JP2011079758A - タンパク質と微粒子との複合体及びその製造方法 - Google Patents

Abstract

【課題】
システインを有するタンパク質と微粒子との複合体を製造する際に、タンパク質及び微粒子の損失が発生し、得られる複合体の収量が低下する。そのため、これを解消する複合体とその製造方法が求められている。
【解決手段】
システインを２個以上有するリンカーを導入した融合タンパク質を用いることで、上記課題が解決されることを見出した。
【選択図】 図１

Description

本発明は、タンパク質と微粒子との複合体及びその製造方法に関する。

病変部位に存在する抗原（病変マーカー）を検出するために、病変マーカーに結合する抗体などの病変マーカー結合分子に、物理的な信号を発生する分子（以下、信号発信分子と略すことがある）を標識した体内診断用造影剤の研究や開発がなされている。これらの信号発信分子の例として、放射性核種、ＭＲＩ（Magnetic Resonance Imaging）信号を発信する分子、超音波信号を発信する分子、及び蛍光信号を発信する分子などが挙げられる。このような複合体を体内へ投与し、その複合体の信号発信分子からの信号を体外から検出することにより、病変部位及び病変マーカーを検出することができると考えられている。

信号発信分子として、微粒子を利用することが試みられている。微粒子に、病変マーカー結合分子として抗体などのタンパク質を結合させる方法として、例えば、タンパク質分子内のシステインのチオール基と微粒子表面に導入されたマレイミド基の結合を利用した方法が用いられる。この方法では、遺伝子工学を利用しタンパク質の任意の部位へシステインを導入することができるため、タンパク質の機能を損なわずに微粒子へタンパク質を結合させることができる。Arutselvan Natarajanらは、カルボキシ末端にシステインを１個導入した抗体フラグメントと、マレイミド基を表面に有する酸化鉄微粒子とを反応させることで、抗体フラグメントと酸化鉄微粒子との複合体を作製することができたと報告している（非特許文献１）。

上記方法を用いた場合、タンパク質のシステインが他のタンパク質のシステインとジスルフィド結合を形成することにより、タンパク質が二量体化する場合がある。そのため、微粒子と結合させる前にジチオトレイトールやトリ（２−カルボキシエチル）ホスフィン塩酸塩などの還元剤を添加して、前記二量体を形成するジスルフィド結合を一旦切断する操作が必要となる。しかし、微粒子表面へタンパク質を効率的に結合させるには、微粒子に対して過剰で高濃度のタンパク質溶液を用意する必要が生じる場合がある。よって、タンパク質を高濃度にすることによりタンパク質の二量体が再形成される恐れがある。また、タンパク質や微粒子の非特異的な相互作用により、システインを介さない、安定性の低いタンパク質と微粒子の複合体が形成され、それによるタンパク質と微粒子の損失が発生する恐れがある。それにより、投入した前記タンパク質と前記微粒子とは目的を達成できず、損失が発生する恐れがある。以上より、微粒子にタンパク質が結合する効率が低下し、また得られるタンパク質と微粒子との複合体の収量も低下すると考えられる。

Arutselvan Natarajanら著、２００８年のCancerBiotherapy & Radiopharmaceuticals、第２３巻第８２から第９１頁

前記の通り、システインを有するタンパク質と微粒子との複合体を製造する際に、タンパク質の損失やそれに伴う微粒子の損失が発生し、得られる複合体の収量が低下している。そのため、この欠点を解消することができる複合体とその製造方法が求められている。

本発明者らは鋭意研究の結果、システインを２個以上有するリンカーをタンパク質と微粒子との間に導入することで、上記課題が解決されることを見出した。本発明のタンパク質と微粒子との複合体は、タンパク質と微粒子と、前記タンパク質と前記微粒子とを連結するリンカーとからなる複合体であって、前記リンカーは２個以上のシステインを有することを特徴とする。

また、本発明のタンパク質と微粒子との複合体の製造方法は、システインを２個以上有するリンカーを導入したタンパク質を作製する工程と、前記システインで結合したジスルフィド結合を還元剤で切断する工程と、前記タンパク質と微粒子とを混合する工程とを有することを特徴とする。

システインを２個以上有するリンカーを導入したタンパク質を用いる、本発明のタンパク質と微粒子との複合体は、システインを１個有するリンカーを導入したタンパク質を用いる従来の複合体と比較して、収量を向上させることができる。

本発明のタンパク質と微粒子との複合体の一形態を示す模式図である。 一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）に１個システインを導入したタンパク質（ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１）、及び２個システインを導入したタンパク質（ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２）がそれぞれ還元剤有無の条件下でのＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の結果である。 ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１と酸化鉄微粒子との複合体と、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２と酸化鉄微粒子との複合体とが４９０ｎｍ吸収におけるゲルろ過クロマトグラフィーの結果である。

以下、図面を通しての本発明の実施形態について説明する。なお、個々に開示する実施形態は、本発明のタンパク質と微粒子との複合体及びその製造方法が実際に用いられる例であり、これに限定されるものではない。

（第一実施形態）
本発明のタンパク質と微粒子との複合体は、タンパク質と、微粒子と、前記タンパク質と前記微粒子とを連結する２個以上のシステインを有するリンカーとからなる複合体である。
（複合体の定義）
「タンパク質と微粒子との複合体」とは、タンパク質と微粒子とがリンカーを介して共有結合、もしくは共有結合に相当する強い結合力で結合した状態の化合物を指す。

（タンパク質の定義）
本発明のタンパク質は、前記リンカーと共有結合もしくは共有結合に相当する強い結合力で結合することができるタンパク質であり、たとえば、抗体、ペプチド、受容体に対するリガンドなど種々の病変マーカー結合分子がある。

前記抗体は、天然に産生される免疫グロブリン構造を有する抗体のみならず、標的分子結合性を維持したまま低分子化した抗体フラグメントも含む。抗体フラグメントとしてはＦａｂフラグメント、Ｆａｂ’フラグメント、Ｆ（ａｂ’）_２、重鎖可変（ＶＨ）ドメイン単独、軽鎖可変（ＶＬ）ドメイン単独、ＶＨとＶＬを非共有結合で結合した複合体（Ｆｖ）、ＶＨとＶＬをペプチドリンカーで連結した一本鎖抗体、ラクダ化ＶＨドメイン、抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）を含むペプチド等がある。これらのうち、特に、一本鎖抗体は、各種抗原に対応して安価かつ簡便に作製することができ、さらに、通常の抗体に比べて分子量が小さいため、体外へ速やかに排泄されやすく、又病変部位に到達しやすいという特徴がある。そのため、一本鎖抗体は病変部位の検出又は治療に用いられることが好ましい。

また、前記ペプチドは、抗体の結合部位を模倣したペプチド、数個のアミノ酸からなるペプチドをランダムに配置させたペプチドライブラリーより取得される病変マーカー結合性を有するペプチドなどが利用できる。さらに、前記受容体に対するリガンドは、上皮成長因子受容体（ＥＧＦＲ）に対するＥＧＦリガンド、血管内皮増殖因子受容体（ＶＥＧＦＲ）に対するＶＥＧＦリガンドなど種々のリガンドが利用することができる。

前記病変マーカーは、上皮成長因子受容体（ＥＧＦＲ）ファミリーとそのリガンド（ＥＧＦ）ファミリー、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）ファミリーとその受容体（ＶＥＧＦＲ）ファミリー、前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、マトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）ファミリー、インテグリンファミリー、セレクチンファミリー、エンドグリン又はムチン（ＭＵＣ）ファミリーなど種々の病変マーカーから選択することができる。例えば、ＥＧＦＲファミリーのヒト上皮細胞成長因子受容体２（ＨＥＲ２）は、該ＨＥＲ２に結合するモノクローナル抗体、抗体フラグメント、及びペプチドなどが多く知られており、病変マーカーとして利用することができる。

（リンカーの定義）
本発明のリンカーとは、前記タンパク質と前記微粒子とを結合させるために利用される、共有結合で結合した化合物を指す。前記タンパク質と前記微粒子を結合させることができる化合物であれば、特に制限しない。例えば、マレイミド基等のような官能基に結合するチオール基を有したり、アミノ酸で構成される前記リンカーであれば、システインを含んだりすることが好ましい。本発明において、ペプチド結合で連結した、２個以上のシステインを有する複数のアミノ酸からなるリンカーが特に好ましい。また、本発明においていう「融合タンパク質」とは、前記タンパク質と前記リンカーとが共有結合、もしくは共有結合に相当する強い結合力で結合した融合タンパク質をいう。

（リンカーの導入位置）
前記タンパク質の任意の部位から前記リンカーを導入することができる。例えば、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）のカルボキシ末端は、抗原の結合部位から離れているために、抗体の抗原結合能力を阻害することが少ない。そのため、一本鎖抗体の場合、そのカルボキシ末端に前記リンカーを導入することが好ましい。

（システインの個数）
本発明の特徴は、前記微粒子と結合する前に、前記融合タンパク質同士等による二量体の形成を防ぐため、前記リンカーの分子内、もしくは前記融合タンパク質の分子内でジスルフィド結合を形成させることにある。ここでいう二量体とは、主に、本発明の融合タンパク質同士の二量体をいうが、前記リンカー同士による二量体、または前記リンカーと前記融合タンパク質との二量体も含まれる。
よって、分子間の二量体の形成を抑制するために、前記融合タンパク質に導入される前記リンカーの分子内でジスルフィド結合を形成させるためには、前記リンカーが有するシステインの個数は２個以上である。好ましくは、２個以上の偶数である。さらに好ましくは２個である。また、前記リンカー、もしくは前記融合タンパク質分子内の全てのチオール基をジスルフィド結合にさせるためには、チオール基の数が偶数となる必要がある。例えばアミノ酸で構成される前記リンカー分子を含む前記融合タンパク質の場合では、偶数個のシステインを必要となする。したがって、前記リンカーが有するシステインの個数は２個以上である。好ましくは、２個以上の偶数である。さらに好ましくは２個である。
前記リンカー、もしくは前記融合タンパク質分子内の全てのチオール基をジスルフィド結合にさせるためには、チオール基の数が偶数となる必要がある。例えばアミノ酸で構成される前記リンカー分子を含む前記融合タンパク質の場合では、偶数個のシステインを必要となする。したがって、前記リンカーが有するシステインの個数は２個以上である。好ましくは、２個以上の偶数である。

前記融合タンパク質と前記微粒子とが共有結合もしくは共有結合に相当する強い結合力で結合されているため、本実施形態では、前記リンカーに前記微粒子の上面にある官能基と共有結合できるシステインを導入する。その個数については、前記融合タンパク質と前記微粒子との形成効率及び安定性を高めるために、１個よりも２個以上のシステインを有することが好ましい。最終的には、本発明の融合タンパク質と微粒子との複合体の収量を向上させることができる。

さらに、２個以上のシステインを有する前記融合タンパク質は前記微粒子との結合反応の効率を向上させることができるため、より低濃度の前記融合タンパク質で本発明のタンパク質と微粒子との複合体を形成することができる。また、前記融合タンパク質（リンカー等を含む）の濃度を低く抑えることで、二量体が再形成しやすくなること、また融合タンパク質と微粒子との非特異的な相互作用による融合タンパク質と微粒子との損失が発生することといった現象も抑えることができる。
ここでいう融合タンパク質と微粒子との損失には、融合タンパク質が単量体の場合と比較して二量体の安定性が低い場合、融合タンパク質の二量体化に伴い融合タンパク質が凝集しやすくなることによる融合タンパク質の損失と、融合タンパク質の二量体の沈殿に伴い微粒子の沈殿による損失とがある。そのため、融合タンパク質の二量体化を抑えることは、融合タンパク質と微粒子との損失を抑えることができると考えられる。

また、前記各々の微粒子表面のシステイン結合する官能基に限りがあるため、前記官能基の数より多くのシステインを融合タンパク質に導入しても、前記微粒子と結合できない融合タンパク質が出てくる可能性がある。そのため、本発明のリンカーに導入するシステイン数は２個が好ましい。

また、一般に、微生物などを用いてタンパク質を生産する際に、生産されるタンパク質の収量が、システインを導入することにより低下することが知られている。その原因は、微生物の細胞内において異なるタンパク質分子間での誤ったジスルフィド結合の形成だと考えられる。２個のシステインを限定して導入した場合、同一融合タンパク質分子内のシステイン同士がジスルフィド結合することで、異なるタンパク質分子間の誤ったジスルフィド結合が起こり難くなるため、システインを２個に限定して導入することは本発明の融合タンパク質の生産性を確保する観点から有効である。

（システインの距離とその間のアミノ酸の種類）
このため、２個以上のシステイン同士は、ジスルフィド結合を形成可能な距離で配置させることが好ましく、特にシステイン間のアミノ酸の残基数は０個〜５０個程度であることが好ましい。システイン間のアミノ酸の残基数が５０個を超えるとシステイン間の距離が大きくなるため、前記微粒子と結合する前に分子内のシステイン同士がジスルフィド結合を形成しにくくなる。その結果、前記融合タンパク質同士等が二量体化する可能性が出てくるため、前記微粒子への反応効率が低下する可能性がある。

また、システイン間の距離が前記微粒子の粒径より長い場合には、前記微粒子表面の官能基へシステインがアクセスできにくくなる恐れがある。それにより、前記微粒子への反応効率が低下する可能性があるため、システイン間の距離は微粒子の粒径より短い方が好ましい。よって、例えば、前記微粒子の粒径が２０ｎｍである場合、システイン間のアミノ酸の残基数は０個〜５０個程度であることが最も好ましい。

図１には、本発明のタンパク質と微粒子との複合体の一つの形態の模式図である。図中のＸ、Ｚは任意の０個以上のアミノ酸を示す。ＸとＺとが０個のアミノ酸の場合、システイン同士は直接ペプチド結合で連結し、Ｚ部分にはＯＨ基が位置されることを表す。例えば、一本鎖抗体の抗原結合能力を阻害することなく、複合体の収量を向上させることができる病変マーカー結合分子（プローブ）の構成として、一本鎖抗体のカルボキシ末端へ２個のシステインを導入することが特に好ましい。

また、２個以上のシステイン間のアミノ酸の種類としてはシステイン以外の種々のアミノ酸を導入することが可能である。例えば、グリシン、セリン等の組み合わせは柔軟性が高いため、システイン同士が近接しやすくジスルフィド結合を形成しやすいため好ましい。具体的には、例えばＣｙｓＧｌｙＧｌｙＧｌｙＧｌｙＳｅｒＣｙｓのようなグリシンとセリンとの組み合わせであることが好ましい。また、前記図１のＸでいえば、ＸはＧＧＧＧＳで、Ｚはタンパク質精製用のタグ配列を配置することができる。

また、前記リンカーの長さが長くなることで、リンカーがタンパク質の機能を阻害する可能性が出てくることも考えられる。例えば、一本鎖抗体の分子の大きさは約５ｎｍ程度であり、リンカーの長さがそれより長くなると、リンカーが前記一本鎖抗体の抗原結合機能を阻害する可能性がある。そのため、前記リンカーの長さとしては、タンパク質の抗原結合能を維持できるような程度の長さであることが好ましい。特にアミノ酸の残基数（システインの個数と、前記Ｘ個のアミノ酸と、前記Ｚ個のアミノ酸との和）としては０〜５０個の範囲、さらに０〜２０個の範囲であることが好ましい。

（収量が向上する以外の効果）
システインを２個以上有する前記リンカーを導入した前記融合タンパク質を用いることにより、前記融合タンパク質と前記微粒子が遊離する可能性を低下させることができる。例えば、２個以上のシステインを介した前記微粒子への結合は、１個のシステインを介した微粒子への結合に比べて、前記融合タンパク質と前記微粒子との結合部分の切断による遊離を抑えることができると考えられる。

また、２個以上のシステインのうち少なくとも１個のシステインが前記微粒子へ結合することができれば、少なくとも１個以上の残ったシステインは、微粒子表面上の同様の状態にあるタンパク質のシステイン（２個以上のシステインのうち少なくとも１個のシステインが前記微粒子へ結合したタンパク質の少なくとも１個以上の残ったシステイン）とジスルフィド結合を形成する可能性がある。これによってタンパク質と微粒子が遊離する可能性を低下させることも可能であろう。

このように融合タンパク質と微粒子が遊離する可能性を低下させることにより、作製した複合体を生体内へ投与した際の、融合タンパク質と微粒子との遊離に伴う、複合体の有効量の低下や、病変部位以外からのノイズ（バックグラウンド）の上昇を回避することが可能になると考えられる。また、作製した複合体の保存安定性も向上するため、長期間の保存が可能になると考えられる。

（微粒子の種類）
本発明の微粒子としては酸化鉄微粒子、金微粒子、金ナノロッド、白金、銀などの金属や金属酸化物の微粒子など種々の微粒子を利用することができる。その中で特に酸化鉄微粒子が最も好ましい。

（微粒子の表面）
微粒子の表面にはシステインのチオール基と結合可能な分子もしくは化学基等があればよく、特に限定しない。本発明においては、微粒子の表面に官能基を有することが好ましい。また、前記官能基を購入してもよく、前記微粒子表面の分子もしくは化学基を変換させ、前記官能基とすることもできる。システインのチオール基と結合可能な官能基としては、マレイミド基、ヨードアセトアミド（iodoacetamide）基など種々の官能基を利用することができる。例えば、アミノ基を表面に有する酸化鉄微粒子Ｎａｎｏｍａｇ（登録商標、コアフロント社の製品）と、アミノ基をマレイミド基へ変換可能なN-(4-マレイミドブチリルオキシ)スクシンイミド（N-（4-Maleimidobutyryloxy）succinimide、同仁化学研究所の製品）を利用することで、マレイミド基を有する酸化鉄微粒子を作製することができる。

（第二実施形態）
本発明のタンパク質と微粒子との複合体の製造方法は、システインを２個以上有するリンカーを導入した融合タンパク質を作製する工程と前記融合タンパク質と前記微粒子とを混合する工程とを有する。

ここで、システインを２個以上有するリンカーを導入した融合タンパク質を作製する工程は、融合タンパク質を作製する従来の方法を用いることができ、特に限定されない。本発明では、細胞内におけるタンパク質生成メカニズムに従って融合タンパク質を生成することが好ましい。例えば、前記タンパク質のアミノ酸配列のＣ末端に、システインを２個以上有するリンカーのアミノ酸配列を結合させ、結合したアミノ酸配列をコードする遺伝子配列を生成し、タンパク質生成メカニズムに従って微生物などを用いて作製することが挙げられる。また、このような方法で融合タンパク質を生成する場合には、前記アミノ酸配列などのほかに、必要とする酵素などの成分は従来技術に従えばよく、ここでは、特に限定しない。

また、前記融合タンパク質と前記微粒子とを混合する工程について、まず、前記融合タンパク質にジチオトレイトールやトリ（２−カルボキシエチル）ホスフィン塩酸塩（ＴＣＥＰ）などの還元剤を添加しジスルフィド結合を切断する。ここで添加する還元剤の量は、前記融合タンパク質の量に対し、１：数十のモル量であることが好ましく、特に１：１０〜１：２０のモル量であることが好ましい。
次いで、ジスルフィド結合が切断された前記融合タンパク質と前記微粒子とを混合し、結合させる。その後、限外ろ過などにより前記微粒子に結合しなかった融合タンパク質及び融合タンパク質以外のタンパク質を除去することで、本発明のタンパク質と微粒子との複合体を得る。
ここで、得られる本発明のタンパク質と微粒子との複合体の収量及び保存安定性を確保するために前記融合タンパク質と前記微粒子との混合モル比は４：１であることが好ましい。

本発明のタンパク質と微粒子との複合体の製造方法で用いる、リンカー、タンパク質そして微粒子等は、前記で定義したものを用いることができる。

以下に、本発明の特徴をさらに明らかにするために実施例に沿って本発明を説明するが、本発明に用いるタンパク質の種類、システインを２個以上有するリンカーの種類や導入位置、微粒子の種類、それらの組み合わせは他の組み合わせを用いることも可能であり、本発明はこの実施例によって制限されるものではない。

（実施例１）
（一本鎖抗体の作製）
システインを１個有するリンカーを有する一本鎖抗体（ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１）をコードする遺伝子と、システインを２個有するリンカーを有する一本鎖抗体（ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２）をコードする遺伝子とをそれぞれ作製した。なお、前記ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１は、ＨＥＲ２へ結合する免疫グロブリンＧの可変領域を基とする一本鎖抗体のＣ末端に、タンパク質精製のためのヒスチジンが６個連続したタグ配列（以下「６ｘＨｉｓタグ」とする）、グリシン２個、システイン一個の順になっている。前記ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２は、そのＣ末端に、アラニン３個、ＣｙｓＧｌｙＧｌｙＧｌｙＧｌｙＳｅｒＣｙｓ、ロイシン、グルタミン酸、そして６ｘＨｉｓタグの順になっている。

前記ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１をコードする遺伝子と、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２をコードする遺伝子をＴ７プロモーターの下流に挿入したプラスミドpET-22b（+）（Novagen社の製品）を大腸菌（Escherichia coli BL21 （DE3））に導入し、発現用菌株を得た。得られた菌株を４ｍｌのＬＢ−Ａｍｐ培地で８時間程度前培養後、全量を２５０ｍｌの２ｘＹＴ培地に添加し、２８度、１２０ｒｐｍで一晩（十数時間程度）振とう培養した。

次いで、終濃度１ｍＭのイソプロピル-β-チオガラクトピラノシドを添加し、２８℃で一晩培養した。培養した大腸菌を８０００ｘｇ、３０分、４℃で遠心分離し、その上清の培養液を回収した。得られた培養液に６０重量％の硫酸アンモニウムを添加し、塩析によりタンパク質を沈殿させた。塩析操作した溶液を４℃で一晩静置後、８０００ｘｇ、３０分、４℃で遠心分離することで沈殿物を回収した。得られた沈殿物を１Ｌの透析バッファー（２０ｍＭのＴｒｉｓ・ＨＣｌ／５００ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ＝８）を用いて透析した。透析後のタンパク質溶液を、Ｈｉｓ・Ｂｉｎｄ（登録商標）Ｒｅｓｉｎ（Ｎｏｖａｇｅｎ社の製品）を充填したカラムへ添加し、Ｎｉイオンを介した金属キレートアフィニティークロマトグラフィーによって精製した。精製したｓｃＦｖは共に、還元剤ジチオトレイトールを添加したＳＤＳ−ＰＡＧＥによりシングルバンドを示し分子量は共に約２８ｋＤａであることを確認した（図２）。また、還元剤を添加しない場合にはｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１では約５６ｋＤａの二量体のバンドを確認できるのに対し、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２では二量体のバンドは確認できなかった（図２）。以上より、システインを２個導入することにより、二量体の形成をほぼ抑えられる（二量体はほとんど形成されない）ことを確認した。

（実施例２）
（ｓｃＦｖと酸化鉄微粒子の複合体の作製）
上記で調製したｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１と、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２とを５ｍＭのＥＤＴＡを含むリン酸バッファー（２．６８ｍＭのＫＣｌ／１３７ｍＭのＮａＣｌ／１．４７ｍＭのＫＨ_２ＰＯ_４／１ｍＭのＮａ_２ＨＰＯ_４／５ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ７．４）にバッファー置換した。その後、１０倍モル量のトリ（２−カルボキシエチル）ホスフィン塩酸塩（ＴＣＥＰ）によって、２５℃で約２時間、還元処理した。この還元処理したｓｃＦｖを、２５℃で約２時間、４分の１倍モル量のマレイミドで表面修飾されたＰＥＧ３００を含む粒径２０ｎｍの酸化鉄微粒子Ｎａｎｏｍａｇ−Ｄ−ＳＰＩＯ（コアフロント社の製品）と反応させた。反応後、１００ｋＤａのポアサイズのアミコンウルトラ−４（日本ミリポア社の製品）を用いた限外ろ過により酸化鉄微粒子へ結合しなかったｓｃＦｖを除去して、ｓｃＦｖと酸化鉄微粒子の複合体を得た。

（ゲルろ過による収量の評価）
上記で得られたｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１と酸化鉄微粒子との複合体、及びｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２と酸化鉄微粒子との複合体をそれぞれＳｕｐｅｒｄｅｘ２００ＧＬ１０／３００カラム（ＧＥヘルスケア株式会社の製品）を用いてゲルろ過クロマトグラフィーに供し、それぞれの酸化鉄微粒子が４９０ｎｍでの吸光度のピーク面積を比較した。その結果、図３に示すように、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２と酸化鉄微粒子との複合体では、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１と酸化鉄微粒子との複合体と比較して、ピーク面積が増大したことを確認できた。よって、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ２と酸化鉄微粒子との複合体は、ｓｃＦｖ−Ｃｙｓ１と酸化鉄微粒子との複合体と比較して、得られる複合体の収量が約２倍に向上した。

本発明の複合体は、病変部位、及び病変マーカーを検出するための体内診断薬として利用可能である。例えば、抗体と酸化鉄微粒子の複合体はＭＲＩ用の体内診断剤として利用可能である。その他、微粒子に抗癌剤などの薬物を導入することで、病変部位へ薬物を送達することも可能である。

Claims (5)

1. タンパク質と、微粒子と、前記タンパク質と前記微粒子とを連結するリンカーとからなる複合体であって、前記リンカーはシステインを２個以上有することを特徴とする複合体。
   
2. 前記タンパク質が一本鎖抗体であることを特徴とする請求項１に記載の複合体。
   
3. 前記微粒子が酸化鉄微粒子であることを特徴とする請求項１または２に記載の複合体。
   
4. 前記リンカーがアミノ酸配列CysGlyGlyGlyGlySerCysを有することを特徴とする請求項１乃至３のいずれかに記載の複合体。
   
5. システインを２個以上有するリンカーを導入した融合タンパク質を作製する工程と、
   前記システインで結合したジスルフィド結合を還元剤で切断する工程と、
   前記融合タンパク質と微粒子とを混合する工程と
   を有することを特徴とする、請求項１に記載の複合体の製造方法。