JP2005535562A - 抗Ｃ５ａＲ抗体及びその使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、かつ診断及び治療方法に有用な抗体に関する。本発明の抗体は、Ｃ５ａＲのＮ末端ドメイン以外の細胞外ループと反応するものであり、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合、及び好中球走化因子受容体活性化の機能的な結果（functional consequence）を実質的に低減又は阻害しうる。

Description

本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、かつ診断方法及び治療方法に有用な抗体に関する。

補体タンパク質Ｃ３〜Ｃ５の各々がタンパク質分解すると、アナフィラトキシンと呼ばれるシグナル伝達分子を有するアミノ末端カチオン性断片が生じる（６〜９）。これらの中で最も強力なＣ５ａは最も広範な反応を誘導する。白血球の辺縁趨向（margination）及び浸潤、顆粒結合タンパク質分解酵素の放出、活性酸素及び窒素誘導ラジカルの生成、血流及び毛細管漏出の変化、ならびに平滑筋の収縮能力などの炎症反応の要素を考えれば、Ｃ５ａ分子は「完全な」前炎症媒介因子である。ナノモル以下からナノモルのレベルでは、Ｃ５ａ分子は、すべての骨髄性細胞系（好中球、好酸球及び好塩基球、マクロファージ及び単球）の走化性を誘導し、また、プロスタグランジンによって有意に増強される血管透過性と白血球循環を引き起こす。ナノモル濃度が高くなると、顆粒消失とＮＡＤＰＨオキシダーゼの活性化が誘導される。生物活性のこの範囲は、他の炎症媒介因子とは対照的である。Ｃ５ａは、慢性関節リウマチ、乾癬、敗血症、再潅流傷害及び成人型呼吸窮迫症候群の発症に関与するとされている［１、２］。

このＣ５ａの活性は、Ｃ５ａがその受容体（Ｃ５ａＲ）に結合することによって媒介されている。Ｃ５ａＲは、７回膜貫通型のＧタンパク質共役型受容体のファミリーに属している。Ｃ５ａＲは、Ｋｄが約１ｎＭ以下のＣ５ａに対する高親和性受容体であり、白血球をはじめとする多数の異なる細胞型にある。細胞１個当たりの受容体の数は、白血球当たり最大２００，０００部位と非常に多い。この受容体の生物学的活性化は、結合が飽和する範囲を上回って起こる。

Ｃ５ａＲは伸長されたＮ末端細胞外ドメインを含んでいる。この大型のＮ末端ドメインは、ＩＬ−８及びｆＭｅｔ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ（ＦＭＬＰ）受容体ファミリーをはじめとするペプチドと結合する、Ｇタンパク質共役型受容体に特有である。Ｃ５ａＲ構造は７回膜貫通型の受容体ファミリーに同じであり、細胞外Ｎ末端を有し、その後に細胞内ループ及び細胞外ループとして交互に並んでいる相互螺旋形ドメインでつながっている７回膜貫通型ヘリックスが続き、細胞内Ｃ末端ドメインで終止する。

Ｃ５ａＲアンタゴニストによりＣ５ａ応答が阻害されると、他の補体成分に影響を及ぼすことなく、Ｃ５ａによって媒介される急性炎症反応が低減されるはずである。この目的に対して、Ｃ５ａＲペプチドアンタゴニスト及び抗Ｃ５ａ受容体抗体がこれまでに報告されている［３−７］。例えば、ＷＯ９５／００１６４号には、Ｃ５ａ受容体のＮ末端ペプチド（残基９〜２９）に対する抗体が記載されている。しかし、目下、さらに改変かつ／又は改良されたＣ５ａＲアンタゴニストが求められている。

本発明者らはここに、Ｎ末端ドメイン以外のＣ５ａＲの領域と反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を阻害するのに非常に有効である新規なモノクローナル抗体を開発した。これらのモノクローナル抗体は、７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４と命名されている。

したがって、本発明の一態様では、Ｎ末端ドメイン以外の１又は複数のＣ５ａＲの細胞外ループと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

「細胞外ループ」とは、Ｃ５ａＲの第１の細胞外ループ（残基９５〜１１０）、第２の細胞外ループ（残基１７５〜２０６）、又は第３の細胞外ループ（残基２６５〜２８３）を意味する。

好ましい一実施形態では、抗体は、Ｃ５ａＲの第２の細胞外ループ（残基１７５〜２０６）を含むエピトープと反応するものである。

別の態様では、本発明は、モノクローナル抗体７Ｆ３と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

別の態様では、本発明は、モノクローナル抗体６Ｃ１２と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

別の態様では、本発明は、モノクローナル抗体１２Ｄ４と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

別の態様では、本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、Ｃ５ａＲへのモノクローナル抗体７Ｆ３の結合を競合的に阻害する抗体を提供する。

別の態様では、本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、Ｃ５ａＲへのモノクローナル抗体６Ｃ１２の結合を競合的に阻害する抗体を提供する。

別の態様では、本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、Ｃ５ａＲへのモノクローナル抗体１２Ｄ４の結合を競合的に阻害する抗体を提供する。

本発明のこれらの態様の好ましい実施形態では、この比較（comparative）結合特異性は、Ｃ５ａＲ、又はＣ５ａＲの細胞外ループを含むポリペプチドの存在下における抗体−抗体競合アッセイによって決定される。

また別の態様では、本発明は、配列番号１９及び配列番号２１にそれぞれ示される軽鎖配列及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

また別の態様では、本発明は、配列番号２６、配列番号２７又は配列番号２８にそれぞれ示される可変重鎖配列ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

また好ましい態様では、前記抗体は、配列番号２６、配列番号２７及び配列番号２８にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つ、より好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

さらなる好ましい実施形態では、前記抗体は、配列番号１９に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含む。好ましくは、前記抗体は、配列番号１９に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも２つ、さらに好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

さらに別の態様では、本発明は、配列番号１５及び配列番号１７にそれぞれ示される軽鎖配列及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、配列番号２９、配列番号３０又は配列番号３１にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同一である少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

好ましい態様では、前記抗体は、配列番号２９、配列番号３０及び配列番号３１にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つ、より好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

さらなる好ましい実施形態では、前記抗体は、配列番号１５に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含む。好ましくは、前記抗体は、配列番号１５に示す可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも２つ、さらに好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

さらに別の態様では、本発明は、配列番号２３及び配列番号２５にそれぞれ示される軽鎖配列及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、配列番号３２、配列番号３３又は配列番号３４にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同一である少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体を提供する。

好ましい態様では、前記抗体は、配列番号３２、配列番号３３及び配列番号３４にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つ、より好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

さらなる好ましい実施形態では、前記抗体は、配列番号２３に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含む。好ましくは、前記抗体は、配列番号２３に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２にり実質的に特定される少なくとも２つ、さらに好ましくは少なくとも３つのＣＤＲループ配列を含む。

本発明の好ましい実施形態では、Ｃ５ａＲはヒトＣ５ａＲである。

本発明の一実施形態では、本抗体はさらに他の好中球走化因子、特にＣＸＣＲ１及びＣＸＣＲ２リガンド、例えばＩＬ−８などによる好中球の活性化をも阻害する。

本発明の好ましい一実施形態では、抗体はモノクローナル抗体又は組換え型抗体である。好ましくは、モノクローナル抗体又は組換え抗体は、キメラ抗体又はヒト化抗体である。

また、抗体は任意のアイソタイプであってよい。しかし、本発明のさらなる好ましい実施形態では、抗体はクラスＩｇＧ２ａ抗体又はクラスＩｇＧ３抗体である。

本発明の別の好ましい実施形態では、抗体は、モノクローナル抗体７Ｆ３、モノクローナル抗体６Ｃ１２及びモノクローナル抗体１２Ｄ４からなる群より選択されるモノクローナル抗体である。

さらなる態様では、本発明はＥＣＡＣＣに受託番号００１１０６０９として寄託されているハイブリドーマを提供する。

さらなる態様では、本発明はＥＣＡＣＣに受託番号０２０９０２２６として寄託されているハイブリドーマを提供する。

さらなる態様では、本発明はＥＣＡＣＣに受託番号０２０９０２２７として寄託されているハイブリドーマを提供する。

本発明の抗体の種々の化学的誘導体もまた得ることができることが理解されうる。例えば、放射性同位体又は他のトレーサー分子などの標識に結合された本発明の抗体からなる免疫複合体は、当技術分野で周知の技術によって調製することができる。あるいは、本抗体は、抗体の結合特異性によってその所望の作用部位を標的とする治療上有用な分子と結合していてもよい。

したがって、さらに別の態様では、本発明は、本発明の抗体と治療剤とを含む複合体を提供する。

一連の治療剤が本発明の趣旨の中で用いられ得ることは明らかであろう。好ましい治療剤としては、細胞死又はタンパク質不活性化を媒介する薬剤が挙げられる。治療剤は当技術分野で周知である数多くのトキシンのいずれであってもよい。このトキシンは、シュードモナスエキソトキシン又はその誘導体であってよい。好ましい実施形態では、トキシンはＰＥ４０である。

さらに別の態様では、本発明は、本発明の抗体及び検出用標識を含む複合体を提供する。

検出用標識は当技術分野で周知の任意の好適な標識であってよい。例えば、標識は、放射性標識、蛍光標識、酵素標識又は造影剤であってよい。

さらに別の態様では、本発明は、本発明の抗体をコードする配列を含む、単離された核酸分子を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、本発明の抗体及び薬学的に許容される担体を含む組成物を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、細胞を本発明の抗体に暴露することを含む、Ｃ５ａＲを担持する細胞とそのリガンドとの相互作用を阻害する方法を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、細胞においてＣ５ａＲ活性を阻害する方法であって、該細胞を本発明の抗体に暴露することを含む、上記方法を提供する。

さらに別の態様では、本発明は、被験体における好中球の移動（遊走）に関する疾患の治療方法であって、該被験体に本発明の抗体を投与することを含む、上記方法を提供する。

本発明の抗体を用いてＣ５ａＲを発現する細胞を検出し、定量し、かつ／又は位置を確定することができるということは当業者には明らかであろう。

したがって、さらなる態様では、本発明は、被験体における好中球の移動に関する疾患の診断方法であって、該被験体から得られたサンプルと本発明の複合体とを接触させるステップ、及び該複合体とサンプルとの免疫特異的結合を検出するステップを含む、上記方法を提供する。

この診断方法では種々のイムノアッセイを用いることができる。かかるイムノアッセイとしては、ラジオイムノアッセイ、ＥＬＩＳＡ、「サンドイッチ」イムノアッセイ、沈降反応、ゲル拡散沈降反応、免疫拡散アッセイ、凝集アッセイ、補体結合アッセイ、イムノラジオメトリックアッセイ、蛍光イムノアッセイなどの技術を用いた競合的及び非競合的定量法が挙げられる。また、ｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイ及びｉｎ ｖｉｖｏアッセイの両方を用いることができる。

被験体から得られたサンプルには、すべての体液、例えば、末梢血、血漿、リンパ液、腹水、脳脊髄液、又は胸膜液、あるいはすべての体組織が含まれ得る。ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける結合では、組織又は液体の組織学的標本又は細分画を用いて行うことができる。ｉｎ ｖｉｖｏにおける結合では、免疫特異的結合を検出可能なように当技術分野で周知の任意の手段によって複合体を投与すること（静脈内、腹腔内、筋肉内など）により達成することができる。

さらに、画像処理技術を用いることができるが、この場合、第１の態様の抗体が好適な画像標識に結合している。この標識抗体はｉｎ ｖｉｖｏにおいて投与され、被験体におけるＣ５ａＲの局在化を検出することができる。

したがって、さらなる態様では、本発明は、被験体における好中球の移動に関する疾患の診断方法であって、該被験体において抗体とＣ５ａＲ提示細胞との複合体が形成されるような条件下にて、被験体に造影剤で標識した本発明の抗体を投与するステップ、及び該複合体を画像化するステップを含む、上記方法を提供する。

本発明の好ましい一実施形態では、好中球の移動が関与する疾患は、Ｃ５ａＲ媒介による疾患である。好ましくは、疾患は免疫病理学的疾患である。

さらなる態様では、本発明は、治療剤を被験体の炎症部位に送達する方法であって、該被験体に本発明の複合体を投与するステップを含む、上記方法を提供する。

さらなる態様では、本発明は、Ｃ５ａＲを提示する細胞に遺伝物質を導入する方法であって、該細胞と本発明の抗体とを接触させるステップを含み、該抗体が遺伝物質と結合又は会合されているものである、上記方法を提供する。

好ましい実施形態では、Ｃ５ａＲを提示する細胞は、顆粒球、白血球（例えば、単球、マクロファージ、好塩基球及び好酸球）、肥満細胞及びリンパ球（Ｔ細胞を含む）、樹状細胞、ならびに非骨髄性細胞（例えば、内皮細胞及び平滑筋細胞）からなる群より選択される。

さらに、本発明には、哺乳動物のＣ５ａＲ機能の阻害剤及び／又は促進剤をはじめとする、Ｃ５ａＲと結合する追加のリガンド又は他の物質を同定する方法が含まれる。例えば、本発明の抗体又はその機能的なフラグメントと同一又は類似の結合特異性を有する薬剤は、前記抗体又はフラグメントとの競合アッセイによって同定することができる。したがって、本発明はまた、受容体機能の阻害剤（例えば、アンタゴニスト）又は促進剤（例えば、アゴニスト）をはじめとする、Ｃ５ａＲと結合するリガンド又は他の物質を同定する方法をも含む。一実施形態では、Ｃ５ａＲを天然で発現する細胞、又はＣ５ａＲを発現するように操作された好適な宿主細胞、又は前記細胞へ導入された核酸によってコードされている変異体は、リガンドの効果、受容体機能の阻害剤又は促進剤を同定し、評価するためのアッセイで用いられる。さらに、かかる細胞は、発現された受容体タンパク質又はポリペプチドの機能を評価するのにも有用である。

配列リスト情報
配列番号１ ヒトＣ５ａＲタンパク質配列
配列番号２ ６Ｃ１２可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号３ ６Ｃ１２可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号４ ６Ｃ１２可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号５ ６Ｃ１２可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号６ ７Ｆ３可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号７ ７Ｆ３可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号８ ７Ｆ３可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号９ ７Ｆ３可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号１０ １２Ｄ４可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号１１ １２Ｄ４可変軽鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号１２ １２Ｄ４可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号１３ １２Ｄ４可変重鎖用のＰＣＲプライマー
配列番号１４ ６Ｃ１２可変軽鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号１５ ６Ｃ１２可変軽鎖（タンパク質）配列
配列番号１６ ６Ｃ１２可変重鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号１７ ６Ｃ１２可変軽鎖（タンパク質）配列
配列番号１８ ７Ｆ３可変軽鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号１９ ７Ｆ３可変軽鎖（タンパク質）配列
配列番号２０ ７Ｆ３可変重鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号２１ ７Ｆ３可変軽鎖（タンパク質）配列
配列番号２２ １２Ｄ４可変軽鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号２３ １２Ｄ４可変軽鎖（タンパク質）配列
配列番号２４ １２Ｄ４可変重鎖（ＤＮＡ）配列
配列番号２５ １２Ｄ４可変重鎖（タンパク質）配列
配列番号２６ ７Ｆ３可変重鎖ＣＤＲ１ループ
配列番号２７ ７Ｆ３可変重鎖ＣＤＲ２ループ
配列番号２８ ７Ｆ３可変重鎖ＣＤＲ３ループ
配列番号２９ ６Ｃ１２可変重鎖ＣＤＲ１ループ
配列番号３０ ６Ｃ１２可変重鎖ＣＤＲ２ループ
配列番号３１ ６Ｃ１２可変重鎖ＣＤＲ３ループ
配列番号３２ １２Ｄ４可変重鎖ＣＤＲ１ループ
配列番号３３ １２Ｄ４可変重鎖ＣＤＲ２ループ
配列番号３４ １２Ｄ４可変重鎖ＣＤＲ３ループ

Ｃ５ａＲ構造
ヒトＣ５ａＲのアミノ酸配列は配列番号１に示す。
このヒトＣ５ａＲの各種ドメインは以下のように定義する：
アミノ酸１−３７ 細胞外ドメインＮ末端
アミノ酸３８−６１ 膜貫通ドメイン
アミノ酸６２−７１ 細胞内ドメイン
アミノ酸７２−９４ 膜貫通ドメイン
アミノ酸９５−１１０ 細胞外ドメイン−細胞外ループ１
アミノ酸１１１−１３２ 膜貫通ドメイン
アミノ酸１３３−１４９ 細胞内ドメイン
アミノ酸１５０−１７４ 膜貫通ドメイン
アミノ酸１７５−２０６ 細胞外ドメイン−細胞外ループ２
アミノ酸２０７−２２７ 膜貫通ドメイン
アミノ酸２２８−２４２ 細胞内ドメイン
アミノ酸２４３−２６４ 膜貫通ドメイン
アミノ酸２６５−２８３ 細胞外ドメイン−細胞外ループ３
アミノ酸２８４−３０７ 膜貫通ドメイン
アミノ酸３０８−３５０ 細胞内ドメイン−Ｃ末端
微生物寄託の説明
７Ｆ３と呼称するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、ＥＣＡＣＣに２０００年１１月６日付けで受託番号００１１０６０９として寄託された。
６Ｃ１２（６Ｃ１２ Ｍ１２）と呼称するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、ＥＣＡＣＣに２００２年９月２日付けで受託番号０２０９０２２６として寄託された。
１２Ｄ４（１２Ｄ４−Ｐ９）と呼称するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、ＥＣＡＣＣに２００２年９月２日付けで受託番号０２０９０２２７として寄託された。

これらの寄託物は、特許手続上の微生物の寄託の国際承認に関するブダペスト条約の条項及びその下位の規則に従って行った。これにより、寄託の日から３０年間にわたり生存培養の維持が保証される。この生物体は、関係する特許の発行時に培養物の後代を一般に安定的かつ無制限的に利用できることを保証する、ブダペスト条約の条項に基づいてＥＣＡＣＣから入手することができる。

本出願の譲受人は、好適な条件下で培養した場合に万一寄託培養物が死滅又は喪失又は破壊されることがあれば、届けを出して、それと同じ培養物の生存可能な標本と速やかに取り替えることに合意している。なお、寄託株の入手は、その国の特許法に従ってすべての政府の権限のもとに許可した権利の抵触に関して、本発明を実施するための特許使用権として解釈されるものではない。

モノクローナル抗体及び組換え抗体
７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４と呼称するＣ５ａＲに特異的なマウスモノクローナル抗体は、本明細書に記載されているとおり、本発明者らによって得られたものである。驚いたことに、これらのモノクローナル抗体（Ｍａｂ）は、Ｃ５ａＲへのＣ５ａの結合を実質的に又は完全に遮断することができる。特に、モノクローナル抗体７Ｆ３は完全に中和するものである。

他の周知の抗Ｃ５ａＲ抗体とは対照的に、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４は、Ｎ末端領域以外のＣ５ａＲの領域と反応する。モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４は、主として、Ｃ５ａＲの第２の細胞外ループ（残基１７５〜２０６）と反応すると考えられる。例えば、モノクローナル抗体１２Ｄ４のＣ５ａＲとの反応性は、第２の細胞外ループ残基１８１及び１９２がチロシンからフェニルアラニンへ突然変異することによってほとんど完全に消失する。この阻害は、Ｃ５ａＲ突然変異体Ｌ２−ＦＦをはじめとする結合試験において確認されている（Farzan et al.、J.Exp.Med.、193:1059-1065、2001）。

この細胞外ループ及びＮ末端ドメインの類似するコンホメーション及び近接性を考えると、モノクローナル抗体は、他の細胞外ループ又はＮ末端ドメインの１つの領域にさらに同時に結合してもよい。

さらに、驚いたことに、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４は、他の走化因子リガンドによる好中球活性化を阻害し得ることが確認された。これらの他の走化因子リガンドの例としては、ＣＸＣＲ１及びＣＸＣＲ２リガンドであるＩＬ−８、ＥＮＡ−７８及びＧＰＣ−２が挙げられる。異なる走化因子受容体の機能を阻害するというこの能力によって、他の周知の抗Ｃ５ａＲ分子を超えた、珍しくかつ予期しない利点が得られる。特に、複数の好中球走化因子受容体の機能を阻害し得る抗Ｃ５ａＲ分子は、免疫病理学的疾患の治療において非常に有効な治療剤となるであろう。

一態様では、本発明は、細胞外ループ（好ましくは、Ｃ５ａＲの第２の細胞外ループ）に単独で又は他のループもしくはドメインと共に結合する抗体を提供する。好ましい態様では、本発明は、Ｃ５ａＲに結合し、かつモノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２又は１２Ｄ４のうちのいずれか１種のエピトープ特異性と同一又は類似の特異性を有する抗体を提供する。

本発明で使用する「抗体」という用語には、完全な分子ならびにそのフラグメント、例えば、エピトープ決定基と結合し得るＦａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、及びＦｖなどが含まれる。これらの抗体フラグメントは、その抗原又は受容体と選択的に結合するある能力を保持し、以下のように定義される：
（１）Ｆａｂ、抗体分子の１価抗原結合性フラグメントを含有するこのフラグメントは、酵素パパインにより全抗体を消化することによって生成され、完全な軽鎖と１本の重鎖の一部が得られる
（２）Ｆａｂ’、抗体分子のこのフラグメントは、ペプシンで完全抗体を処理し、続いて還元することにより得られ、完全な軽鎖と重鎖の一部が得られる。抗体一分子当たり２個のＦａｂ’フラグメントが得られる
（３）（Ｆａｂ’）２、抗体のこのフラグメントは、酵素ペプシンで完全抗体を処理するが、その後還元を行わないことにより得られる。Ｆ（ａｂ）２は、２個のジスルフィド結合により互いに結合されている２個のＦａｂ’フラグメントからなる二量体である
（４）Ｆｖ、２本の鎖として発現される軽鎖の可変領域及び重鎖の可変領域を含有する遺伝子組換えフラグメントとして定義される
（５）一本鎖抗体（「ＳＣＡ」）、遺伝学的に結合された一本鎖分子としての、好適なポリペプチドリンカーによって結合されている軽鎖の可変領域及び重鎖の可変領域を含有する遺伝子組換え分子として定義される。

これらのフラグメントを作製する方法は当技術分野で周知である。（例えば、Harlow and Lane、Antibodies:A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratory、New York(1988)を参照されたい。なお、これは引用により本明細書に援用するものとする）。

本発明で使用する「エピトープ」という用語は、抗体のパラトープが結合する抗原上のすべての抗原決定基を意味する。エピトープの決定基は、通常、化学的に活性である、アミノ酸又は糖側鎖などの分子の表面の集合からなり、通常、特異的な三次元構造特性と比電荷特性を有している。

本発明の抗体は、Ｃ５ｓＲ発現細胞、完全なＣ５ａＲ、又は免疫抗原として１以上の細胞外ループを含有するフラグメントを用いて調製することができる。動物を免疫するために用いられるペプチドは、ｃＤＮＡの翻訳又は化学合成由来であり得る。また、所望ならば、精製し、担体タンパク質に結合させることができる。ペプチドに化学的に結合される一般に用いられているかかる担体としては、キーホールリンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）、チログロブリン、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）及び破傷風トキソイドが挙げられる。次いで、この結合ペプチドは、動物（例えば、マウス又はウサギ）を免疫するために用いることができる。

さらに、所望ならば、ポリクローナル抗体を、例えば、抗体が得られたペプチドを結合したマトリックスに結合させ、そこから溶出させることによって、さらに精製することができる。

当業者には、ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体の精製及び／又は濃縮に関する免疫学分野において一般的な種々の技術は周知である（例えば、Coligan,et al.、Unit 9、Current Protocols in Immunology、Wiley Interscience、1991を参照されたい。なお、これは引用により本明細書に援用するものとする）。

モノクローナル抗体は、培養における連続継代細胞系による抗体分子の作製を提供するすべての技術、例えば、ハイブリドーマ技術、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術、及びＥＢＶハイブリドーマ技術を用いて調製することができる（Kohler et al.Nature 256、495-497、1975;Kozbor et al.、J.Immunol.Methods 81、31-42、1985;Cote et al.、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80、2026-2030、1983;Cole et al.、Mol.Cell Biol.62、109-120、1984）。

当技術分野で周知の方法により、Ｃ５ａＲ細胞外ループに対して結合性を示す抗体を抗体発現ライブラリーから同定、単離することができる。例えば、Ｃ５ａＲ細胞外ループに対して結合性を示す抗体結合ドメインの同定及び分離方法は、バクテリオファージベクター系である。このベクター系は、大腸菌におけるマウス抗体レパートリー由来の（Huse,et al.、Science、246:1275-1281、1989）、及びヒト抗体レパートリー由来の（Mullinax,et al.、Proc.Nat.Acad.Sci.、87:8095-8099、1990）Ｆａｂフラグメントのコンビナトリアルライブラリーを発現させるために用いられている。また、この方法は、予め選択したリガンドに対して結合性のあるモノクローナル抗体を発現するハイブリドーマ細胞系にも適用することができる。所望のモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマは、当技術分野において通常の技術を有する者によって十分に理解されている技術を用いる種々の方法で産生することができるが、ここでは繰り返さない。これらの技術の詳細は、Monoclonal Antibodies-Hybridomas:A New Dimension in Biological Analysis、Edited by Roger H.Kennett,et al.、Plenum Press、1980;及び米国特許第４，１７２，１２４号などの文献に記載されている。なお、これらは参照により本明細書に援用する。

さらに、「ヒト化」抗体の種々の組み合わせによりキメラ抗体分子を産生する方法は、当技術分野で周知であり、ヒト定常領域とマウス可変領域との組み合わせ（Cabily,et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA、81:3273、1984）、又はヒトフレームワーク上にマウス抗体相補性決定領域（ＣＤＲ）を結合させること（Riechmann,et al.、Nature 332:323、1988）が含まれる。

さらに、本発明は、本発明の抗Ｃ５ａＲ抗体のキメラ抗体又はその生物学的活性フラグメントを提供する。本明細書では、「キメラ抗体」という用語は、ある種に由来する抗体の可変領域が別の種に由来する抗体の定常領域と組み合わされている抗体を意味するか、あるいはＣＤＲ移植抗体を意味する。キメラ抗体は組換ＤＮＡ技術によって構築されるが、それは例えば、Shaw,et al.、J.Immun.、138:4534(1987);Sun,LK.,et al.、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、84:214-218(1987)に記載されている。

移植ＣＤＲ及びキメラ抗体は、上に記載されている抗体又は生物学的活性抗体フラグメントのいずれかを用いて得ることができる。「ＣＤＲ」又は「相補性決定領域」又は「超可変領域」は、抗原結合部位の形成に寄与する三次元ループ構造を形成する、抗体の軽鎖及び重鎖のアミノ酸配列として定義する。

本明細書では、「ＣＤＲ移植」抗体とは、少なくとも軽鎖及び／又は可変ドメインの１以上のＣＤＲ配列の少なくとも一部が、所与の抗原又は受容体に対して異なる結合特異性を有する抗体由来のＣＤＲ配列の類似部分で置換されているアミノ酸配列を有する抗体を意味する。

「軽鎖可変領域」及び「重鎖可変領域」という用語は、各抗体についての可変一次アミノ酸配列を有する軽鎖及び重鎖のＮ末端部分の領域又はドメインをそれぞれ意味する。抗体の可変領域は、抗体に三次元的結合部位を形成するために互いに折り重なるような、軽鎖と重鎖のアミノ末端ドメインからなる。

類似ＣＤＲ配列は、基質（substrate）又は宿主抗体上に「移植された」と称する。「ドナー」抗体はＣＤＲ配列を提供する抗体である。また、置換配列を受け取る抗体は「基質」抗体である。当業者は、当技術分野でよく知られている方法（Borrebaeck,C.A.、Antibody Engineering:A Practical Guide、W.H.Freeman and Company、New York、1992を参照されたい。なお、これは引用により本明細書に援用する）と組み合わせ、本明細書に提示した技術を用いて、これらのＣＤＲ移植抗体を容易に得ることができる。

また、本発明は、本発明のモノクローナル抗体を産生する細胞系を提供する。本発明のモノクローナル抗体を産生する細胞系の単離は、目的のモノクローナル抗体の素反応パターンを検出可能なルーチンのスクリーニング技術を用いて行うことができる。したがって、試験しているモノクローナル抗体がＣ５ａＲと結合し、Ｃ５ａが媒介する生物活性を阻害する場合、そのとき、試験しているモノクローナル抗体と本発明の細胞系により産生されたモノクローナル抗体は同等である。

モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２又は１２Ｄ４のエピトープ特異性と同一又は類似の特異性を有する抗体は、Ｃ５ａＲ（例えば、Ｃ５ａＲ含有（担持）細胞、例えば、Ｃ５ａＲ含有トランスフェクタント、単球、樹状細胞、マクロファージ及び好塩基球など）への結合に対して、その特定のモノクローナル抗体と競合する能力により同定することができる。また、受容体キメラ（Rucker et al.、Cell 87:437-446(1996)）又は当業者に周知の他の技術を用いて、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２又は１２Ｄ４のうちの任意の１つの結合部位をマッピングしてもよい。

さらに、モノクローナル抗体が本発明のモノクローナル抗体と同一の特異性を有しているかどうかについて、後者がＣ５ａＲ細胞外ループを含むペプチドに結合するのを前者が阻害するかどうか確認することにより、過度の実験を行うことなく決定することができる。試験対象のモノクローナル抗体が本発明のモノクローナル抗体と競合する場合、本発明のモノクローナル抗体による結合に低下が見られると、それら２種類のモノクローナル抗体は、同一エピトープか、あるいは近縁関係にあるエピトープと結合する。

さらに、モノクローナル抗体が本発明のモノクローナル抗体の特異性を有しているかどうかを検出する別の方法は、試験対象のモノクローナル抗体を、その抗体が反応すると推定されるペプチドと予めインキュベートし、次いで、本発明のモノクローナル抗体がそのペプチドと結合する能力が阻害されるかどうかを検出するために、本発明のモノクローナル抗体を添加することである。その際、本発明のモノクローナル抗体が阻害された場合には、試験しているモノクローナル抗体は本発明のモノクローナル抗体と同一であるか、あるいは機能的に同等なエピトープ特異性をおそらく有している。また、本発明のモノクローナル抗体のスクリーニングは、好適なペプチドを利用し、モノクローナル抗体がＣ５ａＲへのＣ５ａの結合を阻害するかどうかを検出することにより実施することができる。

本発明のモノクローナル抗体を用いることにより、抗体が本発明のモノクローナル抗体と同一の結合特異性を有しているかどうかを同定するためのモノクローナル抗体のスクリーニングに利用可能な、抗イディオタイプ抗体を産生することが可能である。また、これらの抗体は免疫目的に用いることも可能である（Herlyn,et al.、Science、232:100、1986）。かかる抗イディオタイプ抗体は、よく知られているハイブリドーマ技術を用いて得ることができる（Kohler and Milstein、Nature、256:495、1975）。抗イディオタイプ抗体は、目的の細胞系によって産生されたモノクローナル抗体上に存在する特有の決定基を認識する抗体である。これらの決定基は抗体の超可変領域に位置する。一定のエピトープに結合し、したがって、抗体の特異性に寄与するのはこの領域（パラトープ）である。抗イディオタイプ抗体は、目的のモノクローナル抗体で動物を免疫することにより調製することができる。免疫した動物は、免疫抗体のイディオタイプ決定基を認識して応答し、かつこれらのイディオタイプ決定基の抗体を産生する。免疫動物の抗イディオタイプ抗体（第２の動物の免疫に用いられた細胞系により産生され、本発明のモノクローナル抗体に特異的である）を用いることによって、免疫に用いるハイブリドーマの抗体と同一イディオタイプを有する他のクローンを同定することが可能である。２つの細胞系のモノクローナル抗体間におけるイディオタイプの相同性により、２つのモノクローナル抗体が、同一のエピトープ決定基の認識に関して同じであるということが証明される。したがって、抗イディオタイプ抗体を用いることによって、同一のエピトープ特異性を有するモノクローナル抗体を発現する別のハイブリドーマを同定することができる。

さらに、エピトープを模倣するモノクローナル抗体を産生するために、抗イディオタイプ技術を用いることが可能である。例えば、第１のモノクローナル抗体に対して作製された抗イディオタイプモノクローナル抗体は、第１のモノクローナル抗体によって結合されるエピトープの「イメージ（ｉｍａｇｅ）」である超可変領域中の結合ドメインを有する。したがって、抗イディオタイプモノクローナル抗体結合ドメインは抗原として効果的に作用するので、抗イディオタイプモノクローナル抗体は免疫化に用いることができる。

本発明のモノクローナル抗体のうち任意の１つのエピトープ結合部位を含有する抗体フラグメントは、周知の技術によって得ることができる。例えば、好適な抗体フラグメントは、最初に寄託ハイブリドーマからモノクローナル抗体７Ｆ３を得るステップと、それから超可変領域を得るために抗体を処理する（例えば、タンパク分解消化による）ステップによって得ることができる。

あるいは、超可変領域をコードするＤＮＡは、好適な宿主中で、本明細書に記載されているような標準の組換ＤＮＡ方法を用いてクローニングすることができる。

本発明の好ましい抗体は、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２又は１２Ｄ４のものと実質的に同一である１以上のＣＤＲループ又は可変領域を含む。配列表に示した可変領域又はＣＤＲループは、本発明での使用において改変され得ることは理解されよう。典型的には、改変は、配列の結合特異性を保持するように行われる。例えば、保存的置換は、抗体の結合特異性に影響を及ぼすことなく行われる。したがって、一実施形態では、例えばアミノ酸置換は、改変した配列が同一の結合特異性を実質的に保持する条件で、１個、２個又は３個から１０個、２０個又は３０個の置換を実施することができる。しかし、別の実施形態では、本発明の抗体のアミノ酸配列への改変は、抗体の生物活性を低減するように意図的に実施することができる。例えば、Ｃ５ａＲに対する結合を保持し続けることはできるが、機能的エフェクタードメインを欠失している改変抗体は、Ｃ５ａＲの生物活性の阻害剤として有用であり得る。

また、アミノ酸置換には、例えば、治療上投与される抗体の血漿半減期を高める非天然類似体の使用も含まれる。

一般に、配列表に示す、対応する可変領域又はＣＤＲループと比較して変異体又は誘導体の２０％、１０％又は５％未満のアミノ酸残基が改変されているのが好ましい。

本発明においては、配列表に示した可変領域のうちの１つに「実質的に同じ」である配列には、少なくとも２０個、好ましくは少なくとも５０個のアミノ酸にわたり、アミノ酸レベルで、その可変領域と少なくとも８０％、８５％、又は９０％の同一性、好ましくは少なくとも９５％又は９８％の同一性を有するアミノ酸配列が含まれ得る。一般に、相同性は、非必須の近隣配列よりもむしろ結合特異性について不可欠であることが知られている配列のそれらの可変領域に関して考慮されるべきである。

相同性比較は目視によって、あるいは、通常、容易に利用することができる配列比較プラグラムを活用して行うことができる。これらの市販のコンピュータプログラムは、２つ以上の配列間の％相同性を計算することができる。

％相同性は、連続する配列にわたって計算することができる。すなわち、１つの配列を別の配列と並べて、１つの配列中の各アミノ酸は、一度に、別の配列中の対応するアミノ酸（１残基）と直接比較する。これは「ギャップなし（ungapped）」アライメントと呼ばれている。典型的には、かかるギャップなしアライメントは、比較的短い数の残基（例えば、５０個未満の連続アミノ酸）についてのみ行われる。

これは非常に簡単で一貫性のある方法であるが、この方法には、例えば、他の同一ペアの配列中、１個の挿入又は欠失がアラインメントからはずれるように後続のアミノ酸残基に生じており、その結果、全体的なアライメントを実施した際に％相同性に大幅な低下が生じる可能性があることが考慮されていない。したがって、ほとんどの配列比較法は、全体にわたる相同性スコアに過度に不利益をもたらすことなく、挿入及び欠失の可能性を考慮した最適のアライメントが得られるように作製されている。これは、配列アライメントに「ギャップ」を挿入し、局所的（local）ホモロジーを最大限にしようとすることにより達成される。

ほとんどのアライメントプログラムは、ギャップペナルティーが変更可能である。しかし、かかるソフトウェアを配列比較に用いる場合、デフォルト値を用いることが好ましい。例えば、ＧＣＧ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｂｅｓｔｆｉｔパッケージ（以下を参照）を用いる場合、アミノ酸配列用のデフォルトギャップペナルティーは、ギャップについては−１２、各伸張については−４である。

したがって、最大％相同性の計算は、まず最適のアライメントを得て、次いでギャップペナルティーを考慮することが必要である。かかるアライメントを実施するのに好適なコンピュータプログラムは、ＧＣＧ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｂｅｓｔｆｉｔパッケージである（University of Wisconsin、U.S.A.;Devereux et al.、1984、Nucleic Acids Research 12:387）。配列比較を行うことができるそれ以外のソフトウェアの例としては、これらに限定されるものではないが、ＢＬＡＳＴパッケージ（Ausubel et al.、1999 前掲 - Chapter 18を参照）、ＦＡＳＴＡ（Atschul et al.、1990、J.Mol.Biol.、403-410）、及び比較ツールのＧＥＮＥＷＯＲＫＳ一式が挙げられる。ＢＬＡＳＴとＦＡＳＴＡはともにオフライン及びオンライン検索が利用可能である（Ausubel et al.、1999、前掲、p.7-58〜p.7-60を参照）。しかし、ＧＣＧ Ｂｅｓｔｆｉｔプログラムを用いるのが好ましい。

同一性の点から最終の％相同性を測定することができるが、アライメント方法それ自体は、通常、オールオアナッシングのペア比較に基づくものではない。代わりに、化学的類似性又は進化距離に基づいた個々のペアワイズ比較についてスコアが割り当てられる、縮小（scaled）類似性スコアマトリックスが一般に用いられる。一般に用いられるかかるマトリックスの例は、ＢＬＯＳＵＭ６２マトリックス−プログラムのＢＬＡＳＴ一式に対するデフォルトマトリックスである。ＧＣＧ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎプログラムは、もし提供されれば、公式デフォルト値又はカスタムシンボル比較表のいずれかを通常用いる（その他の詳細に関してはユーザーマニュアルを参照）。ＧＣＧパッケージに対して、又は他のソフトウェアの場合には公式デフォルト値、ＢＬＯＳＵＭ６２などのデフォルトマトリックスを用いるのが好ましい。

一度ソフトウェアによって最適のアライメントが得られたならば、％相同性（好ましくは％配列同一性）を計算することができる。通常、ソフトウェアは配列比較の一部としてこれを行い、数値結果を算出する。

抗体のヒト化
本発明の抗体は、ヒト化抗体、すなわち、ヒト抗体の含量を最大限にし、一方、マウス抗体の可変領域による結合能がほとんどあるいは全く生じない、分子モデリング技術によって作製された抗体であることが好ましい。したがって、一実施形態では、本発明は、ヒトフレームワーク領域のアミノ酸配列と、ヒト抗体由来の定常領域のアミノ酸配列とを含み、７Ｆ３、６Ｃ１２又は１２Ｄ４などのマウスモノクローナル抗体由来の超可変領域をヒト化又は非免疫原性とするキメラ抗体を提供する。

下に記載されている方法は、種々の動物抗体のヒト化に適用可能である。（ａ）ヒトフレームワークとしてヒト化に用いられるヒト抗体配列を選択するステップと、（ｂ）選択されたヒトフレームワークへの挿入に対して動物モノクローナル抗体のどの可変領域残基を選択すべきかについて決定するステップとを含む、ツーステップ手法を採用することができる。

第１のステップは、配列情報が利用可能である最良に利用可能なヒトフレームワーク配列の選択が含まれる。この選別過程は以下の選択基準に基づく。

（１）パーセント同一性
ヒト化される動物モノクローナル抗体の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域の配列は、アライメントを行って配列比較されるのが好適であり、好ましくは、すべての既知のヒト抗体重鎖可変領域配列及び軽鎖可変領域配列と比較する。

したがって、一度配列を比較すれば、残基の同一性に着目し、パーセント同一性を決定する。他のすべての因子が等しい場合、動物抗体と最も高いパーセント同一性を有するヒト抗体を選択するのが望ましい。

（２）配列不確定性
次いで、周知のヒト抗体鎖配列について、未確認の残基及び／又は不確定性の存在を評価する。前記不確定性は配列不確実性である。最も多く共通するかかる不確実性は、シーケンシング法の実施時にアンモニアが消失することによりアミドアミノ酸についての酸性アミノ酸の同定に誤りが生じるものであり、例えば、タンパク質中に実際に存在する残基がグルタミン残基であった場合の、グルタミン酸残基の同定における誤りである。他のすべての因子が等しい場合、かかる不確定性をほとんど持たないヒト抗体鎖をできるだけ選択することが望ましい。

（３）ピン領域間隔（Pin-region Spacing）
抗体鎖可変領域は、ドメイン内ジスルフィド架橋を有している。これらの架橋を含むシステイン残基間の距離（残基数）をピン領域間隔と称する［Chothia et al、J.Mol.Biol.196:901(1987)］。他のすべての因子が等しい場合、選択するヒト抗体のピン領域間隔は、動物抗体のものに類似しているか、又は同じであることが最も望ましい。さらに、コンピュータモデリングを容易にするために、ヒト配列のピン領域間隔が、公知の抗体の三次元構造のものに類似していることが望ましい。

先の基準に基づいた、総合的に最良である望ましい特性の組み合わせを有する１種又は複数のヒト抗体は、動物抗体のヒト化におけるフレームワークとして選択される。選択した重鎖及び軽鎖は、同一の又は異なるヒト抗体由来のものであってよい。

本発明のこの方法の第２のステップは、ヒトフレームワークへ移植するために動物抗体可変領域配列のどれを選択すべきかを決定することを含んでいる。この選択過程は以下の選択基準に基づく。

（１）残基選択
２種類のタイプの潜在的可変領域残基を動物抗体配列で評価する。そのうちの第１の残基は「最小残基（minimal residues）」と呼ばれる。これらの最小限の残基は、ＣＤＲ構造ループと、コンピュータモデリングによって示した場合に、ＣＤＲ構造ループを支え、かつ／又は配列させるのに必要な任意の追加残基とを含む。

別のタイプの可能性のある可変領域残基は「最大残基（maximal residues）」と呼ばれる。最大残基は、最小残基と、コンピュータモデリングによって判定した場合に、ＣＤＲ構造ループ残基の約１０Åの範囲内に入り、かつ水溶媒接触可能表面を保持するすべての追加残基とを含む［Lee et al、J.Biol.Chem.55:379(1971)］。

（２）コンピュータモデリング
潜在的可変領域残基を同定するために、（ａ）ヒト化しようとする動物抗体の可変領域配列、（ｂ）選択したヒト抗体フレームワーク配列、ならびに（ｃ）種々の最小及び最大動物抗体残基が移植されているヒト抗体フレームワーク配列を含むすべての可能性ある組換え抗体において実施した。

コンピュータモデリングは、タンパク質モデリングに好適なソフトウェアと、（ａ）動物抗体とほとんど同一の可変領域アミノ酸配列を有し、かつ（ｂ）既知の三次元構造を有している抗体から得られた構造の情報とを用いて行われる。使用可能なソフトウェアの例としては、ＳＹＢＹＬ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ Ｍｏｄｕｌｅソフトウエア（Tripos Associates）がある。構造の情報を取得可能な抗体はヒト抗体であってよいが、必ずしもヒト抗体である必要はない。

先の解析で得られた結果に基づき、ヒト化に関して、ほとんど動物抗体に近いコンピュータモデルリング構造をもたらす動物可変領域を含有する組換え鎖を選択する。

抗体アイソタイプ
ある状況下では、ある種のアイソタイプのモノクローナル抗体は、それらの診断又は治療効果の点で他の抗体の効果よりも好適であり得る。例えば、抗体媒介性細胞溶解に関する研究から、ガンマ−２ａ及びガンマ−３アイソタイプの未改変マウスモノクローナル抗体は、一般に、ガンマ−１アイソタイプの抗体よりも標的細胞を溶解するのに有効であることが知られている。この効果の差異は、ガンマ−２ａ及びガンマ−３アイソタイプが、より活性的に標的細胞の細胞溶解による破壊に関与する能力を有することに基づいていると考えられる。モノクローナル抗体の特定のアイソタイプは、クラススイッチ変異体を単離するための同胞選抜技術を用いることにより、異なるアイソタイプのモノクローナル抗体を分泌する親ハイブリドーマから二次的に調製することができる（Steplewski,et al.、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,82:8653, 1985；Spira,et al.、J.Immunol.Methods, 74:307, 1984）。したがって、本発明のモノクローナル抗体には、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４のうちのいずれか１種の特異性を有するクラススイッチ変異体が含まれ得る。

ｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイ
本発明のモノクローナル抗体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける使用、例えば、抗体を液相中で利用し得る、あるいは固相単体に結合し得るイムノアッセイに好適である。本抗体は、サンプル中のＣ５ａＲの濃度をモニターするのに有用であり得る。同様に、抗イディオタイプ抗体は、サンプル中のＣ５ａの濃度を測定するのに有用である。さらに、これらのイムノアッセイにおけるモノクローナル抗体は、検出可能なように種々の方法で標識することができる。本発明のモノクローナル抗体を利用可能なイムノアッセイのタイプの例としては、直接又は間接形式の競合イムノアッセイ及び非競合イムノアッセイがある。かかるイムノアッセイの例としては、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）及びサンドイッチ（免疫定量）アッセイである。本発明のモノクローナル抗体を用いる抗原の検出は、前モード、逆モード、又は同時モードのいずれかで行うイムノアッセイを利用して実施することができ、例えば生理学的サンプルについての免疫組織化学的アッセイが含まれる。当業者は、過度な実験を行うことなく、他のイムノアッセイ形式が分かり、あるいは容易に理解することができる。

本発明の抗体は多数の異なる担体に結合させ、Ｃ５ａＲの存在を検出するために用いることができる。周知の担体の例としては、ガラス、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリエチレン、デキストラン、ナイロン、アミラーゼ、天然セルロース及び加工セルロース、ポリアクリルアミド、アガロースならびにマグネタイトが挙げられる。この担体の性質は、本発明の目的においては可溶性であっても不溶性であってもよい。当業者には、モノクローナル抗体に結合するのに好適な他の担体は周知であり、ルーチンの実験により、かかる抗体を確認することができるであろう。

一実施形態では、Ｃ５ａＲを天然で発現する細胞、あるいはＣ５ａＲ又はこれらの変異体をコードする組換え核酸配列を含む細胞を本発明の結合アッセイで用いる。これらの細胞は、受容体の発現に適当な条件下で維持する。これらの細胞は、結合に好適な条件下（例えば、好適な結合バッファー中）で抗体又はフラグメントと接触させ、次いで結合を標準技術により検出する。結合を判定するには、結合の程度を好適な対照と比較して（例えば、抗体の不在下で測定されたバックグラウンドとの比較、二次抗体（すなわち基準抗体）の結合との比較、トランスフェクトされていない細胞に対する抗体の結合との比較）、検出することができる。受容体を含有する細胞画分（例えば、細胞膜画分）、又は受容体を含むリポソームは、細胞全体の代わりとして用いることができる。

また、結合阻害アッセイは、Ｃ５ａＲと結合し、かつＣ５ａＲ又は機能的変異体へのＣ５ａの結合を阻害する抗体又はそれらのフラグメントを同定するために用いることができる。例えば、抗体の不在下におけるＣ５ａの結合と比較して、（抗体の存在下における）Ｃ５ａの結合の低下を検出又は測定する結合アッセイを行うことができる。単離され、かつ／又は組換えられた哺乳動物Ｃ５ａＲ又はその機能的変異体を含む組成物は、Ｃ５ａ及び抗体と、同時に又は交互に、いずれかの順で接触させることができる。抗体の存在下におけるリガンドの結合程度の低下は、抗体による結合の阻害を示す。例えば、リガンドの結合は、減少するか、あるいは無くなり得る。

Ｃ５ａＲと結合する抗体の存在を同定する別の方法は、他の好適な結合アッセイ、又はシグナル伝達機能及び／又は細胞応答の刺激（例えば、白血球の輸送）をはじめとする、受容体結合が引き金となって起きる現象をモニターする方法などが利用可能である。さらに、このようにして同定される抗体は、結合の後に、それらの抗体がＣ５ａＲの他の機能を阻害するように作用するかどうかを判定し、かつ／又はそれらの治療の有用性を判断するために評価され得る。

シグナル伝達アッセイ
Ｃ５ａＲへリガンド又は促進剤（例えば、アゴニスト）が結合すると、Ｇタンパク質共役型受容体によるシグナル伝達が生じ、他の細胞内シグナル伝達分子と同様にＧタンパク質の活性を刺激する。化合物（例えば、抗体又はそのフラグメント）によるシグナル伝達機能の誘導は、すべての好適な方法を用いてモニターすることができる。かかるアッセイを用いてＣ５ａＲの抗体アゴニストを同定することができる。抗体又はその機能的フラグメントの阻害活性は、アッセイでリガンド又は促進剤を用い、リガンド又は促進剤によって誘導された活性を阻害する抗体の能力を評価することにより判定することができる。

Ｇタンパク質活性（例えば、ＧＴＰのＧＤＰへの加水分解）、又は受容体結合が引き金となって起きる遅発性シグナル伝達現象（例えば、細胞内（細胞質）遊離カルシウム濃度の迅速かつ一過性増加の誘導）は、当技術分野で周知の方法、又は他の好適な方法によって分析することができる（例えば、Neote,K.et al.、Cell、72:415-425,1993;Van Riper et al.、J.Exp.Med.、177:851-856、1993;Dahinden,C.A.et al.、J.Exp.Med.、179:751-756、1994を参照）。

例えば、ハイブリッドＧタンパク質共役型受容体を用いるSledziewskiらの機能アッセイは、リガンド又は促進剤が受容体と結合し、Ｇタンパク質を活性化する能力をモニターするために用いることができる（Sledziewski et al.、米国特許第５，２８４，７４６号）。

かかるアッセイは、評価しようとする抗体又はそのフラグメントの存在下で実施することができ、抗体又はフラグメントがリガンド又は促進剤によって誘導される活性を阻害する能力は、周知の方法及び／又は本明細書に記載されている方法を用いて検出される。

走化性及び細胞刺激のアッセイ
また、走化性アッセイは、Ｃ５ａＲへのリガンドの結合を遮断し、かつ／又は受容体へのリガンドの結合に関する機能を阻害する抗体又はその機能的フラグメントの能力を評価するために用いることができる。これらのアッセイは、化合物によって誘導されたｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏにおける細胞の機能的移動（遊走）に基づいている。走化性は、すべての好適な手段によって、例えば、９６ウェル走化性プレートを利用するアッセイ、又は走化性評価のための他の当技術分野で理解されている方法を用いるアッセイにおいて、評価することができる。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける経内皮走化性アッセイの使用は、Springer et al.によって記載されている（Springer et al.、ＷＯ９４／２０１４２、１９９４年９月１５日発行；さらにBerman et al.、Immunol.Invest.17:625-677(1988)を参照）。また、内皮を通過するコラーゲンゲルへの移動（遊走）も記載されている（Kavanaugh et al.、J.Immunol.、146:4149-4156(1991)）。マウスＬ１−２前駆Ｂ細胞の安定したトランスフェクタント、又は走化性能力のある他の好適な宿主細胞の安定なトランスフェクタントは、走化性アッセイに用いることができる。

一般に、走化性アッセイは、好適な細胞（白血球など（例えば、リンパ球、好酸球、好塩基球））が、バリアー（例えば内皮、フィルター）の中へ、又はバリアーを介して、化合物の上昇した濃度の方へ、バリアーの表面から反対の裏面へ、指向性運動又は移動（遊走）するのをモニターする。膜又はフィルターは、好適な細胞が、フィルターの中へ、又はフィルターを介して、化合物の上昇した濃度の方へ、フィルターの表面から反対の裏面へ、指向性運動又は遊走するのをモニターするために都合のよいバリアーを提供する。あるアッセイでは、膜は、例えば、ＩＣＡＭ−１、フィブロネクチン又はコラーゲンなどの接着を促進するための物質で被覆される。かかるアッセイは、白血球「ホーミング」のｉｎ ｖｉｔｒｏにおける近似値を提供する。

例えば、好適な容器（含有手段）中、第１のチャンバーから微小孔性膜に入って、又は微小孔性膜を介して、試験しようとする抗体を含有し、かつその膜によって第１のチャンバーと区別されている第２のチャンバーへ細胞が移動（遊走）するのを阻害することを検出又は測定することができる。例えば、ニトロセルロース、ポリカーボネートをはじめとする、化合物に応答した特定の遊走をモニターするのに好適な細孔径を有する好適な膜を選択する。例えば、約３〜８ミクロン、好ましくは約５〜８ミクロンの細孔径を用いることができる。細孔径は、フィルター上で、又は一連の好適な細孔径内で均一となり得る。

遊走及び遊走の阻害を評価するために、フィルター内への遊走距離、フィルターを通過し、フィルターの裏面への接着が保たれている細胞数、及び／又は第２のチャンバー内に蓄積する細胞数を標準の技術（例えば、顕微鏡使用）を用いて判定することができる。一実施形態では、細胞は、検出可能な標識（例えば放射性同位体、蛍光標識、抗原又はエピトープ標識）で標識されており、かつ移動（遊走）は、抗体又はフラグメントの存在下及び不在下で適当な方法を用いて、膜へ接着している、及び／又は第２のチャンバー内に含まれる標識の存在を検出することによって（例えば放射活性、蛍光、イムノアッセイの検出によって）、評価することができる。抗体アゴニストによって誘導される遊走の程度は、好適な対照と比較（例えば、抗体の不在下において検出されるバックグラウンド遊走との比較、第２の化合物（すなわち基準）によって誘導される遊走の程度の比較、抗体によって誘導されるトランスフェクトされていない細胞の遊走との比較）を行い検出することができる。一実施形態では、特に、Ｃ５ａＲを発現する細胞、Ｔ細胞又は単球に対して、経内皮の遊走をモニターすることができる。この実施形態において、内皮細胞層を通過した遊出（transmigration）を評価する。細胞層を調製するために、内皮細胞は、内皮細胞の接着を促進するために、コラーゲン、フィブロネクチン又は他の細胞外マトリックスタンパク質などの物質で被覆されていてもよい、微小孔性フィルター又は膜上で培養することができる。好ましくは、コンフルエントな単分子層を形成するまで内皮細胞を培養する。種々の哺乳動物内皮細胞は、ヒト臍静脈内皮細胞（Clonetics Corp、San Diego、Calif.）などの、例えば、静脈内皮、動脈内皮又は微小血管内皮をはじめとする単分子層の形成に利用可能である。特定の哺乳動物受容体に応じた走化性を分析するには、同一の哺乳動物の内皮細胞が好ましいが、しかし異種の哺乳動物の種又は属由来の内皮細胞を用いることもできる。

一般に、このアッセイは、細胞が、化合物の上昇した濃度の方向へ、膜又はフィルターの中へ、あるいは膜又はフィルターを介して、フィルターの表面からフィルターの反対の裏面に向かって指向性遊走するのを検出することにより行う。なお、この場合、フィルターは表面上に内皮細胞層を含有している。指向性遊走は、表面に隣接している領域から、膜の中へ、又は膜を介して、フィルターの反対側に位置する化合物の方へ起こる。裏面に隣接している領域に存在する化合物の濃度は、表面に隣接している領域に存在する濃度よりも高い。

一実施形態では、抗体阻害剤についての試験に用いる場合、遊走可能であり、かつ、Ｃ５ａＲを発現する細胞を含む組成物を第１のチャンバー内に置くことができる。第１のチャンバー内で細胞の走化性を誘導することができる１種又は複数のリガンド又は促進剤を含む（走化因子機能を有している）組成物は、第２のチャンバー内に置く。好ましくは、第１のチャンバー内に細胞を置く直前又は同時に、第１のチャンバーに、被験抗体を含む組成物を置くことが好ましい。受容体と結合可能であり、このアッセイにおいてＣ５ａＲを発現する細胞の、リガンド又は促進剤による走化性の誘導を阻害することが可能な抗体又はその機能的フラグメントは、受容体機能の阻害剤（例えば、刺激的機能の阻害剤）である。抗体又はフラグメントの存在下においてリガンド又は促進剤によって誘導される遊走程度の低下は阻害活性を示す。個別の結合試験を行うことにより、阻害が、受容体に抗体が結合する結果であるかどうか、又は異なる機構によって生じるかどうかを決定することができる。

組織における化合物（例えば、ケモカイン又は抗体）の注入に対応した組織の白血球浸潤をモニターするｉｎ ｖｉｖｏアッセイは、後述している（炎症のモデルを参照）。これらのｉｎ ｖｉｖｏホーミングのモデルは、細胞が遊出によってリガンド又は促進剤に応答し、炎症の部位へ走化する能力を測定し、かつ抗体又はそのフラグメントがこの遊出を遮断する能力を評価する。

記載している方法の他に、Ｃ５ａＲの刺激的機能に対する抗体又はフラグメントの影響は、受容体を含有する好適な宿主細胞を用いて、活性受容体により誘導される細胞の応答をモニタリングすることによって評価することができる。

Ｃ５ａＲの追加のリガンド、阻害剤及び／又は促進剤の同定
本発明の抗体及びフラグメントの結合及び機能を評価するために用いることができる上に記載したアッセイは、Ｃ５ａＲと結合する追加のリガンド若しくは他の物質又はその機能的変異体、ならびにＣ５ａＲ機能の阻害剤及び／又は促進剤を同定するために改良することができる。例えば、本発明の抗体又はその機能的部分の結合特異性と同一又は類似の特異性を有する薬剤は、前記抗体又はその一部による競合アッセイにより同定することできる。したがって、さらに、本発明は、Ｃ５ａＲと結合する受容体のリガンド又は他の物質、ならびに受容体機能の阻害剤（例えばアンタゴニスト）又は促進剤（例えばアゴニスト）を同定する方法を含む。一実施形態では、Ｃ５ａＲタンパク質又はその機能的変異体を担持する細胞（例えば、細胞へ導入された核酸によってコードされている哺乳動物のＣ５ａＲタンパク質又は機能的変異体を発現するように遺伝子操作される白血球、細胞系又は好適な宿主細胞）は、受容体機能の阻害剤又は促進剤をはじめとする、受容体と結合するリガンド又は他の物質の効果を同定及び評価するためのアッセイにおいて用いられる。さらに、かかる細胞は、発現された受容体タンパク質又はポリペプチドの機能を評価するのに有用である。

本発明によれば、受容体と結合するリガンド及び他の物質、受容体機能の阻害剤及び促進剤は好適なアッセイで同定され、さらには治療効果についても評価することができる。受容体機能のアンタゴニストは受容体活性を阻害（低減又は阻止）するために用いることができ、リガンド及び／又はアゴニストは示した正常な受容体機能を誘導（誘発又は増強）するために用いることができる。したがって、本発明は、個体（例えば、哺乳動物）に受容体機能のアンタゴニストを投与することを含む、自己免疫性疾患及び移植片拒絶をはじめとする炎症性疾患を治療する方法を提供する。さらに、本発明は、新規なリガンド又は受容体機能のアゴニストを個体に投与することによって受容体機能を刺激する方法を提供し、これにより、例えば、感染症及び癌の治療において有用な白血球機能の選択的刺激に関する新規手法が得られる。

本明細書では、Ｃ５ａＲタンパク質の「リガンド」とは、哺乳動物のＣ５ａＲタンパク質に結合する特定クラスの物質を意味し、それには、天然リガンド、ならびに天然リガンドの合成形態及び／又は組換え形態が含まれる。好ましい実施形態では、高親和性を有するＣ５ａＲタンパク質のリガンド結合が生じる。

本明細書では、「アンタゴニスト」は、Ｃ５ａＲタンパク質の少なくとも１つの機能特性、例えば、結合活性（例えばリガンド結合、促進剤結合、抗体結合）、シグナル伝達活性（例えば、哺乳動物Ｇタンパク質の活性化、細胞質ゾルの遊離カルシウムの濃度の迅速かつ一過性上昇の誘導）、及び／又は細胞応答機能（例えば、走化性の刺激、細胞外放出又は白血球による炎症性媒介因子の放出）を阻害（低減又は阻止）する物質を意味する。アンタゴニストという用語には、受容体と結合する物質（例えば抗体、天然リガンドの突然変異体、分子量の小さい有機分子、リガンド結合の他の競合阻害剤）、ならびに受容体に結合することなく受容体機能を阻害する物質（例えば、抗イディオタイプ抗体）が含まれる。

本明細書では、「アゴニスト」とは、Ｃ５ａＲタンパク質の少なくとも１つの機能特性、例えば、結合活性（例えば、リガンド、結合阻害剤及び／又は促進剤）、シグナル伝達活性（例えば、哺乳動物Ｇタンパク質の活性化、細胞質ゾルの遊離カルシウムの濃度の迅速かつ一過性上昇）、及び／又は細胞応答機能（例えば、走化性の刺激、細胞外放出又は白血球による炎症性媒介因子放出）を促進（誘導、誘発、増強又は増大）する物質である。アゴニストという用語には、受容体と結合する物質（例えば抗体、他の種由来の天然リガンドの相同体）、ならびに受容体に結合することなく（例えば、関連のタンパク質を活性化することにより）受容体機能を促進する物質が含まれる。好ましい実施形態では、アゴニストは天然リガンドの相同体以外のものである。

したがって、さらに、本発明は、Ｃ５ａＲ又は機能的変異体と結合するリガンド、アンタゴニスト、アゴニスト、及び他の物質をはじめとする、Ｃ５ａＲと結合する薬剤、又はそのリガンド結合変異体を検出又は同定する方法に関する。本方法によれば、試験する薬剤、本発明の抗体又は抗原結合性フラグメント（例えば、７Ｆ３及びその抗体結合性フラグメントのエピトープ特異性と同一又は類似の特異性を有する抗体）、ならびにＣ５ａＲ又はそのリガンド結合変異体を含む組成物を組み合わせることができる。この先述の成分は、Ｃ５ａＲに対する抗体又は抗原結合性フラグメントの結合に好適な条件下で組み合わされ、本明細書に記載している方法又は他の好適な方法に従って、直接的又は間接的に、Ｃ５ａＲに対する抗体又はフラグメントの結合を検出又は測定する。好適な対照（例えば、試験する薬剤の不在下におけるもの）に対して形成された複合体の量が低下した場合、それは、その薬剤が前記受容体又は変異体と結合することを表している。Ｃ５ａＲを含む組成物は、組換えＣ５ａＲタンパク質又はそのリガンド結合変異体を担持する細胞の膜画分であってよい。抗体又はそのフラグメントは、放射性同位体、スピン標識、抗原又はエピトープ標識、酵素標識、蛍光性基及び化学発光性基などの標識により標識することができる。

炎症のモデル
治療剤としてｉｎ ｖｉｖｏにおける本発明の抗体及びフラグメントの効果を評価するために炎症のｉｎ ｖｉｖｏモデルを用いることができる。例えば、ケモカイン及びＣ５ａＲと反応する抗体又はそのフラグメントを好適な動物（例えば、ウサギ、マウス、ラット、モルモット又はアカゲザルなど）へ皮内注射した場合の白血球浸潤をモニターすることができる（例えば、Van Damme,J.et al.、J.Exp.Med.、176:59-65(1992)；Zachariae,C.O.C.et al.、J.Exp.Med.171:2177-2182(1990)；Jose,P.J.et al.、J.Exp.Med.179:881-887(1994)を参照）。一実施形態では、白血球（例えば、好酸球、顆粒球）の浸潤について皮膚生検を組織学的に評価する。別の実施形態では、走化能及び血管外遊走能のある標識細胞（例えば、Ｃ５ａＲを発現する、トランスフェクトした安定性のある細胞）を動物に投与する。評価する抗体又はフラグメントは、標識細胞を試験動物に投与する前後に、あるいは同時に投与することができる。阻害剤不在時の浸潤の程度と比較して抗体存在時の浸潤の程度が低減している場合、それは阻害を表している。

診断及び治療用途
本発明の抗体及びフラグメントは、研究、診断及び治療用途をはじめとする、種々の用途に有用である。一実施形態では、抗体は好適な標識（例えば、蛍光標識、化学発光標識、アイソトープ標識、抗原又はエピトープ標識、あるいは酵素標識）で標識する。例えば、それらは、受容体又はその部分を単離及び／又は精製し、かつ受容体構造（例えばコンホメーション）及び機能を研究するために用いることができる。

さらに、本発明の種々の抗体は、Ｃ５ａＲの検出に、あるいは、例えばＴ細胞（例えば、ＣＤ８＋細胞、ＣＤ４５ＲＯ＋細胞）、単球、及び／又は受容体遺伝子でトランスフェクトした細胞における受容体の発現の測定に用いることができる。したがって、本発明の種々の抗体は、さらに、診断又は研究目的における細胞選別（例えば、フローサイトメトリー、蛍光活性化細胞選別）などの用途において有用である。

本発明の抗Ｃ５ａＲ抗体は、診断用途において有用性がある。典型的には、診断アッセイでは、Ｃ５ａＲへ抗体又はそのフラグメントが結合することによって生じる複合体の形成を検出することが必要である。診断の目的においては、抗体又は抗原結合性フラグメントは標識されていても、未標識であってもよい。抗体又はフラグメントは直接的に標識することができる。種々の標識を用いることができ、放射性核種、蛍光剤、酵素、酵素基質、酵素補因子、酵素阻害剤及びリガンド（例えばビオチン、ハプテン）が挙げられるが、これに限定されるものではない。多数の適当なイムノアッセイが当業者には周知である（例えば、米国特許第３，８１７，８２７号、第３，８５０，７５２号、第３，９０１，６５４号及び第４，０９８，８７６号）。また、組織サンプルの免疫組織化学を本発明の診断法で用いることができる。未標識の場合、抗体又はフラグメントは、例えば、凝集アッセイなどの好適な手段を用いて検出することができる。また、未標識抗体又はフラグメントは、第１抗体（例えば、抗イディオタイプ抗体又は未標識免疫グロブリンに特異的な他の抗体）あるいは他の好適な試薬（例えば標識プロテインＡ）と反応する標識抗体（例えば、二次抗体）などの抗体を検出するために使用可能な別の（すなわち、１種又は複数の）好適な試薬と組み合わせて用いることができる。

また、生体サンプル中のＣ５ａＲタンパク質の存在の検出において使用するキットを調製することができる。かかるキットには、Ｃ５ａＲに結合する抗体又はその機能的フラグメント、ならびに抗体又はフラグメントとＣ５ａＲとの複合体の存在を検出するのに好適な１種又は複数の助剤が含まれる。本発明の抗体組成物は、凍結乾燥形態にて、単独で又は他のエピトープに特異的な追加の抗体と組み合わせて提供することができる。抗体（標識抗体又は未標識抗体であってよい）は、添加剤成分（例えば、トリス、リン酸塩及び炭酸塩などのバッファー、安定剤、添加剤、殺菌剤及び／又は不活性タンパク質、例えば、ウシ血清アルブミン）とともにこのキットに含めることができる。例えば、抗体は添加剤成分とともに凍結乾燥混合物として提供することができる。あるいは、添加剤成分は、ユーザーが組み合わせるように別々に提供することができる。一般に、これらの添加剤原料は、活性抗体の量に対して約５重量％未満で存在し、通常、抗体濃度に対して少なくとも約０．００１重量％の総量で存在する。モノクローナル抗体に結合可能な二次抗体を用いる場合、かかる抗体はキットで、例えば個別のバイアル又は容器で提供することができる。所望により、二次抗体は一般には標識され、上に記載している抗体製剤と同様の方法で製剤化することができる。

同様に、また、本発明は、抗体又はフラグメントの結合に適当な条件下で、細胞又はその画分（例えば、細胞膜画分）を含む組成物をＣ５ａＲに結合する抗体又はその機能的フラグメントと接触させ、結合をモニターする、Ｃ５ａＲの発現を細胞により検出及び／又は定量する方法に関する。抗体の検出（抗体とＣ５ａＲとの複合体の形成を示す）は、受容体の存在を表す。抗体と細胞との結合は、例えば、先の標題「結合アッセイ」のところで記載されているようにして測定することができる。この方法は、個体由来の（例えば、血液、唾液又は他の好適なサンプルなどの体液のようなサンプル中の）細胞上のＣ５ａＲ発現の検出に用いることができる。また、Ｔ細胞又は単球表面上のＣ５ａＲの発現のレベルは、例えばフローサイトメトリーによって検出することが可能であり、その発現のレベル（例えば染色度）は疾患罹病性、進行又はリスクと関連し得る。

走化因子受容体は、身体の全体にわたる（特に炎症性部位への）白血球の移動（遊走）に関して機能する。炎症細胞の脈管構造からの遊出は、白血球及び内皮細胞接着タンパク質並びに細胞特異的走化因子及び活性化因子の相互作用を含む３ステップの方法によって調節される（Springer,T.A.、Cell、76:301-314(1994);Butcher,E.C.、Cell、67:1033-1036(1991);Butcher,E.C.and Picker,L.J.、Science(Wash.D.C.)、272:60-66(1996)）。これらは以下のとおりである：（ａ）白血球選択と内皮細胞炭水化物の間の低親和性相互作用；（ｂ）白血球走化因子受容体と走化因子／活性化因子の間の高親和性相互作用；（ｃ）白血球インテグリンと免疫グロブリンスーパーファミリーの内皮細胞接着タンパク質の間の強固な結合。異なる白血球サブセットは、セレクチン、走化因子受容体及びインテグリンの異なるレパートリーを発現する。さらに、炎症は、内皮接着タンパク質の発現と走化因子及び白血球活性化因子の発現を変化させる。その結果、脈管外部位への白血球補充の選択性を調節することに関してはかなりの多様性がある。第２のステップは、白血球走化因子受容体の活性化が、セレクチンが媒介する細胞ローリングからインテグリンが媒介する強固結合への変化を引き起こすと考えられ、重要である。これによって、血管周囲の部位へ移動する状態にある白血球が得られる。さらに、走化因子／走化因子受容体相互作用は、組織内の経内皮遊走及び局在化に重要である（Campbell,J.J.,et al.、J.Cell Biol.、134:255-266(1996)；Carr,M.W.,et al.、Immunity、4:179 187(1996)）。この遊走は、炎症性病巣方向に至る走化因子の濃度勾配により誘導される。

Ｃ５ａＲは、白血球輸送において重要な機能を有している。Ｃ５ａＲは、ある炎症性部位への好中球、好酸球、Ｔ細胞もしくはＴ細胞サブセット又は単球遊走に関する重要な走化因子受容体であり、それ故、抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体は、特に、再潅流傷害及び卒中などの好中球性組織損傷、自己免疫性疾患などのＴ細胞機能不全、又はアレルギー反応、又はアテローム性動脈硬化などの単球媒介性疾患に関連する白血球遊走を阻害（低減又は防止）するために用いることができる可能性がある。

したがって、さらに本発明の抗体及びそのフラグメントは、研究及び治療用途において受容体機能を調節するために用いることができる。例えば、本明細書に記載されている抗体及び機能的フラグメントは、阻害剤として、（ａ）受容体への結合（例えば、リガンド、阻害剤又は促進剤）、（ｂ）受容体シグナル伝達機能、及び／又は（ｃ）刺激機能、を阻害（低減又は阻止）するように作用し得る。受容体機能の阻害剤として作用する抗体は、（例えば、コンホメーション変化をもたらすことによって）直接又は間接的にリガンド又は促進剤の結合を遮断し得る。例えば、抗体は、リガンドの結合を阻害することによって、又は（リガンドの結合を伴った、あるいは伴わない）脱感作によって受容体機能を阻害し得る。さらに、受容体と結合する抗体は、例えば、受容体に結合した場合の受容体のシグナル伝達及び／又は刺激機能（例えば、白血球輸送）などのように、受容体機能のアゴニストとして、受容体機能を誘発又は刺激するように作用し得る。

したがって、本発明は、有効量の本発明の抗体又は機能的フラグメントを哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物（例えば、ヒト患者）中の白血球輸送を阻害する方法を提供する。さらに、本発明は、好塩基球からのヒスタミン放出、ならびに好酸球、好塩基球及び好中球からの顆粒放出など、Ｃ５ａＲ活性に関連する他の作用を阻害する方法を提供する。本発明の抗体又はフラグメントを投与することにより、疾患の状態を改善又は解消することができる。

また、本モノクローナル抗体を免疫病理学上関連のある疾患に対する免疫療法に用いることができる。本発明のモノクローナル抗体と共に本明細書で用いられる「免疫療法に」あるいは「免疫療法」という用語は、治療投与だけでなく予防投与も意味する。したがって、本モノクローナル抗体は、免疫病理学上の疾患の可能性及び／又は重篤度を低減させるためにハイリスクの患者に投与することが可能であり、あるいは、グラム陰性細菌感染が原因ですでに活性疾患（例えば、敗血症）の症状のある患者に投与することができる。

本抗体又はその機能的フラグメントは、アレルギー、アテローム発生、アナフィラキシー、悪性炎症、慢性炎症及び急性炎症、ヒスタミン及びＩｇＥを媒介とするアレルギー反応、ショック、及び慢性関節リウマチ、アテローム性動脈硬化、多発性硬化症、同種異系移植片拒絶反応、線維症疾患、喘息、炎症性糸球体症、あるいは、すべての免疫複合体関連疾患を治療するために用いることができる。

抗体又はその好適なフラグメントをはじめとするＣ５ａＲ受容体機能の阻害剤により治療可能なヒト又は他種の疾患又は症状には、これらに限定的されるものではないが、以下のものが挙げられる：
（ａ）炎症性又はアレルギー性疾患及び症状、例えば、呼吸器系アレルギー性疾患、例えば、喘息、アレルギー性鼻炎、過敏性肺疾患、過敏性肺炎、間質性肺疾患（ＩＬＤ）（例えば、特発性肺線維症、又は慢性関節リウマチを随伴するＩＬＤ、全身性紅斑性狼瘡、強直性脊椎炎、全身性硬化症、シェーグレン症候群、多発性筋炎又は皮膚筋炎）；アナフィラキシー又は過敏性応答、薬物アレルギー（例えば、ペニシリン、セファロスポリンに対するもの）、虫刺されによるアレルギー；クローン病及び潰瘍性大腸炎などの炎症性腸疾患；脊椎関節症；硬皮症；乾癬及び炎症性皮膚病、例えば、皮膚炎、湿疹、アトピー性皮膚炎、アレルギー性接触皮膚炎、蕁麻疹；脈管炎（例えば、壊死性脈管炎、皮膚血管炎及び過敏性血管炎）；
（ｂ）自己免疫性疾患、例えば、関節炎（例えば、慢性関節リウマチ、乾癬性関節炎）、多発性硬化症、全身性紅斑性狼瘡、重症筋無力症、若年性糖尿病、糸球体腎炎などの腎炎網膜炎、自己免疫性甲状腺炎、ベーチェット病；
（ｃ）移植片拒絶（例えば、移植時の）、例えば、同種異系移植片拒絶反応又は移植片対宿主疾患；
（ｄ）アテローム性動脈硬化；
（ｅ）皮膚又は器官の白血球浸潤のある癌；
（ｆ）他の疾患又は症状（Ｃ５ａＲを媒介とした疾患又は症状を含む）、この場合、これらに限定されるものではないが、再潅流傷害、卒中、成人型呼吸窮迫症候群、ある種の血液悪性腫瘍、サイトカイン誘導型毒性（例えば、敗血症性ショック、内毒素性ショック）、多発性筋炎、皮膚筋炎、天疱瘡様、アルツハイマー疾患、サルコイドーシスをはじめとする肉芽腫性疾患をはじめとする、阻害される不適当な炎症反応は治療することができる。

本発明の抗Ｃ５ａＲ抗体は、１種又は複数のリガンドの結合を遮断し、その結果、上記の疾患に至る１種又は複数の現象の下流カスケードを遮断することができる。

好ましい実施形態では、本発明の抗体は、敗血症、卒中又は成人型呼吸窮迫症候群の治療に用いられる。

抗体又はそのフラグメントをはじめとするＣ５ａＲ機能の促進剤により治療可能なヒト又は他種の疾患又は症状は、これらに限定されるものではないが、免疫抑制、例えば、免疫不全症候群（ＡＩＤＳなど）に罹患している個体における免疫抑制、免疫抑制を誘発する放射線治療、化学療法、自己免疫性疾患の治療又は他の薬物治療（例えば、コルチコステロイド治療）を受けている個体、ならびに受容体機能の先天性欠損又は他の原因による免疫抑制が挙げられる。

投与方法
本発明の免疫療法の方法は、免疫病理学上の疾患の発症の前（予防）又は後（治療）に、本発明の治療剤の注射又は注入により投与することを必要とする。

本発明の１種又は複数の抗体又はフラグメントは、適当な経路によって、単独で、あるいは別の医薬品又は薬剤と組み合わせて（前後に、又は同時に）個体に投与することができる。例えば、また本発明の抗体は、他のモノクローナル又はポリクローナル抗体と組み合わせて（例えば、これらに限定するものではないが、ＣＣＲ２及びＣＣＲ３をはじめとする、ケモカイン受容体を結合する抗体と組み合わせて）、あるいは抗ＴＮＦ抗炎症薬又は他の抗炎症薬と組み合わせて、あるいは例えば、予防又は治療の処置において使用されている市販のガンマグロブリン及び免疫グロブリン製品などの既存の血漿製品と組み合わせて用いることができる。本発明の抗体又はフラグメントは、抗生物質及び／又は抗菌剤と共に用いられる、個別投与の組成物として用いることができる。

有効量の抗体又はフラグメント（すなわち、１種又は複数の抗体又はフラグメント）が投与される。有効量とは、投与条件下で所望の治療効果（予防効果を含む）を達成するのに十分な量（例えば、Ｃ５ａＲ機能を阻害し、それにより炎症反応を阻害するのに十分な量）である。

種々の投与経路が利用可能であり、例えば、治療する疾患又は症状に基づいて、経口投与、食事による投与、局所投与、非経口投与（例えば、静脈内注射、動脈内注射、筋肉注射、皮下注射）、吸入投与（例えば、気管支内吸入、眼内吸入、鼻腔内吸入、又は経口吸入、鼻腔内滴下）が挙げられるが、これらに限定されるものではない。さらに、好適な他の投与方法には、再充填可能な器具又は生物分解性器具、及び徐放性ポリマー製器具が含まれる。また、本発明の医薬組成物は、他の薬剤との併用療法の一部として投与することができる。投与する抗体又はフラグメントの製剤化は、選択する投与経路及び剤形（例えば、溶液、エマルジョン、カプセル）により変わる。投与する抗体又はその機能的フラグメントを含む好適な医薬組成物は、生理学上許容可能なビヒクル又は担体中で製造することができる。抗体及び／又はフラグメントの混合物もまた用いることができる。溶液又はエマルジョンについては、好適な担体としては、例えば、生理食塩水及びバッファー媒体をはじめとする、水溶液又はアルコール／水溶液、エマルジョン又は懸濁液が挙げられる。非経口ビヒクルとしては、塩化ナトリウム溶液、リンガーデキストロース、デキストロース及び塩化ナトリウム、乳酸加リンガー溶液又は固定油が挙げられる。種々の好適な水溶性担体は当業者には周知であるが、水、緩衝水、緩衝生理食塩水、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、液体ポリエチレングリコール）、デキストロース溶液及びグリシンが挙げられる。静脈内ビヒクルとしては、種々の添加剤、防腐剤、又は液体、栄養補充剤もしくは電解質補充剤が挙げられる（一般には、Remington's Pharmaceutical Science、16th Edition、Mack、Ed.1980を参照されたい）。本組成物は、場合によっては、生理学的条件に近づけることが必要とされる場合に、ｐＨ調節及びバッファー及び毒性調節剤（例えば、酢酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム及び乳酸ナトリウム）などの製薬上許容可能な助剤を含有することができる。本発明の抗体及びフラグメントは、周知の凍結乾燥技術及び再構成技術に従って、保存用に凍結乾燥し、使用前に好適な担体中で再構成することができる。選択した媒体中の有効成分の最適濃度は、当業者によく知られている方法に従って経験的に決定することが可能であり、かつ所望する最終的医薬品によって決まる。吸入においては、抗体又はフラグメントを溶解させ、投与に好適なディスペンサー（例えば、アトマイザー、ネブライザー、又は気圧調節型エアロゾルディスペンサー）に充填することができる。

本発明のモノクローナル抗体を投与するための投与量範囲は、免疫病理学上の疾患の徴候が改善され、あるいは、感染の、又は免疫系の刺激に関する可能性が低減するといった、所望の効果を得るのに十分なそれらの最大量である。その用量は、ヒーペル粘度症候群、肺水腫、心不全徴候等の副作用が生じるほどの最大量であってはならない。一般に、用量は、患者の年齢、症状、性別、及び疾患の程度に応じて変更され、それは当業者により決定することが可能である。また、用量は、すべての併発症の場合において、各医師により調節することができる。用量は、１日又は数日間、毎日単回又は複数回投与で、約０．１ｍｇ／ｋｇから約３００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは約０．２ｍｇ／ｋｇから約２００ｍｇ／ｋｇ、最も好ましくは約０．５ｍｇ／ｋｇから約２０ｍｇ／ｋｇの範囲で変更することができる。

また、本発明の抗体は、抗体をコードする配列を含む核酸分子を投与することにより、被験体へ導入され得ることは当業者には理解されよう。核酸分子は、ＤＮＡ又はＲＮＡの形態であってよく、あるいはＤＮＡ又はＲＮＡを含むキメラ分子であってよい。抗体をコードしているヌクレオチド配列は、発現ベクターにクローニングされていてもよく、その場合、薬剤をコードする配列は発現調節エレメントと機能しうる形で連結される。発現調節エレメントは当技術分野でよく知られており、例えば、プロモーター、エンハンサー、及び好適な開始コドン及び停止コドンが含まれる。

ｉｎ ｖｉｖｏにおいて標的細胞に抗体をコードする核酸を導入するには種々の方法を用いることができる。例えば、裸の核酸を標的部位に入れてもよく、あるいはリポソームへ封入してもよく、あるいはウイルスのベクターにより導入されてもよい。

単独の、あるいは例えば、カチオン性リポソーム中に封入された核酸分子の直接的注入を用いて、ｉｎ ｖｉｖｏにおける非分裂細胞又は分裂細胞にＴＳＰ−１をコードする核酸を安定的に遺伝子導入することができる（Ulmer et al.、Science 259:1745-1748(1993)）。さらに、核酸は、粒子ボンバードメント法を用いてｉｎ ｖｉｖｏの各種組織へ導入することができる（Williams et al.、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88:2726-2730(1991)）。

ウイルスベクターは、抗体をコードする核酸分子をｉｎ ｖｉｖｏの特定の細胞型へ遺伝子導入するのに有用である。ウイルスは、特定の細胞型中で感染、増殖が可能な特殊な感染性物質である。特定の細胞型を感染させるこの特異性は、ｉｎ ｖｉｖｏの選択した細胞に抗体を標的化するのに特に好適である。ウイルス系ベクターは、ある程度は、標的とする細胞型に基づいて選択される。

特定の細胞型を標的とすることができる特定のウイルス系ベクターは、当技術分野で周知である。かかるベクターには、例えば、一般的プロモーター又は組織特異的プロモーターを有する組換えアデノ随伴ウイルス系ベクターが挙げられる（Lebkowski et al.、米国特許第５，３５４，６７８号）。組換えアデノ随伴ウイルス系ベクターは、組換えウイルスが静止期の増殖していない細胞のクロマチンへも安定的に導入され得るというもう１つの長所を有する（Lebkowski et al.、Mol.Cell.Biol.8:3988-3996(1988)）。

さらにウイルス系ベクターは、組織特異的プロモーター又はエンハンサーをベクターに組み入れることによって、コードされた抗体を発現する細胞型を調節するように構築することができる（Dai et al.、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:10892-10895(1992)）。

さらに、レトロウイルスのベクターは、ｉｎ ｖｉｖｏにおいて抗体をコードする核酸分子を送達する方法に好適である。かかるベクターは、最初の一回の感染しか受けない感染性粒子として、又は非感染性粒子として機能するように構築され得る。

また、受容体を媒介としたＤＮＡ送達方法は、架橋分子によって核酸分子と非共有結合的に複合体を形成する組織特異的リガンド又は抗体を用いる組織特異的方法で抗体をコードする核酸分子を細胞に送達するために用いることができる（Curiel et al.、Hum.Gene Ther.3:147-154(1992);Wu and Wu、J.Biol.Chem.262:4429-4432(1987)）。

また、被験体における抗体の発現を得るための遺伝子導入は、例えば、自己由来の細胞のｅｘ ｖｉｖｏにおけるトランスフェクションによって実施することができる。かかるｅｘ ｖｉｖｏのトランスフェクションに好適な細胞としては血球が挙げられる。その理由は、これらの細胞が、当技術分野で周知の方法による操作と被験体への再導入に利用しやすいからである。

ｅｘ ｖｉｖｏでの細胞のトランスフェクションによる遺伝子導入は種々の方法によって実施可能であるが、例えば、リン酸カルシウム沈澱、ジエチルアミノエチルデキストラン、エレクトロポレーション、リポフェクション、又はウイルス感染が挙げられる。かかる方法は当技術分野で周知である（例えば、Sambrook et al.、Molecular Cloning:A Laboratory Manual、Cold Springs Harbour Laboratory Press(1989)を参照）。一度細胞がトランスフェクトされたならば、その後、治療する被験体にそれらの細胞を再び移植又は接合する。一度身体へ導入された細胞は、循環流動に入り込み、疾患又は症状の部位における血小板凝集を抑制する抗体を産生し得る。

この明細書の全体にわたって、「含む（comprise）」という用語、又は「含む（comprises）」もしくは「含んでいる（comprising）」といった活用形は、定義した要素、整数又はステップ、あるいは要素、整数又はステップの群を含むことを意味すると理解する。しかし、他の要素、整数又はステップ、あるいは要素、整数又はステップの群を除外するものではない。

本明細書に含まれる文書、操作、材料、装置、物品等のすべての記載は、単に本発明の内容を提供することを目的としたものである。先行技術の一部を形成するこれらの内容のいずれか又は全部は、本出願の各請求項の優先日前にオーストラリアに存在していたとして、本発明に関連する分野における共通の一般的知識である、あるいはそれに基づいているということを承認するものではない。

ここで、本発明を以下の実施例によって説明するが、これは決してこれらに限定することを意図しているものではない。また、本明細書に引用されたすべての文献の開示は、参照により本明細書に援用する。
＜実施例＞

材料及び方法
１．モノクローナル抗体の作製とフローサイトメトリー
Ｃ５ａＲと反応するモノクローナル抗体（ＭＡｂ）は、Ｃ５７ＢＬ／６マウスに１０^７個のＬ１．２ Ｃ５ａＲトランスフェクト細胞［８］を２週間間隔で５〜６回腹腔内に免疫にすることにより得た。最終免疫は静脈注射で行った。４日後、脾臓を取り出し、［９］に記載されているようにして、細胞をＳＰ２／０細胞系と融合させた。Ｃ５ａＲと反応するモノクローナル抗体は、免疫蛍光検査法染色及びＦＡＣＳｃａｎ（登録商標）（Becton Dickinson & Co.、Mountain View、CA）を用いる分析を用いて、Ｃ５ａＲトランスフェクトＬ１．２細胞及び非トランスフェクトＬ１．２細胞、あるいはＣＸＣＲ２又はＣＸ３ＣＲ１（Ｖ２８）などの無関係な受容体でトランスフェクトしたＬ１．２細胞を用いて同定した。細胞のモノクローナル抗体染色は、すでに報告のある［１０］に記載されているようにして標準的方法により実施した。

２．リガンド結合アッセイ
組換えヒトＣ５ａは、Sigma Chemical Co.（St.Louis、MO）から入手した。２２００Ｃｉ／ｍＭの比活性を有する^１２５Ｉ−ボルトンハンター標識補体Ｃ５ａは、NEN-Dupont（Boston, MA）から購入した。Ｌ１．２ Ｃ５ａＲトランスフェクタントへのＣ５ａ結合は、すでに報告のある［９、１１］に記載されているようにして実施した。簡単に説明すると、細胞をＰＢＳ中で一回洗浄し、結合バッファー（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．５、１ｍＭ ＣａＣｌ、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．５％ＢＳＡ、及び０．０５％アジ化物）中、１０^７細胞／ｍｌの濃度で再懸濁させた。５０ｍｌ（５×１０^５細胞）のアリコートを遠心管へ入れ、その後、冷競合因子と放射性標識した１ｎＭのＣ５ａを添加した。最終反応容量は２００μｌであった。室温にて６０分間インキュベーションした後、０．５ＭのＮａＣｌを含有する結合バッファー１ｍｌで細胞を３回洗浄した。次いで、細胞ペレットをカウントした。バックグラウンド結合は、放射性標識したＣ５ａと少なくとも４００倍過剰の未標識Ｃ５ａと共に細胞をインキュベートすることにより得た。実験はすべて二重反復試験を用い、標準偏差は常に平均値の＜１０％であった。

３．トランスフェクタント走化性アッセイ
Ｃ５ａＲトランスフェクトＬ１．２細胞を遠沈させ、遊走培地（ＭＭ＝ＲＰＭＩ１６４０、０．５％ＢＳＡ）中で洗浄し、１０^７細胞／ｍｌで再懸濁した。組織培養インサート（Becton Dickinson & Co.、Mountain View、CA）を、３ｍｍ直径の孔を有するポリエチレンテレフタレート膜によって分離されて上部及び下部チャンバーを形成している、２４ウェルの組織培養プレートの各ウェルに置いた。走化性Ｃ５ａ（アッセイ培地で希釈されているもの）を２４ウェル組織培養プレート中のアッセイ培地６００μｌに添加し、最終濃度１ｎＭとした。１００μｌ中の１００万個の細胞を、抗体を含有するハイブリドーマ由来の上清と３０分間予めインキュベートした。細胞−上清混合物又は精製モノクローナル抗体をウェル中の上部チャンバーに添加し、５％ＣＯ_２、３７℃のインキュベーター内で１８時間、細胞を下部チャンバーまで遊走させた。遊走後にインサートを取り出し、ＦＡＣＳｃａｎ（登録商標）により細胞をカウントした。設定時間３０秒の現象を取得することにより、相対的細胞数を得た。この方法は高度に再現可能であることが分かり、かつ白血球のゲーティングと組織片の除外が可能であった。

４．好中球走化性アッセイ
細胞調製：室温で４０分間、デキストラン沈降ステップによって白血球画分を最初に得ることにより、末梢血から好中球を単離した。次いで、室温にて１５分間、２５００ｒｐｍで密度勾配遠心法を行い、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ（Amersham Biosciences）上に細胞の層を形成させた。残留している赤血球を低張溶解した後、等量のＲＰＭＩ１６４０（Invitrogen Inc.）、Ｍ１９９（Invitrogen Inc.）及び２％ＦＣＳ（HyClone）中に好中球を再懸濁した。

走化性アッセイ：抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体の６Ｃ１２、７Ｆ３及び１２Ｄ４を０．５〜１０μｇ／ｍｌの範囲の濃度で好中球（１×１０^７細胞／ｍｌ）に添加した。次いで、孔隙率３．０μｍのポリカーボネート膜を備えた２４ウェルインサート（Corning Inc.、NY）の上部チャンバーに細胞を充填し、室温にて１０分間インキュベートした。次いで、Ｃ５ａ（０．１〜１００ｎＭ）及びＩＬ−８（１．１２ｎｇ／ｍｌ〜１１．２μｇ／ｍｌ）などのヒト好中球走化因子を含有する下部チャンバー上にインサートを置いた。次いで、３７℃にて３０分間、好中球をインキュベートした。下部チャンバーへ膜を介して遊走（移動）している好中球の数は、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ；BD Biosciences）によって定量した。

５．競合阻害アッセイ
１〜１００μＭの範囲の濃度で、「ＰＥＰＩ」（Biosource；Eldridge）として知られているＣ５ａＲ Ｎ末端合成的産生ペプチド（残基９〜２９）に抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体を５０ｕｇ／ｍｌ添加した。マウスＬ１．２細胞をヒトＣ５ａ受容体でトランスフェクトし、１％ウシセリンアルブミン（ＢＳＡ；GibcoBRL）中に再懸濁し（１×１０^７細胞／ｍｌ）、次いで、１００μｌの全容量が得られるように添加した。４℃にて３０分間、細胞をインキュベートし、０．１％ＢＳＡで一回洗浄した。フルオレセイン（ＦＩＴＣ）結合のヒツジ抗マウスＩｇＧのＦ（ａｂ’）２（Jackson Immunoresearch Laboratories Inc.）を二次抗体（１：２００）として用い、４℃にて１５分間インキュベートし、０．１％ＢＳＡを用いてさらに洗浄ステップを行った。０．１％ＢＳＡ中に細胞を再懸濁し、フローサイトメトリーによって分析した。

６．ＥＬＩＳＡアッセイ
ＥＬＩＳＡは、Current Protocols in Immunology(Unit 2.1)（J.F.Coligan,A.M.Kruisbeek,D.B.Margulies,E.M.Shevach and W.Strober編）、John Wiley and Sons、New Yorkに記載されているようにして行った。簡単に説明すると、９６ウェルの平底ＥＬＩＳＡプレート（Maxisorp;Nunc）を、３７℃にて１時間かけてＰＢＳに溶解した１μｇ／ｍｌのタンパク質（ＰＥＰＩ又はＯＰＧ）でコーティングし、次いで、４℃にて一晩ＢＳＡでブロッキングした。次いで、プレートを洗浄し、抗体と共にインキュベートし、その後洗浄し、ペルオキシダーゼ結合のヒツジ抗マウスＩｇＧ抗体と共にインキュベートした。用いた基質はＴＭＢ基質試薬（PharMingen）であった。

モノクローナル抗体の作製とフローサイトメトリー
高レベルのＣ５ａＲを発現するＬ１．２トランスフェクタント［８］をマウスの免疫に用い、フローサイトメトリーによって、Ｃ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞と特異的に反応するが、ＣＸ３ＣＲ１（Ｖ２８）又はＣＸＣＲ２でトランスフェクトしたＬ１．２細胞とは反応しなかった１０個のモノクローナル抗体を同定した。これらの１０個のモノクローナル抗体は、１２Ｄ４、１０Ｇ１、５Ｈ１１、６Ｃ１２、１０Ｄ４、５Ｆ３、７Ｆ３、８Ｄ６、１１Ｂ９及び１Ｄ１２と命名した。

図１は、モノクローナル抗体７Ｆ３が、Ｃ５ａＲトランスフェクタント（Ｌ１．２Ｃ５ａＲ）及びヒト好中球と反応するが、ＣＸ３ＣＲ１でトランスフェクトした細胞（Ｌ１．２ Ｖ２８）又はＣＸＣＲ２でトランスフェクトした細胞（Ｌ１．２ＣＸＣＲ２）とは反応しなかったことを示す１組のヒストグラムである。これらのモノクローナル抗体７Ｆ３の結果は、同定された１０個のモノクローナル抗体の例である。

Ｃ５ａＲでトランスフェクトした細胞へのＣ５ａ結合の阻害
Ｃ５ａＲトランスフェクタントへの^１２５Ｉ標識Ｃ５ａ結合を阻害するモノクローナル抗体の能力を試験した。図２は、モノクローナル抗体７Ｆ３が、トランスフェクタントへの^１２５Ｉ標識Ｃ５ａの結合を完全に阻害したことを示しており、この阻害は、４００ｎＭの冷却Ｃ５ａで得られた阻害よりも大きかった。このことは、モノクローナル抗体７Ｆ３がＣ５ａＲへのＣ５ａの結合を完全に遮断し得ることを示唆している。さらに、モノクローナル抗体６Ｃ１２及び１２Ｄ４は、Ｃ５ａＲトランスフェクタントへの^１２５Ｉ標識Ｃ５ａの結合を実質的に阻害することがわかった。モノクローナル抗体７Ｆ３によるＣ５ａＲトランスフェクタントへのＣ５ａ結合の用量反応阻害を図３に示す。

モノクローナル抗体７Ｆ３によるヒトＣ５ａ指向性Ｃ５ａＲトランスフェクタント遊走（移動）の阻害
走化性実験は、Ｃ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞を用いて、上に記載したようにして実施した。図４は、モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４が、Ｃ５ａへのＣ５ａＲ−Ｌ１．２細胞の走化性を完全に又は実質的に阻害したことを示す。図５は、モノクローナル抗体７Ｆ３によるＣ５ａへのＣ５ａＲ−Ｌ１．２細胞の走化性の用量反応阻害を示す。

モノクローナル抗体７Ｆ３によるヒトＣ５ａ指向性好中球遊走（移動）の阻害
抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体を１×ＰＢＳ（GibcoBRL）中で透析させ、透析済み及び未透析の７Ｆ３モノクローナル抗体双方を５ｕｇ／ｍｌで好中球に添加した（１×１０^７細胞／ｍｌ）。陰性対照（抗体無添加、及び１×ＰＢＳ添加）も含めた。次いで、孔隙率３．０μｍのポリカーボネート膜を備えた２４ウェルインサート（Corning Inc.、NY）の上部チャンバーに細胞を充填し、室温にて１０分間インキュベートした。次いで、ヒト好中球走化因子Ｃ５ａ（０．１〜１００ｎＭ）を含有する下部チャンバーにインサートを置いた。次いで、３７℃にて３０分間、好中球をインキュベートした。下部チャンバーへ膜を介して遊走している好中球の数は、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ；BD Biosciences）により定量した。

図６は、モノクローナル抗体７Ｆ３（透析済み又は未透析のいずれか）の添加により、２つの陰性対照と比較して、好中球遊走に阻害が生じたことを示す。

モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４によるヒトＣ５ａ指向性好中球遊走の阻害
３種類の抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２を５ｕｇ／ｍｌで好中球に添加した（１×１０^７細胞／ｍｌ）。陰性対照（抗体無添加、及び１×ＰＢＳ添加）も含めた。次いで、孔隙率３．０μｍのポリカーボネート膜を備えた２４ウェルインサート（Corning Inc.、NY）の上部チャンバーに細胞を充填し、室温にて１０分間インキュベートした。次いで、ヒト好中球走化因子Ｃ５ａ（１．１２〜１１２０ｎｇ／ｍｌ）を含有する下部チャンバーにインサートを置いた。次いで、３７℃にて３０分間、好中球をインキュベートした。下部チャンバーへ膜を介して遊走している好中球の数は、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ；BD Biosciences）により定量した。

図７に示す結果は、３種類のモノクローナル抗体すべてが、２つの陰性対照と比較して、Ｃ５ａ指向性好中球遊走を阻害することを示す。特に、７Ｆ３モノクローナル抗体は最も有効な阻害を示し、バックグラウンドレベルに対して好中球遊走数が１４０倍も低減していた。

モノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２によるヒトＩＬ−８指向性好中球遊走の阻害
３種類の抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２と、７Ｆ３の透析済みサンプルを５ｕｇ／ｍｌで精製好中球に添加し（１×１０^７細胞／ｍｌ）、２４ウェルインサートの上部チャンバーに充填した。陰性対照（抗体無添加、及び１×ＰＢＳ添加）も再度含めた。室温にて１０分間インキュベーションを行った。次いで、ＩＬ−８（１．１２〜１１２０ｎｇ／ｍｌ）を含有する下部チャンバーにインサートを置いたところ、ＣＸＣＲ１及びＣＸＣＲ２受容体と結合するヒト好中球走化因子は好中球の表面上に発現した。次いで、３７℃にて３０分間好中球をインキュベートした。下部チャンバーへ膜を介して遊走している好中球の数は、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ；BD Biosciences）により定量した。

図８（ａ）は、３種類のモノクローナル抗体がすべてＩＬ−８への好中球遊走を阻害していることを示している。７Ｆ３モノクローナル抗体（透析済み及び未透析）は、好中球遊走数において５倍の低減を示す、最も有効な阻害剤であった。

また、モノクローナル抗体７Ｆ３について、他の好中球走化因子、特にＣＸＣＲ１及びＣＸＣＲ２リガンドを阻害する能力を試験した。表１は、好中球走化性アッセイにおける、多数の好中球走化因子、特にＣＸＣＲ１及びＣＸＣＲ２リガンドへの好中球遊走の本質的阻害を示す。

表１
走化因子（１１２ｎｇ／ｍｌ） 阻害率％
Ｃ５ａ ９８
ＩＬ−８ ８１
ＧＣＰ−２ ９１
ＥＮＡ−７８ ８３

Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチド（９〜２９）による、Ｃ５ａＲトランスフェクタントへのモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の結合の競合阻害
Ｃ５ａＲでトランスフェクトした細胞へのモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の結合は、フルオレセイン（ＦＩＴＣ）結合ヒツジ抗マウスＩｇＧで染色することにより測定した。次いで、Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチド（残基９〜２９）がこの結合を阻害する能力は、上に記載されている方法に従って評価した。このＣ５ａＲ Ｎ末端ペプチドは、配列：ＰＤＹＧＨＹＤＤＫＤＴＬＤＬＮＴＰＶＤＫＴを有しており、本明細書では「ＰＥＰＩ」と称している。

図９（ａ）は、ＰＥＰＩの増加する濃度が、３種類の抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体の蛍光染色を阻害しなかったことを示す。この蛍光染色は、ＰＥＰＩ濃度が１００μＭである場合であっても、安定が維持されていた。

図９（ｂ）は、ＰＥＰＩ（５０μＭ濃度における）が、モノクローナル抗体７Ｆ３による精製好中球のＦＡＣＳ染色を阻害しなかったことを示す。

Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチド９〜２９（「ＰＥＰＩ」）及びＯＰＧによるモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の反応性
ＥＬＩＳＡアッセイは、ＰＥＰＩ及びＯＰＧを用いて、モノクローナル抗体６Ｃ１２、１２Ｄ４、７Ｆ３の反応性を測定するために上に記載されているようにして実施した。ＯＰＧは、そのリガンドＴＮＦＳＦ１１／ＯＰＧＬに特異的に結合する、ＴＮＦ受容体スーパーファミリーのメンバーである。より詳しくは、ＯＰＧは、骨吸収の負の調節因子として機能する骨芽細胞分泌デコイ受容体である。

モノクローナル抗体６Ｃ１２、１２Ｄ４及び７Ｆ３は、１μｇ／ｍＬの濃度で精製タンパク質としてＥＬＩＳＡで用いた。モノクローナル抗体９Ｃ１（ＯＰＧに特異的である）及びモノクローナル抗体１１Ｂ９（ＰＥＰＩを認識する）は陽性対照として用いた。これらの対照モノクローナル抗体は、未希釈の組織培養上清の形態で用いた。

図１０は、モノクローナル抗体６Ｃ１２、１２Ｄ４及び７Ｆ３がＰＥＰＩと反応しなかったことを示す。モノクローナル抗体７Ｆ３は、ＯＰＧとの交差反応性の程度が小さいことを示した。

抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の配列決定
抗Ｃ５ａＲ抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２のヌクレオチド配列は、抗体を発現するハイブリドーマ細胞から抽出したＲＮＡから決定した。重鎖及び軽鎖の可変領域を増幅するために使用するプライマーを決定するため、３つの抗体の可変領域のタンパク質配列をBiogen Incにより決定し、該抗体のアイソタイプはマウスモノクローナル抗体アイソタイプ決定キットＩｓｏＳｔｒｉｐ（Rocheカタログ番号1 493 027）を使用して決定した。従って、５’フレームワーク１プライマーは、Biogen Inc.のタンパク質配列から誘導し、３’プライマーは抗体のアイソタイプに基づいた。

各抗Ｃ５ａＲ抗体のアイソタイプは以下のとおりである：
６Ｃ１２：軽鎖κ
６Ｃ１２：重鎖ＩｇＧ３
７Ｆ３： 軽鎖κ
７Ｆ３： 重鎖ＩｇＧ２ａ
１２Ｄ４：軽鎖κ
１２Ｄ４：重鎖ＩｇＧ３

Ｔｒｉｚｏｌ試薬（Invitrogenカタログ番号15596-018）を使用してハイブリドーマ細胞から総ＲＮＡを単離した。ＲＮＡは、製造業者の記載の通りに単離した。簡単に説明すると、約５×１０^６個の細胞を１ｍｌのＴｒｉｚｏｌ試薬に溶解した。２００μｌのクロロホルムと遠心分離により細胞破砕物を除去した。水性ＲＮＡを含有する層を取り出し、２５０μｌのプロパノールを用いてＲＮＡを沈殿させた。

総ＲＮＡ（２μｇ）を用いて、ＡＭＶ逆転写酵素（Promegaカタログ番号M5101）でｃＤＮＡを合成した。次に、ｃＤＮＡを鋳型として用いて、以下のプライマーを用いて可変領域をコードする配列を増幅した：
６Ｃ１２可変軽鎖のプライマー：
mIgkapFR15'：GATGTTTTGATGACCCAAACTCC （配列番号２）
mIgkapcon3'：ACACTCATTCCTGTTGAAGCTCTTG （配列番号３）
６Ｃ１２可変重鎖のプライマー：
mIgVh2 5'：SAGGTCCAGCTGCARCAGTC（配列番号４）FR1 VhIIA ファミリー
mIgG3con3'：TGGGCATGAAGAACCTGG（配列番号５）ヒンジ領域
７Ｆ３可変軽鎖のプライマー：
mIgkapFR15'：GATGTTTTGATGACCCAAACTCC（配列番号６）
mIgkapcon3'：ACACTCATTCCTGTTGAAGCTCTTG（配列番号７）
７Ｆ３可変重鎖のプライマー：
mIgVh2 5'：SAGGTCCAGCTGCARCAGTC（配列番号８）FR1 VhIIA ファミリー
mIgG2acon3'：TTTGCATGGAGGACAGGG（配列番号９）
１２Ｄ４可変軽鎖のプライマー：
mIgkapFR15'：GATGTTTTGATGACCCAAACTCC（配列番号１０）
mIgkapcon3'：ACACTCATTCCTGTTGAAGCTCTTG（配列番号１１）
１２Ｄ４可変重鎖のプライマー：
mIgVh1 5'：CAGGTGCAGCTGAAGSAGTC（配列番号１２）FR1 VhIB ファミリー
mIgG3con3’：TGGGCATGAAGAACCTGG（配列番号１３）ヒンジ領域

高忠実度Ｐｆｕポリメラーゼ（Promegaカタログ番号M7741）を用いて、アニーリング温度６０℃及びプライマー伸長７２℃にて３分間かけてポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行った。得られた約７００ｂｐのＰＣＲ断片はｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙ（Promegaカタログ番号A1360）にクローニングした。単一コロニーを単離し、市販の配列決定装置（SUPAMAC）で配列決定した。

得られた配列を以下に示す：
６Ｃ１２ 可変軽鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号１４
６Ｃ１２ 可変軽鎖（タンパク質）配列：配列番号１５
６Ｃ１２ 可変重鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号１６
６Ｃ１２ 可変重鎖（タンパク質）配列：配列番号１７
７Ｆ３ 可変軽鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号１８
７Ｆ３ 可変軽鎖（タンパク質）配列：配列番号１９
７Ｆ３ 可変重鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号２０
７Ｆ３ 可変重鎖（タンパク質）配列：配列番号２１
１２Ｄ４ 可変軽鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号２２
１２Ｄ４ 可変軽鎖（タンパク質）配列：配列番号２３
１２Ｄ４ 可変重鎖（ＤＮＡ）配列： 配列番号２４
１２Ｄ４ 可変重鎖（タンパク質）配列：配列番号２５

モノクローナル抗体７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２のＤＮＡ及びタンパク質配列の同一性及び類似性の解析
３つの抗Ｃ５ａＲ抗体（７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２）のＤＮＡ及びタンパク質の配列をＭａｃＶｅｃｔｏｒ６．５．３を用いて比較した。この解析には、ＣｌｕｓｔａｌＷ（１．４）マルチプルアライメントプログラムを利用した。

（ｉ）可変軽鎖ＤＮＡ配列の解析：
７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の可変軽鎖ＤＮＡ配列のアライメントを図１１に示す。
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｗ（１．４）マルチプル配列アライメント解析により以下の結果が得られた：
３つの配列のアライメントを行った アライメントスコア＝６６１２
挿入したギャップ＝０ 保存された同一性＝３１５

ペアワイズアライメントモード：Ｓｌｏｗ
ペアワイズアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝５．０

マルチプルアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝５．０
後発多様性（Delay Divergent）＝４０％ 遷移（Transitions）＝重み付

処理時間：０．４秒

１．７Ｆ３ Ｖｋと６Ｃ１２ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝３３６ ギャップ＝０
同一性＝３２９（９５％）

２．７Ｆ３ Ｖｋと１２Ｄ４ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝３３６ ギャップ＝０
同一性＝３２０（９５％）

３．６Ｃ１２ Ｖｋと１２Ｄ４ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝３３６ ギャップ＝０
同一性＝３２６（９７％）

（ｉｉ）可変重鎖ＤＮＡ配列の解析
７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の可変重鎖ＤＮＡ配列のアライメントを図１２に示す。
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｗ（１．４）マルチプル配列アライメント解析により以下の結果が得られた：
３つの配列のアライメントを行った アライメントスコア＝５３４６
挿入したギャップ＝３ 保存された同一性＝２００

ペアワイズアライメントモード：Ｓｌｏｗ
ペアワイズアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝５．０

マルチプルアライメントパラメータ:
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝５．０
後発多様性＝４０％ 遷移＝重み付
処理時間：０．５秒

１．７Ｆ３ Ｖｈと６Ｃ１２ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝３６３ ギャップ＝０
同一性＝３３３（９１％）

２．７Ｆ３ Ｖｈと１２Ｄ４ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝３６３ ギャップ＝３
同一性＝２１０（５７％）

３．６Ｃ１２ Ｖｈと１２Ｄ４ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝３６３ ギャップ＝３
同一性＝２１０（５７％）

（ｉｉｉ）可変軽鎖タンパク質配列の解析
７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の可変軽鎖タンパク質配列のアライメントを図１３に示す。
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｗ（１．４）マルチプル配列アライメント解析により以下の結果が得られた：
３つの配列のアライメントを行った アライメントスコア＝１９０２
挿入したギャップ＝０ 保存された同一性＝９９

ペアワイズアライメントモード：Ｓｌｏｗ
ペアワイズアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝０．１
類似性行列：ｂｌｏｓｕｍ

マルチプルアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝０．１
後発多様性＝４０％ ギャップ距離＝８
類似性行列：ｂｌｏｓｕｍ

処理時間：０．１秒

１．７Ｆ３ Ｖｋと６Ｃ１２ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝１１２ ギャップ＝０
同一性＝１０２（９１％） 類似性＝５（４％）

２．７Ｆ３ Ｖｋと１２Ｄ４ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝１１２ ギャップ＝０
同一性＝１０３（９１％） 類似性＝４（３％）

３．６Ｃ１２ Ｖｋと１２Ｄ４ Ｖｋ
アライメントを行った長さ＝１１２ ギャップ＝０
同一性＝１０４（９２％） 類似性＝４（３％）

（ｉｖ）可変重鎖タンパク質配列の解析
７Ｆ３、１２Ｄ４及び６Ｃ１２の可変重鎖タンパク質配列のアライメントを図１４に示す。
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｗ（１．４）マルチプル配列アライメント解析により以下の結果が得られた：
３つの配列のアライメントを行った アライメントスコア＝１４３２
挿入したギャップ＝２ 保存された同一性＝５１

ペアワイズアライメントモード：Ｓｌｏｗ
ペアワイズアライメントパラメータ:
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝０．１
類似性行列：ｂｌｏｓｕｍ

マルチプルアライメントパラメータ：
オープンギャップペナルティ＝１０．０ 伸長ギャップペナルティ＝０．１
後発多様性＝４０％ ギャップ距離＝８
類似性行列：ｂｌｏｓｕｍ

処理時間：０．１秒

１．７Ｆ３ Ｖｈと６Ｃ１２ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝１２１ ギャップ＝０
同一性＝１０７（８８％） 類似性＝６（４％）

２．７Ｆ３ Ｖｈと１２Ｄ４ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝１２１ ギャップ＝２
同一性＝５２（４２％） 類似性＝２５（２０％）

３．６Ｃ１２ Ｖｈと１２Ｄ４ Ｖｈ
アライメントを行った長さ＝１２１ ギャップ＝２
同一性＝５４（４４％） 類似性＝２５（２０％）

当業者であれば、広く記載された本発明の精神又は範囲を逸脱することなく、特定の実施形態に示したように、本発明に種々の変更及び／又は改変をなしうることは明らかであろう。従って、本発明の実施形態は、あらゆる点において例示目的であって限定を意図するものではないと考えられよう。

参考文献
１．Gerard, C. and N.P. Gerard, C5A anaphylatoxin and its seven transmembrane-segment receptor. Annual Review of Immunology, 1994. 12: p. 775-808.
２．Murdoch, C. and A. Finn, Chemokine receptors and their role in inflammation and infectious diseases. Blood, 2000. 95(10): p. 3032-43.
３．Watanabe, H., et al., Analysis of C5a receptor by monoclonal antibody. Journal of Immunological Methods, 1995. 185(1): p. 19-29.
４．Pellas, T.C., et al., Novel C5a receptor antagonists regulate neutrophil functions in vitro and in vivo. Journal of Immunology, 1998. 160(11): p. 5616-21.
５．Konteatis, Z.D., et al., Development of C5a receptor antagonists. Differential loss of functional responses. Journal of Immunology, 1994. 153(9): p. 4200-5.
６．Kaneko, Y., et al., Antagonistic peptides against human anaphylatoxin C5a. Immunology, 1995. 86(1): p. 149-54.
７．Morgan, E.L., et al., Anti-C5a receptor antibodies. Characterization of neutralizing antibodies specific for a peptide, CDaR-(9-29), derived from the predicted amino-terminal sequence of the human C5a receptor. Journal of Immunology, 1993. 151(1): p. 377-88.
８．Campbell, J.J., et al., Biology of chemokine and classical chemoattractant receptors: differential requirements for adhesion-triggering versus chemotactic responses in lymphoid cells. J Cell Biol, 1996. 134(1): p. 255-66.
９．Heath, H., et al., Chemokine receptor usage by human eosinophils. The importance of CCR3 demonstrated using an antagonistic monoclonal antibody. J Clin Invest, 1997. 99(2): p. 178-84.
１０．Ponath, P.D., et al., Molecular cloning and characterization of a human eotaxin receptor expressed selectively on eosinophils [see comments]. J Exp Med, 1996. 183(6): p. 2437-48.
１１．Ponath, P.D., et al., Cloning of the human eosinophil chemoattractant, eotaxin. Expression, receptor binding, and functional properties suggest a mechanism for the selective recruitment of eosinophils. J Clin Invest, 1996. 97(3): p. 604-12.

モノクローナル抗体７Ｆ３のフローサイトメトリー分析の結果を示す図である。これらの結果は、７Ｆ３が、Ｃ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞と特異的に反応することを示している。 ７Ｆ３をはじめとする一連のモノクローナル抗体に関する^１２５Ｉ Ｃ５ａリガンド結合アッセイの結果を示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３による^１２５Ｉ Ｃ５ａリガンド結合の用量反応阻害を示す図である。 Ｃ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞、ならびに７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４をはじめとする一連のモノクローナル抗体を用いて実施した走化性実験の結果を示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３によってＬ１．２ Ｃ５ａＲトランスフェクタントの走化性が完全に阻害されたことを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３によってＣ５ａ指向性好中球走化性が完全に阻害されたことを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４によってＣ５ａ指向性好中球走化性が阻害されたことを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４によってＩＬ−８定方向好中球走化性が阻害されたことを示す図である。 Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチドＰＥＰＩによる、ヒトＣ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞への抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体結合の競合阻害を測定した実験結果を示す図である。 Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチドＰＥＰＩによる、ヒトＣ５ａＲでトランスフェクトしたＬ１．２細胞への抗Ｃ５ａＲモノクローナル抗体結合の競合阻害を測定した実験結果を示す図である。 Ｃ５ａＲ Ｎ末端ペプチドＰＥＰＩの存在下及び不在下におけるモノクローナル抗体７Ｆ３による精製好中球のＦＡＣＳ染色を測定した実験の結果を示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４の可変軽鎖ＤＮＡ配列のアライメントを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４の可変重鎖ＤＮＡ配列のアライメントを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４の可変軽鎖タンパク質配列のアライメントを示す図である。 モノクローナル抗体７Ｆ３、６Ｃ１２及び１２Ｄ４の可変重鎖タンパク質配列のアライメントを示す図である。

【配列表】

Claims (51)

1. Ｎ末端ドメイン以外の１又は複数のＣ５ａＲの細胞外ループと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
2. Ｃ５ａＲの第２の細胞外ループ（残基１７５〜２０６）を含むエピトープと反応するものである、請求項１記載の抗体。
3. モノクローナル抗体７Ｆ３と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
4. モノクローナル抗体６Ｃ１２と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
5. モノクローナル抗体１２Ｄ４と同じＣ５ａＲのエピトープと反応し、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
6. Ｃ５ａＲに結合し、モノクローナル抗体７Ｆ３のＣ５ａＲへの結合を競合的に阻害する抗体。
7. Ｃ５ａＲに結合し、モノクローナル抗体６Ｃ１２のＣ５ａＲへの結合を競合的に阻害する抗体。
8. Ｃ５ａＲに結合し、モノクローナル抗体１２Ｄ４のＣ５ａＲへの結合を競合的に阻害する抗体。
9. 比較結合特異性が、Ｃ５ａＲ又はＣ５ａＲの細胞外ループを含むポリペプチドの存在下における抗体−抗体競合アッセイにより決定される、請求項６〜８のいずれか１項に記載の抗体。
10. 配列番号１９及び配列番号２１にそれぞれ示される軽鎖及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
11. 配列番号２６、配列番号２７又は配列番号２８にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
12. 配列番号２６、配列番号２７及び配列番号２８にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項１１記載の抗体。
13. 配列番号１９に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列をさらに含む、請求項１１又は１２記載の抗体。
14. 配列番号１９に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項１３記載の抗体。
15. 配列番号１５及び配列番号１７にそれぞれ示される軽鎖及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
16. 配列番号２９、配列番号３０又は配列番号３１にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
17. 配列番号２９、配列番号３０及び配列番号３１にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項１６記載の抗体。
18. 配列番号１５に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列をさらに含む、請求項１６又は１７記載の抗体。
19. 配列番号１５に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項１８記載の抗体。
20. 配列番号２３及び配列番号２５にそれぞれ示される軽鎖及び／又は重鎖配列と実質的に同じ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
21. 配列番号３２、配列番号３３又は配列番号３４にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも１つのＣＤＲループ配列を含み、Ｃ５ａのＣ５ａＲへの結合を低減又は阻害する抗体。
22. 配列番号３２、配列番号３３及び配列番号３４にそれぞれ示される可変重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２又はＣＤＲ３ループ配列と実質的に同じである少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項２１記載の抗体。
23. 配列番号２３に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１又は９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも１つのＣＤＲループ配列をさらに含む、請求項２１又は２２記載の抗体。
24. 配列番号２３に示される可変軽鎖配列のアミノ酸残基２４〜３９、５５〜６１及び９４〜１０２により実質的に特定される少なくとも２つのＣＤＲループ配列を含む、請求項２３記載の抗体。
25. Ｃ５ａ以外の走化因子リガンドによる好中球の活性化をも阻害する、請求項１〜２４のいずれか１項に記載の抗体
26. モノクローナル抗体又は組換え抗体である、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の抗体。
27. キメラ抗体又はヒト化抗体である、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の抗体。
28. クラスＩｇＧ２ａ又はクラスＩｇＧ３抗体である、請求項１〜２７のいずれか１項に記載の抗体。
29. モノクローナル抗体７Ｆ３、モノクローナル抗体６Ｃ１２及びモノクローナル抗体１２Ｄ４からなる群より選択されるモノクローナル抗体。
30. ＥＣＡＣＣに受託番号００１１０６０９で寄託されているハイブリドーマ。
31. ＥＣＡＣＣに受託番号０２０９０２２６で寄託されているハイブリドーマ。
32. ＥＣＡＣＣに受託番号０２０９０２２７で寄託されているハイブリドーマ。
33. 請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体と治療剤とを含む複合体。
34. 治療剤がトキシンである、請求項３３記載の複合体。
35. トキシンがシュードモナスエキソトキシン又はその誘導体である、請求項３３記載の複合体。
36. 請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体と検出用標識を含む複合体。
37. 標識が、放射性標識、蛍光標識、酵素標識及び造影剤からなる群より選択される、請求項３６記載の複合体。
38. 請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体をコードする配列を含む、単離された核酸分子。
39. 請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体と薬学的に許容される担体を含む組成物。
40. Ｃ５ａＲ含有細胞とそのリガンドとの相互作用を阻害する方法であって、該細胞を請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体に暴露するステップを含む、上記方法。
41. 細胞においてＣ５ａＲ活性を阻害する方法であって、該細胞を請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体に暴露するステップを含む、上記方法。
42. 被験体における好中球の移動に関する疾患の治療方法であって、該被験体に請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体を投与するステップを含む、上記方法。
43. 被験体における好中球の移動に関する疾患の診断方法であって、該被験体から得たサンプルと請求項３６又は３７記載の複合体とを接触させるステップ、及び該複合体と該サンプルとの免疫特異的結合を検出するステップを含む、上記方法。
44. 被験体から得た組織又は液体の組織学的標本又は細分画を用いてｉｎ ｖｉｔｒｏで実施する、請求項４３記載の方法。
45. ｉｎ ｖｉｖｏで実施する、請求項４３記載の方法。
46. 被験体における好中球の移動に関する疾患の診断方法であって、造影剤で標識した請求項１〜１９のいずれか１項に記載の抗体を、被験体において抗体とＣ５ａＲ提示細胞の複合体が形成されるような条件下にて該被験体に投与するステップ、及び該複合体を画像化するステップを含む、上記方法。
47. 疾患が免疫病理学的疾患である、請求項４２〜４６のいずれか１項に記載の方法。
48. 治療剤を被験体の炎症部位に送達する方法であって、該被験体に請求項３３〜３５のいずれか１項に記載の複合体を投与するステップを含む、上記方法。
49. Ｃ５ａＲを提示する細胞に遺伝物質を導入する方法であって、該細胞と請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体とを接触させるステップを含み、該抗体が遺伝物質と結合又は会合されているものである、上記方法。
50. Ｃ５ａＲを提示する細胞が、顆粒球、白血球（単球、マクロファージ、好塩基球及び好酸球など）、肥満細胞、並びにリンパ球（Ｔ細胞など）、樹状細胞、非骨髄性細胞（内皮細胞及び平滑筋細胞など）からなる群より選択される、請求項４９記載の方法。
51. 被験体における好中球の移動に関する疾患の治療方法であって、請求項１〜２９のいずれか１項に記載の抗体をコードするポリヌクレオチドを該被験体の細胞に導入するステップを含み、該抗体がｉｎ ｖｉｖｏで発現されるものである、上記方法。

Images