[go: up one dir, main page]

CZ300539B6 - Fermentor pracující s pevnou fází a zpusob fermentace v pevné fázi - Google Patents

Fermentor pracující s pevnou fází a zpusob fermentace v pevné fázi Download PDF

Info

Publication number
CZ300539B6
CZ300539B6 CZ20003988A CZ20003988A CZ300539B6 CZ 300539 B6 CZ300539 B6 CZ 300539B6 CZ 20003988 A CZ20003988 A CZ 20003988A CZ 20003988 A CZ20003988 A CZ 20003988A CZ 300539 B6 CZ300539 B6 CZ 300539B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
fermenter
culture substrate
water
tray
substrate
Prior art date
Application number
CZ20003988A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ20003988A3 (cs
Inventor
Lüth@Peter
Eiben@Ute
Original Assignee
Prophyta Biologischer Pflanzenschutz Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Prophyta Biologischer Pflanzenschutz Gmbh filed Critical Prophyta Biologischer Pflanzenschutz Gmbh
Publication of CZ20003988A3 publication Critical patent/CZ20003988A3/cs
Publication of CZ300539B6 publication Critical patent/CZ300539B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/12Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of temperature
    • C12M41/18Heat exchange systems, e.g. heat jackets or outer envelopes
    • C12M41/24Heat exchange systems, e.g. heat jackets or outer envelopes inside the vessel
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/16Solid state fermenters, e.g. for koji production
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/24Gas permeable parts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34Internal compartments or partitions
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/813Continuous fermentation
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/819Fermentation vessels in series

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Thermal Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Processing Of Solid Wastes (AREA)
  • Fertilizers (AREA)
  • Mushroom Cultivation (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Rešení se týká fermentoru pracujícího s pevnou fází, zejména pro velká množství, jakož i zpusobu fermentace pevné fáze. Úkol rešení spocívá ve vyvinutí fermentoru, pracujícím s pevnou fází pro velké objemy a v príprave zpusobu fermentace, který dovoluje hospodárné využití fermentace mikroorganismu v pevné fázi se slabou konkurencí ve velkých fermentorech. Fermentor pracující s pevnou fází se vyznacuje tím, že predstavuje etážový fermentor, pricemž jsou nad sebou usporádána alespon dve prodyšná a pro vodu propustná etážová dna (4), která jsou spojena se stenami nádoby tak, že ani vzduch ani voda nemuže bocne proudit kolem nich, na etážových dnech (4) se nachází kultivacní substrát (5) pro organismy urcené ke kultivaci, pod každým etážovým dnem (4) je umísteno chladicí zarízení (6), a fermentor je uzavren poklopem (1).

Description

Fermentor pracující s pevnou fází a způsob fermentace v pevné fázi
Oblast techniky
Vynález se týká fermentoru pracujícího s pevnou fází, zejména pro velké objemy, jakož i způsobu fermentace v pevné fázi.
Dosavadní stav techniky
Hloubková fermentace nebo fermentace pracující s pevnou fází slouží k hromadné kultivaci mikroorganismů s cílem získat buď mikroorganismy samotné, nebo produkty látkové výměny, nebo mikrobiologicky obměněný substrát, kupříkladu pro potřeby potravinářského průmyslu. Zatímco se dnes již stavějí hloubkové fermentory, (tj. fermentory s kapalným živným substrátem), o kapacitě až 200 000 litrů, ještě se nepodařilo zkonstruovat „solid-state fermentor“, (tj. fermentor s tuhým živným substrátem), s hospodárně relevantními objemy, které by po delší čas kontaminací mohly být udržovány bez cizích mikroorganismů a současně umožňovaly optimální vedení kultury mikroorganismů. Určité filamentové houby však potřebují povrchové struktury, na kterých se mohou vyvíjet a vytvářet spory. Největší fermentor k produkci filamentových hub, s kapacitou 50 litrů, při zabránění jakékoliv cizí kontaminace, stojí v INRA ve Francii (Durand 1997, ústní sdělení). Kapacita tohoto fermentoru však není zdaleka postačující k tomu, aby hospodárně vytvářela produkci houbových spor, které se mohou kupříkladu použít jako biologický ochranný prostředek pro rostliny.
Fermentace v pevné fázi „solid-state fermentation“, (SSF), je definována jako růst mikroorganismů — obvykle hub - na pevných substrátech v definované plynné fázi, avšak bez volné vodní fáze. SSF se používala v určitých oblastech Orientu, Asie a Afriky již v antických dobách k výrobě kvašené stravy, enzymatických produktů (Kóji) nebo jedlých hub. V západních zemích se již od roku 1940 koncentroval zájem na zaplavovací fermentací; SSF se naproti tomu používala pouze ke zpracování organických odpadů. Na základě určitých předností oproti hloubkové fermentací však mnohé instituce a podniky projevují nově zájem o SSF. Její přednosti oproti hloubkové fermentací jsou následující:
- možnost efektivní produkce sekundárních metabolitu jako jsou enzymy, aromatické látky, vonné a barvicí látky, jakož i farmaceutické účinné látky
- možnost výroby mikroorganismů jako biologických činidel v ochranných prostředcích pro rostliny
- odstranění toxínů nebo jiných škodlivých substancí z potravin a krmiv, popřípadě jejich obohacení proteiny nebo vitaminy.
Rozlišuje se zásadně šest typů fermentorů pracujících s pevnou fází - „solid-state fermentorů“:
1. Misko vitý bioreaktor - „Tray Bioreactor“
2. Bioreaktor s náplňovou vrstvou - „Packed Bed Bioreactor“
3. Rotačně válcovitý bioreaktor - „Rotary Drum Bioreactor“
4. Bioreaktor s natřásanou pevnou fází - „Swing-Solid-State Bioreactor“
5. Míchaný vanovitý bioreaktor - „Stirred Vessel Bioreactor“
6. Bioreaktor s fluidním ložem vzduch-pevná fáze - „Air-Solid Fluid ized-Bed Bioreactor“
První typ - miskovitý bioreaktor, u kterého se substrát, určený k fermentací, plošně zpracovává jen ktomu účelu v rozprostírající se nádrži, a inkubuje se ve speciálním k tomu účelu klimatizovaném prostoru („Kojí“ - prostor, Raman Murthy, Μ. V.; Karanth, N. G.; Raghava Rao, K. S. M. S.: Advance in Applied Microbiology 38 (1993), 99 - 147), je sice pro výrobu větších množství produktu vhodný, u tohoto způsobu se ale musí nepatrná kontaminace cizími zárodky zanedbat.
- 1 CZ 300539 B6
Navíc jsou reaktor a příslušný způsob velmi nákladné na místo a práci. Dále se musí se substrátem, určeným k ferrnentaei v nádržích ručně pohybovat. Pro výrobu větších množství houbových spor druhů se slabou konkurencí není vhodný.
U bioreaktoru s náplňovou vrstvou se vlhký granulovaný substrát, který se nachází v uzavřené nádrži, očkuje mikroorganismem, který se, aniž by se substrát pohyboval, v ní vyvíjí. Ktomu účelu musí být substrát stále profukován proudem vzduchu. Vznikají následující problémy, které nepřipouštějí použít velká množství substrátu.
1. Mikroorganismus produkuje teplo (300 kJ na kg suché hmoty a na hodinu, Saucedo-Castaneda, G.; Gutierrez-Rojas, M.; Bacquet, G.; Raimbault, M.; Viniegra-Gonzales, G.: Biotechnologie and Bioengeniering 35 (1990), 802- 808), které může být odváděno buď skrz vnější stěnu nádrže, nebo pomocí zvýšeného proudění vzduchu (teplo odebírané vypařující se látkou). U nádrží s velkými objemy není toto možné. Mikroorganismy zpomalují s přibývajícím vývojem tepla svůj růst a nakonec odumírají.
2. Stálým provětráváním substrát vysychá. Tím podmíněný „únik“ způsobuje vzduchové kanály, jejichž existence již nezaručuje rovnoměrné provětrávání substrátu. Pozvolné vysychání substrátu kromě toho vede ke zhoršenému růstu mikroorganismu.
Rotačně válcovitý bioreaktor sestává z válcovité nádrže, která je uspořádána vodorovně a otočně uložena. Nádrž je nejvýše až do třetiny svého objemu naplněna granulovaným kultivačním substrátem, na kterém roste mikroorganismus. Teplo vznikající růstem mikroorganismu může být v široké míře odváděno přes částečně chlazený plášť nádrže. To se uskutečňuje při pomalém otáčení válce, což vede k tomu, že substrát vždy znova a znova přichází do kontaktu s pláštěm a jeho teplo může být odváděno na něj. Tento způsob má ale tu nevýhodu, že uvnitř pohybujícího se substrátu působí střihové síly, které vedou zejména k ničení vyvíjejících se houbových struktur, (jako jsou mycelium, nosič spor, plodnice). U mnohých hub tím není tak cíl kupříkladu vysoké výtěžnosti spor dosažitelný. Problém vysychání je u tohoto typu fermentoru v široké míře řešen tak, jelikož odpařování vody ze substrátu není nutné (teplo odebírané vypařující se látkou není potřebné), od větrá vání může být prováděno vlhkým vzduchem. Kromě toho by bylo zvlhčování substrátu, ve kterém je zajištěno dobré rozdělování volné vody pohybem, realizovatelné také pomocí rozprašovacích trysek. U velkých množství kultivačního substrátu dochází ovšem u tohoto typu fermentoru k dalším problémům:
1. Konstrukce velkých fermentorů je velmi nákladná.
2. Plynulým pohybem fermentoru může dojít ke zhrudkovatění vlhkého substrátu.
3. Směrem ven jsou potřebná rozhraní, (například přívod a odvod vzduchu, přívod vody), která se vlivem rotace fermentoru mohou snadno stát zdroji cizí kontaminace.
Podobným fermentorem jako je rotačně válcovitý bioreaktor, je bioreaktor s natřásanou pevnou fází, jenže zde není míchání substrátu zapříčiněno rotujícím pohybem, nýbrž natřásacím pohybem. Jinak zde platí stejné, již výše zmíněné výhody a nevýhody. Omezení objemu tohoto fermentoru je však dodatečně ještě dáno tím, že konstrukce komplikovaného natřásacího mechanismu by sotva mohla připustit hmotnost naplněné nádrže přes 100 kg.
Míchaný vanovitý bioreaktor si můžeme představit jako uzavřenou káď, ve kterém se pohybuje míchadlo. U tohoto typu reaktoru jsou problémy při použití velkých množství substrátu již předznamenány, protože ta se již nemohou ohybovat rovnoměrně, aniž by nedocházelo k ničení ve struktuře substrátu.
V bioreaktoru s fluidním ložem vzduch-pevná fáze se kultivační substrát pro mikroorganismy uchovává nepřetržitě ve fluidním loži, k čemu je potřebný poměrně velký objem prostoru reaktoru. Vzduch požadovaný k zachování fluidního lože se vede v okruhu. Ve vzduchu musí být přesně udržován určitý obsah vlhkosti. K udržení fluidního lože vyžaduje tento způsob velmi mnoho energie. V již probíhajícím AiF projektu (Bahr, d.; Menner, M.: BlOforum 18 (1995), 16-21) mohlo být sice ukázáno, že kultivace kvasnicových buněk ve fluidním loži je možná.
-2 CZ 300539 B6
Toho však bylo dosaženo jen v relativně malém měřítku a při srovnání se hloubkovou fermentací jen s relativně malou výtěžností. Vícetýdenní kultivace filamentových hub na velkém množství granulovaného kultivačního substrátu (přes 100 kg na vsázku) je s touto technologií možná jen s úctyhodně vysokými náklady.
Další fermentory podle stavu techniky jsou příliš malé na to, aby se s nimi získalo hospodárně rentabilní množství houbových spor, (viz dokumenty EP-A1 0 683 815 a FR 85.08555), nebo není při postačující kapacitě fermentoru možné po delší časový úsek vyloučit kontaminaci kultivačního substrátu cizími zárodky, (viz dokument DE 4406632 Cl).
Úkol vynálezu spočíval proto v tom, vyvinout SSF fermentor pro velká množství a připravit způsob fermentace pevné fáze, který umožní hospodárné využití SSF mikroorganismy se slabou konkurencí ve velkých fermentorech.
Přitom má být
1. zabráněno cizí kontaminaci fermentoru, (tj, zachování sterilních podmínek během celého procesu fermentace),
2. odváděno teplo vznikající houbovitou látkovou výměnou, aniž by docházelo k vysychání substrátu (zvýšeným průsakem vzduchu a využitím tepla odebíraného vypařující se látkou),
3. zabráněno vzniku střihových sil ve fermentoru (vlivem neexistence pohybu kultivačního substrátu), a
4. garantováno rovnoměrné odvětrávání při současném zabránění vysychání, a regulace pres teplotu substrátu.
Podstata vynálezu
Vynález se realizuje podle nároků. Úkol byl podle vynálezu řešen pomocí etážového fermentoru, který má kapacitu alespoň 50 litrů, výhodně 500 litrů až 1000 litrů, ale umožňuje i větší kapacity. Celková konstrukce sestává z válcovité nebo oválné nádoby, (obr. 1), která může být nahoře uzavřena poklopem 1, který je podle vynálezu opatřen popřípadě odvodem 2 vzduchu, jakož i otvorem 3 k naočkování fermentoru.
V nádobě, která je zkonstruována jako vzduchotěsný a vodotěsný obal, se nacházejí nad sebou uspořádaná prodyšná a pro vodu propustná etážová dna 4, která slouží k zachycení kultivačního substrátu 5 pro mikroorganismy určené ke kultivaci.
Kultivační substrát sestává podle příslušného požadavku na výživné látky mikroorganismu určeného ke kultivaci z různých materiálů. Aby se zajistila postačující propustnost vzduchu, má tento materiál výhodně granulovanou strukturu. Může kupříkladu sestávat z obilí, sbalků z otrub nebo z jiných organických odpadních produktů, odpadů ze zpracování cukru nebo granulátů napuštěných živným roztokem.
Počet pater je závislý na nárocích příslušné kultury mikroorganismu určeného ke kultivaci, jakož i na manipulovatelnosti s celým fermentorem. Při více patrech by mohlo být zásobování kyslíkem, potřebné pro růst mikroorganismů, (víz dále), v horních vrstvách kultivačního substrátu narušeno. Velmi mnoho pater také zhoršuje manipulovatelnost s fermentorem. Podle vynálezu může být ve fermentoru umístěno dvacet nebo více pater.
Etážová dna jsou spojena se stěnami nádoby takovým způsobem, že ani vzduch ani voda nemohou kolem nich proudit z boku. Vzdálenost etážových den od sebe je závislá na optimální tloušťce vrstvy kultivačního substrátu, která je zase určována nároky mikroorganismu určeného ke kultivaci.
-3CZ 300539 B6
Pod etážovými dny se nacházejí chladicí zařízení 6, která mohou být zkonstruována jako chladicí spirály nebo chladicí desky. S jejich pomocí se odvádí reakční teplo z kultivačního substrátu. V jedné z výhodných variant mohou, když se vychází od každého chladicího zařízení, mohou čnít plechy z kovu s vysokou tepelnou vodivostí skrz příslušná etážová dna dovnitř do kultivačního substrátu, (viz obr. 2). Tím se usnadní odvádění reakčního tepla. K odebrání kultivačního substrátu po dokončení procesu fermentace se chladicí zařízení i spolu s chladicími plechy odtáhne směrem dolů od etážových den. Potom se může kultivační substrát, porostlý mikroorganismy, odebrat, aniž by přitom chladicí plechy překážely.
Chladicí zařízení mohou být také uspořádána v určité vzdálenosti nad etážovými dny. V tomto případě by se měla instalovat tak, aby probíhala uprostřed vrstvy s kultivačním substrátem. Uložení chladicích zařízení ve vrstvách substrátu, a to rovnoběžně s etážovými dny, je třeba uvažovat zejména pro případ, že se v procesu fermentace vytváří velmi mnoho reakčního tepla.
Ve dnu fermentoru se nachází přívod 7 vzduchu, kterým se do fermentoru fouká sterilní zvlhčený vzduch. Vzduch profukuje všechny vrstvy substrátu a opouští fermentor odtokem 2 vzduchu umístěným na poklopu L
Meziprostory, nacházející se mezi jednotlivými patry, ve kterých jsou také umístěna chladicí zařízení, zajišťují rovnoměrné rozdělování vzduchu v celém fermentoru. Jestliže není k odvětrání fermentoru k dispozici žádný zvlhčený vzduch, tak může být vzduch také zvlhčován uvnitř samotného fermentoru. To se uskutečňuje tak, že alespoň nejspodnější etážové dno není naplněno kultivačním substrátem, nýbrž vodu zachycujícím granulovaným materiálem, který je nejprve profukován přiváděným vzduchem, dříve než vzduch pronikne dále do fermentoru. Tím se zvlhčuje. Při velké potřebě vody vyvíjejícím se organismem může být ke zvlhčován í v určitých odstupech instalováno ve fermentoru více takovýchto pater. Množství přiváděného vzduchu je závislé na potřebě kyslíku mikroorganismu určeného ke kultivaci. Může se měnit mezi 1 a 100 litry za hodinu na litr kultivačního substrátu.
K naočkování kultivačního substrátu mikroorganismem určeným ke kultivaci se fermentor, potom co byl jeho obsah nejprve sterilizován, naplní až přes nej hořejší vrstvu kultivačního substrátu sterilní vodou. K tomu účelu je na dnu fermentoru umístěn přítok 8 vody, před kterým je zapojen sterilizující filtr. Přítok 8 vody však může být také instalován i na jiném místě fermentoru, (např. na poklopu i). Po naplnění se k tomu účelu uspořádaným otvorem 3 v poklopu i přivede násada. Tyto otvory 3 k naočkování fermentoru mohou být zejména při velmi mnoha patrech také umístěny mezi jednotlivými etážovými dny. V prvním případě se uskutečňuje rozdělování násady ve fermentoru výlučně při opětovném vypouštění vody se ktomu účelu uspořádaným otvorem 9 ve dnu fermentoru.
Násada, (suspenze mikroorganismů), protéká tímto způsobem všemi vrstvami kultivačního substrátu a zůstává v nich v postačujícím množství se zachycovanou vodou. Při příliš mnoha protékaných vrstvách vzniká, kupříkladu v závislosti na povaze kultivačního substrátu, zře db vací efekt. To znamená, že se mikroorganismy vlivem protékaného kultivačního substrátu odfiltrovávají, takže jejich koncentrace ve vodě je směrem dolů stále menší. Aby se tomu zabránilo, mohou být u další varianty umístěny otvory k přivádění násady do fermentoru také mezi etážovými dny. S jejich pomocí může být již během naplňování fermentoru vodou přiváděna násada, která se potom rozděluje jak proudem vody směrovaným nahoru, tak i také dolů.
Násada použitelná pro naočkování fermentoru sestává z vysoce koncentrované suspenze malých jednotek schopných klíčení, (výhodně ze spor, konidií nebo bakteriálních zárodků) mikroorganismu určeného ke kultivování.
Za předpokladu rovnoměrného a postačujícího naočkování fermentační nádoby je průběh kultivace, to je (doba kultivace a produkční výtěžnost), jakož i kvalita produktu kultivace, (např. hou-4CZ 300539 B6 bových spor), v široké míre závislá na parametrech řízení kultivace. To sestává v první řadě v přívodu zvlhčeného vzduchu a regulace teploty. Objemový proud vzduchu je třeba sladit s kapacitou steřílizačního vzduchového filtru. Teplotní vedení ve fermentoru se zajišťuje pomocí chlazení instalovaného ve fermentoru. Kapacita chlazení musí být dimenzována tak, aby se z kultivačního substrátu mohlo odvádět veškeré reakční teplo a aby se mohla pro kulturu mikroorganismu udržovat optimální teplota. Požadovaná kapacita chlazení je také závislá na tloušťce vrstvy a tím i na objemu kultivačního substrátu. Čím více je kultivačního substrátu pro růst mikroorganismů k dispozici, tím více reakčního tepla se vytváří. Proto se musejí oba parametry společně optimalizovat. Usiluje se o co možná nejrychlejší vývoj mikroorganismů, jakož i o vysokou produkční výtěžnost, přičemž po stanovení cíle fermentaee přicházejí jako produkt v úvahu houbové spory, buňky bakterií, enzymy, antibiotika, barviva a další látky.
K dispozici jsou dvě varianty provedení fermentoru podle vynálezu.
Varianta 1., (obr. 3)
Fermentor sestává z průchozího válce nebo hranolu, který je dole pevně uzavřen. Válec, (zpravidla je jím kruhový válec, nebo hranol), mohou mít průměr 1 m a více. Jejich výskaje omezena technickou manipulovatelností s nimi, jakož i možností udržení optimálních podmínek pro mik20 roorganismu určený ke kultivaci. Realizovatelné výšky jsou 2 m a více.
Do tohoto válce nebo hranolu se ze shora umístí etážová dna 4, naplněná kultivačním substrátem
5. Na vnitřní straně nádrže se nacházejí prstence, nebo v případě, že se použije hranolovitého krytu, jinak tvarovaná zařízení 11 k uložení etážových den 4. Každý prstenec nebo jinak tvarova25 né úložné zařízení je opatřen tepelně stabilním těsněním JO, kupříkladu ze silikonu, na které se svými vnějšími hranami pokládají etážová dna 4, čímž je dán vzduchotěsný a vodotěsný uzávěr mezi etážovými dny 4 a stěnami nádoby. Prstence nebo jinak tvarovaná úložná zařízení se mohou z kiytu sejmout. Chladicí zařízení 6 pod etážovým dnem 4, které může kupříkladu sestávat z chladicí spirály z měděné trubky, se pomocí rychlospojky 13 spojí s potrubími 14 k odtoku a přítoku chladicí kapaliny, která se nacházejí pod fermentorem. Každé etážové dno 4 je opatřeno okrajem 12. jehož výška se řídí podle tloušťky vrstvy kultivačního substrátu. Tím se zabráni tomu, aby kultivační substrát padal do nádoby fermentoru a tu znečišťoval.
Fermentor je nahoře pevně uzavřen poklopem J_. Je dimenzován jako tlaková nádoba a může být tedy sterilizován přivedením horké páiy pod tlakem. Není proto potřebné použít autoklávu.
Varianta 2., (obr. 4)
Fermentor sestává z více válců nebo hranolů se vždy malou výškou, (výhodně cca 7 až 30 cm), které mohou mít kruhovou, oválnou, obdélníkovou, nebo sjiným počtem rohů uspořádanou základní plochu. Do jednotlivých válců nebo hranolů je vždy namontováno vzduchotěsné a vodotěsné dno. Pode dnem se nachází chladicí zařízení a na dnu leží substrát ke kultivaci organismů. Válce nebo hranoly slouží jako patra 4 sestaveného fermentoru. Jsou uspořádány nad sebou a vůči sobě utěsněny pomocí tepelně stabilních těsnění 15, která jsou umístěna na okrajích.
První patro leží vespod na dnu fermentoru, a poslední patro se nahoře uzavírá poklopem 1 fermentoru. Fermentor tak může být výhodně sestaven z deseti nebo více pater. Protože je obtížné zkonstruovat takto sestavený fermentor jako tlakovou nádobu, probíhá sterilizace fermentoru, s kultivačním substrátem uvnitř v autoklávu. Velikost fermentoru je tedy v první řadě závislá na kapacitě autoklávu, kterýje k dispozici. Bude muset proto v mnoha případech zůstat omezena na objem 500 až 1000 litrů. Během sterilizace v autoklávu není fermentor otevřen, to znamená, že jednotlivá patra jsou mírně, cca 5 mm, od sebe nadzvednuta. Tím se umožní dobrý přívod horké páry, způsobující sterilizaci, do vnitřní prostoru fermentoru. Po sterilizaci v autoklávu se fermentor pevně uzavře. Aby se po sterilizaci v autoklávu a před uzavřením, tedy během odebírání fermentoru z autoklávu, zabránilo kontaminaci fermentoru cizími zárodky, je každé patro opatře-5 CZ 300539 B6 no vnějším prstencem 16, který má za úkol překrýt mezeru vyskytující se mezi jednotlivými patry v otevřeném stavu.
Po uzavření fermentoru se chladicí zařízení 6, nacházející se pod etážovými dny, pomocí spojky 5 17 spojí s potrubími 14, která slouží k přítoku a odtoku chladicí kapaliny.
U jedné výhodné varianty provedení sestává granulovaný kultivační substrát, na kterém se mají vyvíjet mikroorganismy, z vrstvy silné 5 až 6 cm. Je uspořádáno nad sebou až deset takovýchto vrstev. Granulovaný kultivační substrát, uspořádaný ve vrstvách, se vždy ukládá na perforovalo ném a tím pro vzduch propustném dnu, pod kteiým se nachází chladicí spirála (vinutá měděná trubka), s jejíž pomocí může být odváděno teplo vznikající v substrátu. Přívod sterilně filtrovaného vzduchu se realizuje zespoda. Vlivem hermetického uzavření jednotlivých pater směrem do strany je vzduch přinucen rovnoměrně protékat všemi patry, tedy vrstvami s kultivačním substrátem, dříve než nahoře fermentor opět opustí. Na nejspodnějším etážovém dnu se nachází vodou nasycená vrstva, výhodně granulát SERAMIS, skrz kterou se vzduch vede, čímž se zvlhčuje.
Sterilizace fermentoru s již vloženým veškerým kultivačním substrátem probíhá výhodně pomocí páry ohřáté na 121 °C, výhodně v autoklávu, přičemž jednotlivá patrajsou během procesu sterili20 zace v autoklávu mírně od sebe nadzvednuta, takže může horká pára vnikat do jednotlivých pater.
Další údaje: objem:
množství kultivačního substrátu: objemový proud vzduchu: výkon chladicího systému:
500 litrů 250 litrů
1500 litrů za hodinu 2,5 kW
Na rozdíl od dosud používaných typů (fermentor s natřásanou pevnou fází nebo rotující fermentor), kde musí být k odvedení vody, odvětrání a zásobování vodou prováděno stálé přemísťování vrstev kultivačního substrátu, již není při použití způsobu podle vynálezu potřebné pohybovat se substrátem. Uložení kultivačního substrátu v etážových vrstvách, které jsou celé obepnuty uzavřeným obalem, poskytuje následující přednosti:
1. Vlastní hmotnost kultivačního substrátu nevede k zahuštění a tím ke snížení jeho prodyšnosti.
2. Vlivem instalace chladicího zařízení pod jednotlivými patry může být vznikající teplo snadno odváděno.
3. Vzhledem k relativně malé tloušťce pater, ale i k prostoru nacházejícího se mezi jednotlivými patry, je zajištěno rovnoměrné provětrávání vrstev substrátu.
4. Protože provětrávání substrátu slouží pouze pro přívod kyslíku, ale i k odvádění vznikajících plynů, a nikoliv ke chlazení substrátu, může se pracovat s velmi malým objemovým proudem vzduchu, který, protože vzduch je navíc zvlhčen, již nevede k vysychání substrátu.
5. Jelikož pohyb substrátu již není potřebný, může se mechanické ničení houbových struktur, (jakojsou nosiče spor, plodnice ajiné struktury), vyloučit.
Přehled obrázků na výkresech
Vynález je dále blíže popsán a vysvětlen na příkladech jeho provedení podle připojených výkresů, které znázorňují na obr. 1 principiální schéma fermentoru, na obr. 2 chladicí zařízení fermentoru s plechy na odvádění tepla, na obr. 3 výřez fermentoru, sestávajícího z průchozího válce, a na obr. 4 výřez sestaveného fermentoru.
-6CZ 300539 B6
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Hromadná kultivace Beauveria brongniartii za účelem získání houbových konidií.
Fermentor použitý ke kultivaci Beauveria brongniartii má kapacitu cca 50 litrů. Má tvar válce o průměru 30 cm a výšce 70 cm. Vnější obal fennentoru sestává z tepelně stabilního skla. Do fer10 mentoru bylo vestavěno 8 pater, jejichž dna sestávají ze síta z ušlechtilé oceli, o šířce ok 3 mm. Vzdálenost etážových den vůči sobě činila 8 cm. Spodní dno bylo naplněno 6 cm silnou vrstvou granulátu SERAMIS. Nad ním ležících sedm pater obsahovalo jako kultivační substrát drcená ječná zrna. Tloušťka vrstvy kultivačního substrátu činila cca 6 cm. Celkem bylo použito 30 litrů kultivačního substrátu.
Fermentor byl sterilizován pomocí autoklávu. K tomu účelu byl obsah fennentoru ohříván pomocí horké páry po dobu půl hodiny na 121 °C. Poklop fermentoru byl během procesu sterilizace v autoklávu mírně otevřen, aby se umožnilo vnikání páry do vnitřního prostoru fennentoru. Po sterilizaci v autoklávu byl poklop ihned uzavřen.
K naočkování byl fermentor až po nej hořejší vrstvu kultivačního substrátu naplněn sterilní vodou. Přitom byla použita 500 cm2 kapsle typu S+S-EXELON PES 20/5 HC (Schleicher a Schuell, Dassel). Poté byla přivedena násada k tomu účelu uspořádaným otvorem v poklopu. Naočkování fermentoru proběhlo pod laminámím boxem. Jako násada bylo použito 100 ml sus25 penze konidií s 1 x 109 konidií na ml. Po přivedení násady nejhorejší vrstvou kultivačního substrátu se voda vypustila ventilem na dnu fermentoru. Tím byly všechny vrstvy substrátu rovnoměrně kontaminovány houbovými konidiemi.
Po naočkování fermentoru byl fermentor ínkubován v prostoru o teplotě 20 °C. Uskutečnilo se napojení na přívod vzduchu, jakož i na chladicí systém. Objemový proud vzduchu činil během celého procesu fermentaee 150 litrů na hodinu. Jako chladicí kapaliny bylo použito vody se vstupní teplotou 17 °C. Regulace chlazení bylo nastaveno tak, že při překročení 22 °C v kultivačním substrátu se skrz chladicí spirály čerpala chladicí kapalina, až bylo opět dosaženo teploty 20 °C. Tímto způsobem mohla být udržována průměrná teplota substrátu na cca 21 °C během celé doby kultivace.
Cílem kultivace byla co možná nejvyšší výtěžnost houbových konidií. Skleněným pláštěm fermentoru mohl být průběh kultivace velmi dobře pozorován. Po přibližně deseti dnech byl celý kultivační substrát potažen bílým myceliem. Vytvořením konidií a nosičů konidií změnilo toto mycelium od třináctého dne svůj vzhled. Dostalo práškovitou strukturu. Po přibližně devatenácti dnech ztratil fermentor značně na selektivitě látkové výměny. Zmenšil se vývin tepla, čímž se znatelně snížila frekvence chlazení. Kultivační substrát byl po dvaceti jednom dnu po naočkování fermentoru vyjmut a pomocí speciální filtrační techniky byly z kultivačního substrátu, porostlého zcela Beauveria brogniartii, získány konidie.
Celkem mohlo být pomocí etážového fermentoru získáno 3,3 x 1013 konidií.

Claims (5)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Fermentor pracující s pevnou fází, vyznačující se tím, že představuje etážový fermentor, přičemž nad sebou jsou uspořádána alespoň dvě prodyšná a pro vodu propustná etážová dna (4), která jsou spojena se stěnami nádoby tak, že ani vzduch ani voda nemůže bočně proudit kolem io nich, na etážových dnech (4) se nachází kultivační substrát (5) pro mikroorganismy určené ke kultivaci, pod každým etážovým dnem (4) je umístěno chladicí zařízení (6), a fermentor je uzavřen poklopem (1).
  2. 2. Fermentor podle nároku 1, vyznačující se tím, že představuje průchozí válcovitou, oválnou, obdélníkovou, nebo s jiným počtem rohů uspořádanou nádrž s alespoň jedním otvorem (
  3. 3) pro násadu.
    20 3. Fermentor podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že z chladicího zařízení (6) vyčnívají skrz příslušná etážová dna (4) do kultivačního substrátu plechy z kovu s vysokou tepelnou vodivostí.
  4. 4. Fermentor podle některého z nároků 1 až 3, vyznačující se t í m , že se na nádrži
    25 nachází přívod (8) vody, ve dnu fermentoru přívod (7) vzduchu, stejně tak i odtok (9) pro vodu, a na poklopu (1) je uspořádán otvor k odtoku (2) vzduchu, etážová dna (4), naplněná kultivačním substrátem (5), jsou umístěna za sebou, k čemuž jsou ve vnitřní straně nádrže umístěny prstence nebo jinak tvarovaná zařízení (11) k uložení etážových den (4), která jsou opatřena tepelně stabilním těsněním (10), a
    30 etážová dna (4) mají okraj (12), jehož výška je závislá na tloušťce vrstvy kultivačního substrátu (5), rovněž i chladicí zařízení (6), která jsou přes rychlospojku (13) spojena s potrubími (14) pro odtok a přítok chladicí kapaliny, která se nacházejí mimo fermentor.
    35 5. Fermentor podle nároku 4, vyznačující se tím, že se ve dnu nebo poklopu (1) fermentoru nachází přítok (8) vody.
    6. Fermentor podle některého z nároků 1 až 5, vyznačující se tím, že se v poklopu (1) nachází otvor pro násadu, a popřípadě mezi jednotlivými etážovými dny (4) další otvory
    40 k naočkování.
    7. Fermentor podle některého z nároků 1 až 3, vyznačující se tím, že fermentor obsahuje více válcovitých, oválných nebo hranolovitých nádrží, které slouží jako patra a které jsou uspořádány nad sebou, takže první nádrž dosedá dole na dno fermentoru a poslední nádrž je
    45 uzavřena poklopem (1), a nádrže jsou vůči sobě utěsněny tepelně stabilními těsněními (15) a opatřeny vnějším prstencem (16), každá z těchto nádrží má prodyšné a pro vodu propustné dno (4), na kterém se nachází kultivační substrát (5) a pod ním chladicí zařízení (6), které je pomocí spojky (17) spojeno s odtokovými a přítokovými potrubími (14) pro chladicí kapalinu, která se nacházejí mimo fermentor.
    8. Fermentor podle některého z nároků 1 až 7, v y z n a č u j í c í se t í m , že kultivačním substrátem (5) jsou porézní granuláty, kteréjsou opatřeny živným roztokem nebojsou přírodními granulovanými materiály.
    -8CZ 300539 B6
    9. Fermentor podle nároku 8, vy z n ač u j í c í se tí m , že přírodními granulovanými materiály jsou obilí, pelety z otrub nebo odpady z výroby cukru.
  5. 5 10. Fermentor podle některého z nároků 1 až 9, vyznačující se tím, že se alespoň na nej spodnějším etážovém dnu (4) nachází zvlhčená vrstva.
    11. Fermentor podle nároku 10, vyznačující se t í m , že zvlhčenou vrstvou je granulovaný materiál schopný zachycovat vodu, s extrémně vysokým objemem pórů.
    io
    12. Fermentor podle nároků 1 až 10, v y z n a č u j í c í se t í m , že chladicí zařízení (6) jsou umístěna v určité vzdálenosti nad a rovnoběžně s etážovými dny (4).
    13. Fermentor podle nároku 12, vyznačující se tím, že chladicí zařízení (6) jsou insta15 lována uprostřed vrstvy s kultivačním substrátem.
    14. Způsob fermentace v pevné fázi se zařízením podle některého z nároků 1 až 13, vyznačuj í c í se t í m , že se kultivační substrát, který se ve fermentoru nachází na více etážových dnech, rovnoměrně očkuje, je plně protékán relativně malým objemovým proudem vzduchu, a
    20 pomocí chladicího systému se pro příslušný proces kultivace nastavuje optimální teplota.
    15. Způsob podle nároku 14, vyznačující se tím, že naočkování množitelným mikroorganismem pomocí naplnění fermentoru vodou, do které se přidávají v postačujícím množství zárodky, se provádí způsobem, že všechny vrstvy jsou jak při naplňování, tak i při odtékání
    25 rovnoměrně protékány a očkovány.
    16. Způsob podle některého z nároků 14 nebo 15, vyznačující se tím, že chladicí kapacita se v závislosti na objemu kultivačního substrátu dimenzuje tak, aby se z kultivačního substrátu odvedlo veškeré reakční teplo.
CZ20003988A 1998-04-30 1999-04-27 Fermentor pracující s pevnou fází a zpusob fermentace v pevné fázi CZ300539B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19820169 1998-04-30

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ20003988A3 CZ20003988A3 (cs) 2001-04-11
CZ300539B6 true CZ300539B6 (cs) 2009-06-10

Family

ID=7866813

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20003988A CZ300539B6 (cs) 1998-04-30 1999-04-27 Fermentor pracující s pevnou fází a zpusob fermentace v pevné fázi

Country Status (23)

Country Link
US (1) US6620614B1 (cs)
EP (1) EP1073708B1 (cs)
JP (1) JP4180798B2 (cs)
CN (1) CN1212385C (cs)
AT (1) ATE208810T1 (cs)
AU (1) AU749402B2 (cs)
BG (1) BG64130B1 (cs)
BR (1) BR9910580B1 (cs)
CA (1) CA2329815C (cs)
CZ (1) CZ300539B6 (cs)
DE (2) DE59900442D1 (cs)
DK (1) DK1073708T3 (cs)
HU (1) HU225994B1 (cs)
ID (1) ID28122A (cs)
IL (1) IL139292A0 (cs)
NO (1) NO20005438L (cs)
NZ (1) NZ507738A (cs)
PL (1) PL188683B1 (cs)
RO (1) RO120977B1 (cs)
RU (1) RU2235767C2 (cs)
TR (1) TR200003179T2 (cs)
UA (1) UA65616C2 (cs)
WO (1) WO1999057239A2 (cs)

Families Citing this family (69)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6197573B1 (en) * 1998-11-17 2001-03-06 Biocon India Limited Solid state fermentation
AU2000233225A1 (en) * 2000-02-29 2001-09-12 Biocon India Limited Manufacture and purification of mycophenolic acid
AU2001270278A1 (en) * 2000-06-30 2002-01-14 Biopulping International, Inc. Fungal incubation containment system and methods
WO2002099183A1 (en) 2001-06-01 2002-12-12 Biopulping International, Inc. Eucalyptus biomechanical pulping process
DE10203863B4 (de) * 2002-01-28 2004-08-19 VTI Thüringer Verfahrenstechnisches Institut für Umwelt und Energie e.V. Feststoffbioreaktor und Verfahren zu dessen Betrieb
DE10335522A1 (de) * 2003-07-31 2005-02-17 Prophyta Biologischer Pflanzenschutz Gmbh Solid-State-Fermenter
CA2829427C (en) * 2003-09-04 2016-07-19 Hygiene-Technik Inc. Automated biological growth and dispensing system
NL1025609C2 (nl) * 2004-03-01 2005-09-05 Buehler Gmbh Inrichting voor het weken van gerst.
FI117012B (fi) 2004-09-28 2006-05-15 Verdera Oy Reaktori ja menetelmä kiinteän alustan kasvatuksiin
CN100500825C (zh) * 2006-10-13 2009-06-17 深圳市达科为生物技术有限公司 淋巴细胞分离管及分离血液中淋巴细胞的方法
US9485917B2 (en) 2006-12-15 2016-11-08 Ecovative Design, LLC Method for producing grown materials and products made thereby
WO2010032260A1 (en) * 2008-08-05 2010-03-25 Sameer Sudhir Kulkarni Stacked basket bioreactor for solid state fermentation
EP2186876A1 (en) 2008-11-13 2010-05-19 Biorecycling Group B.V. System for solid state fermentation and use thereof
US8778669B2 (en) 2009-07-22 2014-07-15 Corning Incorporated Multilayer tissue culture vessel
DE102010010293B4 (de) 2010-03-04 2014-01-09 fzmb GmbH, Forschungszentrum für Medizintechnik und Biotechnologie Festphasenfermenter
CN102234205B (zh) * 2010-04-23 2013-06-05 中国科学院过程工程研究所 一种多功能固态发酵反应器
CN102093950B (zh) * 2010-12-15 2012-11-07 北京科技大学 一种气湿耦合固态发酵罐及其发酵工艺
EP2505634B1 (en) 2011-03-31 2013-12-04 Technelep srl A solid state fermentation plant
CN102250755A (zh) * 2011-06-20 2011-11-23 娄底市裕德科技有限公司 一种多功能间歇膨胀固态发酵罐
CO6780221A1 (es) * 2012-04-17 2013-10-31 Univ De Caldas Biorreactor para la obtención de sustancias bioactivas por fermentación en estado sólido empleando hongos macromicetos
JP2015518734A (ja) * 2012-06-06 2015-07-06 ノボザイムス バイオアーゲー アクティーゼルスカブ 自動化のために構成された固体状態バイオリアクタ
DE102012016951B4 (de) * 2012-08-28 2014-11-06 Yoen Ok Roth Vorrichtung und Verfahren für die Fermentation mikrobieller Kulturen
US9005550B2 (en) 2012-10-29 2015-04-14 Corning Incorporated Multi-layered cell culture vessel with manifold grips
BR102012033485A2 (pt) 2012-12-28 2014-08-19 Petroleo Brasileiro Sa Equipamento e processo híbrido para obtenção de bioprodutos
CN103966084B (zh) * 2013-01-29 2016-03-30 徐少云 薄层自控静态固体发酵集成优化方法及其装置
US11277979B2 (en) * 2013-07-31 2022-03-22 Ecovative Design Llc Mycological biopolymers grown in void space tooling
RU2532828C1 (ru) * 2013-09-26 2014-11-10 Любовь Васильевна Маслиенко Способ поверхностного выращивания микроорганизма на жидкой питательной среде и устройство для его осуществления
US20150101509A1 (en) 2013-10-14 2015-04-16 Gavin R. McIntyre Method of Manufacturing a Stiff Engineered Composite
DE102013114855B4 (de) * 2013-12-23 2015-12-17 Ulrich Mohr Vorrichtung zur Kultivierung von Zellen
US9441191B2 (en) * 2014-06-05 2016-09-13 Taiwan Leader Biotech Corp. Omni-functional high-efficient solid-state fermentation method for edible and medicinal microorganisms
DE202014103237U1 (de) 2014-07-14 2014-07-25 Taiwan Leader Biotech Corp. Voll funktionstüchtige Feststofffermentationsvorrichtung
EP3034600A1 (en) 2014-12-16 2016-06-22 Bayer CropScience Biologics GmbH Method for prolonging the viability of fungal spores in liquid formulations
CA2971323C (en) * 2014-12-19 2021-03-23 Qvidja Kraft Ab Unsaturated bioreactor for fermentation and hydrogen production and methods thereof
US10537070B2 (en) 2015-04-15 2020-01-21 Ecovative Design Llc Process for the production of mycelial composite surfaces in a roll-to-roll format
CN105002126B (zh) * 2015-08-20 2017-12-29 福建出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种兼性需氧菌的简易批量培养方法
CN105154318A (zh) * 2015-10-08 2015-12-16 上海理工大学 组合式液态发酵浅槽组件及其发酵装置
EP3195727A1 (en) 2016-01-22 2017-07-26 Forschungsinstitut Fur Biologischen Landbau (FiBL) Duddingtonia flagrans strain and feed additive formulation for biological pest control
WO2017151684A1 (en) 2016-03-01 2017-09-08 Sustainable Bioproducts Holdings, Llc Filamentous fungal biomats, methods of their production and methods of their use
US11512272B2 (en) * 2016-06-23 2022-11-29 Q Power Oy Solid state fermentation reactor equipped with active support material
CN106479882A (zh) * 2016-11-28 2017-03-08 西安交通大学 一种菌种固体连续发酵结构和设备及发酵方法
EP3400801A1 (en) 2017-05-10 2018-11-14 Bayer CropScience Aktiengesellschaft Plant health effect of purpureocillium lilacinum
US11359074B2 (en) 2017-03-31 2022-06-14 Ecovative Design Llc Solution based post-processing methods for mycological biopolymer material and mycological product made thereby
WO2019057654A1 (en) 2017-09-20 2019-03-28 Bayer Cropscience Biologics Gmbh METHOD FOR IMPROVING STORAGE STABILITY AND PHYSICAL CONDITION OF FUNGAL SPORES
US11266085B2 (en) 2017-11-14 2022-03-08 Ecovative Design Llc Increased homogeneity of mycological biopolymer grown into void space
CA3087178A1 (en) * 2017-12-28 2019-07-04 Sean Farmer Reactors and submerged fermentation methods for producing microbe-based products
CN109971624B (zh) * 2017-12-28 2023-11-28 西藏天虹科技股份有限责任公司 基于标准化发酵时间的固态发酵控制装置
WO2019140440A1 (en) * 2018-01-15 2019-07-18 Locus Ip Company, Llc Reactors for modified solid-state fermentation
CN108211696B (zh) * 2018-01-23 2020-12-22 青岛理工大学 一种室内空气净化益菌屋的制备装置与方法
US11920126B2 (en) 2018-03-28 2024-03-05 Ecovative Design Llc Bio-manufacturing process
CN108570463B (zh) * 2018-05-02 2021-12-24 新乡医学院 一种利用微生物生产酸性蛋白酶的方法
US11293005B2 (en) 2018-05-07 2022-04-05 Ecovative Design Llc Process for making mineralized mycelium scaffolding and product made thereby
CA3075412A1 (en) 2018-05-24 2019-11-28 Ecovative Design Llc Process and apparatus for producing mycelium biomaterial
WO2019238734A1 (en) 2018-06-15 2019-12-19 Bayer Aktiengesellschaft Liquid and storage-stable formulations for fungal spores
EP3820287A1 (en) 2018-07-10 2021-05-19 Bayer Aktiengesellschaft Novel carrier fluids for liquid fungal spore formulations
MX2021000702A (es) 2018-07-20 2021-03-25 Bayer Ag Nuevos fluidos portadores para formulaciones liquidas de esporas fungicas.
WO2020058196A1 (en) 2018-09-19 2020-03-26 Bayer Cropscience Biologics Gmbh Method for increasing storage stability of fungal spores
US11359174B2 (en) 2018-10-02 2022-06-14 Ecovative Design Llc Bioreactor paradigm for the production of secondary extra-particle hyphal matrices
MX2021012479A (es) 2019-04-12 2021-11-12 Danstar Ferment Ag Metodos para aumentar la tasa de germinacion de esporas de hongos.
WO2020245154A1 (en) 2019-06-07 2020-12-10 Bayer Cropscience Biologics Gmbh Methods of increasing the germination rate of fungal spores
EP3805358A1 (en) 2019-10-08 2021-04-14 Green Spot Technologies SAS Process and production system for large scale solid-state fermentation
KR102122863B1 (ko) * 2019-10-29 2020-06-15 신우산기(주) 다층구조 결로방지 고체 발효기
CN110894458B (zh) * 2019-12-18 2022-09-02 青岛农业大学 一种自动化饼粕微生物固态好氧发酵设备
BR112022021637A2 (pt) 2020-05-28 2022-12-06 Danstar Ferment Ag Método para produzir um micro-organismo, substratos compósitos e uso de um substrato compósito
EP4161275A1 (en) 2020-06-08 2023-04-12 Danstar Ferment Ag Novel formulations for increasing the germination rate of fungal spores
WO2022040510A1 (en) 2020-08-21 2022-02-24 Bayer Cropscience Lp Combinations of trichoderma and bradyrhizobium
CN112520436B (zh) * 2020-10-12 2022-06-24 嘉兴学院 一种固态发酵箱及其使用方法
EP4074815A1 (en) 2021-04-13 2022-10-19 Green Spot Technologies Method and system for solid-state fermentation of plant material to produce a fermentation product
CN113801782B (zh) * 2021-09-23 2023-09-01 郑州智拓生物科技有限公司 一种实现微生物菌剂的快速培养系统及方法
EP4276170A1 (en) 2022-05-12 2023-11-15 Evologic Technologies GmbH Pseudo-solid state fermentation of filamentous fungi

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1156739A (en) * 1966-12-01 1969-07-02 Afico Sa Continuous Fermentation Apparatus.
US3753582A (en) * 1971-11-09 1973-08-21 Anarak Inc Coupling unit

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1474370A (fr) * 1965-04-05 1967-03-24 Falstaff Brewing Corp Appareil et procédé destinés à la mise en oeuvre de réactions continues, pour la préparation de la bière
US3413124A (en) * 1965-04-05 1968-11-26 Falstaff Brewing Corp Continuous flow fermentation apparatus and process
FR2583059B1 (fr) 1985-06-06 1987-10-09 Orstom Procede de production de spores de champignons filamenteux et dispositif utilise
EP0660745A1 (en) * 1992-09-16 1995-07-05 Rotron Incorporated Biofilter with modular trays
FR2701487B1 (fr) 1993-02-10 1995-03-31 Agronomique Inst Nat Rech Réacteur pour conduire de façon stérile des procédés de fermentation d'un produit à l'état solide.
US6197573B1 (en) * 1998-11-17 2001-03-06 Biocon India Limited Solid state fermentation

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1156739A (en) * 1966-12-01 1969-07-02 Afico Sa Continuous Fermentation Apparatus.
US3753582A (en) * 1971-11-09 1973-08-21 Anarak Inc Coupling unit

Also Published As

Publication number Publication date
CN1305524A (zh) 2001-07-25
JP2002513557A (ja) 2002-05-14
CA2329815A1 (en) 1999-11-11
CA2329815C (en) 2009-10-13
PL188683B1 (pl) 2005-03-31
RO120977B1 (ro) 2006-10-30
BG64130B1 (bg) 2004-01-30
DE19920020A1 (de) 1999-11-04
NO20005438L (no) 2000-12-15
UA65616C2 (uk) 2004-04-15
RU2235767C2 (ru) 2004-09-10
US6620614B1 (en) 2003-09-16
AU4601199A (en) 1999-11-23
ATE208810T1 (de) 2001-11-15
TR200003179T2 (tr) 2001-03-21
JP4180798B2 (ja) 2008-11-12
NZ507738A (en) 2002-06-28
EP1073708A2 (de) 2001-02-07
ID28122A (id) 2001-05-03
BR9910580B1 (pt) 2010-11-16
IL139292A0 (en) 2001-11-25
NO20005438D0 (no) 2000-10-27
CZ20003988A3 (cs) 2001-04-11
DK1073708T3 (da) 2002-03-11
EP1073708B1 (de) 2001-11-14
DE59900442D1 (de) 2001-12-20
HUP0101547A2 (hu) 2001-08-28
WO1999057239A3 (de) 1999-12-16
HUP0101547A3 (en) 2003-08-28
CN1212385C (zh) 2005-07-27
BG104887A (en) 2001-06-29
PL344455A1 (en) 2001-11-05
WO1999057239A2 (de) 1999-11-11
BR9910580A (pt) 2001-10-02
HU225994B1 (en) 2008-02-28
AU749402B2 (en) 2002-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ300539B6 (cs) Fermentor pracující s pevnou fází a zpusob fermentace v pevné fázi
JP2002513557A5 (cs)
EP1131404B1 (en) Solid state fermentation
RU2359026C2 (ru) Твердофазный биореактор
CN102443535B (zh) 一种固态发酵生物反应器
WO2010032260A1 (en) Stacked basket bioreactor for solid state fermentation
JP3192654U (ja) 全機能高効果食薬用菌固形発酵装置
WO2017020853A1 (zh) 一种固态生物反应装置、使用方法及其应用
US4746615A (en) Sterilizable fluidized bed fermenter
JP2003529362A (ja) 植物又は動物の組織培養の培養装置
CN104531521A (zh) 一种浅盘式固体发酵设备
CN105087383A (zh) 全功能高效食药用菌固态发酵系统进行固态发酵的方法
CN100478434C (zh) 一种固态发酵装置
CN102093950B (zh) 一种气湿耦合固态发酵罐及其发酵工艺
CN1958780B (zh) 一种固态发酵袋及其应用
CN212357206U (zh) 一种微生物培养箱
WO2023023857A1 (en) Method and system for culturing filamentous organisms
US20100203626A1 (en) Solid state fermentation in modified zymotis packed bed bioreactor
MXPA00010661A (en) Solid-state fermenter and method for solid-state fermentation
Virtanen et al. An aseptically operatable static solid state bioreactor consisting of two units
CN2913374Y (zh) 一种固态发酵装置
AU2419000A (en) Solid state fermentation
TW201538718A (zh) 全功能高效食藥用菌固態發酵系統進行固態發酵之方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20120427