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Herstellung und Gewinnung eines neuen Antibiotikums Die vorliegende
Erfindung betrifft die Herstellung eines neuen Antibiotikums, das im folgenden mit
der Nr. 9671 R.P. bezeichnet wird. Dieses neue Produkt ist auf Grund seiner
beträchtlichen antibakteriellen Wirkung auf die grampositiven Keime, insbesondere
Staphylokokken und Streptokokken, von Interesse.
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Dieses neue Antibiotikum wird durch Züchtung eines im nachfolgenden
vollständiger identifizierten Mikroorganismus, der dem Genus Streptomyces angehört
und mit »Streptomyces 40037« oder »Streptomyces actuosus« bezeichnet wird, unter
künstlichen Bedingungen erzeugt. Der Stamm Streptomyces actuosus, der das Antibiotikum
Nr. 9671 R.P. erzeugt, ist beim Northern Regional Research Laboratory in
Peoria, Illinois, USA., unter der Nummer NRRL 2954 hinterlegt worden.
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Das kristallisierte 9671 R.P. ist in Chloroform, Dioxan, Pyridin,
Dimethylformamid und Dimethylsulfoxyd löslich und in Methanol, Äthanol, Essigsäureäthylester
und Benzol schwach löslich. In Wasser und Petroläther ist es unlöslich.
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9671 R.P. ergibt in folgenden Reaktionen negative Teste: Biuretreaktion,
Reaktion nach S a k a g u c h i, Ninhydrinreaktion, Reaktion
nach M i 11 o n, Reaktion nach F o 1 i n - D e n i s, Ferrichloridreaktion,
Reaktion nach M o 1 i s c h, Reaktion mit Fehlingscher Lösung, Reaktion nach
T o 11 e n s, Reaktion nach E h r 1 i c h, Ferrisalzreaktion
des Maltols, Reaktion nach Zimmermann. Nach Hydrolyse liefert es einen positiven
Test bei der Reaktion mit Ninhydrin, was zeigt, daß eine Polypeptidkette vorhanden
ist.
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Das Antibiotikum enthält Kohlenstoff, Wasserstoff, Sauerstoff, Stickstoff
und Schwefel. Seine Elementarzusammensetzung ist die folgende: C 49,60/0,
H = 4,0 0/,), 0 = 16,7 (/" N = 14,4 0/0, S 15,8 0/0.
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Das Antibiotikum besitzt die folgenden physikalischen Eigenschaften:
Aussehen Gelbes mikrokristallines Pulver (Nadeln) Schmelzpunkt
310 bis
320'C (Zersetzung im Block Maquenne) Drehvermögen
= + 38' (c
= 10/, in Pyridin) Ultraviolettspektrum (die Messung wurde mit einer IOVg/cm3
enthaltenden Lösung in Wasser mit einem Gehalt von
10/, Dimethylformamid
durchgeführt) Absorptionsmaximum bei 242 mp, Ell!
= 525
Absorptionsmaximum
bei
322 m[L Ell =
229
Infrarotspektrum (die Messung wurde an festen,
mit Kaliumbromid verpreßten Produkten vorgenommen) Dieses Spektrum ist in der Figur
wiedergegeben, in der als Abszisse einerseits die Wellenlängen in Mikron (unterer
Maßstab) und andererseits die Wellenzahlen in cm-' (oberer Maßstab) und als Ordinaten
die Transmissionen in
% aufgetragen sind-In der nachfolgenden Tabelle I sind
die Hauptbanden der Infrarotabsorption für dieses Produkt wiedergegeben.
Tabelle 1 |
3350 st 1342 m 1017 m |
3125 1308 m 990 sch |
2930 1235 m 940 sch |
1745 m 1210 m 918 m |
1655 s st 1168 m 890 |
1532 sst 1150 m 843 m |
1484 st 1112 822 sch |
1425 m 1101 m 790 m |
1385 sch 1061 m 752 st |
s st = sehr stark, |
st = stark, |
rn = mittel, |
sch = schwach. |
Das Antibiotikum
9671 R.P. kann durch die Papierchromatographie
identifiziert werden. Es wurde auf Papier Arches Nr.302, das mit einem m/15-Phosphatpuffer
von pH
7 imprägniert war, chromatographiert, wobei absteigend mit verschiedenen
Lösungsmitteln oder Lösungsmittelgemischen entwickelt wurde. Die Auswertung der
Chromatogramme erfolgte durch Bioautographie auf Nähragarplatten, die mit
S. aureusoder B. subtilis beimpft waren. Die erhaltenen Rf-Wertesind indernachfolgendenTabellellangegeben.
Tabelle 11 |
Entwicklungslösungsmittel (obere Schicht des Gemisches der
verschiedenen Bestandteile) Rf |
Benzol -# n-Butanol 4.- Wasser (95:5:25
Volumina) ........................................... 0,15 |
Essigsäureäthylester + Methylisobutylketon
--#- Wasser (20:80:25 Volumina) .................... 0,15 |
Essigsäureäthylester + Methylisobutylketon
+ Wasser (50:50:25 Volumina) .................... 0,30 |
Essigsäureäthylester + Benzol + Wasser (40:60:25
Volumina) ............................ 0,05 |
Cyclohexan #- n-Butanol + Wasser (80:20:25
Volumina) ...................................... 0 |
Mit Wasser gesättigter Essigsäureäthylester ...............................................
0,50 |
Die bakteriostatische Wirkung von
9671 R.P. gegenüber einer gewissen Zahl
von Keimen wurde durch eine der üblicherweise zu diesem Zweck angewendeten Verdünnungsmethoden
bestimmt. Für jeden Keim wurde die kleinste Konzentration an Substanz, die jegliche
sichtbare Entwicklung in einer geeigneten Nährbouillon verhindert, bestimmt. Die
Ergebnisse der verschiedenen Bestimmungen sind in nachfolgender Tabelle
111 zusammengestellt, in der die minimalen bakteriostatischen Konzentrationen
in Mikrogramm Substanz
je Kubikzentimeter Versuchsmedium ausgedrückt sind.
Tabelle 111 |
Minimale |
Geprüfter Mikroorganismus bakteriostatische |
Konzentration |
in #tgfcml |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P - ATCC 6538
P .............................. 0,0009 |
Staphylococcus aureus, Stamm 133 (Institut Pasteur)
................................ 0,0019 |
Staphylococcus aureus, Stamm B, (resistent gegen Streptomycin
und Penicillin) ...... 0,003 |
Staphylococcus aureus, Stamm Hb (resistent gegen Tetracyclin
und Penicillin) .......... 0,003 |
Staphylococcus aureus, Stamm Launoy 1 (resistent gegen
Tetracyclin, Streptomycin, |
Chloramphenicol und Penicillin) ...............................................
0,0038 |
Staphylococcus aureus, Stamm Launoy 2 (resistent gegen Tetracyclin,
Streptomycin und |
Penicillin) ...................................................................
0,0021 |
Staphylococcus aureus, Stamm Beaujon 3 (resistent gegen
Tetracyclin, Streptomycin, |
Chloramphenicol und Penicillin) ..................................
» ............ 0,003 |
Staphylococcus aureus, Stamm 2700 R (resistent gegen
Streptothriein) ................. 0,0025 |
Staphylococcus aureus, Stamm 1142 R (resistent gegen Congocidin)
................... 0,0005 |
Staphylococcus aureus, Stamm 3486 R (resistent gegen
Spiramycin) ................... 0,0009 |
Staphylococcus aureus, gegen Carbomycin resistenter Stamm
........................ 0,0005 |
Staphylococcus aureus, gegen Erythromycin resistenter Stamm
....................... 0,0033 |
Staphylococcus aureus, gegen Chloramphenicol resistenter Stamm
.................... 0,0012 |
Stapbylococcus aureus, gegen Novobiocin resistenter Stamm
......................... 0,001 |
Staphylococcus aureus, gegen Aclinomycin resistenter Stamm
........................ 0,0012 |
Mierococcus citreus - ATCC 8411 ...............................................
0,0038 |
Micrococcus lysodeikticus - ATCC 4698 .........................................
0,003 |
Gaffkya tetragena (Facult6 de Pharmacie) .........................................
0,0042 |
Sarcina lutea - ATCC 9341 .....................................................
0,0011 |
Sarcina alba (Facult# de Pharmacie) ..............................................
0,0019 |
Streptococcus faecalis (Enterococcus von Thiercelin Facult6
de Pharmacie) ............ 0,0106 |
Streptococcus faecalis - ATCC 9790 .............................................
0,0007 |
Streptococcus viridans (Institut Pasteur) ...........................................
0,0065 |
Streptococcus pyogenes haemolyticus (Stamm Dig. 7 Institut
Pasteur) ................. 0,00028 |
Diplococcus pneumoniae (Stamm Til, Institut Pasteur)
.............................. 0,00015 |
Neisseria catarrhalis (Facult6 de Pharmacie) .......................................
0,0017 |
Lactobaeillus casei - ATCC 7469 ................................................
0,0007 |
Bacillus subtilis - ATCC 6633 ..................................................
0,003 |
Bacillus subtilis (Stamm ZO 5 A, Facult6 de Pharmacie)
............................. 0,01 |
Bacillus subtilis (Stamm 3 R 9675, Merck)
- ATCC 9524 ........................... 0,13 |
Bacillus cereus - ATCC 6630 ...................................................
0,0071 |
Bacillus brevis - ATCC 2185 ...................................................
> 138 |
Tabelle Ill (Fortsetzung) |
Minimale |
Geprüfter Mikroorganismus bakteriostatische |
Konzentration |
in #tg/cml |
Bacillus mycoides ..............................................................
0,0043 |
Mycobacterium smegmatis - ATCC 607 ..........................................
> 138 |
Mycobacterium smegmatis - ATCC 607 NR (gegen Neomycin
resistenter Stamm) ..... 5,07 |
Mycobaeterium smegmatis - ATCC 607 SR (gegen Streptomycin
resistenter Stamm) ... > 138 |
Mycobacterium phlei (Bakteriologisches Institut von Lyon)
.......................... 0,17 |
Mycobacterium para-smegmatis (A 75 - Lausanne)
................................ 19,2 |
Escherichia coli - ATCC 9637 ..................................................
> 138 |
Shigella dysenteriae - Shiga L (Institut Pasteur)
................................... > 138 |
Salmonella typhimurium (Institut Pasteur) .........................................
138 |
Salmonella paratyphi A (Lacasse, Institut Pasteur)
................................... > 138 |
Salmonella schottmuelleri (paratyphi B) - (Fougenc,
Institut Pasteur) ...... ........ . . > 138 |
Bacillus lactis aerogenes (Facult6 de Pharmacie)
.................................... > 138 |
Aerobacter aerogenes - ATCC 8308 .............................................
> 138 |
Alcaligenes faecalis - ATCC 8740 .....................................
......... 0,0015 |
Proteus vulgaris (Facult6 de Pharmacie) ...........................................
> 138 |
Proteus X 19 ........................................................
i ....... . . > 138 |
Klebsiella pneumoniae - ATCC 10031 .......................
. ................... > 138 |
Serratia marceseens (A. 476, Lausanne) ..... > 138 |
Pseudomonas aeruginosa (Stamm Bass - Institut Pasteur)
................. > 138 |
Brucella bronchiseptica (CN 387 - Welcome Institute)
............................... 138 |
Pasteurella multocida (A. 125, Institut Pasteur)
........................... , ......... 0,0024 |
Insgesamt zeigen die Ergebnisse, daß das Antibiotikum
9671 R.P. seine antibakterielle
Wirkung insbesondere auf Bakterien ausübt, die die Färbung nach
G r am annehmen.
Außerdem ist das Antibiotikum
9671 R.P. bei Staphylokokkenstämmen wirksam,
die gegen eines oder mehrere der folgenden Antibiotika resistent sind: Penicillin,
Streptomycin, Tetracyclin, Chloramphenicol, Erythromycin, Novobiocin, Actinomycin,
Streptothricin, Congocidin, Spiramycin, Carbomycin.
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Das Antibiotikum 9671 R.P. besitzt keine Wirkung auf folgende
hefe- oder fadenförmige Pilze: Pestalozzia palmarum, Saccharomyces pastorianus,
Steinphylium radicinum, Aspergillus niger, Candida albicans, Botrytis cinerea, Fusarium
oxysporum, Penicillium chrysogenum.
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Außerdem wurde im Laboratorium gezeigt, daß das
9671 R.P. besonders
wirksam gegen Staphylokokkeninfektionen der Maus war, wenn es in situ verabreicht
wurde. Die Toxizität des Antibiotikums wurde hauptsächlich bei der Maus geprüft.
Die maximal vertragene Dosis,
d. h. die maximale Dosis, für welche bei den
Tieren kein Todesfall beobachtet wird (DLJ, wurde durch Verabreichung des Produkts
auf subcutanem, oralem und intraperitonealem Weg bestimmt.
Subcutan ..... DL,) über oder gleich 1 g/kg |
Oral ......... DL,) über oder gleich 2,5 g/kg |
Intraperitoneal DL, = 0,5 g/kg |
Wenig toxisch für die Maus und gut vertragen vom Kaninchen bei Anwendung auf die
Schleimhäute ist dieses Produkt ein Medikament der Wahl zur lokalen Behandlung von
Infektionen mit grampositiven Kokken beim Menschen wie auch beim Tier. Insbesondere
ist es sehr wirksam bei Euterentzündungen der Kuh. Der das neue Antibiotikum
9671 R.P. erzeugende Organismus gehört zum Genus Streptomyces und wird mit
dem Namen »Streptomyces 40
037« bezeichnet.
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Dieser Organismus wurde aus einer, in der Nähe
von Corrientes
in Argentinien entnommenen Erdprobe' isoliert. Die Isolierungsmethode ist die folgende:
Die entnommene Erdprobe wird in destilliertem sterilem Wasser suspendiert und die
Suspension dann auf verschiedene Konzentrationen verdünnt. Ein kleines Volumen jeder
Verdürmung wird auf die Oberfläche von Petrischalen aufgebracht, die ein Nährrnedium
nach E m e r s o n oder irgendein anderes geeignetes Medium enthalten. Nach
Inkubation von einigen Tagen bei 26'C werden die Kolonien der Mikroorganismen, die
man isolieren will, auf Schrägagar versetzt, um reichlichere Kulturen zu erhalten.
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In der Klassifizierung von »Bergey's manual of determinative Bacteriologyej
7. Auflage (1957), für den Genus Streptomyces findet man keine Beschreibung
einer Species, deren Züchtungscharakteristiken und biochemischen Eigenschaften mit
denjenigen des Streptomyces 40 037 überemistimmen. Dieser Organismus kann
daher als eine neue Species betrachtet werden, die den Namen »Streptomyces aetuosus«
auf Grund ihrer großen Wirksamkeit erhalten hat. Mikroskopische Morphologie Die
Kulturen auf Streifen im Medium nach B e n e t t zeigen, mikroskopisch untersucht,
die Bildung von verzweigten Mycelfäden sowie Sporenketten, die für den Genus Streptomyces
charakteristisch sind. Die Mycelfäden tragen sehr zahlreiche Sporenketten: Die Sporenfäden
sind gewunden und verschieden lang. Die Sporen sind oval, etwa 1 #t breit
und etwa 1,5 #t lang. Die Mycelfäden sind viel dünner als die Sporenfäden:
sie besitzen eine Breite von etwa 0,6 bis 0,8#L.
Allgemeine Eigenschaften Auf Medien, die »synthetische« genannt
werden, weist S. actuosus im allgemeinen ein ungefärbtes bis blaß orange
gefärbtes vegetatives Mycel auf und erzeugt kein lösliches Pigment oder schwach
ockerfarbige oder braune Pigmente. Auf Medien, die »organische« genannt werden,
bildet er ein vegetatives Mycel, dessen Färbung von gelbbraun bis dunkelbraun geht,
und mehr oder weniger intensiv braune lösliche Pigmente je nach dem Medium
und Alter der Kultur. Nicht auf allen diesen Medien erscheint ein Luftmycel. Wenn
es erzeugt wird, ist es stets zu Beginn seiner Entwicklung weiß und färbt sich dann
mittelgrau.
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Form der isolierten Kolonien Die Monosporenkulturen in Petrischalen
auf einem Medium nach B e n e t t zeigen an den Rändern nicht ausgefranste, runde
Kolonien: Die Kolonien sind ziemlich gewölbt und können eine zentrale Verdickung
aufweisen. Das vegetative Mycel bildet zahlreiche Falten in Richtung der Radien:
es ist blaßorangefarbig, ebenso wie seine Rückseite. Das Luftmycel erscheint ziemlich
bald; es ist zunächst weiß und ändert sich dann mit fortschreitender Entwicklung,
um mittelgrau zu werden, wenn es reif ist. Es bildet sich ein schwaches braunes
Pigment in dem Agar.
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Eigenschaften der Kulturen und biochemische Eigenschaften Die Züchtungseigenschaften
und die biochernischen Eigenschaften des Streptomyces actuosus wurden auf in üblicher
Weise für die Identifizierung der Stämme von Streptomyces verwendeten Agar-Nährmedien
und Nährbouillons untersucht. Die gemachten Beobachtungen sind in nachfolgender
TabelleIV angegeben. Sie beziehen sich auf Kulturen, die 27 Tage lang bei
26'C inkubiert wurden. Der größte Teil der verwendeten Züchtungsmedien wurde nach
den in *The Actinomycetes«, S. A. W a k s m a n, S. 193 bis
197,
Chronica Botanica Company, Waltham (Mass.), USA.,
1950,
beschriebenen Formulierungen hergestellt. In diesem Falle sind sie durch die in
»The Actinomycetes« gegebenen Zahlen bezeichnet.
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Die Kulturen wurden auf Schrägagar durchgeführt. Die Inkubation erfolgte
bei 26'C. Zu den Stoffen, die ein rasches und vollständiges Wachstum mit Bildung
von Luftmycel und Sporen innerhalb von 10 Tagen hervorrufen, gehören Glucose,
Maltose, Lactose, Saccharose, Stärke, Dextrin, Xylose, Rafflnose, Ribose, Inulin,
Fructose, Mannose, Arabinose, Rhanmose, Galactose, Mannit, Inosit, Mesoinosit, Glycerin,
Natriumacetat, Natriumcitrat, Bernsteinsäure.
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Sorbose, Sorbit, Erythrit, Adonit und Dulcit ermöglichen keine Entwicklung
oder führen nur zu einer außerordentlich beschränkten Entwicklunng. Man kann daher
sagen, daß diese Stoffe nicht verwendbar sind.
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Vergleich von
S. actuosus mit zwei in »Bergeys Manual of deterrninative
Baeteriology« beschriebenen Streptomycesstämmen Diese beiden Stämme, Streptomyces
fasciculus (ursprünglich von Krassilnikov beschrieben) und Streptomyces carnosus
(von M i
11 a r
d und B u r r beschrieben), sind diejenigen, die am
meisten mit dem das Antibiotikum
9671 R.P. erzeugenden, Streptomyces actuosus
genannten Stamm übereinstimmen. Die Unterschiede in den Züchtungseigenschaftenund
den biochemischen Eigenschaften sind in Tabelle V angegeben.
Tabelle V |
S. fasciculus S. eamosus S.actuosus |
Sporenfäden gerade gewunden |
Form der Sporen länglich zylindrisch oval |
Synthetischer Agar vegetatives Mycel blaß- ungefärbtes vegetatives |
mit Saccha- rauchgrau - ungefärb- Mycel: kein Exsudat |
rose (1) tes Exsudat über die |
gesamte Oberfläche in |
Tröpfchen |
Synthetischer Agar vegetatives Mycel ungefärbtes vegetatives |
mit Glucose (C) blaßgrauoliv Mycel |
Nähragar (5) Luftmycel wenig ent- kein Luftmycel |
wickelt, grau |
Gelatine (F) mittlere Verflüssigung rasche Verflüssigung langsame
und unvollstän- |
dige Verflüssigung |
Milch (K) Koagulation, rasche Koagulation, anschließend keine
Koagulation, |
Peptonisation Verflüssigung langsame Peptonisation |
Stärke (19) rasche Hydrolyse Hydrolyse langsame unvollständige |
Hydrolyse (im Dextrin- |
stadium aufgehört) |
Nitrat (H) schwache Reduktion zu Reduktion gute Reduktion |
Nitrit |
Das Herstellungsverfahren des Antibiotikums
9671
R.P. besteht
im wesentlichen darin, den Streptomyces 40037 auf einem geeigneten Medium und unter
geeigneten Bedingungen zu züchten und anschließend das im Verlaufe der Züchtung
gebildete Antibiotikum abzutrennen.
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Die Züchtung des Streptomyces 40037 kann nach jeder aeroben Oberflächenzüchtung
oder Immersionszüchtung erfolgen, doch ist letztere aus Gründen der Bequemlichkeit
zu bevorzugen. Man verwendet zu diesem Zweck die verschiedenen Apparaturtypen, die
jetzt üblicherweise in der Technik der Fermentationen verwendet werden.
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Insbesondere kann man den folgenden Weg für die Durchführung der Arbeitsgänge
einschlagen:
Streptomyces 40037 - Stammansatz |
Kultur auf Agar |
Kultur im Kolben unter Bewegung |
Impfkultur im Fermentationsgefäß |
Produktionskultur im Fermentationsgefäß |
Das Fermentationsmedium soll eine assimilierbare Kohlenstoffquelle, eine assimilierbare
Stickstoffquelle und Mineralsalze und gegebenenfalls Wachstumsfaktoren enthalten,
wobei alle diese Elemente in Form von gut definierten Produkten oder von komplexen
Gemischen, wie man sie in biologischen Produkten verschiedenen Ursprungs antrifft,
zugeführt werden können.
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Als assimilierbare Kohlenstoffquelle kann man Kohlehydrate, wie beispielsweise
Glucose, Saccharose, Lactose, Dextrine, Stärke, Melasse, oder andere Kohlehydratderivate,
wie beispielsweise Zuckeralkohole, wie Glycerin, Mannit u. dgl., oder gewisse organische
Säuren, wie Milchsäure, Citronensäure, Weinsäure u. dgl., verwenden. Gewisse tierische
oder pflanzliche Öle, wie beispielsweise Schmalzöl oder Sojaöl, können mit Vorteil
diese verschiedenen Kohlehydratquellen ersetzen oder ihnen beigefügt werden.
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Die geeigneten assimflierbaren Stickstoffquellen sind außerordentlich
verschieden. Sie können sehr einfache chemische Substanzen sein, wie beispielsweise
Nitrate, anorganische und organische Ammoniumsalze, Harnstoff und Aminosäuren. Sie
können auch in Form von komplexen Substanzen, die den Stickstoff hauptsächlich in
proteidischer Form enthalten, zugeführt werden, wie beispielsweise in Form von Casein,
Lactalbumin, Gluten und deren Hydrolysaten, Sojamehlen, Arachismehlen, Fischmehlen,
Fleischextrakten, Hefeextrakten, Distillers Solubles und Maisquellwasser.
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Unter den zugefügten mineralischen Elementen können gewisse eine Pufferwirkung
oder eine neutralisierende Wirkung besitzen, wie beispielsweise die Alkali- oder
Erdalkaliphosphate oder Calcium- oder Magnesiumcarbonat.
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Andere bewirken das zur Entwicklung des Streptoinyces 40037 und zur
Erzeugung des Antibiotikums erforderliche Ionengleichgewicht, wie beispielsweise
die Alkali- und Erdalkalichloride und -sulfate. Schließlich wirken gewisse in speziellerer
Art als Aktivatoren der Stoffwechselreaktionen des Streptomyces 40037: Zu diesen
gehören die Zink-, Cobalt-, Eisen-, Kupferi und Mangansalze.
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Zu Beginn der Züchtung soll der pH-Wert des Fermentationsmediums zwischen
6,0 und 7-5 liegen. Die zur Züchtung optimale Temperatur be#igt,26
bis 27'C, doch wird auch bei Temperaturen zwischen 23
und 35'C eine befriedigende
Produktion erzielt. Die Belüftung der Züchtung kann zwischen ziemlich weiten Grenzwerten
schwanken. Es wurde jedoch gefunden, daß Belüftungen von 0,5 bis 2
1 Luft je Liter Kulturflüssigkeit und Minute besonders gut geeignet sind.
Die maximale Ausbeute an Antibiotikum wird nach 3 bis 5 Tagen Züchtung
erhalten, wobei diese Zeitspanne hauptsächlich von dem verwendeten Medium abhängt.
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Aus den vorstehenden Ausführungen ist ersichtlich, daß die zur Produktion
des Antibiotikums angewendeten allgemeinen Bedingungen der. Züchtung des Streptomyces
40037 in ziemlich weitem Maße variieren können und jedem besonderen Erfordernis
angepaßt werden können.
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Das Antibiotikum 9671 R.P. kann aus den Kulturmedien nach verschiedenen
Methoden isoliert werden. Das Kulturmedium kann bei einem pH-Wert zwischen
6 und 9 filtriert werden, doch bleibt in diesem Falle ein beträchtlicher
Teil der Aktivität in dem Filterkuchen, der zur Extraktion des Wirkstoffes ebenfalls
behandelt werden muß. Es ist daher zu bevorzugen, die Filtration in einem pH-Intervall
zwischen 1 und 6
durchzuführen. Unter diesen Bedingungen verbleibt
die Aktivität in dem Filterkuchen, aus dem sie mit einem Lösungsmittel aus der Gruppe
der aliphatischen Alkohole, wie beispielsweise Methanol, Äthanol, Propanole oder
Butanole, aus der Gruppe der Ketone, wie beispielsweise Aceton oder Methyhsobutylketon,
oder aus der Gruppe der Ester, wie beispielsweise Essigsäureäthylester, extrahiert
werden kann. Man kann das Fermentationsmedium auch mit einem mit Wasser nicht mischbaren
organischen Lösungsmittel aus der Gruppe der aliphatischen Alkohole mit 4 oder
5 Kohlenstoffatomen, der Ketone oder der Ester extrahieren. In diesem Falle
geht die Aktivität in die organische Phase, die von der wäßrigen Phase durch Filtrieren
oder Zentrifugieren abgetrennt wird.
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Das Rohprodukt kann aus den obengenannten organischen Lösungen durch
Einengen der organischen Lösung auf ein geringes Volumen isoliert werden. Durch
Abkühlen oder durch Zugabe eines Mittels, daß das Antibiotikum 9671 R.P.
schlecht löst, wie beispielsweise Petroläther oder Cyclohexan fällt das rohe Antibiotikum
aus. Wenn sich das Antibiotikum in dem Filtrat der Züchtungsmedien befindet, so
extrahiert man diese Lösung mit einem mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmittel,
wie beispielsweise einem aliphatischen Alkohol mit 4 bis 5 Kohlenstoffatomen,
einem Keton, wie beispielsweise Methylisobutylketon, einem Ester, wie beispielsweise
Essigsäureäthylester oder Essigsäureamylester, oder einem chlorhaltigen Lösungsmittel,
wie beispielsweise Chloroform oder Dichloräthan. Man verfährt dann wie oben angegeben:
Einengen auf ein geringes Volumen und Ausfällen.
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Das Antibiotikum 9671 R. P. kann dann durch Auflösung des so
erhaltenen Niederschlags in Essigsäure unter schwachem Erwärm= und durch Abkühlen
kristallisiert werden. Falls das Roliprodukt zu unrein ist, um direkt kristallisiert
zu werden, oder falls man
wünscht, ein sehr reines Produkt zu erhalten,
unterwirft man vorteilhafterweise das rohe Antibiotikum einer doppelten Reinigung.
Die erste Reinigung besteht darin, das rohe Antibiotikum mit einem organischen Lösungsmittel,
in dem es wenig oder nicht löslich ist, beispielsweise Methanol, Äthanol, Benzol
oder Petroläther zu waschen, zu filtrieren und zu trocknen. Die zweite Reinigung
besteht darin, das durch das oben beschriebene Waschen bereits teilweise gereinigte
Antibiotikum einer Chromatographie zu unterziehen. Diese kann unter Verwendung einer
Aluminiumoxydsäule durchgeführt werden, auf die man eine Lösung des Produkts in
einem geeigneten Lösungsmittel führt. Als Lösungsmittel kann man beispielsweise
ein chlorhaltiges Lösungsmittel, wie Chloroform oder Dichloräthan, oder ein Gemisch
eines dieser chlorhaltigen Lösungsmittel mit einem Lösungsmittel, in dem das Antibiotikum
wenig löslich ist, wie beispielsweise Methanoi oder Äthanol, verwenden. Das Produkt
wird mit dem gleichen Lösungsmittel eluiert. Das Eluat wird eingeengt, und das Antibiotikum
wird durch Zugabe eines wie oben angegebenen Mittels, das es schlecht löst, ausgefällt.
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Die so gereinigten Produkte werden unter schwachem Erwärmen in Eisessig
oder wäßriger Essigsäure gelöst. Nach Filtrieren der Lösung und Zugabe von Wasser
wird die Kristallisation durch Abkühlen unter langsamer Bewegung bewirkt.
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Es ist ersichtlich, daß die verschiedenen angegebenen Methoden nacheinander
in verschiedener Reihenfolge angewendet oder mehrere Male wiederholt werden können
je nach den Fabrikationserfordernissen, um das Antibiotikum 9671 R.P. in
einer für die vorgesehenen Anwendungszwecke geeigneten Form zu erhalten.
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Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung. Im folgenden wird
die Aktivität stets nach einer Trübungsmethode mit Staphylococcus aureus
209 P als empfindlichem Keim und bezogen auf eine Probe des reinen und kristallisierten
Produkts als Eichmaß bestimmt. Diese Aktivität ist daher in Mikrogrammen (lig) kristallisiertes
Produkt
je Milligramm für feste Produkte und in #tg kristallisiertes Produkt
je Kubikzentimeter für Lösungen ausgedrückt. Beispiel
1
In ein Fermentationsgefäß
mit
751 Inhalt britigt man folgendes Medium ein:
MaisqueRwasser |
(50 11/0 Trockenextrakt) .......... 800 g |
Saecharose ...................... 1200 g |
Ammoniumsulfat ................. 80 g |
Leitungswasser .................. 351 |
Man stellt den pH-Wert durch Zugabe von 20 em3 Natronlauge
(d = 1,33)
auf etwa
5,2 ein. Dann gibt man
300 g Calciumcarbonat zu.
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Das Medium wird durch 40minutiges Durchleiten von Dampf bei 122'C
sterilisiert. Nach Sterilisation und Abkühlen auf 27'C beträgt das Endvolumen des
Mediums 401 und der pH-Wert 7,15. Das Medium wird dann mit 250 cm3
einer gerührten bzw. geschüttelten Erlenmeyerkultur des Stamms Streptomyces 40037
beimpft.
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Die Kultur im Ferinentationsgefäß wird mit 3 m3 steriler Luft
je Stunde belüftet und mit einem Propeller mit 400 UpM in Bewegung gehalten. Die
Temperatur wird bei 27'C gehalten. Der pH-Wert des Mediums bleibt 4 Stunden auf
seinem Ausgangswert (7,15) und fällt dann langsam ab, um 6,85 zu erreichen.
Die Entwicklung des Pilzes entspricht diesem niedrigen pH-Wert und ist
28 Stunden nach der Beimpfung geeignet für die Beimpfung der Produktionskultur.
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Die Produktionskaltur wird in einem Fermentationsgefäß von
350 1 Inhalt durchgeführt, das mit folgenden Substanzen beschickt ist:
Sojamehl ........................ 8 kg |
Distillers Solubles ................ 1 kg |
Glucose (hydratisiert) ............ 1 kg |
Sojaöl .......................... 41 |
Caleiumcarbonat ................ 2 kg |
Natriumchlorid .................. 2 kg |
Wasser .......................... 1751 |
Der pH-Wert des Mediums beträgt vor der Sterilisation
6,95. Das Medium wird
durch 40minutiges Durchleiten von Dampf bei 122'C sterilisiert. Nach Sterilisieren
und Abkühlen auf 27'C beträgt das Endvolumen des Mediums 2001 und der pH-Wert
7,20.
Das Medium wird dann mit 20
1 der obigen Kultur aus dem Fermentationsgefäß
von
75 1 Inhalt beimpft. Das Medium wird durch eine Turbine mit
205 UpM gerührt, mit
10 m3 steriler Luft
je Stunde belüftet
und auf 27'C gehalten.
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Der pH-Wert fällt während 24 Stunden langsam ab, wonach er wieder
ansteigt. Mit diesem Wiederanstieg des pH-Werts beginnt die Produktion des Antibiotikums.
Das Ende der Fermentation ist nicht durch eine Unterbrechung in der Kurve der Entwicklung
des pH-Werts markiert. Es tritt nach etwa 90 Stunden ein. Die Aktivität des
Mediums beträgt dann 295 #Lg/cm3.
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190 1 der wie oben hergestellten Gärmaische mit einem Gehalt
von 295 #tg/cm3 werden in ein mit einer Rühr- bzw. Schüttelvorrichtung versehenes
Gefäß eingebracht. Die Maische wird 1 Stunde mit 110 1
Butanol in Bewegung
gehalten, wobei der pH-Wert mit verdünnter Salzsäure auf 5 eingestellt wird.
Dann werden 19 kg Filterhilfe zugegeben. Das Gemisch wird auf einer Filterpresse
filtriert und der Kuchen mit 50 1 Wasser gewaschen. Die organische Phase
wird abgetrennt und mit 11 1 Wasser von pH 9 und dann mit
11 1 Wasser von pH 5 gewaschen. Man trennt erneut die organische Schicht
ab und engt sie unter vermindertem Druck auf ein Hundertstel des ursprünglichen
Volumens der Maische, d. h. auf 1,9 1 ein. Nach 24stündigem Stehenlassen
in einem Kälteraum wird der erhaltene Niederschlag abgesaugt, gewaschen und getrocknet.
Man erhält 88 g Rohprodukt mit einer Aktivität von 434 #tg/ing.
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Beispiel 2 70 g des gemäß Beispiel 1 erhaltenen Produkts
mit einer Aktivität von 434 #tg/nig werden in 1400 cm3 Methanol suspendiert und
1 Stunde bei 30'C gerührt bzw. geschüttelt. Das unlösliche Material
wird abgesaugt und getrocknet. Man erhält 29 g eines Produkts mit einer Aktivität
von 825 ligl/mg.
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Dieses Produkt wird in 750 cm3 eines Chloroform-Methanol-Gemisches
(90: 10 Volumina) gelöst. Die Lösung wird filtriert und dann an einer Säule,
die 600 g Aluminiumoxyd enthält (Höhe der Säule 61 cm, Durchmesser
3,5 cm) chromatographiert. Das Chromatogramm wird entwickelt und mit
1500 CM3 des gleichen Chloroform-Methanol-Gemisches eluiert.
Die
reichen Fraktionen werden vereinigt, unter vermindertem Druck auf 40 cm" eingeengt
und mit 400 cm3 Hexan gefällt. Der Niederschlag wird abgesaugt, gewaschen und getrocknet.
Man erhält 23 g
Produkt mit einer Aktivität von 950 #tg/mg.
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Eine Suspension von 10 g des zuletzt genannten Produkts
(950 #tg/mg) in 200 cm3 Eisessig wird 5 Minuten auf 50'C erhitzt.
Die Lösung wird filtriert, mit 2,5 cm3 Wasser versetzt und langsam abgekühlt.
Die erhaltenen Kristalle werden abgesaugt, gewaschen und getrocknet. Man erhält
8 g reines Produkt mit einer Aktivität von 1000 #tg/mg.
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Beispiel 3
1701 Fermentationsmaische mit einer Aktivität
von 166 pg/cm3 werden in ein mit einer Rühr- bzw. Schüttelvorrichtung ausgestattetes
Gefäß eingebracht. Der pH-Wert wird mit verdünnter Schwefelsäure auf 5
eingestellt.
Es werden 95 1 Essigsäureäthylester zugesetzt, und das Gemisch wird
1 Stunde in Bewegung gehalten. Die organische Phase wird auf einer Zentrifuge
abzentrifugiert, die sich zur Abtrennung eines organischen Lösungsmittels von einer
wäßrigen Suspension unlöslicher Materialien eignet (Westphalia SKOG 205).
Man gewinnt 821 organische Lösung, die gewaschen und dann unter vermindertem
Druck auf 1,71 eingeengt wird. Nach Behandlung, wie im Beispiel 2 beschrieben,
erhält man 61 g Produkt mit einer Aktivität von 320 #tg/mg.
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35 g dieses Produkts werden in 700 cm3 Methanol suspendiert
und 1 Stunde bei 30'C in Bewegung gehalten. Der Niederschlag wird
abgesaugt und getrocknet. Man erhält 11,1 g Produkt mit einer Aktivität von
725 #tg/mg.
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Durch Auflösen von 10 g dieses Produkts in 200 cm3 Eisessig
und Behandlung, wie im Beispiel 2 angegeben, erhält man 6,3 g kristalEsiertes
Produkt mit einer Aktivität von 925 #tg/mg.