JP2668403B2 - Ａｔｌ抗体測定試薬 - Google Patents
Ａｔｌ抗体測定試薬Info
- Publication number
- JP2668403B2 JP2668403B2 JP63192925A JP19292588A JP2668403B2 JP 2668403 B2 JP2668403 B2 JP 2668403B2 JP 63192925 A JP63192925 A JP 63192925A JP 19292588 A JP19292588 A JP 19292588A JP 2668403 B2 JP2668403 B2 JP 2668403B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- atl
- antibody
- liposome
- atlv
- measurement
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
- A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、成人Ｔ細胞白血病（ATL）抗体の測定試
薬、更に詳細には、補体依存性リポソーム膜損傷反応を
利用した、簡単な自動的操作によつてATL抗体を測定す
ることのできるATL抗体測定試薬に関する。
薬、更に詳細には、補体依存性リポソーム膜損傷反応を
利用した、簡単な自動的操作によつてATL抗体を測定す
ることのできるATL抗体測定試薬に関する。
日本の南西部に多発しているATLについては、1977年
高月らにより報告されて以外数多くの研究がなされてお
り、1981年日沼らにより、ATL患者由来細胞（MT−１）
からのHTLV−１の分離、このウイルス感染細胞（MT−1,
MT−２）を抗原とする間接蛍光抗体法によるATL患者血
清中の抗体の照明がなされ、更に該抗体陽性者はウイル
スキヤリヤーであることが照明された。
高月らにより報告されて以外数多くの研究がなされてお
り、1981年日沼らにより、ATL患者由来細胞（MT−１）
からのHTLV−１の分離、このウイルス感染細胞（MT−1,
MT−２）を抗原とする間接蛍光抗体法によるATL患者血
清中の抗体の照明がなされ、更に該抗体陽性者はウイル
スキヤリヤーであることが照明された。
現在では、血球成分を含む輸血とウイルスキヤリヤー
の家族内集積率が高いことから、母乳中のリンパ球を介
する星感染、夫婦間感染がその主な自然感染経路である
ことが判明し、これをコントロールすることが感染防止
上最も有効であるとされている。従つて、HTLV−１キヤ
リヤーの把握は、単に白血病患者におけるウイルス関与
特殊症型の鑑別を目的とするだけでなく、献血者や妊婦
を対象とする検診及び入院時の一般検査に組み入れる必
要性が高まつている。
の家族内集積率が高いことから、母乳中のリンパ球を介
する星感染、夫婦間感染がその主な自然感染経路である
ことが判明し、これをコントロールすることが感染防止
上最も有効であるとされている。従つて、HTLV−１キヤ
リヤーの把握は、単に白血病患者におけるウイルス関与
特殊症型の鑑別を目的とするだけでなく、献血者や妊婦
を対象とする検診及び入院時の一般検査に組み入れる必
要性が高まつている。
従来、ATL抗体の測定法としては、間接蛍光抗体法、E
IA法、凝集法、Western−blot法等が採用されている
が、上述のようなHTLV−１の臨床上の重要性に鑑み、測
定法の自動化が望まれている。しかしながら、間接蛍光
抗体法及びWestern−blot法は操作が煩雑であり、自動
化は困難である。EIA法は洗浄操作が必要であるため、
自動化するには洗浄機構を必要とするという問題があ
る。また凝集法は、操作は比較的簡単であるが、判定が
目視であるため、測定結果に個人差を生ずるという問題
があつた。
IA法、凝集法、Western−blot法等が採用されている
が、上述のようなHTLV−１の臨床上の重要性に鑑み、測
定法の自動化が望まれている。しかしながら、間接蛍光
抗体法及びWestern−blot法は操作が煩雑であり、自動
化は困難である。EIA法は洗浄操作が必要であるため、
自動化するには洗浄機構を必要とするという問題があ
る。また凝集法は、操作は比較的簡単であるが、判定が
目視であるため、測定結果に個人差を生ずるという問題
があつた。
斯かる実状において、本発明者は、上記課題を解決せ
んと鋭意研究を行つた結果、補体依存性リポソーム膜損
傷反応を利用することにより、上記目的が達成されるこ
とを見出し、本発明を完成した。
んと鋭意研究を行つた結果、補体依存性リポソーム膜損
傷反応を利用することにより、上記目的が達成されるこ
とを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、リン脂質及びコレステロールを
主要構成成分とするリポソームの表面に、デオキシコー
ル酸ナトリウムで可溶化処理したATLV関連抗原を架橋剤
を介して結合させ、かつ該ルポソーム内に親水性標識物
質を封入したことを特徴とするATL抗体測定試験を提供
するものである。
主要構成成分とするリポソームの表面に、デオキシコー
ル酸ナトリウムで可溶化処理したATLV関連抗原を架橋剤
を介して結合させ、かつ該ルポソーム内に親水性標識物
質を封入したことを特徴とするATL抗体測定試験を提供
するものである。
本発明において、リポソームはリン脂質及びコレステ
ロールを主要構成成分とするものであれば、従来使用さ
れている何れのものでもよいが、リン脂質とコレステロ
ールの比が1:1前後であるとき、安定なリポソームが得
られ易い。またリン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原子数
が12〜18であることが好ましく、更には偶数であること
がより好ましい。
ロールを主要構成成分とするものであれば、従来使用さ
れている何れのものでもよいが、リン脂質とコレステロ
ールの比が1:1前後であるとき、安定なリポソームが得
られ易い。またリン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原子数
が12〜18であることが好ましく、更には偶数であること
がより好ましい。
リポソーム内に封入される標識物質は、親水性であつ
て、リポソーム外に溶出された際に定量可能な物質でな
ければならない。かかる物質としては、例えば、高濃度
では自己消光により蛍光は示さないが、低濃度（10-3M
以下）で非常に強い蛍光を発するカルボキシルフルオレ
セインのような蛍光性化合物；リポソーム外で酸化反応
により発光するルミノールやルシフエリンのような発行
性化合物；可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯を有
する吸光性化合物（水溶性色素等）；酸化酵素の作用に
より分解され酸素消費あるいは過酸化水素生成をもたら
すグルコース及びシユークロースなどの糖類；テトラペ
ンチルアンモニウムのような比較的大きなイオン性化合
物；ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD）の
ような補酵素類；メチルピオロゲンを初めとするラジカ
ル化合物などが望ましい。
て、リポソーム外に溶出された際に定量可能な物質でな
ければならない。かかる物質としては、例えば、高濃度
では自己消光により蛍光は示さないが、低濃度（10-3M
以下）で非常に強い蛍光を発するカルボキシルフルオレ
セインのような蛍光性化合物；リポソーム外で酸化反応
により発光するルミノールやルシフエリンのような発行
性化合物；可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯を有
する吸光性化合物（水溶性色素等）；酸化酵素の作用に
より分解され酸素消費あるいは過酸化水素生成をもたら
すグルコース及びシユークロースなどの糖類；テトラペ
ンチルアンモニウムのような比較的大きなイオン性化合
物；ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD）の
ような補酵素類；メチルピオロゲンを初めとするラジカ
ル化合物などが望ましい。
本発明のATLV関連抗原としては、ATLウイルス、MT−
２等をデオキシコール酸ナトリウム等で可溶化処理した
ものが使用される。
２等をデオキシコール酸ナトリウム等で可溶化処理した
ものが使用される。
本発明のATL抗体測定試薬は、例えば次の方法で製造
される。
される。
まずリン脂質とコレステロールをフラスコに入れ、溶
媒を加えて反応させた後、溶媒を留去し、吸引乾燥す
る。しかる後、壁面に薄膜が形成されたフラスコ内に所
定の標識物質の水溶液を加え、密栓をして振とうし、標
識物質封入リポソームを得る。
媒を加えて反応させた後、溶媒を留去し、吸引乾燥す
る。しかる後、壁面に薄膜が形成されたフラスコ内に所
定の標識物質の水溶液を加え、密栓をして振とうし、標
識物質封入リポソームを得る。
一方、ATLV関連抗原と架橋剤とを緩衝液中で反応させ
て架橋基を導入し、しかる後、必要であれば、該架橋基
を還元する試薬（例えばジチオスレイトール;DTT）と更
に反応させて、修飾抗原を得る。
て架橋基を導入し、しかる後、必要であれば、該架橋基
を還元する試薬（例えばジチオスレイトール;DTT）と更
に反応させて、修飾抗原を得る。
最後に、標識物質封入リポソームと修飾抗原とを緩衝
液中で反応せしめることにより、本発明のATLV関連抗原
感作リポソームが得られる。かかるATL抗原測定試薬
は、通常、標識物質を内包し、表面に固定化された抗原
を担持したマイクロカプセウとして得られる。
液中で反応せしめることにより、本発明のATLV関連抗原
感作リポソームが得られる。かかるATL抗原測定試薬
は、通常、標識物質を内包し、表面に固定化された抗原
を担持したマイクロカプセウとして得られる。
上記製造法における架橋剤としては、例えば、Ｎ−ス
クシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネ
ート（SPDP）、Ｎ−スクシンイミジル４−（ｐ−マレイ
ミドフエニル）ブチレート（SMPB）、Ｎ−スクシンイミ
ジル４−（ｐ−マレイミドフエニル）アセテート（SMP
A）、Ｎ−スクシンイミジル４−（ｐ−マレイミドフェ
ニル）プロピオネート（SMPP）、Ｎ−（γ−マレイミド
ブチリルオキシ）スクシンイミド（GMBS）及びＮ−（ε
−マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミド（EMC
S）が挙げられる。
クシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネ
ート（SPDP）、Ｎ−スクシンイミジル４−（ｐ−マレイ
ミドフエニル）ブチレート（SMPB）、Ｎ−スクシンイミ
ジル４−（ｐ−マレイミドフエニル）アセテート（SMP
A）、Ｎ−スクシンイミジル４−（ｐ−マレイミドフェ
ニル）プロピオネート（SMPP）、Ｎ−（γ−マレイミド
ブチリルオキシ）スクシンイミド（GMBS）及びＮ−（ε
−マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミド（EMC
S）が挙げられる。
このようにして調製したATL抗体測定試薬を用いて、
被検体中のATL抗体を測定するには、被検体中に該試薬
及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引き
起こさせる。すると、かかる反応量に比例して、リポソ
ーム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この標
識物質に応じた分析方法（例えば、標識物質が蛍光物質
であれば、蛍光分析法）により定量を行い、例えば、予
め作成した検量線により、試料中の抗体の量を測定する
ことができる。
被検体中のATL抗体を測定するには、被検体中に該試薬
及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引き
起こさせる。すると、かかる反応量に比例して、リポソ
ーム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この標
識物質に応じた分析方法（例えば、標識物質が蛍光物質
であれば、蛍光分析法）により定量を行い、例えば、予
め作成した検量線により、試料中の抗体の量を測定する
ことができる。
この測定操作において使用する補体は、格別限定され
ないが、通常、モルモツト血清が用いられる。しかし、
ウサギ、マウス、ヒト等の形成を使用してもよい。
ないが、通常、モルモツト血清が用いられる。しかし、
ウサギ、マウス、ヒト等の形成を使用してもよい。
叙上の如く、本発明のATL抗体測定試薬を使用すれ
ば、簡単な操作で正確に被検体中のATL抗体を測定する
ことができ、しかもその自動化が可能である。
ば、簡単な操作で正確に被検体中のATL抗体を測定する
ことができ、しかもその自動化が可能である。
以下に実施例を挙げて本発明を更に説明する。
実施例１ （１） ATLV関連抗原の調製： サイトテツク社から購入した精製ATLウイルスをデオ
キシコール酸ナトリウム処理して可溶化タンパクを得
た。可溶化処理は、下記の方法で行なつた。ATLウイル
ス懸濁液（2mg/ml）を0.2％デオキシコール酸ナトリウ
ム含有ベロナール緩衝液（pH7.5）20mlに添加し、４℃
で20時間攪拌した。攪拌後、遠心分離し、上清を分取
し、さらに濃縮した。このものを0.15M NaCl含有0.01M
へペス緩衝液（pH7.5）に透析後、遠心分離し、可溶化
タンパクを得た。同様な方法で、MT−２細胞から得られ
た抗原も可溶化することができる。
キシコール酸ナトリウム処理して可溶化タンパクを得
た。可溶化処理は、下記の方法で行なつた。ATLウイル
ス懸濁液（2mg/ml）を0.2％デオキシコール酸ナトリウ
ム含有ベロナール緩衝液（pH7.5）20mlに添加し、４℃
で20時間攪拌した。攪拌後、遠心分離し、上清を分取
し、さらに濃縮した。このものを0.15M NaCl含有0.01M
へペス緩衝液（pH7.5）に透析後、遠心分離し、可溶化
タンパクを得た。同様な方法で、MT−２細胞から得られ
た抗原も可溶化することができる。
（２） ATLV抗原感作リポソームの調製： （ｉ） リポソームの調製 ジパルミトイルホスフアチジルコリン（DPPC）１μモ
ル、コレステロール（Chol）１μモルおよびジチオピリ
ジル化ジパルミトイルホスフアチジルエタノールアミン
（DTP−DPPE）0.05μモルをナシ型フラスコにとり、脂
質を溶解していたクロロホルムをエバポレーターで留去
した。さらに１時間真空デシケーターで乾燥後、ナシ型
フラスコに0.2Mカルボキシフルオレセイン（CF）200μ
を入れ、激しく振とうし、ナシ型フラスコのガラス壁
上の脂質薄膜をはがしてCF封入リポソームを調製した。
未封入のCFは、0.01Mへペス緩衝液（0.15M NaCl含有;pH
7.5）で遠心洗浄を３回行なつて分離した。
ル、コレステロール（Chol）１μモルおよびジチオピリ
ジル化ジパルミトイルホスフアチジルエタノールアミン
（DTP−DPPE）0.05μモルをナシ型フラスコにとり、脂
質を溶解していたクロロホルムをエバポレーターで留去
した。さらに１時間真空デシケーターで乾燥後、ナシ型
フラスコに0.2Mカルボキシフルオレセイン（CF）200μ
を入れ、激しく振とうし、ナシ型フラスコのガラス壁
上の脂質薄膜をはがしてCF封入リポソームを調製した。
未封入のCFは、0.01Mへペス緩衝液（0.15M NaCl含有;pH
7.5）で遠心洗浄を３回行なつて分離した。
（ii） ATLV関連抗原のリポソームへの感作（１）で可
溶化したATLV関連タンパク（1.5mg/ml）を遠心分離し、
上清を分取した。これに30mM N−サクシンイミジル−３
−（２−ピリジルチオ）プロピオネート（SPDP）2.0μ
を添加し、室温で30分間反応させた。引き続き、過剰
のSPDPを除去するために、20mM MES緩衝液（pH6.0）で
平衡化したセフアデツクスＧ−25でゲル濾過した。ゲル
濾過より得られたタンパク分画（1.5ml）は、ジチオス
レイトール（DTT）20mgを添加し、室温で30分間反応さ
せた後、0.01Mへペス緩衝液で予じめ平衡化しておいた
セフアデックスＧ−25でゲル濾過し、過剰のDTTとタン
パク分画を分離した。こうして得られたタンパク分画1m
lに（ｉ）で遠心洗浄して得られたリポソームペレット
を懸濁させ、６〜10℃で18〜20時間ゆつくり攪拌しなが
ら反応させた。反応後は、リポソーム懸濁液を遠心洗浄
し、未感作のタンパク溶液を除去し、0.1％NaN3含有ゼ
ラチンベロナール緩衝液（pH7.4）1mlに再懸濁した。
溶化したATLV関連タンパク（1.5mg/ml）を遠心分離し、
上清を分取した。これに30mM N−サクシンイミジル−３
−（２−ピリジルチオ）プロピオネート（SPDP）2.0μ
を添加し、室温で30分間反応させた。引き続き、過剰
のSPDPを除去するために、20mM MES緩衝液（pH6.0）で
平衡化したセフアデツクスＧ−25でゲル濾過した。ゲル
濾過より得られたタンパク分画（1.5ml）は、ジチオス
レイトール（DTT）20mgを添加し、室温で30分間反応さ
せた後、0.01Mへペス緩衝液で予じめ平衡化しておいた
セフアデックスＧ−25でゲル濾過し、過剰のDTTとタン
パク分画を分離した。こうして得られたタンパク分画1m
lに（ｉ）で遠心洗浄して得られたリポソームペレット
を懸濁させ、６〜10℃で18〜20時間ゆつくり攪拌しなが
ら反応させた。反応後は、リポソーム懸濁液を遠心洗浄
し、未感作のタンパク溶液を除去し、0.1％NaN3含有ゼ
ラチンベロナール緩衝液（pH7.4）1mlに再懸濁した。
（３） ATLV関連抗原感作リポソームを用いた抗ATLV抗
体の測定： 96穴のマイクロプレート（住友ベイクライト）を用い
て測定を行なつた。リポソームと検体との希釈には0.5m
M MgCl2と0.15mM CaCl2を含むゼラチンベロナール緩衝
液（GVB2+）を用いた。（２）で調製したATLV関連抗原
感作リポソームをGVB2+で400倍希釈したもの50μに、
非動化処理したヒト血清をGVB2+で適当に希釈したもの2
5μを添加した。引き続き、モルモツト補体25μを
添加し、37℃で２時間反応させた。反応は、10mM EDTA
含有ペロナール緩衝液（pH7.5）を100μ添加すること
で停止させた。ATL抗体価に依存したCF遊出量は、蛍光
側定機（励起490nm、蛍光530nm）で測定した。
体の測定： 96穴のマイクロプレート（住友ベイクライト）を用い
て測定を行なつた。リポソームと検体との希釈には0.5m
M MgCl2と0.15mM CaCl2を含むゼラチンベロナール緩衝
液（GVB2+）を用いた。（２）で調製したATLV関連抗原
感作リポソームをGVB2+で400倍希釈したもの50μに、
非動化処理したヒト血清をGVB2+で適当に希釈したもの2
5μを添加した。引き続き、モルモツト補体25μを
添加し、37℃で２時間反応させた。反応は、10mM EDTA
含有ペロナール緩衝液（pH7.5）を100μ添加すること
で停止させた。ATL抗体価に依存したCF遊出量は、蛍光
側定機（励起490nm、蛍光530nm）で測定した。
ATL抗体陽性検体の希釈系列を組み、上記に従つてア
ツセイした時の標準曲線を第１図に示す。第１図から明
らかな如く、抗体量に依存したCFリリースが見られ、ま
た1.5〜5CH50/mlまで補体量を変えて上記に従つてアツ
セイした時、補体量に依存して感度が上昇した。
ツセイした時の標準曲線を第１図に示す。第１図から明
らかな如く、抗体量に依存したCFリリースが見られ、ま
た1.5〜5CH50/mlまで補体量を変えて上記に従つてアツ
セイした時、補体量に依存して感度が上昇した。
（４） 反応のタイムコース： ATLV関連抗原感作リポソームを用いて、反応のタイム
コースを調べた。すなわち、ATL抗体陽性検体を40〜128
0倍に希釈し、補体濃度は5CH50/mlとした。（３）に従
つてアツセイし、180分まで反応を調べた。その結果は
第２図のとおりであり、CFリリースは反応時間に依存し
て増したが、２時間以上であれば測定感度としては問題
ないことが判る。
コースを調べた。すなわち、ATL抗体陽性検体を40〜128
0倍に希釈し、補体濃度は5CH50/mlとした。（３）に従
つてアツセイし、180分まで反応を調べた。その結果は
第２図のとおりであり、CFリリースは反応時間に依存し
て増したが、２時間以上であれば測定感度としては問題
ないことが判る。
（５） 本測定法と従来法との比較： 本測定法と従来法（凝集法）との比較を15検体で行な
つた。従来法の値は凝集する検体の最高希釈倍数であら
わし、本側定法では５％以上のCFリリースがみられる検
体の最高希釈倍数であらわした。尚、凝集法は２倍希釈
からはじめ、本測定法は10倍希釈からはじめた。その結
果は表１のとおりであり、本側定法はATL固体測定法と
して満足のいくものであることを示している。
つた。従来法の値は凝集する検体の最高希釈倍数であら
わし、本側定法では５％以上のCFリリースがみられる検
体の最高希釈倍数であらわした。尚、凝集法は２倍希釈
からはじめ、本測定法は10倍希釈からはじめた。その結
果は表１のとおりであり、本側定法はATL固体測定法と
して満足のいくものであることを示している。
第１図は本発明のATL抗体測定試薬を用いて被検血清中
のATL抗体を測定したときの標準曲線であり、第２図
は、該試薬を用いて被検血清中のATL抗体を測定したと
きの反応タイムコースを示す図面である。
のATL抗体を測定したときの標準曲線であり、第２図
は、該試薬を用いて被検血清中のATL抗体を測定したと
きの反応タイムコースを示す図面である。
Claims (1)
- 【請求項１】リン脂質及びコレステロールを主要構成成
分とするリポソームの表面に、デオキシコール酸ナトリ
ウムで可溶化処理したATLV関連抗原を架橋剤を介して結
合させ、かつ該リポソーム内に親水性標識物質を封入し
たことを特徴とするATL抗体測定試薬。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63192925A JP2668403B2 (ja) | 1988-08-02 | 1988-08-02 | Ａｔｌ抗体測定試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63192925A JP2668403B2 (ja) | 1988-08-02 | 1988-08-02 | Ａｔｌ抗体測定試薬 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0242360A JPH0242360A (ja) | 1990-02-13 |
| JP2668403B2 true JP2668403B2 (ja) | 1997-10-27 |
Family
ID=16299267
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63192925A Expired - Lifetime JP2668403B2 (ja) | 1988-08-02 | 1988-08-02 | Ａｔｌ抗体測定試薬 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2668403B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5653974A (en) * | 1990-10-18 | 1997-08-05 | Board Of Regents,The University Of Texas System | Preparation and characterization of liposomal formulations of tumor necrosis factor |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH06100601B2 (ja) * | 1983-11-30 | 1994-12-12 | 株式会社東芝 | 免疫分析用試薬及びそれを用いた分析方法 |
| JPS61133864A (ja) * | 1984-12-05 | 1986-06-21 | Toshiba Corp | ヒト−ガン胎児性抗原（ｃｅａ）分析用試薬および分析方法 |
| JP2501569B2 (ja) * | 1986-11-14 | 1996-05-29 | 協和醗酵工業株式会社 | 抗成人ｔ細胞白血病ウイルス抗体の検出法 |
-
1988
- 1988-08-02 JP JP63192925A patent/JP2668403B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0242360A (ja) | 1990-02-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US20030165970A1 (en) | Diagnostic kit for simultaneously detecting multiple infectious diseases and the preparation thereof | |
| EP0411945A2 (en) | Heterogeneous immunoassays | |
| KR880001809B1 (ko) | 성인 t 세포 백혈병 연관항원의 제조방법 | |
| EP0311492B1 (fr) | Trousse et méthode de dosage immunométrique applicables à des cellules entières | |
| CN1300581C (zh) | Sars病毒抗体检测方法及快速诊断试剂盒和制备方法 | |
| Freytag et al. | Liposome-mediated immunoassays for small haptens (digoxin) independent of complement | |
| JP2642721B2 (ja) | ヒト免疫不全ウイルスに対する抗体の検出方法 | |
| JP2668403B2 (ja) | Ａｔｌ抗体測定試薬 | |
| JPH0658937A (ja) | 被検体の免疫化学的測定方法 | |
| JP2652881B2 (ja) | 免疫分析方法 | |
| KR890002632B1 (ko) | Atl 바이러스 항체 측정용 시약의 제조방법 | |
| JPS60159652A (ja) | 免疫分析用試薬 | |
| KR960005366B1 (ko) | 후천성 면역결핍 증후군(aids) 관련 바이러스에 대한 항체 검출용 시약 | |
| JP2893127B2 (ja) | イムノアッセイにおける偽陰性反応の抑制方法 | |
| EP0258388A1 (en) | Immunoliposome assay - methods and products | |
| JPS63179253A (ja) | 免疫分析用試薬 | |
| JP2684204B2 (ja) | 免疫分析方法 | |
| JPS63293470A (ja) | 補体価測定用試薬およびこれを用いた補体価測定法 | |
| JP2509636B2 (ja) | 生理活性物質固定化組成物 | |
| JP2717711B2 (ja) | 免疫測定試薬 | |
| JPH0486557A (ja) | 抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法 | |
| JPH06160396A (ja) | 抗ｈｉｖ抗体測定試薬および測定法 | |
| JPH03152466A (ja) | イムノアッセイにおける非特異反応の吸収法 | |
| JPH03152467A (ja) | ＨＢｓ抗体測定試薬 | |
| JP2623325B2 (ja) | 免疫分析用試薬 |