JP2819310B2 - 新規エキソ―β―D―グルコサミニダーゼ及びその製造法 - Google Patents
新規エキソ―β―D―グルコサミニダーゼ及びその製造法Info
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、キトサンオリゴ糖やキトサンに作用し、こ
れを加水分解してグルコサミンを生じる、新規なエキソ
−β−D−グルコサミニダーゼ及びその製造法に関する
ものである。
れを加水分解してグルコサミンを生じる、新規なエキソ
−β−D−グルコサミニダーゼ及びその製造法に関する
ものである。
キトサンは、グルコサミンがβ−1,4結合した直鎖状
の多糖であり、キチンを脱アセチル化することによって
得られるほか、天然には接合菌類の細胞壁などに存在し
ている。近年の研究により、キトサンの抗菌作用やキト
サンオリゴ糖のエリシター活性などの生理活性が見出さ
れ、その構造と機能に関する研究が進められている。こ
れら構造と機能の関連を研究する手段として、キトサン
オリゴ糖やキトサンを分解する特異性の高い酵素が要求
されている。
の多糖であり、キチンを脱アセチル化することによって
得られるほか、天然には接合菌類の細胞壁などに存在し
ている。近年の研究により、キトサンの抗菌作用やキト
サンオリゴ糖のエリシター活性などの生理活性が見出さ
れ、その構造と機能に関する研究が進められている。こ
れら構造と機能の関連を研究する手段として、キトサン
オリゴ糖やキトサンを分解する特異性の高い酵素が要求
されている。
従来、このキトサンを分解する酵素として数種のキト
サナーゼが知られているが、これらはすべてエンド型キ
トサナーゼで主としてオリゴ糖を生成し、単糖であるグ
ルコサミンを生成する酵素は見出されていなかった。
サナーゼが知られているが、これらはすべてエンド型キ
トサナーゼで主としてオリゴ糖を生成し、単糖であるグ
ルコサミンを生成する酵素は見出されていなかった。
そこで、本発明者らはグルコサミン生産型のキトサン
分解酵素を見出すべく鋭意研究を重ねた結果、ノカルデ
ィア属に属する放線菌の培養物中から、新規な酵素(エ
キソ−β−D−グルコサミニダーゼと命名)を採取する
ことに成功し、本発明を完成するに至った。
分解酵素を見出すべく鋭意研究を重ねた結果、ノカルデ
ィア属に属する放線菌の培養物中から、新規な酵素(エ
キソ−β−D−グルコサミニダーゼと命名)を採取する
ことに成功し、本発明を完成するに至った。
本発明のエキソ−β−D−グルコサミニダーゼは、次
の理化学的性質を有する。
の理化学的性質を有する。
(a)作 用 :キトサンオリゴ糖とキトサンの分解
作用。
作用。
(b)基質特異性:キトサンオリゴ糖やキトサンに作用
し、これを加水分解してグルコサミンを生じる。
し、これを加水分解してグルコサミンを生じる。
(c)至適pH :pH5.0〜6.0。
(d)pH安定性 :4℃、96時間の処理において、pH3.0
〜10.0で安定。
〜10.0で安定。
(e)至適温度 :60℃付近。
(f)熱安定性 :pH5.5、15分間の処理において、50℃
以下で安定。
以下で安定。
(g)分 子 量:97,000(SDS−ポリアクリルアミド電
気泳動)。
気泳動)。
(h)等 電 点:pH9.1付近。
本発明に使用する微生物は、ノカルディア属に属する
エキソ−β−D−グルコサミニダーゼの生産菌であれば
いずれのものでも良い。例えば、ノカルディア・オリエ
ンタリス(No−cardia orientalis)〔新分類名:Amycol
at−opsis orientalis〕が挙げられ、具体的には、Amyc
olatopsis orientalis IFO 12360,IFO 12361,IFO 1236
2,IFO 12806,JCM 3128,JCM 4235,JCM 4600などである。
上記IFOナンバーの株は、財団法人醗酵研究所のリスト
・オブ・カルチャーズ1988年第8版(Instit−ute for
Fermentation,Osaka,List of Cultures,1988,8th Editi
on)に記載されている。また、JCMナンバーの株は、理
化学研究所微生物系統保存施設のカタログ・オブ・スト
レインズ、1986年第3版(Japan Collection of Microo
rganisms,Catalogue of Strains,1986,3rd Edition)に
記載されている。
エキソ−β−D−グルコサミニダーゼの生産菌であれば
いずれのものでも良い。例えば、ノカルディア・オリエ
ンタリス(No−cardia orientalis)〔新分類名:Amycol
at−opsis orientalis〕が挙げられ、具体的には、Amyc
olatopsis orientalis IFO 12360,IFO 12361,IFO 1236
2,IFO 12806,JCM 3128,JCM 4235,JCM 4600などである。
上記IFOナンバーの株は、財団法人醗酵研究所のリスト
・オブ・カルチャーズ1988年第8版(Instit−ute for
Fermentation,Osaka,List of Cultures,1988,8th Editi
on)に記載されている。また、JCMナンバーの株は、理
化学研究所微生物系統保存施設のカタログ・オブ・スト
レインズ、1986年第3版(Japan Collection of Microo
rganisms,Catalogue of Strains,1986,3rd Edition)に
記載されている。
本発明に使用する微生物は、培養液中に高単位のエキ
ソ−β−D−グルコサミニダーゼを生産するものであ
り、その培養には炭素源として、エキソ−β−D−グル
コサミニダーゼの誘導基質であるキトサンを加えること
が好ましく、また窒素源としては、ペプトン、肉エキス
などの有機物、また微量のビタミン類、成長促進因子
(例えばイースト・エキスなど)、無機金属類等を添加
すると良い。培養に当たっては、液体培地、固体倍地の
どちらを使用してよもいが、高単位のエキソ−β−D−
グルコサミニダーゼを得るには液体培地を用い、振盪な
いし通気撹拌培養を行うのが好ましい。培養条件は培地
の組成や菌株の種類によって異なるが、通常20〜35℃
で、2〜5日程度の培養で目的のエキソ−β−D−グル
コサミニダーゼを得ることができる。
ソ−β−D−グルコサミニダーゼを生産するものであ
り、その培養には炭素源として、エキソ−β−D−グル
コサミニダーゼの誘導基質であるキトサンを加えること
が好ましく、また窒素源としては、ペプトン、肉エキス
などの有機物、また微量のビタミン類、成長促進因子
(例えばイースト・エキスなど)、無機金属類等を添加
すると良い。培養に当たっては、液体培地、固体倍地の
どちらを使用してよもいが、高単位のエキソ−β−D−
グルコサミニダーゼを得るには液体培地を用い、振盪な
いし通気撹拌培養を行うのが好ましい。培養条件は培地
の組成や菌株の種類によって異なるが、通常20〜35℃
で、2〜5日程度の培養で目的のエキソ−β−D−グル
コサミニダーゼを得ることができる。
本酵素は菌体外に生産されるので、公知の分離・精製
法が適用できる。例えば、培養液を濾過あるいは遠心分
離によって培養濾液および菌体に分ける。次に培養濾液
から硫安塩析法・溶剤沈澱法などにより粗酵素標品を
得、さらにこれをイオン交換、ゲル濾過、アフィニティ
ー等の各種クロマトグラフィを適宜組み合わせることに
よって精製を行うことができる。
法が適用できる。例えば、培養液を濾過あるいは遠心分
離によって培養濾液および菌体に分ける。次に培養濾液
から硫安塩析法・溶剤沈澱法などにより粗酵素標品を
得、さらにこれをイオン交換、ゲル濾過、アフィニティ
ー等の各種クロマトグラフィを適宜組み合わせることに
よって精製を行うことができる。
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、
かかる説明によって本発明が何ら限定されるものではな
い。
かかる説明によって本発明が何ら限定されるものではな
い。
グルコース1%、ペプトン1%、酵母エキス0.5%、
リン酸2水素カリウム0.03%、リン酸水素2カリウム0.
07%と硫酸マグネシウム・7水和物0.05%を含む前培養
培地(pH7.0)500mlを500ml容三角フラスコ5本に100ml
ずつ入れ、これにノカルディア・オリエンタリスIFO 12
806株を2白金耳ずつ接種し、30℃で2日間振盪して前
培養を行った。
リン酸2水素カリウム0.03%、リン酸水素2カリウム0.
07%と硫酸マグネシウム・7水和物0.05%を含む前培養
培地(pH7.0)500mlを500ml容三角フラスコ5本に100ml
ずつ入れ、これにノカルディア・オリエンタリスIFO 12
806株を2白金耳ずつ接種し、30℃で2日間振盪して前
培養を行った。
次に、コロイダルキトサン1.0%、酵母エキス0.01
%,リン酸2水素カリウム0.03%、リン酸水素2カリウ
ム0.07%と硫酸マグネシウム・7水和物0.05%(pH7.
0)の組成の本培養培地4.5を含むジャーファーメンタ
ーに、前記のようにして得られた前培養液を接種し、30
℃で4日間通気撹拌培養した。
%,リン酸2水素カリウム0.03%、リン酸水素2カリウ
ム0.07%と硫酸マグネシウム・7水和物0.05%(pH7.
0)の組成の本培養培地4.5を含むジャーファーメンタ
ーに、前記のようにして得られた前培養液を接種し、30
℃で4日間通気撹拌培養した。
培養終了後、培養液5を10,000rpm,20分間,4℃で遠
心分離して菌体を除去し、得られた上清液に80%飽和と
なるように固形硫安を加え、冷蔵庫中に一夜静置した。
生じた沈澱物を10,000rpm,15分間,4℃で遠心分離して集
め、これを少量の25mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解後、
同緩衝液で平衡化したセファデックスG−25のカラム
(2.2×84cm)に展開して脱塩し、粗酵素液を得た。
心分離して菌体を除去し、得られた上清液に80%飽和と
なるように固形硫安を加え、冷蔵庫中に一夜静置した。
生じた沈澱物を10,000rpm,15分間,4℃で遠心分離して集
め、これを少量の25mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解後、
同緩衝液で平衡化したセファデックスG−25のカラム
(2.2×84cm)に展開して脱塩し、粗酵素液を得た。
この粗酵素液を25mM酢酸緩衝液(pH4.5)で平衡化し
たCM−セファデックスC−50カラム(1.8×25cm)に展
開しイオン交換クロマトグラフィーを行った。カラムを
上記緩衝液で洗浄後、蛋白質を0から0.6M塩化ナトリウ
ムを含む同緩衝液による直線濃度勾配により、流速80ml
/時で溶出した。エキソ−β−D−グルコサミニダーゼ
活性を有する画分を集め、硫安塩析(80%飽和)により
蛋白質を沈澱させた。次に、遠心分離により集めた沈澱
を少量の50mM酢酸緩衝液(pH5.5)に溶解し、同緩衝液
で平衡化したトヨパールHW55Sカラム(2.7×78cm)に展
開し、ゲル濾過を行った。溶出は同緩衝液を用いて、流
速20ml/時で行った。活性画分を集め、そのうち半分を
上記緩衝液で平衡化したキトトリイトール−セファロー
スCL−4Bカラム(2.2×84cm)に展開し、アフィニティ
ークロマトグラフィーを行った。カラムを同緩衝液で洗
浄後、蛋白質を2mMキトトリイトールを含む同緩衝液に
より流速160ml/時で溶出した。残り半分も同様に行い、
活性画分を集め硫安塩析(80%飽和)により蛋白質を沈
澱させた。沈澱を少量の50mMホウ酸緩衝液(pH9.0)に
溶解し同緩衝液500ml中で5時間透析した。この透析液
を上記緩衝液で平衡化したDEAE−セファデックスA−50
カラム(1.8×9.5cm)に展開し、同緩衝液を30ml/時で
流して蛋白質を溶出した。活性画分を集め硫安塩析(80
%飽和)により蛋白質を沈澱させた。沈澱を少量の50mM
酢酸緩衝液(pH5.5)に溶解し、同緩衝液中で透析して
精製酵素標品を得た。
たCM−セファデックスC−50カラム(1.8×25cm)に展
開しイオン交換クロマトグラフィーを行った。カラムを
上記緩衝液で洗浄後、蛋白質を0から0.6M塩化ナトリウ
ムを含む同緩衝液による直線濃度勾配により、流速80ml
/時で溶出した。エキソ−β−D−グルコサミニダーゼ
活性を有する画分を集め、硫安塩析(80%飽和)により
蛋白質を沈澱させた。次に、遠心分離により集めた沈澱
を少量の50mM酢酸緩衝液(pH5.5)に溶解し、同緩衝液
で平衡化したトヨパールHW55Sカラム(2.7×78cm)に展
開し、ゲル濾過を行った。溶出は同緩衝液を用いて、流
速20ml/時で行った。活性画分を集め、そのうち半分を
上記緩衝液で平衡化したキトトリイトール−セファロー
スCL−4Bカラム(2.2×84cm)に展開し、アフィニティ
ークロマトグラフィーを行った。カラムを同緩衝液で洗
浄後、蛋白質を2mMキトトリイトールを含む同緩衝液に
より流速160ml/時で溶出した。残り半分も同様に行い、
活性画分を集め硫安塩析(80%飽和)により蛋白質を沈
澱させた。沈澱を少量の50mMホウ酸緩衝液(pH9.0)に
溶解し同緩衝液500ml中で5時間透析した。この透析液
を上記緩衝液で平衡化したDEAE−セファデックスA−50
カラム(1.8×9.5cm)に展開し、同緩衝液を30ml/時で
流して蛋白質を溶出した。活性画分を集め硫安塩析(80
%飽和)により蛋白質を沈澱させた。沈澱を少量の50mM
酢酸緩衝液(pH5.5)に溶解し、同緩衝液中で透析して
精製酵素標品を得た。
以上の精製操作によって得られたエキソ−β−D−グ
ルコサミニダーゼ標品は、ポリアクリルアミドスラブゲ
ル電気泳動で均一であった。
ルコサミニダーゼ標品は、ポリアクリルアミドスラブゲ
ル電気泳動で均一であった。
本酵素の精製の要約を表に示す。
〔コロイダルキトサンの調製〕 キトサンの塩酸溶液を希水酸化ナトリウム溶液で中和
後、不溶化したキトサンをミキサーで粉砕してコロイダ
ルキトサンを得た。
後、不溶化したキトサンをミキサーで粉砕してコロイダ
ルキトサンを得た。
キトトリオース(グルコサミン3量体)をNABH4で還
元し、Dowex 50W−X4イオン交換樹脂を用いて脱塩後、
メタノール−アセトン系で結晶化させた。この結晶を濾
取し、真空乾燥してキトトリイトールを得た。
元し、Dowex 50W−X4イオン交換樹脂を用いて脱塩後、
メタノール−アセトン系で結晶化させた。この結晶を濾
取し、真空乾燥してキトトリイトールを得た。
AH−セファロースCL−4Bをグルタルアルデヒドで活性
化後、キトトリオースを結合させ、NaBH4で還元してキ
トトリイトール−セファロースCL−4Bを得た。
化後、キトトリオースを結合させ、NaBH4で還元してキ
トトリイトール−セファロースCL−4Bを得た。
エキソ−β−D−グルコサミニダーゼ活性は、下記の
方法で測定した。
方法で測定した。
2mMキトトリイトールを含む0.1M酢酸緩衝液(pH5.5)
1.0mlに、酵素液を加えて40℃で5分間反応させる。こ
の反応溶液にシャール試薬3.0mlを加え、沸騰湯浴中で1
5分間加熱する。冷却後、分光光度計で420nmの吸光度を
測定し生じたグルコサミンを定量する。
1.0mlに、酵素液を加えて40℃で5分間反応させる。こ
の反応溶液にシャール試薬3.0mlを加え、沸騰湯浴中で1
5分間加熱する。冷却後、分光光度計で420nmの吸光度を
測定し生じたグルコサミンを定量する。
酵素活性1Uは、1分間に1μmoleのグルコサミンを生
成する酵素量と定義した。
成する酵素量と定義した。
以上のようにして得られたエキソ−β−D−グルコサ
ミニダーゼ標品を、キトサンオリゴ糖とキトサンに作用
させ、その分解物を薄層クロマトグラフィーにより分析
した。その結果、図に示すように、本酵素はキトサンオ
リゴ糖とキトサンに作用して、グルコサミンを生じてい
ることがわかる。
ミニダーゼ標品を、キトサンオリゴ糖とキトサンに作用
させ、その分解物を薄層クロマトグラフィーにより分析
した。その結果、図に示すように、本酵素はキトサンオ
リゴ糖とキトサンに作用して、グルコサミンを生じてい
ることがわかる。
図面はエキソ−β−D−グルコサミニダーゼ標品を、キ
トサンオリゴ糖とキトサンに作用させた分解物の分析結
果を示したものである。
トサンオリゴ糖とキトサンに作用させた分解物の分析結
果を示したものである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12N 9/42 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG)
Claims (2)
- 【請求項1】次の理化学的性質を有するエキソ−β−D
−グルコサミニダーゼ (a)作用 :キトサンオリゴ糖とキトサンの分解
作用。 (b)基質特異性:キトサンオリゴ糖やキトサンに作用
し、これを加水分解してグルコサミンを生じる。 (c)至適pH :pH5.0〜6.0。 (d)pH安定性 :4℃、96時間の処理において、pH3.0
〜10.0で安定。 (e)至適温度 :60℃付近。 (f)熱安定性 :pH5.5、15分間の処理において、50℃
以下で安定。 (g)分子量 :97,000(SDS−ポリアクリルアミド電
気泳動)。 (h)等電点 :pH9.1付近。 - 【請求項2】ノカルディア属に属し、エキソ−β−D−
グルコサミニダーゼを生産する能力を有する微生物を培
養し、培養物よりエキソ−β−D−グルコサミニダーゼ
を採取することを特徴とする請求項1記載のエキソ−β
−D−グルコサミニダーゼの製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP16790089A JP2819310B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 新規エキソ―β―D―グルコサミニダーゼ及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP16790089A JP2819310B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 新規エキソ―β―D―グルコサミニダーゼ及びその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0330671A JPH0330671A (ja) | 1991-02-08 |
JP2819310B2 true JP2819310B2 (ja) | 1998-10-30 |
Family
ID=15858135
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP16790089A Expired - Fee Related JP2819310B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 新規エキソ―β―D―グルコサミニダーゼ及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2819310B2 (ja) |
-
1989
- 1989-06-29 JP JP16790089A patent/JP2819310B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0330671A (ja) | 1991-02-08 |
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