JP2016503416A - 消炎性および/または免疫抑制性活性成分としてのデルフィニジン複合体 - Google Patents
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Abstract
Description
・デルフィニジンおよびスルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンからなる複合体、および/または
・デルフィニジンまたはその塩
を消炎剤および/または免疫抑制剤として含む組成物の使用に関する。
本発明の複合体または本発明の組成物は、好ましくは
・炎症状態または炎症性疾患、
・炎症性組織変化に関係する疾患、
・移植後の拒絶反応、および、
・自己免疫疾患
からなる群から選択される徴候を示すおよび/または予防処置を必要とする対象または個体を処置するために使用される。
a) スルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンの水溶液を得る
b) アントシアニジンであるデルフィニジンを添加して混合し、複合体を得る
工程を含む。
デルフィニジン含有組成物中の塩化デルフィニジンの含量を、逆相HPLC法を使用することによって測定した。当該方法は、下記の試薬を使用した。
精製水
クロマトグラフィー用メタノール
分析用蟻酸
容量測定用溶液としての1M 塩酸。
移動相は下記の通りであった:
チャンネルA:水(950ml)、メタノール(50ml)、蟻酸(10ml)
チャンネルB:水(50ml)、メタノール(950ml)、蟻酸(10ml)
ポストタイム:8分
流速:1ml/分
注入体積:20μl
カラム温度:30℃±2℃
UV/Vis検出器:アッセイ用530μm、不純物検出用275μm
積分:面積
希釈溶液1:100mlのメタノールおよび2.6mlの M HClの混合物
希釈溶液2:100mlの40% メタノールおよび2.6mlの1M HClの混合物
較正溶液:デルフィニジン参照溶液は以下のとおり調製した:10mgの塩化デルフィニジンを10mlのフラスコに秤量し、希釈溶液1に溶解した。それを溶解した後、希釈溶液2を用いて約10倍に希釈し、適切な濃度0.1mg/mlとした。
対照の較正溶液を同じ方法で調製した。塩化デルフィニジンは溶液中で不安定なため、較正溶液をすぐにHPLCによって分析した。
本発明の固体のデルフィニジン(製造については、さらに下を参照のこと)の含量を測定するために、約50mgの本組成物を10mlのフラスコに秤量した。次いでこれを希釈溶液2に溶解し、さらに、適切なデルフィニジン濃度0.1mg/mlとなるまで、同じ希釈溶液2で希釈した。
本実施例は、様々なシクロデキストリンによるデルフィニジンの複合体形成および水溶液中の複合体の溶解度を調べる。
5mlの各シクロデキストリン水溶液および純水をガラスフラスコに入れた。過剰な塩化デルフィニジンを添加した。必要とされる過剰量は、α−、β−およびγ−シクロデキストリンの溶液では10mg、HPBCD(2−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン)およびSBE−β−CDの溶液では15mgであった。
懸濁液を暗所で30℃で20時間撹拌した。続いてこれを孔径0.22μmを有する膜フィルターで濾過した。
本実施例では、水溶液でのデルフィニジン/SBE−β−CDの溶解度に対するpHの影響を調べた。1M HClで表2に記載した酸性pHレベルに調節した以外、実施例1の記載に従って、SEB−β−CD水溶液を調製した。次いで塩化デルフィニジンを加え、さらに、撹拌時間を2.5時間に限定した以外、実施例1の記載に従って処理した。結果を下の表2に示す。
本実施例では、本発明の複合体を固体として製剤化する。比較のために、デルフィニジン/HPBCD複合体およびデルフィニジン/澱粉製剤を固体として製造する。
5gのSEB−β−CDを40mlの蒸留水に溶解し、透明な溶液を得た。1M HClを用いて、溶液のpHを4.8に調節した。次いで、0.11gの塩化デルフィニジンを加え、暗所で27℃で2時間撹拌した。均一な液体を、孔径0.45μmを有する硝酸セルロース膜フィルターで減圧濾過した。溶液を凍結し、−48℃および圧力約10.3Pa(77mTorr)で凍結乾燥した。凍結乾燥物をすりつぶし、メッシュサイズ0.3mmの篩いで篩過した。
かなりの量の物質を濾過する以外、実施例3.1と同じ手順を行った。これは、実施例3.1によりSBE−β−CDを使用したときより、明らかに溶解度が低いことを示す。
5gの澱粉を40mlの蒸留水に懸濁した。白色の懸濁液を得た。1M HClを用いて溶液のpHを4.6に調節した。次いで0.11gの塩化デルフィニジンを加え、暗所で27℃で2時間撹拌した。得られた均一な液体を、実施例3.1の通りに、凍結乾燥し、すりつぶし、篩過した。
実施例3.1は本発明によるものであり、実施例3.2および3.3は比較例である。
実施例3.1〜3.3の固体を下記の条件下で保存した:
・褐色のねじ式ガラス容器中、室温で8日間
・続いてガラス容器中、暗所で、酸素雰囲気下、室温で22日間。
上記保存の最後の22日間は、容積20mlを有するガラスバイアル中で行った。予め8日間保存した250mgの各サンプルを、当該バイアルに充填し、これらをゴム栓を用いて密封した。2本の注射針によって、バイアルのヘッドスペースを純粋な酸素でフラッシュした。次いでサンプルを暗所で保存した。
デルフィニジン含有溶液中の塩化デルフィニジン含量を、上記と類似した逆相HPLC法を用いることによって測定した。逆相HPLC法には、下記の試薬を使用した:
精製水
クロマトグラフィー用メタノール
分析用蟻酸
容量測定用溶液としての1M 塩酸。
移動相は下記の通りであった:
チャンネルA:水(770ml)、メタノール(230ml)、蟻酸(10ml)
チャンネルB:水(50ml)、メタノール(950ml)、蟻酸(10ml)
ポストタイム:8分
流速:1ml/分
注入体積:20μl
カラム温度:30℃±2℃
UV/Vis検出器:アッセイ用530μm、不純物検出用275μm
積分:面積
希釈溶液1:100mlのメタノールおよび2.6mlの1M HClの混合物
希釈溶液2:100mlの50% メタノールおよび2.6mlの1M HClの混合物
較正溶液:デルフィニジン参照溶液は以下のとおり調製した:10mgの塩化デルフィニジンを10mlのフラスコに秤量し、希釈溶液1に溶解した。それを溶解した後、希釈溶液2を用いて約10倍に希釈し、適切な濃度0.1mg/mlとした。
対照の較正溶液を同じ方法で調製した。塩化デルフィニジンは溶液中で不安定なため、較正溶液をすぐにHPLCによって分析した。
本発明の水溶液のデルフィニジン含量を測定するために、1.584mg/ml(本発明の実施例)または0.0216mg/ml(比較例)の開始濃度(デルフィニジンに基づく)となるまで、実施例3.1のデルフィニジン/SBE−β−CD(本発明による)およびデルフィニジン(比較例)を0.9% NaCl溶液に溶解した。溶液は、室温で調製し、密閉バイアル中、暗所で37℃で保存した。
実施例6:LPSのみで処置した細胞(対照)と比較した、デルフィニジンおよび/またはそれのリポ多糖(LPS)との同時投与の予防的投与の細胞へのインビトロ有効性プロファイル
方法
健康な試験対象において、LPSおよび/またはデルフィニジンで刺激した後の単球の核中のNFKB濃度を、NFKBについての免疫蛍光核染色によって分析し、不刺激細胞に対して表した。NFKBは様々な刺激、特に炎症性刺激およびストレス関連刺激によって活性化される。不活性NFKBタンパク質は、細胞基質において、IKBファミリーの阻害性タンパク質に結合し(Baeuerle and Baltimore, 1988, Activation of DNA-binding activity in an apparently cytoplasmic precursor of the NF-kappa B transcription factor, Cell (53), 211-7; Baeuerle and Baltimore, 1988, I kappa B: a specific inhibitor of the NF-kappa B transcription factor, Science (242), 540-6)、様々なIKBメンバーの刺激依存性タンパク質分解は、NFKBの核移入を起こし(Ghosh et al., 1988, NF-kappa B and Rel proteins: evolutionarily conserved mediators of immune responses, Annu Rev Immunol (16), 225-60)、そのため、細胞基質から核へのNFKB移行の程度を測定することが、試験組成物の炎症性または抗炎症性作用を適切に検出する方法となる。
図1から明らかな通り、LPSによる細胞免疫応答の刺激(弱)前24時間での5μΜ デルフィニジンの予防的投与は、その後の1.5時間のLPS媒介免疫応答を阻害する(“24時間予備刺激 5μΜ Del−Cl;1.5時間 10μg LPS”対“1.5時間 10μg LPS”);免疫応答の阻害は、LPSと組み合わせたデルフィニジンの同時投与の場合(“1.5時間 5μΜ Del−Cl+10μg LPS”)よりも低く、LPSの添加と合わせた5μΜ デルフィニジンの予防的および反復添加(“24時間予備刺激 5μΜ Del−Cl;1.5時間 5μΜ Del−Cl+10μg LPS”)によって、さらに増大する(相加効果)。
方法
実施例5の方法と類似の手順を行い、図2aおよび2bの左から右に示すが、細胞の刺激/インキュベーション(各場合で、1mlの指数関数的増殖相の100万個の細胞を含むRPMI−1640)は、37℃で、24ウェルのポリスチレン細胞培養皿のウェル中で行った。記載した濃度は最終濃度である。
図2aから明らかな通り、細胞のLPS媒介免疫応答は、5μM デルフィニジンの同時投与の場合(“1.5時間 5μM Del−Cl+10μg LPS”)、比較に使用するヒドロコルチゾンの添加(“1.5時間 ヒドロコルチゾン+10μg LPS”)と少なくとも同様に阻害される。図2bに示した反復実験において、細胞のLPS介在免疫応答は、10μΜ デルフィニジンの同時投与の場合(“1.5時間 10μΜ Del−Cl+10μg LPS”)、著しく減少することを確認した。
方法
実施例5および6の方法と類似の手順を行い、図3の左から右に示すが、細胞の刺激/インキュベーション(各場合で、1mlの指数関数的増殖相の100万個の細胞を含むRPMI−1640)は、37℃で、24ウェルのポリスチレン細胞培養皿のウェル中で行った。記載した濃度は最終濃度である。
図3から明らかな通り、デルフィニジン濃度の増大に伴い、デルフィニジン媒介細胞免疫応答阻害(用量効果)も増大し、適切に高い濃度での阻害効果は、ヒドロコルチゾンの阻害効果に匹敵する。
方法
デルフィニジンの抗炎症作用を調べるために、血液脳関門、cEND細胞のインビトロモデルを使用した(Forster, C. et al., Occludin as direct target for glucocorticoid-induced improvement of blood-brain barrier properties in a murine in vitro System. J Physiol 565 (Pt 2), 475 (2005))。当該インビトロモデルは、マウスの脳毛細血管から摘出し、不死化した微小血管内皮細胞からなる。細胞を、コラーゲンIV(脳毛細血管周辺の基底膜の構成成分)でコートされた細胞培養容器に播種する。
TNFαによる処置は、未処置細胞と比較してCcl7 mRNA発現量の2倍増加をもたらす。0.1μΜおよび1μΜの選択された2種の濃度のデルフィニジンの添加は、TNFα誘発Ccl7 mRNA発現の異なる抑制または阻害をもたらす。興味深いことに、TNFα曝露前の細胞培養培地へのデルフィニジンのみの添加も、cEND細胞のCcl7発現抑制をもたらす。比較として使用したデキサメタゾンの場合も同様に強い効果を検出した。
方法
障壁の堅固さについて使用される代理マーカーは、タイトジャンクション構成タンパク質クローディン−5の発現(Forster C. Tight junctions and the modulation of barrier function in disease. Histochem Cell Biol. 2008; 130: 55-70)であり、その手順は実施例8と類似の手順で行った。
TNFα処置が、クローディン−5 mRNA発現減少を起こし、デルフィニジン添加24時間後、図5に示された通り、2種の選択された濃度(0.1μΜおよび1μΜ)でのTNFα介在クローディン−5 mRNA発現減少を相殺した。興味深いことに、TNFα曝露前のデルフィニジン単独の細胞培養培地への添加も、クローディン−5 mRNA 発現増大をもたらす。
方法
a) ラットの後肢のCFA誘発炎症
CFAをイソフルラン麻酔下でラットの右後肢に150μlで足底投与して誘発する。炎症および炎症を起こした肢に生じる疼痛は、2〜96時間以内に発症する。この時間点まで、未処置動物と比べて、食事パターン、体重、中核温または全般的活動レベルに有意な違いはない(Stein et al., Unilateral inflammation of the hindpaw in rats as a model of prolonged noxious stimulation: alterations in behavior and nociceptive thresholds, Pharmacol Biochem Behav., 1988; 31(2): 445-51)。
上記工程a)の96時間後、ラットに、イソフルラン麻酔下で、100μlのH2O(対照)または異なる投与量の100μlのデルフィニジン/SEβCD(2.50mg/mlおよび5.00mg/ml)を、右後肢の足底に注射する。
ラットを下記の通り対応する実験条件下に馴化させた:
ランダル・セリット試験への馴化のため、動物を、実験状況下に馴らすために、最初の3日間は1日3回ウッドパルプの下でリラックスさせた。
ラットの足におけるFAC誘発炎症性刺激に関して、機械的疼痛閾値を調べた。図6に示した足の圧力の閾値より、デルフィニジン/SEβCDを投与したとき、より具体的には最初の120分で、H2Oでの対照注射よりも著しく軽減し、デルフィニジン/SEβCDの投与後5分で最も強い効果を示すことが推測できる。これを2.5mg/mlおよび5.00mg/mlのデルフィニジン/SEβCDの2種の用量の測定に適用すると、同様に、最初の30分の測定点で、より高い濃度で、かなり強い効果があることから、用量依存性が推測できる。
方法および結果
実施例11において、デルフィニジンSBECDのポストコンディショニングの潜在的な効果を対照群と比較して調べた。この目的のために、Redel et al., 2008 [Redel et al., Impact of Ischemia and Reperfusion Times on Myocardial Infarct Size in Mice In Vivo. Experimental Biology and Medicine (2008), 233:84-93] および Stumpner et al., 2012 [Stumpner et al., Desflurane-induced post-conditioning against myocardial infarction is mediated by calcium-activated potassium channels: role of the mitochondrial permeability transition pore. British Journal of Anaesthesia (2012), 108(4): 594-601]に記載された方法を使用した、インビボでの図7および図9に示した経過時間でのインサイツ心筋梗塞モデルにおいて、得られた梗塞サイズを評価し、図10に図示した。図10は、平均値±SEMで示し;IS=梗塞サイズ;AAR=リスク領域、および、*=対照群と有意に異なるもの。p<0.05。データを平均値±平均値の標準誤差(SEM)として示す。
Claims (17)
- デルフィニジンおよびスルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンからなる複合体を含む、消炎剤および/または免疫抑制剤として使用するための組成物。
- 当該使用が、脳虚血および/または心筋虚血のとき、または、脳虚血および/または心筋虚血の結果として、好ましくは切迫性再灌流傷害のとき、組織および/または臓器を保護することを包含することを特徴とする、請求項1に記載の使用のための組成物。
- 脳虚血および心筋虚血が卒中および心筋梗塞の臨床的症状と相関することを特徴とする、請求項2に記載の使用のための組成物。
- 当該使用が、
・炎症状態または炎症性疾患
・炎症性組織変化に関係する疾患
・移植後の拒絶反応、および、
・自己免疫疾患
からなる群から選択される徴候の予防および/または処置を包含することを特徴とする、請求項1に記載の使用のための組成物。 - 炎症状態または炎症性疾患が、関節リウマチ、慢性多発性関節炎、若年性特発性関節炎、脊椎炎、変形性関節症、敗血症、敗血症性ショック、脳性マラリア、慢性炎症性肺疾患、珪肺症、サルコイドーシス、再灌流症候群、クローン病、多発性硬化症およびパーキンソン病を含む炎症性神経変性疾患、潰瘍性大腸炎、抑鬱および感染症のときの発熱からなる群から選択されることを特徴とする、請求項4に記載の使用のための組成物。
- 炎症性組織変化に関係する疾患が、アルツハイマー病、パーキンソン病および癌からなる群から選択されることを特徴とする、請求項4に記載の使用のための組成物。
- スルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンが、スルホブチル エーテル β−シクロデキストリンまたはスルホエチル エーテル β−シクロデキストリンである、請求項1〜6の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- スルホアルキルエーテル基によるシクロデキストリンの置換度が、3〜8であり、好ましくは4〜8であり、より好ましくは5〜8であり、より好ましくは6〜7であることを特徴とする、請求項1〜7の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 組成物が、デルフィニジンおよびスルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンからなる複合体を治療有効量含むことを特徴とする、請求項1〜8の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 組成物を単剤として使用することを特徴とする、請求項1〜9の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 組成物が、少なくとも1種のさらなる治療活性物質を含むことを特徴とする、請求項1〜9の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 少なくとも1種のさらなる治療活性物質が、消炎剤、炎症性サイトカインに対する抗体、炎症性サイトカインの可溶性受容体または免疫抑制剤の群から選択され、好ましくはアセチルサリチル酸、ジクロフェナク、インドメタシン、シクロスポリン、アザチオプリン、ボルテゾミブ、メルファラン、プレドニゾン、ビンクリスチン、カルムスチン、シクロホスファミド、デキサメタゾン、サリドマイド、ドキソルビシン、シスプラチン、エトポシドおよびシタラビンからなる群から選択されることを特徴とする、請求項11に記載の使用のための組成物。
- 好ましくは薬学的に許容される担体、充填剤、芳香剤および安定剤からなる群から選択される1種以上の薬学的添加物をさらに含む、請求項1〜12の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 経口投与、直腸投与、腹腔内投与、経皮投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、眼への投与、肺への投与および鼻腔への投与を含む非経腸投与からなる群から選択される投与用の製剤形態である、請求項1〜13の何れか1項に記載の使用のための組成物。
- 錠剤、カプセル剤、懸濁液、エアロゾル、溶液、クリーム剤、ペースト剤、ローション剤、ゲル剤および軟膏からなる群から選択される投与用形態である、請求項14に記載の使用のための組成物。
- デルフィニジンおよびスルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンからなる複合体が、デルフィニジンの制御放出および/または遅延放出用医薬製剤に使用されることを特徴とする、請求項1〜15の何れか1項に記載の組成物。
- デルフィニジンおよびスルホアルキルエーテル β−シクロデキストリンからなる複合体を含む医薬組成物。
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