭素、メトキシ、(C1−C4)−アルキル、トリフルオロメチルおよびトリフルオロメトキシから成るグループから選ばれる3個までの基によって置換されることができる遊離もしくは塩の形態のものである}
の基である〕
の1−ヒドロキシ−2−ピロリドンの創傷処置および/または創傷の治癒のための医薬を製造するための利用に関する。
−O−、−S−、−CH2−、−(CH2)m−(ここで、m=2−10)、−C(CH3)2−、−CH2O−、−OCH2−、−CH2S−、−SCH2−、−SCH(C2H5)−、−CH=CH−CH2O−、−O−CH2−CH=CH−CH2O−、−OCH2−CH2O−、−OCH2−CH2CH2O−、−SCH2CH2CH2S−、−SCH2CH2CH2CH2O−、−SCH2CH2OCH2CH2O−、−SCH2CH2OCH2CH2O−CH2CH2S−、または−S−CH2−C(CH3)2−CH2−S−である。
6- [4-(4-クロロフェノキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
6- [4-(2,4-ジクロロフェノキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
6-(ビフェニリル-4-オキシメチル)-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
6- (4-ベンジル-フェノキシメチル)-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
6- [4-(2,4-ジクロロベンジルオキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
6- [4- (4-クロロフェノキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-3,4-ジメチル-2-ピリドン、
6- [4-(2,4-ジクロロフェノキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-3,4-ジメチル-2-ピリドン、
6- [4- (シンナミルオキシ) フェノキシメチル]-1-ヒドロキシ-4-メチル-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-4-メチル-6- [4-(4-トリフルオロメチルフェノキシ) フェノキシメチル]-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-4-メチル-6-シクロヘキシル-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-4-メチル-6-(2,4,4-トリメチルペンチル)-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-4-メチル-6-n-ヘキシル-,-6-イソ-ヘキシル-,-6-n-ヘプチル-もしくは
-6-イソ-ヘプチル-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-4-メチル-6- (2-ビシクロ[2,2,1] ヘプチル)-2-ピリドン、
1-ヒドロキシ-3,4-ジメチル-6-ベンジル-、もしくは-6-ジメチルベンジル-2-ピリドン、または
1-ヒドロキシ-4-メチル-6-(β-フェニルエチル)-2-ピリドン、
である。
、ウシ、ブタ、ラット、マウス、ヒツジまたはイヌを意味するものと理解される。
適した被覆材をさらに詳しく以下の例を用いて説明する:
アルネート創傷被覆材は、アルギン酸カルシウム繊維を製織したものである。アルギン酸カルシウムは、海草に由来する海洋性の生重合体である。アルギネートは非常に吸湿的である。アルギネート被覆材が創傷滲出物と接触すると、やわらかいゲルが形成され、肉芽組織形成および上皮形成が誘導される創傷面の湿気のある環境を維持する。アルギネート被覆材は、それ自体の重量の20倍もの量を吸収する性質があるので、重度の滲出を伴った創傷に適用される。
これらは、一般に重層であり、創傷との接触面の非粘着性層、ならびに種々の吸収剤、芯材(wicking)、および半密封性層が組み合わされている。吸収性層には発泡体、アルギネート、親水コロイド、またはヒドロゲルは組み込まれない。裏打ちの不織布の吸着テープが、被覆材を皮膚に固定する。これらの被覆材は創傷治癒の全ての段階の被覆材として用いられ、多くのタイプの手術後創傷に用いられる一次被覆材である。
コンタクトレイヤーは、薄いシート状の被覆材で、その創傷組織を、創傷に用いられた他の薬剤または被覆材から保護するために、直接、創傷の開口部に付される。二次被覆材は常にコンタクトレイヤーと一緒に用いられる。
発泡体被覆材は、基本的にはポリウレタンから作られるが、しかし、シリコーンもまた使用される。これらは、平面的な発泡体被覆材またはフィラーとして用いることができ、いくらかの滲出液を産生する肉芽化し上皮形成している創傷に用いることが意図されている。
織ったガーゼ被覆材は、100%の綿花糸から作られている。糸は4×4インチ平方の12枚重ね(ply)スポンジの製造工程で、10〜20個の別々の処理工程を経て、水平および垂直の方向に織り上げられる。織られたガーゼ被覆材には、非常に多くのタイプがあり、パッキングと創傷清拭のために一般的に使用されている。
不織布は、織られたり編んだりされていない。繊維は織られているような概観に整列調製されている。ほとんどの不織布はレーヨンおよびポリエステルの混紡から製造される。レーヨンは柔軟性および吸収性を与え、一方ポリエステルは強度を与える。不織ガーゼの
主な適用は、吸収および包装のためである。
含浸(impregnated)ガーゼ被覆材は、織られたまたは不織の素材であり、物質が被覆材の素材中に組み入れられている。
ハイドロコロイド被覆材は、広く普及している第二世代の被覆材であり、中程度の吸湿性で、湿度を保持し、創傷に合致し(conformable)、そして、自己粘着性のものである。これらには、密封性があり、細菌感染に対するバリアーを形成する。寸法のある形態(dimensional form)での利用に加えて、ハイドロコロイドは、粉末、顆粒、ペースト、または他の特別な形態で供給される。主要な機能成分は、ゼラチン、ペクチン、または関連するハイドロコロイドである。これらは、圧迫性潰瘍、火傷、および様々な他の創傷のタイプに適用できる。
ハイドロゲルは、水が主成分である半透過性被覆材である。グリセリンまたはプロピレングリコールが湿潤剤として用いられ、共重合体スターチが時には吸収剤として加えられる。この被覆材は、ガーゼ含浸ウエーハー、シート、および不定形ゲルとして利用可能であり、漏出のないまたは中程度の漏出のある、部分的および完全な厚みをもった創傷に適用される。
透明フィルム被覆材は、粘着性層に縁取られたポリウレタン膜から成っている密封性被覆材である。被覆材は、厚み、密封性の程度、および他の特性により変わる。透明フィルム被覆材は、小さな外科の切開傷、末梢性および中心性静脈カテーテルの差込み口、表在性火傷、部分的厚さの崩壊性傷害(breakdown wounds)、ならびに二次被覆材として適用される。
この部類のものは、
−天然由来の吸収性で生物学的適合性のあるコラーゲンをベースにした被覆材
−関連する生物適合性のあるアミノ酸およびタンパク質の加水分解物から作られた被覆材
−合成および生物学的に誘導された素材を組み合わせた被覆材
を含む。
CPXによるVEGF遺伝子発現の誘導
方法
細胞培養
安定的に形質導入されたHIF−1−依存性受容体遺伝子を含有するHRCH05細胞は既に文献に記載されている(Wanner, R. M. 等 (2000年) Epolones induce erythropoietin expression via hypoxia-inducible factor-1α activation. Blood 96巻,1558-1565頁)。ヒトHepG2ヘパトーマ細胞株はAmerican Type Culture Collection から入手した(ATCC番号 HB-8065)。全ての細胞株は、10%熱不活性化FCS、ペニシリン100U/mL、ストレプトマイシン100μg/mL、1×非必須アミノ酸およびピルビン酸ナトリウム1mM(全て、Life Technologies社より購入)を添加した、ダルベコ修正イーグル培地(Dulbecco's modified Eagle's medium(DMEM, グルコース高濃度, Life Technologies社))中で、5%CO2を含む湿潤環境下、37℃で培養した。インキュベーター(Forma Scientific, model 3131)中の酸素分圧は、140mmHg(20%O2v/v、通常酸素圧)または7mmHg(1%O2v/v、低酸素圧)のいずれかであった。シクロピロックス・オラミン(CPX)、デフェロキサミン・メシレート(DFX)および2,2’−ジピリジル(DP)はSigma社から購入した。CPXおよびDPの保存用溶液はメタノール中で、それぞれ0.5Mおよび1Mの濃度で調製された。DFXは用時調製し、細胞培養液中に10mMの濃度で溶解した。
HepG2細胞に、VEGFプロモーター駆動性ルシフェラーゼ構築体を、エレクトロポレーション法により一時的に形質導入した。これは既に文献に記載されている((Ikeda, E.等 (1995年) Hypoxia-induced transcriptional activation and increased mRNA stability of vascular endothelial growth factor in C6 glioma cells. J. Biol. Chem. 270巻、19761-19766頁)。刺激の後、一時的で安定した形質転換細胞をパッシブ溶解用緩衝液(passive lysis buffer)(Promega社)中で溶菌し、ルシフェラーゼ活性を製造者の指示書(Promega社)に従ってルシフェラーゼ測定キットを用いて、96穴ルミノメーター(MicroLumat LB96P, EG & G Berthold社)の中で測定した。細胞の増殖/生存性は、臭化3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウム(MTT)による検定法により記載されたように評価した(30,31)。570nmの吸光度を96穴比色計(Rainbow, SLT Labsystems)により測定した。
CPXは、5μM〜20μM濃度で、通常の酸素濃度(normoxic)の下でHepG2ヘパトーマ細胞において、処置6〜24時間後に、強力にHIF−1αタンパク質を誘導した。通常の酸素濃度の下の細胞では、HIF−1αタンパク質は検出されなかったが、低酸素状態(1%O2)でもHIF−1αは強く誘導された。CPXと低酸素状態の組合せでは、6時間後に、それ以上のHIF−1α濃度の増加は見られず、逆に処置の24時間後にはHIF−1α濃度はかえって減少していた。
ラット単離還流腎でのCPXによるHIF−1標的遺伝子誘導の不在
全身性投与されたDFXは、マウスで、ユビキタスなHIF−1の安定性および腎特異的エリスロポイエチン発現を誘導する(Wang, G. L.,およびSemenza, G. L. (1993年) Desferrioxamine induces erythropoietin gene expression and hypoxia-inducible factor 1 DNA-binding activity: implications for models of hypoxia signal transduction. Blood 82巻、3610-3615頁)。治療的血管形成のためのHIF−1誘導剤としてのCPXの局所投与に関して、CPXがVEGFの全身性の誘導をもたらすことができるかどうかを検討することが重要であった。エクス・ビボのモデルとして、ラット単離腎を、CPX濃度を増加させながら通常酸素状態下で3時間還流した。しかし、CPXは、0.1μM〜100μMまでの濃度範囲で、HIF−1の標的遺伝子であるVEGF、Glut−1およびアルドラーゼのmRNAレベルを誘導しなかった。より高いCPX濃度(33μMおよび100μM)では、アルブミンおよびナトリウムの排泄速度の強く増加から示されるように、腎機能のダウンレギュレーションが導かれた。3%酸素で3時間の還流の後、Glut−1のmRNAは増加したが、VEGFおよびアルドラーゼのmRNAレベルはCPXによってはそれ以上上昇しないことが観察された。
CPXによる、ニワトリ絨毛尿膜(CAM)における血管形成誘導
胚絨毛尿膜(CAM)検定
方法
CAM検定はOlivo, M.等が記載された方法で実施した(A comparative study on the effects of tumor necrosis factor-α (TNF-α), human angiogenic factor (h-AF) and basic fibroblast growth factor (bFGF) on the chorioallantoic membrane of the chick embryo, (1992年). Anat. Rec. 234巻、105-115頁)。略記すれば、受精卵(Lohmann Tierzucht, Cuxhaven, Germanyより購入)を加湿環境下、37℃で培養した。卵は、側面を固定し、1日に2度上下をひっくり返した。6日後、小さな穴をドリルで殻を通して空気胞(air sac)まで開け(強力な光源により可視化される)、ついで、約0.5cm2の開口部を卵の側面に設けた。この開口部はテープでシールされ、卵をさらに9日目まで培養し、9日目に6−シクロヘキシル−1−ヒドロキシ−4−メチル−2(1H)−ピリドン2−アミノエタノール塩(CPX)をElvax(R)法によりCAMに適用した(前記Olivo, M.参照)。そのために、エチレン/ビニル酢酸共重合体ビーズ(Elvax(R) 40L-03, DuPont社、C. H. Erbsloh KG, Krefeld, Germanyから提供された)をエタノールで十分に洗浄し減圧下で乾燥した。このElvax(R)ビーズをつぎに、塩化メチレンに10%(w/v)で溶解し、CPXを所望の濃度で添加した。この溶液の1滴(40μL)をピペットでシリコーン処理をしたガラススライドに載せ、完全に蒸発させた。ピンセットを用いて、Elvax(R)デスクを注意してガラススライドから持ち上げ、CAMに設置した。11日目に、開口部を広げて、立体顕微鏡の接眼レンズに組み込んだデジタルカメラ(オリンパス社)により、CAMを記録した。
細胞培養でCPXがVEGF発現を誘導したという観察を基に(実施例1参照)、イン・ビボの血管形成モデルの血管形成能力を解析した。そのために、発生9日目のニワトリCAMに、種々の濃度のCPXまたは溶媒のみを含有する不活性重合体を重層した。培養2日後に、溶媒単独の対照デスクでは血管形成の兆候は全く観察されなかった。これに対して、50mMのCPXを含有する重合体デスクでは、数多くの新しく形成され放射状に配置された血管により確認されたように、CAMで血管形成が一貫して誘導されていた。50mMのCPXで処理された総計10個のCAMで同様な血管形成がみられ、一方、7個の対照CAMではいずれも血管形成の兆候がなかった。5mMのCPXでは、対照群との差異はみられず、500mMのCPXはニワトリ胚に毒性を示した。
マウス皮膚創傷モデル
方法
ケタミン(ナルケタン(R))100mg/kgおよびキシラジン(ロンプン(R))5mg/kgによる麻酔下に、成獣NMRIマウスの両方の耳に、標準的な耳パンチング器具を用いて、直径2mmのパンチ穴を開けた。この耳は、毎日、一般的なスキンクリームの、1%(w/v)のCPXを含む(バトラフェン(R))または含まないもので処置した。一方の耳はCPXで処置し、他方の耳は対照クリームで処置した。クリーム量は、穴を覆うために十分なものであり、均等に耳全体を覆うように塗り広げた。
CPXはマウス皮膚創傷モデルにおいて血管形成を誘導できる。
耳の直径2mmのパンチ穴(動物施設でマウスを識別するための良く知られた方法)は、一方の耳には1%のCPXを含有する市販の皮膚用クリーム、他方の耳にはCPXを含まないがその他は一般的皮膚クリームと同じもので、それぞれ毎日処置された。CPXは創傷の縁に発赤を生じさせることができ、これは同じ耳の健常な皮膚領域では決して観察されなかった。このシリーズで、10匹中4匹の動物が、同様な効果を示し、プラセボ処置創傷縁で、CPX処置創傷縁に比べて、より明確な発赤を示した動物はいなかった。CPXにより誘導された発赤は促進された血管の成長かもしれない。
Claims (4)
- 1−ヒドロキシ−4−メチル−6− [4− (4−クロロフェノキシ) フェノキシメチル]−2−(1H) ピリドン、1−ヒドロキシ−4−メチル−6−シクロヘキシル−2−(1H) ピリドンおよび1−ヒドロキシ−4−メチル−6−(2,4,4−トリメチルペンチル)−2−(1H) ピリドンから成る群から選ばれる少なくとも1つの化合物および/またはその塩の形態を含む血管形成誘導剤であって、乳剤、軟膏、溶液、チンキ剤、クリームもしくはゲル剤の形態、またはエアロゾール剤もしくは発泡体の形態の創傷治癒のための医薬製剤の製造に使用され、前記創傷が、擦り傷、火傷、あかぎれ、挫滅、切り傷、裂傷、深い切傷、臓器移植、銃創、切開、焦げ傷、引掻き傷、皮膚火傷、圧迫傷、刺し傷、移植または外科もしくは形成外科に伴う傷である、前記血管形成誘導剤。
- 化合物が、それ自体、または互いの混合物として投与される、請求項1に記載の血管形成誘導剤。
- 医薬製剤の中の化合物の用量が、化合物および/またはその生理的に許容できる塩の質量で約0.05%〜約5%である、請求項1または2に記載の血管形成誘導剤。
- 医薬製剤がさらに、デキスパンテノール、アラントイン、デキストラノマー、もしくはエキナシア(Echinacea)植物の抽出物のような活性成分、またはそれら成分の混合物を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の血管形成誘導剤。
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