JP4251399B2 - Screening method for peptides to which O-linked sugar chains are added - Google Patents
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Description
本発明は、O結合型糖鎖が付加されたペプチドの同定および解析方法に関する。 The present invention relates to a method for identifying and analyzing a peptide to which an O-linked sugar chain is added.
タンパク質の翻訳後修飾、中でも糖鎖の付加は、タンパク質の機能に重要な役割を担うことが知られている。糖鎖は、(1)タンパク質の高次構造を決定づけることでタンパク質の活性制御に、(2)タンパク質を見分けるタグとして、タンパク質の品質管理や細胞内輸送に、および(3)直接情報分子として細胞間コミュニケーションに、重要な機能を果たしていることが明らかになりつつある。また、糖鎖修飾の異常により、先天性疾患、癌、免疫不全などが引き起こされる事例も知られるようになってきた。したがって、糖タンパク質の機能およびその制御を解明するためには、糖鎖修飾の構造を解析することが必要である。 It is known that post-translational modification of proteins, especially addition of sugar chains, plays an important role in protein functions. Sugar chains are (1) for controlling protein activity by determining the higher-order structure of the protein, (2) as a tag to identify the protein, for quality control of the protein and for intracellular transport, and (3) as a direct information molecule for the cell. It is becoming clear that it plays an important function in intercommunication. In addition, cases in which congenital diseases, cancer, immunodeficiency, etc. are caused by abnormal sugar chain modification have been known. Therefore, in order to elucidate the function and control of glycoproteins, it is necessary to analyze the structure of glycosylation.
タンパク質の糖鎖修飾は、アスパラギン残基にグルコサミン(GlcNAc)が結合して始まるN型糖鎖と、セリン・スレオニン残基にガラクトサミン(GalNAc)が結合して始まるO結合型糖鎖とに大別される。N型糖鎖については、基本構造の合成に関与する酵素群はほぼ決まっており、また、付加位置のコンセンサス配列も知られている。一方、O結合型糖鎖については、セリンまたはスレオニン残基にO−結合したGalNAcを特異的に遊離させる酵素が知られておらず、非変性条件下で糖タンパク質からO結合型糖鎖を取り除くことがきわめて困難であった。このため、糖鎖の構造および機能はまだよく解明されておらず、コンセンサス配列も見つかっていない。タンパク質に最初にGalNAcを付加する酵素は、ppGalNAcT(UDP−N−アセチルガラクトサミン:ポリペプチドN−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼ)と呼ばれ、ゲノムプロジェクトの成果に基づいて、バイオインフォマティクスの手法によりその遺伝子の解析が進められている。その結果、ppGalNAcTは20数種類が存在し、組織によってその発現パターンが様々であることが明らかとなってきた。 Protein sugar chain modification is broadly divided into N-type sugar chains starting with glucosamine (GlcNAc) bound to asparagine residues and O-linked sugar chains starting with galactosamine (GalNAc) bound to serine / threonine residues. Is done. For the N-type sugar chain, the enzyme group involved in the synthesis of the basic structure is almost determined, and the consensus sequence at the additional position is also known. On the other hand, for O-linked sugar chains, an enzyme that specifically releases GalNAc O-linked to serine or threonine residues is not known, and O-linked sugar chains are removed from glycoproteins under non-denaturing conditions. It was extremely difficult. For this reason, the structure and function of sugar chains have not yet been elucidated, and no consensus sequence has been found. The enzyme that first adds GalNAc to a protein is called ppGalNAcT (UDP-N-acetylgalactosamine: polypeptide N-acetylgalactosaminyltransferase). Based on the achievements of the genome project, the gene's Analysis is ongoing. As a result, it has been clarified that there are 20 types of ppGalNAcT and their expression patterns vary depending on tissues.
タンパク質のどの位置にO結合型糖鎖が付加するかを調べるためには、糖タンパク質をプロテアーゼで消化し、異なるフラグメントをHPLCにより分離した後に各フラグメントのアミノ末端配列を決定するか、またはHPLCと質量分析によりペプチドの配列を決定する方法が用いられている。しかし、この方法は多くの手間と時間とを要するため、多くの種類の糖タンパク質を解析するのには適していない。したがって、当該技術分野においては、特定の生物または特定の組織で発現されるO結合型糖タンパク質を網羅的に解析する方法の開発が求められている。 To determine where in the protein an O-linked sugar chain is added, digest the glycoprotein with protease and separate the different fragments by HPLC, then determine the amino terminal sequence of each fragment, or HPLC and A method of determining the sequence of a peptide by mass spectrometry has been used. However, since this method requires a lot of labor and time, it is not suitable for analyzing many types of glycoproteins. Therefore, in this technical field, development of a method for comprehensively analyzing O-linked glycoprotein expressed in a specific organism or a specific tissue is required.
本発明に関連する先行技術文献情報としては以下のものがある。
本発明は、O結合型糖鎖が付加されたペプチドを網羅的に解析しうる方法を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide a method capable of comprehensively analyzing a peptide to which an O-linked sugar chain is added.
本発明は、O結合型糖鎖が付加されたペプチドを同定する方法であって、
(a)糖鎖の付加ができないタンパク質発現系で糖転移酵素の基質となりうるペプチドを産生させ、
(b)該ペプチドに糖転移酵素を作用させることによりO結合型糖鎖を付加し、
(c)O結合型糖鎖が付加されたペプチドを選択し、
(d)該糖鎖付加ペプチドの構造を解析する、
の各工程を含む方法を提供する。
The present invention is a method for identifying a peptide to which an O-linked sugar chain is added,
(A) producing a peptide that can serve as a substrate for glycosyltransferase in a protein expression system in which a sugar chain cannot be added;
(B) adding an O-linked sugar chain by allowing a glycosyltransferase to act on the peptide;
(C) selecting a peptide to which an O-linked sugar chain has been added;
(D) analyzing the structure of the glycosylated peptide;
The method including each of these steps is provided.
好ましい態様においては、本発明の方法の工程(a)におけるペプチドの産生は、ペプチドをファージ表面にディスプレイさせることにより行われる。また好ましくは、工程(a)におけるペプチドの発現は、ペプチドをファージ表面にディスプレイさせることにより行われ、かつ、工程(d)におけるペプチドの構造の解析は、該ファージ中に挿入されたDNAの配列を解析することにより行われる。また好ましくは、本発明の方法は、さらに糖鎖付加ペプチドに付加されたO結合型糖鎖の構造を解析する工程を含む。 In a preferred embodiment, the production of the peptide in step (a) of the method of the present invention is performed by displaying the peptide on the phage surface. Also preferably, the expression of the peptide in the step (a) is performed by displaying the peptide on the surface of the phage, and the analysis of the structure of the peptide in the step (d) is performed by the sequence of the DNA inserted into the phage. This is done by analyzing Preferably, the method of the present invention further includes a step of analyzing the structure of the O-linked sugar chain added to the glycosylated peptide.
本発明の方法においては、まず、糖鎖の付加ができないタンパク質発現系で糖転移酵素の基質となりうるペプチドを産生させる。本明細書において用いる場合、「ペプチド」とは、数アミノ酸残基からなる短いペプチドであってもよく、タンパク質であってもよく、タンパク質のフラグメントであってもよい。糖転移酵素としては、ペプチドのセリン残基またはスレオニン残基にGalNAc、GlcNAc、Man、Fuc、GluまたはXylを付加する活性を有する酵素であればいずれの酵素を用いてもよく、例えば、ppGalNAcT、O−GlcNAcT(OGT)、O−FucT、XylT(XT−1)などを用いることができる。糖転移酵素は、動物、植物、微生物などから抽出された天然の酵素であってもよく、遺伝子組換え技術を用いて製造されたものでもよく、人工的に作成した酵素模倣物であってもよい。 In the method of the present invention, first, a peptide that can serve as a substrate for glycosyltransferase is produced in a protein expression system in which a sugar chain cannot be added. As used herein, the “peptide” may be a short peptide consisting of several amino acid residues, a protein, or a protein fragment. As the glycosyltransferase, any enzyme may be used as long as it has an activity of adding GalNAc, GlcNAc, Man, Fuc, Glu or Xyl to the serine residue or threonine residue of the peptide. For example, ppGalNAcT, O-GlcNAcT (OGT), O-FucT, XylT (XT-1), or the like can be used. The glycosyltransferase may be a natural enzyme extracted from animals, plants, microorganisms, etc., may be produced using genetic recombination technology, or may be an artificially created enzyme mimic. Good.
特に好ましい態様においては、本発明の方法はファージディスプレイ系を用いて行う。まず、分析対象であるペプチドをコードするDNAをファージゲノム中に組み込み、定法にしたがってファージを宿主に感染させて増殖させることにより、ペプチドをファージの表面にディスプレイさせる。DNAは、特定の生物または特定の臓器に由来するcDNAライブラリであってもよく、合成オリゴヌクレオチドのライブラリでもよい。ファージディスプレイは、ペプチドをファージのカプシドタンパク質との融合タンパク質としてファージの表面にディスプレイさせる技術であり、レセプターに結合するペプチドのスクリーニング等に一般に用いられている。各種のペプチドディスプレイ用ファージベクターが市販されており、cDNAライブラリのサイズやディスプレイさせるべきタンパク質のサイズによって、適宜選択して用いることができる。このようなファージベクターの例は、T7Select(登録商標)ファージ(Novagen)である。なお、このとき、ファージ表面にディスプレイされるファージカプシドタンパク質中に、糖転移酵素が最初に糖を付加する標的となるアミノ酸配列が含まれていてはならないことに注意すべきである。 In particularly preferred embodiments, the methods of the invention are performed using a phage display system. First, DNA encoding a peptide to be analyzed is incorporated into the phage genome, and the peptide is displayed on the surface of the phage by infecting the phage with a host according to a conventional method and allowing it to propagate. The DNA may be a cDNA library derived from a specific organism or a specific organ, or may be a library of synthetic oligonucleotides. Phage display is a technique for displaying a peptide on the surface of a phage as a fusion protein with a capsid protein of a phage, and is generally used for screening a peptide that binds to a receptor. Various phage vectors for peptide display are commercially available, and can be appropriately selected and used depending on the size of the cDNA library and the size of the protein to be displayed. An example of such a phage vector is T7Select® phage (Novagen). It should be noted that at this time, the phage capsid protein displayed on the surface of the phage must not contain an amino acid sequence which is a target to which a glycosyltransferase first adds a sugar.
特に好ましくは、特開2004−89069に記載の方法にしたがって、ファージの表面上に多コピーのペプチドをディスプレイするファージを用いることができる。簡単には、ファージ外殻タンパク質をコードするDNAと目的のペプチドをコードするDNAとの間に、ストップコドンを挿入したファージディスプレー用組み換えベクターを作製し、該ストップコドンに適したサプレッサーtRNAをコードするDNAを含む組み換えベクターを作製し、感染させる宿主体内にサプレッサーtRNAを導入発現させておき、さらに、用いるサプレッサーtRNAのサプレッサー活性を適当な方法により制御する。この方法を用いることにより、より大きいサイズのペプチドを多コピーでディスプレイするファージを得ることができる。 Particularly preferably, a phage displaying a multi-copy peptide on the surface of the phage can be used according to the method described in JP-A-2004-89069. Briefly, a recombinant vector for phage display in which a stop codon is inserted between a DNA encoding a phage coat protein and a DNA encoding a target peptide, and a suppressor tRNA suitable for the stop codon is encoded. A recombinant vector containing DNA is prepared, a suppressor tRNA is introduced and expressed in the host body to be infected, and the suppressor activity of the suppressor tRNA to be used is controlled by an appropriate method. By using this method, phages that display multiple copies of larger size peptides can be obtained.
次に、ペプチドに糖転移酵素を作用させることにより、O結合型糖鎖を付加させる。糖転移酵素の作用の条件は、それぞれの糖転移酵素に適した条件を用いることができるが、例えば、5mM MnCl2、250μM UDP−GalNAcを含むTBST(10mM TB(pH7.4)、0.15M NaCl、0.1% Tween20)等のバッファー中で、37℃で2−24時間インキュベートすることにより行うことができる。ファージディスプレイ系を用いる場合には、ファージに糖転移酵素を作用させることにより、ファージ表面にディスプレイされているペプチドにO結合型糖鎖を付加させることができる。 Next, an O-linked sugar chain is added by allowing glycosyltransferase to act on the peptide. As the conditions for the action of glycosyltransferase, conditions suitable for each glycosyltransferase can be used. For example, TBST containing 5 mM MnCl 2 and 250 μM UDP-GalNAc (10 mM TB (pH 7.4), 0.15 M) It can be carried out by incubating in a buffer such as NaCl, 0.1% Tween 20) at 37 ° C. for 2 to 24 hours. When a phage display system is used, an O-linked sugar chain can be added to the peptide displayed on the phage surface by allowing a glycosyltransferase to act on the phage.
次に、O結合型糖鎖が付加されたペプチドを選択する。選択は、レクチンを用いることにより、例えば、レクチンを固定化したカラムに糖転移酵素を作用させたペプチドを吸着させ、適宜洗浄した後に、付加された糖または同様のレクチン結合活性をもつ糖、例えば、GalNAc、ガラクトースなどを用いて溶出することにより、容易に行うことができる。レクチンは、付加されるO結合型糖鎖のタイプに応じて適宜選択することができ、例えば、GalNAcが付加されたペプチドを選択する場合には好ましいレクチンはジャカリンである。また、ペプチドに結合した糖鎖をビオチンで修飾した後、アビジン、ストレプトアビジン等を用いて、ビオチン修飾糖鎖結合ペプチドを回収することにより行ってもよい。 Next, a peptide to which an O-linked sugar chain is added is selected. Selection can be made by using a lectin, for example, by adsorbing a peptide having glycosyltransferase acting on a column on which the lectin is immobilized, washing it appropriately, and adding an added sugar or a sugar having a similar lectin binding activity, for example, , Elution using GalNAc, galactose or the like. The lectin can be appropriately selected according to the type of O-linked sugar chain to be added. For example, when a peptide to which GalNAc is added is selected, a preferred lectin is jacalin. Moreover, after modifying the sugar chain couple | bonded with the peptide with biotin, you may carry out by collect | recovering biotin modification sugar chain binding peptides using avidin, streptavidin, etc.
例えば、以下の実施例において記載されるように、モデル系としてMuc5ACペプチドおよびIgAヒンジペプチドを用い、これらのペプチドをコードするオリゴヌクレオチドをファージに組み込んでペプチドをファージ表面に発現させ、このファージをppGalNAcTで処理してジャカリンカラムで精製することにより、GalNAc含有糖ペプチドを回収することが可能である。 For example, as described in the Examples below, Muc5AC peptides and IgA hinge peptides are used as a model system, oligonucleotides encoding these peptides are incorporated into phages and the peptides are expressed on the phage surface, and the phages are ppGalNAcT It is possible to recover the GalNAc-containing glycopeptide by treating with the above and purifying with a jacarin column.
次に、このようにして選択された糖鎖付加ペプチドの構造を解析する。ペプチド上の糖鎖が付加されたアミノ酸残基を同定するためには、HPLC、アミノ酸シークエンサー、質量分析(MS)等を用いる。ファージディスプレイ系を用いる場合には、上述の方法にしたがって得られたファージを回収した後に、そのゲノム中に挿入されたDNAの配列を解析することにより、O結合型糖鎖が付加されたペプチドのアミノ酸配列を決定する。挿入されたDNAの配列は、例えば、ファージゲノム中のDNA挿入部位付近の配列を基に設計したプライマーを用いて容易に決定することができる。 Next, the structure of the glycosylated peptide thus selected is analyzed. HPLC, amino acid sequencer, mass spectrometry (MS) and the like are used to identify amino acid residues to which sugar chains on peptides are added. In the case of using a phage display system, the phage obtained according to the above-mentioned method is collected, and then the sequence of the DNA inserted into the genome is analyzed, whereby the peptide to which the O-linked sugar chain is added is analyzed. Determine the amino acid sequence. The sequence of the inserted DNA can be easily determined using, for example, a primer designed based on the sequence near the DNA insertion site in the phage genome.
なお、この態様においては、ファージに組み込むDNAとして、cDNAライブラリ以外の種々のものを用いることができる。例えば、特定のタンパク質の糖鎖付加位置をマッピングするためには、そのタンパク質をコードするDNAを切断して得たフラグメントや、DNAをテンプレートとしてランダムプライマーにより製造したフラグメントのライブラリなどを用いることができる。また、各糖転移酵素の特性決定や認識配列の研究に利用するために、部位特異的変異またはランダム変異が導入されたペプチドをコードするオリゴヌクレオチドを用いてもよい。 In this embodiment, various DNA other than the cDNA library can be used as the DNA to be incorporated into the phage. For example, in order to map the glycosylation position of a specific protein, a fragment obtained by cleaving DNA encoding the protein, a library of fragments produced with random primers using DNA as a template, and the like can be used. . In addition, oligonucleotides encoding peptides into which site-specific mutations or random mutations have been introduced may be used in order to determine the characteristics of each glycosyltransferase and to study recognition sequences.
この方法にしたがえば、特定の糖転移酵素によりO結合型糖鎖が付加されたペプチドをレクチンカラム等で精製し、このファージに挿入されている遺伝子を解析することにより、O結合型糖鎖が付加されるペプチド配列を同定することが可能である。さらに、特定の細胞や組織、または特定の生物に由来するcDNAライブラリを用いることにより、糖転移酵素により修飾されるタンパク質を網羅的に同定することが可能である。すなわち、本発明は、糖転移酵素の特性や作用メカニズムの解析に、糖タンパク質の構造、機能および活性制御の解析に、ならびに糖タンパク質を介する細胞内および細胞間シグナル伝達の解析に有用である。 According to this method, a peptide to which an O-linked sugar chain has been added by a specific glycosyltransferase is purified using a lectin column or the like, and an O-linked sugar chain is analyzed by analyzing the gene inserted into this phage. Can be identified. Furthermore, by using a cDNA library derived from a specific cell or tissue or a specific organism, it is possible to comprehensively identify proteins modified by glycosyltransferases. That is, the present invention is useful for analyzing the characteristics and action mechanisms of glycosyltransferases, analyzing the structure, function and activity of glycoproteins, and analyzing intracellular and intercellular signal transduction via glycoproteins.
さらに、本発明の方法にしたがって得られた糖鎖付加ペプチドから、付加された糖鎖の構造を解析することができる。糖鎖構造の解析は、各種のレクチンや糖鎖特異的抗体を用いるアッセイ、質量分析などの、当該技術分野においてよく知られる方法を用いて行うことができる。 Furthermore, the structure of the added sugar chain can be analyzed from the glycosylated peptide obtained according to the method of the present invention. The analysis of the sugar chain structure can be carried out using methods well known in the art, such as assays using various lectins and sugar chain-specific antibodies, and mass spectrometry.
以下に実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。 EXAMPLES The present invention will be described below in more detail with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.
ペプチド提示ファージクローンの作成
Muc5ACペプチドおよびIgAヒンジペプチドの配列に基づいて、以下の配列のオリゴヌクレオチドを合成した。
Preparation of Peptide Displaying Phage Clones Oligonucleotides having the following sequences were synthesized based on the sequences of Muc5AC peptide and IgA hinge peptide.
このオリゴヌクレオチドをT7Select(登録商標)10−7ファージ(Novagene)のEcoRI−HindIII部位にインフレームとなるように組み込んだ。T7Select(登録商標)は、バクテリオファージT7に基づくファージディスプレイシステムであり、マルチクローニングサイトに組み込まれたDNAにコードされるペプチドをファージカプシドタンパク質との融合タンパク質としてファージ表面に発現することができる。 This oligonucleotide was incorporated in-frame into the EcoRI-HindIII site of T7Select (registered trademark) 10-7 phage (Novagene). T7Select (registered trademark) is a phage display system based on bacteriophage T7, and a peptide encoded by DNA incorporated into a multicloning site can be expressed on the phage surface as a fusion protein with a phage capsid protein.
定法にしたがってファージを増殖させ、プレートライセートにより回収し、ポリエチレングリコール沈殿により濃縮して、ファージを精製した。ファージをTBST(10mMTrisHCl(pH7.4)、0.15M NaCl、0.1%Tween−20)に対して透析した。 Phages were grown according to a conventional method, recovered by plate lysate, and concentrated by polyethylene glycol precipitation to purify the phages. The phage was dialyzed against TBST (10 mM TrisHCl (pH 7.4), 0.15 M NaCl, 0.1% Tween-20).
分泌型ヒトppGalNAcT3を文献(FEBS Letters,531,115−121(2002))に記載の方法にしたがってバキュロウイルス系で合成し、精製した。ppGalNAcTの活性を確認するためには、蛍光標識を付けた合成ムチンペプチドを基質として使用し、HPLCを用いて糖鎖修飾による溶出位置のシフトに基づいて分析した。 Secreted human ppGalNAcT3 was synthesized in a baculovirus system and purified according to the method described in the literature (FEBS Letters, 531, 115-121 (2002)). In order to confirm the activity of ppGalNAcT, a synthetic mucin peptide with a fluorescent label was used as a substrate, and analysis was performed based on the shift of the elution position by sugar chain modification using HPLC.
以下の表に示される条件で反応を行った。
撹拌しながら37℃で12.5時間反応させた後、ポジティブコントロールには10μlの0.5M EDTAを、その他には450μlのTBSTを加えて、反応を停止させた。 After reacting at 37 ° C. for 12.5 hours with stirring, the reaction was stopped by adding 10 μl of 0.5 M EDTA for positive control and 450 μl of TBST for others.
ppGalNAcTと反応させたファージと、ジャカリンアガロース(Vector Laboratories,UK)とをTBST中で4℃で一晩処理した後、ミニカラムに詰め、大過剰のTBSTで洗浄した後、10mM GalNAcで溶出した。各画分に含まれるファージ数を計測した。結果を図1に示す。 Phage reacted with ppGalNAcT and jacalin agarose (Vector Laboratories, UK) were treated in TBST at 4 ° C. overnight, packed in a minicolumn, washed with a large excess of TBST, and eluted with 10 mM GalNAc. The number of phages contained in each fraction was counted. The results are shown in FIG.
Muc5ACペプチドおよびIgAヒンジペプチドのいずれについても、ジャカリンカラムからGalNAc含有糖ペプチドが溶出された。このことから、本発明の方法を用いて、ファージ表面にディスプレイされた糖鎖付加ペプチドを単離することが可能であることが示された。 For both the Muc5AC peptide and the IgA hinge peptide, the GalNAc-containing glycopeptide was eluted from the jacalin column. From this, it was shown that the glycosylated peptide displayed on the phage surface can be isolated using the method of the present invention.
Claims (2)
(a)ファージディスプレイ系を用いて作成したペプチドライブラリー、(A) a peptide library prepared using a phage display system;
(b)O−結合型糖転移酵素、(B) an O-linked glycosyltransferase,
(c)(b)の酵素で付加される糖鎖を認識するレクチン。(C) A lectin that recognizes a sugar chain added by the enzyme of (b).
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