JP2022536633A - 鎌状赤血球症の治療のための組換えadamts13の使用 - Google Patents
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Abstract
Description
a)VOC後に対象に治療を施すステップ;
b)対象から、立毛(piloerection)、アパシー(apathy)、目の状況(eyes appearance)、皮膚の色、自発的な運動性(spontaneous mobility)、刺激された運動性(stimulated mobility)、および呼吸数(breathing frequency)から選択される1つまたは複数の行動症状を収集するステップ;
c)ステップb)から収集した1つまたは複数の行動症状の重症度に基づいてスコアを作成するステップ;
d)ステップc)からのスコアを対照スコアと比較するステップであって、対照スコアは、治療を受けていない対照対象から作成される、ステップ;および
e)(i)ステップc)からのスコアが対照スコアと比較してより低い重症度を示す場合には、治療が有効であると判定し、(ii)ステップc)からのスコアが対照スコアと比較してより高いまたは同じ重症度を示す場合には、治療が有効ではないと判定するステップ;
を含む方法を提供する。
a)VOCの後に、対象から、立毛、アパシー、目の状況、皮膚の色、自発的な運動性、刺激された運動性、および呼吸数から選択される1つまたは複数の行動症状を収集するステップ;
b)ステップa)から収集された1つまたは複数の行動症状の重症度に基づいてスコアを作成するステップ;
c)ステップb)からのスコアを対照スコアと比較するステップであって、対照スコアは、VOCの前の対象からまたはVOCを発症していない対照対象から作成される、ステップ;および
d)(i)ステップb)からのスコアが対照スコアと比較してより低いまたは同じ重症度を示す場合には、対象は回復したと判定し、(ii)ステップb)からのスコアが対照スコアと比較してより高い重症度示す場合には、対象は回復していないと判定するステップ;
を含む方法を提供する。
AAマウス:ヘモグロビンA(HbA)のホモ接合体であるトランスジェニックマウス
ADAMTS:トロンボスポンジンを有するディスインテグリンおよびメタロプロテイナーゼ
ADAMTS13:トロンボスポンジン1型モチーフを有するディスインテグリンおよびメタロプロテイナーゼ、メンバー13
BAL:気管支肺胞洗浄
DNA:デオキシリボ核酸
ET-1:エンドセリン1
ECHb:細胞外ヘモグロビン
FRETS U:FRETS単位
GAPDH:グリセルアルデヒド3-リン酸デヒドロゲナーゼ
Hb:ヘモグロビン
HbA:ヘモグロビンA
HbS:鎌状ヘモグロビン
HO-1:ヘムオキシゲナーゼ1
H/R:低酸素/再酸素化
ICAM-1:細胞間接着分子1
IU:国際単位
kDa:キロダルトン
LDH:乳酸脱水素酵素
NF-κB:核内因子κB
P-NF-κB:リン酸化核内因子κB
rADAMTS13:組換えADAMTS13
rVWF:組換えフォン・ヴィレブランド因子
RBC:赤血球
RNA:リボ核酸
SCD:鎌状赤血球症
SSマウス:HbSのホモ接合体のトランスジェニックマウス
TXAS:トロンボキサンシンターゼ
ULVWF:超巨大フォン・ヴィレブランド因子
VCAM-1:血管細胞接着分子1
VOC:血管閉塞性クリーゼ
VWF:フォン・ヴィレブランド因子
1)アラニン(A)、グリシン(G);
2)アスパラギン酸(D)、グルタミン酸(E);
3)アスパラギン(N)、グルタミン(Q);
4)アルギニン(R)、リシン(K);
5)イソロイシン(I)、ロイシン(L)、メチオニン(M)、バリン(V);
6)フェニルアラニン(F)、チロシン(Y)、トリプトファン(W);
7)セリン(S)、スレオニン(T);および
8)システイン(C)、メチオニン(M)(例えば、Creighton,Proteins(1984)を参照されたい)。
いくつかの態様では、本開示は、SCD、特にSCDにおけるVOCの治療、改善、および/または予防におけるADAMTS13およびADAMTS13を含む組成物を含む。SCDは、βグロビン遺伝子の点突然変異により生じる世界的な遺伝性の赤血球疾患であり、病的なHbSの合成、および低酸素状態でのHbSの異常な重合を引き起こす。SCDの2つの主な臨床症状は、慢性溶血性貧血と急性VOCであり、これらはSCD患者の入院の主な原因となっている。最近の研究では、鎌状赤血球に関連する急性事象および慢性臓器合併症の発生において鎌状血管障害(sickle vasculopathy)が中心的な役割を果たしていることが強調されている(Sparkenbaugh et al, Br. J. Haematol. 162:3-14, 2013; De Franceschi et al., Semin. Thromb. Hemost. 226-36, 2011; and Hebbel et al, Cardiovasc. Hematol. Disord. Drug Targets, 9:271-92, 2009;Dutra et al., Proc Natl Acad Sci USA; 111(39): E4110-E4118;これらの各々は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)。これら合併症の病態生理は、毛細血管および小血管における血管内鎌状赤血球化に基づいており、VOC、血流障害、血管の炎症、および/または虚血性細胞損傷を伴う血栓症を引き起こす。
いくつかの実施形態では、本開示は、SCDマウスを低酸素状態に曝すことによって模倣された急性SCD関連事象中のSCDのモデルマウス(ティム・タウンズ(Tim Townes)マウス)における組換えADAMTS13(すなわち、BAX930/SHP655/TAK755)の効果の研究を含む。この研究は正常酸素状態および低酸素状態で行われ、鎌状赤血球症マウスを低酸素状態に曝した後、マウスモデルにおける予防または治療投与(複数可)の有効性(全生存率の測定を含む)と、血液パラメータ、肺および腎障害、ならびに血管炎症に対するBAX930/SHP655/TAK755による処置(複数可)の生物学的効果を試験した。
いくつかの態様では、本開示は、SCDの治療および予防におけるADAMTS13(「A13」としても知られる)およびADAMTS13を含む組成物を包含する。特定の態様では、本開示は、SCDにおけるVOCの治療および予防におけるADAMTS13およびADAMTS13を含む組成物を包含する。ADAMTS13プロテアーゼは、主に肝臓で産生される約180kDa~200kDaのグリコシル化タンパク質である。ADAMTS13は、血漿中のメタロプロテアーゼであり、VWFマルチマーを切断し、血小板凝集におけるVWFマルチマーの活性をダウンレギュレートする。現在までに、ADAMTS13は、遺伝性血栓性血小板減少性紫斑病(TTP)、後天性TTP、脳梗塞、心筋梗塞、虚血/再灌流障害、深部静脈血栓症、および播種性血管内凝固(DIC)(例えば、敗血症関連DIC)などの凝固障害に関連しているとされている。
本開示の態様において、ADAMTS13は、それを必要とする対象に投与される。本明細書に記載のADAMTS13を対象に投与するために、ADAMTS13は、一部の態様では、1つまたは複数の医薬的に許容される担体を含む組成物に配合される。
様々な態様において、投与するADAMTS13またはADAMTS13組成物の有効量は、薬物の作用を調節する多様な因子(例えば、対象の年齢、状態、体重、性別、および食事、あらゆる感染症の重症度、投与時間、投与方法、ならびにSCDのVOCの重症度を含む他の臨床的因子)に応じて変化する。
さらなる態様として、本開示は、対象への投与のための使用を容易にする方法でパッケージングされた、対象へのADAMTS13またはADAMTS13組成物の投与のための1つまたは複数の医薬製剤を含むキットを包含する。
ヘモグロビンの存在下での組換えADAMTS13のタンパク質分解活性
本研究の目的は、(i)ADAMTS13媒介VWFマルチマー切断に対するヘモグロビンの阻害効果;(ii)過剰量の組換えADAMTS13(rADAMTS13[SHP655またはBAX930またはTAK755としても知られる])が阻害効果を防止または無効にできるかどうか;および(iii)この阻害効果を防止または無効にするために必要なヒトrADAMTS13(SHP655)の濃度;を評価することであった。本研究は、細胞外ヘモグロビンの上昇によりVWFマルチマーの切断が損なわれる鎌状赤血球症(SCD)患者におけるrADAMTS13の補充のin vitroでの実行可能性を示すことを目的とした。
完全長のVWF基質を用いて流体せん断応力下でADAMTS13活性を測定するために、ボルテックスベースのアッセイが確立された(Han et al., Transfusion; 51(7): 1580-91, 2011; Shim et al., Blood; 111(2): 651-7, 2008;これらの各々は、あらゆる目的のために参照によりその全体が本明細書に組み込まれる)。Hanら(Han et al., Transfusion; 51(7): 1580-91, 2011)が最初に記載したアッセイでは、rVWFをホルマリン固定洗浄血小板およびADAMTS13試験サンプルとともに一定のボルテックスでインキュベートする。生成されたVWF切断断片をドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)で分離し、VWF特異的イムノブロット分析で検出し、デンシトメトリーで定量する。
ホルマリン固定凍結乾燥血小板(Helena、カタログ番号5371)を3mLの血小板溶解緩衝液(20mM Tris、100mM NaCl緩衝液、pH7.4)に溶解し、RTで10分間インキュベートした後、10000rpmで5分間遠心分離した。血小板ペレットをボルテックスアッセイバッファー(50mM HEPES、150mM NaCl、0.1μM ZnCl2、5mM CaCl2、0.3% BSA、pH7.4)に再懸濁し、Sysmex PocH 100i血液分析システム(Sysmex;神戸、日本)を用いて血小板の濃度を測定した。ボルテックスアッセイバッファーに溶解した血小板は、製造元の仕様に従って、4℃で最大24時間保存した。血小板は300×103細胞/μLの最終濃度で反応混合物において使用した。
1バイアルのrVWF(ロット:HN4AR00)の凍結乾燥物を500μLの蒸留脱イオン水に溶解し、91IU/mLの濃度(VWF:抗原活性)にした。その後、rVWFをボルテックスアッセイバッファーで18IU/mLの濃度に予備希釈し、さらに反応混合物で1:6に希釈した。各反応混合物で使用した最終的なrVWF濃度は3 IU/mLであり、これはおよそ30μg/mLに相当する。
ヘモグロビン粉末(Sigma社、カタログ番号H7397;ヒト赤血球から調製)を100mg/mL、10mg/mL、および1mg/mLの濃度になるようにボルテックスアッセイバッファーに溶解し、最終濃度が0.1mg/mL、0.5mg/mL、1mg/mL、5mg/mL、および10mg/mLになるように目的の量を反応混合物に加えた。
rADAMTS13(ロット:HR5BK00)の社内基準製剤(277.5 U/mL)をボルテックスアッセイバッファーで希釈し、rADAMTS13の最終濃度を0.25U/mL、0.5U/mL、1U/mL、および2U/mLにした。
各セットの実験は、以下のサンプルを含んでいた:(i)rADAMTS13およびヘモグロビンを含むVWF切断インキュベーション混合物からなる試験サンプル;(ii)ヘモグロビンは含まないでrADAMTS13を含むVWF切断インキュベーション混合物からなる対照サンプル、および(iii)ADAMTS13媒介VWF切断が期待されない(非切断VWFをもたらす)陰性対照サンプル。陰性対照サンプルは、rADAMTS13を含まないで、または二価カチオンをキレートしてADAMTS13媒介VWF切断を阻止するために10mMのEDTAを添加したrADAMTS13の存在下で、ヘモグロビンを含むインキュベーション混合物からなる。
2つの異なる実験セットアップを調製した。反応混合物は、0.2mLの薄肉反応チューブ(注文番号732-0548、VWR;ウイーン、オーストリア)でインキュベートした。
2.1 SDS-PAGE/イムノブロット用の陽性対照の調製
ADAMTS13媒介VWF切断産物の陽性対照として、中程度の変性尿素アッセイ条件下(本実施例のセクション1に記載)でrADAMTS13により切断されたrVWFを各ゲル上にのせ、イムノブロット分析後に適切で明確なVWF切断断片を可視化した。
サンプルをNuPage 4xドデシル硫酸リチウム(LDS)サンプルバッファー(40%グリセロール、4% LDS、4% Ficoll-400、0.8M トリエタノールアミン-塩化物[pH7.6]、0.025%フェノールレッド、0.025%クーマシーG250、2mM EDTA;注文番号NP0007、Invitrogen;ウイーン、オーストリア)で希釈し、NuPage 3-8% Tris-acetateゲル(注文番号EA03755BOX、Invitrogen;ウイーン、オーストリア)に約12ng VWF/レーンの濃度でロードし、変性・非還元条件で分離した。
3.1 画像解析
記録された画像をChemiDoc Imagerカメラシステムの評価プログラムで開き、分析すべきVWF切断産物(すなわち、176kDaの二量体断片)を識別してマークした。レーンごとのマークされた領域の色の強度(体積強度として示された)が評価プログラムによって計算された。これらの最終強度値は、さらなる分析のためにMicrosoft Office Excel 2007にエクスポートされた。
ヘモグロビンを含む各試験サンプルについて、ヘモグロビンを添加していないそれぞれの対照サンプルを少なくとも1回ゲルにロードした。サンプルを二重にロードした場合には、二重の強度値から平均参照強度値を算出した。
結果は%比で表し、次の式に従って計算した:
比[%]=(平均)強度値試験サンプル/(平均)強度値対照サンプル x 100
この計算を各ゲルについて別個に行った。
4.1 ADAMTS13媒介VWFマルチマー切断に対するヘモグロビンの阻害効果
ADAMTS13媒介VWFマルチマー切断に対するヘモグロビンの阻害効果を、ADAMTS13の各濃度(すなわち、1U/mL、0.5U/mL、および0.25U/mL)について、ヘモグロビン濃度を増加させて(0mg/mL、0.5mg/mL、1mg/mL、5mg/mL、および10mg/mL)評価した。Hb濃度は、SCD患者で観察される血漿Hbの範囲(20~330μg/mL、血管閉塞性クリーゼ時には>400μg/mL)をカバーした。ADAMTS13の正常なヒト血漿濃度は約1U/mLである。
前述のパイロット実験の結果の目視検査は、ヘモグロビン濃度が一定の場合、rADAMTS13の濃度を上げることで、VWF切断に対するヘモグロビンの妨害効果を克服できることを示唆した。
rADAMTS13を反応混合物に添加する前に、ヘモグロビンとrVWFのプレインキュベーション(30分間、2500rpmで一定のボルテックス)を行った場合と行わなかった場合の実験も行った。その目的は、ADAMTS13の結合およびその切断を妨害するはずのVWF結合部位をヘモグロビンが事前に占有する時間があった場合に、VWFのアクセス性が影響を受けるか否かを調べることであった。
Tim Townesマウス試験でのADAMTS13を用いた薬物動態/薬力学的試験
本研究の目的は、正常酸素条件下において、Tim Townes SSマウスに単回静脈内(IV)ボーラス投与した後のrADAMTS13(本実施例ではSHP655と表記)の薬物動態プロファイルおよび有効性を評価することであった。
合計78匹の雄のTim Townes SSマウスを、表5に示す4つの試験群に割り当てた。動物はJackson Laboratories(米国)またはCharles River Laboratories(Sulzfeld、ドイツ)から入手し、引き渡し時の年齢は4~8週齢であった。動物飼育施設への到着後、全ての動物は、資格を有する獣医スタッフによる一般的な身体検査を受け、正常な健康状態であることを確認した。動物は引き渡しから少なくとも5日間は隔離された状態で飼育した。動物は隔離された換気ケージ(IVC-GM500)に収容し、目標温度20~24℃、目標相対湿度40~70%、明暗比1:1(12時間明:12時間暗、人工照明)で飼育した。動物は個別のケージに収容し、ケージは2週目ごとに交換した。空気の入れ替えは1時間に60回以上行われた。動物は、Ssniff R/M-Haltung食(Ssniff Spezialdiaten GmbH、Soest、ドイツ)と水を自由に摂取した。寝床、巣作り材料、干し草(ABEDD Lab and Vet Service GmbH、ウイーン、オーストリア)が提供された。試験開始前に体重をモニターし、ケアスタッフによる毎日の臨床観察と臨床症状を記録した。安楽死については、ヒトのエンドポイントが適用され、さらなる解析のために病理組織学的検査用のサンプルを分離し、瞬間凍結し、4%リン酸緩衝ホルムアルデヒドで固定した。予定外の死を迎えた動物は、可能であれば、あるいは必要であれば、剖検した。動物はペントバルビタールの過量投与または深い麻酔下で頸椎脱臼により安楽死させた。
群A~Dのための試験品および対照品は、注射当日に新鮮な状態で調製した。凍結保存されていた凍結乾燥SHP655を室温に戻した。試験品は、製剤緩衝液(塩化カルシウム(2mM)、L-ヒスチジン(20mM)、マンニトール(3%w/w)、スクロース(1%w/w)、およびポリソルベート80(0.05%w/w)、pH6.9~7.1)中にrADAMTS13を含んでいた。対照品は、SHP655の製剤緩衝液を含んでいた。SHP655は、5mLの注射用滅菌水(ロット番号VN549058、Baxalta Innovations GmbH)で再構成した。再構成後、SHP655を室温で少なくとも1分間保持した後、軽く旋回させて完全に溶解させた。注射のために、再構成されたSHP655をSHP655用の製剤緩衝液で希釈した(表6)。対照として、SHP655用の緩衝液(ビヒクル)を注入した。完了後、ゆっくりと反転させて製剤を穏やかに混合した。最終希釈液は、湿った氷を入れた箱の中で、対応する群の処置のために適切な量を充填したラベル付きチューブ(試験番号/群/用量)で供給した。最終希釈液は氷上に保持し、3時間以内に動物に用いた。
試験品および対照品は、注射の前日に記録された個々の動物の最新の体重に基づいて、意識のある拘束された動物に外側尾静脈から一度に注射した。投与体積は10mL/kgであった。投与前および投与後、製剤サンプル(100μLのアリコート)を低温冷凍(<-60℃)で保存した。
薬物投与の0.083時間(5分)後(5min)、3時間後(3h)、14時間後(14h)、および24時間後(24h)に血液を採取したが、ビヒクル投与では14時間後(14h)のみに採取した(各時点につきn=6)。
投与の14時間後に屠殺したマウスからのみ、眼窩静脈叢血(0.3mL EDTA血)を採取した。
ADAMTS13活性(全ての時点:0.083、3、14、および24時間)ならびに本実施例のセクション7に記載されているいくつかのパラメータを分析するために、終末心臓穿刺血液(0.5~0.7mLの血液)を採取した。
全てのヘパリン添加血液サンプルを、できるだけ早く遠心分離した。ヘパリン血液サンプルは、2200gで10分間、室温で遠心分離した。上澄み液の血漿を、プラスチックピペットを用いて、清潔で明確にラベル表示された第2のエッペンドルフチューブに移した。上澄み液を第2のエッペンドルフチューブに移す際には、血漿と一緒に「バフィーコート」から細胞を取り出さないように注意した。2回目の遠心分離(血漿上清)を行った(2200g、5分間、室温)。血漿を再びプラスチックピペットを用いて慎重に取り出し(沈殿物から細胞を取り出さない)、明確にラベル表示されたエッペンドルフチューブに入れた。全ての時点で、ADAMTS13活性および本実施例のセクション7のいくつかのパラメータについて血漿を分析した。
FRETS-VWF73アッセイを用いて、全てのヘパリン血漿サンプルのADAMTS13活性を分析した。簡単に説明すると、FRETS-VWF73は、ADAMTS13の消光性蛍光基質である。ADAMTS13の切断部位(Y1605-M1606)を含む、ヒトVWFのA2ドメインの73アミノ酸(D1596-R1668)からなるペプチドである。非切断FRETS-VWF73の蛍光シグナルは、蛍光体とクエンチャーとの間の蛍光共鳴エネルギー移動によりクエンチャーによって消される。FRETS-VWF73基質がADAMTS13によって切断されると、蛍光体とクエンチャーとの間の空間的な距離のせいで蛍光シグナルが発生する。発光体は340nmで励起され、450nmで発光する。血漿サンプルをサンプル希釈緩衝液で希釈し、ADAMTS13の推定活性が80mU/mLから5mU/mLになるようにした。希釈した標準品(ADAMTS13活性が1U/mLと規定されている正常ヒト血漿)、対照サンプル、および血漿サンプル(いずれも1ウェルあたり100μL添加)を96ウェルマイクロプレート内の100μL/ウェルのFRETS-VWF73基質と混合し、FRETS-VWF73とADAMTS13の切断反応を開始する。この過程を1時間にわたり5分ごとに蛍光分光光度計で測定する。この期間のシグナルの増加が、サンプル中のADAMTS13活性に対応する。
全ての群から臓器(例えば、肺、腎臓、脾臓および肝臓)を分離した(14時間後の時点のみ)。全ての群について、一部を適切な溶液(例えば、4%リン酸緩衝ホルムアルデヒド)で固定し、他の部分を液体窒素で凍結した。
以下のパラメータを分析した:VWF活性レベル、VWF抗原レベル、VWFマルチマー、VWF切断断片、および遊離ヘモグロビンレベル。
VWF:CBAは、ZYMUTEST VWF:CBA(Hyphen BioMed,155,rue d’Eragny,F95000 Neuville-sur-Oise,フランス)の製品リーフレットにしたがって実施した。
ASSERACHROM VWF:Ag(Diagnostica Stago,アニエール=シュル=セーヌ,フランス)の製品リーフレットに従ってアッセイを行った。
VWFのマルチマー構造を水平SDSアガロースゲル電気泳動で解析した。VWFマルチマーのサイズ分布を解析するために、低解像度(1%アガロース)の条件を用いた。サンプルを、VWF:Agの含有量に基づいて希釈し、Tris-EDTA-SDSバッファーとインキュベートた。その後、アガロースゲルにおいて非還元条件でマルチマーを分離した。VWFマルチマーは、Bio-Rad(リッチモンド、CA、US)の化学発光検出キット(Clarity Western ECL)を用いて、ポリクローナルウサギ抗ヒトVWF抗体、および続いてHRP結合ヤギ抗ウサギIgGを用いた免疫検出により可視化した。CCDカメラでVWFマルチマーを可視化し、肉眼でカウント可能なVWFマルチマーの数を記録した。
血漿サンプル中の遊離ヒトヘモグロビンを、Abcam社(ab157707)が提供する市販のサンドイッチ酵素結合免疫吸着法(ELISA)で分析した。ヒトヘモグロビンのin vitroアッセイの範囲は3.13ng/mL~200ng/mLであり、感度は0.845ng/mL、精度は10%以下であった。
統計解析は、GraphPad Prism Version 7.03を用いて行った。
動物B9は投与前に死亡したが、交換しなかった。
VWF活性および抗原レベルは、ZYMUTEST VWF:CBA活性アッセイおよびASSERACHROM VWF:Ag ELISAを用いて決定した。VWF活性/抗原比を図8A~8Cに示す。
14時間後に屠殺した動物の肝臓、腎臓、および肺を解析した。
鎌状赤血球症の動物モデルにおけるADAMTS13の有効性試験
この探索的有効性試験の目的は、低酸素状態において、Tim Townesマウスに組換えADAMTS13(本実施例ではSHP655と称する)を静脈内投与した後の用量依存的な有効性を調べることであった。
合計24匹の雄のTim Townes SSマウス(Hbbtm2(HBG1,HBB*)Towについてホモ接合型、Hbatm1(HBA)Towについてホモ接合型)をJackson Laboratories社(米国)から購入し、全ての動物が同等の体重および年齢で予定された生活段階に入るようにした2回の異なる出荷により得た。搬入時の年齢範囲は4~8週齢であった。動物飼育施設への到着後、全ての動物は、資格を有する獣医スタッフによる一般的な身体検査を受け、正常な健康状態であることを確認した。動物は搬入から少なくとも5日間は隔離された状態で飼育された。動物は隔離された換気ケージ(IVC-GM500)に収容し、目標温度20~24℃、目標相対湿度40~70%、および明暗比1:1(12時間明:12時間暗;人工照明)で飼育した。1ケージあたり1~3匹を収容し、1週間ごとにケージを交換した。空気の入れ替えは1時間に60回以上行われた。動物は、Ssniff R/M-Haltung食(Ssniff Spezialdiaten GmbH、Soest、ドイツ)と水を自由に摂取した。寝床、巣作り材料、干し草は(ABEDD Lab and Vet Service GmbH、ウイーン、オーストリア)が提供された。搬入日から週1回動物の体重をモニターし、ケアスタッフによる毎日の臨床観察と臨床症状を記録した。安楽死については、ヒトのエンドポイントを適用し、さらなる解析のために病理組織学的検査用のサンプルを分離し、瞬間凍結し、4%リン酸緩衝ホルムアルデヒドで固定した。予定外の死を迎えた動物は、可能であれば、あるいは必要であれば剖検した。動物は、ケタミン/キシラジン(OGRIS Pharma GmbH)の過量投与で、または深い麻酔下で頸椎脱臼により安楽死させた。
試験品および対照品は、注射当日に新鮮な状態で調製した。+2~+8℃で保存されていた凍結乾燥SHP655を室温に戻した。試験品は、製剤緩衝液(塩化カルシウム(2mM)、L-ヒスチジン(20mM)、マンニトール(3%w/w)、スクロース(1%w/w)、およびポリソルベート80(0.05%w/w)、pH6.9~7.1)中にrADAMTS13を含んでいた。SHP655を5mLの滅菌水(sWFI、ロット番号VN549058、Baxalta Innovations GmbH)で再構成した。再構成後、試験品を室温で少なくとも1分間保持した後、軽く旋回させて完全に溶解させた。注射のために、再構成された試験品をSHP655用の製剤緩衝液で希釈した。対照として、SHP655用の緩衝液(ビヒクル)を注射した。完了後、ゆっくりと反転させて製剤を穏やかに混合した。最終希釈液は、湿った氷を入れた箱の中で、対応する群の処置のために適切な量を充填した合理的なラベル付きチューブ(試験番号/群/用量)で供給した。最終希釈液は氷上に保持し、3時間以内に動物に用いた。
試験品および対照品は、注射の前日に記録された個々の動物の体重に基づいて、意識のある拘束された動物に外側尾静脈から一度に注射した。投与開始前および投与終了後、製剤(100μL)を低温冷凍(<-60℃)で保存した。
低酸素試験は、Biospherix Hypoxia chamber system(OxyCycler Model A84XOV、USA)を用いて、製造元のプロトコルに従って実施した。低酸素チャンバーの容量が限られていることと、低酸素チャレンジ中のTim Townes SSマウスの健全な行動評価を容易にするため、1日あたり試験するマウスの総数を12匹に制限した。そのため、異なる低酸素実験が最大3日間連続期間にわたり行われた。個々の動物の障害を「運動性」および「呼吸数」のパラメータを中心に継続的にモニターし、記録した。決められた人道的エンドポイントに達した動物は、低酸素チャンバーから取り出して安楽死させた。チャンバーの開閉は迅速に行われたが、一過性の酸素濃度の上昇を防ぐことはできなかった。
7.0%の低酸素に暴露した後の回復期の完了時に、行動薬理学者と獣医師による包括的な行動観察が行われた。以前にIrwin(Irwin et al., Psychopharmacologia. 13(3):222-57, 1968)によって記載されたように疾患の症状をモニターするために、SHIRPAガイドライン(Rogers et al., Mamm Genome. 8(10):711-3, 1997)に従って、各マウスについて個別に行動症状をスクリーニングした。特に、回復期の動物を検査するための行動項目(一般的な状況、姿勢、自発的および誘導された活動を含む)が選択され、そこから回復の状態を推定することができた。これらの項目は、症状が重いほど高い数になるように定量的にスコア化された(表13)。
6.1 心臓穿刺
観察期間の終了時、または人道的エンドポイントに達した後、終末心臓穿刺を行った。
全てのヘパリン添加血液サンプルを、できるだけ早く遠心分離した。ヘパリン血液サンプルは、2200gで10分間、室温で遠心分離した。上澄み液の血漿を、プラスチックピペットを用いて、清潔で明確にラベル表示された第2のエッペンドルフチューブに移した。「バフィーコート」層の細胞が混入しないように注意しながら、サンプルをラベル付きのエッペンドルフチューブに移した。2回目の遠心分離(血漿上清)を行った(2200g、5分間、室温)。血漿を再びプラスチックピペットを用いて慎重に取り出し(沈殿物から細胞を取り出さない)、明確にラベル表示されたエッペンドルフチューブに入れた。得られた血漿は、以下のセクションで報告されている分析に供された。
採取したマウスサンプルを用いて、SHP655(ADAMTS13)活性および抗原、VWF活性および抗原、ならびに遊離ヘモグロビンのレベルを分析した。
FRETS-VWF73アッセイは、ヒトADAMTS13の活性を測定する蛍光アッセイである。
ADAMTS13 Ag ELISAアッセイは、自社(すなわち、Baxalta、Orth、オーストリア)で開発した抗ADAMTS13抗体を用いた定量的サンドイッチ酵素免疫測定法を採用する。簡単に説明すると、マイクロタイタープレートをポリクローナルモルモット抗ヒトADAMTS13 IgGでコーティングした後、ヒト血清アルブミンを含むブロッキング液で非特異的結合部位をブロッキングした。その後、試験サンプル、組換え標準サンプル、および品質管理サンプルを、1ウェルあたり100μLの総量でインキュベートした。数回の洗浄ステップの後、ポリクローナルウサギ抗ヒトADAMTS13抗体を添加し、続いてHRP結合ロバ抗ウサギIgGを添加し、さらにUltra TMB基質を添加して、特異的結合を検出した。1.9M H2SO4を添加して発色反応を停止させ、分光光度計で450nmおよび620nm(バックグラウンド補正)でODを読み取った。450nmにおけるODの増加は、サンプル中のADAMTS13抗原濃度に直接比例した。連続希釈され参照標準として使用された精製rADAMTS13の対照調製物を対照にして、サンプルを測定した。参照標準曲線を多項式回帰(2次)でフィットさせ、それから試験サンプルのADAMTS13抗原濃度を算出した。ADAMTS13抗原はμg/mLで表された。
実施例2のセクション7.1に記載したように、ZYMUTEST VWF:CBA(Hyphen BioMed,155,rue d’Eragny,F95000 Neuville-sur-Oise,フランス)の製品リーフレットに従ってVWF:CBAを実施した。
実施例2のセクション7.2に記載したように、ASSERACHROM VWF:Ag(Diagnostica Stago,Asnieressur Seine,フランス)の製品リーフレットに従ってアッセイを実施した。
実施例2のセクション7.3に記載したように、VWFのマルチマー構造を水平SDSアガロースゲル電気泳動で解析した。
実施例2のセクション7.4に記載したように、Abcam社(ab157707)が提供する市販のサンドイッチELISAにより、血漿サンプル中の遊離ヒトヘモグロビンを分析した。
統計解析は、Graph PadPrism Version 7.03を用いて行った。一元配置分散分析(ANOVA)を用いてデータを解析し、0.05未満のp値を有する差が有意とみなされた。
9.1 動物の体重および年齢
指定の研究に使用したホモ接合型のTim Townes SSマウスは、Jackson Laboratories社から入手した。納入日(0週目)から開始した体重モニタリングに基づき、動物は平均体重の同様の増加を示し、平均年齢18~19週齢で探索的生存試験に含められた(表14を参照)。
SHP655のin vivoでの有効性を7.0%の低酸素状態で調べた。この目的のために、1群あたり6匹のTim Townes SSマウスに、7.0%の酸素(O2)濃度への曝露を開始する1時間前に、300、1000または3000U/kgのSHP655を投与し、その後、21%のO2での1時間の回復期を設けた(試験群E~H)。低酸素期の間、個々の動物の障害を「運動性(Mobility)」と「呼吸数」という評価項目に焦点を当てて、熟練した専門家が継続的にモニターおよび記録した。決められた人道的エンドポイントに達した動物は安楽死させた。さらに、7.0%のO2の低酸素状態にした後、回復期の過程で発生したTim Townesマウスの行動症状を、SHIRPAガイドラインに基づく評価尺度に従って採点した。
全てのTim Townes SSマウスが、5時間の7.0%低酸素期の間に、評価した「運動性」および「呼吸数」パラメータの治療非依存的な重度の障害を示した。300IU/kgのSHP655で処置した1匹の動物は、人道的エンドポイントに達成したため安楽死させなければならなかった(図11)。他の全ての動物は6時間の観察期間を生き延びた。また、1時間の回復期の間に、調べた全てのTim Townes SSマウスは、評価した「運動性」および「呼吸数」パラメータの改善を示し、3000IU/kgのSHP655で処置した全ての動物は完全に回復した。
7.0%の酸素に5時間暴露した後の回復期の後に、Tim Townes SSマウスのより包括的な行動評価を行った。この目的のために、SHIRPAガイドライン(数字が大きいほど症状が重い)に基づく評価尺度に従って動物を評価および採点した。痛みは鎌状赤血球クリーゼの際に患者が訴える最も一般的な症状の一つであることから、動物の痛み/病気の状態の独立した尺度として、立毛、アパシー、呼吸数、および目の状況を選択した(Ballas et al., Blood. 120(18):3647-56, 2012)。低酸素状態に数時間いた後に、マウスは餌や水を求めて動き回る必要性を感じると仮定して、回復の代理指標としてマウスの自発的な運動性を調べた。同様に、自発的な「逃避」反応として、刺激された運動性を評価した。
メーカーの指示に従って市販のELISAを用いて血漿中の遊離ヘモグロビンを分析した。
ADAMTS13活性および抗原レベルは、特異的FRETS活性アッセイおよびADAMTS13 ELISAを用いて測定した。
VWF活性および抗原レベルは、ZYMUTEST VWF:CBA活性アッセイおよびASSERACHROM VWF:Ag ELISAを用いて測定した。
さらに、VWFマルチマーのサイズ分布を水平1%SDSアガロースゲル電気泳動で分析した。サンプルは、VWF:Agの含有量に基づいて希釈された。
全てのTim Townes SSマウスは、7.0%のO2暴露の過程で、「運動性」および「呼吸数」に深刻な障害を示した。300IU/kgのSHP655で処置した1匹の動物は、5時間の7.0%低酸素期の間に安楽死させなければならなかった。
Claims (38)
- 鎌状赤血球症を患う対象において、トロンボスポンジン1型モチーフを有するディスインテグリンおよびメタロプロテイナーゼ、メンバー13(ADAMTS13)が媒介するVWF切断を増加させる方法であって、それを必要とする対象に、ADAMTS13を含む組成物の治療有効量を投与することを含む、方法
- 前記対象におけるADAMTS13が媒介するVWF切断は、健常対象と比較して細胞外ヘモグロビン(ECHb)の血漿レベルが上昇しているために阻害されている、請求項1に記載の方法。
- 前記対象における細胞外ヘモグロビン(ECHb)の血漿レベルが約20~330μg/mLである、請求項2に記載の方法。
- 前記対象における細胞外ヘモグロビン(ECHb)の血漿レベルが330μg/mL超である、請求項2に記載の方法。
- ADAMTS13を投与することにより、ADAMTS13を投与しない場合と比較して、超巨大VWFマルチマー、VWF活性、およびVWF活性/抗原比のうちの少なくとも1つのレベルが低下する、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13を投与することにより、ADAMTS13を投与しない場合と比較して、血漿中の遊離ヘモグロビンのレベルが低下する、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 鎌状赤血球症を患う対象における血管閉塞性クリーゼ(VOC)を治療する方法であって、それを必要とする対象に、VOCの発症後に、ADAMTS13を含む組成物の治療有効量を投与することを含む、方法。
- 鎌状赤血球症を患う対象における血管閉塞性クリーゼ(VOC)を予防する方法であって、それを必要とする対象に、VOCの発症前に、ADAMTS13を含む組成物の治療有効量を投与することを含む、方法。
- 前記組成物がADAMTS13バリアントをさらに含む、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ADAMTS13バリアントが、野生型ADAMT13と比較して、少なくとも1つの単一アミノ酸置換を有するアミノ酸配列を含む、請求項9に記載の方法。
- 野生型ADAMTS13がヒトADAMTS13である、請求項10に記載の方法。
- 野生型ADAMTS13が配列番号1のアミノ酸配列を含む、請求項10に記載の方法。
- 前記単一アミノ酸置換の少なくとも1つが、野生型ADAMTS13と比較して、ADAMTS13の触媒ドメイン内にある、請求項9~12のいずれかに記載の方法。
- 前記単一アミノ酸置換が、配列番号1で示されるI79M、V88M、H96D、R102C、S119F、I178T、R193W、T196I、S203P、L232Q、H234Q、D235H、A250V、S263C、および/またはR268Pではなく、またADAMTS13における同等のアミノ酸でもない、請求項13に記載の方法。
- 前記単一アミノ酸置換が、配列番号1で示されるアミノ酸Q97、またはADAMTS13における同等のアミノ酸におけるものである、請求項9~14のいずれかに記載の方法。
- 単一アミノ酸の変化が、QからD、E、K、H、L、N、P、またはRへの変化である、請求項15に記載の方法。
- 単一のアミノ酸の変化がQからRへの変化である、請求項15または16に記載の方法。
- 前記ADAMTS13バリアントが配列番号2のアミノ酸配列を含む、請求項9~17のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ADAMTS13バリアントが配列番号2の配列から本質的になる、請求項9~18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ADAMTS13バリアントが配列番号2の配列からなる、請求項10~20のいずれか一項に記載の方法である。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントの治療有効量が、体重1キログラムあたり約20~約6,000国際単位である、請求項1~20のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントの治療有効量が、体重1キログラムあたり約300~約3,000国際単位である、請求項1~21のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントの治療有効量が、体重1キログラムあたり約1,000~約3,000国際単位である、請求項1~22のいずれか一項に記載の方法。
- 治療有効量のADAMTS13および/またはそのバリアントを投与することにより、対象におけるADAMTS13および/またはそのバリアントの血漿濃度が約1~約80U/mLになる、請求項1~23のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントを含む組成物が、1回のボーラス注射で、毎月、2週間ごと、毎週、週2回、毎日、12時間ごと、8時間ごと、6時間ごと、4時間ごと、または2時間ごとに投与される、請求項1~24のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントを含む組成物が、静脈内または皮下に投与される、請求項1~25のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントが組換え体である、請求項1~26のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントが血漿由来である、請求項1~27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組成物がそのまま投与できる安定な水溶液である、請求項1~28のいずれか一項に記載の方法。
- ADAMTS13および/またはそのバリアントを含む組成物の治療有効量が、対象においてADAMTS13活性の有効レベルを維持するのに十分な量である、請求項1~29のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象が哺乳動物である、請求項1~30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象がヒトである、請求項1~30のいずれか一項に記載の方法。
- 対象における血管閉塞性クリーゼ(VOC)の治療の有効性を決定する方法であって、
a)VOC後に対象に治療を施すステップ;
b)前記対象から、立毛、アパシー、目の状況、皮膚の色、自発的な運動性、刺激された運動性、および呼吸数から選択される1つまたは複数の行動症状を収集するステップ;
c)ステップb)から収集した1つまたは複数の行動症状の重症度に基づいてスコアを作成するステップ;
d)ステップc)からのスコアを対照スコアと比較するステップであって、対照スコアは、治療を受けていない対照対象から作成される、ステップ;および
e)(i)ステップc)からのスコアが対照スコアと比較してより低い重症度を示す場合には、治療が有効であると判定し、(ii)ステップc)からのスコアが対照スコアと比較してより高いまたは同じ重症度を示す場合には、治療が有効ではないと判定するステップ;
を含む方法。 - 血管閉塞性クリーゼ(VOC)からの対象の回復を評価する方法であって、
a)対象から、VOCの後に、立毛、アパシー、目の状況、皮膚の色、自発的な動き、刺激された動き、および呼吸数から選択される1つまたは複数の行動症状を収集するステップ;
b)ステップa)から収集された1つまたは複数の行動症状の重症度に基づいてスコアを作成するステップ;
c)ステップb)からのスコアを対照スコアと比較するステップであって、対照スコアは、VOCの前の対象から、またはVOCを発症していない対照対象から作成される、ステップ;および
d)(i)ステップb)からのスコアが対照スコアと比較してより低いまたは同じ重症度を示す場合には、対象は回復したと判定し、(ii)ステップb)からのスコアが対照スコアと比較してより高い重症度を示す場合には、対象は回復していないと判定するステップ;
を含む方法。 - 前記1つまたは複数の行動症状が、立毛、アパシー、目の状況、刺激された運動性、および呼吸数から選択される、請求項33または請求項34に記載の方法。
- 前記行動症状は、より重度の症状に高い数字が割り当てられるようにスコア化される、請求項33~35のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象が哺乳動物である、請求項33~36のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象がマウスである、請求項33~37のいずれか一項に記載の方法。
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