发明内容
本发明目的是提供一种姜提取物的新的用途,以及适于该用途的制备姜提取物的方法。
为达到上述目的,本发明采用的技术方案是:
一种姜提取物的制备方法,包括下列步骤,
(1)将干姜粉碎至粒度30-50目,作为制备原料;
(2)采用超临界二氧化碳流体萃取方法萃取,萃取压力24-30MPa,温度42-45℃,反应3-6小时,CO2流速为9-10kg/h.kg原料;
经萃取的流体分别经过两级解析,所述第一级解析的压力为12-14MPa,温度为56-60℃,第二级解析的压力为6-7MPa,温度为38-42℃;
将上述萃取获得的淡黄色姜油用柱层析法进行分离,使得姜辣素的含量大于50%,获得所需的姜提取物。
本发明同时要求保护采用上述方法制备获得的姜提取物。
以及所获得的姜提取物在制备防治肝纤维化的药物中的应用。
较优选的方案是,所述的药物剂型为滴丸。
上述技术方案中,超临界CO2流体(SFE-CO2)萃取流程如下:
CO2钢瓶→冷冻系统→高压泵→萃取釜→解析釜I→解析釜II→循环。
经过超临界二氧化碳萃取获得的姜油,为淡黄色油状物,其具有浓烈的鲜姜天然香气和辛辣味,经GC-MS定性定量鉴定了59个成分,姜辣素的含量为13.09%,其中,姜酚(gingerol)1.78%,姜烯酚(shogaol)2.36%,姜酮(zingerone)3.52%,姜烯(Zangiberene)4.43%,其他50多种单萜、倍半萜类物质,相对含量为46.83%。
将上述姜油采用柱层析的方法进一步提取,得到精制姜油,测定提取物中姜辣素的含量大于50%,为本发明所需的姜提取物。
为了更好地解决主要药效成分姜酚的稳定性,将部分精制姜油用β-CD包合。缓释滴丸处方设计中同时含有提取物和包合物两部分,调节二者的比例,获得不同的释药效果。
滴丸的制备方法是:称取一定量的辅料,加热熔融后加盖密闭并保温60℃,滴入甲基硅油中冷凝,待收缩成丸后,收集丸粒,吸去表面黏附的冷却剂,放入干燥器干燥即得。
优选使用水溶性载体PEG6000制成固体分散体,使药物分子不易形成聚集体,或使微粒不易形成聚附体,保证了药物的高度分散性,加快药物的溶出和吸收,构成缓释滴丸的速释部分。优选使用水不溶性的硬脂醇、β-CD的包合对药物释放起阻滞作用,构成缓释滴丸的缓释部分。用本法制成姜油缓释滴丸,使药物在体内缓慢释药达12h,故处方筛选的依据定为2h释药约40%,10h释药80%以上,制剂服用后既可使血药浓度快速达到治疗范围,又能持续维持一段时间的药物浓度。
对上述制剂的药效研究表明:
1.在整体动物急性肝损伤实验中,精制姜油具有明显的保肝作用,它可抑制四氯化碳和醋氨酚所致动物血清谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)升高(表1、表2);使升高的谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)水平明显降低(表3),精制姜油还可降低由四氯化碳损伤引起的肝细胞丙二醛(MDA)含量升高和超氧化歧化酶(SOD)活性升高(表4)。病理学检查表明,精制姜油同时可明显改善急性肝损伤动物的肝脏显微结构。精制姜油对四氯化碳和H2O2诱导的BRL肝细胞损伤具有明显的保护作用(表5),可使细胞培养上清液中的谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)水平明显降低(表5)。
2.在实验性肝纤维化模型中,用精制姜油治疗后可明显改善肝纤维化的程度,降低大鼠血清中谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、透明质酸(HA)、层粘连蛋白(LN)的升高(表6、表7),并可提高血清总蛋白(TP)和白蛋白(Alb)含量(表8),明显减少肝组织中的胶原纤维沉积和假小叶的形成。
3.精制姜油的保肝作用可能机制主要与其抗氧化有关,包括降低丙二醛(MDA),增加超氧化歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化酶(GSH-Px)的活性(表9、表10)。它的抗肝纤维化作用机制,除了抗氧化作用外,还包括通过降低体内的转移生长因子-β1(TGF-β1)对肝星状细胞(HSC)的激活作用(表11),减少胶原的合成以及降低基质金属蛋白酶组织抑制因子-1(TIMP-1)对基质金属蛋白酶(MMPs)的抑制作用而增加胶原的分解(表12)。
经动物实验证实,精制姜油小鼠口服的LD50为20ml/kg,95%可信限为18.7-21.2ml/kg。对中毒致死小鼠尸解,未见心、肝、脾、肺、肾、脑等主要实质性脏器有明显的病理改变。
由于上述技术方案运用,本发明与现有技术相比具有下列优点:
1.本发明提出了姜提取物在制备抗肝纤维化的药物中的应用,实验表明,其保肝和抗肝纤维化的作用是十分显著的,可以用于进一步开发新的保肝和抗肝纤维化药物。
2.由于姜提取物是纯天然物质,在对抗肝纤维化的过程中,不会产生其它副作用。
3.本发明通过控制解析的参数,以及采用柱层析法作进一步精制,获得了姜辣素含量大于50%的姜提取物,因而可以用于滴丸剂型的制备。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步描述:
实施例一:姜提取物的制备
超临界CO2流体(SFE-CO2)萃取流程如下:
CO2钢瓶→冷冻系统→高压泵→萃取釜→解析釜I→解析釜II→循环。
萃取的参数为:萃取釜压力为24mpa、温度为42℃,解析釜I的压力为12.4mpa,温度为60℃,解析釜II的压力为6.5mpa,温度为40℃,CO2流速为10kg/h.kg原料,时间为4-6小时。
中药材干姜粉碎过筛,粒度30-50目,称取10kg投入萃取釜中,经过4-6小时萃取后,从解析釜I和解析釜II中出料,为淡黄色的姜油180g,其具有浓烈的鲜姜天然香气和辛辣味,经放置后,底部有少量黄色沉淀。
经GC-MS定性定量鉴定了59个成分,姜辣素的含量为13.09%,其中,姜酚(gingerol)1.78%,姜烯酚(shogaol)2.36%,姜酮(zingerone)3.52%,姜烯(Zangiberene)4.43%,其他50多种单萜、倍半萜类物质,相对含量为46.83%。
将上述姜油采用柱层析的方法进一步提取,得到精制姜油,测定提取物中姜辣素的含量大于50%,即为所获得的姜提取物。
实施例二:用于防治肝纤维化的滴丸的制备
以实施例一获得的姜提取物作为滴丸内容药物,为了更好地解决主要药效成分姜酚的稳定性,将部分精制姜油用β-CD包合。缓释滴丸处方设计中同时含有提取物和包合物两部分,调节二者的比例,获得不同的释药效果。
对滴丸剂的辅料及配比首先进行预试验。称取一定量的辅料,加热熔融后加盖密闭并保温60℃,滴入甲基硅油中冷凝,待收缩成丸后,收集丸粒,吸去表面黏附的冷却剂,放入干燥器干燥即得。对各处方滴制成丸的难易情况从以下几个方面评价:圆整度、硬度、料液的黏度、流动性、易滴制程度等。
预试验结果显示,选定的处方随着PEG4000或PEG6000用量的增加,适当加大水不溶性载体的用量,系统地考察和筛选缓释滴丸剂的处方,选取方中EG6000,PEG20000,硬脂醇用量以及精制姜油中姜酚与β-CD包合物的配比为考察因素,每个因素各取4个水平,采用L16(45)正交试验表进行试验,以0~12h滴丸剂内姜酚的累积百分释放量(F)为考察指标,考察滴丸剂的缓释效果。
释放度试验:
参照《中国药典)2000版第一部转溶法项下操作。精密称取样品适量(相当于姜酚60mg),量取pH 1.2人工胃液500mL注入溶出杯中,控制温度(37±0.5)℃,转速为(100±1)r·min-1,1,2h后取样5mL,2h后转移至pH6.8的人工肠液中继续释放,分别于4,6,8,10,12h定时取样5mL,0.8μm微孔滤膜过滤,同时补充同体积同温度的溶出介质。弃去初滤液,续滤液按给定的色谱条件测定含量,由此获得不同时间药物的累积释放量。
优选使用水溶性载体PEG6000制成固体分散体,使药物分子不易形成聚集体,或使微粒不易形成聚附体,保证了药物的高度分散性,加快药物的溶出和吸收,构成缓释滴丸的速释部分。优选使用水不溶性的硬脂醇、β-CD的包合对药物释放起阻滞作用,构成缓释滴丸的缓释部分。用本法制成姜油缓释滴丸,使药物在体内缓慢释药达12h,故处方筛选的依据定为2h释药约40%,10h释药80%以上,制剂服用后既可使血药浓度快速达到治疗范围,又能持续维持一段时间的药物浓度。
实施例三:姜提取物滴丸治疗肝纤维化的应用试验
以实施例二获得的姜提取物滴丸进行各种对比试验,试验结果见下列各表,表明:
1.在整体动物急性肝损伤实验中,精制姜油具有明显的保肝作用,它可抑制四氯化碳和醋氨酚所致动物血清谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)升高(表1、表2);使升高的谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)水平明显降低(表3),精制姜油还可降低由四氯化碳损伤引起的肝细胞丙二醛(MDA)含量升高和超氧化歧化酶(SOD)活性升高(表4)。病理学检查表明,精制姜油同时可明显改善急性肝损伤动物的肝脏显微结构。精制姜油对四氯化碳和H2O2诱导的BRL肝细胞损伤具有明显的保护作用(表5),可使细胞培养上清液中的谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)水平明显降低(表5)。
2.在实验性肝纤维化模型中,用精制姜油治疗后可明显改善肝纤维化的程度,降低大鼠血清中谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、透明质酸(HA)、层粘连蛋白(LN)的升高(表6、表7),并可提高血清总蛋白(TP)和白蛋白(Alb)含量(表8),明显减少肝组织中的胶原纤维沉积和假小叶的形成。
3.精制姜油的保肝作用可能机制主要与其抗氧化有关,包括降低丙二醛(MDA),增加超氧化歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化酶(GSH-Px)的活性(表9、表10)。它的抗肝纤维化作用机制,除了抗氧化作用外,还包括通过降低体内的转移生长因子-β1(TGF-β1)对肝星状细胞(HSC)的激活作用(表11),减少胶原的合成以及降低基质金属蛋白酶组织抑制因子-1(TIMP-1)对基质金属蛋白酶(MMPs)的抑制作用而增加胶原的分解(表12)。
经动物实验证实,精制姜油小鼠口服的LD50为20ml/kg,95%可信限为18.7-21.2ml/kg。对中毒致死小鼠尸解,未见心、肝、脾、肺、肾、脑等主要实质性脏器有明显的病理改变。
表1精制姜油对四氯化碳致小鼠急性肝损伤的保护作用(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
ALT(U/L) |
AST(U/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.5ml/kg1ml/kg2ml/kg30mg/kg |
25.9±3.6136.8±32.6ΔΔ104.4±24.5*75.1±20.2**42.9±9.6**62.1±8.9** |
79.1±15.1112.9±22.9ΔΔ97.4±15.8*92.3±14.3*85.7±8.2**97.2±14.3* |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01。
表2精制姜油对醋氨酚致小鼠急性肝损伤的保护作用(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
ALT(U/L) |
AST(U/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.5ml/kg1ml/kg2ml/kg30mg/kg |
48.8±10.7177.9±42.6ΔΔ132.7±34.4*107.1±25.7**81.7±19.5**102.5±20.4** |
83.6±12.1123.3±9.8ΔΔ109.9±8.6*103.5±13.2**96.1±12.8**105.6±13.2** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01。
表3对大鼠CCl
4肝细胞损伤后ALT、AST的影响(n=4,
x±s)
分组 |
剂量 |
ALT(U.106cell-1) |
AST(U.106cell-1) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg30mg/kg |
17.1±3.531.8±2.7ΔΔ24.7±6.6*25.1±5.6*21.8±5.5**27.3±1.8* |
35.8±3.952.8±5.9ΔΔ43.2±7.4*40.8±6.5*40.1±2.5**44.4±5.1* |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01。
表4对大鼠CCl
4致肝细胞损伤后SOD、MDA的影响(n=4,
x±s)
分组 |
剂量 |
SOD(U.106cell-1) |
MDA(nmol.106cell-1) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg30mg/kg |
7.0±0.94.6±0.3ΔΔ4.8±0.55.5±0.6*5.7±1.0*4.9±0.3 |
7.6±0.618.3±2.7ΔΔ15.6±0.9*12.7±2.3**12.6±2.3**14.4±2.7** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01。
表5对大鼠H
2O
2致肝细胞损伤的保护作用(n=4,
x±s)
分组 |
剂量 |
ALT(U.106cell-1) |
GSH-PX(U.106cell-1) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg30mg/kg |
23.3±4.139.6±2.1ΔΔ34.3±3.3*32.7±4.7**32.2±4.2**33.3±3.9** |
26.7±2.018.8±2.6ΔΔ20.3±4.123.8±2.9*25.2±2.9**25.0±3.7* |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表6对大鼠CCl
4肝纤维化血清ALT和AST的影响(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
ALT(U/L) |
AST(U/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
54.6±4.4129.7±14.0ΔΔ116.5±14.2*102.4±16.7**96.9±11.6**109.5±15.9** |
80.6±8.9123.1±12.9ΔΔ112.2±12.9*107.2±13.4**101.5±12.8**109.4±18.6** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表7对大鼠CCl
4肝纤维化血清HA和LN的影响(n=8,
x±s)
分组 |
剂量 |
HA(μg/L) |
LN(μg/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组联苯双酯组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
164.9±19.9201.6±21.7ΔΔ179.7±24.7*177.5±13.9**171.7±18.9**178.2±14.9* |
80.3±8.8116.4±9.7ΔΔ106.7±5.9*101.1±11.7**95.9±12.4**102.6±9.9** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表8对大鼠CCl
4肝纤维化血清TP、Alb的影响(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
TP(g/L) |
Alb(g/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
72.9±5.660.4±7.4ΔΔ67.0±7.5*68.3±6.3**69.9±4.1**68.2±5.4** |
32.6±3.625.9±2.9ΔΔ28.9±4.4*29.7±3.4**29.9±3.4**29.7±3.6** |
与正常对照组比较,ΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表9对大鼠CCl
4肝纤维化血清SOD MDA的影响(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
SOD(U/mg.prot) |
MDA(nmol/mg.prot) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
64.7±8.949.9±10.1ΔΔ56.5±7.057.5±7.8*59.6±6.2**57.3±10.6* |
20.6±4.229.9±3.6ΔΔ26.5±4.0*24.8±4.9*24.4±3.3**25.9±3.2** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表10对大鼠CCl
4肝纤维化血清GSH-Px的影响(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
GSH-Px(U) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
209.2±20.8157.7±28.6ΔΔ179.4±22.8180.9±24.2*188.2±22.6**186.4±34.4* |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表11对大鼠CCl
4肝纤维化血清TGF-β1的影响(n=8,
x±s)
分组 |
剂量 |
TGF-β1(μg/L) |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
68.3±7.590.9±7.8ΔΔ84.6±6.1*81.6±6.3**80.1±8.3**83.7±8.5** |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01
表12对大鼠CCl
4肝纤维化血清TIMP-1mRNA的影响(n=10,
x±s)
分组 |
剂量 |
Positive cells |
正常对照组肝损伤模型组小剂量组中剂量组大剂量组秋水仙碱组 | 0.25ml/kg0.5ml/kg1ml/kg0.1mg/kg |
6.8±1.289.5±18.2ΔΔ72.6±15.3*67.4±13.5*45.1±12.4**69.3±11.8* |
与正常对照组比较,ΔΔP<0.01;与肝损伤模型组相比较,*P<0.05,**P<0.01