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JP2976436B2 - 新規オリゴリボヌクレオチド誘導体及び抗ウイルス剤への使用 - Google Patents

新規オリゴリボヌクレオチド誘導体及び抗ウイルス剤への使用

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Publication number
JP2976436B2
JP2976436B2 JP1064058A JP6405889A JP2976436B2 JP 2976436 B2 JP2976436 B2 JP 2976436B2 JP 1064058 A JP1064058 A JP 1064058A JP 6405889 A JP6405889 A JP 6405889A JP 2976436 B2 JP2976436 B2 JP 2976436B2
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JP
Japan
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group
hydrogen atom
general formula
thioanion
substituent
Prior art date
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JP1064058A
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弘和 森沢
秀喜 中島
直樹 山本
佐知子 向井
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Original Assignee
Ajinomoto Co Inc
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Publication date
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Priority to EP96106543A priority patent/EP0739899B1/en
Priority to DE1989629361 priority patent/DE68929361T2/de
Priority to EP96106546A priority patent/EP0739902B1/en
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Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は、AIDS（後天性免疫不全症候群）の原因ウイ
ルスであるAIDSウイルス（HIV−1,HIV−２等）の増殖を
阻害することにより無毒化し得る新規化合物、２′−Ｏ
−メチルリボオリゴヌクレオチドホスホロチオエート誘
導体、２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチド誘導
体、それらの新規製造中間体、オリゴリボヌクレオチド
誘導体及びそれら誘導体の用途に関し、医薬品、例えば
抗AIDS薬等抗ウイルス剤への使用に関する。
従来の技術 AIDS（後天性免疫不全症候群）は、1981年に発見され
たが、その原因がレトロウイルス科に属するHIV（human
immunodeficiency virus、以下AIDSウイルスと略
す。）によることが明かとなった。その患者数は世界各
国で年々増加し、WHOの報告では1988年８月31日現在、
全世界で11万人を越える。一方、日本では90人の患者が
報告されている（1988年８月31日現在）。更に、当該ウ
イルスに感染しているが未だAIDSに至っていない感染者
を含めるとその数は世界中で1000万人を越え（WHO推
定）、日本では1048人である（1988年８月31日現在、厚
生省報告）。この深刻な疾病であるAIDSを完全に治癒す
る薬剤は現在のところ見い出されていない。AIDSの病状
の進行を遅らせ、患者の臨床徴候を改善する薬物として
３′−デオキシ−３′−アジドチミジン（以下「AZT」
と略す。）が臨床的に使用されているが、その有効性と
同時に骨髄障害等の副作用が報告されている（The New
England Journal of Medicine 317,192−197,1987年参
照）。AZTの作用機作は、レトロウイルスが宿主細胞内
に侵入後、自己の遺伝子RANをDNAへと転写するのに利用
するウイルス自身の保有する逆転写酵素の活性を阻害す
る為（Mitsuya,H.,et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA.82,7
096−7100,1985年参照。）、副作用発現に関連している
可能性がある。
一方、最近デオキシオリゴヌクレオチドのホスホロチ
エート誘導体が抗AIDSウイルス活性を有することが報告
されている（Proc.Natl.Acad.Sci.USA.84,7006−7710,1
987年参照。）が実用化されていない。
発明が解決しようとする課題 AIDSウイルスはその表面タンパク質における株間での
極めて高頻度の変異が生じるため、有効なワクチンの開
発が著しく困難であり、前述のような化学医療剤に期待
されるところが大きい。しかし、これまでの化学療法剤
としてAZTのようなヌクレオシド誘導体は抗AIDSウイル
ス活性を有しながら、一方で深刻な副作用も認められて
いる。従って、副作用が少なくて実用性の高い薬剤の開
発が望まれている。又、その目的を達成する為、デオキ
シオリゴヌクレオチドホスホロチオエート誘導体が基礎
的研究の段階で期待されているが、それよりも一段と作
用が強く、しかも安価で得られる薬剤の開発が望まれて
いる。
課題を解決するための手段 本発明者らは上記の課題を解決すべく鋭意研究を重ね
た結果、新規に製造した２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌ
クレオチド誘導体及びオリゴリボヌクレオチド誘導体が
宿主細胞へのAIDSウイルスの感染・増殖を阻害し、AIDS
治療薬として使用できることを見い出し、この発見に基
き本発明を完成するに到った。
即ち、本発明は、下記一般式式で示される新規オリ
ゴリボヌクレオチド誘導体及びこれを有効成分として含
有する抗AIDSウイルス剤、AIDSウイルス（HIV−1,HIV−
２等）の遺伝子RNA又は染色体に組み込まれたDNAに相補
的な配列を有し、下記一般式で示される新規２′−Ｏ
−メチルリボオリゴヌクレオチドホスホロチオエート誘
導体及びこれを有効成分として含有する抗AIDSウイルス
剤、下記一般式で示される新規２′−Ｏ−メチルリボ
オリゴヌクレオチド誘導体及びこれを有効成分として含
有する抗AIDSウイルス剤、及びそれら誘導体の製造原料
に供することができる下記一般式及びで示される新
規２′−Ｏ−メチルリボヌクレオシド誘導体及び新規ヌ
クレオシド誘導体である。
一般式 前記式中、ｍは１〜100の整数を、Ｂ＝B2,B3…B(m+1)
で、B1〜B(m+2)は相互に同一又は異なり、それぞれヒポ
キサンチン−９−イル、グアニン−９−イル、アデニン
−９−イル、シトシン−１−イル、ウラシル−１−イ
ル、チミン−１−イルのいずれかを、Ｑ＝Q2、Q3…Q
(m+1)で、Q1〜Q(m+1)は相互に同一又は異なりそれぞれ
オチアニオン、オキソアニオン、アルキル基、アリール
オキシ基、アルキルアミノ基、アリールアミノ基、アル
キルチオ基及びアリールチオ基のいずれかを（ただし、
Q1〜Q(m+1)の少なくとも一つはチオアニオンを表わ
す。）。Ｘ＝X2、X3…X(m+1)で、X1〜X(m+1)はそれぞれ
相互に同一又は異なり水素原子、メチル基又は炭素数１
〜20のカルボキシル基（ただし、全てが水素を表すこと
はない）を、Ｒは水素原子、炭素数１〜20のアシル基、
置換基を有していてもよいホスホリル基、置換基を有し
ていてもよいチオホスホリル基又は置換基を有していて
もよいアルキルアミノホスホリル基のいずれかを、Y1及
びY2は相互に同一又は異なり、それぞれメトキシ基、炭
素数１〜20のカルボキシル基、水素原子、ヒドロキシル
基、置換基を有していてもよいアルキルオキシ基、置換
基を有していてもよいホスホリルオキシ基、置換基を有
していてもよいチオホスホリルオキシ基及び置換基を有
していてもよいアルキルアミノホスホリルオキシ基をそ
れぞれ表わす。ここでアルキルは炭素数１〜30の直鎖状
又は分岐鎖状の炭化水素残基を、アリールはフェニル基
を含む炭素数６〜30の炭化水素残基をそれぞれ表わす。
又、前記式において、ＲおよびY1,Y2における置換
基としては、相互に同一又は異なり、シアノエチル基、
クロロフェニル基、モノホスホリル基、ピロホスホリル
基、炭素数１〜20の炭化水素残基、コレステリル基及び
基Ｊ−（Ｋ−Ｏ−Ｌ）Ｅ−が例示される。ただし、Ｊは ヒドロキシル基又は一般式で示される誘導体の構造式
中RO,Y1,Y2のいずれか一つを除いたオリゴリボヌクレオ
チジル基をいずれかを、Ｋはホスホリル基、チオホスホ
リル基、炭素数１〜10のアルキルアミノホスホリル基の
いずれかを、Ｌは炭素数１〜20の炭化水素残基を、Ｅは
１〜10の整数をそれぞれ表わす。又、塩基配列はAIDSウ
イルスの遺伝子RNA又は染色体に組み込まれたNNAの配列
に必らずしも相補的で無くてもよい。
前記式において、B1〜B(m+2),Q1〜Q(m+1)及びX1〜X
(m+1)は５′側から1,2,3,4…（ｍ＋１）の順で示され
る。例えばｍが２のときB1〜B(m+2)は５′側から順に
B1,B2,B3,B4となり、Q1〜Q(m+1)は５′側から順にQ1,
Q2,Q3となり、X1〜X(m+1)は５′側から順にX1,X2,X3と
なり、下記構造式を示す。
同様に、ｍが100のときはＢ１〜（ｍ＋２）は５′側
から順にB1,B2,B3…B100,B101,B102となり、Q1〜Q(m+1)
は５′側から順にQ1,Q2,Q3…Q100,Q101となり、X1〜X
(m+1)は５′側から順にX1,X2,X3…X100,X101となり下記
構造式を示す。
一般式 ただし、前記式中ｍ′は１〜50の整数を、B1′〜Ｂ′
（ｍ′＋２）は相互に同一又は異なり、アデニン−９−
イル−（Ａ）、グアニン−９−イル−（Ｇ）、シトシン
−１−イル−（Ｃ）、ウラシル−１−イル−（Ｕ）、チ
ミン−１−イル−（Ｔ）及びヒポキサンチン−９−イル
−（Ｈ）のいずれかを、Q1′はチニアニオン（Ｓ ）、
オキソアオニン（Ｏ ）、アルキル基、アルキルオキシ
基、アリルオキシ基、アルキルアミノ基、アリールアミ
ノ基、アルキルチオ基及びアリールチオ基のいずれか
を、Q2′からＱ′（ｍ′＋１）は少なくとも一つがチオ
アニオン（Ｓ ）であり、かつ残りがチオアニオン（Ｓ
）又はオキソアニオン（Ｏ ）のいずれかをY1′〜
Y3′は相互に同一又は異なり、メトキシ基、置換基を有
していてもよいアルキルオキシ基、ヒドロキシル基、ア
ルキルシリル基及び水素原子のいずれかを、Ｒ′は水素
原子又は置換基を有していてもよいホスホリル基又はチ
オホスホリル基を、それぞれ表わす。ここでアルキルは
炭素数１〜30の直鎖状又は分岐鎖状の炭化水素残基を、
アリール基はフェニル基を含む炭素数６〜30の炭化水素
残基をそれぞれ表わす。前記置換基としては、シアノエ
チル基、クロロフェニル基及び炭素数１〜10の炭化水素
残基が例示される。
前記式において、Ｂ′及びＱ′は５′側から1,2,3,4
…（ｍ′＋２）の順序で示される。例えば、ｍ′が２の
ときＢ′２〜（ｍ′＋１）は５′側から順にB2′,B3′
となり、Ｑ′２〜（ｍ′＋１）は５′側から順にQ2′,Q
3′となり、下記の構造を示す。
同様に、ｍ′が50のときはＢ′２〜（ｍ′＋１）は５
側から順にB2′,B3′,B4′…B50′,B51′となり、Ｑ′
２〜（ｍ′＋１）は５′側から順にQ2′,Q3′,Q4′…Q
50′,Q51′となり、下記の構造を示す。
一般式： ただし、前記式中ｍ″は１〜50の整数を、B1″〜Ｂ″
（ｍ″＋２）は相互に同一又は異なり、それぞれアデニ
ン−９−イル−（Ａ）、グアニン−９−イル−（Ｇ）、
シトシン−１−イル−（Ｃ）、ウラシル−１−イル−
（Ｕ）、チミン−１−イル−（Ｔ）及びヒポキサンチン
−９−イル−（Ｈ）のいずれかを、Ｑ″は少なくとも１
つのチオアニオンを含み、チニアニオン（Ｓ ）、オキ
ソアオン（Ｏ ）、アルキル基、アルキルオキシ基、ア
リルオキシ基、アルキルアミノ基、アリールアミノ基、
アルキルチオ基及びアリールチオ基のいずれかを、Y1″
〜Y3″は相互に同一又は異なり、メトキシ基、置換基を
有していてもよいアルキルオキシ基、ヒドロキシル基、
アルキルシリル基及び水素原子のいずれかを、Ｒ′は水
素原子又は置換基を有していてもよいホスホリル基を、
それぞれ表わす。
ここでアルキルは炭素数１〜30の直鎖状又は分岐鎖状
の炭化水素残基を、アリールはフェニル基を含む炭素数
６〜30の炭化水素残基をそれぞれ表わす。前記置換基と
しては、シアノエチル基、クロロフェニル基及び炭素数
１〜10の炭化水素残基が例示される。又、塩基配列はAI
DSウイルスの遺伝子RNA又は染色体に組み込まれたDNAの
配列に必らずしも相補的で無くてよい。
一般式 一般式 ただし上記一般式及び中、Ｗはモノメトキシトリ
チル基又はジメトキシトリチル基を、Y4はメトキシ基、
置換基を有していてもよいアルキル基及び水素原子のい
ずれかをｎ及びｔは相互に異なっていてもよく、１〜30
の整数を、はコントロールドポアガラス誘導体、ポリ
スチレン誘導体及びシリカゲル誘導体のいずれかを、Ｚ
は下記構造式のいずれかで示される置換基を、それぞれ
表わす。
また、アルキルオキシ基のアルキル部分の炭素数は１
〜10であり、置換基を有するアルキルオキシ基としては
例えば、 等が挙げられる。
オリゴデオキシヌクレオチドの抗ウイルス作用は、例
えばラウス肉種ウイルスの増殖抑制のように誘導体化せ
ずに用いた報告があるが（Zamecnik,P.C.Proc.Natl.Aca
d.Sci.USA 75,280−284,1978年参照。）一方で、オリゴ
デオキシヌクレオチドが哺乳動物細胞の培養液中及び細
胞抽出物中、或いは血清中で速やかに分解されることが
報告されている（Wickstrom,E.Journal of Bioohemical
and Biophysical Methods 13,97−102,1986年参
照。）。従って、オリゴデオキシヌクレオチドのより効
果的な抗ウイルス作用を期待するには、それらを分解さ
れないように誘導体化しておくことが望ましい。例えば
オリゴデオキシヌクレオチド中のリン酸ジエステルをメ
チルスルホン酸に換えた誘導体が、単純ヘルペスウイル
ス１型の増殖を阻害することが報告されているし（Smit
h,C.C. et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA83,2787−2791,1
986年参照。）、オリゴデオキシヌクレオチド中のリン
酸ジエステルをホスホロチオエートに換えた誘導体が安
定性が高まるということが報告されており（Stein,C.A.
Nucleic Acids Res.16,3209−3221,1988年参照。）、
又、それらがAIDSウイルスの増殖を阻害することが報告
されている（Matsukura,M.et al.Proc.Natl.Acad.Sci.U
SA,84,7706−7710,1987年参照。）。又、インターフェ
ロンインデューサーである二本鎖ポリRNAにおいてホス
ホロチオエート誘導体にすることにより、安定性が高ま
り牛の水疱性口内炎ウイルス（vesicular stomatitis v
irus）に対する抗ウイルス作用が増強されることが報告
されている（De Clercq,E.et al.Virology 42,421−42
8,1970年参照。）。
一方、２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチドはRN
Aの糖部分の２′位水酸基がメチル化されたものであ
り、それによりDNA、RNAを分解する種々の酵素（ヌクレ
アーゼ）に対し抵抗性を示すという性質が知られている
（Gray,M.W.et al.Biochem.Biophys.Acta 134, 243,196
7年;Dunlap,B.E.et al.Biochemistry 10,2581−2587,19
71年。）。又、その相補的配列を有するRNA鎖と安定な
二重鎖を作り、しかもその安定性は同じ塩基配列のDNA
−RNA相補的二本鎖の安定性を有意に上まわるという性
質を有している（Inoue,H.et al.,Nucleic Acids Res.1
5,6131−6148,1987年参照）。またRNA分解酵素であるRN
ase Hからの分解に抵抗性を示す性質を利用し、RNA鎖の
位置特異的切断に用いられており（Inoue,H.,et al.,FE
BS Letters 215, 327−330,1987年、参照）、更にDNA分
解酵素Bal 31ヌクレアーゼに対し、DNAに比べ有意に抵
抗性を示すという性質を利用し、DNAの一方向のみの欠
失体の作成に用いられている（Mukai,S.,et al.Nucleic
Acids Symposium Series No.19,117−120,1988年参
照。）。以上の種々の知見は２′−Ｏ−メチルリボオリ
ゴヌクレオチドが、その相補的塩基配列のRNA鎖と安定
な二本鎖を形成するということ、及びDNA,RNAを分解す
る種々の酵素（ヌクレアーゼ）に対し抵抗性を示すとい
う特徴に基づいている。又、過去に於て、作用機作は明
確でないがポリ２′−Ｏ−メチルリボヌクレオチドがマ
ウスでのレトロウイルスによる癌の進行を阻止するとい
うことが報告されている（Tennant,R.W.et al.Proc.Nat
l.Acad.Sci.USA'71,3167−3171,1974年，参照。）。
又、２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチドはオリゴ
リボノクレヌクレオチドと同様にデオキシオリゴヌクレ
オチドに比べより安価な原料を用いて製造することがで
きる。
AIDSウイルスの構造及び性質は最近の研究により、次
のような知見が得られている。即ち、AIDSウイルスは約
9000鎖長の一本鎖RNAを遺伝子の本体とするレトロウイ
ルスで逆転写酵素を有する。その遺伝子の塩基配列（一
次構造）は既に報告されている（Ratner,L.,et al.Natu
re 313,277−284,1985年;Muesing,M.A.et al.Nature 31
3,450−458,1985年;Sanchez−Pescador R.,et al.Scien
ce 227,484−492,1985年;Wain−Hobson,S.,et al.Cell
40,9−17,1985年，参照）。感染標的細胞はヒトリンパ
球のうち膜抗原としてT4（モノクローナル抗体で検出さ
れる抗原）陽性である主としてヘルパー／インデューサ
ー細胞であり、感染者これらの細胞変性効果を起こし破
壊する。細胞への吸着・侵入後のウイルスは、自己の有
する逆転写酵素によって、tRNALysをプライマーとして
利用し直鎖状二本鎖ウイルスDNAへと変化し、核内に移
行して環状構造をとり、宿主細胞染色体DNAへと組み込
まれプロウイルスとなる。プロウイルスからの転写は宿
主細胞のメッセンジャーRNA（以下、「mRNA」と略
す。）と同様に細胞由来のRNAポリメラーゼIIによりウ
イルスmRNAへと転写される。この過程は、ウイルス自身
にコードされている少なくとも２つの遺伝子産物、即ち
tat（transactivator）及びrev（regulator of express
ino of virion proteins）により調節されている。tat
は、ウイルスの転写活性増強因子として転写開始点直後
のTARエレメント（transacting responsive element）
と呼ばれる領域に働きかける（Rosen,C.A.,et al.,Cell
41,813−823,1985年，参照。）。転写されたウイルスR
NAは、一部はウイルス粒子中に取り込まれるゲノムRNA
となり、一部は遺伝子を発現するmRNAとして利用され
る。mRNAは数種類存在し、ウイルス抗原と逆転写酵素を
発現する全長のRNAと、１個スプライシングを受けて短
くなった表面糖タンパク質を発現するmRNAと、tat,rev
などの遺伝子を発現するために少なくとも２回のスプラ
イシングを受けて更に短くなったmRNAなどである。
本発明は、上述のごとくこれら２′−Ｏ−メチルリボ
ヌクレオチド及びオリゴリボヌクレオチドを有する利点
を生かし、リン酸部を更に誘導体化し、AIDSウイルスの
感染・増殖を阻害することに成功した。しかもその阻害
効果はオリゴマー中の単量体の結合様式が２′−５′結
合、３′−５′結合のいずれでもよく、即ち３′−Ｏ−
メチルヌクレオシドをその構成成分としていてもよいこ
とが明らかとなった。従ってオリゴマー分子中に２′−
５′結合及び３′−５′結合の両方を有していてもよ
く、糖部２′（又は３′）水酸基はすべて或いは部分的
にメチル化されていても良いし、アシル化されていても
よい。又は、オリゴヌクレオチドの３′,5′両末端の糖
部は一般式〜で示したように置換基を有していても
よい。
上述したように本発明における化合物は、オリゴマー
中のリン酸部分を誘導体化されている。種々の検討を重
ねた結果チオリン酸結合を有する誘導体が特に有効であ
り、又、そのチオリン酸結合は、オリゴマー分子中のす
べてのリン酸ジエステル結合に必要では無いということ
が明らかとなった。又、それらの塩基配列がAIDSウイル
スの遺伝子RNA又は染色体に組み込まれたDNAの塩基配列
に相補的である場合、及び必らずしも相補的で無い場合
のいずれの場合でもその阻害効果を有することが明らか
となった。
本発明において、相補的な配列のオリゴマーは、ウイ
ルス遺伝子上で重要な機能を担っている領域を標的とす
ることが好ましい。
例えば、本発明における特許請求の範囲請求項15記載
の誘導体（化合物VI）、請求項16記載の誘導体（化合物
VII）、請求項17記載の誘導体（化合物VIII）、請求項1
8記載の誘導体（化合物IX）、請求項21記載の誘導体
（化合物X II）は、いずれもウイルス遺伝子RNA又はmRN
Aの5300番目（mRNAの転写開始位置を１番目とする。）
以降に存在する５′UUUAUCCAUUUUCAGAAUUGGGUCU3′なる
塩基配列を有する領域に相補的な配列であり、mRNAの１
回目のスプライシングの切断、結合がおこる領域であ
る。従って、これを妨害することにより、表面蛋白質、
tat,revなどの遺伝子発現を阻害することが期待でき
る。又、特許請求の範囲請求項19記載の誘導体（化合物
Ｘ）は、ウイルス遺伝子RNAの逆転写開始領域に存在す
るプライマーtRNA結合領域を含む５′CAGUGGCGCCCGAACA
GGGAC3′なる塩基配列に相補的である。従ってウイルス
遺伝子複製の最初の段階である逆転写開始の妨害を期待
できる。
又、特許請求の範囲請求項20記載の誘導体（化合物X
I）はウイルス遺伝子RNA又はmRNAの５′末端近傍に存在
する５′CAGAUCUGAGCCUGGGAGCUC3′なるtat産物が働き
かけるTARエレメント内の配列に相補的であり、特許請
求の範囲請求項３記載の誘導体（化合物XX VII）はウイ
ルス遺伝子RNA上のプライマー結合部位から、下流に存
在する塩基配列に相補的であり、ウイルスの転写、複製
を阻害することが期待できる。特許請求の範囲請求項４
記載の誘導体（化合物XX VIII）は、gag遺伝子開始コド
ンすぐ上流の塩基配列に相補的であり、特許請求の範囲
請求項５記載の誘導体（化合物XX IX）は、gag遺伝子内
の塩基配列に相補的であり、gag蛋白質翻訳の阻害が期
待できる。これらはいずれも強い抗AIDSウイルス作用を
示すことが判明した。ただし、それらの作用メカニズム
の詳細についての実証はされていない。
一方、オリゴデオキシヌクレオチド誘導体を用いた抗
AIDSウイルス作用として、文献（Matsukura,M.,et al.P
roc.Natl.Acad.Sci.USA,84,7706−7710,1987年;Agrawa
l,S.,et al.Proc,Natl.Acad.Sci.USA, 85,7709−7083,1
988年参照）に記載されているように、AIDSウイルス遺
伝子RNA又は染色体に組み込まれたDNAの塩基配列に相補
的で無いオリゴデキシヌクレオチド誘導体も相補的な誘
導体と同様に抗AIDSウイルス作用を有することが報告さ
れている。
一方、オリゴデオキシヌクレオチド誘導体よりも安価
な原料を用いて製造することができる本発明における一
般式及びで示される化合物はAIDSウイルス遺伝子RN
A又は染色体に組み込まれた塩基配列に必らずしも相補
的でないが、抗AIDSウイルス作用を示す。又、一般式
で示される化合物のうち、例えば、特許請求の範囲請求
項25記載の誘導体（化合物X V）、請求項26記載の誘導
体（化合物X VI）、請求項27記載の誘導体（化合物X VI
I）及び請求項28記載の誘導体（化合物X VIII）も相補
的な配列では無いが抗AIDSウイルス作用を示すことが判
明した。
一方、本発明における化合物は、強いインターフェロ
ン誘導剤として知られている高分子二本鎖RNA（Lanpso
n,G.P.et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA.,58,782,1967年;
Field,A.K.et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA.,58,1004,19
76年，参照。）やそれらの誘導体（De Clercq,E.et a
l.,Virology 42,421−428,1970年，参照。）とは異なり
より低分子であり、またインターフェロン処理した細胞
中に見い出されるタンパク合成阻害物質である、すべて
がアデノシンで構成され、２′−５′結合を有する２′
−５′oligo A（Kerr,I.M.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,7
5,256,1978年，参照。）やその誘導体とは明らかに区別
される。
本発明のオリゴリボヌクレオチド誘導体は、例えばア
ミダイト法（Matteucci,M.D.et al.Tetrahedron Lett.,
22,719,1980年，参照。）やＨ−ホスホネート法（Froeh
ler,B.C.et al.Tetrahedron Lett.,27,469,1986年;Gare
gg,P.J.,et al.Tetrahedron Lett.,27,4055,1986年，参
照。）等の公知方法により製造することができる。又、
２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチド誘導体のＨ−
ホスホネート法による製造原料に供することができる一
般式で示される２′−Ｏ−メチルリボヌクレオチド誘
導体は、公知方法（Robins,M.J.,et al.J.Org.Chem.39,
1891,1974年;Heikkila,J.,et al.Acta Chem.Scand .B3
6,715,1982年;Inoue,H.,et al.Nucleic Acids Researc
h,15,6131,1987年，参照。）に従い保護された２′−Ｏ
−メチルリボヌクレオシド誘導体に導いた後、公知方法
（Froehler,B.C.et al.Tetrahedron Letters 27,469−4
72,1986年;Garegg,P.J.et al.Tetrahedron Letters 27,
4051−4054,1986年，参照。）に従い三塩化リンを用い
て製造することができる。この方法により、以下に示す
化合物I,II,III,IV,及びＶを製造した。
ただし上記式中、DMTはジメトキシトリチル基を、MMT
はモノメトキシトリチル基を、それぞれ表わす。
又、一般式で示される２′−Ｏ−メチルリボヌクレ
オチド誘導体は、公知方法（Hata,T.,et al.,J.Am.Che
m.Soc.,96,7363,1974年;Sekine,M.,et al.Tetrahedron
Letters,29,1037−1040,1988年，参照）により、保護さ
れた２′−Ｏ−メチルリボヌクレオシドと亜リン酸と
を、トリイソプロピルベンゼンスルホニルクロリドなど
の縮合剤や塩化ピバロイルを使用して製造することもで
きる。又、公知方法（Robins,M.J.et al.J.Org.Chem.3
9,1981年,1974年;Heikkila,J.et al.Acta Chem.Scad.B3
6,715,1982年，参照。）に従い保護された３′−Ｏ−メ
チルリボヌクレオシド誘導体を製造し、これを用いれば
上記方法により３′−Ｏ−メチルヌクレオシド−Ｈ−ホ
スホネート誘導体に導くことができ、一般式で示され
るオリゴリボヌクレオチド誘導体の製造原料に供するこ
とができる。
一般式で示されるオリゴリボヌクレオチド誘導体の
うちX1〜Xm+1又はX1′〜Ｘ′ｍ＋１で示す置換基のす
べて或いはいずれかが水素原子である場合、その製造原
料としては、例えば公知方法（Ogilvie,K.K.Can.J.Che
m.51,3799,1973年）に従い容易に製造できる保護された
２′（又は３′）−Ｏ−（tert−ブチルジメチルシリ
ル）リボヌクレオシド等が挙げられるがこれらは上記同
様の方法によりＨ−ホスホネート誘導体に導くことがで
きる。
一般式で示される新規ヌクレオシド誘導体は、保護
された３′−Ｏ−メチル（或いは３′−Ｏ−アルキル又
は３′−デオキシ）ヌクレオシドを用い、例えば公知方
法（Miyoshi,K.,et al,Nucleic Acids Res.8,5491,1980
年，参照。）に従って製造することができる。
以上の方法で製造された保護された新規２′−Ｏ−メ
チルリボヌクレオチド誘導体、保護された３′−Ｏ−メ
チルリボヌクレオチド誘導体、保護された２′（又は
３′）−Ｏ−tert−ブチルジメチルシリルリボヌクレオ
チド誘導体及び新規ヌクレオシド誘導体を用いれば、例
えば、公知方法（Froehler,B.C.et al.Tetrahedron Let
ters 27,469−472,1986年:Garegg,P.J.et al.Tetrahedr
on Letters 27,4051−4058,1986年，参照。）に従い
２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチド誘導体及びオ
リゴリボヌクレオチド誘導体を製造することができる。
即ち、固相担体である新規ヌクレオシド誘導体上で、ヌ
クレオチド誘導体成分をアシルクロリドを用いて順次縮
合し鎖長延長後、イオウ（S8）、よう素（I2）或はアル
キルアミン／四塩化炭素等の種々の酸化剤を用いて酸化
し、脱保護・精製すれば良い。
又、一般式及び一般式で示される化合物におい
て、Q,Q′及びＱで示される置換基がチオアニオン又
はチオアニオンとオキソアニオンで選択される場合、及
び一般式で示される化合物においては、アミダイト法
（Matteucci,M.D.et al.,Tetrahedron Lett.,22,719,19
80年;Shibahara,S.,et al.,Nucleic Acids Res.15,440
3,1987年;Usman,N.et al.,J.Am.Chem.Soc.109,7845;198
7年，参照。）により製造することもできる。その際、
単量体を縮合後の酸化工程においてイオウ（S8）或いは
よう素（I2）で酸化し、鎖長延長後脱保護・精製すれば
良い。
又、５′末端に、例えば、アルキル置換チオホスホリ
ル基やアルキル置換ホスホリル基又はアルキル置換アル
キルアミノホスホリル基を有する化合物においては、上
述の方法で固相担体上でオリゴマーの鎖長延長、イオウ
（S8）或はよう素（I2）酸化終了後、アルキル−Ｈ−ホ
スホネートを縮合させ、イオウ（S8）、よう素（I2）又
はアルキルアミン／四塩化炭素で酸化し脱保護・精製す
ればよい。同様に、モノ（モノメトキシトリチル）化さ
れたアルカンジオールのＨ−ホスホネートを縮合させ酸
処理後コレステリル−Ｈ−ホスホネートを縮合させ酸
化、脱保護・精製を行なえば、５′末端にスペーサーを
介してコレステロールが結合した誘導体が得られる。
一方、３′末端に、例えばヒドロキシアルキルホスホ
リルオキシ基やヒドロキシアルキルチオホスホリルオキ
シ基を有する化合物であれば、出発物質にアルカンジオ
ールのモノスクシネートを結合した固相担体を用いて上
記同様な方法で縮合、酸化、脱保護、精製を行なうこと
により製造することができる。
一方、抗AIDSウイルス活性は、文献（Harada,S.,et a
l.,Science 229,563−566,1985年，参照。）に記載の方
法で、AIDSウイルスの分離株であるHTLV−IIIB（Popovi
c,M.,et al.,Science 224,497−500,1984年，参照。）
を用いて行なうことができる。この方法は、感染標的細
胞としてHTLV−Ｉ陽性Ｔ細胞株であるMT−４細胞を用い
るため、ウイルス感染に対し高い感受性を示し、高率に
細胞変性効果が出現する。この方法を用いて上記化合物
VI,VII,VIII,IX,X,X I,X II,X V,X VI,X VII,X VIII,XX
III及びXX IVについて種々の濃度になるように培地で
希釈し、細胞変性抑制効果を調べた。その結果化合物VI
では10μＭの濃度で、化合物VII、Ｘ及びX IIでは15μ
Ｍの濃度で、化合物VIIIでは１μＭの濃度で細胞変性抑
制効果とウイルス抗原陽性細胞の出現抑制が効果が認め
られ、又、試験最高濃度の120μＭの濃度においても細
胞毒性は認められなかった。一方、化合物IXでは240μ
Ｍの濃度で細胞変性抑制効果とウイルス抗原陽性細胞と
出現抑制効果が認められ、化合物X Iでは30μＭの濃度
で細胞変性抑制効果が認められ、いずれもこれらの濃度
において細胞に対する毒性は認められなかった。
同様に、化合物X VIでは１μＭの濃度でそれらの抑制
効果が認められた。一方、化合物X Vでは7.5μＭの濃度
で、化合物X VIIでは15μＭの濃度で、化合物X VIIIで
は120μＭの濃度でそれらの抑制効果が認められ、いず
れの化合物も試験最高濃度（化合物X V及びX VIは60μ
Ｍ、化合物X VII及びX VIIIでは120μＭ）において、細
胞に対する毒性は認められなかった。
更に、化合物XX IIIは3.8μＭの濃度で細胞変性を、
7.5μＭの濃度でウイルス抗原陽性細胞の出現をそれぞ
れほぼ完璧に抑制した。一方化合物XX IVは7.5μＭの濃
度で細胞変性を、30μＭの濃度でウイルス抗原陽性細胞
の出現をそれぞれほぼ完璧に抑制した。又、いずれの化
合物とも試験最高濃度（60μＭ）において、細胞に対す
る毒性は認められなかった。
一方、10μＭの濃度のデオキシオリゴシチジンホスホ
ロチオエート（15mer）や化合物VI,X Iと同じ塩化配列
を有するデオキシオリゴヌクレオチド（リン酸型）も細
胞変性抑制効果は認められなかった。
以上から明らかな如く、本発明による新規２′−Ｏ−
メチルリボオリゴヌクレオチド誘導体及び新規オリゴリ
ボヌクレオチド誘導体が抗AIDSウイルス作用を有し、し
かも細胞毒性が認められず、抗AIDS薬としての使用が期
待される。
本発明の抗ウイルス剤は、有効成分として0.01〜2,00
0mg好ましくは0.02〜500mgの範囲で使用すればよい。
この有効成分は、例えば錠剤、カプセル剤、エリキシ
ル剤、マイクロカプセル剤あるいは懸濁液剤の形で使用
すればよい。
本発明の有効成分として使用する化合物は治療や予防
を必要とする患者に対して患者当り0.01〜1,000mgの用
量範囲で一般に数回に分けて１日当り0.02〜2,000mgの
全日用量で投与することができる。用量は病気の重さ、
患者の体重および当業者が認める他の因子によって変化
させることができる。
本発明に使用する化合物または生理学的に認められる
塩の化合物または混和物約0.2〜500mgは生理学的に認め
られるベヒクル、担体、賦形剤、結合剤、防腐剤、安定
剤、香味剤などとともに一般に認められた製薬実施に要
求される単位用量形態が混和される。これらの組成物ま
たは製剤における活性物質の量は指示された範囲の適当
な用量が得られるようにするものである。
錠剤、カプセル剤などに混和することができる具体的
な薬剤は次に示すものである。トラガント、アラビアゴ
ム、コーンスターチまたはゼラチンのような結合剤；微
晶性セルロースのような賦形剤；コーンスターチ、前ゼ
ラチン化デンプン、アルギン酸などのような膨化剤；ス
テアリン酸アグネシウムのような潤滑剤；ショ糖、乳糖
またはサッカリンのような甘味剤；ペパーミント、アカ
モノ油またはチェリーのような香味剤、調剤単位形態が
カプセルである場合には上記のタイプの材料にさらに油
脂のような液状担体を含有することができる。種々の他
の材料は被覆剤としてまた調剤単位の物理的形態を別の
方法で変化させるために存在させることができる。例え
ば、錠剤はシェラック、砂糖またはその両方で被覆する
ことができる。シロップまたはエリキシルは活性化合
物、甘味剤としてショ糖、防腐剤としてメチルおよびプ
ロピルパラベン、色素よおびチェリーまたはオレンジ香
味のような香味剤を含有することができる。
腸溶製剤とするときは、例えばヒドロキシフェニルメ
チルセルロースの８％水溶液を被覆前処理剤とし、また
ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレートの10％
水溶液およびポリアセチンの３％水溶液を被覆剤とし、
それぞれ使用し常法により腸溶製剤とすればよい。
注射のための無菌組成物は注射用水のようなベヒクル
中の活性物質、ゴマ油、ヤシ油、落花生油、綿実油など
のような天然産出植物油またはエチルオレエートなどの
ような合成樹脂ベヒクルを溶解または懸濁させる通常の
製剤実施に従って処方することができる。緩衝剤、防腐
剤、酸化防止剤などが必要に応じて結合することができ
る。
実施例 以下、実施例により本発明を具体的に説明する。
実施例１ N4−ベンゾイル−５′−Ｏ−ジメトキシトリ
チル−２′−Ｏ−メチルシチジン−３′−Ｏ−（Ｈ−ホ
スホネート）（化合物Ｉ）の製造 三塩化リン436μ（5mmol）及びＮ−メチルモルホリ
ン5.5m（50mmol）のジクロルメタン溶液50mに、1,
2,4−トリアゾール1.197g（17.3mmol）を加え室温で30
分間攪拌した。この混合液にN4−ベンゾイル−５′−Ｏ
−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−メチルシチジン664.
7mg（1mmol）のジクロルメタン溶液17mを10分間で加
えた。室温で更に20分間攪拌し、反応の進行をシリカゲ
ル60を用いて薄層クロマトグラフィー（移動相ジクロル
メタン/2％トリエチルアミン/8％メタノール）で調べ
た。原料のスポット（Rf値0.60）が消失し、新たに化合
物Ｉ由来のスポットがRf値0.41に出現したのを確認後、
トリエチルアミン−炭酸緩衝液（1M,pH7.5）40mを加
えた。水層はジクロルメタン15mで抽出し、ジクロル
メタン層はあわせて無水硫酸ナトリウムで乾燥後濃縮乾
固した。次に得られた泡状残渣を3mの２％トリエチル
アミンを含むジクロルメタンに溶解させ、24gのシリカ
ゲル60を詰めたカラムにて精製した。即ち、移動相とし
て、ジクロルメタン/2％トリエチルアミン100m、次い
でジクロルメタン/2％トリエチルアミン/3％メタノール
200m、更にジクロルメタン/2％トリエチルアミン/6％
メタノール200mで溶出して得られた純粋画分を濃縮乾
固した。得られた残渣を40mのジクロルメタンに溶か
し15mの1Mトリエチルアミン−炭酸緩衝液（pH7.5）で
洗浄した。ジクロルメタン層は無水硫酸ナトリウムで乾
燥後濃縮乾固し、703mg、0.849mmolの化合物Ｉを84.9％
の収率で得た。
尚、上記同様の操作により、N6−ベンゾイル−５′−
Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−メチルアデノシン
−３′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネート）（化合物II）を93.9
％の収率で、N2−イソブチリル−５′−Ｏ−モノメトキ
シトリチル−２′−Ｏ−メチルグアノシン−３′−Ｏ−
（Ｈ−ホスホネート）（化合物III）を49.4％の収率
で、５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−メチル
ウリジン−３′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネート）（化合物I
V）を77.4％の収率で、５′−Ｏ−ジメトキシトリチル
−２′−Ｏ−メチルイノシン−３′−Ｏ−（Ｈ−ホスホ
ネート）（化合物Ｖ）を56.0％の収率でそれぞれ得た。
次にこれらの31P−NMRを測定した。但し化合物I,II及び
IIIについてはそれらの一部をジクロルメタンに溶解
し、当量の1,8−ジアザビシクロ〔5.4.0〕ウンデス−７
−エン（DBUと略す）と混合後ｎ−ヘキサンに滴下しDBU
塩として粉末とし測定した。一方、化合物IV及びＶはそ
のまま、即ちトリエチルアミン塩として測定した。測定
溶媒にd5ピリジンを用い、正リン酸のD2O溶液を外部標
準に用い、そのケミカルシフト（ppm）は次のとおりで
あった。
化合物Ｉ −1.79ppm 化合物II −2.20ppm 化合物III −2.04ppm 化合物IV −0.73ppm 化合物Ｖ −0.40ppm 実施例２ ５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−
（tert−ブチルジメチルシリル）イノシン−３′−Ｏ−
（Ｈ−ホスホネート）（化合物XX I）及び５′−Ｏ−
（ジメトキシトリチル−３′−Ｏ−（tert−ブチルジメ
チルシリル）イノシン−２′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネー
ト）（化合物XX II）の製造 常法により合成した５′−Ｏ−ジメトキシトリチルイ
ノシン28.5g（50mmol）をピリジン100mに溶解し、そ
れにイミダゾール9.5g（140mmol）及びtert−ブチルジ
メチルクロロシラン9.9g（66mmol）を加え室温で攪はん
した。５時間後、反応の進行をシリカゲル60を用いた薄
層クロマトグラフィー（移動相、クロロホルム／メタノ
ール＝10:1）で調べた。原料のスポット（Rf値0.08）が
減少し、新たに５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−
Ｏ−（tert−ブチルジメチルシリル）イノシン（化合物
X IX）及び５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−３′−Ｏ−
（tert−ブチルジメチルシリル）イノシン（化合物X
X）のスポットがそれぞれRf値0.44及び0.33に出現した
のを確認後、氷水冷却下、水150mを加えた。ジクロロ
メタン350mで１回、100mで２回抽出し、ジクロロメ
タン層を合わせて、水150mで２回洗浄後濃縮した。得
られた油状残渣はトルエンで共沸した後、ジクロロメタ
ン50mに溶解し、350gのシリカゲル60を詰めたカラム
にて精製した。即ち、移動相としてアセトン濃度を２％
（v/v）から13％まで段階的に上昇させたジクロルメタ
ン７を用い、２％〜５％アセトン濃度で溶出した化合
物X IXの純粋画分を集めて濃縮乾固した（4.05g,5.89mm
ol）。次に、６〜13％アセトン濃度で溶出した化合物X
IX及び化合物X Xの混合物を濃縮乾固し、350gのシリカ
ゲル60を詰めたカラムにて再度精製した。即ち、移動相
としてアセトン濃度を１％（v/v）から12％まで段階的
に上昇させたジクロルメタン６、次いで酢酸エチル2.
5を使用し、７％〜12％アセトン濃度で溶出した化合
物X IXの純粋画分、酢酸エチルで溶出した化合物X IX及
び化合物X Xの混合物画分と化合物X Xの純粋画分をそれ
ぞれ濃縮乾固後減圧乾燥した。化合物X IXの収量は4.3
g,6.26mmolで１回目のカラムクロマトグラフィーの単離
物と合わせて8.35g,12.15mmolで24.3％の収率であっ
た。化合物X IX及び化合物X X の混合物は1.13g,1.65mm
olで収率3.3％，化合物X Xは2.66g,3.88mmol,7.8％の収
率で得られた。
化合物X IX:FABmassスペクトル,685（Ｍ−H+）； 1H−NMRスペクトル（CDCl3,δppm）,8.03（s,H8 or H
2）,7.99（s,1,H2 or H8）,7.45−6.81（m,13,Ar−
Ｈ）,6.01（d,1,H1′）,4.89（m,1,H2′）,4.33（m,1,H
3′）,4.27（m,1,H4′）,3.79（s,6,MeO）,3.45（m,2,H
5′）,2.71（d,1,OH3′）,0.85（s,9,tert−Bu−Si）,
0.10（s,3,Me−Si），−0.125（s,3,Me−Si）； UV吸収スペクトル（エタノール）λmax＝247nm,λmin
＝233nm,λ270nm−shoulder。
化合物X X:FABmassスペクトル,685（Ｍ−H+）； 1H−NMRスペクトル（CDCl3,δppm）,8.11（s,H8 or H
2）,8.05（s,1,H2 or H8）,7.44−6.80（m,13,Ar−
Ｈ）,5.98（d,1,H1′）,4.62（m,1,H2′）,4.50（m,1,H
3′）,4.18（m,1,H4′）,3.77（s,6,MeO）,3.38（m,2,H
5′）,3.07（d,1,OH2′）,0.89（s,9,tert−Bu−Si）,
0.09（s,3,Me−Si）,0.02（s,3,Me−Si）； UV吸収スペクトル（エタノール）λmax＝247nm,λmin
＝223nm,λ270nm−shoulder。
但し、1H−NMRスペクトルにおける糖部プロトンの同
定は、スピンデカップリング法により行った。
測定機器； FABmassスペクトル;JEOL JMS−DX300（日本電子社
製） 1H−NMRスペクトル;Varian XL−300,300 MHz UV吸収スペクトル;Hitachi 320 Spectrophotometer 次に、Ｎ−メチルモルホリン11m（100mmol）及び1,
2,4−トリアゾール2.38g（34.5mmol）のジクロルメタン
溶液に三塩化リン0.872m（10mmol）を加え室温で30分
間攪はんした。この混合液に５′−Ｏ−ジメトキシトリ
チル−２′−Ｏ−（tert−ブチルジメチルシリル）イソ
シン（化合物X IX）、1.37g（2mmol）、のジクロルメタ
ン−ジメチルホルムアミド（15:1,v/v）溶液32mを10
分間で加えた。室温で更に20分間攪はん後、反応の進行
をシリカゲル60を用いた薄層クロマトグラフィー（移動
相，ジクロルメタン/2％トリエチルアミン/8％メタノー
ル）で調べた。原料のスポット（Rf値0.64）が消失し、
新たに５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−（te
rt−ブチルジメチルシリル）イノシン−３′−Ｏ−（Ｈ
−ホスホネート）（化合物XX I）由来のスポットがRf値
0.44に出現したのを確認後、1Mトリエチルアミン−炭酸
緩衝液（pH7.5）80mを加えた。水層はジクロルメタン
40mで抽出し、ジクロルメタン層は合わせて無水硫酸
ナトリウムで乾燥後濃縮乾固した。ここまでの操作を同
じスケールで更に一回繰り返し、両方で得られた泡状残
渣は合わせて、２％トリエチルアミンを含むジクロルメ
タン10mに溶解し、40gのシリカゲル60を詰めたカラム
にて精製した。即ち移動相として、ジクロルメタン/2％
トリエチルアミン150m、ジクロルメタン/2％トリエチ
ルアミン/2％メタノール200m、ジクロルメタン/2％ト
リエチルアミン/4％メタノール200m、ジクロルメタン
/2％トリエチルアミン/6％メタノール200m、ジクロル
メタン/2％トリエチルアミン/8％メタノール200m、ジ
クロルメタン/2％トリエチルアミン/9％メタノール100m
の順に用い、溶出した化合物XX Iの純粋画分を濃縮乾
固した。得られた残渣は50mのジクロルメタンに溶か
し、1Mトリエチルンアミン−炭酸緩衝液（pH.7.5）40m
で洗浄した。ジクロルメタン層は無水硫酸ナトリウム
で乾燥後濃縮乾固し、3.0g、3.53mmolの化合物XX Iを88
％の収率で得た。
尚、上記同様の操作により、５′−Ｏ−ジメトキシト
リチル−３′−Ｏ−（tert−ブチルジメチルシリル）イ
ソシン−２′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネート）（化合物XX I
I）を72.5％の収率で単離した。
化合物XX I:FABmassスペクトル,749（Ｍ−H+）； 32P−NMRスペクトル，（d5−ピリジン，δppm,外部標
準５％H3PO4 in D2O）−1.469,1JP-H＝608.7Hz,3JP-H＝
10.2Hz; 1H−NMRスペクトル（CDCl3,δppm）,8.40（s,H8 or H
2）,8.00（s,1,H2 or H8）,7.44−7.18（m,13,Ar−
Ｈ）,7.07（d,1,P−H,J＝625Hz）,6.32（d,1,H1′）,4.
82（m,1,H2′）,4.85（m,1,H3′）,4.46（m,1,H4′）,
3.78（s,6,MeO）,3.47（m,2,H5′）,0.72（s,9,tert−B
u−Si）,0.01（s,3,Me−Si），−0.21（s,3,Me−Si）。
化合物XX II:FABmassスペクトル,749（Ｍ−H+）； 32P−NMRスペクトル，（d5−ピリジン，δppm,外部標
準５％H3PO4 in D2O）−1.858,1JP-H＝612.8Hz,3JP-H＝
10.7Hz; 1H−NMRスペクトル（CDCl3,δppm）,7.98（s,H8 or H
2）,7.93（s,1,H2 or H8）,7.41−6.77（m,13,Ar−
Ｈ）,6.95（d,1,P−H,J＝634Hz）,6.23（d,1,H1′）,5.
31（m,1,H2′）,4.50（m,1,H3′）,4.23（m,1,H4′）,
3.76（s,6,MeO）,3.31（m,2,H5′）,0.86（s,9,tert−B
u−Si）,0.14（s,3,Me−Si）,0.03（s,3,Me−Si）。
実施例３ ５′−Ｏ−モノメトキシトリチル−N2−イソ
ブチリル−３′−Ｏ−メチルグアノシン結合コントロー
ルドポアガラスの製造 常法に従い合成した５′−Ｏ−モノメトキシトリチル
−N2−イソブチリル−３′−Ｏ−メチルグアノシンを公
知方法（Miyoshi,K.,et al.Nucleic Acids Res.8,5491,
1980年参照。）に従い、２′−Ｏ−スクシニル−ペンタ
クロロフェニルエステル体へと導いた。即ち、５′−Ｏ
−モノメトキシトリエチル−N2−イソブチリル−３′−
メチルグアノシン639mg（1mmol）と４−N,N−ジメチル
アミノピリジン（DMAPと略す。）183mgを無水ピリジン4
mに溶かし、室温で攪拌しながら無水こはく酸150mg
（1.5mmol）を加え90分間攪拌後、反応液を減圧留去し
た。得られた油状残渣をクロロホルム35mに溶解し、
0.1Mトリエチルアミン炭酸緩衝液（pH7.5）30mで３回
洗浄した。クロロホルム層は無水硫酸ナトリウムで乾燥
させた後、減圧濃縮乾固した。得られた残渣をDMF5m
に溶解し、ペンタクロロフェノール400mg（1.5mmol）及
びジシクロヘキシルカルボジイミド309mg（1.5mmol）を
加え室温で13.5時間攪拌した。析出した不溶物を濾過し
て除き、濾液は減圧留去した。得られた残渣をクロロホ
ルム3mに溶かし、20gのシリカゲル60を詰めたカラム
クロマトグラフィーにて精製した。即ち、移動相として
クロロホルム100m、次いでクロロホルム/0.3％メタノ
ール100m、クロロホルム/0.5％メタノール100m、更
にクロロホルム/0.6％メタノール100mの順に用いて溶
出された５′−Ｏ−モノメトキシトリチル−N2−イソブ
チリル−３′−Ｏ−メチルグアノシン−２′−Ｏ−スク
シニル−ペンタクロロフェニルエステルの純粋画分を集
めて減圧濃縮乾固し、530mg、53.6％の収率で得た（シ
リカゲル60薄層クロマトグラフィーにてクロロホルム：
メタノール＝20:1で展開しRf値0.73。）。次にこれを全
量（530mg）5.4mのDMFに溶かしておき、一方で、コン
トロールドポアガラス（CPG/long chain alkylamine,Po
re Dia.500Å,Particle Size 122−177μ,NH2−:30μmo
l/g,Pierce Chemical社製）1gをグラスフィルター付き
反応容器に入れ1mのDMFで洗浄後、アルゴンガス気流
中で１分間乾燥させた。これに上記ペンタクロロフェニ
ルエステル体のDMF溶液5.4m及びトリエチルアミン732
μをそれぞれ加え密栓後、30℃で一晩反応させた。反
応液はアルゴン圧により濾去し、コントロールドポアグ
ラスは5mのDMFで３回、次いで5mのTHFで３回洗浄
後、アルゴン気流中で１分間乾燥させた。次にDMAP410m
g、2,6−ルチジン1.4g、無水酢酸660μ、THF6mの混
合液を加え30℃で15分間振とうし未反応のアミノ基をア
セチル化した。反応液は濾去後5mのTHFで３回、次い
で5mのジエチルエーテルで３回洗浄後アルゴン気流中
で乾燥した。得られた５′−Ｏ−モノメトキシトリエチ
ル−N2−イソブチリル−３′−Ｏ−メチルグアノシン結
合コントロールドポアガラス1gを、少量秤り取り、３％
トリクロロ酢酸でモノメトキシトリチル基を切断後遊離
したトリタノールを過塩素酸−エタノール混合液で発色
定量を行なった結果、結合量は26μmol/gであった。
尚、上記と同様の操作で５′−Ｏ−ジメトキシトリチ
ル−N6−ベンゾイル−３′−Ｏ−メチルアデノシン結合
コントロールドポアガラス、５′−Ｏ−ジメトキシトリ
エチル−３′−Ｏ−メチルイノシン結合コントロールド
ポアガラス、５′−Ｏ−ジメトキシトリチル−３′−Ｏ
−メチルウリジン結合コントロールドポアガラス、５′
−Ｏ−ジメトキシトリチル−N4−ベンゾイル−３′−Ｏ
−メチルシチジン結合コントロールドポアガラス、５′
−Ｏ−ジメトキシトリチル−２′−Ｏ−（tert−ブチル
ジメチルシリル）イノシン結合コントロールドポアガラ
ス及びモノメトキシトリチル−ヘキサンジオール結合コ
ントロールドポアガラスをそれぞれ製造した。
実施例４ ５′AmpCmpAmpCmpCmpCmpAmpAmpUmpUmpCmpUmp
GmpAmpAmpAmpAmpUmpGmpGm′３′ （化合物VI）の製造 （ｍは２′−Ｏ−メチルヌクレオシドユニット、ｍ′は
３′−Ｏ−メチルヌクレオシドユニットＰは を表わす。） N2−イソブチリル−５′−Ｏ−モノメトキシトリチル
−３′−Ｏ−メチルグアノシンを結合した固相担体40mg
（結合量:1.00μmol）をカートリッジに詰め、DNAシン
セサイザー（model380A,Applied Biosysystems社製）に
セットし、表１に示した操作で２′−Ｏ−メチルリボヌ
クレオシド−３′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネート）体（化合
物Ｉ〜IV）をIII,IV,II,II,II,II,III,IV,I,IV,IV,II,I
I,I,I,I,II,I,IIの順に使用し19−サイクル繰り返した
後、この固相合成中間体をカートリッジより取り出し、
グラスフィルター付き反応容器に移し1mのアセトニト
リルで洗浄後、アルゴンガス気流中で乾燥させた。次に
0.2Mイオウ（S8）のトリエチルアミン：二硫化炭素：ピ
リジン（1:12:12,体積比）の混合溶液2mを加え振とう
後12時間放置した。反応液は濾去し、固相合成中間体は
2mの二硫化炭素で５回洗浄、次いで2mのジエチルエ
ーテルで１回洗浄しアルゴン気流中で乾燥後3mのガラ
ス製バイアルに移した。これに28％アンモニア水2mを
加え密栓し、55℃で５時間加熱した。濾過により固相担
体を除いた反応液は、減圧濃縮乾固し、得られた残渣は
10％アセトニトリルを含む0.1Mトリエチルアミン酢酸緩
衝液（pH7.0,以下TEAAと略す。）300μに溶かし、逆
相シリカゲル（Waters社,Prep PAK−500/C−18）を詰め
た直径1cm,長さ12cmのカラムで精製した。即ち移動相と
して10％から35％アセトニトリルの直線濃度勾配をかけ
た0.1 TEAA（pH7.0）を用い波長254nmにおける吸光度
で定量し、５′末端にジメトキシトリチル基を有する化
合物VIの分画を得た。溶媒を減圧留去した後2mの水と
３回減圧共沸し、3mの80％酢酸を加え10分間攪拌し
た。反応液は濃縮乾固した後、更に水と減圧共沸し酢酸
を除去した。残渣に10％アセトニトリルを含む0.1Mトリ
エチルンアミン炭酸緩衝液（pH7.5）1.5mを加え、ジ
エチルエーテル1.5mで２回洗浄した。水層は濃縮乾固
し、得られた残渣に10％アセトニトリルを含む0.1M TE
AA（pH7.0）200μを加え0.45μｍのフィルター（ミリ
ポア社製）を通した後、高速液体クロマトグラフィーに
より精製した。即ちYMC pack ODS（山村科学社製）カ
ラムを用い、移動相として アセトニトリルの直線濃度勾配をかけた0.1M TEAA（pH
7.0）を用い1.2m／分の流速で溶出された主ピークを
分取し、52.9OD260nmユニット、約226nmolの化合物VIを
収率22.6％で得た。
化合物VIは10mMのトリエチルアミン炭酸緩衝液（pH7.
5）を含むD2Oに溶解し、31P−NMRを測定した。（測定装
置:JEOL JMS−DX300日本電子社製）外部標準にトリメチ
ルホスフェートを用いたところ、化合物VIは51〜55ppm
にマルチプレットのホスホロチオエートに特徴的なシグ
ナルを示した。
尚、上記同様の操作で、２μmol のヌクレオシド結合
固相担体を出発原料に用い、縮合サイクルに於てIII,I
V,II,II,II,II,III,IV,I,IV,IV,II,II,I,I,Iを順に用い
ることにより化合物VIIを26OD260nmユニット、約132nmo
l、約6.3％の収率で、縮合サイクルにて於てII,II,IV,I
I,III,III,IV,II,II,II,II,III,IV,I,IV,IV,II,II,I,I,
I,II,I,IIを順に用いることにより化合物VIIIを41.5OD
260nmユニット、約136nmol、約6.2％の収率で、縮合サ
イクルに於てII,III,IV,I,IV,IV,II,II,Iを順に用いる
ことにより化合物IXを62OD260nmユニット、約528nmol、
約24.2％の収率で、縮合サイクルに於て、IV,I,II,I,I,
III,I,III,III,III,I,IV,IV,III,IV,I,I,I,IV,IIIの順
に用いることにより化合物Ｘを37OD260nmユニット、約1
80nmol、約8.7％の収率で得た。又、１μmolのヌクレオ
シド結合担体を出発原料に用いて、縮合サイクルにIV,
I,IV,II,III,II,I,IV,I,III,III,II,I,I,I,IV,I,III,I
I,IIIを順に用いることにより化合物X Iを16.0OD260nm
ユニット、約72nmol、約7.2％の収率で得た。
又、上記同様の操作で、2.4μmolの５′−Ｏ−ジメト
キシトリチル−N6−ベンゾイル−３′−Ｏ−メチルアデ
ノシン結合コントロールドポアガラスを出発原料に用
い、縮合サイクルに於て化合物IIを19サイクル用いるこ
とにより25OD260nmユニット、約81.7nmolの化合物X Vを
収率3.4％で、3.6μmolの５′−Ｏ−ジメトキシトリチ
ル−３′−Ｏ−メチルイノシン結合固相担体を出発原料
に用い、縮合サイクルに於て化合物Ｖを19サイクル用い
ることにより、化合物X VIを74OD260nmユニット、約301
nmol、約8.3％の収率で、3.6μmolの５′−Ｏ−ジメト
キシトリチル−３′−Ｏ−メチルウリジン結合固相担体
を出発原料に用い、縮合サイクルに於て化合物IVを19サ
イクル用いることにより、化合物X VIIを58OD260nmユニ
ット、約292nmol、約8.1％の収率で、3.6μmolの５′−
Ｏ−ジメトキシトリチル−N4−ベンゾイル−３′−Ｏ−
メチルシチジン結合固相担体を出発原料に用い、縮合サ
イクルに化合物Ｉを19サイクル用いることにより化合物
X VIIIを25OD260nmユニット、約168nmol、約4.7％の収
率でそれぞれ得た。
又、上記同様の操作により化合物XX VII,XX VIII,XX
IXを製造した。
実施例５ 化合物X IIの製造 N2−イソブチリル−５′−Ｏ−モノメトキシトリチル
−３′−Ｏ−メチルグアノシンを結合した固相担体120m
g（総結合量:3.12μmol）をグラスフィルター付き反応
容器に入れ表１に示した操作で２′−Ｏ−メチルリボヌ
クレオシド−３′−Ｏ−（Ｈ−ホスホネート）体（化合
物Ｉ〜IV）をIII,IV,II,II,IIの順に使用し５−サイク
ル繰り返した。ただし操作番号1,3,5,6,9における液量
はそれぞれ2mを使用した。次に0.2Mイオウ（S8）のト
リチルアミン：二硫化炭素：ピリジン（1:12:12,体積
比）の混合溶液2mを加え振とう後70分間放置した。反
応液は濾去し、固相合成中間体は2mの二硫化炭素で５
回、次いで2mのアセトニトリルで５回洗浄後アルゴン
乾燥した。更に表１に示した操作で、化合物II,III,IV,
I,IV,IV,II,II,Iの順に用い９−サイクル繰り返した
後、0.1Mのよう素（I2）のピリジン:N−メチルイミダゾ
ール:H2O:THF（5:1:5:90,体積比）の混合溶液2mを加
え室温20分間放置した。反応液は濾去し、次いで0.1よ
う素（I2）のトリエチルアミン:H2O:THF（5:5:90,体積
比）の混合溶液2mを加え室温20分間放置後反応液を濾
去した。更に表１に示した操作で化合物I,I,II,I,IIの
順に用い５−サイクル繰り返した後、上記と同様のイオ
ウ酸化処理を一晩行なった。
反応液は濾去し、固相合成中間体は2mの二硫化炭素
で５回洗浄、次いで2mのジエチルエーテルで１回洗浄
しアルゴン気流中で乾燥後3mのガラス製バイアルに移
した。これに28％アンモニア水2mを加え密栓し、55℃
で５時間加熱した。濾過により固相担体を除いた反応液
は、減圧濃縮乾固し、得られた残渣は10％アセトニトリ
ルを含む0.1Mトリエチルアミン酢酸緩衝液（pH7.0,以下
TEAAと略す。）300μに溶かし、逆相シリカゲル（Wat
ers社,Prep PAK−500/C−18）を詰めた直径1cm,長さ12c
mのカラムで精製した。即ち移動相として10％から35％
アセトニトリルの直線濃度勾配をかけた0.1M TEAA（pH
7.0）を用いて波長254nmにおける吸光度で定量し、５′
末端にジメトキシトリチル基を有する化合物X IIの分画
を得た。溶媒を減圧留去した後2mの水と３回減圧共沸
し、3mの80％酢酸を加え10分間攪拌した。反応液は濃
縮乾固した後、更に水と減圧共沸し酢酸を除去した。残
渣に10％アセトニトリルを含む0.1Mトリエチルアミン炭
酸緩衝液（pH7.5）1.5mを加え、ジエチルエーテル1.5
mで２回洗浄した。水層は濃縮乾固し、得られた残渣
に10％アセトニトリルを含む0.1M TEAA（pH7.0）200μ
を加え0.45μｍのフィルター（ミリポア社製）を通し
た後、高速液体クロマトグラフィーにより精製した。即
ちYMC pack ODS（山村科学社製）カラムを用い、移動相
として アセトニトリルの直線濃度勾配をかけた0.1M TEAA（pH
7.0）を用い1.2m／分の流速で溶出された主ピークを
分取し、65.2OD260nmユニット、約278nmolの化合物X II
を収率8.9％で得た。
化合物X IIは10mMのトリエチルアミン炭素緩衝液（pH
7.5）を含むD2Oに溶解し、31P−NMRを測定した（測定装
置:JEOL JMS−DX300日本電子社製）。外部標準にトリメ
チルホスフェートを用いたところ、化合物X IIは51〜55
ppmにマルチプレットのホスホロチオエートに特徴的な
シグナルと−4.2ppmにホスフェート由来のシングレット
シグナルを積算比7:12で与えた。このNMRの結果と鎖長
延長工程で酸化工程の順序により、化合物X IIは５′末
端から５個のリン原子と３′末端から５個のうち平均で
２個のリン原子がチオリン酸で、残りはリン酸ジエステ
ル結合を有することが明らかとなった。
実施例６ 抗AIDSウイルス活性試験 化合物VI、化合物X I、化合物VIと同じ領域に相補的
な塩基配列のデオキシオリゴヌクレオチド（リン酸型）
である化合物X III、化合物X Iと同じ領域に相補的な塩
基配列のデオキシオリゴヌクレオチド（リン酸型）であ
る化合物X IV及びデオキシオリゴシチジル酸ホスホロチ
オエートであるdCS（15mer）を一定濃度になるように10
％牛胎児血清を含むRPMI 1640培地に溶解しておき、AID
Sウイルス（HTLV−IIIB株,3×105PFU/m）をMOI 0.002
で感染させたMT−４細胞を開始時に３×105/mになる
ように、上記オリゴヌクレオチドを含む培地と混合した
後37℃で培養した。３日間に細胞の状態を観察後、再び
細胞数が３×105〜５×105/mになるように調製し、オ
リゴヌクレオチドも試験開始時と同じ濃度になる様に新
しく加えた。ウイルス感染による細胞傷害の抑制を感染
後６日目に評価した。その結果を、ウイルス感染・増殖
を抑制し細胞が正常に増殖していた場合＋で、ウイルス
感染し細胞が破壊していた場合を−で表わし、表２に示
した。又、いずれの場合も試験濃度での細胞毒性は見ら
れなかった。
化合物VIについては、更に詳細に試験を行なった。即
ち、化合物VIを試験開始時に100μM,50μM,25μM,12.5
μM,6μM,3μＭ濃度になるように10％牛胎児血清を含む
RPMI 1640培地に溶解しておき、AIDSウイルス（HTLV−I
IIB株）をMOI 0.002で感染させたMT−４細胞を、開始時
に30×104cells/mになるように化合物VIを含む培地と
混合した後、37℃、CO2インキュベータで培養した。
又、対照としてウイルス非感染MT−４細胞を化合物VIを
含む培地で同様に培養した。３日目に培養液の一部を取
り、トリパンブルー染色による生細胞数の算定と、間接
螢光抗体法によるウイルス抗原陽性細胞の出現率の測定
を行なった。一方培養細胞はオーバーグロースによる細
胞増殖への影響を防ぐため、同濃度の化合物VIを含む培
養液で再び30〜50×104cells/mになるように希釈し、
37℃で更に培養を続けた。試験開始６日目に再度生細胞
数とウイルス抗原陽性細胞の出現率を測定した。これら
の結果を表３にまとめて示した。又、第１図及び第２図
に、それぞれ３日目と６日目の生細胞数を、第３図にウ
イルス抗原陽性細胞率を示した。
又、化合物VI,VII,VIII,IX,X,XII及びデオキシオリゴ
シチジル酸ホスホロチオエート:dCS（15mer）について
も同様の試験を行ない、感染６日目における生細胞数及
びウイルス抗原陽性細胞の出現率を測定した。
それらの結果は表４に感染６日目における生細胞数
を、表５に感染６日目におけるウイルス抗原陽性細胞の
出現率を示し、第４図第５図にそれぞれグラフで表わし
た。
更に化合物X V,X VI,X VII,X III,XX III及びXX IVに
ついても同様の試験を行なった。化合物X V,X VI,X VII
及びX VIIIの結果については、表６に感染６日目におけ
る生細胞数を、表７に感染６日目におけるウイルス抗原
陽性細胞の出現率を示し、第６図、第７図にそれぞれを
グラフで表わした。
発明の効果 以上説明したように本発明による、新規２′−Ｏ−メ
チルリボオリゴヌクレオチドホスホロチエート誘導体及
び新規リボオリゴヌクレオチド誘導体が抗AIDSウイルス
活性作用を有し、AIDSの治療薬等医薬品への応用が期待
される。故に、本発明は医薬品産業上極めて有用であ
る。
【図面の簡単な説明】
第１図は実施例７における化合物VIの３日目における生
細胞数の測定結果を、第２図は実施例７における化合物
VIの６日目における生細胞数の測定結果を、第３図は実
施例７における化合物VIのウイルス抗原陽性細胞率の測
定結果を、第４図は実施例７において化合物VI、X II、
V III、IX、Ｘ、X II及びデオキシオリゴシチジル酸ホ
スホロチオエート:dcs（15mer）の感染６日目における
生細胞数の測定結果を、第５図は実施例７において上記
感染６日目におけるウイルス抗原陽性細胞率の測定結果
を、それぞれ示す。 第６図は実施例７における化合物X V、X VI、X VIIおよ
びX VIIIの感染６日目における生細胞数の測定結果を、
第７図は実施例７における化合物X V、X VI、X VII及び
X VIIIのウイルス抗原陽性細胞率を、それぞれ示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (31)優先権主張番号 特願昭63−227887 (32)優先日 昭63(1988)９月12日 (33)優先権主張国 日本（ＪＰ） (31)優先権主張番号 特願昭63−238481 (32)優先日 昭63(1988)９月22日 (33)優先権主張国 日本（ＪＰ） (31)優先権主張番号 特願平1−24372 (32)優先日 平１(1989)２月２日 (33)優先権主張国 日本（ＪＰ） (72)発明者 向井 佐知子 神奈川県川崎市川崎区鈴木町１―１ 味 の素株式会社中央研究所内 (56)参考文献 特開 昭61−291595（ＪＰ，Ａ) 特開 昭61−57595（ＪＰ，Ａ) 特開 昭62−277395（ＪＰ，Ａ) ＶＩＲＯＬＯＧＹ，Ｖｏｌ．42 （1970）ｐ．421−428 Ｎａｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．313，（24 Ｊａｎｕａｒｙ 1985）ｐ．277−284 Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅ ｒｓ，Ｖｏｌ．27，Ｎｏ．34（1986) ｐ．4051−4054 (58)調査した分野(Int.Cl.6，ＤＢ名) C07H 21/00 - 21/04 A61K 31/70 ＣＡ（ＳＴＮ) ＲＥＧＩＳＴＲＹ

Claims (15)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】下記一般式で示されるオリゴリボヌクレオ
    チド誘導体。 前記式中、ｍは１〜100の整数を、 Ｂ＝B2,B3…B(m+1)で、B1〜B(m+2)は相互に同一又は異
    なり、それぞれヒポキサンチン−９−イル、グアニン−
    ９−イル、アデニン−９−イル、シトシン−１−イル、
    ウラシル−１−イル、チミン−１−イルのいずれかを、 Ｑ＝Q2、Q3…Q(m+1)で、Q1〜Q(m+1)は相互に同一又はは
    異なりそれぞれチオアニオン、オキソアニオン、アルキ
    ル基、アリールオキシ基、アルキルアミノ基、アリール
    アミノ基、アルキルチオ基及びアリールチオ基のいずれ
    かを（ただしQ1〜Q(m+1)の少なくとも一つはチオアニオ
    ンを表わす。）、 Ｘ＝X2、X3…X(m+1)で、X1〜X(m+2)はそれぞれ相互に同
    一又は異なり水素原子、メチル基又は炭素数１〜20のア
    シル基を（ただし、全てが水素を表すことはない）、 Ｒは水素原子、炭素数１〜20のアシル基、置換基を有し
    ていてもよいホスホリル基、置換基を有していてもよい
    チオホスホリル基又は置換基を有していてもよいアルキ
    ルアミノホスホリル基のいずれかを、 Y1及びY2は相互に同一又は異なり、それぞれメトキシ
    基、炭素数１〜20のカルボキシル基、水素原子、ヒドロ
    キシル基、置換基を有していてもよいアルキルオキシ
    基、置換基を有していてもよいホスホリルオキシ基、置
    換基を有していてもよいチオホスホリルオキシ基及び置
    換基を有していてもよいアルキルアミノホスホリルオキ
    シ基を、それぞれ表わす。
  2. 【請求項２】請求項１記載のオリゴリボヌクレオチド誘
    導体の少なくとも一種を有効成分として含有する抗AIDS
    ウイルス剤。
  3. 【請求項３】AIDSウイルスの遺伝子RNA又は染色体に組
    み込まれたDNAに相補的な配列を有し、下記一般式で示
    される２′−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチドホスホ
    ロチオエート誘導体。 ただし、前記式中、ｍ′は１〜50の整数を、 B1′〜Ｂ′（ｍ′＋２）は相互に同一又は異なり、それ
    ぞれアデニン−９−イル、グアニン−９−イル、シトシ
    ン−１−イル、ウラシル−１−イル、チミン−１−イル
    及びヒポキサンチン−９−イルのいずれかを、 Q1′はチオアニオン、オキソアニオン、アルキル基、ア
    ルキルオキシ基、アリルオキシ基、アルキルアミノ基、
    アリールアミノ基、アルキルチオ基及びアリールチオ基
    のいずれかを、 Q2′からＱ′（ｍ′＋１）は少なくとも一つがチオアニ
    オンで、残りがチオアニオン又はオキソアニオンのいず
    れかを、 Y1′〜Y3′は相互に同一又は異なり、それぞれメトキシ
    基、置換基を有していてもよいアルキルオキシ基、ヒド
    ロキシル基、アルキルシリル基及び水素原子のいずれか
    を、 Ｒ′は水素原子又は置換値を有していてもよいホスホリ
    ル基又はチオホスホリル基を、それぞれ表わす。
  4. 【請求項４】一般式中、ｍ′が18を、B1′からB20′が
    順にA,C,A,C,C,C,A,A,U,U,C,U,G,A,A,A,A,U,G,Gを、
    Q1′からQ19′がチオアニオンを、Y1′及びY2′がメト
    キシ基を、Y3′が、水酸基を、Ｒ′が水素原子をそれぞ
    れ表わす請求項３記載の誘導体。
  5. 【請求項５】一般式中、ｍ′が15を、B1′からB17′が
    順にC,C,C,A,A,U,U,C,U,G,A,A,A,A,U,G,Gを、Q1′からQ
    16′がチオアニオンを、Y1′及びY2′がOCH3を、Y3′が
    OHを、Ｒ′が水素原子を、それぞれ表わす請求項３記載
    の誘導体。
  6. 【請求項６】一般式中、ｍ′が23を、B1′からB23′が
    順にA,C,A,C,C,C,A,A,U,U,C,U,G,A,A,A,A,U,G,G,A,U,U,
    A,A,Aを、Q1′からQ24′がチオアニオンを、Y1′、及び
    Y2′がOCH3を、Y3′がOHを、Ｒ′が水素原子を、それぞ
    れ表わす請求項３記載の誘導体。
  7. 【請求項７】一般式中、ｍ′が８を、B1′からB10′が
    順にC,A,A,U,U,C,U,G,A,Aを、Q1′からQ9′がチオアニ
    オンを、Y1′及びY2′がOCH3を、Y3′がOHを、Ｒ′が水
    素原子をそれぞれ表わす請求項３記載の誘導体。
  8. 【請求項８】一般式中、ｍ′が19を、B1′からB21′が
    順にG,U,C,C,C,U,G,U,U,C,G,G,G,C,G,C,C,A,C,U,Gを、Q
    1′からQ20′がチオアニンを、Y1′及びY2′がOCH3を、
    Y3′が、水酸基を、Ｒ′が水素原子をそれぞれ表わす請
    求項３記載の誘導体。
  9. 【請求項９】一般式中、ｍ′が19を、B1′からB21′が
    順にG,A,G,C,U,C,C,C,A,G,G,C,U,C,A,G,A,U,C,U,Gを、Q
    1′からQ20′がチオアニオンを、Y1′及びY2′がメトキ
    シ基を、Y3′が、水酸基を、Ｒ′が水素原子をそれぞれ
    表わす請求項３記載の誘導体。
  10. 【請求項１０】一般式中、ｍ′が18を、B1′からB20′
    が順にA,C,A,C,C,C,A,A,U,U,C,U,G,A,A,A,A,U,G,Gを、Q
    1′からQ5′がチオアニオンを、Q6′からQ14′がオキソ
    アニオンを、Q15′からQ19′のうちいずれか２つがチオ
    アニオンで他の３つがオキソアニオンを、Y1′及びY2′
    がメトキシ基を、Y3′が水酸基を、Ｒ′が水素原子を、
    それぞれ表わす請求項３の誘導体。
  11. 【請求項１１】下記一般式で示される２′−Ｏメチルリ
    ボオリゴヌクレオチドホスホロチオエート誘導体。 ただし、前記式中、ｍ″は１〜50の整数を、B1″〜Ｂ″
    （ｍ″＋２）は相互に同一又は異なりアデニン−９−イ
    ル、グアニン−９−イル、シトシン−１−イル、ウラシ
    ル−１−イル、チミン−１−イル及びヒポキサンチン−
    ９−イルのいずれかを、Ｑ″は少なくとも１つのチオア
    ニオンを含み、チオアニオン、オキソアニオン、アリル
    オキシ基、アルキルアミノ基、アリールアミノ基、アル
    キルチオ基及びアリールチオ基のいずれかを、Y1″〜
    Y3″は相互に同一又は異なり、それぞれメトキシ基、置
    換基を有していてもよいアルキルオキシ基、ヒドロキシ
    ル基、アルキルシリル基及び水素原子のいずれかを、
    Ｒ″は水素原子又は置換基を有していてもよいホスホリ
    ル基を、それぞれ表わす。
  12. 【請求項１２】一般式中、ｍ″が18を、B1″からB20″
    が順にアデニン−９−イルを、Ｑ″がチオアニオンを、
    Y1″及びY2″がOCH3を、Y3″がOHを、Ｒ″が水素原子
    を、それぞれ表わす請求項11記載の誘導体。
  13. 【請求項１３】一般式中、ｍ″が18を、B1″からB20″
    が順にヒポキサンチン−９−イルを、Ｑ″がチオアニオ
    ンを、Y1″及びY2″がOCH3を、Y3″がOHを、Ｒ″が水素
    原子を、それぞれ表わす請求項11記載の誘導体。
  14. 【請求項１４】一般式中、ｍ″が18を、B1″からB20″
    が順にウラシル−１−イルを、Ｑ″がチオアニオンを、
    Y1″及びY2″がOCH3を、Y3″がOHを、Ｒ″が水素原子
    を、それぞれ表わす請求項11記載の誘導体。
  15. 【請求項１５】一般式中、ｍ″が18を、B1″からB20″
    が順にシトシン−１−イルを、Ｑ″がチオアニオンを、
    Y1″及びY2″がOCH3を、Y3″がOHを、Ｒ″が水素原子
    を、それぞれ表わす請求項11記載の誘導体。
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