JP2001299361A - 溶液安定性の組換えヒトクレアチンキナーゼヘテロダイマー - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【課題】本発明は、溶液安定性の組換えヒトクレアチン
キナーゼヘテロダイマーを提供することを目的とする。 【解決手段】本発明のＣＫヘテロダイマーは、クレアチ
ンキナーゼのＭ型サブユニットをコードする核酸及びＢ
型サブユニットをコードする核酸を含むベクターを用い
て得られることを特徴とする。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、溶液中で安定なク
レアチンキナーゼヘテロダイマー組換えタンパク質を提
供することを目的とする。

【０００２】

【従来の技術】クレアチンキナーゼ（「ＣＫ」、「ＣＰ
Ｋ」と略すこともある）は、ＡＴＰからクレアチンへの
リン酸基の転移反応：

【０００３】

【化１】ＡＴＰ＋クレアチン→ＡＤＰ＋ホスホクレアチ
ン を触媒する酵素である。動物界に広く見出されるが、特
に短時間で多量のエネルギーを消費する組織に多量に含
まれ、脊椎動物の白筋、心筋、脳、精子などに多い。Ｃ
Ｋの酵素活性レベルの測定は酵素活性レベルの測定は、
多くの生理学的状態を診断する上で重要である。ＣＫレ
ベルの増加は、特に、心筋梗塞、心筋虚血、狭心症、頻
脈、心筋炎、クモ膜下出血、卒中、脳腫瘍、髄膜炎、脳
炎等の臨床状態と密接に関連していると考えられてい
る。

【０００４】ＣＫには３種類のアイソザイム（ＭＭ型、
ＭＢ型、ＢＢ型）が知られている。各アイソザイムのヒ
ト臓器特異性より心筋梗塞などの心疾患の臨床診断のた
めに心筋より血中に浸潤してきたＣＫ型を測定すること
が広く実施されている。中でも、特にＣＫ−ＭＢ型の測
定によって、特異的で最も早期かつ明確な結果が得られ
ると考えられている。ＣＫ−ＭＢを測定する種々の方法
が開発され、臨床検査法提要（改訂第３１版） 原著
金井 泉、編者 金井 正光、１９９８年（金原出
版）、第６４０頁−第６４３頁には、イオン交換クロマ
トグラフィ法、電気泳動法、抗体阻害活性測定法、免疫
分析法などが記述されている。

【０００５】そこで、臨床及び研究のための分析用標準
物質及び品質管理用物質として、精製された、ＣＫ、特
にＣＫ−ＭＢが必要とされる。しかしながら、例えば、
天然源からイオン交換、ゲル濾過及び／又はアフィニテ
イーカラムクロマトグラフィー等によりＣＫ−ＭＢの精
製を試みる場合、血清中に存在するクレアキチンキナー
ゼには蛋白限定分解を受けたことなどによる亜分画も存
在することが知られており、純粋な標品をプールされた
血清から調製することは困難である。さらに、臓器、特
にヒトの臓器の入手についてはその資源が限定されるこ
と、培養細胞からは微量しか調製できないことなどを合
わせＣＫ標準物質を容易に大量に作製する方法が希求さ
れている。

【０００６】特にＣＫ−ＭＢはその安定性に問題が指摘
されている。例えば、ヒト血中ＣＫ−ＭＢ活性は、４℃
で４日間保存で２２％活性が低下することがＳｔｅｇｈ
ｅｒｓ ＪＰら（Ｃｌｉｎ．ｃｈｅｍ． Ｖｏｌ．２９
ｐｐ．１５３７、１９８３）により報告されている。
そのため、このように溶液状態で不安定なヒトＣＫを安
定化させるために、従来、溶液に種々の添加剤を加える
ことによって工夫がされてきた。その一例を挙げると、
還元糖化による安定化（特開昭６２−２５３３７８）、
還元型グルタチオン添加による安定化法（特開平０９−
２５２７９７）、ジスルフィド及び／またはチオスルフ
ォネートと反応させる方法（特開昭６２−１１８８８
９）、非チオール系還元剤を用いる方法（特開平０６−
１８９７６０）などがある。また、Ｌａｖｙ（Ｃｌｉ
ｎ．Ｃｈｅｍ． Ｖｏｌ．２１ Ｎｏ．１１ ｐｐ１６
９１、１９７５）は、天然源から得られたＭＭ型及びＢ
Ｂ型からインビトロでＭＢ型を再構成する方法を記載し
ている。しかしながら、上述のような添加剤や安定化処
理法等は、その煩雑さや他の血清成分に及ぼす影響を考
えると実用性に問題が残る。

【０００７】一方、遺伝子工学技術を使用した、ＣＫの
組換えタンパク質の製造も行われている。例えば、組換
えヒトＣＫの作製に関しては、昆虫細胞でＣＫ−ＢＢを
発現させたことが報告されている（Ｄｅ Ｋｏｋ ＹＪ
Ｍ ｅｔ ａｌ．Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．
１９９５ Ｖｏｌ．１４３ Ｎｏ．１ ｐｐ５９−６
５）。また、特公表０９−５０４６９８は、Ｍ型又はＢ
型サブユニットをコードする遺伝子を挿入した第１のベ
クターとＢ型又はＭ型サブユニットをコードする遺伝子
を挿入した第２のベクターとを用いて、原核生物宿主
（例えば大腸菌など）をコトランスフェクトし、ヘテロ
ダイマー（ＭＢ型）を調製する方法を記載している。こ
の第１及び第２の２種類のベクターを用いたコトランス
フェクトによりＣＫを構成する方法では、ＣＫ−ＭＢ、
ＣＫ−ＭＭ及びＣＫ−ＢＢの３種類のアイソザイムが形
成される。しかしながら特公表０９−５０４６９８は、
形質転換体あたり発現したＣＫ総活性のうちＣＫ−ＭＢ
の割合までは検討しておらず、記載されていない。組換
えＣＫ−ＭＢを優先的に効率よく取得することが、ＣＫ
−ＭＢをより安価に臨床等の現場で産業的利用するため
にも必要となる。

【０００８】また、特開平０６−２９２５８５は定型ク
レアチンキナーゼアイソフォームを調製する方法を記載
されている。具体的には、ＣＫのＭ型又はＢ型サブユニ
ットのＣ末端アミノ酸リジン残基を欠失させるように、
各サブユニットをコードする遺伝子に複製連鎖反応（Ｐ
ＣＲ）により部位特異的突然変異を生じさせる。しかし
ながら、上記特公表０９−５０４６９８と同様に、各サ
ブユニットをコードする遺伝子を含む２種類のベクター
をコトランスフェクトし、３種類のアイソザイムを発現
させる、という手法を採用している。さらに、特開平０
６−２９２５８５では、Ｃ末端アミノ酸リジン残基を欠
失させるように突然変異を施すことを必須要件としてい
るが、このような欠失変異体は天然ＣＫと同一の理化学
的性質、酵素学的性質ならびに免疫化学的性質がを有し
ているとは判定できにくいにもかかわらず、これらにつ
いて検討をしておらず、得られた組換え型ＣＫについて
活性の安定性の測定及び電気泳動による分離を行ってい
るに留まっている。

【０００９】よって、ＣＫ−ＭＢヘテロダイマーを高収
率で容易に得る方法は、その必要性にもかかわらず、本
発明前には得られていなかった。

【００１０】

【発明が解決しようとする課題】本発明は、クレアチン
キナーゼのＭ型サブユニットをコードする核酸及びＢ型
サブユニットをコードする核酸を含むベクターを提供す
ることを目的とする。本発明のベクターにおいて、 ｉ）Ｍ型サブユニットは、配列番号１のアミノ酸残基１
−３８１を有するポリペプチドであるか、あるいは当該
配列において１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠失、
置換もしくは付加による変異を含むアミノ酸配列を有
し、かつ、生物学的に活性なポリペプチドであり、そし
て ｉｉ）Ｂ型サブユニットは、配列番号３のアミノ酸残基
１−３８１を有するポリペプチドであるか、あるいは当
該配列において１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠
失、置換もしくは付加による変異を含むアミノ酸配列を
有し、かつ、生物学的に活性なポリペプチドである。

【００１１】本発明は、また、上記ベクターで形質転換
された宿主細胞を提供することを目的とする。

【００１２】本発明は、さらに、クレアチンキナーゼの
Ｍ型サブユニットおよびＢ型サブユニットを含むクレア
チンキナーゼヘテロダイマー組換えタンパク質の製造方
法を提供することを目的とする。

【００１３】本発明は、さらにまた、上記方法によって
製造された、クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットお
よびＢ型サブユニットを含むクレアチンキナーゼヘテロ
ダイマー組換えタンパク質を提供することを目的とす
る。

【００１４】本発明は、また、上記クレアチンキナーゼ
のＭ型サブユニットおよびＢ型サブユニットを含むクレ
アチンキナーゼヘテロダイマー組換えタンパク質を含
む、溶液安定性の組成物を提供することを目的とする。

【００１５】

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記問題
解決を目的として鋭意研究に努めた結果、単一のベクタ
ーにＭ型及びＢ型サブユニットをコードする遺伝子の双
方を連結して挿入し、組換えＣＫ−ＭＢヘテロダイマー
を高収率で取得することに成功し、本発明を想到した。

【００１６】ＣＫのＭ型およびＢ型サブユニット よって、本発明のベクターは、クレアチンキナーゼのＭ
型サブユニットをコードする核酸及びＢ型サブユニット
をコードする核酸の双方を含むことを特徴とする。

【００１７】ＣＫのＭ型サブユニット及びＢ型サブユニ
ットのアミノ酸配列は公知であり、例えば、Ｐｅｒｒｙ
ｍａｎ，Ｍ．Ｂら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．
Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１４０（３），ｐ．９８１−９
８９（１９８６）及びＶｉｌｌａｒｒｅａｌ−Ｌｅｖ
ｙ，Ｇ．ら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅ
ｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１４４（３），ｐ．１１１６−１１
２７（１９８７）等に記載されている。本発明のＣＫ−
Ｍサブユニットは、典型的には、本明細書の配列表の配
列番号１に記載の３８１アミノ酸配列を有する。配列番
号１はヒトのアミノ酸配列である（Ｇｅｎｂａｎｋ、登
録番号ＮＭ ０００１８２４，Ｐｅｒｒｙｍａｎ，Ｍ．
Ｂら，１９−ＭＡＲ−１９９９）。また、本発明のＣＫ
−Ｂサブユニットは、典型的には、本明細書の配列表の
配列番号３に記載の３８１アミノ酸配列を有する。配列
番号３はヒトのアミノ酸配列である（Ｇｅｎｂａｎｋ、
登録番号ＮＭ ００１８２３，Ｖｉｌｌａｒｒｅａｌ−
Ｌｅｖｙ，Ｇ．ら，１９−ＭＡＲ−１９９９）。

【００１８】天然のタンパク質の中にはそれを生産する
生物種の品種の違いや、生態系の違いによる遺伝子の変
異、あるいはよく似たアイソザイムの存在などに起因し
て１から複数個のアミノ酸変異を有する変異タンパク質
が存在することは周知である。配列番号１及び３は、各
々ヒトのＣＫ−Ｍ及びＣＫ−Ｂサブユニットのアミノ酸
配列であるが、他の霊長類に属する動物、あるいは他の
哺乳動物、例えば、ウシ、マウス、ヒツジ、イヌ等も本
発明において使用しうる。よって、本発明のＣＫ−Ｍサ
ブユニットは、配列番号１のアミノ酸残基１−３８１を
有するポリペプチドであるか、あるいは当該配列におい
て１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠失、置換もしく
は付加による変異を含むアミノ酸配列を有し、かつ、生
物学的に活性なポリペプチドも含む。同様に、本発明の
ＣＫ−Ｂサブユニットは、配列番号３のアミノ酸残基１
−３８１を有するポリペプチドであるか、あるいは当該
配列において１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠失、
置換もしくは付加による変異を含むアミノ酸配列を有
し、かつ、生物学的に活性なポリペプチドも含む。

【００１９】本明細書で使用する用語「アミノ酸変異」
とは、１以上のアミノ酸の置換、欠失、挿入及び／又は
付加などを意味する。本発明のＣＫ−Ｍサブユニット及
びＣＫ−Ｂサブユニットは、各々１及び３に記載のアミ
ノ酸配列を有するが、その配列を有するタンパク質のみ
に限定されるわけではなく、本明細書中に記載した特性
を有する限り全ての相同タンパク質を含むことが意図さ
れる。相同性は少なくとも７０％以上、好ましくは８０
％以上、より好ましくは９０％以上である。

【００２０】本明細書において、相同性のパーセント
は、例えばＡｌｔｓｃｈｕｌら（Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ
ｓ．Ｒｅｓ．２５．，ｐ．３３８９−３４０２，１９９
７）に記載されているＢＬＡＳＴプログラムを用いて配
列情報と比較し決定することが可能である。当該プログ
ラムは、インターネット上でＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎ
ｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆ
ｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）、あるいはＤＮＡ Ｄａ
ｔａ Ｂａｎｋ ｏｆ Ｊａｐａｎ（ＤＤＢＪ）のウェ
ブサイトから利用することが可能である。ＢＬＡＳＴプ
ログラムによる相同性検索の各種条件（パラメーター）
は同サイトに詳しく記載されており、一部の設定を適宜
変更することが可能であるが、検索は通常デフォルト値
を用いて行う。

【００２１】一般的に、同様の性質を有するアミノ酸同
士の置換（例えば、ある疎水性アミノ酸から別の疎水性
アミノ酸への置換、ある親水性アミノ酸から別の親水性
アミノ酸への置換、ある酸性アミノ酸から別の酸性アミ
ノ酸への置換、あるいはある塩基性アミノ酸から別の塩
基性アミノ酸への置換）を導入した場合、得られる変異
タンパク質は元のタンパク質と同様の性質を有すること
が多い。遺伝子組換え技術を使用して、このような所望
の変異を有する組換えタンパク質を作製する手法は当業
者に周知であり、このような変異タンパク質も本発明の
範囲に含まれる。

【００２２】その他の例として、Ｃｙｓ残基が欠失する
または他のアミノ酸で置き換えられる原因となる様に、
Ｃｙｓ残基をコードする配列を変化させ、再生時の不適
当な分子内ジスルフィド架橋の形成を防ぐことができ
る。置換されるアミノ酸は、トリプトファン、セリン、
アスパラギン酸およびリジンからなる基より選択され、
最も好ましくは、アミノ酸はトリプトファンである。

【００２３】同様に、生物活性への欠失または挿入によ
る潜在的効果を考慮することにより、アミノ酸配列を欠
失または付加することが可能である。例えば、酵母の発
現系を用いると均一の炭水化物が減少した類似体が発現
されるが、Ｎ−グリコシル化部位を修飾してグルコシル
化を排除することができる。真核生物のポリペプチド内
のグリコシル化部位は、アミノ酸のトリプレット、Ａｓ
ｎ−Ｘ−Ｙ（式中，ＸはＰｒｏを除く任意のアミノ酸で
あり、ＹはＳｅｒまたはＴｈｒである）を特徴とする。
このトリプレットをコードするヌクレオチド配列の適当
な修飾は、Ａｓｎ側鎖の炭水化物残基の結合を防ぐ置
換、付加または欠失を結果として生ずるであろう。ある
いは、ＫＥＸ２プロテアーゼ活性が存在する酵母系での
発現を強化するために、二塩基性のアミノ酸残基をコー
ドする配列を修飾することも可能である。

【００２４】本発明のＣＫ−ＢサブユニットおよびＣＫ
−Ｍサブユニットは、天然の各サブユニットと同様の物
理化学的性質の少なくとも１つを保持していることが好
ましい。本明細書中において「生物学的に活性な」と
は、ＣＫ−Ｂ及びＣＫ−Ｍの各サブユニットが、配列番
号１又は３のアミノ酸配列と異なるアミノ酸配列を有す
る場合であっても、天然の各サブユニットと同様にホモ
ダイマー又はヘテロダイマーを形成し、クレアチンキナ
ーゼとしての活性を有しうることを意味する。

【００２５】ＣＫのＭ型およびＢ型サブユニットの遺伝
子 本発明のＣＫヘテロダイマーは、例えば後述した実施例
に記載したように、ＣＫのＭ型およびＢ型サブユニット
の遺伝子を用いて遺伝子工学的に発現させることができ
る。本発明のＣＫのＭ型およびＢ型サブユニットをコー
ドする遺伝子は特に限定されず、天然由来のＤＮＡ、組
換えＤＮＡ、化学合成ＤＮＡの何れでもよく、またゲノ
ムＤＮＡクローン、ｃＤＮＡクローンの何れでもよい。
当業者は本明細書の記載および慣用された遺伝子工学技
術を用いて、本発明のＣＫのＭ型およびＢ型サブユニッ
トの遺伝子を容易に得ることが可能である。

【００２６】ＣＫのＭ型サブユニットの遺伝子は典型的
には、配列表の配列番号２に記載の塩基配列１−１１４
３を有する（Ｇｅｎｂａｎｋ，登録番号ＮＭ ００１８
２４）。ＣＫのＢ型サブユニットの遺伝子は典型的に
は、配列表の配列番号４に記載の塩基配列１−１１４３
を有する（Ｇｅｎｂａｎｋ，登録番号ＮＭ ００１８２
３）。配列番号２及び４は、ヒトのＭ型及びＢ型サブユ
ニットをコードする遺伝子の塩基配列である。しかしな
がら、これに限定されず、天然の遺伝子の中にはそれを
生産する生物種の品種の違いや、生態系の違いに起因す
る少数の変異やよく似たアイソザイムの存在に起因する
少数の変異が存在することは当業者に周知である。従っ
て、本発明のＣＫのＭ型およびＢ型サブユニットの遺伝
子は、配列表の配列番号２及び４に記載の塩基配列を有
する遺伝子のみに限定されるわけではなく、上述したＣ
ＫのＭ型およびＢ型サブユニットのポリペプチドをコー
ドする全ての遺伝子を包含する。

【００２７】本発明のＣＫのＭ型およびＢ型サブユニッ
トの遺伝子であって配列番号２又は４に記載されたヒト
遺伝子の塩基配列を有するもの、さらに配列番号２及び
４以外の塩基配列を有するものも、本明細書中の配列番
号１および３に記載されたヒトＣＫのＭ型およびＢ型サ
ブユニットタンパク質のアミノ酸配列およびそれをコー
ドするＤＮＡ配列、またはそれらの一部に基づいて、例
えば、ハイブリダイゼーションや核酸増幅反応等の遺伝
子工学の基本的手法を用いて得ることが可能である。こ
れらの遺伝子工学的手法を用いてヒト、あるいは他の生
物種からさらに同様の生理活性を有するタンパク質をコ
ードする遺伝子を単離することも可能である。

【００２８】遺伝子のスクリーニングのために使用する
ハイブリダイゼーション条件は特に限定されないが、一
般的にはストリンジェントな条件が好ましく、例えば、
６×ＳＳＣ、５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ、０．１％ＳＤ
Ｓ、２５℃ないし６８℃などのハイブリダイゼーション
条件を使用することが考えられる。この場合、ハイブリ
ダイゼーションの温度としては、より好ましくは４５℃
ないし６８℃（ホルムアミド無し）または２５℃ないし
５０℃（５０％ホルムアミド）を挙げることができる。
ホルムアミド濃度、塩濃度及び温度などのハイブリダイ
ゼーション条件を適宜設定することによりある一定の相
同性以上の相同性を有する塩基配列を含むＤＮＡをクロ
ーニングできることは当業者に周知であり、このように
してクローニングされた相同遺伝子も本発明の組換えＣ
Ｋヘテロダイマーを製造するために用いられ得る。

【００２９】核酸増幅反応は、例えば、複製連鎖反応
（ＰＣＲ）（サイキら、１９８５，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２
３０，ｐ．１３５０−１３５４）、ライゲース連鎖反応
（ＬＣＲ）（ウーら、１９８９，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ
４，ｐ．５６０−５６９；バリンガーら、１９９０，Ｇ
ｅｎｅ ８９，ｐ．１１７−１２２；バラニーら、１９
９１，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
８８，ｐ．１８９−１９３）および転写に基づく増幅
（コーら、１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．
Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，ｐ．１１７３−１１７７）等の
温度循環を必要とする反応、並びに鎖置換反応（ＳＤ
Ａ）（ウォーカーら、１９９２，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９，ｐ．３９２−３９
６；ウォーカーら、１９９２，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ．Ｒ
ｅｓ．２０，ｐ．１６９１−１６９６）、自己保持配列
複製（３ＳＲ）（グアテリら、１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎ
ａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７，ｐ．１８７
４−１８７８）およびＱβレプリカーゼシステム（リザ
イルディら、１９８８，ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
６，ｐ．１１９７−１２０２）等の恒温反応を含む。ま
た、欧州特許第０５２５８８２号に記載されている標的
核酸と変異配列の競合増幅による核酸配列に基づく増幅
（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｂａ
ｓｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ：ＮＡＳＡＢＡ）
反応等も利用可能である。好ましくはＰＣＲ法である。

【００３０】上記のようなハイブリダイゼーション、核
酸増幅反応等を使用してクローニングされる相同遺伝子
は、配列表の配列番号２又は４に記載の塩基配列に対し
て少なくとも７０％以上、好ましくは８０％以上、より
好ましくは９０％以上の相同性を有する。

【００３１】ＣＫのＭ型およびＢ型サブユニットをコー
ドする遺伝子の塩基配列に基づいて、ＣＫのＭ型および
Ｂ型サブユニットの遺伝子を得るための核酸増幅反応に
用いる増幅用オリゴヌクレオチドプライマーを作製でき
る。より詳細には、オリゴヌクレオチドは、例えば、配
列番号２又は４のヒトＣＫ−Ｍ型又はＢ型サブユニット
をコードする遺伝子の塩基配列から以下の条件を満たす
ように２つの領域を選択し： １）各領域の長さが１５−３０塩基であること； ２）各領域中のＧ＋Ｃの割合が４０−６０％であるこ
と；および ３）各領域間の距離が約１００−約１０００塩基である
こと 上記領域と同じ塩基配列若しくは上記領域に相補的な塩
基配列を有する一本鎖ＤＮＡを製造し、または、上記一
本鎖ＤＮＡによってコードされるアミノ酸残基を変化さ
せないように遺伝子暗号の縮重を考慮した一本鎖ＤＮＡ
の混合物を製造し、さらに必要であれば上記タンパク質
をコードする遺伝子の塩基配列に対する結合特異性を失
わないように修飾した上記一本鎖ＤＮＡを製造すること
を含む方法により製造することが可能である。当該オリ
ゴヌクレオチド用いて、例えば本発明のＣＫのＭ型およ
びＢ型サブユニットの遺伝子を検出もしくは単離するた
めのハイブリダイゼーション、あるいは適当な２種をプ
ライマー対として用いたＰＣＲ等の増幅反応に用いるこ
とが可能である。

【００３２】本発明のＣＫのＭ型およびＢ型サブユニッ
トの遺伝子であって、配列番号２又は４に記載されたヒ
ト遺伝子の塩基配列以外の塩基配列を有するものは、ま
た、本明細書中の配列番号１又は３に記載されたヒトＣ
ＫのＭ型およびＢ型サブユニットのアミノ酸配列および
それをコードするＤＮＡ配列、またはそれらの一部を利
用して、例えば、周知技術である部位特異的変異誘発
（例えば、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃ
ｈ，Ｖｏｌ．１０，Ｎｏ．２０，ｐ．６４８７−６５０
０，１９８２）を施すことによって得ることもできる。

【００３３】部位特異的変異誘発方は、例えば、所望の
変異である特定の不一致の他は、変異を受けるべき、例
えばファージ等の一本鎖ＤＮＡに相補的な合成オリゴヌ
クレオチドプライマーを用いて次のように行うことがで
きる。即ち、プライマーとして上記合成オリゴヌクレオ
チドを用いて上記一本鎖ＤＮＡに相補的な鎖を合成さ
せ、得られた二本鎖ＤＮＡで宿主細胞を形質転換する。
形質転換された宿主細胞の培養物を観点にプレートし、
上記ＤＮＡを含有する単一細胞からプラークを形成せし
める。すると、理論的には５０％の新コロニーが一本鎖
として変異を有するＤＮＡを含有し、残りの５０％が元
の配列を有する。上記所望の変異を有するＤＮＡと完全
に一致するものとはハイブリダイズするが、不一致のも
の、即ち元の配列を有するものとはハイブリダイズしな
い温度において、得られたプラークをラジオアイソトー
プ等で標識された合成プローブとハイブリダイズさせ
る。次に該プローブとハイブリダイズするプローブを拾
い、培養しＤＮＡを回収する。

【００３４】ＣＫヘテロダイマー製造のためのベクター 本発明は、組換えＣＫヘテロダイマーを製造するため
に、Ｍ型及びＢ型各サブユニットをコードする遺伝子
を、単一のベクター内にタンデムに連結することを特徴
とする。

【００３５】各サブユニットをコードする遺伝子は、読
み枠が一致するように（インフィレーム）で連続して結
合させてもよい。あるいは、限定されるわけではない
が、間にリンカー配列をコードするＤＮＡを存在させて
発現させてもよい。リンカー配列としては、特に限定さ
れないが、長さは６塩基−２０塩基程度が好ましい。よ
り具体的には、アミノ酸残基の繰り返し配列、例えば
（ＧＧＧＧＳ）_nがタンデムに繰り返された配列をリン
カーとして使用することが可能である。好ましくは、ｎ
は３である。あるいは、リンカー配列は市販のものを使
用でき、例えば、ファルマシアバイオテクのＬｉｎｋｅ
ｒ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘを使用できる。リンカーペプ
チドの存在により、Ｍ型サブユニットとＢ型サブユニッ
トが１：１の割合で近接して存在し、ＣＫ−ＭＢヘテロ
ダイマーをより形成しやすくなる。

【００３６】あるいは、各サブユニットをコードする遺
伝子の間、プロモーター、タンパク質生合成時に１６Ｓ
ｒＲＮＡと相補的塩基会合による開始複合体形成に関
与するＳＤ（Ｓｈｉｎｅ−Ｄａｌｇａｒｎｏ）配列等を
介在させてもよい。各サブユニットを同一のプロモータ
ー支配下においた場合は、Ｍ型、Ｂ型のサブユニットを
コードするｍＲＮＡが同等の割合で転写される。各サブ
ユニットを別々のプロモーター支配下においた場合に
は、各サブユニットのｍＲＮＡの転写量を調節すること
が可能となる。何れも場合も、各サブユニットをコード
する遺伝子をプロモーターとともに単一のベクターに挿
入することにより、ベクターの増殖能力に依存せずにｍ
ＲＮＡの転写について各サブユニット間の比率を調節す
ることが可能となる。

【００３７】本発明の遺伝子を利用して、Ｍ型サブユニ
ットとＢ型サブユニットをタンデムに結合して大量発現
することが可能となる。Ｍ型サブユニット及びＢ型サブ
ユニット同一ベクターにより発現させることにより、各
サブユニットをコードする遺伝子を別々のベクターに挿
入しコトランスフェクトさせた従来技術と異なり、転
写、翻訳された各サブユニットが細胞内において近接し
て存在し、ＭＢヘテロダイマーを安定して形成しやすく
なる。さらに、単一のベクターに挿入することにより、
ベクターの増殖能力に依存せずにｍＲＮＡの転写につい
て各サブユニット間の比率を調節できるので、プロモー
ターの調整等により、ＭＢヘテロダイマーをより形成し
やくすなるように調節を行うことが容易となる。

【００３８】プラスミドなどのベクターに本発明の遺伝
子のＤＮＡ断片を組み込む方法としては、例えば、「Ｓ
ａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏ
ｎｉｎｇ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａ
ｌ， ｓｅｃｏｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ）、Ｃｏｌｄ Ｓ
ｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，
１．５３（１９８９）」に記載の方法などが挙げられ
る。簡便には、市販のライゲーションキット（例えば、
宝酒造社製等）を用いることもできる。このようにして
得られる組換えベクター（例えば、組換えプラスミド）
は、宿主細胞（例えば、Ｅ−ｃｏｉｌ ＪＭ１０９，Ｔ
Ｂ１， ＬＥ３９２ またはＸＬ−１Ｂｌｕｅ等）に導
入される。

【００３９】プラスミドを宿主細胞に導入する方法とし
ては、「Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ら，Ｍｏｌｅｃｕｌａ
ｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍ
ａｎｕａｌ， （ｓｅｃｏｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ），Ｃ
ｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔ
ｏｒｙ，１．７４（１９８９）」に記載の塩化カルシウ
ム法または塩化カルシウム／塩化ルビジウム法、エレク
トロポレーション法、エレクトロインジェクション法、
ＰＥＧなどの化学的な処理による方法、遺伝子銃などを
用いる方法などが挙げられる。

【００４０】べクターは、簡便には当業界において入手
可能な組換え用べクター（例えば、プラスミドＤＮＡな
ど）に所望の遺伝子を常法により連結することによって
調製することができる。用いられるべクターの具体例と
しては、大腸菌由来のプラスミドとして、例えば、ｐＢ
ｌｕｅｓｃｒｉｐｔ、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＢＲ
３２２などが例示されるがこれらに限定されない。

【００４１】所望のタンパク質を生産する目的において
は、特に、発現べククーが有用である。発現べクターの
種類は、原核細胞および／または真核細胞の各種の宿主
細胞中で所望の遺伝子を発現し、所望のタンパク質を生
産する機能を有するものであれば特に限定されないが、
例えば、大腸菌用発現ベクターとして、ｐＱＥ−３０、
ｐＱＥ−６０、ｐＭＡＬ−Ｃ２、ｐＭＡＬ−ｐ２、ｐＳ
Ｅ４２０などが好ましく、酵母用発現べクターとしてｐ
ＹＥＳ２（サッカロマイセス属）、ｐＰＩＣ３．５Ｋ、
ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＡＯ８１５（以上ピキア属）、昆虫用
発現ベクターとしてｐＢａｃＰＡＫ８／９、ｐＢＫ２８
３、ｐＶＬ１３９２、ｐＢｌｕｅＢａｃ４．５などが好
ましい。好ましくは大腸菌用発現ベクターｐＴＲＰ
（（ＣｌｉｎＣｈｉｍ Ａｃｔａ． １９９５ Ｊｕｎ
１５；２３７ （１−２）：４３−５８）である。

【００４２】形質転換体は、所望の発現べクターを宿主
細胞に導入することにより調製することができる。用い
られる宿主細胞としては、本発明の発現べクターに適合
し、形質転換され得るものであれば特に制限はなく、本
発明の技術分野において通常使用される天然の細胞、ま
たは人工的に樹立された組換え細胞など種々の細胞を用
いることが可能である。例えば、細菌（エシェリキア属
菌、バチルス属菌）、酵母（サッカロマイセス属、ピキ
ア属など）、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞などが挙げ
られる。

【００４３】宿主細胞は、大腸菌、酵母または昆虫細胞
が好ましく、具体的には、大腸菌（Ｍ１５、ＪＭ１０
９、ＢＬ２１等）、酵母（ＩＮＶＳｃ１（サッカロマイ
セス属）、ＧＳ１１５、ＫＭ７１（以上ピキア属）な
ど）、昆虫細胞（ＢｍＮ４、カイコ幼虫など）などが例
示される。また、動物細胞としてはマウス由来、アフリ
カツメガエル由来、ラット由来、ハムスタ−由来、サル
由来またはヒト由来の細胞若しくはそれらの細胞から樹
立した培養細胞株などが例示される。特に好ましい宿主
細胞は大腸菌、より好ましくは大腸菌ＪＭ１０９（例え
ば、宝酒造社より入手可能）である。

【００４４】宿主細胞として細菌、特に大腸菌を用いる
場合、一般に発現べクターは少なくとも、プロモーター
／オペレーター領域、開始コドン、ＣＫ−Ｍサブユニッ
トをコードする遺伝子、ＣＫ−Ｂサブユニットをコード
する遺伝子、終止コドン、ターミネーターおよび複製可
能単位から構成される。

【００４５】宿主細胞として酵母、植物細胞、動物細胞
または昆虫細胞を用いる場合には、一般に発現べクター
は少なくとも、プロモーター、関始コドン、ＣＫ−Ｍサ
ブユニットをコードする遺伝子、ＣＫ−Ｂサブユニット
をコードする遺伝子、終止コドン、ターミネーターを合
んでいることが好ましい。またシグナルペブチドをコー
ドするＤＮＡ、エンハンサー配列、所望の遺伝子の５’
側および３’側の非翻訳領域、選択マーカー領域または
複製可能単位などを適宜含んでいてもよい。

【００４６】本発明のべクタ−において、好適な開始コ
ドンとしては、メチオニンコドン（ＡＴＧ）が例示され
る。また、終止コドンとしては、常用の終止コドン（例
えば、ＴＡＧ、ＴＧＡ、ＴＡＡなど）が例示される。

【００４７】複製可能単位とは、宿主細胞中でその全Ｄ
ＮＡ配列を複製することができる能力をもつＤＮＡを意
味し、天然のプラスミド、人工的に修飾されたプラスミ
ド（天然のプラスミドから調製されたプラスミド）およ
び合成プラスミド等が含まれる。好適なプラスミドとし
ては、Ｅ．ｃｏｉｌではブラスミドｐＱＥ３０、ｐＥＴ
またはｐＣＡＬもしくはそれらの人工的修飾物（ｐＱＥ
３０、ｐＥＴまたはｐＣＡＬを適当な制限酵素で処理し
て得られるＤＮＡフラグメント）が、酵母ではプラスミ
ドｐＹＥＳ２もしくはｐＰＩＣ９Ｋが、また昆虫細胞で
はプラスミドｐＢａｃＰＡＫ８／９等があげられる。

【００４８】エンハンサー配列、ターミネーター配列に
ついては、例えば、それぞれＳＶ４０に由来するもの
等、当業者において通常使用されるものを用いることが
できる。

【００４９】選択マーカーとしては、通常使用されるも
のを常法により用いることができる。例えばテトラサイ
クリン、アンピシリン、またはカナマイシンもしくはネ
オマイシン、ハイグロマイシンまたはスペクチノマイシ
ン等の抗生物質耐性遺伝子などが例示される。

【００５０】発現べクターは、少なくとも、上述のプロ
モータ−、開始コドン、ＣＫ−Ｍサブユニットをコード
する遺伝子、ＣＫ−Ｂサブユニットをコードする遺伝
子、終止コドン、およびターミネーター領域を連続的か
つ環状に適当な複製可能単位に連結することによって調
製することができる。またこの際、所望により制限酵素
での消化やＴ４ＤＮＡリガーゼを用いるライゲーション
等の常法により適当なＤＮＡフラグメント（例えば、リ
ンカー、他の制限酵素部位など）を用いることができ
る。

【００５１】また、本発明のＣＫ−ＭＢヘテロダイマー
は他のタンパク質あるいはポリペプチドと共有結合また
は凝集させるように、これらをコードする遺伝子と結合
させて発現させてもよい。このような融合体として、例
えば、翻訳と同時にまたは翻訳後にその合成部位から細
胞膜または細胞壁の内側または外側の部位へ複合体を運
搬することに関与する、組換えタンパク質ののＮ末端領
域またはＣ末端領域のシグナルまたはリーダーポリペプ
チドを含む（例えば、サッカロミセスのα因子リーダ
ー）。あるいは、ＣＫ−ＭＢヘテロダイマー融合体は、
ＣＫ−ＭＢヘテロダイマーの精製および同定を容易にす
るために加えたポリペプチド（例えば、ポリ−Ｈｉｓ）
との融合体であってもよい。

【００５２】融合タンパク質は、所望の配列からフラグ
メントを酵素で切断および結合する慣用的技術を用い
て、調製することができる。合成オリゴヌクレオチドを
用いるＰＣＲ技術は、所望のフラグメントを調製および
／または増幅させるために用いることができる。所望の
配列を示す合成のオリゴヌクレオチドもまた、融合タン
パク質をコードするＤＮＡ構築物を調製するために用い
ることができる。また、融合タンパク質は、リーダー
（またはシグナルペプチド）配列、オリゴマー化領域
（例えば、ロイシンジッパー部分または適当なジッパー
部分）リンカー配列、および融合タンパク質を容易に精
製または迅速に検出するための手段を提供する免疫原性
の高い部分をコードする配列等を含む、１つまたは複数
の付加配列を含むことができる。

【００５３】シグナルペプチドは、細胞からのタンパク
質の分泌を促進する。Ｆｌａｇ（登録商標）オクタペプ
チド（Ｈｏｐｐら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，
６：１２０４，１９８８）は、融合タンパク質の生物活
性を変化させず、高い免疫原性を持ち、そして発現した
融合タンパク質の迅速な検出および容易な精製を可能に
する、特異的モノクローナル抗体によって可逆的に結合
されるエピトープを提供する。また、Ｆｌａｇ（登録商
標）配列は、ウシの粘膜のエンテロキナーゼによって、
Ａｓｐ−Ｌｙｓ対に続くすぐの残基で特異的に切断さ
れ、このペプチドでキャップされた融合タンパク質はま
た、大腸菌内での細胞内分解にも耐性である。Ｆｌａｇ
（登録商標）と結合するネズミのモノクローナル抗体
は、ＡＴＣＣに寄託され（寄託番号 ＨＢ ９２５
９）；Ｆｌａｇ（登録商標）配列を含む融合タンパク質
を抗体を用いて精製する方法は、米国特許第５，０１
１，９１２号に記載されており、ここに参照として採用
される。

【００５４】本発明のＣＫ−Ｍサブユニット及び又はＣ
Ｋ−Ｂサブユニットをコードする遺伝子は、抗体の定常
領域（以下、「Ｆｃ領域」と言う）をコードする遺伝子
と結合させて発現させてもよい。適当なＦｃ領域は、プ
ロテインＡあるいはプロテインＧと結合することができ
るか、あるいは、Ｆｃ領域を含む融合タンパク質の精製
あるいは検出に用いることのできる抗体によって認識さ
れうる。Ｆｃ領域として例えば、公知のヒトのＩｇＧ１
またはネズミのＩｇＧ１のＦｃ領域が使用可能である。
適当なＦｃ領域のフラグメント、例えば、プロテインＡ
との結合に応答するアミノ酸の配列を欠失させ、そうす
ることによってフラグメントがプロテインＧとは結合す
るがプロテインＡとは結合しないようにした、ヒトＩｇ
Ｇ１のＦｃ領域もまた、用いることができる。

【００５５】限定されるわけではないが、本発明の組換
え発現用ベクターとしては、後述する実施例１に記載し
たｐＴＲＰ−ｈＣＫＭＢが使用可能である。ｐＴＲＰ−
ｈＣＫＭＢでは、ＣＫ−Ｍサブユニットをコードする遺
伝子とＣＫ−Ｂサブユニットをコードする遺伝子が、ｐ
ＴＲＰプロモーター配列、ＳＤ（Ｓｈｉｎｅ−Ｄａｌｇ
ａｒｎｏ）配列を介して連結されている。ＣＫ−Ｍサブ
ユニットをコードする遺伝子とＣＫ−Ｂサブユニットを
コードする遺伝子は、各々の上流に位置するｐＴＲＰプ
ロモーターによって、発現のコントロールを受ける。ｐ
ＴＲＰ−ｈＣＫＭＢはさらに、大腸菌宿主細胞内で複製
のためのｏｒｉ、形質転換体を選抜するための選択マー
カーとしてのＡｍｐ等の構成要素を含む。

【００５６】本発明の発現べクターの宿主細胞への導入
［形質転換（形質移入）］は従来公知の方法を用いて行
うことができる。

【００５７】例えば、細菌（Ｅ．ｃｏｉｌ， Ｂａｃｉ
ｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ等）の場合は、例えばＣｏ
ｈｅｎらの方法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．ＵＳＡ，６９，２１１０（１９７２）］、プロトプ
ラスト法［Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，１６８，１
１１（１９７９）］やコンピテント法［Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂ
ｉｏｌ．，５６，２０９（１９７１）］によって、Ｓａ
ｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅの場合
は、例えばＨｉｎｎｅｎらの方法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ
ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，７５，１９２７（１９
７８）］やリチウム法［Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１
５３，１６３（１９８３）］によって、植物細胞の場合
は、例えばリーフディスク法［Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２
７，１２９（１９８５）］、エレクトロポレ−ション法
［Ｎａｔｕｒｅ，３１９，７９１（１９８６）］によっ
て、動物細胞の場合は、例えばＧｒａｈａｍの方法［Ｖ
ｉｒｏｌｏｇｙ，５２，４５６（１９７３）］、昆虫細
胞の場合は、例えばＳｕｍｍｅｒｓらの方法［Ｍｏｌ．
Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，３，２１５６−２１６５（１９
８３）］によってそれぞれ形質転換することができる。

【００５８】本発明の実施例においては、特に、ＣＫ−
Ｍサブユニット及びＣＫ−Ｂサブユニットをコードする
遺伝子をタンデムに連結して前述した大腸菌用発現ベク
ターｐＴＲＰに挿入後、大腸菌株ＪＭ１０９（宝酒造社
製）を宿主細胞として形質転換した。得られた形質転換
体ＪＭ１０９／ｐＴＲＰ−ｈＣＫＭＢは、平成１２年４
月２０日に、寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７１４１で、工
業技術院生命工学工業技術研究所（〒３０５−００４６
茨城県つくば市東１丁目１番３号）に寄託されてい
る。

【００５９】ＣＫヘテロダイマータンパク質の発現及び
精製 上述のように作成した、クレアチンキナーゼのＭ型サブ
ユニットをコードする核酸及びＢ型サブユニットをコー
ドする核酸をタンデムに連結して含むベクターを適当な
宿主細胞に形質転換し、本発明のＣＫヘテロダイマータ
ンパク質を製造することができる。より詳細には、本発
明のベクターで形質転換された宿主細胞を、組換えタン
パク質の発現が可能な条件下で培養し、そして、当該培
養物からクレアチンキナーゼのＭ型サブユニットおよび
Ｂ型サブユニットを含むＣＫヘテロダイマー組換えタン
パク質を回収する。

【００６０】組換えタンパク質の発現に適した条件と
は、限定されるわけではないが、例えば、宿主細胞が大
腸菌の場合、ＬＢ培地（０．５％酵母エキス、１％ポリ
ペプトン、１％ ＮａＣｌ）で２５℃ないし４２℃の範
囲で、好ましくは３７℃で、８時間ないし１６時間培養
することを含む。

【００６１】遺伝子工学的に発現された組換えＣＫヘテ
ロダイマーは、慣用されている精製技術、例えば、硫安
沈殿法およびゲル濾過カラムクロマトグラフィー等を用
いて精製することができる。より詳細には、例えば、宿
主細胞を必要により超音波処理し、硫安沈殿法、ゲルろ
過カラムクロマトグラフィー（Ｂｕｔｈｙｌ−Ｔｏｙｏ
ｐｅａｒｌ Ｃ６５０ゲル（東ソー製）、Ｓｕｐｅｒｄ
ｅｘ Ｐｇ７５（ファルマシア製）など）等のタンパク
質の精製および単離のために慣用される方法を適宜組み
合わせることによりＣＫ活性画分を得ることができる。
さらに、例えば、Ｑ−セファロースカラム（ファーマシ
ア社製、スウェーデン）等のセファロースカラムにより
ＣＫ画分をさらに、ＭＭ型、ＭＢ型及びＢＢ型のピーク
に分離することができる（実施例２、図２）。Ｓｅｐｈ
ａｃｒｙｌ−Ｓ２００ＨＲカラム（ファーマシア社製、
スウェーデン）等により、さらに精製を進めることによ
り、ＣＫ活性を有する画分のうち、ＣＫ−ＭＢ画分を分
離することができる（実施例２）。

【００６２】得られたＣＫヘテロダイマーについてＣＫ
活性を確認することができる。ヒトＣＫ活性の測定にあ
たっての諸条件については、臨床化学（１９９０年、第
１９巻：１８９ページ 「ヒト血清中酵素活性測定の勧
告法−クレアチンキナーゼ−」）に詳細が記載されてお
り、前述の文献名：臨床検査法提要（改訂第３１版）原
著金井 泉、編著金井正光 １９９８年（金原出版）第
６３６頁−第６４０頁には活性測定試薬の調製方法なら
びに測定手順が記載されている。また、ヒト血清中のＣ
Ｋ活性を測定するための臨床検査用試薬を用いてヒトＣ
Ｋ活性を測定することも可能で、市販品としては関東化
学製（メルクオートリキッドＣＫ）などがある。ヒトＣ
Ｋ活性測定をおこなうための計測機器としては、分光光
度計を用いてＣＫ活性測定することができる。また、市
販臨床検査用ＣＫ活性測定試薬のメーカー操作手順に従
って臨床検査用自動分析機器（日立７１５００型自動分
析機 日立製作所製など）を用いてＣＫ活性測定を行う
こともできる。

【００６３】ＣＫヘテロダイマーを含む組成物 本発明はさらに、ＣＫ−ＭおよびＣＫ−Ｂを含むＣＫヘ
テロダイマー組換えタンパク質を含む、組成物を提供す
る。

【００６４】本発明前は、一般にＣＫの安定化を目的と
して、例えば、還元糖、還元型グルタチオン、ジスルヒ
ド及び／またはチオスルフォネート、非チオール系還元
剤などの安定化剤を使用していた。本発明の組成物は、
このような安定化剤を含まない条件下で、血清、血漿、
生理食塩水にアルブミンを血清濃度と同等になるよう
に、例えば０．５％（ｗ／ｖ）で添加したような人工血
清などの溶媒に溶解した状態で、例えば冷蔵保存（１１
℃以下、好ましくは２℃ないし８℃）で４ヶ月間８０％
以上、好ましくは８５％以上の溶液安定性を示す。よっ
て、本発明のＣＫヘテロダイマー含有組成物は溶液で長
期間安定保存が可能なため、使用の都度凍結乾燥粉末を
溶解する必要性がなく、簡便に使用可能である。

【００６５】本発明の組成物は、先の製造方法により得
られた組換えホモヘテロダイマーを主に含むことを特徴
とする。臨床検査法提要（改訂第３１版）原著金井
泉、編著金井正光 １９９８年（金原出版）第６３６頁
−第６４３頁には、ヒト血清ＣＫ及び／またはＣＫアイ
ソザイムを測定する方法が記述されているように、ヒト
ＣＫ−ＭＢを測定するための対照物質としては、組換え
ＣＫヘテロダイマーから成る組成物を用いるのが望まし
い。また、ヒトＣＫ総活性を測定するに場合は組換えヒ
トＣＫ−ＭＢヘテロダイマー組成物もしくは／及び組換
えヒトＣＫ−ＭＢヘテロダイマーならびにＣＫ−ＭＭ及
び／またはＣＫ−ＢＢホモダイマーをも含む組換えＣＫ
アイソザイム混合物を含む組成物を測定対照に用いるこ
とができる。本発明の組成物とは、組換えヒトＣＫ−Ｍ
Ｂヘテロダイマー組成物ならびにアイソザイム混合物か
らなる組換えヒトＣＫ組成物をも含む。

【００６６】本発明のＣＫヘテロダイマーは、例えば、
医薬用、好ましくは臨床診断の対照として、また、日常
的に実施されている臨床検査の測定値が正確に精度よく
実施されたかどうかを確証するためにの精度管理用物質
として用いるために活性のあるかたちで含まれるように
処方され、利用されることができる。この場合、Ｍ型及
びＢ型各サブユニットをコードする遺伝子を、単一のベ
クター内にタンデムに連結したものを利用することによ
り、大量に製造することができる。

【００６７】本発明のＣＫヘテロダイマー含有組成物
は、例えば、ＣＫの酵素活性レベルが関連する生理学的
状態の診断、例えば、心筋梗塞、心筋虚血、狭心症、頻
脈、心筋炎、クモ膜下出血、卒中、脳腫瘍、髄膜炎、脳
炎等の臨床状態の診断、予防、治療等に使用し得る。

【００６８】臨床診断の対照もしくは、日常的に実施さ
れる臨床検査の精度管理用物質として、組換えヒトＣＫ
−ＭＢヘテロダイマーは、ヒト血清正常域レベルの濃度
で添加される。好ましくは、３０Ｕ／ｌないし３００Ｕ
／ｌ、また、異常域レベルの濃度と併用されることもあ
る。異常域濃度の設定は正常域レベルの３倍濃度など目
安にで用いられ、好ましくは１２０Ｕ／ｌないし９００
Ｕ／ｌとなる。

【００６９】本発明の組成物を医薬用組成物として使用
する場合、全身または局所的に、好ましくは静脈内、皮
下、皮内、筋肉内に非経口的に、あるいは経口的に投与
しうる。非径行的に投与可能なＣＫ−ヘテロダイマー含
有組成物の調製は、ｐＨ、等張性、安全性等を考慮し、
当業者の技術範囲内において行い得る。

【００７０】本発明の組成物の用量用法は、組成物の作
用、例えば、患者の症状の性質および／または重度、体
重、性別、食餌、投与の時間、並びに他の臨床的作用を
左右する種々の因子を考慮し、診察する医師により決定
される。当業者は、これらの要素に基づき、本発明の組
成物の用量を決定することができる。

【００７１】本発明の組成物は、所望により生理学的に
受容可能な希釈剤および／または担体と種々の方法で処
方しても良い。例えば、これらは液体希釈剤および／ま
たは担体を含む組成物、例えばしばしば非経口投与の為
に注射可能な形態をとり、そしてその為に滅菌され発熱
物質を含まない、水性又は油性の溶液、懸濁液若しくは
乳液として適用しても良い。非経口投与が本発明の好ま
しい化合物には好ましい。経口投与目的の組成物は、液
体希釈剤若しくは担体を含んでいても良いが、固体、例
えば澱粉、ラクトース、デキストリン若しくはステアリ
ン酸マグネシウムのような慣用された固体担体物質、を
使用するのが更に一般的である。このような固体組成物
は、例えば錠剤、カプセル（スパンスルを含む）等のよ
うに、適宜に成型されたものであっても良い。本発明の
組成物は、さらに防腐剤、湿潤剤、乳化剤、分散剤など
の補助剤を含んでいてもよい。

【００７２】このようにして得られる抗菌剤の剤形とし
ては、使用する用途に応じて決めればよく、上記のよう
な添加物と混合し、錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、液剤、
乳剤等の形態により添付することができる。

【００７３】本発明の組成物は、安定化剤を含まなくて
も長期間保存が可能である。以下、実施例によって本発
明を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲
を限定するためのものではない。当業者は本明細書の記
載に基づいて容易に本発明に修飾・変更を加えることが
でき、それらも本発明の技術的範囲に含まれる。

【００７４】

【実施例】実施例１ ＣＫ−Ｍ及びＣＫ−Ｂサブユニッ
ト遺伝子を連結したｐＴＲＰ発現プラスミドの構築 （１） ヒトＣＫのＭサブユニット遺伝子及びＢサブユ
ニット遺伝子の単離 市販ｃＤＮＡライブラリー（Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ社製、
Ｍａｒａｔｈｏｎ Ｒｅａｄｙ^TM ｃＤＮＡ）を鋳型
に、下記のＰＣＲプライマーを用いてＰＣＲ反応を行
い、ヒトＣＫのＭサブユニット遺伝子及びＢサブユニッ
ト遺伝子を単離した。

【００７５】

【化２】ＣＫ−Ｍサブユニット遺伝子増幅のためのＰＣＲプライマー （センスプライマー） ５’−ＣＣＧＡＡＴＴＣＡＴＧＣＣＡＴＴＣＧＧＴＡＡＣＡＣＣＣ−３’ ＥｃｏＲＩ部位 （アンチセンスプライマー） ５’−ＡＴＧＧＡＴＣＣＣＴＡＣＴＴＣＴＧＧＧＣＧＧＧＧＡＴＣ−３’ ＢａｍＨＩ部位ＣＫ−Ｂサブユニット遺伝子増幅のためのＰＣＲプライマー （センスプライマー） ５’−ＡＴＧＡＡＴＴＣＡＴＧＣＣＣＴＴＣＴＣＣＡＡＣＡＧＣＣ−３’ ＥｃｏＲＩ部位 （アンチセンスプライマー） ５’−ＣＣＧＧＡＴＣＣＴＣＡＴＴＴＣＴＧＧＧＣＡＧＧＣＡＴＧ−３’ ＢａｍＨＩ部位 ＣＫ−Ｍサブユニット遺伝子増幅のためのゼンスプライ
マー及びアンチセンスプライマーは、各々配列番号２に
記載の塩基配列１−１９、及び１１２８−１１４３に対
応する。ＣＫ−Ｂサブユニット遺伝子増幅のためのゼン
スプライマー及びアンチセンスプライマーは、各々配列
番号４に記載の塩基配列１−１９、及び１１２８−１１
４３に対応する。各プライマーの５’末端には、核酸断
片の単離、取り扱いを容易にするために制限酵素部位が
付加されている。また、ＰＣＲ増幅反応の条件を表１に
まとめた。

【００７６】

【表１】 ＣＫ−Ｍサブユニット遺伝子 ＣＫ−Ｂサブユニット遺伝 子 鋳型ｃＤＮＡ ヒト骨格筋 ヒト脳 ポリメラーゼ Taq polymerase（宝酒造製） Taq polymerase（宝酒造製） ＰＣＲ反応（変性） ９５℃ ３０秒 （変性） ９５℃ ３０秒 （アニーリング）５５℃ ３０秒 （アニーリング）５５℃ ３０秒 （伸長） ７２℃ ９０秒 （伸長） ７２℃ ９０秒 （サイクル数） ３０回 （サイクル数） ３０回 ＰＣＲ反応液を試料に１％アガロース電気泳動をおこな
い、およそ１．２ｋｂｐのＰＣＲ産物を確認した。ＰＣ
Ｒ反応液よりフェノール抽出、エタノール沈殿にておよ
そ１．２ｋｂｐ増幅断片を精製し制限酵素ＥｃｏＲＩ／
ＢａｍＨＩにて３７℃、一晩インキュベートした。得ら
れた制限酵素処理断片を１％アガロース電気泳動ゲルよ
り切り出し、同様な制限酵素処理をおこなったｐＢｌｕ
ｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）クローニングプラスミド
断片と１６℃で３５分間、市販ｌｉｇａｔｉｏｎ ｋｉ
ｔ（宝酒造製）を用いて連結挿入した。クローニングプ
ラスミドをそれぞれｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ
（−）−ｈＣＫＭ及びｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ
（−）−ｈＣＫＢと名づけ、市販大腸菌コンピテントセ
ルＪＭ１０９（宝酒造製）に形質転換し大腸菌形質転換
体のかたちで単離した各ヒトＣＫサブユニット遺伝子を
保存した。また、青白反転した形質転換体コロニーより
ＣＫサブユニット挿入プラスミドを抽出し、単離した遺
伝子断片をＤＮＡシーケンシングしたところ、Ｍサブユ
ニット遺伝子はＧｅｎｂａｎｋ ｌｏｃｕｓ ＨＵＭＣ
ＫＭＡのＯＲＦ配列とＢサブユニット遺伝子はＧｅｎｂ
ａｎｋｌｏｃｕｓ ＨＵＭＣＫＢのＯＲＦ配列と一致し
た。

【００７７】（２） タンデムに連結した組換えヒトＣ
Ｋ−ＭＢヘテロダイマー蛋白を発現するためのプラスミ
ド（ｐＴＲＰ−ｈＣＫＭＢ）の構築 ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）−ｈＣＫＭ及び
ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）−ｈＣＫＢプラ
スミドよりヒトＣＫサブユニット遺伝子を含むＥｃｏＲ
Ｉ／ＨｉｎｄＩＩＩ断片を、内田ら記載の方法（Ｃｌｉ
ｎ．Ｃｈｅｍ．Ａｃｔａ．１９９５ Ｊｕｎ １５；２
３７（１０２）：４３−５８）に従い、調製した大腸菌
発現用ｐＴＲＰベクターの強力なトリプトファンプロモ
ーター下流のＥｃｏＲＩ／ＨｉｎｄＩＩＩ挿入部位に連
結し、いったんＣＫ−Ｍ及び−Ｂ単独の発現プラスミド
を構築した（各々、ｐＴＲＰ−ＣＫ−Ｍ及びｐＴＲＰ−
ＣＫ−Ｂ）。

【００７８】次いでＰプロモーター、ＳＤ配列およびＣ
Ｋサブユニット構造遺伝子から成る各断片がタンデムに
連結されるように以下のような工程を行った。先ず、ｐ
ＴＲＰ−ＣＫ−Ｍ上からＨｉｎｄＩＩＩ／ＳａｌＩ部位
（ｔｒｐＰ及びＣｋ−Ｍ ＤＮＡを含む）を切り出し、
ＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）プラスミドのＨｉ
ｎｄＩＩＩ／ＳａｌＩ部位に挿入した（Ｂｌｕｅｓｃｒ
ｉｐｔＩＩＳＫ（−）−ｔｒｐＰ＋ＣＫ−Ｍ）。次い
で、ｐＴＲＰ−ＣＫ−Ｂ中のＣＫ−Ｂサブユニット遺伝
子断片下流のＸａｂａＩ部位に、Ｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ
ＩＩＳＫ（−）−ｔｒｐＰ＋ＣＫ−Ｍから制限酵素Ｘｂ
ａＩを用いて切り出した断片（ｔｒｐＰ及びＣＫ−Ｍ
ＤＮＡを含む）を挿入し、ｐＴＲＰ−ＣＫ−Ｍ／Ｂを構
築した。

【００７９】得られたｐＴＲＰ−ＣＫ−Ｂ／Ｍでは、Ｔ
ＲＰプロモーター、ＳＤ配列、ＣＫ−Ｂ ＤＮＡ、さら
にＴＲＰプロモーター、ＳＤ配列及びＣＫ−Ｍ ＤＮＡ
がタンデムに連結挿入されている。図１に、ヒトＣＫ−
ＭＢヘテロダイマータンパク質を発現するプラスミドｐ
ＴＲＰ−ｈＣＫ−Ｍ／Ｂの構築フローを図１に示した。

【００８０】実施例２ 組換えクレアチンキナーゼアイ
ソザイムの分離 実施例１で作製した発現プラスミドｐＴＲＰ−ｈＣＫ−
Ｍ／Ｂを用いて宿主大腸菌ＪＭ１０９を形質転換し、大
腸菌形質転換体（ＪＭ１０９／ｐＴＲＰ−ｈＣＫＭＢ）
を得た。大腸菌形質転換体を取得する方法については、
その操作手順が例えばラボマニュアル遺伝子工学 １０
９ページ（村松正実編１９８８丸善株式会社）に詳しく
記述されている。得られた形質転換体ＪＭ１０９／ｐＴ
ＲＰ−ｈＣＫＭＢは、平成１２年４月２０日に、寄託番
号ＦＥＲＭ ＢＰ−７１４１で、工業技術院生命工学工
業技術研究所（〒３０５−００４６ 茨城県つくば市東
１丁目１番３号）に寄託した。されている。

【００８１】次いで、ヒトＣＫ発現株（ＪＭ１０９／ｐ
ＴＲＰ−ｈＣＫＭＢ）を５０μｇ／ｍＬのアンピシリン
ナトリウムを含むＬＢ培地（０．５％酵母エキス、１％
ポリペプトン、１％ ＮａＣｌ）で３７℃、一晩、フラ
スコ振盪培養した。

【００８２】得られた培養菌体を集菌分離し、５ｍＭ
メルカプトエタノールを含む５０ｍＭ リン酸バッファ
ー（ｐＨ７．５）に菌体を懸濁した。超音波破砕後の遠
心分離上清を組換えＣＫ抽出液とした。次いで、抽出液
から７０％飽和硫安塩析にて組換えＣＫを沈殿物として
回収した。塩析沈殿物を１．５Ｍ 硫安濃度（ｐＨ７．
５）にて溶解しＢｕｔｈｙｌ−Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ Ｃ
６５０ゲル（東ソー製）にて疎水カラムクロマトグラフ
ィを実施した。ＣＫ活性は１．５−０Ｍ 硫安勾配（ｐ
Ｈ７．５）にて溶出された。ＣＫ活性溶出ピークを集
め、限外ろ過膜（ＹＭ１０、アミコン製）を用いて濃縮
後、５０ｍＭ リン酸バッファー（ｐＨ７．５）に透析
した。疎水クロマトグラフィ溶出分画をＱ−Ｓｅｐｈａ
ｒｏｓｅカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製、スウェーデ
ン）に吸着させ、０−１Ｍ ＮａＣｌのグラジエント溶
出にてＣＫアイソザイムの分離を試みた。

【００８３】その結果、ＣＫ活性は、ＭＭ型（非吸着分
画）、ＭＢ型（溶出ピーク１）、ＢＢ型（溶出ピーク
２）に分離された。結果を図２に示す。図２に示される
ように、各ＣＫ分画のＣＫ活性比率はそれぞれ、ＭＭ：
４５％、ＭＢ：４５％、ＢＢ：１０％となり本組換え菌
株中ではＣＫ−ＭＢが高含量で発現していることを見出
した。また、本発現菌株のみで３種類のヒト組換えＣＫ
アイソザイムが調製しうることも確認できた。組換えＣ
Ｋ−ＭＢ分画については、さらにＳｅｐｈａｃｒｙｌ−
Ｓ２００ＨＲカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製、スェーデ
ン）によるゲルろ過クロマトグラフィを行い、電気泳動
的に単一な最終標品とした。最終精製標品の比活性は５
３３Ｕ／ｍｇを示した。

【００８４】なお、ＣＫ活性の測定は、市販臨床検査用
ヒトＣＫ活性測定試薬（メルクリキッド−ＣＫ、関東化
学製）を用いた。活性測定には７１５０型日立自動分析
機（日立製作所製）を使用し３７℃で計測した。ＣＫ活
性は１分間当たり１μモルのＡＴＰ生成量を１単位とし
た。

【００８５】以下、本実施例において得られた組換えＣ
Ｋの性質について表２にまとめた。

【００８６】

【表２】形質転換体中のＣＫアイソザイム発現率 ＭＭ ： ４５％ ＭＢ ： ４５％ ＢＢ ： １０％サブユニット分子量 ４５，０００ （ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）等電点 ｐＩ＝５．２−５．３比活性 ５３３Ｕ／ｍｇ（３７℃）血清中での液状安定性 １１℃保存で１２０日以上安定実施例３ ヒト脱脂血清中における組換えＣＫ−ＭＢの
液状安定性 市販ヒト脱脂プール血清（ＣＡ１：インクスター製、米
国）に実施例２で調製した組換えＣＫ−ＭＢ精製標品を
１１８Ｕ／Ｌ及び４４９Ｕ／Ｌになるように添加した２
種類を作製した。その後、１１℃のインキュベーターに
静置し４ヶ月間保存した。その間、一ヶ月間隔でＣＫ−
ＭＢ残存活性を測定した。

【００８７】その結果を図３に示す。図３に示されるよ
うに、１１８Ｕ／Ｌ及び４４９Ｕ／Ｌのいずれの濃度の
場合も、本発明の組成物は１１℃保存下で４ヶ月間８０
％以上活性が残存した。参考文献 以下の文献を参考文献として、本明細書中に援用する。

【００８８】１． ＣＬＩＮＩＣＡＬ ＣＨＥＭＩＳＴ
ＲＹ， Ｖｏｌ．２１， Ｎｏ．１１， ｐ．１６９
１， １９７５ ２． Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ
Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １４３： ｐ． ５９−
６５， １９９５ ３． ＣＬＩＮＩＣＡＬ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ， Ｖｏ
ｌ．２９， ＮＯ．８， ｐ．１５３７−１５３９，
１９８３ ４． 特開平６−１８９６７０（Ｈ６．７．１２） ５． 特開平９−２５２７９７（Ｈ９．９．３０） ６． 特開昭６２−２５３３７８（Ｓ６２．１１．５） ７． 特開平６−２９２５８５（Ｈ６．１０．２１） ８． 特表平９−５０４６９８（Ｈ９．５．１３）
（ＷＯ９５／１２６６２） ９． 臨床検査法提要（改訂第３１版） 原著 金井
泉、編者 金井 正光、１９９８年（金原出版）、第６
４０頁−第６４３頁 １０． 臨床検査法提要（改訂第３１版） 原著 金井
泉、編者 金井 正光、１９９８年（金原出版）、第
６３６頁−第６４０頁 １１． Ｐｅｒｒｙｍａｎ，Ｍ．Ｂら、Ｂｉｏｃｈｅ
ｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１４０
（３），ｐ．９８１−９８９（１９８６） １２． Ｖｉｌｌａｒｒｅａｌ−Ｌｅｖｙ，Ｇ．ら、Ｂ
ｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕ
ｎ．１４４（３），ｐ．１１１６−１１２７（１９８
７）

【００８９】

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> オリエンタル酵母工業株式会社 <120> 溶液安定性の組換えヒトクレアチンキナーゼヘテロダイマー <130> 000767 <160> 4 <210> 1 <211> 381 <212> PRT <213> Human <400> 1 Met Pro Phe Gly Asn Thr His Asn Lys Phe Lys Leu Asn Tyr Lys Pro 1 5 10 15 Glu Glu Glu Tyr Pro Asp Leu Ser Lys His Asn Asn His Met Ala Lys 20 25 30 Val Leu Thr Leu Glu Leu Tyr Lys Lys Leu Arg Asp Lys Glu Ile Pro 35 40 45 Ser Gly Phe Thr Val Asp Asp Val Ile Gln Thr Gly Val Asp Asn Pro 50 55 60 Gly His Pro Phe Ile Met Thr Val Gly Cys Val Ala Gly Asp Glu Glu 65 70 75 80 Ser Tyr Glu Val Phe Lys Glu Leu Phe Asp Pro Ile Ile Ser Asp Arg 85 90 95 His Gly Gly Tyr Lys Pro Thr Asp Lys His Lys Thr Asp Leu Asn His 100 105 110 Glu Asn Leu Lys Gly Gly Asp Asp Leu Asp Pro Asn Tyr Val Leu Ser 115 120 125 Ser Pro Val Arg Thr Gly Arg Ser Ile Lys Gly Tyr Thr Leu Pro Pro 130 135 140 His Cys Ser Arg Gly Glu Arg Arg Ala Val Glu Lys Leu Ser Val Glu 145 150 155 160 Ala Leu Asn Ser Leu Thr Gly Glu Phe Lys Gly Lys Tyr Tyr Pro Leu 165 170 175 Lys Ser Met Thr Glu Lys Glu Gln Gln Gln Leu Ile Asp Asp His Phe 180 185 190 Gln Phe Asp Lys Pro Val Ser Pro Leu Leu Leu Ala Ser Gly Met Ala 195 200 205 Arg His Trp Pro Asp Ala Pro Gly Ile Trp His Asn Asp Asn Lys Ser 210 215 220 Phe Leu Val Trp Val Asn Glu Glu Asp His Leu Arg Val Ile Ser Met 225 230 235 240 Glu Lys Gly Gly Asn Met Lys Glu Val Phe Arg Arg Phe Cys Val Gly 245 250 255 Leu Gln Lys Ile Glu Glu Ile Phe Lys Lys Ala Gly His Pro Phe Met 260 265 270 Trp Asn Gln His Leu Gly Tyr Val Leu Thr Cys Pro Ser Asn Leu Gly 275 280 285 Thr Gly Leu Arg Gly Gly Val His Val Lys Leu Ala His Leu Ser Lys 290 295 300 His Pro Lys Phe Glu Glu Ile Leu Thr Arg Leu Arg Leu Gln Lys Arg 305 310 315 320 Gly Thr Gly Ala Val Asp Thr Ala Ala Val Gly Ser Val Phe Asp Val 325 330 335 Ser Asn Ala Asp Arg Leu Gly Ser Ser Glu Val Glu Gln Val Gln Leu 340 345 350 Val Val Asp Gly Val Lys Leu Met Val Glu Met Glu Lys Lys Leu Glu 355 360 365 Lys Gly Gln Ser Ile Asp Asp Met Ile Pro Ala Gln Lys 370 375 380 <210> 2 <211> 1143 <212> DNA <213> Human <400> 2 ATG CCA TTC GGT AAC ACC CAC AAC AAG TTC AAG CTG AAT TAC AAG CCT 48 Met Pro Phe Gly Asn Thr His Asn Lys Phe Lys Leu Asn Tyr Lys Pro 1 5 10 15 GAG GAG GAG TAC CCC GAC CTC AGC AAA CAT AAC AAC CAC ATG GCC AAG 96 Glu Glu Glu Tyr Pro Asp Leu Ser Lys His Asn Asn His Met Ala Lys 20 25 30 GTA CTG ACC CTT GAA CTC TAC AAG AAG CTG CGG GAC AAG GAG ATC CCA 144 Val Leu Thr Leu Glu Leu Tyr Lys Lys Leu Arg Asp Lys Glu Ile Pro 35 40 45 TCT GGC TTC ACT GTA GAC GAT GTC ATC CAG ACA GGA GTG GAC AAC CCA 192 Ser Gly Phe Thr Val Asp Asp Val Ile Gln Thr Gly Val Asp Asn Pro 50 55 60 GGT CAC CCC TTC ATC ATG ACC GTG GGC TGC GTG GCT GGT GAT GAG GAG 240 Gly His Pro Phe Ile Met Thr Val Gly Cys Val Ala Gly Asp Glu Glu 65 70 75 80 TCC TAC GAA GTT TTC AAG GAA CTC TTT GAC CCC ATC ATC TCG GAT CGC 288 Ser Tyr Glu Val Phe Lys Glu Leu Phe Asp Pro Ile Ile Ser Asp Arg 85 90 95 CAC GGG GGC TAC AAA CCC ACT GAC AAG CAC AAG ACT GAC CTC AAC CAT 336 His Gly Gly Tyr Lys Pro Thr Asp Lys His Lys Thr Asp Leu Asn His 100 105 110 GAA AAC CTC AAG GGT GGA GAC GAC CTG GAC CCC AAC TAC GTG CTC AGC 384 Glu Asn Leu Lys Gly Gly Asp Asp Leu Asp Pro Asn Tyr Val Leu Ser 115 120 125 AGC CCG GTC CGC ACT GGC CGC AGC ATC AAG GGC TAC ACG TTG CCC CCA 432 Ser Pro Val Arg Thr Gly Arg Ser Ile Lys Gly Tyr Thr Leu Pro Pro 130 135 140 CAC TGC TCC CGT GGC GAG CGC CGG GCG GTG GAG AAG CTC TCT GTG GAA 480 His Cys Ser Arg Gly Glu Arg Arg Ala Val Glu Lys Leu Ser Val Glu 145 150 155 160 GCT CTC AAC AGC CTG ACG GGC GAG TTC AAA GGG AAG TAC TAC CCT CTG 528 Ala Leu Asn Ser Leu Thr Gly Glu Phe Lys Gly Lys Tyr Tyr Pro Leu 165 170 175 AAG AGC ATG ACG GAG AAG GAG CAG CAG CAG CTC ATC GAT GAC CAC TTC 576 Lys Ser Met Thr Glu Lys Glu Gln Gln Gln Leu Ile Asp Asp His Phe 180 185 190 CAG TTC GAC AAG CCC GTG TCC CCG CTG CTG CTG GCC TCA GGC ATG GCC 624 Gln Phe Asp Lys Pro Val Ser Pro Leu Leu Leu Ala Ser Gly Met Ala 195 200 205 CGC CAC TGG CCC GAC GCC CCT GGC ATC TGG CAC AAT GAC AAC AAG AGC 672 Arg His Trp Pro Asp Ala Pro Gly Ile Trp His Asn Asp Asn Lys Ser 210 215 220 TTC CTG GTG TGG GTG AAC GAG GAG GAT CAC CTC CGG GTC ATC TCC ATG 720 Phe Leu Val Trp Val Asn Glu Glu Asp His Leu Arg Val Ile Ser Met 225 230 235 240 GAG AAG GGG GGC AAC ATG AAG GAG GTT TTC CGC CGC TTC TGC GTA GGG 768 Glu Lys Gly Gly Asn Met Lys Glu Val Phe Arg Arg Phe Cys Val Gly 245 250 255 CTG CAG AAG ATT GAG GAG ATC TTT AAG AAA GCT GGC CAC CCC TTC ATG 816 Leu Gln Lys Ile Glu Glu Ile Phe Lys Lys Ala Gly His Pro Phe Met 260 265 270 TGG AAC CAG CAC CTG GGC TAC GTG CTC ACC TGC CCA TCC AAC CTG GGC 864 Trp Asn Gln His Leu Gly Tyr Val Leu Thr Cys Pro Ser Asn Leu Gly 275 280 285 ACT GGG CTG CGT GGA GGC GTG CAT GTG AAG CTG GCG CAC CTG AGC AAG 912 Thr Gly Leu Arg Gly Gly Val His Val Lys Leu Ala His Leu Ser Lys 290 295 300 CAC CCC AAG TTC GAG GAG ATC CTC ACC CGC CTG CGT CTG CAG AAG AGG 960 His Pro Lys Phe Glu Glu Ile Leu Thr Arg Leu Arg Leu Gln Lys Arg 305 310 315 320 GGT ACA GGT GCG GTG GAC ACA GCT GCC GTG GGC TCA GTA TTT GAC GTG 1008 Gly Thr Gly Ala Val Asp Thr Ala Ala Val Gly Ser Val Phe Asp Val 325 330 335 TCC AAC GCT GAT CGG CTG GGC TCG TCC GAA GTA GAA CAG GTG CAG CTG 1056 Ser Asn Ala Asp Arg Leu Gly Ser Ser Glu Val Glu Gln Val Gln Leu 340 345 350 GTG GTG GAT GGT GTG AAG CTC ATG GTG GAA ATG GAG AAG AAG TTG GAG 1104 Val Val Asp Gly Val Lys Leu Met Val Glu Met Glu Lys Lys Leu Glu 355 360 365 AAA GGC CAG TCC ATC GAC GAC ATG ATC CCC GCC CAG AAG 1143 Lys Gly Gln Ser Ile Asp Asp Met Ile Pro Ala Gln Lys 370 375 380 <210> 3 <211> 381 <212> PRT <213> Human <400> 3 Met Pro Phe Ser Asn Ser His Asn Ala Leu Lys Leu Arg Phe Pro Ala 1 5 10 15 Glu Asp Glu Phe Pro Asp Leu Ser Ala His Asn Asn His Met Ala Lys 20 25 30 Val Leu Thr Pro Glu Leu Tyr Ala Asp Val Arg Ala Lys Ser Thr Pro 35 40 45 Ser Gly Phe Thr Leu Asp Asp Val Ile Gln Thr Gly Val Asp Asn Pro 50 55 60 Gly His Pro Tyr Ile Met Thr Val Gly Cys Val Ala Gly Asp Glu Glu 65 70 75 80 Ser Tyr Glu Val Phe Lys Asp Leu Phe Asp Pro Ile Ile Glu Asp Arg 85 90 95 His Arg Arg Tyr Lys Pro Ser Asp Asp Asp Lys Thr Asp Leu Asn Pro 100 105 110 Asp Asn Leu Gln Gly Gly Asp Asp Leu Asp Pro Asn Tyr Val Leu Ser 115 120 125 Ser Arg Val Ala Thr Gly Arg Ser Ile Arg Gly Phe Cys Leu Pro Pro 130 135 140 His Cys Ser Arg Gly Glu Arg Arg Ala Ile Glu Lys Leu Ala Val Glu 145 150 155 160 Ala Leu Ser Ser Leu Asp Gly Asp Leu Ala Gly Arg Tyr Tyr Ala Leu 165 170 175 Lys Ser Met Thr Glu Ala Glu Gln Gln Gln Leu Ile Asp Asp His Phe 180 185 190 Leu Phe Asp Lys Pro Val Ser Pro Leu Leu Leu Ala Ser Gly Met Ala 195 200 205 Arg Asp Trp Pro Asp Ala Ala Arg Ile Trp His Asn Asp Asn Lys Thr 210 215 220 Phe Leu Val Trp Val Asn Glu Glu Asp His Leu Arg Val Ile Ser Met 225 230 235 240 Gln Lys Gly Gly Asn Met Lys Glu Val Phe Thr Arg Phe Cys Thr Gly 245 250 255 Leu Thr Gln Ile Glu Thr Leu Phe Lys Ser Lys Asp Tyr Glu Phe Met 260 265 270 Trp Asn Pro His Leu Gly Tyr Ile Leu Thr Cys Pro Ser Asn Leu Gly 275 280 285 Thr Gly Leu Arg Ala Gly Val Asp Ile Lys Leu Pro Asn Leu Gly Lys 290 295 300 His Glu Lys Phe Ser Glu Val Leu Lys Arg Leu Arg Leu Gln Lys Arg 305 310 315 320 Gly Thr Gly Gly Val Asp Thr Ala Ala Val Gly Gly Val Phe Asp Val 325 330 335 Ser Asn Ala Asp Arg Leu Gly Phe Ser Glu Val Glu Leu Val Gln Met 340 345 350 Val Val Asp Gly Val Lys Leu Leu Ile Glu Met Glu Gln Arg Leu Glu 355 360 365 Gln Gly Gln Ala Ile Asp Asp Leu Met Pro Ala Gln Lys 370 375 380 <210> 4 <211> 1143 <212> DNA <213> Human <400> 4 ATG CCC TTC TCC AAC AGC CAC AAC GCA CTG AAG CTG CGC TTC CCG GCC 48 Met Pro Phe Ser Asn Ser His Asn Ala Leu Lys Leu Arg Phe Pro Ala 1 5 10 15 GAG GAC GAG TTC CCC GAC CTG AGC GCC CAC AAC AAC CAC ATG GCC AAG 96 Glu Asp Glu Phe Pro Asp Leu Ser Ala His Asn Asn His Met Ala Lys 20 25 30 GTG CTG ACC CCC GAG CTG TAC GCG GAC GTG CGC GCC AAG AGC ACG CCG 144 Val Leu Thr Pro Glu Leu Tyr Ala Asp Val Arg Ala Lys Ser Thr Pro 35 40 45 AGC GGC TTC ACG CTG GAC GAC GTC ATC CAG ACA GGC GTG GAC AAC CCG 192 Ser Gly Phe Thr Leu Asp Asp Val Ile Gln Thr Gly Val Asp Asn Pro 50 55 60 GGC CAC CCG TAC ATC ATG ACC GTG GGC TGC GTG GCG GGC GAC GAG GAG 240 Gly His Pro Tyr Ile Met Thr Val Gly Cys Val Ala Gly Asp Glu Glu 65 70 75 80 TCC TAC GAA GTG TTC AAG GAT CTC TTC GAC CCC ATC ATC GAG GAC CGG 288 Ser Tyr Glu Val Phe Lys Asp Leu Phe Asp Pro Ile Ile Glu Asp Arg 85 90 95 CAC CGG CGC TAC AAG CCC AGC GAT GAC GAC AAG ACC GAC CTC AAC CCC 336 His Arg Arg Tyr Lys Pro Ser Asp Asp Asp Lys Thr Asp Leu Asn Pro 100 105 110 GAC AAC CTG CAG GGC GGC GAC GAC CTG GAC CCC AAC TAC GTG CTG AGC 384 Asp Asn Leu Gln Gly Gly Asp Asp Leu Asp Pro Asn Tyr Val Leu Ser 115 120 125 TCG CGG GTG GCC ACG GGC CGC AGC ATC CGT GGC TTC TGC CTC CCC CCG 432 Ser Arg Val Ala Thr Gly Arg Ser Ile Arg Gly Phe Cys Leu Pro Pro 130 135 140 CAC TGC AGC CGC GGG GAG CGC CGA GCC ATC GAG AAG CTC GCG GTG GAA 480 His Cys Ser Arg Gly Glu Arg Arg Ala Ile Glu Lys Leu Ala Val Glu 145 150 155 160 GCC CTG TCC AGC CTG GAC GGC GAC CTG GCG GGC CGA TAC TAC GCG CTC 528 Ala Leu Ser Ser Leu Asp Gly Asp Leu Ala Gly Arg Tyr Tyr Ala Leu 165 170 175 AAG AGC ATG ACG GAG GCG GAG CAG CAG CAG CTC ATC GAC GAC CAC TTC 576 Lys Ser Met Thr Glu Ala Glu Gln Gln Gln Leu Ile Asp Asp His Phe 180 185 190 CTC TTC GAC AAG CCC GTG TCG CCC CTG CTG CTG GCC TCG GGC ATG GCC 624 Leu Phe Asp Lys Pro Val Ser Pro Leu Leu Leu Ala Ser Gly Met Ala 195 200 205 CGC GAC TGG CCC GAC GCC GCG CGT ATC TGG CAC AAT GAC AAT AAG ACC 672 Arg Asp Trp Pro Asp Ala Ala Arg Ile Trp His Asn Asp Asn Lys Thr 210 215 220 TTC CTG GTG TGG GTC AAC GAG GAG GAC CAC CTG CGG GTC ATC TCC ATG 720 Phe Leu Val Trp Val Asn Glu Glu Asp His Leu Arg Val Ile Ser Met 225 230 235 240 CAG AAG GGG GGC AAC ATG AAG GAG GTG TTC ACC CGC TTC TGC ACC GGC 768 Gln Lys Gly Gly Asn Met Lys Glu Val Phe Thr Arg Phe Cys Thr Gly 245 250 255 CTC ACC CAG ATT GAA ACT CTC TTC AAG TCT AAG GAC TAT GAG TTC ATG 816 Leu Thr Gln Ile Glu Thr Leu Phe Lys Ser Lys Asp Tyr Glu Phe Met 260 265 270 TGG AAC CCT CAC CTG GGC TAC ATC CTC ACC TGC CCA TCC AAC CTG GGC 864 Trp Asn Pro His Leu Gly Tyr Ile Leu Thr Cys Pro Ser Asn Leu Gly 275 280 285 ACC GGG CTG CGG GCA GGT GTC GAT ATC AAG CTG CCC AAC CTG GGC AAG 912 Thr Gly Leu Arg Ala Gly Val Asp Ile Lys Leu Pro Asn Leu Gly Lys 290 295 300 CAT GAG AAG TTC TCG GAG GTG CTT AAG CGG CTG CGA CTT CAG AAG CGA 960 His Glu Lys Phe Ser Glu Val Leu Lys Arg Leu Arg Leu Gln Lys Arg 305 310 315 320 GGC ACA GGC GGT GTG GAC ACG GCT GCG GTG GGC GGG GTC TTC GAC GTC 1008 Gly Thr Gly Gly Val Asp Thr Ala Ala Val Gly Gly Val Phe Asp Val 325 330 335 TCC AAC GCT GAC CGC CTG GGC TTC TCA GAG GTG GAG CTG GTG CAG ATG 1056 Ser Asn Ala Asp Arg Leu Gly Phe Ser Glu Val Glu Leu Val Gln Met 340 345 350 GTG GTG GAC GGA GTG AAG CTG CTC ATC GAG ATG GAA CAG CGG CTG GAG 1104 Val Val Asp Gly Val Lys Leu Leu Ile Glu Met Glu Gln Arg Leu Glu 355 360 365 CAG GGC CAG GCC ATC GAC GAC CTC ATG CCT GCC CAG AAA 1143 Gln Gly Gln Ala Ile Asp Asp Leu Met Pro Ala Gln Lys 370 375 380 <210> 5 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> oligonucleotide designed for PCR primer <400> 5 ccgaattcat gccattcggt aacaccc 27 <210> 6 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> oligonucleotide designed for PCR primer <400> 6 atggatccct acttctgggc ggggatc 27 <210> 7 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> oligonucleotide designed for PCR primer <400> 7 atgaattcat gcccttctcc aacagcc 27 <210> 8 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> oligonucleotide designed for PCR primer <400> 8 ccggatcctc atttctgggc aggcatg 27

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、本発明のＣＫのＭ型サブユニットをコ
ードする核酸及びＢ型サブユニットをコードする核酸を
含むベクターの構築を示す。

【図２】図２は、Ｑ セファロースカラムによる組換え
ヒトＣＫ−ＭＢヘテロダイマーの分離を示す。

【図３】図３は、本発明の組換えヒトＣＫ−ＭＢヘテロ
ダイマーを含む組成物の冷蔵保存下における残存活性の
経時変化を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 35/00 Ｃ１２Ｎ 1/19 Ｃ１２Ｎ 1/15 1/21 1/19 9/12 1/21 15/00 ＺＮＡＡ 5/10 Ａ６１Ｋ 37/02 9/12 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ａ (72)発明者 甲田 誠一 東京都板橋区小豆沢三丁目６番10号 オリ エンタル酵母工業株式会社内 (72)発明者 岡 治 東京都板橋区小豆沢三丁目６番10号 オリ エンタル酵母工業株式会社内 (72)発明者 松尾 雄志 東京都板橋区小豆沢三丁目６番10号 オリ エンタル酵母工業株式会社内 Ｆターム(参考） 4B024 AA11 BA10 CA04 DA06 EA04 GA11 4B050 CC03 DD11 FF04E FF09E LL03 4B065 AA01X AA26X AA57X AA87X AA93Y AC14 BA02 CA29 CA46 4C084 AA01 AA06 AA07 BA01 BA22 BA23 CA53 CA56 DC25 NA14 ZA362 ZA382 ZA402 ZB262

Claims (11)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットを
   コードする核酸及びＢ型サブユニットをコードする核酸
   を含むベクターであって、ここにおいて、 ｉ）Ｍ型サブユニットは、配列番号１のアミノ酸残基１
   −３８１を有するポリペプチドであるか、あるいは当該
   配列において１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠失、
   置換もしくは付加による変異を含むアミノ酸配列を有
   し、かつ、生物学的に活性なポリペプチドであり、そし
   て ｉｉ）Ｂ型サブユニットは、配列番号３のアミノ酸残基
   １−３８１を有するポリペプチドであるか、あるいは当
   該配列において１またはそれ以上のアミノ酸残基の欠
   失、置換もしくは付加による変異を含むアミノ酸配列を
   有し、かつ、生物学的に活性なポリペプチドである前記
   ベクター。
2. 【請求項２】クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットが
   配列番号１のアミノ酸残基１−３８１を有するポリペプ
   チドであり、及び／または、クレアチンキナーゼのＢ型
   サブユニットが配列番号３のアミノ酸残基１−３８１を
   有するポリペプチドである、請求項１に記載の前記ベク
   ター。
3. 【請求項３】クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットを
   コードする核酸が配列番号２の塩基１−１１４３を有
   し、及び／または、クレアチンキナーゼのＢ型サブユニ
   ットをコードする核酸が配列番号４の塩基１−１１４３
   を有する、請求項１又は２に記載の前記ベクター。
4. 【請求項４】プラスミドである、請求項３に記載のベク
   ター。
5. 【請求項５】請求項１ないし４のいずれか１項に記載の
   ベクターで形質転換された宿主細胞。
6. 【請求項６】クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットお
   よびＢ型サブユニットを含むクレアチンキナーゼヘテロ
   ダイマー組換えタンパク質の製造方法であって、請求項
   １ないし４のいずれか１項に記載のベクターで形質転換
   された宿主細胞を、組換えタンパク質の発現が可能な条
   件下で培養し、そして、当該培養物からクレアチンキナ
   ーゼのＭ型サブユニットおよびＢ型サブユニットを含む
   クレアチンキナーゼヘテロダイマー組換えタンパク質を
   回収する、ことを含む前記製造方法。
7. 【請求項７】請求項７に記載の方法によって製造され
   た、クレアチンキナーゼのＭ型サブユニットおよびＢ型
   サブユニットを含むクレアチンキナーゼヘテロダイマー
   組換えタンパク質。
8. 【請求項８】請求項７のクレアチンキナーゼのＭ型サブ
   ユニットおよびＢ型サブユニットを含むクレアチンキナ
   ーゼヘテロダイマー組換えタンパク質を含む、溶液安定
   性の組成物。
9. 【請求項９】ヒト血清中、４℃で４ヶ月間保存したとき
   に、８０％以上の活性を保持する、請求項８の組成物。
10. 【請求項１０】安定化剤を含まない、請求項８又は９に
    記載の組成物。
11. 【請求項１１】臨床診断の対照として使用するための請
    求項８ないし１０のいずれか１項に記載の組成物。