HU181089B - Process and reagent for enzymatical determining enzyme substrates - Google Patents
Process and reagent for enzymatical determining enzyme substrates Download PDFInfo
- Publication number
- HU181089B HU181089B HU8080795A HU79580A HU181089B HU 181089 B HU181089 B HU 181089B HU 8080795 A HU8080795 A HU 8080795A HU 79580 A HU79580 A HU 79580A HU 181089 B HU181089 B HU 181089B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- substrate
- reagent
- buffer
- determination
- glucose
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/62—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving uric acid
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/54—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving glucose or galactose
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Emergency Medicine (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
Description
A találmány tárgya eljárás és reagens enzimszubsztrátok enzimatikus meghatározására.
Enzimszubsztrátok, például glükóz, húgysav, koleszterin, enzimatikus meghatározását főként az zavarja, hogy a reagensekben lévő anyagok, például redukáló vagy oxidáló anyagok, reagálnak a tesztrendszer köztitermékeivel vagy végtermékeivel. Ez a zavaró mellékreakció végbemehet tisztán kémiailag, vagy a zavarás történhet az enzim gátlása útján, az enzimatikus reakcióba versengő szubsztrátként való belépés útján és hasonló módon. Mindegyik esetben csökken a mért indikátortermék koncentrációja; kvantitatív, főleg fotometriás meghatározásoknál tehát például a képződő színezék koncentrációja. Az eljárás helyessége szempontjából lényeges egyenes arányosság a kimutatandó szubsztrátkoncentráció és a mért indikátortermék koncentrációja között ily módon megszűnik. A kimutatandó szubsztrátra kapott eredmény 100%-tól eltérő lesz. Másszóval, hamis eredményeket kapunk.
A találmány célja az, hogy megoldja ezt a problémát, és enzimszubsztrát zavaró anyagok jelenlétében való enzimatikus meghatározására olyan eljárást és reagenst bocsásson rendelkezésünkre, amely helyes eredményeket szolgáltat, és a fentebb felsorolt nehézségeket kiküszöböli.
Ezt a feladatot a találmány szerint enzim-szubsztrátnak zavaró anyagok — amelyek magával a szubsztráttal vagy az indikátorreakció egy közbülső vagy végtermékével reagálhatnak — jelenlétében való 181089 enzimatikus meghatározására szolgáló olyan eljárással oldottuk meg, amelyre az jellemző, hogy a vizsgálandó minta hozzáadása előtt először meghatározott mennyiségű szubsztrátot reagáltatunk a reagens5 sel, amíg elreagál, és csak azután adjuk hozzá a meghatározandó mintát.
A meghatározott mennyiségű szubsztrát hozzáadásával, amely mindig lényegesen kevesebb a mérő rendszer szubsztrát-meghatározó kapacitásánál, egy 10 előreakció lezajlását idézzük elő, amíg minden hozzáadott szubsztrát felhasználódik. Ennek az előreakciónak a során a zavaró anyagok is teljesen felhasználódnak. Amint ez a reakció tökéletesen végbement, adjuk csak hozzá az ismeretlen mennyiségű 15 meghatározandó szubsztrátot tartalmazó tulajdonképpeni megvizsgálandó mintát. A meghatározandó szubsztrát mennyisége azután a mérendő reakciótermékre végzett előreakció végértéke és a vizsgálandó minta hozzáadása után kapott végérték 20 közötti különbségből adódik. Lehetséges az is, hogy a tulajdonképpeni mintameghatározást kinetikusán végezzük, azaz ne végértékeket, hanem csak reakciósebességeket mérjünk.
A találmány szerint hozzáadandó szubsztrát 25 mennyiségére vonatkozólag semmilyen általános adat nem adható. Ez a mennyiség a mérőrendszertől és a várható zavaró anyagok mennyiségétől függ. Általában a zavaró anyagokra számítva elegendő szubsztrátfelesleget alkalmazunk, hogy biztonsággal kizár30 juk, hogy még el nem reagált zavaró anyagok legye-1181089 nek jelen, amikor a tulajdonképpeni ismeretlen mintát adjuk hozzá. Másrészt nem is túl sok szubsztrátot adunk hozzá, hogy a tulajdonképpeni mérőreakcióra ne kapjunk túl magas és a mérőreakció pontosságát negatívan befolyásoló nulla értéket. Az utóbbi játszik például szerepet egy eljárás szerint képződő színezék fotometriás méréseinél. Az ilyen, egy reakciótermékként keletkező színezék fotometriás meghatározásán alapuló módszerek esetében a hozzáadott meghatározott szubsztrátmennyiséget olyan alacsonyan tartjuk, hogy még ne keletkezzen zavaró koncentrációjú színezék. Ez a gyakorlatban minden esetben könnyen elérhető, mivel ilyenfajta színezék vagy egyéb indikátortermék csak olyan szubsztrátmennyiségből keletkezik, amely zavaró anyagok elreagál tatásához szükséges szubsztrátmennyiséget meghaladja.
A találmány szerinti eljárásnál nem szükséges a zavaró idegen anyagok fajtáját ismerni. Főként redukáló anyagokról van szó, de oxidáló vagy egyéb zavaró anyagok is biztonsággal kiküszöbölhetők a találmány szerinti eljárással.
A találmány tárgya továbbá enzimszubsztrát enzimatikus meghatározására szolgáló, a szubsztrát meghatározására alkalmas rendszert tartalmazó reagens, amely legalább egy enzimből, legalább egy pufferanyagból és legalább egy indikátoranyágból valamint adott esetben segédanyagokból áll, és amelyet az jellemez, hogy meghatározott mennyiségű szubsztrátot tartalmaz, az ezen szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer szubsztrátmeghatározó kapacitásánál kevesebbet.
Ha a száraz formában lévő találmány szerinti reagenst vízben feloldjuk, a zavaró anyagok kiküszöbölésére szolgáló reakció már az oldás alatt és után végbemegy. Az igy kapott oldat azután közvetlenül alkalmazható az enzimszubsztrát tulajdonképpeni meghatározására, vagy újra szárazreagenssé alakítható, amely alkalmas későbbi újabb feloldásra a meghatározási reakció kivitelezése előtt. Lehetséges azonban az is, hogy a találmány szerinti reagenst csak közvetlenül felhasználása előtt komplettírozzuk szubsztrát-hozzáadással, vagy alternatív módon a reakció beindításához szükséges anyagot, például az enzimet, vagy többfokozatú enzimes reakció esetén a reakcióhoz szükséges valamely enzimet csak utólag adjuk hozzá.
A találmány szerinti reagens egyik előnyös kiviteli alakja szubsztrátként glükózt tartalmaz, és a glükóz szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer glükózoxidázból (GOD), peroxidázból (POD), pufferból és ABTS® [2,2’-azino-di(3-etil-benztiazolin-6-szulfonát)] színreagensből áll.
Egy ilyenfajta reagens esetén, a szubsztrátmeghatározó rendszer 100 ml vizes oldatára számítva, körülbelül 750-1500 egység, előnyösen 900-1200 egység glükózoxidázt (GOD) használunk körülbelül 100 egység/mg fajlagos aktivitású enzimből. A megfelelő mennyiségek szintén körülbelül 100 .egység/mg aktivitású peroxidáz esetében: 10—150, előnyösen 80-120 egység/lOOml használatra kész reagensoldat. A megfelelő koncentrációk ABTS-re: 75—150, előnyösen 90—120 mg/100 ml. Pufferként 6,5-7,5 pH-jú, előnyösen 6,8-7,2 pH-jú pufferok jönnek számításba. A koncentráció célszerűen 50 és 200, előnyösen 80-120 mmól/liter közötti. Pufferként nátrium-foszfát puffer [Na2HP04/NaH2P04] az előnyös. Más alkalmas pufferokra példák: foszfát/trisz puffer, citromsav/trisz puffer, borkősav/trisz puffer és maleinsav/trisz puffer. A koncentrációra és a pH-értékre a fent megadottak érvényesek.
Az előzőekben leírt módon összeállított reagens esetén a glükóztartalom célszerűen 0,01—0,05, előnyösen 0,02-0,04 mg/100 ml oldat.
Egy glükózmeghatározásra szolgáló, találmány szerinti további előnyös reagens esetében a szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer GOD és POD mellett színképző komponensekként 4-amino-fenazont (PAP) és fenolt tartalmaz. Ebben az esetben a használatra kész reagensoldatba 100 ml-enként 3000-5000 egység, előnyösen 3800-4200 egység GOD-t, 50—240 egység, előnyösen 160—200 egység POD-t, valamint 10-20 mg, előnyösen 13-17 mg PAP-t és 120-240 mg, előnyösen 160—200 mg fenolt adunk. Ebben az esetben pufferként a fentebb megadott pH-tartományon belüli kálium-foszfát puffer előnyös. A koncentrációnak célszerűen 150 és 250 mmól/liter, előnyösen 180—220 mmól/liter között kell lennie. Ez a reagens célszerűen 0,05-0,25 mg, előnyösen 0,1-03 mg glükózt tartalmaz 100 ml oldatban.
A fenti adatok az oldott reagensre vonatkoznak. Hasonló módon azonosak a 100 ml oldat készítéséhez szükséges szárazreagensben lévő mennyiségek.
Egy további előnyös reagens szubsztrátként húgysavat tartalmaz, és az ezen szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer urikázból, POD-ból, színképzőből és pufferból áll. Színképzőként 2,4-diklór-fenol és 4-amino-antipirin előnyösek.
Egy ilyenfajta reagens célszerű kiviteli formájában 35-45 egység, előnyösen 38—42 egység urikázt tartalmaz 100 ml használatra kész oldatban körülbelül 9 egység/mg fajlagos aktivitású anyagból. A POD mennyisége körülbelül 100 egység/mg fajlagos aktivitású anyagból célszerűen 30—40 egység, előnyösen 33-37 egység 100 ml oldatban. A 2,4-diklór-fenoIt, amelyet alkálifémsóként, ammóniumsóként vagy aminnal képzett sóként, előnyösen etil-ammóniumsóként alkalmazunk, célszerűen 150—200 mg, előnyösen 165—180 mg közötti mennyiségben — az etil-ammóniumsóra vonatkoztatva - adjuk 100 ml oldathoz. Ezek a mennyiségi adatok természetesen változnak a kation fajtájától függően. A 4-amino-antipirint (4-amino-fenazon) célszerűen 150—250 mg, előnyösen 180-220 mg közötti mennyiségben adjuk 100 ml reagenshez.
A pufferanyagnak 8,5-9,5 pH-tartományban, előnyösen 8,7—93 pH-tartományban kell pufferolnia. A koncentráció célszerűen 100—200 mmól/liter, előnyösen 130-180 mmól/liter. Előnyös a trisz/citrát puffer, más jól alkalmazható pufferok a trisz/borkősav és a trisz/maleinsav puffer.
Ennél a reagensnél a húgysavadalék célszerűen 0,05 és 0,25 mg, előnyösen 0,1-0,2 mg 100 ml-enként, a lítium- vagy a nátriumsóra számítva.
A találmány szerinti egyik további előnyös reagens szubsztrátként koleszterint tartalmaz, és az ezen szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer koleszterin-észterázból, koleszterin-oxidázból, POD-ból és színképzőből valamint pufferanyagból áll.
-2181089
Színképzőként különösen 4-amino-antipirin és fenol keveréke alkalmas.
Az egyik célszerű kiviteli alakjában ez a reagens lOOml-enként 15—25 egység, előnyösen 17-23 egység körülbelül 20 egység/mg fajlagos aktivitású 5 koleszterin-észterázt, 20-30 egység, előnyösen 22-28 egység körülbelül 25 egység/mg fajlagos aktivitású koleszterin-oxidázt, 50-200 egység, előnyösen 130-180 egység körülbelül 100 egység/mg aktivitású POD-t, 15-25 mg, előnyösen 17—23 mg 10
4-amino-antipirint és 40—60 mg, előnyösen 45— -55 mg fenolt tartalmaz. Pufferként valamilyen alkalmas 7-8,5 pH-jú, előnyösen 7,8-8,2 ρΗ-jú pufferanyagot használunk 150 és 250 mmól/liter, előnyösen 180-220 mmól/liter koncentrációban. Kü- 15 lönösen alkalmas a kálium-foszfát puffer, de más pufferanyagok is megfelelők, amelyek a megadott tartományban pufferolnak. Egy ilyenfajta reagens koleszterin-tartalma célszerűen 0,20-0,60 mg, előnyösen 0,30-0,50 mg 100 ml reagensoldatban illetve 20 ilyen reagensoldat készítésére alkalmas szárazreagens-mennyiségben.
Magától értetődik, hogy a fentebb megadott előnyös, találmány szerinti reagens-adalék mennyiségek csak az egyes enzimekre megadott fajlagos aktivitású 25 enzimekre vonatkoznak, és helyettesíthetők más aktivitású termékekkel.
Látható, hogy a találmány szerint az enzimszubsztrátok enzimatikus meghatározásainál fellépő zavaró reakciók kiküszöbölhetők. Ez lehetővé teszi, 30 hogy kevésbé tiszta reagenseket használjunk, meghosszabbítja azon reagensek eltarthatóságát, amelyeknél a tárolás során zavaró anyagok keletkeznek, és növeli a meghatározások pontosságát.
A következő példák a találmányt részletesebben szemléltetik.
1. példa
Reagens glükóz ABTS-módszer szerinti meghatározására.
Nátrium-foszfát puffer, pH 7,0
Glükózoxidáz (kb. 100 E/mg) Peroxidáz (kb, 100 E/mg) ABTS*
Glükóz
100 mmól/liter,
1000 E/100 ml,
E/100 ml,
100 mg/100 ml,
0,05 mg/100 ml.
3. példa
Reagens koleszterin meghatározására.
Kálium-foszfát puffer, | |
pH 7,9 | 200 mmól/liter, |
Koleszterin-észteráz | |
(kb. 20 E/mg) | 22 E/100 ml, |
Koleszterin-oxidáz | |
(kb. 25 E/mg) | 24 E/10Ö ml, |
Peroxidáz (kb. 100 E/mg) | 150 E/100 ml, |
4-Amino-antipirin | 21 mg/100 ml, |
Fenol | 47 mg/100 ml, |
Koleszterin | 0,4 mg/100 ml. |
4. példa
Reagens húgysavmeghatározáshoz.
Trisz/acetát puffer, pH 9,1 | 150 mmól/liter, |
Urikáz (kb. 9 E/mg) | 39 E/100 ml, |
Peroxidáz (kb. 100 E/mg) | 36 E/100 ml, |
2)4-Diklór-fenol-(etil- | |
-ammónium)-só | 170 mg/100 ml, |
4-Amino-antipirin | 190 mg/100 ml, |
Húgysav (lítium- vagy | |
nátrium-só) | 0,16 mg/100 ml. |
példa összehasonlító glükózmeghatározás.
A glükózmeghatározás találmány szerinti javított 35 pontosságának bemutatására a következőképpen járunk el:
Két reagensoldatot (A és B) készítünk 1. példa szerinti reagens szükséges mennyiségű vízben való feloldásával. Az (A) oldat esetében azonban a 4θ glükóz-adalékot elhagyjuk. A meghatározáshoz 50-től 400 mg/100 ml-ig emelkedő koncentrációjú glükóz-standardsorozatot valamint humán-szérum standard-sorozatot készítünk.
Meghatározási körülmények: Hullámhossz: Hg 436 nm. Küvetta: 1 cm rétegvastagság. Inkubációs hőmérséklet: 20-25 °C.
*2,2’-azino-di(3-etil-benztiazolin-6-szulfonsav)-diammóniumsó.
2. példa
Reagens glükóz GOD-PAP módszer szerinti meg határozására.
Kálium-foszfát puffer, pH 7,1
Glükózoxidáz GOD;
kb. 100 E/mg) Peroxidáz (POD; kb. 100 PAP (4-amino-fenazon) Fenol
Glükóz
205 mmól/liter,
4100 E/100 ml, E/mg) 190 E/100 ml, mg/100 ml, 200 mg/100 ml, 0,2 mg/100 ml.
A mérés vakpróbával szemben történik kereskedelmi forgalomban lévő fotométerben. A küvettákba a következő oldatokat pipettázzuk:
Vakpróba | Standard | Minta | |
Deszt. víz | 0,1 ml | - | - |
Hígított standardoldat | — | 0,1 ml | — |
Fehérjementesített minta | — | — | 0,1 ml |
Tesztreagens | 5,0 ml | 5,0 ml | 5,0 ml |
-3181089
Keverés után 20—25 °C-on inkubáljuk, majd 25-50 perc múlva mérjük a minta extinkcióját (E minta) és a standard extinkcióját (Estandard) a vakpróbával szemben.
A mintában lévő glükózkoncentráció számítása: Eminta c = 100 X ---------[mg/100 ml]
Estandard
Mérési eredmények:
Glükóz standard-sorozat (50—400 mg/100 ml)
Glükózkoncentráció | Extinkció a reagensekben | |
A | B | |
50 mg/100 ml | — | 0,095 |
100 mg/100 ml | 0,060 | 0,170 |
200 mg/100 ml | 0,236 | 0,353 |
300 mg/100 ml | 0,400 | 0,533 |
400 mg/100 ml | 0,577 | 0,700 |
A fenti mérési eredményeket a mellékelt ábrán grafikusan ábrázoljuk. Az A oldatra kapott görbe azt mutatja, hogy a 70 mg/100 ml glükózkoncentráció alatt a mintafolyadékok nem mérhetők, mivel 5 nincs extinkció, azaz nem történik színképződés. Az általánosan szokásos egypont-standard (például 100 mg glükóz/100 ml) használatakor a 70 és 100 mg/100 ml közötti glükózkoncentrációjú mintákra túl alacsony, a 100 mg/100 ml glükóztar10 talom feletti mintákra túl magas értéket kapunk a tényleges tartalomhoz képest. Csak az olyan mintakoncentrációkra kapunk korrekt mérési értékeket, amelyek pontosan megfelelnek a standard koncentrációjának. A találmány szerinti B reagens ezzel 15 szemben végig helyes értékeket szolgáltat.
A humán-szérum mintákkal a fent leírt módon kaptunk eredményeket, míg összehasonlításhoz a 20 hexokináz-módszer (standard-módszer) szerint kapott értékeket határoztuk meg. Az eredményeket a következő táblázat mutatja.
HK/G6P-DH (standard-módszer) | A reagens | B reagens | |
1. szérum | 53 mg/100 ml | nincs mérési érték | 51 mg/100 ml |
2. szérum | 84 mg/100 ml | 55 mg/100 ml | 83,5 mg/100 ml |
3. szérum | 135 mg/100 ml | 213 mg/100 ml | 135 mg/100 ml |
Szabadalmi igénypontok:
Claims (6)
- Szabadalmi igénypontok:1. Reagens enzimszubsztrát enzimatikus meghatározására, amely a szubsztrát meghatározására szolgáló olyan rendszert tartalmaz, amely legalább egy enzimből, legalább egy pufferanyagból és legalább egy indikátoranyagból, valamint adott esetben segédanyagokból áll, azzal jellemezve, hogy a fentieken kívül ezen szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer szubsztrátmeghatározó kapacitásánál kevesebb, meghatározott mennyiségű szubsztrátot is tartalmaz.
- 2. Az 1. igénypont szerinti reagens kiviteli alakja, azzal jellemezve, hogy szubsztrátként glükózt tartalmaz, és a szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer glükózoxidázból, peroxidázból, 2,2’-azino-di(3-etil-benztiazolin-6-szulfonát)-ból és pufferból áll.
- 3. Az 1. igénypont szerinti reagens kiviteli alakja, azzal jellemezve, hogy szubsztrátként húgysavat tartalmaz, és a szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer urikázból, peroxidázból, 2,4-diklór-fenolátból, 4-amino-antipirinből és pufferból áll.
- 4. Az 1. igénypont szerinti reagens kiviteli alakja, azzal jellemezve, hogy szubsztrátként koleszterint tartalmaz, és a szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer koleszterin-észterázból, koleszterin-oxidázból, peroxidázból, 4-amino-antipirinből, fenolból és pufferból áll.
- 5. Az 1. igénypont szerinti reagens kiviteli alakja, azzal jellemezve, hogy szubsztrátként glükózt tartalmaz, és a szubsztrát meghatározására szolgáló rendszer glükózoxidázból, peroxidázból, 4-amino-fenazonból, fenolból és pufferból áll.
- 6. Eljárás enzimszubsztrát olyan zavaró anyagok jelenlétében való enzimatikus meghatározására, amelyek a szubsztráttal magával vagy az indikátorreakció egy köztitermékével vagy végtermékével reagálhatnak, azzal jellemezve, hogy a vizsgálandó minta hozzáadása előtt először a szubsztrát meghatározott, a reagens szubsztrát meghatározó kapacitásánál kisebb mennyiségét reagáltatjuk a reagenssel, amíg elreagál, és csak utána adjuk hozzá a meghatározandó mintát.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2913553A DE2913553C2 (de) | 1979-04-04 | 1979-04-04 | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU181089B true HU181089B (en) | 1983-05-30 |
Family
ID=6067435
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU8080795A HU181089B (en) | 1979-04-04 | 1980-04-02 | Process and reagent for enzymatical determining enzyme substrates |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4517287A (hu) |
EP (1) | EP0016947B1 (hu) |
JP (1) | JPS55135599A (hu) |
AT (1) | ATE4126T1 (hu) |
AU (1) | AU515851B2 (hu) |
CA (1) | CA1152871A (hu) |
CS (2) | CS244665B2 (hu) |
DD (1) | DD150256A5 (hu) |
DE (2) | DE2913553C2 (hu) |
FI (1) | FI70727C (hu) |
HU (1) | HU181089B (hu) |
YU (1) | YU44100B (hu) |
Families Citing this family (30)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS56164797A (en) * | 1980-05-21 | 1981-12-17 | Toyo Jozo Co Ltd | Improved method of determining components in samples |
EP0100217B1 (en) * | 1982-07-23 | 1987-10-07 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Process for quantitative determination of substrate treated with oxidase |
DE3314308A1 (de) * | 1983-04-20 | 1984-10-25 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und reagens zur bestimmung des haemoglobin-haptoglobin komplexes in gegenwart von freiem haemoglobin |
DE3509238A1 (de) * | 1985-03-14 | 1986-09-18 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Stabilisierung der aktivitaet von peroxidase in loesung |
US4937186A (en) * | 1988-01-28 | 1990-06-26 | Iqbal Siddiqi | Method for the determination of bilirubin in solution |
US5183743A (en) * | 1989-06-12 | 1993-02-02 | Miles Inc. | Chromogenic dibenzoxazepinone and dibenzothiazepinone enzyme substrates |
GB9113212D0 (en) * | 1991-06-19 | 1991-08-07 | Hypoguard Uk Ltd | Reagent mixture |
US5614010A (en) * | 1994-03-14 | 1997-03-25 | Clearwater, Inc. | Hydrocarbon gels useful in formation fracturing |
AUPM506894A0 (en) * | 1994-04-14 | 1994-05-05 | Memtec Limited | Novel electrochemical cells |
AUPN239395A0 (en) * | 1995-04-12 | 1995-05-11 | Memtec Limited | Method of defining an electrode area |
AUPN363995A0 (en) | 1995-06-19 | 1995-07-13 | Memtec Limited | Electrochemical cell |
US6413410B1 (en) | 1996-06-19 | 2002-07-02 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
AUPN661995A0 (en) * | 1995-11-16 | 1995-12-07 | Memtec America Corporation | Electrochemical cell 2 |
US6638415B1 (en) * | 1995-11-16 | 2003-10-28 | Lifescan, Inc. | Antioxidant sensor |
US6521110B1 (en) | 1995-11-16 | 2003-02-18 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
US6863801B2 (en) * | 1995-11-16 | 2005-03-08 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
US6632349B1 (en) * | 1996-11-15 | 2003-10-14 | Lifescan, Inc. | Hemoglobin sensor |
AUPO855897A0 (en) * | 1997-08-13 | 1997-09-04 | Usf Filtration And Separations Group Inc. | Automatic analysing apparatus II |
US6193865B1 (en) | 1997-09-11 | 2001-02-27 | Usf Filtration And Separations Group, Inc. | Analytic cell |
US6444115B1 (en) * | 2000-07-14 | 2002-09-03 | Lifescan, Inc. | Electrochemical method for measuring chemical reaction rates |
RU2278612C2 (ru) | 2000-07-14 | 2006-06-27 | Лайфскен, Инк. | Иммуносенсор |
CN1702456A (zh) * | 2001-10-10 | 2005-11-30 | 生命扫描有限公司 | 电化学电池 |
US20030180814A1 (en) * | 2002-03-21 | 2003-09-25 | Alastair Hodges | Direct immunosensor assay |
US20060134713A1 (en) * | 2002-03-21 | 2006-06-22 | Lifescan, Inc. | Biosensor apparatus and methods of use |
US8529751B2 (en) * | 2006-03-31 | 2013-09-10 | Lifescan, Inc. | Systems and methods for discriminating control solution from a physiological sample |
US8778168B2 (en) | 2007-09-28 | 2014-07-15 | Lifescan, Inc. | Systems and methods of discriminating control solution from a physiological sample |
US8513371B2 (en) * | 2007-12-31 | 2013-08-20 | Bridgestone Corporation | Amino alkoxy-modified silsesquioxanes and method of preparation |
US8603768B2 (en) | 2008-01-17 | 2013-12-10 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
US8551320B2 (en) * | 2008-06-09 | 2013-10-08 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
CN111808921A (zh) * | 2020-06-15 | 2020-10-23 | 武汉生之源生物科技股份有限公司 | 一种基于Trinder反应的检测试剂盒及其应用 |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
NL137003C (hu) * | 1967-10-14 | |||
GB1385320A (en) * | 1971-09-22 | 1975-02-26 | Nat Res Dev | Cholesterol assay |
IT986838B (it) * | 1972-05-12 | 1975-01-30 | Sclavo Inst Sieroterapeut | Complesso di reagenti per la deter minazione enzimatica del glucosio sistema glucosio ossidasi perossi dasi con metodo manuale e automati co con lettura a termine o in cinetica |
US4000042A (en) * | 1973-09-06 | 1976-12-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Diagnostic reagent for the determination of amylase |
DE2417230A1 (de) * | 1974-04-09 | 1975-11-06 | Lebrecht Von Dr Klitzing | Verfahren und anordnung zur enzymatischen bestimmung der konzentration von substraten, insbesondere stoffwechselmetaboliten |
BE856461A (nl) * | 1977-07-04 | 1978-01-04 | Henau Paul | Indicator voor zuurstofoverdracht, preparaat voor het verrichten van enzymatische bepalingen op basis van deze indicator en werkwijze |
US4242446A (en) * | 1978-07-26 | 1980-12-30 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a substance in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
US4241179A (en) * | 1978-08-14 | 1980-12-23 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a transaminase in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
-
1979
- 1979-04-04 DE DE2913553A patent/DE2913553C2/de not_active Expired
-
1980
- 1980-02-20 DE DE8080100841T patent/DE3064075D1/de not_active Expired
- 1980-02-20 AT AT80100841T patent/ATE4126T1/de not_active IP Right Cessation
- 1980-02-20 EP EP80100841A patent/EP0016947B1/de not_active Expired
- 1980-03-11 CA CA000347407A patent/CA1152871A/en not_active Expired
- 1980-03-24 AU AU56779/80A patent/AU515851B2/en not_active Expired
- 1980-03-25 US US06/133,722 patent/US4517287A/en not_active Expired - Lifetime
- 1980-04-01 FI FI801025A patent/FI70727C/fi not_active IP Right Cessation
- 1980-04-02 YU YU917/80A patent/YU44100B/xx unknown
- 1980-04-02 DD DD80220176A patent/DD150256A5/de not_active IP Right Cessation
- 1980-04-02 HU HU8080795A patent/HU181089B/hu not_active IP Right Cessation
- 1980-04-03 CS CS817834A patent/CS244665B2/cs unknown
- 1980-04-03 JP JP4343980A patent/JPS55135599A/ja active Granted
- 1980-04-03 CS CS802326A patent/CS228127B2/cs unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS228127B2 (en) | 1984-05-14 |
EP0016947B1 (de) | 1983-07-13 |
ATE4126T1 (de) | 1983-07-15 |
AU5677980A (en) | 1980-10-09 |
JPS55135599A (en) | 1980-10-22 |
CA1152871A (en) | 1983-08-30 |
DD150256A5 (de) | 1981-08-19 |
DE2913553C2 (de) | 1981-09-17 |
CS244665B2 (en) | 1986-08-14 |
FI70727B (fi) | 1986-06-26 |
YU91780A (en) | 1984-04-30 |
DE2913553B1 (de) | 1980-10-09 |
AU515851B2 (en) | 1981-05-07 |
FI70727C (fi) | 1986-10-06 |
FI801025A (fi) | 1980-10-05 |
YU44100B (en) | 1990-02-28 |
US4517287A (en) | 1985-05-14 |
EP0016947A1 (de) | 1980-10-15 |
DE3064075D1 (en) | 1983-08-18 |
CS783481A2 (en) | 1985-09-17 |
JPS5646800B2 (hu) | 1981-11-05 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
HU181089B (en) | Process and reagent for enzymatical determining enzyme substrates | |
US4543326A (en) | Stabilization of oxidase | |
US4378429A (en) | Enzymatic method and stabilized solutions for determining total cholesterol in human serum | |
JPH0577399B2 (hu) | ||
EP0007787A1 (en) | Method and reagent for the quantitative determination of hydrogen peroxide | |
US4254222A (en) | Semi-quantitative assay of lactic acid and β-hydroxy butyrate | |
US4622296A (en) | Process for measuring activity of dehydrogenase employing a reaction stopper | |
US4120755A (en) | Kinetic method for determination of glucose concentrations with glucose dehydrogenase | |
EP0253520B1 (en) | Stabilized liquid enzyme composition for glucose determination | |
Gardiner | A rapid and sensitive fluorimetric assay for adenosine, inosine, and hypoxanthine | |
US4657854A (en) | Assay systems based on magnesium-responsive enzymes | |
EP0133681B1 (en) | Enzymatic urea assay | |
EP0116307A2 (en) | Composition, analytical element and method for the quantification of creatine kinase | |
EP0024578A1 (en) | Method of stabilizing an enzyme solution for use in total cholesterol determination, stabilized solution and test kit therefor | |
US20020031794A1 (en) | Method and reagent for quantitative determination of 1,5- anhydroglucitol | |
Kohlbecker et al. | Direct spectrophotometric determination of serum and urinary oxalate with oxalate oxidase | |
US3862012A (en) | Quantitative determination of uric acid | |
US5334507A (en) | Composition for measurement of potassium ion concentration and composition for elimination of ammonium ions | |
EP0484133A2 (en) | Method for measuring bilirubin | |
Bertrand et al. | A one-step determination of serum 5'-nucleotidase using a centrifugal analyzer | |
US4810642A (en) | Method and test composition for determination of hydrogen peroxide | |
Scheibe et al. | Uric acid | |
EP0463755A1 (en) | Stable aqueous NADH reagent and kit | |
US4409328A (en) | Method and reagent for the determination of glycerol | |
US4695539A (en) | Process for quantitative determination of substrate treated with oxidase |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |