[go: up one dir, main page]

HU218084B - Daganatokra specifikus monoklonális antitest és sejtvonal, valamint ezeket tartalmazó gyógyászati készítmények - Google Patents

Daganatokra specifikus monoklonális antitest és sejtvonal, valamint ezeket tartalmazó gyógyászati készítmények Download PDF

Info

Publication number
HU218084B
HU218084B HU9400011A HU9400011A HU218084B HU 218084 B HU218084 B HU 218084B HU 9400011 A HU9400011 A HU 9400011A HU 9400011 A HU9400011 A HU 9400011A HU 218084 B HU218084 B HU 218084B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
antibody
cell line
monoclonal antibody
producing
cells
Prior art date
Application number
HU9400011A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9400011D0 (en
HUT71193A (en
Inventor
Jan Holmgren
Peter Lind
Leif Lindholm
Original Assignee
Kabi Pharmacia Ab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kabi Pharmacia Ab filed Critical Kabi Pharmacia Ab
Publication of HU9400011D0 publication Critical patent/HU9400011D0/hu
Publication of HUT71193A publication Critical patent/HUT71193A/hu
Publication of HU218084B publication Critical patent/HU218084B/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04Organic compounds
    • A61K51/08Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
    • A61K51/1045Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants
    • A61K51/1063Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants the tumor cell being from stomach or intestines
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04Organic compounds
    • A61K51/08Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
    • A61K51/1045Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants
    • A61K51/1057Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants the tumor cell being from liver or pancreas
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/30Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants from tumour cells
    • C07K16/303Liver or Pancreas
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/30Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants from tumour cells
    • C07K16/3046Stomach, Intestines
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2123/00Preparations for testing in vivo
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/70Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/77Internalization into the cell

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

A találmány tárgya az ECACC 90012601 számon deponált C242:II hibridómasejtvonal által termelt vagy ezzel azonos epitóp specifikussággalrendelkező antitest. A találmány kiterjed a fenti antitestalkalmazására, az antitestet tartalmazó gyógyszerkészítményre,valamint az antitestet termelő sejtvonalra. ŕ

Description

A találmány tárgya új, monoklonális tumorantigénre specifikus antitest, ezt termelő sejtvonal, a monoklonális antitestet tartalmazó gyógyszerkészítmény, valamint eljárás ezek előállítására.
A monoklonális antitestek előállítására szolgáló hibridómatechnológia, amit először Köhler és Milstein írt le [Natúré 256., 495-497. (1975)], ma már általánosan elterjedt. Az eljárás során mielómasejteket egyesítenek egy adott antigénnel immunizált állatokból származó limfocitákkal. A kapott hibridómasejt egy adott antigéndeterminánsra specifikus antitesteket termel. Ennek következtében a monoklonális antitestek az immunoassay-vizsgálatokban egyre jobban kiszorítják a szokásos antiszérumokat. Jelentős kutatásokat végeztek a hibridómatechnológiának terápiás célból történő alkalmazására.
Általánosan ismert továbbá, hogy normál szöveti sejteknek tumorsejtekbe történő átvitelekor a sejt felületén lévő szénhidrátszerkezet megváltozik. Sok szénhidrátszerkezet antigénként szolgál, és a tumor által módosított szerkezetek úgynevezett tumorral asszociált antigéneket (TAA) képeznek. A sejtfelületi szénhidrátszerkezetek vagy egy lipidrészhez kapcsolódnak, amikor is ezeket glikolipideknek nevezzük, vagy valamely fehérjéhez vagy peptidhez kötődnek, amikor is ezeket glikofehérjéknek vagy glikopeptidnek nevezzük. A két forma közös megjelölése a glikokonjugátum.
Tumorral asszociált glikokonjugátum antigének ismertek humán tumorbetegségekkel kapcsolatosan. így például két, karcinómával asszociált antigén, a CEA (karcinóma embrionális antigén) és GICA (gasztrointesztinális rák antigén), amely CA 19-9 epitópot hordoz, mutatható ki a gasztrointesztinális karcinómákban, míg egy harmadik epitóp, a CA-50, általános karcinómaantigénnek tűnik. Mindhárom antigén a tumorsejt felületén választódik ki, és a vérszérumban kimutatható. Ezek a felfedezések elősegítették a tumorspecifikus antigéneket felismerő monoklonális antitestek kutatását, amelyek felhasználhatók különböző rákos megbetegedések immunológiai lokalizálásában és terápiájában.
Ismertek hasnyálmirigy- és vastagbél-vékonybél rákra specifikus monoklonális antitestek, amelyek jele C242 (a megfelelő antigén CA-242) [Larsson L. N. és munkatársai: Int. J. Cancer 42., 877-882. (1988); Lindholm L. és munkatársai: „An Immunoradiometric Assay (IRMA) fór the CA-50 antigén”, Tumor Marker Antigens, Jan Holmgren kiadó, Studentlitteratur, (1985); Haglund C. és munkatársai: Br. J. Cancer 60., 845-851. (1989); Sell S.: Humán Pathology
21.(10), 1003-1019. (1990); Johansson C. és munkatársai: Int. J. Cancer 48., 757-763. (1991); és Kuusela P. és munkatársai: Br. J. Cancer, 63., 636-640. (1991)]. A C242 antitestet azonban közelebbről még nem írták le, és így szakember számára előállítása nem volt ismert, és ezért általánosan hozzáférhetőnek nem tekinthető.
A találmány tárgya egy új, monoklonális antitest, amely szignifikáns specifikussággal rendelkezik gasztrointesztinális, elsősorban hasnyálmirigy- és vastagbélvékonybél ráksejtekkel szemben, amely monoklonális antitestet a továbbiakban a C242: II jellel jelöljük.
A C242: II az IgG csoportba tartozó monoklonális egerantitest, amely előállítható, ha megfelelő tápközegben humán vastagbél-adenokarcinómasejtvonallal immunizált egerek lépsejtjeinek Sp2/0 egér-mielómasejtvonallal történő fuzionálásával kapott hibridóma-sejtvonalat tenyésztünk (az eljárást közelebbről az 1. példában mutatjuk be). A C242:II antitestet termelő hibridóma-sejtvonalat 1990. január 26-án deponáltuk a budapesti szerződés előírásai szerint a European Collection of Animál Cell Cultures (ECACC) gyűjteményben (PHLS Centre fór Applied Microbiology and Research, Porton Down, Salisbury Wilts, Nagy-Britannia), ahol a 90012601 deponálási számot kapta. Erre a letétre hivatkoztunk korábban a WO 92/01470 számon közzétett nemzetközi szabadalmi bejelentésünkben, amelynek elsőbbsége 1990. július 20.
A találmány tárgya tehát új, monoklonális antitest, amelynek jele C242:II vagy ezzel lényegében azonos antitest, vagyis ennek funkcionális ekvivalense, amelyet a továbbiakban találmány szerinti antitestnek nevezünk.
A találmány tárgya továbbá olyan sejtvonal, amely képes a találmány szerinti antitest termelésére, elsősorban a fent említett és 90012601 számon deponált hibridóma sejtvonal.
A találmány kiterjed a fenti antitest, valamint a sejtvonal előállítására.
A „lényegében azonos” vagy „funkcionális ekvivalens” kifejezés alatt azt értjük, hogy az antitest lényegében azonos immunológiai specifikussággal rendelkezik, mint a 90012601 számon deponált sejtvonal által termelt antitest, vagyis ugyanahhoz az antigéndeterminánshoz vagy epitóphoz kötődik, és a kötődés vonatkozásában verseng a C242: II antitesttel.
A „találmány szerinti antitest” kifejezés felöleli az érintett antitestek antigénkötő fragmenseit is. Az ilyen fragmens megtartja az ép immunoglobulin kötőképességét és specifikusságát, és előállítható például az antitestnek proteolitikus enzimekkel, így pepszinnel végzett hasításával. Ennek során F(ab’)2-molekula és kisebb peptidek keletkeznek, ahol az F(ab’)2 az antigénkötő fragmensek egyik képviselője. Ugyancsak idetartoznak a géntechnológiai úton előállított megfelelő antitestek és ffagmensek, valamint az antitest származékai és humanizált formái. A találmány keretein belül esnek továbbá azok az egérből és más állatokból származó antitestek, amelyek eltérő lg csoportba vagy alcsoportba tartoznak, de ugyanilyen specifikussággal rendelkeznek. Az antitestkötő fragmensek és rekombináns úton előállított variánsok vonatkozásában a találmány szerinti antitest csoportja vagy alcsoportja kevésbé jelentős, mivel az egyetlen csoport- vagy alcsoport-specifikus determináns az előállítás során többé-kevésbé kiiktatható. A találmány ezért a teljesen nem humán antitestektől a teljesen humán antitestekig terjed, és különböző kimér formákat ölel fel. A teljesen humán antitestek előállíthatok örökített humán antitestet termelő sejtek tenyésztésé\ el.
HU 218 084 Β
A találmány szerinti megoldás egyik megvalósítási módja olyan antitest, amelynek a CA-242 antigén/epitóp vonatkozásában mutatott kötőaffinitása a deponált hibridóma sejtvonal által termelt antitest kötőaffinitásához viszonyítva 10+l-szerestől bizonyos esetekben 10 >szeres értékig terjed. A kérdéses keresztreaktivitást a szokásos blokkoló/kötő vizsgálattal mértük. Ezek az affinitásértékek nem fragmentált és nem derivatizált nem humán antitestekre vonatkoznak.
Az említett géntechnológiai előállítás során a C242:II monoklonális antitest könnyű- és nehézláncegységei változó területeinek megfelelő cDNS-molekulákat közelebbről a 4. példában leírt módon klónozzuk. Az eljárás részletes tárgyalása előtt röviden általánosan áttekintjük egy alap-immunoglobulin szerkezeti felépítését, amit egy G csoportba tartozó immunoglobulin vonatkozásában az 1. ábrán mutatunk be.
Az 1. ábra szerinti immunoglobulin két azonos, könnyű polipeptid láncegységet (L) és két azonos nehéz polipeptid láncegységet (H) tartalmaz, ahol a négy láncegységet diszulfidkötések és különböző, nem kovalens erők tartják össze, és így szimmetrikus Y konfigurációt képeznek. Mindegyik nehézlánc-egység egy változó területet (VH) tartalmaz, amit több állandó terület (CH) követ. Az egyes könnyűlánc-egységek egy változó területet (VL) tartalmaznak, amelyhez a láncegység másik végén egy állandó terület (CL) csatlakozik. A könnyűláncegységnek két típusa van, amit kappa- és lambda-j ellel különböztetünk meg. A könnyűlánc-egység változó területe a nehézlánc-egység változó területéhez kapcsolódik, és a könnyűlánc-egység állandó területe a nehézlánc-egység első állandó területéhez kapcsolódik, ahol a könnyű- és nehézlánc-egység változó területei képezik az antigénkötő helyet.
A könnyű- és nehézlánc-egység változó területei ugyanazt az általános szerkezetet mutatják, mindegyik három hipervariábilis szakaszt tartalmaz, amit komplementaritást meghatározó szakasznak (az angol complementarity determining region elnevezés után rövidítve CDR) nevezünk, amelyeket négy keretszakasz (az angol framework region elnevezés után rövidítve FR) vesz körül. Az egyes változó területekhez tartozó CDR szakaszok szoros közelségben vannak a keretszakaszokkal, és a két CDR készlet együtt határozza meg az antitest specifikusságát.
A C242: II antitest könnyű- és nehézlánc-egységei változó területeinek megfelelő cDNS-molekulák klónozásához először önmagában ismert módon cDNS-fágtárat állítunk elő a C242: II hibridómából. Ezután egér genomiális DNS-éből polimeráz láncreakcióval (PCR) és megfelelő primerek alkalmazásával a nehézlánc-egység és a kappa-könnyűlánc-egység állandó területeit átfedő hibridizációs próbákat állítunk elő. A kapott próbákkal a cDNS-tárat a C242: II antitest nehézlánc-egységét és kappa-láncegységét kódoló DNS-szekvenciát tartalmazó cDNS-klónokra vizsgáljuk. A pozitív hibridizált fágklónokat kiterjesztjük, és a cDNS-t plazmid formájában kivágjuk. Ezeket restrikciós térképezéssel jellemezzük, és a kívánt méretű inszerteket tartalmazó plazmidokat szekvenáljuk. A CDR szakaszok meghatározása érdekében a szekvenált inszertek által kódolt aminosavszekvenciákat az ismert egér kappa- és nehézláncegység szekvenciáival hasonlítjuk össze, amelynek során figyelembe vesszük a CDR szakaszok alapvető elhelyezkedését [Rabat E. A. és munkatársai: Sequences of Proteins of Immunological Interest, 4. kiadás, U. S. Department of Health and Humán Services, National Institutes of Health (1987)]. Azt találtuk, hogy a megfelelő láncegységekhez tartozó CDR szakaszok a következő aminosavszekvenciákkal rendelkeznek (az érintett szekvenciákat a 3. és 4. ábrán is jelöltük): Kappalánc/könnyű lánc:
CDR1: ArgSerSerLysSerLeuLeuHisSerAsnGlyAsnThrTyrLeuTyr (TrpPhe)
CDR2: ArgMetSerAsnLeuValSer(GlyVal)
CDR3: LeuGlnHisLeuGluTyrProPheThr(PheGly) Nehéz lánc:
CDR1: (PheThr)TyrTyrGlyMetAsn
CDR2: (MetGly)TrpIleAspThrThrThrGlyGluProThrT yr AlsGlu AspPheLysGly (Arglle)
CDR3: (AlaArg)ArgGlyProTyrAsnTrpTyrPheAspVal (TrpGly).
A zárójelbe tett terminális dipeptidmaradékok a CDR szekvenciák adott esetben előforduló változatai. A 3. ábrán megadott kappa láncegység egy cisz-maradékot tartalmaz, ami arra utal, hogy a hozzá tartozó CDR szakaszok aminoterminális határa jól definiált.
A fenti CDR szakaszokat kódoló DNS-szekvenciákat a 4. ábra mutatja. A CDR aminosavszekvenciák és/vagy DNS-szekvenciák ismeretében szakember képes arra, hogy a C242:II antitest CDR szakaszait ismert helyspecifikus mutációval valamely más antitest vagy antitestfragmens változó területeibe klónozza. Az eljárás során, amit általában CDR oltásnak neveznek, a DNS szintjén a C242TI antitest CDR szakaszait kódoló szekvenciákat a befogadó antitest vagy fragmens CDR szakaszait kódoló szekvenciák helyére visszük be, és ennek során a C242: II monoklonális antitest specifikusságának megfelelő antitestet vagy antitestfragmenst kapunk. A „találmány szerinti antitest” kifejezés ezért magába foglalja a fenti CDR szakaszokat vagy alternatív CDR aminosavszekvenciákat tartalmazó antitesteket vagy antitestfragmenseket, ahol a CDR szakaszok az ECACC 90012601 számon deponált hibridóma sejtvonal által termelt antitesttel keresztreakcióba lépő funkcionális antitest keretszakaszokba vannak beojtva.
A találmány szerinti antitest tumorasszociált antigénre specifikus, amely antigént CA-242 jellel jelöljük. Ez az antigén egy olyan szialilezett szénhidrát antigén, amely a fent említett CA-50 antigénnel azonos makromolekulán fejeződik ki. Szerkezetileg ez az antigén annyiban tér el a CA-50 epitóptól, hogy a találmány szerinti antitest nem reagál sem szialilezett Lewisariyaggal, sem szialoszillakto-N-tetraózzal. A CA-50re specifikus monoklonális antitest azonban gátolhatja a találmány szerinti antitestnek CA-50-hez történő kötődését, ami arra utal, hogy szerkezeti rokonság van a CA-50 és a találmány szerinti antitest által felismert antigén között. A CA-242 tumorasszociált antigént a legtöbb vastagbél-vékonybél tumor kifejezi, és csak gyen3
HU 218 084 Β gén fejeződik ki, vagy hiányzik a normál vastagbélszövetben.
A találmány szerinti antitestnek a sejthez kötött antigénhez történő kötődése után a képződött antigén-antitest komplex képes arra, hogy bejusson a sejt belsejébe például sejtzárvány formájában. Ez a deponált C242: II antitest legfontosabb tulajdonsága.
Bár a találmány szerinti antitest által felismert antigén alig fejeződik ki normál hasnyálmirigy- és vastagbélszövetben, erősen kifejeződik a hasnyálmirigy-karcinóma és a vastagbél-adenokarcinóma sejtekben. A találmány szerinti antitest ezért felhasználható a humán hasnyálmirigyrák és humán vastagbél-karcinóma immunolokalizálásában és terápiájában.
A találmány szerinti új antitest felhasználható ezért immunológiai vizsgálatra vagy terápiára.
A találmány tárgya továbbá gyógyszerkészítmény, amely találmány szerinti új antitestet tartalmaz, valamint eljárás a gyógyszerkészítmény előállítására.
A találmány szerinti új antitesten alapuló in vitro immunológiai vizsgálat a szokásos immunológiai technikákkal megvalósítható, amelynek során a találmány szerinti antitestet használjuk jelölt vagy jelöletlen formában, és meghatározzuk az antitestnek a vizsgált mintában található specifikus antigénfajtákkal kialakított komplexét. Az első esetben az antitest jelölését valamely kimutatható jelöléssel végezzük, amelyre példaként említhető a radiojelölés, a kemilumineszcensz-jelölés, a fluoreszcensjelölés vagy enzimes jelölés. Az utóbbi esetben az antitestet valamely jelölt anyaggal képezett komplexen keresztül mutatjuk ki, vagy a kimutatást nem jelölőtechnikával végezzük, ilyen például a felületi plazmonrezonancián alapuló bioszenzormódszer. Mintaként alkalmazható például valamely testfolyadék, így szérum, valamint szövetpreparátum (hisztokémiai vizsgálat).
Az in vivő diagnosztikai eljáráshoz a találmány szerinti antitestet megfelelő külső detektálható jelöléssel, így radiojelöléssel vagy nehéz fématommal látjuk el, majd a vizsgált betegnek adagoljuk, és a szervezeten belül meghatározzuk az antitest felhalmozódásának helyét.
A terápiás alkalmazáshoz a találmány szerinti új antitestet gyógyszerkészítménnyé alakítjuk, amelynek előállításához a szokásos gyógyszerészeti hordozóanyagokat, például vizet alkalmazunk, és amit a szokásos módon, például intravénásán, szubkután, intramuszkulárisan vagy intraperitoneálisan adagolunk.
Az 1. ábra a G immunoglobulin általános szerkezetének vázlatát mutatja be.
A 2. ábra a sejtzárványok kialakulását mutatja be a C242: II sejteknél.
A 3. ábra a C242:II monoklonális antitest kappaláncegysége változó területét kódoló cDNS-szekvenciát mutatja be a megfelelő aminosavszekvenciával együtt.
A 4. ábra a C242: II monoklonális antitest nehézlánc-egység változó területét kódoló cDNS-szekvenciát mutatja be a megfelelő aminosavszekvenciával együtt.
A találmány tárgyát közelebbről az alábbi példákkal mutatjuk be anélkül, hogy az oltalmi kör a példákra korlátozódna. A példákban leírjuk a találmány szerinti új antitestet termelő hibridóma előállítását, ennek immunohisztológiai vizsgálathoz történő alkalmazását, a sejtzárvány kialakulását, valamint a C242: II monoklonális antitest könnyű- és nehézlánc-egységét kódoló cDNSmolekulák klónozását.
1. példa
A C242:II antitestet termelő hibridóma sejtvonal kialakítása
Az American Type Culture Collection (ATCC; Rockville, Md., USA) gyűjteményből CCL 222 számon beszerezhető COLO 205 humán vastagbél-vékonybél karcinóma-sejtvonalat 10% magzati borjúszérummal (FCS) kiegészített Iscove-féle MÉM tápközegen tenyésztjük a szokásos módon. A sejteket az összefolyás előtt, általában 2-3 nappal az altenyészet megkezdése után összegyűjtjük, és foszfátpufferolt sóoldattal, (PBS) háromszor mossuk.
4-6 hetes BALB/C egerek immunizálásához kezdeti dózisként intraperitoneálisan 3 χ 107 COLO 205 sejtet adagolunk 0,1 ml PBS-ben szuszpendálva. Második dózisként további 0,1 ml szuszpenzióban 3 χ 107 COLO 205 sejtet adagolunk, majd az állatokat 4 nap elteltével megöljük, és a lépet eltávolítjuk. A lépet egyetlen sejtszuszpenzióban disszociáljuk.
A sejtszuszpenzióból 1,2 χ 108 lépsejtet megosztunk két kémcső között. Minden kémcsőhöz további 108 mielómasejtet adunk, ami SP2/0 egér-mielómasejtvonalból (az ATCC gyűjteményben CRL 1581 számon) származik. A két kémcsövet centrifugáljuk, és a folyékony fázist dekantáljuk. Minden kémcsőhöz lassan 2 ml, 37 °C hőmérsékletű polietilénglikol (PEG) oldatot (10 g 4000 móltömegű PEG, 1 ml dimetil-szulfoxid (DMSO) és 10 ml monoklonális sóoldat) adagolunk 1 perc alatt folyamatos kevertetés közben. A kémcsöveket ezután 90 percen keresztül 37 °C hőmérsékletű vízfürdőn óvatosan kevertetjük. A sejtfúzió megszakításához a kémcsövekhez fiziológiás pufferoldatot adunk a következő előírás szerint: 2 ml 30 másodperc alatt, 6 ml 30 másodperc alatt, majd további 32 ml 1 perc alatt. A sejtszuszpenziót a tenyészközeggel mossuk, majd összesen 100 ml hipoxantin/aminopterin/timidin (HAT) eleggyel kiegészített tápközegben szuszpendáljuk. Tápközegként 10 tömeg% FCS, 36 mg/1 L-aszparagin, 116 mg/1 Larginin HC1, 10 mg/1 folsav, 292,3 mg/1 L-glutamin, 110,1 mg/1 nátrium-piruvát és 3,49 μ 1/1 merkapto-etanol adalékokkal kiegészített Iscove-féle MÉM tápközeget használunk. 50 μΐ térfogatú aliquot mintákat 96 mérőhelyes szövettenyésztő lemezre viszünk. A mérőhelyeket BALB/C egerekből származó 250 μΐ makrofág szuszpenzióval (2xl04 sejt/ml) lefedjük, ahol a makrofág szuszpenziót HAT eleggyel kiegészített tápközegben vesszük fel. A tápközeget a fúziót követő 6 nap elteltével lecseréljük.
A hatodik napon lecserélt, kimerült közeget COLO 205 pozitív antitestekre vizsgáljuk Kennett R. H. módszere szerint („Enzyme-linked antibody assay with cells
HU 218 084 Β attached to polyvinyl chloride plates”, Monoclonal Antibodies. Hybridomas. A new dimension in biological analyses. H. R. Kennett, T. J. McKevin, Κ, B. Bechtol Kiadó, Plenum Press, New York (1980)]. Ennek során IIF típusú Nunc immunolemezek mérőhelyeit 2xl05 sejt/mérőhely mennyiségben 50 μΐ COLO 205 sejttel (1 mg/100 ml PBS) vonjuk be. Ezután 50 μΐ/mérőhely mennyiségben a hatodik napon eltávolított, kimerült tápközeget adjuk a sejtekhez. Egy éjszakán keresztül szobahőmérsékleten inkubáljuk, majd peroxidázzal konjugált antiegér Ig-t (Dakopatts P 260, Dakopatts A/S, Koppenhága, Dánia) adunk hozzá 100 pg/mérőhely mennyiségben 1:500 arányban 1 tömeg% BSA-PBS-ben (BSA=borjú-szérumalbumin) hígítva. Egy éjszakán keresztül szobahőmérsékleten inkubáljuk, majd 100 pl/mérőhely mennyiségben négy OPD-tablettát (Dako S2000) adunk hozzá 12 ml citromsavpufferben (pH=5,0) és 5 μΐ 30 tömeg%-os hidrogén-peroxidban oldva, és inkubálás után 450 nm hullámhosszon mérjük a fényelnyelést.
Megközelítőleg 600 hibridómaklónt vizsgálunk. A vizsgált kiónok közül 190 reagál COLO 205 sejtekkel, ebből 177 normál humán limfocitákkal (Lymphoprep, Nyegaard A/S, Norvégia) is reagál, amit eldobunk. A fennmaradó kiónok közül az egyik C242 jelet kapja, és izotípusa szerint az IgGl osztályba tartozik. A C242 hibridómát több szubklónozással stabil, monoklonális antitest termelésére képes C242: II kiónná alakítjuk.
Ennek során a C242 hibridóma első klónozásakor C242:5 kiónt kapunk. Ezt C242:5:2 kiónná alakítjuk. Mindkét lépésben a hibridómaszuszpenziót hipoxantin/timidin (HT) eleggyel kiegészített tenyészközegben hígítjuk 4 sejt/ml sűrűségig. Ebből 50 pl-t (0,2 sejt) egy 96 mérőhelyes, előzetesen 250 pl, HT eleggyel kiegészített közegben felvett BALB/C egérmakrofág-szuszpenzióval (5xl03 makrofág/mérőhely) bevont lemez mérőhelyeihez adagolunk. 2-5 nap elteltével mikroszkópon, vizuálisan egyetlen sejtklónt detektálunk. A hatodik napon a tápközeget kicseréljük, és a kimerült közeg aliquot részeit a fent leírt módon ELISA-vizsgálattal COLO 205 sejtekhez kötődő, de normál humán sejtekhez nem kötődő antitestekre vizsgáljuk. Kiválasztjuk a COLO 205 sejtekkel pozitív reakciót, és a normál sejtekkel negatív reakciót adó legjobb kiónt, és fiolákban folyékony nitrogénben fagyasztjuk.
A harmadik klónozáshoz a sejteket megolvasztjuk, és DMEM közegben (Dulbecco szerint módosított Eagle közeg+5 tömeg% FCS) tenyésztjük. A sejteket ezután átlag három sejt/mérőhely mennyiségben 96 mérőhelyes tenyészlemezre visszük. A klónozást 5 tömeg% FCS-sel kiegészített DMEM közegben végezzük, és etetősejtként egérmakrofágot használunk. Ezen a lemezen 30 klón jelenik meg, amiből 16 kiónt nefelometriásan IgG-termelésre vizsgálunk, és az antitestre vonatkozó specifikusságot a fent leírt módon ELISA- vizsgálattal ellenőrizzük. A vizsgált kiónok közül tizenkettő IgG-t termel. Tíz kiónt 24 mérőhelyes szövettenyésztő lemezre viszünk, amelyről a kimerült tápközeget IgG-termelésre és specifikusságra vizsgáljuk. A szelektálás során négy olyan kiónt választunk ki, amely viszonylag nagy termelékenységet mutat. A végső termelékenységi vizsgálatot a négy klónnál kettős szövettenyésztő palackban végezzük. A legnagyobb termelékenységet mutató klón a C242/CL 510 Al jelet kapja. Ezt folyékony nitrogénben fagyasztjuk.
A C242/CL 510 Al első klónozása szerint a sejtek egyharmada nem termel IgG-t, mivel az általános egérIgG ELISA szerint 1:1000 arányú hígításnál 0,1 alatti abszorpció mérhető. Öt pozitív szubklónt egyesítve C242:I kiónt alakítunk ki. A klón termelékenysége HPLC-alapú vizsgálat szerint 150 pg egér-IgG 1 ml-enként.
A C242:1 ki ónt 96 mérőhelyes lemezen klónozva 33 kiónt kapunk, amely mindegyike egér-IgG-t termel. Egyenként legalább 150 pg/ml termelékenységet mutató öt klónból kialakítjuk a végső C242:II jelű kiónt, amely stabilan képes IgG termelésére. HPLC-vizsgálat szerint a C242:11 termelékenysége 196 pg egér-IgG 1 ml-enként. A sejteket fiolákban folyékony nitrogénben fagyasztjuk és tároljuk. A C242: II hibridómasejtek egy mintáját az ECACC gyűjteményben 90012601 számon deponáltuk.
A fenti hibridómából kezdeti sejtszuszpenziót képezünk, és a sejteket összesen 6000 cm2 felületű szövettenyésztő kamrába (Nunc A/S) visszük 2 χ 104 sejt/ml sűrűséggel. A sejteket Iscove szerint módosított DMEM közegben [Iscove N. N. és Melchers F.: J. Exp. Med. 147, 923 (1978)] tenyésztjük, amit előzetesen 1 tömeg% gentamicinnel, 1 tömeg% aminosav kiegészítővel és 5 tömeg% FCS-sel egészítünk ki. A sejteket négy vagy öt napon keresztül 37 °C hőmérsékleten 8% CO2-t tartalmazó nedves légkörben inkubáljuk. Az inkubálás után a sejteket megszámoljuk, és a monoklonális antitest-koncentráció meghatározásához mintát veszünk. A sejttenyészet felülúszóját dekantáljuk, és cellulózszűrőn szűrve eltávolítjuk a szuszpendált sejteket. A felülúszót ezután ultraszűréssel Millipore Pellican ultraszűrősejtben 20-30szorosra bekoncentráljuk, amelynek során 30 000 móltömegű membránt használunk. A koncentrátum egyik mintáját analizálva meghatározzuk a C242: II monoklonális antitest koncentrációját és antigén reaktivitását, majd a monoklonális antitest-koncentrátumot további tisztításig -70 °C hőmérsékleten tároljuk.
Protein-A-Sepharose 4B töltetet (Pharmacia AB., Uppsala, Svédország) készítünk elő a gél duzzasztásával és mosásával, majd a kapott C242: II antitest koncentrátumot 1,5 mol/1 glicin-NaOH és 3 mol/1 NaCl (pH=8,9) kötőpuffer alkalmazásával megkötjük. A fenti pufferrel végzett kezdeti mosás után az affinitív oszlopot 0,1 mol/1 citromsav-NaOH pufferrel (pH=5,0) eluáljuk, és a C242:II monoklonális antitestet 1 mol/1 Trisz-HClt (pH=8,0) tartalmazó csövekbe gyűjtjük. A kapott antitestet 0,02 mol/1 foszfátpufferrel, 0,15 mol/1 nátriumkloriddal (pH=7,2) és 0,2 g/1 nátrium-nitrittel szemben dializáljuk. A dializált C242:II antitestet 30 000 móltömegű membrán alkalmazásával ultraszűréssel koncentráljuk. A koncentráció és a minőség ellenőrzése után a C242:II monoklonális antitestet -20 °C hőmérsékleten tároljuk.
HU 218 084 Β
2. példa
A C242:II immunohisztokémiai vizsgálata vastagbél-vékonybél rákon és normál szöveten Sebészeti úton primer vastagbél-vékonybél karcinóma és különböző normál szövetmintákat veszünk. A szöveteket jégen tartjuk, és a mintavételt követő 1 órán belül folyékony nitrogénnel előhűtött izopentánon fagyasztjuk. A szöveteket a vizsgálatig -70 °C hőmérsékleten tároljuk. A fagyasztott biopsziákat 5 μιη-es szakaszokra vágjuk, és a fixálást 50 tömeg% acetonban 30 másodpercen keresztül +4 °C hőmérsékleten, majd tiszta acetonban 5 percen keresztül +4 °C hőmérsékleten végezzük. A szakaszokat levegőn szárítjuk, és 10 percen keresztül PBS-sel öblítjük. A mintákat ezután 0,3 tömeg% PBS-ben felvett hidrogén-peroxiddal inkubáljuk 5 percen keresztül az endogén peroxidáz blokkolása érdekében, majd kétszer PBS-sel átöblítjük. Ezután a mintákat PBS-4 tömeg% BSA eleggyel 1:10 arányban hígított normál sertésszérummal kezeljük 5 percen keresztül +4 °C hőmérsékleten az antitest nem specifikus kötődésének blokkolása érdekében.
Az antitest inkubálását mindig nedves légkörben, 30 percen keresztül szobahőmérsékleten végezzük. A mintákat először C242:1I monoklonális antitesttel (1. példa) inkubáljuk PBS-4 tömeg% BSA elegyben, majd az inkubálást biotinilezett ló-antiegér IgG-vel (Vectastain, Vector Laboratories, Burlingame, CA, USA) folytatjuk 1:400 hígítással 2 tömeg% sertés-antinyúl immunoglobulinnal kiegészített PBS-4 tömeg% BSA eleggyel, majd a végső inkubálást Avidin DH/biotinilezett tormaperoxidáz H komplexszel (Dakopatts A/S, Koppenhága, Dánia) végezzük. Az egyes inkubálási lépések után a mintákat 15 percen keresztül PBS-sel öblítjük. A mintát ezután 15 percen keresztül szubsztrátummal kezeljük, PBS-sel öblítjük, hematoxilinnel megfestjük, és glicerinzselatinba (Merck, Darmstadt, Németország) ágyazzuk. Szubsztrátumként 10 mg 3-amino-9-etil-karbazolt (Sigma, St. Louis, Mo., USA) használunk, amit 6 ml dimetil-szulfoxidban oldunk, és 4 pl 30 tömeg% hidrogén-peroxidot tartalmazó 50 ml 0,02 mol/1 nátrium-acetáttal (pH=5,5) hígítunk. A szubsztrátum oldatát felhasználás előtt szűrjük. A minták vizsgálati eredményét az 1. táblázatban foglaljuk össze.
1. táblázat
Vastagbél-vékonybél tumor és különböző normál szövetek C242: II antitesttel történő megfestése
Szövetminta Festett/összes
Vastagbél-vékonybél karcinóma 26/41
Normál vastagbél 8/16
Emlő 2/3
Fültőmirigy 2/2
Bőr 0/1 (a verejtékmirigyek enyhe elszíneződése)
Szövetminta Fcstett/összcs
Máj 0/2 (az epe enyhe elszíneződése)
Vese 0/1
Hasnyálmirigy 2/2 (vezeték)
Gyomor 0/1
Vékonybél 0/1
Az 1. táblázatban felsorolt eredményekből látható, hogy a vastagbél-vékonybél tumorból származó biopsziák 63%-a pozitív elszíneződést mutat a C242: II monoklonális antitesttel, A CA-242 antigén kifejeződése normál vastagbélszöveten általánosan gyengébb, mint a tumorszövetben, az elszíneződés teljes egészében az oszlopos epitéliumra és talpas sejtekre lokalizálódik. A vastagbéltől eltérő normál szövetek gyakorlatilag nem mutatnak reakcióképességet, míg pozitív eredményt találtunk a normál mellkasi vezetékben, hasnyálmirigy-vezetékben, epevezetékben és verejtékmirigyben, de az elszíneződés intenzitása gyenge.
3. példa
Sejtzárványképződés COLO 205 humán vastagbélkarcinómához kötött C242: II antitestnél A sejtzárványképződés vizsgálatához egyrétegű kultúrában tenyésztett COLO 205 sejtekből (lásd az 1. példát) egyetlen sejtszuszpenziót készítünk. A sejteket tripszinnel kezeljük, majd a tenyészközeggel alaposan átöblítjük, végül szuszpendáljuk. Jóddal jelölt C242: II antitestet (lásd az 1. példát; 200 000 cpm megfelel 50 ng monoklonális antitestnek) adunk a COLO 205 sejtek egyetlen sejtszuszpenziójához (106 sejt) 5 ml-es csövekben. A végső térfogat 200 μΐ.
A sejteket l25I-C242 jelenlétében 1 órán keresztül jégen (0 °C) inkubáljuk. A szuszpenziót ezután centrifugáljuk, és a sejteket mosással megszabadítjuk a meg nem kötött monoklonális antitesttől. Az előinkubált sejteket ezután 37 °C hőmérsékleten 1 órán keresztül 10 perces intervallumokban inkubáljuk, amelynek során a sejteket minden esetben lehűtjük, és pelletáljuk. A tenyészközegben felszabadult radiojelölésű anyag mennyiségét a felülúszóban vizsgáljuk (LKB gamma-számláló, Pharmacia AB, Uppsala, Svédország). A felülúszón emellett TCA kicsapást végzünk, és mérjük a csapadék radioaktivitását. A felülethez kötött 125I-C242-t 2,5 mg/ml papaint tartalmazó 0,2 mol/1 glicin-HCl-pufferrel (pH = 1,5) végzett savas mosással távolítjuk el, és méijük a radioaktivitást. A felülethez kötött antitest mennyiségét a 37 °C-on végzett inkubálás során minden esetben úgy számoljuk, hogy a felszabadult és beépült monoklonális antitestet kivonjuk a felülethez kötött ossz monoklonális antitestből. A felszabadult antitest degradálódását a közeg felülúszójából TCA kicsapással kapott csapadékon méijük.
Az eredményeket a 2. ábrán adjuk meg, ahol a sejtfelületen mért radioaktivitást (Sur), a beépült radioakti6
HU 218 084 Β vitást (Int), a felszabadult radioaktivitást (Rés) és a degradált felszabadult radioaktivitást (Deg.Re) ábrázoljuk a sejtfelületen mért ossz kezdeti radioaktivitás százalékában. A 2. ábrából látható, hogy a C242:II antitest több mint 20%-ban beépül 1 órán belül, ha az előinkubált sejteket 37 °C hőmérsékleten inkubáljuk. Csekély savban oldódó radioaktivitás mérhető, ha a közeg felülúszóját TCA kicsapásnak vetjük alá, ami arra utal, hogy a felszabadult aktivitás 1 órás inkubálás alatt kismértékben fragmentálódik.
4. példa
A C242.ll monoklonális antitest könnyű- és nehézlánc-egységének részeit kódoló cDNS molekuláris klónozása
108 sejtből ossz RNS-t állítunk elő Chomezynksi P. és Sacchi N. által módosított [Anal. Biochem. 162., 156-159. (1987)] Chirgwin J. M. és munkatársai módszerével [Biochemistry 18., 5294-5299. (1979)]. Ennek során a sejtpelletet 15 ml hideg denaturálóoldatban (4 mol/1 guanidinium-tiocianát, 25 mmol nátrium-citrát, pH=7, 0,5 tömeg% N-lauroil-szarkozin és 0,1 mol/1 2merkapto-etanol) oldunk, majd 1,2 ml 2 mol/1 nátrium-acetátot (pH =4,0) adunk hozzá, és az elegyet fenol/kloroform/izoamil-alkohol 250:49:1 eleggyel extraháljuk. Centrifugálás után az RNS-t a vizes fázisból azonos térfogatnyi izopropanollal kicsapjuk, majd egy éjszakán keresztül -20 °C hőmérsékleten inkubáljuk. Centrifugálás után az RNS-t szuszpendáljuk, ismét kicsapjuk, majd a centrifugálást és kicsapást megismételjük. így 960 pg ossz RNS-t kapunk.
A kapott össz-RNS-ből poliadenilezett mRNS-t izolálunk PolyATract mRNS izolálórendszerrel (Promega Corporation, Madison, Wisconsin, USA) a gyártó előírásai szerint [Promega Technical Bulletin, 090. szám (1990)]. Ennek során 960 pg ossz RNS-t oldunk vízzel, és biotinilezett oligo(dT)mintával (50 pmol) kezeljük 0,4xSSC jelenlétében (lxSSC=8,77 g NaCl, 4,41 g nátrium-citrát 1 liter vízben, pH = 7,0). Streptavidinnel bevont paramágneses gyöngyöket (Streptavidin Magnesphere) adunk hozzá, és 10 perces inkubálás után a mágneses részecskéket eltávolítjuk, és 0,lxSSC-vel többször mossuk. A poliadenilezett mRNS-t a gyöngyökről vizes inkubálással eluáljuk, amelynek során 5 pg mRNS-t kapunk.
A kapott poliadenilezett mRNS-ből cDNS-t állítunk elő Gubler U. és Hoffman B. J. módszerével [Gene, 25., 263-269 (1983)] Uni-Zap vektor (Stratagene Inc. La Jolla, Califomia, USA) alkalmazásával, ami lehetővé teszi a kétszálú cDNS egyirányú klónozását. Ennek során 5 pg poliadenilezett mRNS-t egyszálú cDNS-sé alakítunk Uni-Zap linker primer (56 ng/ml) alkalmazásával, amikor is 0,6 mmol/1 dATP-t, dGTP-t, dTTP-t és 5metil-dCTP-t, valamint 45 egység moloncia egér leukémia vírus reverz transzkriptázt adunk az elegyhez. Az elegyet 1 órán keresztül 37 °C hőmérsékleten inkubáljuk. A kétszálú cDNS szintézisét 0,15 mmol/1 koncentrációjú dATP-vel, dGTP-vel dTTP-vel és dCTP-vel végezzük 3,2 egység R-náz H enzim és 6,5 egység DNSpolimeráz I enzim jelenlétében. Az inkubálást 2,5 órán keresztül 16 °C hőmérsékleten végezzük. Az elegyet fenol/kloroform 1:1 eleggyel extraháljuk, és etanollal kicsapjuk. A cDNS-végeit 0,16 mmol/1 dNTP és 10 egység T4 DNS-polimeráz jelenlétében 37 °C hőmérsékleten 30 percen keresztül végzett inkubálással tompa végűvé alakítjuk. Fenol/kloroform eleggyel végzett extrahálás és etanolos kicsapás után a kapott tompa végű cDNS-t EcoRI adapterhez ligáljuk három Weiss-egység T4 DNS-ligáz és 1 mmol/1 ATP jelenlétében egy éjszakán keresztül 8 °C hőmérsékleten végzett inkubálással. A ligálás után az EcoRI tapadó végeket 10 egység T4 polinukleotid kinázzal kezeljük 1 mmol/1 ATP jelenlétében 37 °C hőmérsékleten 30 percen keresztül végzett inkubálással. A kapott cDNS-t, amely foszforilezett EcoRI tapadó végekkel rendelkezik, 90 egység Xhol enzimmel emésztjük, és így az Uni-Zap linker primer által kódolt szekvenciától egy Xhol tapadó véget alakítunk ki. A kapott cDNS-t ezután 1 pg Uni-Zap XR EcoRIgyel és Xhol-gyel kialakított karjaihoz ligáljuk kettő Weiss-egység T4 DNS-ligáz és 1 mmol/1 ATP jelenlétében egy éjszakán keresztül 12 °C hőmérsékleten végzett inkubálással. A ligáló elegyet in vitro fágrészecskékbe csomagoljuk Gigapack II Gold csomagolóextraktum alkalmazásával a gyártó előírásai szerint, és a kapott fágokkal E. coli PLK-F’ sejteket fertőzünk. A kapott 8,5 xlO4 független klónból álló cDNS-tárat 7,5 xlO8 pfii/ml fágtiterre egészítjük ki. A kapott cDNS-tárat E. coii XLl-Blue törzzsel [Bullock W.: Biotechniques 5., 4. T978)] vizsgáljuk.
A C242:ll antitest IgGl nehézlánc-egységét és kappa-láncegységét kódoló cDNS-klónok kimutatásához a nehézlánc-egység CH 1 első állandó területét és a kappa-láncegység CK állandó területét lefedő hibridizációs mintákat állítunk elő egér genomiális DNS-éből polimeráz láncreakcióval [Saiki R. H. és munkatársai: Science, 239., 487-491. (1988)]. Ennek során az egér genomiális DNS-t a fenti immunoglobulin területeket kódoló exonok 5’- és 3’-szakaszaival hibridizáló oligonukleotid primer párokat használjuk. Agarózgél-elektroforézissel végzett tisztítás után a kapott DNS-próbaffagmenseket 32P-vel jelöljük véletlenszerű primer kiterjesztéses módszerrel [Feinberg A. P. és Vogelstein B. Biochem. 132., 6., (1983)].
A cDNS-tárat két külön körben immunoglobulin IgGl és kappa-minták segítségével vizsgáljuk [Sambrook J. és munkatársai: Molecular Cloning, 2. kiadás, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)]. A két külön hibridizációs vizsgálat pozitívan hibridizáló fágklónjait tovább tisztítjuk, amelynek során a kezdeti vizsgálathoz használt próbákat alkalmazzuk. A pozitívan hibridizáló fágklónokat E. coli XLl-Blue tenyészetben elszaporítjuk, és a kapott fágtörzset használjuk a pBluescript SK(-) plazmidokat tartalmazó cDNS-nek fágmid kivágással és szaporítással történő előállításához [Short J. M. és munkatársai: Nucleic Acids Rés. 76,7583-7600.(1988)].
A kapott és a plazmidokat tartalmazó cDNS-t restrikciós enzimes térképezéssel jellemezzük, és a kívánt méretű inszerteket tartalmazó plazmidokat didezoxi DNS-szekvenálásnak vetjük alá [Sanger F. és munkatár7
HU 218 084 Β sai: Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74., 5463-5467. (1977)]. Az lg kappa-próbával hibridizáló plazmid, jele pKGE761, olyan cDNS-inszertet tartalmaz, amelynek szekvenciája a korábban ismert egér kappa-könnyűlánc-egység szekvenciával [Kábát E. A. és munkatársai : Sequences of Protein of Immunological Interest, 4. kiadás, U. S. Department of Health and Humán Services, National Institutes of Health (1987)] közeli homológiát mutató nyílt leolvasó keretet kódol. A kappakönnyűlánc-egység VK változó területét kódoló részleges cDNS-szekvenciát és ennek lefordított fehérje szekvenciáját a 3. ábra mutatja. A három CDR-szekvenciát (CDR1-CDR3) aláhúzással jelöljük. A VK-szegmens aminoterminális végét megelőző szignálpeptidet S jelöli. A VK-szekvencia karboxiterminális végét követő állandó területet CK jelöli.
Az IgGl próbával hibridizáló plazmid, jele pKGE762, olyan cDNS-inszertet tartalmaz, amelynek szekvenciája a korábban ismert egér-IgGl nehézláncegységének szekvenciájával (Kábát E. A. és munkatársai idézett műve) közeli homológiát mutató nyílt leolvasókeretet kódol. Az IgGl nehézlánc-egységének VH változó területét kódoló részleges cDNS-szekvenciát és ennek lefordított fehérje szekvenciáját a 4. ábra mutatja. A három CDR-szekvenciát (CDR1-CDR3) aláhúzással jelöljük. A VH szegmens aminoterminális végét megelőző szignálpeptidet S jelöli. A VH szegmens karboxiterminális végét követő állandó területet CH 1 jelöli.

Claims (16)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Az ECACC 90012601 számon deponált C242:II hibridóma sejtvonal által termelt antitest vagy azonos epitóp specifikussággal rendelkező más antitest.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti monoklonális antitest in vivő diagnosztikai célra.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti monoklonális antitest terápiás célra.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti antitest fragmentált formája.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti antitest, azzal jellemezve, hogy specifikusan ugyanahhoz az epitóphoz kötődik, mint az az antitest, amely a komplementaritást meghatározó szakaszaiban az alábbi aminosavszekvenciákkal rendelkezik:
    Kappa-lánc:
    CDR1: ArgSerSerLysSerLeuLeuHisSerAsnGlyAsnThrTyrLeuTyr
    CDR2: ArgMetSerAsnLeuValSer
    CDR3: LeuGlnHisLeuGluTyrProPheThr
    Nehézlánc:
    CDR1: TyrTyrGlyMetAsn
    CDR2: TrpIleAspThrThrThrGlyGluProThrTyrAlsGluAspPheLysGly
    CDR3: ArgGlyProTyrAsnTrpTyrPheAspVal.
  6. 6. In vitro diagnosztikai eljárás, azzal jellemezve, hogy a mintát az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti monoklonális antitesttel érintkeztetjük a saját antigénjéhez kötött monoklonális antitestből álló komplex kialakulását biztosító körülmények között, majd a kapott komplexet meghatározzuk, ahol a komplex mennyisége a mintában lévő antigén mennyiségével van összefüggésben.
  7. 7. Gyógyszerkészítmény, azzal jellemezve, hogy az 1 - 5. igénypontok bármelyike szerinti monoklonális antitestet tartalmaz.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti gyógyszerkészítmény, azzal jellemezve, hogy a monoklonális antitest vizes oldatát tartalmazza.
  9. 9. Sejtvonal, azzal jellemezve, hogy az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti antitestet vagy ennek antigénkötő fragmensét termeli.
  10. 10. A 9. igénypont szerinti sejtvonal, amely ECACC 90012601 számon deponált C242:II hibridóma sejtvonal vagy ennek mesterséges vagy spontán változata.
  11. 11. Eljárás az ECACC 90012601 számon deponált C242: II hibridóma sejtvonal által termelt antitest vagy azonos epitop specifikussággal rendelkező más antitest előállítására, azzal jellemezve, hogy a C242:II hibridóma sejtvonalat vagy ezzel azonos epitóp specifikussággal rendelkező más antitestet termelő, önmagában ismert módon előállított sejtvonalat tenyésztünk, és a termelt antitestet kinyerjük.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az antitestet fragmentált formában nyerjük ki.
  13. 13. A 11. vagy 12. igénypont szerinti eljárás olyan antitest előállítására, amely specifikusan ugyanahhoz az epitóphoz kötődik, mint az az antitest, amely a komplementaritást meghatározó szakaszaiban az alábbi aminosavszekvenciákkal rendelkezik:
    Kappa-lánc:
    CDR1: ArgSerSerLysSerLeuLeuHisSerAsnGlyAsnThrTyrLeuTyr
    CDR2: ArgMetSerAsnLeuValSer
    CDR3: LeuGlnHisLeuGluTyrProPheThr
    Nehézlánc:
    CDR1: TyrTyrGlyMetAsn
    CDR2: TrpIleAspThrThrThrGlyGluProThrTyrAlsGluAspPheLysGly
    CDR3: ArgGlyProTyrAsnTrpTyrPheAspVal, azzal jellemezve, hogy a megfelelő antitestet termelő sejteket tenyésztjük, és a termelt antitestet kinyeljük.
  14. 14. Eljárás gyógyszerkészítmény előállítására, azzal jellemezve, hogy egy, a 11-13. igénypontok bármelyike szerint előállított antitestet gyógyszerészeti hordozóanyaggal és adott esetben egyéb gyógyszerészeti segédanyaggal keverünk, és a keveréket gyógyszerkészítménnyé alakítjuk.
  15. 15. Eljárás sejtvonal előállítására, azzal jellemezve, hogy a 11-13. igénypontok bármelyike szerint előállított antitest ismeretében önmagában ismert módon az adott antitestet termelő sejtvonalat állítjuk elő.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti eljárás ECACC 90012601 számon deponált C242:II hibridóma sejtvonal vagy ennek mesterséges, vagy spontán változata előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő sejtvonalat állítjuk elő.
HU9400011A 1991-07-03 1992-07-03 Daganatokra specifikus monoklonális antitest és sejtvonal, valamint ezeket tartalmazó gyógyászati készítmények HU218084B (hu)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9102074A SE9102074D0 (sv) 1991-07-03 1991-07-03 Tomour antigen specific antibody

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU9400011D0 HU9400011D0 (en) 1994-05-30
HUT71193A HUT71193A (en) 1995-11-28
HU218084B true HU218084B (hu) 2000-05-28

Family

ID=20383243

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9400011A HU218084B (hu) 1991-07-03 1992-07-03 Daganatokra specifikus monoklonális antitest és sejtvonal, valamint ezeket tartalmazó gyógyászati készítmények
HU95P/P00289P HU211512A9 (en) 1991-07-03 1995-06-20 Tumor antigen specific antibody and cell line, and pharmaceutical composition comprising them

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU95P/P00289P HU211512A9 (en) 1991-07-03 1995-06-20 Tumor antigen specific antibody and cell line, and pharmaceutical composition comprising them

Country Status (19)

Country Link
US (1) US5552293A (hu)
EP (1) EP0521842B1 (hu)
JP (1) JP3194020B2 (hu)
KR (1) KR100246681B1 (hu)
AT (1) ATE171193T1 (hu)
AU (2) AU2292092A (hu)
CA (1) CA2073124C (hu)
DE (1) DE69226990T2 (hu)
DK (1) DK0521842T3 (hu)
EE (1) EE03031B1 (hu)
ES (1) ES2124250T3 (hu)
FI (1) FI109207B (hu)
HU (2) HU218084B (hu)
IE (1) IE80841B1 (hu)
IL (1) IL102390A (hu)
NO (1) NO315472B1 (hu)
NZ (1) NZ243435A (hu)
SE (1) SE9102074D0 (hu)
WO (2) WO1993001302A1 (hu)

Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE9402430L (sv) 1994-07-11 1996-01-12 Pharmacia Ab Konjugat mellan modifierat superantigen och en målsökande förening samt användning av konjugaten
SE9601245D0 (sv) 1996-03-29 1996-03-29 Pharmacia Ab Chimeric superantigens and their use
TW517061B (en) 1996-03-29 2003-01-11 Pharmacia & Amp Upjohn Ab Modified/chimeric superantigens and their use
EP1229934B1 (en) 1999-10-01 2014-03-05 Immunogen, Inc. Compositions and methods for treating cancer using immunoconjugates and chemotherapeutic agents
DK1411962T3 (da) 2001-03-15 2011-04-04 Neogenix Oncology Inc Terapi for pancreacancer med monoklonalt stof
DE10116552A1 (de) * 2001-04-03 2002-10-10 Abc Armbruster Biochemicals Verfahren zur Bestimmung der wirksamen Parathormon-Aktivität in einer Probe
NZ537610A (en) * 2002-07-02 2006-07-28 Smithkline Beecham Corp Stable formulations of the C242 antibody
US7390898B2 (en) 2002-08-02 2008-06-24 Immunogen Inc. Cytotoxic agents containing novel potent taxanes and their therapeutic use
US8088387B2 (en) 2003-10-10 2012-01-03 Immunogen Inc. Method of targeting specific cell populations using cell-binding agent maytansinoid conjugates linked via a non-cleavable linker, said conjugates, and methods of making said conjugates
AU2004240541B2 (en) 2003-05-20 2009-08-20 Immunogen, Inc. Improved cytotoxic agents comprising new maytansinoids
EP2468304A3 (en) 2005-02-11 2012-09-26 ImmunoGen, Inc. Process for preparing stable drug conjugates
US20110166319A1 (en) * 2005-02-11 2011-07-07 Immunogen, Inc. Process for preparing purified drug conjugates
JP2009505640A (ja) * 2005-08-11 2009-02-12 − ロジャーズ、アルピ マトシアン 自己免疫疾患の治療及び診断のためのtcr−vベータ関連ペプチド
AU2012244244B2 (en) * 2005-08-11 2015-08-27 Arpi Matossian-Rogers TCR-V-beta related peptides for treatment and diagnosis of autoimmune disease
NZ716641A (en) 2005-08-24 2017-06-30 Immunogen Inc Process for preparing maytansinoid antibody conjugates
JP5644110B2 (ja) 2008-08-05 2014-12-24 東レ株式会社 癌の検出方法
DK2437790T3 (da) 2009-06-03 2019-05-20 Immunogen Inc Konjugeringsfremgangsmåder
RS58367B1 (sr) 2011-03-29 2019-03-29 Immunogen Inc Priprema konjugata antitela i majtanzinoida jednostepenim postupkom
SG193997A1 (en) 2011-03-29 2013-11-29 Immunogen Inc Process for manufacturing conjugates of improved homogeneity
CA2886993A1 (en) 2012-10-04 2014-04-10 Immunogen, Inc. Use of a pvdf membrane to purify cell-binding agent cytotoxic agent conjugates
WO2015076425A1 (ja) * 2013-11-25 2015-05-28 リンク・ジェノミクス株式会社 新規モノクローナル抗体
CA2966932A1 (en) 2014-11-19 2016-05-26 Immunogen, Inc. Process for preparing cell-binding agent-cytotoxic agent conjugates
CA3010678A1 (en) 2016-01-10 2017-07-20 Neotx Therapeutics Ltd. Methods and compositions for enhancing the potency of superantigen mediated cancer immunotherapy
KR20180105233A (ko) 2016-02-05 2018-09-27 이뮤노젠 아이엔씨 세포 결합제-세포독성제 접합체를 제조하기 위한 효율적인 방법
CN107167590B (zh) * 2017-04-14 2019-03-08 江苏福隆生物技术有限公司 糖类抗原242的板式化学发光法检测试剂盒及制备方法
US20200256880A1 (en) * 2017-08-16 2020-08-13 The Broad Institute, Inc. Neuronal Assay Method Involving Calcineurin
MX2021013908A (es) 2019-05-15 2022-03-11 Neotx Therapeutics Ltd Tratamiento para el cáncer.
MX2022010936A (es) 2020-03-05 2022-11-16 Neotx Therapeutics Ltd ³métodos y composiciones para el tratamiento del cáncer con células inmunológicas.

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4752569A (en) * 1984-06-21 1988-06-21 The Regents Of The University Of California Sialylated Lewisx epitope, antibodies and diagnosis
US4904596A (en) * 1985-08-07 1990-02-27 Fred Hutchinson Cancer Research Center Hybridoma antibody (FH6) defining a human cancer-associated difucoganglioside
SE8902043L (sv) * 1988-11-10 1990-05-11 Pharmacia Ab Foerfarande foer karakterisering av makromolekyler
JP3334130B2 (ja) * 1990-07-20 2002-10-15 フアルマシア・アクチエボラーグ 抗体接合体
EP0540612A1 (en) * 1990-07-20 1993-05-12 Pharmacia AB Heterobifunctional reagents and conjugates with oxaalkylene units for amphiphilic bridge structures

Also Published As

Publication number Publication date
AU2292092A (en) 1993-02-11
ES2124250T3 (es) 1999-02-01
WO1993001302A1 (en) 1993-01-21
WO1993001303A1 (en) 1993-01-21
DE69226990D1 (de) 1998-10-22
KR100246681B1 (ko) 2000-04-01
NO934777D0 (no) 1993-12-22
CA2073124A1 (en) 1993-01-04
AU658198B2 (en) 1995-04-06
NO315472B1 (no) 2003-09-08
EE03031B1 (et) 1997-08-15
FI109207B (fi) 2002-06-14
DE69226990T2 (de) 1999-03-25
IL102390A0 (en) 1993-01-14
HU9400011D0 (en) 1994-05-30
EP0521842A2 (en) 1993-01-07
CA2073124C (en) 2007-06-19
EP0521842B1 (en) 1998-09-16
JP3194020B2 (ja) 2001-07-30
FI935970A0 (fi) 1993-12-31
JPH05276987A (ja) 1993-10-26
NO934777L (no) 1994-02-11
SE9102074D0 (sv) 1991-07-03
IE80841B1 (en) 1999-03-24
HUT71193A (en) 1995-11-28
ATE171193T1 (de) 1998-10-15
IL102390A (en) 1996-01-19
US5552293A (en) 1996-09-03
NZ243435A (en) 1994-10-26
EP0521842A3 (hu) 1994-01-26
HU211512A9 (en) 1995-11-28
DK0521842T3 (da) 1999-06-14
FI935970L (fi) 1993-12-31
AU1942592A (en) 1993-01-07
IE922188A1 (en) 1993-01-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU218084B (hu) Daganatokra specifikus monoklonális antitest és sejtvonal, valamint ezeket tartalmazó gyógyászati készítmények
JP3492373B2 (ja) モノクローナル抗体
CN113544156B (zh) 抗Claudin18.2抗体及其应用
JP4124486B2 (ja) ガン細胞を特異的に検出する抗原結合フラグメント、このフラグメントをコードするヌクレオチド、ならびにガンの予防および検出のためのその使用
CA2798778C (en) Anti-human trop-2 antibody having anti-tumor activity in vivo
CA2250080C (en) Humanization of an anti-carcinoembryonic antigen anti-idiotype antibody and use as a tumor vaccine and for targeting applications
RU2266298C2 (ru) Антитела к антигену эпителиальных опухолей желудочно-кишечного тракта человека, родственному альфа 6 бета 4 интегрину
JP2005538682A (ja) カルボキシックアンヒドラーゼix(caix)腫瘍抗原に対する抗体
JP2935520B2 (ja) ガン治療に用いられる新規高親和性改変抗体系統群
JPH10505231A (ja) B細胞リンパ腫細胞および白血病細胞に特異的な免疫結合体およびヒト化抗体
JP7063623B2 (ja) 治療用抗体およびその使用
JP2009148299A (ja) ヒト癌胎児性抗原に対する特異的結合メンバー;材料および方法
US5976531A (en) Composite antibodies of human subgroup IV light chain capable of binding to tag-72
JP2002502621A (ja) 乳腫瘍を伴うムチンに対する特異性のある抗体、その生産方法及び使用方法
US11608384B2 (en) Humanized anti-TPBG antibody, preparation method therefor, conjugate thereof, and applications
US7179899B2 (en) Composite antibodies of humanized human subgroup IV light chain capable of binding to TAG-72
CA2555306A1 (en) Humanized antibody
EP0618969B1 (en) Composite antibodies of human subgroup iv light chain capable of binding to tag-72
EP0723663B1 (en) Hybridoma and anti-kc-4 humanised monoclonal antibody, dna and rna encoding it, kit and diagnostic methods
JP2002504372A (ja) 高親和性ヒト型化抗−ceaモノクロ−ナル抗体
CN113597432B (zh) 抗EpCAM抗体及其应用
JP3483556B2 (ja) 細胞接着阻害抗体およびこれを利用する細胞接着阻害剤
EP3619237B1 (en) Antibodies against carcinoembryonic antigen for cancer therapy and diagnosis
EP4149543A1 (en) Anti-cd38 single-domain antibodies in disease monitoring and treatment
JP3045313B2 (ja) Tag−72に結合できるヒトサブグループiv l鎖の複合抗体

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees