DE3740520A1 - Schnelles verfahren zur gewinnung einer faktor vii - praeparation sowie ihre verwendung - Google Patents
Schnelles verfahren zur gewinnung einer faktor vii - praeparation sowie ihre verwendungInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Gewinnung einer hochge
reinigten Faktor-VII-Präparation aus menschlichem oder tierischem
Plasma. Die Präparation aus menschlichem Pool-Plasma kann zur Be
handlung von Blutgerinnungsstörungen verwendet werden.
Faktor VII (MG=50 000 Dalton) ist ein einkettiges Vitamin-K ab
hängiges Plasmaprotein, das sowohl im intrinsischen als auch im
extrinsischen Gerinnungssystem wirkt und eine Schlüsselrolle in
der Initiation der Blutgerinnung spielt. Broze, G. J. and Majerus,
P. W. J. Biol. Chem. 255, 1242-1247, 1980, and Methods of Enzymo
logy 80, 229-236, 1981. Rao, L. V. M., Rapaport, S. I. and Bejaj,
S. P. Blood 68, 685-691, 1986. Osterud, B. Scand. J. Haematol. 32,
337-345, 1984.
Bei der Initiation des extrinsischen Systems der Blutgerinnung
wirkt das einkettige Faktor-VII-Molekül nur auf seine Substrate,
Gerinnungsfaktor IX und X, wenn Gewebethromboplastin vorhanden
ist. Gewebethromboplastin, ein membranständiges Glykoprotein, das
selbst keine enzymatische Aktivität besitzt, fungiert hierbei als
Kofaktor. In Analogie zu den Faktoren II, IX und X wird die Fak
tor-VII-Gerinnungsaktivität durch proteolytische Verdauung erheb
lich gesteigert. Die Faktoren Xa und Thrombin spalten das Faktor-
VII-Molekül durch Proteolyse einer einzigen Peptidbindung in eine
durch eine Disulfidbrücke verknüpfte leichte und eine schwere
Peptidkette. Das Faktor-VII-Molekül wird auf diese Weise ohne Ab
spaltung eines Peptids durch Proteolyse aktiviert. Eine Isolation
von Faktor VII aus humanem Plasma ist schwierig, da er nur in
einer Konzentration von 0.1 µg/ml im Plasma vorkommt und ver
glichen mit den Faktoren II, IX oder X, die eine biologische
Halbwertszeit von etwa 12 Stunden besitzen, nur 6-8 Stunden aktiv
im Plasma vorzufinden ist.
Verfahren zur Faktor-VII-Präparation wurden von verschiedenen Au
toren beschrieben. Bei diesen Verfahren wird der Faktor VII
schrittweise aus menschlichem bzw. bovinem Plasma isoliert.
Als Ausgangsmaterial für die Faktor-VII-Präparation verwendeten
alle Autoren ein an Bariumcitrat adsorbiertes, Faktor-VII-aktives
Material, welches nach Elution direkt verwendet oder von einigen
Autoren noch fraktionierter Ammoniumsulfatfällung verwendet
wurde.
In dem folgenden Text werden die nachstehenden Abkürzungen
verwendet:
Abkürzungen:
DEAE: Diäthylaminoäthyl
EACA: ε-amino-n-Capronsäure
EDTA: Äthylendiamintetraacetat
FPLC: Fast Protein Liquid Chromatography
HIC: Hydrophobe Interaktions-Chromatography
PEG: Polyäthylenglykol. Mol.-Gewicht 3350
PMSF: Phenylmethansulfonylfluorid
QAE: Quarternäres aminoäthyl
SBTI: Soja-Bohnen-Trypsin-Inhibitor
SDS: Dodecylhydrogensulfat Natriumsalz.
EACA: ε-amino-n-Capronsäure
EDTA: Äthylendiamintetraacetat
FPLC: Fast Protein Liquid Chromatography
HIC: Hydrophobe Interaktions-Chromatography
PEG: Polyäthylenglykol. Mol.-Gewicht 3350
PMSF: Phenylmethansulfonylfluorid
QAE: Quarternäres aminoäthyl
SBTI: Soja-Bohnen-Trypsin-Inhibitor
SDS: Dodecylhydrogensulfat Natriumsalz.
Die Aufreinigung des Materials erfolgte bei den verschiedenen
Autoren durch unterschiedliche Verfahren:
Durch Chromatographie an Benzamidin- und Heparin-Agarose und prä
parative SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese (Kiesel, W. and
Davie, E. W. Biochem. 14, No. 22, 4928-4934, 1975). Durch Ionen
austauschchromatographie an DEAE- und QAE-Sephadex und Gelfiltration
an S-100 Sephadex oder ACA 44 (Bronze, G. J. and Majerus, P. W.
J. Biol. Chem. 255, 1242-1247, 1980, und Methods of Enzymology
80, 229-236, 1981) bzw. durch präparative SDS-Polyacrylamid Gel
elektrophorese (Bajaj, S. P. Rapaport, S. I. and Brown, S. F.
J. Biol. Chem. 256, 253-259, 1981). Durch Chromatographie and
DEAE- und Sulfopropyl-Sephadex (Rao, L. V. M. and Bejaj, S. P.
Analyt. Biochem. 136, 357-361, 1984), oder durch Immunoaffini
tätschromatographie und anschließender Gelfiltration an Sephadex-
200 (Bach, R., Oberdick, J. and Nemerson, Y., Blood 63, 393-398,
1984).
Die erwähnten Verfahren sind zeitaufwendig, umständlich, und füh
ren nicht immer zu hochgereinigten Faktor-VII-Präparationen. Außerdem
ist die Endreinigung großer Mengen an Faktor VII durch
präparative SDS-Gelelektrophorese (Bejaj, S. P., Rapaport, S. I.
and Brown, S. F. J. Biol. Chem. 256, 253-259, 1981) technisch nur
schwer durchführbar. Ebenfalls ist die Faktor-VII-Reinigung mittels
Immunoaffinitätschromatographie (Bach, R., Oberdick, J. and
Nemerson, Y. Blood 63, 393-398, 1984) technisch unvorteilhaft, da
bei größeren Faktor-VII-Präparationen, stets größere Mengen eines
monospezifisch gegen Faktor VII gerichtetes Antiserum vorhanden
sein muß. Dieses spezifisch gegen Faktor VII gerichtete Antiserum
muß unter Verwendung hochgereinigten Faktor-VII-Antigens konti
nuierlich (auch bei Verwendung von monoklonalen Antikörpern)
nachproduziert werden, da erfahrungsgemäß Immunoaffinitätssäulen
durch Verschmutzung und Inaktivierung nur eine relativ kurze
Standzeit haben.
Es wurde überraschenderweise gefunden, daß man den Faktor VII
schneller als nach den Verfahren des Standes der Technik, aus
menschlichem und tierischem Plasma gewinnen kann. Gegenstand der
Erfindung ist daher ein Verfahren zur schnellen Isolation von
Faktor VII aus menschlichem oder tierischem Plasma unter Verwendung
hochauflösender Chromatographieschritte mittels FPLC (Fast
Protein Liquid Chromatography) gekennzeichnet durch die im Pa
tentanspruch wiedergegebenen Maßnahmen.
Ausgangsmaterial für das Isolationsverfahren ist eine Faktor-VII-
Präparation, welche durch Adsorption des Faktor VII an Bariumcitrat
und nachfolgender Elution durch Polyäthylenglykol konzentriert
und an DEAE-Sephadex und Sephadex-200 chromatographiert
wird.
Hochgereinigter Faktor VII kann in kurzen Trennzeiten mit hoher
Trennqualität bei Raumtemperatur durch Chromatographie an einem
starken Anionenaustauscher mit hoher Kapazität auf Mono Bead-
Basis (HPLC/FPLC) Mono Q HR 5/5, gefolgt von einer hochauflösenden
hydrophoben Interaktionschromatographie (HPLC/FPLC) an z. B.
Phenyl- bzw. Alkyl-SuperoseTH(Pharmacia) oder Hi-Propyl-Wide-
PoreTH(Baker) erhalten werden. Die ermittelten Bedingungen können
auch bei konventionellen Anionenaustauschern wie z. B. Q-
Sepharose Fast Flow (Pharmacia) verwendet werden, wenn größere
Probemengen aufgearbeitet werden sollen, keine präparative HPLC-
Ionenaustauschersäule "Mono Q"TM-Säule oder z. B. Alkyl-Phenyl-
SuperoseTM(Pharmacia) zur Verfügung steht und längere
Trennzeiten in Kauf genommen werden können.
12 Liter menschlichem Plasma, welches 10 mM an EDTA, EACA, Benzamidin
und PMSF war, wird 5 g Natriumcitrat und 60 mg Soja-
Bohnen-Trypsin-Inhibitor zugesetzt.
Dem Überstand wird nach 15minütiger Zentrifugation bei 4500 g und
4°C langsam, innerhalb einer Stunde, 960 ml einer 1 molaren Ba
riumchloridlösung bei 4°C zugetropft. Das sich unter Rühren bei
4°C bildende Präzipitat wird nach einer Stunde durch 15minütige
Zentrifugation bei 4500 g und 4°C abzentrifugiert. Das Präzipitat
wird in der Kälte mit einer Lösung, welche 2 mM an Barium
chlorid, 200 mM an NaCl, 25 mM an Benzamidin, 1 mM an PMSF, 50 mM
an Tris/HCL ist und 300 mg SBTI enthält, bei einem pH von 8,3 2mal
gewaschen.
Die Elution des an Bariumcitrat adsorbierten Materials wird durch
Resuspendierung des Präzipitats mit einer Lösung, welche 200 mM
an EDTA, 25 mM an Benzamidin, 1 mM an PMSF, 150 mM an Natriumci
trat, 100 mM an Tris/HCL ist und 300 mg SBTI enthält, bei einem
pH von 7.4 in der Kälte erreicht.
Es wird festes Polyäthylenglykol (MG 3350) unter Rühren bis zu
einer Endkonzentration von 4% (w/v) zugefügt und 45 Minuten bei
4°C gerührt. Nach einer 20minütigen Zentrifugation bei 4500 g
wird der Bodensatz verworfen und dem Überstand unter Rühren
festes PEG bis zu einer Endkonzentration von (35% w/v) zugefügt
und nach 60minütigem Rühren bei 4°C, 20 Minuten bei 4500 g zentrifugiert.
Der Bodensatz wird mit einer Lösung, welche 100 mM an
Natriumphosphat, 1 mM an Benzamidin, 0.5 mM an PMSF ist, bei
einem pH-Wert von 6.0 in der Kälte gelöst und gegen den selben
Puffer dialysiert. Das dialysierte Material wird an DEAE-Sephadex
A-50 (Säule: 4,8 cm×60 cm) adsorbiert, gewaschen und mittels
eines linearen Natriumchlorid-Gradienten (150 mM-500 mM NaCl)
bei einem pH-Wert von 6.0 chromatographiert.
Faktor-VII-Aktivität eluiert bei 250 mM NaCl.
Die aktiven Fraktionen werden gesammelt und mittels eines Ultra
filters auf 10 ml konzentriert und angefüllt mit Sephadex-200
(Säure: 2,5 cm×130 cm) in einem Puffer, welcher 50 mM an
Tris/HCl pH 8.0, 1 M an NaCl, 1 mM an EDTA und 1 mM an PMSF ist,
chromatographiert.
Faktor VII enthaltene Proben werden vereinigt, mittels eines Ultra
filters konzentriert und nach Dialyse gegen 20 mM Tris/HCl
Puffer pH 7.5, welcher 1 mM an Benzamidin ist, an einen starken
Anionenaustauscher auf Mono-Bead-Basis (FPLC Mono Q HR 5/5 Phar
macia), gebunden und mittels eines in die FPLC-Anlage (Pharmacia)
einprogrammierten linearen Natriumchloridgradienten (100 mM NaCl
bis 500 mM NaCl) bei einem pH-Wert von 7.5 chromatographiert.
Faktor-VII-Aktivität eluiert bei 330-350 mM NaCl.
(Gesamtchromatographiedauer etwa 40 Minuten bei Raumtemperatur).
Aktive Fraktionen werden durch Ultrafiltration, konzentriert gegen
einen 50-mM-Natriumphosphatpuffer pH 7.0, welche 1.2 M an Ammo
niumsulfat und 1 mM an Benzamidin ist, dialysiert und an eine FPLC
Phenyl-Superose Säule HR 5/5 (Pharmacia) adsorbiert.
Chromatographiert wurde in Natriumphosphatpuffer mittels eines
programmierten linearen Ammoniumsulfat/Äthylenglykolgradienten.
Anfangsbedingungen, Puffer A:
50 mM Natriumphosphat pH 7.0
1.2 M Ammoniumsulfat
1 mM Benzamidin
1.2 M Ammoniumsulfat
1 mM Benzamidin
Endbedingungen, Puffer B:
50 mM Natriumphosphat pH 7.0
0.0 M Ammoniumsulfat/1% v/v Äthylenglykol
1 mM Benzamidin.
0.0 M Ammoniumsulfat/1% v/v Äthylenglykol
1 mM Benzamidin.
Faktor-VII-Aktivität eluiert bei 100% Puffer B (Gesamtchromato
graphiedauer etwa 40 Minuten bei Raumtemperatur).
Während des gesamten Faktor-VII-Reinigungsverfahrens wurde nach
jedem Reinigungsschritt die Aktivität des erhaltenen Materials
durch einen einstufigen Gerinnungstest mittels Faktor-VII-Man
gelplasma bestimmt, sowie die chemische Reinheit des Materials
durch analytische SDS-Gelelektrophorese mit Silberfärbung der
Gele verfolgt.
Das bei der hydrophoben Interaktionschromatographie eluierte
Material, welches Faktor-VII-Aktivität besitzt, zeigt nur eine
Proteinbande mit einem apparenten Molekulargewicht von (50 000)
Dalton unter nicht reduzierenden Bedingungen in einem mit Silber
gefärbten SDS-Polyacrylamidgel.
Claims (5)
1. Verfahren zur Gewinnung einer hochreinen Faktor-VII-Präpara
tion aus einer wäßrigen Lösung dadurch gekennzeichnet,
daß das zuvor an Bariumcitrat ad
sorbierte, gefällte und eluierte Faktor VII enthaltene Material
zweimal durch einen Polyäther gefällt an einen Anionen
austauscher (DEAE) chromatographiert durch Gelfiltration und
durch zwei nachfolgende hochauflösende HPLC/FPLC-Chromatogra
phie-Verfahren bei Raumtemperatur präpariert wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
daß der Polyäther Äthylenglykol ist und
Äthylenglykol im festen Zustand dem Gemisch in einer Endkon
zentration von 4% (w/v), bei der ersten Fällung und in einer
Endkonzentration von 35% (w/v) dem Gemisch bei der zweiten
Fällung zugefügt wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
daß das durch Anionenaustauscher-Chromato
graphie (DEAE) angereicherte Material durch Gelfiltration (z. B.
an Sephadex-200TM, Pharmacia oder ähnlichem Gelfiltrations
material, vorzugsweise jedoch an SuperoseTM, Pharmacia) chro
matographiert wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
daß das durch Gelfiltration nach Anspruch 3
präparierte Material durch hochauflösende HPLC/FPLC-Chromato
graphie an einem Anionenaustauscher (z. B. an SAXTM-Baker vor
zugsweise jedoch an einem Ionenaustauscher speziell entwickelt
für die Fast Protein Liquid Chromatographie z. B. FPLC-Mono Q
HRTM, Pharmacia) chromatographiert wird.
5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das
durch Anionenaustauscher-Chromatographie nach Anspruch 4 prä
parierte Material durch eine hochauflösende HPLC/FPLC-hydro
phobe Interaktionschromatographie (z. B. an Hi-Propyl Wide-
PoreTM, Baker an Alkyl-SuperoseTM Pharmacia, vorzugsweise je
doch an FPLC-Phenyl-SuperoseTM Pharmacia) chromatographiert
wird.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19873740520 DE3740520A1 (de) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | Schnelles verfahren zur gewinnung einer faktor vii - praeparation sowie ihre verwendung |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19873740520 DE3740520A1 (de) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | Schnelles verfahren zur gewinnung einer faktor vii - praeparation sowie ihre verwendung |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3740520A1 true DE3740520A1 (de) | 1989-06-08 |
Family
ID=6341562
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19873740520 Withdrawn DE3740520A1 (de) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | Schnelles verfahren zur gewinnung einer faktor vii - praeparation sowie ihre verwendung |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE3740520A1 (de) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994005692A1 (en) * | 1992-08-27 | 1994-03-17 | Stichting Centraal Laboratorium Van De Bloedtransfusiedienst Van Het Nederlandse Rode Kruis | Antibodies specific for a haemostatic protein, their use for isolating intact protein, haemostatic compositions devoid of proteolytic cleavage products of the protein |
EP0765669A1 (de) * | 1995-08-28 | 1997-04-02 | Immuno Ag | Pharmazeutische Zusammensetzung zur Behandlung von Blutgerinnungsstörungen, Verfahren zur Herstellung derselben und deren Verwendung |
-
1987
- 1987-11-30 DE DE19873740520 patent/DE3740520A1/de not_active Withdrawn
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994005692A1 (en) * | 1992-08-27 | 1994-03-17 | Stichting Centraal Laboratorium Van De Bloedtransfusiedienst Van Het Nederlandse Rode Kruis | Antibodies specific for a haemostatic protein, their use for isolating intact protein, haemostatic compositions devoid of proteolytic cleavage products of the protein |
EP0765669A1 (de) * | 1995-08-28 | 1997-04-02 | Immuno Ag | Pharmazeutische Zusammensetzung zur Behandlung von Blutgerinnungsstörungen, Verfahren zur Herstellung derselben und deren Verwendung |
US5891843A (en) * | 1995-08-28 | 1999-04-06 | Immuno Aktiengesllschaft | Pharmaceutical composition for the treatment of blood coagulation diseases, methods for the production thereof and its use |
US6013620A (en) * | 1995-08-28 | 2000-01-11 | Baxter Aktiengesellschaft | Pharmaceutical composition for the treatment of blood coagulation diseases, methods for the production thereof and its use |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8122 | Nonbinding interest in granting licenses declared | ||
8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |