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CN111036315B - 一种微量样品的生成方法及生成芯片 - Google Patents

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CN111036315B CN201811198944.9A CN201811198944A CN111036315B CN 111036315 B CN111036315 B CN 111036315B CN 201811198944 A CN201811198944 A CN 201811198944A CN 111036315 B CN111036315 B CN 111036315B
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Abstract

本发明公开了一种微量样品的生成方法及生成芯片，利用两种带有相反电荷且分子量比例一致的聚电解质，在一对进液孔同时进样，使聚电解质溶液在主通道中汇合，利用复合物液液相分离可以在不同位点原位生成形状规整、排列有序、与实际生物体环境更为接近的微液滴，相较于传统液滴发生器的生成方式，即在同一位置生成的微液滴需要被液流带走以便持续生成的微液滴的模式，避免了现有的生成方式中由于生成的微液滴粘性粘连而需要大量液流进行冲刷以便持续生成液滴。并且，由于微液滴形成过程中，在主通道的两个聚电解质溶液的液体交汇界面处生成的微液滴，自身处于两个相邻的不同环境中，因此自身也就相应具有各向异性的性质。

Description

一种微量样品的生成方法及生成芯片
技术领域
本发明涉及生物医学技术领域，尤其涉及一种微量样品的生成方法及生成芯片。
背景技术
微液滴技术是在微尺度通道内，利用流动剪切力与表面张力之间的相互作用，将连续流体分割分离成离散的纳米级及以下体积的液滴的一种微纳技术。它是近年来发展起来的一种全新的操纵微小液体体积的技术。
在应用微液滴技术时，如何有效操控液滴生成方式，使其生成与实际生物体环境更为接近的微液滴，是本领域技术亟需解决的问题。
发明内容
有鉴于此，本发明实施例提供了一种微量样品的生成方法及生成芯片，用以生成与实际生物体环境更为接近的微液滴。
因此，本发明实施例提供了一种微量样品的生成方法，包括：
在经过预处理后的微量样品的生成芯片的至少一对进液孔中，分别以设定流速加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使所述进液孔中的聚电解质溶液分别通过所述生成芯片的进样通道在所述生成芯片的主通道汇合，并在设定复合时间内在所述主通道的原位形成具有设定直径的复合物微量样品；其中，在每对进液孔中加入的聚电解质溶液带有的正电荷和负电荷的电荷量比例一致。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，所述聚电解质溶液为FITC标记的聚赖氨酸溶液和DNA溶液；
所述FITC标记的聚赖氨酸溶液和所述DNA溶液的浓度比为1:1.5。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度在1mg/ml至4mg/ml；所述DNA溶液的浓度在1.5mg/ml至6mg/ml。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，每对进液孔中的设定流速相同；所述设定流速为小于或等于1μL/min。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，所述设定复合时间越长，所述聚电解质溶液的浓度越高，所述复合物微量样品的直径越大。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为1mg/ml，所述DNA溶液的浓度为1.5mg/ml；所述设定复合时间为4分钟，所述复合物微量样品的直径在20μm；
所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为4mg/ml，所述DNA溶液的浓度为6mg/ml；所述设定复合时间为1.5分钟至2分钟，所述复合物微量样品的直径在20μm。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，还包括：
在所述复合物微量样品生长到设定直径后，从所述进液孔和储液孔中移出废液。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，还包括：
在移出废液后，向所述进液孔和储液孔加入缓冲液。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，对所述微量样品的生成芯片进行预处理，具体包括：
采用浓硫酸处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；
采用氢氧化钠溶液处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；
采用盐酸溶液处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，对所述微量样品的生成芯片进行预处理之后，还包括：
采用缓冲液冲洗所述微量样品的生成芯片。
在一种可能的实现方式中，在本发明实施例提供的上述生成方法中，所述缓冲液为含有1％(w/w)聚乙烯吡咯烷酮的0.2×PBS缓冲液。
另一方面，本发明实施例还提供了一种微量样品的生成芯片，包括：基底，以及位于所述基底上的主通道、至少一对进液孔、与各所述进液孔一一对应的进样通道；其中，
所述进样通道的一端与对应的所述进液孔导通，另一端与所述主通道导通；
各对所述进液孔中的两个进液孔镜像位于所述主通道延伸方向的两侧，各对所述进液孔用于以设定流速分别加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使所述进液孔中的聚电解质溶液分别通过所述生成芯片的进样通道在所述生成芯片的主通道汇合，并在设定复合时间内在所述主通道的原位形成具有设定直径的复合物微量样品；其中，在每对进液孔中加入的聚电解质溶液带有的正电荷和负电荷的电荷量比例一致。
本发明实施例的有益效果包括：
本发明实施例提供的一种微量样品的生成方法及生成芯片，利用两种带有相反电荷且分子量比例一致的聚电解质，在一对进液孔同时进样，使聚电解质溶液在主通道中汇合，利用复合物液液相分离可以在不同位点原位生成形状规整、排列有序、与实际生物体环境更为接近的微液滴，相较于传统液滴发生器的生成方式，即在同一位置生成的微液滴需要被液流带走以便持续生成的微液滴的模式，避免了现有的生成方式中由于生成的微液滴粘性粘连而需要大量液流进行冲刷以便持续生成液滴。并且，由于微液滴形成过程中，在主通道的两个聚电解质溶液的液体交汇界面处生成的微液滴，自身处于两个相邻的不同环境中，因此自身也就相应具有各向异性的性质。
附图说明
图1和图2分别为本发明实施例提供的生成芯片的生成方法的流程图；
图3至图8分别为本发明实施例提供的微量样品的生成芯片的结构示意图；
图9为生成芯片中主通道的示意图。
具体实施方式
微流控芯片这一名词最初源于20世纪90年代Manz与Widmer提出微全分析系统(μTAS)。Manz教授成功的把微机电系统(MEMS)技术运用到分析化学领域，并在不久后在微芯片上实现了高速毛细管电泳，成果发表在《Science》等杂志上，从此这一领域迅速受到学界重视，并成为当今世界上最前沿的科技领域之一。芯片实验室(Lab on a chip)和微流控芯片(Microfluidic Chip)都是人们对这一领域提出的不同名称，而随着这一学科的应用从最初的分析化学拓展到多个研究与应用领域，以及研究者对这一学科的深入理解，微流控芯片已经成为对这一领域的统称。
微液滴技术是在微尺度通道内，利用流动剪切力与表面张力之间的相互作用，将连续流体分割分离成离散的纳米级及以下体积的液滴的一种微纳技术。它是近年来发展起来的一种全新的操纵微小液体体积的技术。迄今为止，文献中报道的微液滴类型主要有气-液相液滴和液-液相液滴两种。气-液相液滴由于容易在微通道中挥发和造成交叉污染而限制了其应用。液-液相液滴根据连续相和分散相的不同又分为水包油(O/W)，油包水(W/O)，油包水包油(O/W/O)以及水包油包水(W/O/W)等，可以克服液滴挥发、交叉污染等缺点，因而是微流控液滴技术发展的侧重所在。液-液相微液滴由于体积小、液滴样品间无扩散、可避免样品间的交叉污染、反应条件稳定、适当操控下可实现迅速混合等优点，是一种十分理想的微反应器，已经被用于化学和生命科学等领域研究微尺度条件下众多的反应及其过程。如：化学合成、微萃取、蛋白质结晶、酶合成及其活性分析、细胞包埋、液滴PCR等。
聚电解质复合物最初是在蛋白质间相互作用产生沉淀基础上被认识的。19世纪末，Kossel首次发现聚电解质复合物的阴阳离子间相互作用的静电本质。20世纪50年代，Michael系统地研究了由聚苯乙烯磺酸与聚乙烯基苄基三甲基氯化铵所形成的聚电解质复合物。此后，作为一种新型材料，聚电解质复合物PEC的形成、物理、化学性质及其应用研究有了较大的进展。在一定条件下，荷电相反的两种聚电解质相互作用能够形成聚离子复合物。参加反应的聚电解质包括聚合物酸、聚合物碱和聚合物盐类等，甚至涉及到某些生物大分子和离子型表面活性剂。除了有机的聚电解质外，无机化合物如聚磷酸盐和聚硅酸盐等也可以形成聚电解质复合物。在聚阴离子(PA)-聚阳离子(PC)复合过程中，一般采用可溶性的尤其是水溶性的线形或支链高分子。聚电解质复合物中的作用力包括静电作用、憎水相互作用、氢键和范德华力等。在反应中由于聚电解质分子的长链结构，当反应物分子之间某一对链段一旦发生复合反应，相邻链段由于不需要发生分子构型的显著变化，更加容易发生复合反应。聚电解质复合物与原来组分的性能有显著不同，从而有不同的应用范围。许多生物功能像基因信息的传递、酶的选择性和抗体-抗原作用等主要是基于生物大分子之间的相互作用或者生物大分子与小分子化合物之间的相互作用。由于聚电解质复合物在结构与性能上与生物大分子存在许多相似性(如表面电荷、亲疏水性、小分子物质的选择输运等)，因而聚电解质复合物在生物医用材料方面有着巨大的应用前景，如膜、生物相容性材料、药物控释体系、药物和酶载体等。
为了使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合附图对本发明作进一步地详细描述，显然，所描述的实施例仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其它实施例，都属于本发明保护的范围。
附图中各部件的形状和大小不反映真实比例，目的只是示意说明本发明内容。
本发明实施例提供的一种微量样品的生成方法，如图1所示，包括：
S101、在经过预处理后的微量样品的生成芯片的至少一对进液孔中，分别以设定流速加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使进液孔中的聚电解质溶液分别通过生成芯片的进样通道在生成芯片的主通道汇合，并在设定复合时间内在主通道的原位形成具有设定直径的复合物微量样品；其中，在每对进液孔中加入的聚电解质溶液带有的正电荷和负电荷的电荷量比例一致。
具体地，例如以图3所示的生成芯片为例，在进液孔301和302(或303和304)中，分别加入10微升的带有相反电荷的聚电解质溶液，受重力作用，两股液流会通过进样通道401和402(或403和404)在主通道200处汇合，并在主通道200中间形成复合物微滴(即复合物微量样品)。
具体地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，采用具有进液孔和主通道的生成芯片作为平台，利用两种带有相反电荷且分子量比例一致的聚电解质，在一对进液孔同时进样，使聚电解质溶液在主通道中汇合，利用复合物液液相分离可以在不同位点原位生成形状规整、排列有序的微液滴，原位生成指的是微液滴从成核到形成合适粒径大小的微液滴均是在同一位置形成的，不同位点指的是如图9所示在主通道200中两种聚电解质溶液的液体交汇界面为生成微液滴的位点。相较于传统液滴发生器的生成方式，即在同一位置生成的微液滴需要被液流带走以便持续生成的微液滴的模式，避免了现有的生成方式中由于生成的微液滴粘性粘连而需要大量液流进行冲刷以便持续生成液滴。并且，如图9所示，由于微液滴形成过程中，在主通道200的两个聚电解质溶液的液体交汇界面处生成的微液滴A，自身处于两个相邻的不同环境中，因此自身也就相应具有各向异性即不对称粒子(Janus Particle)的性质。
具体地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，可以直接采用生物大分子作为液滴的生成原料即加入进液孔的原料，避免了其他合成物质对生物体的外源刺激。并且，采用上述生成方法生成的微液滴与实际生物体环境更为接近：具体地，生成的聚电解质复合物的微液滴具有较高的pH稳定性和温度稳定性；生成的微液滴提供了相对分子拥挤的状态，更接近实际生物体(细胞)的微环境；生成的微液滴提供了生物分子大量富集的状态；生成的微液滴提供了增强的催化转化活性；生成的微液滴提供了相较于周围水环境较低的介电常数。
并且，在本发明实施例提供的上述生成方法中，可以通过对生成微液滴的聚电解质溶液的浓度、组分、复合时间等参数进行控制，以便对生成的微液滴进行精确调控。需要指出的是由于高分子自身的特殊性质，所使用聚电解质溶液的参数会随着聚电解质种类的变化有较大的改变。并且，微液滴的组分与聚电解质溶液的组分密切相关，但是也会受到聚电解质自身性质的影响，例如复合效率等。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，带有相反电荷的聚电解质溶液可以为FITC标记的聚赖氨酸溶液(PLL)和DNA溶液，具体地，DNA溶液可以是寡聚核苷酸(ss-Oligo)溶液。并且，由于需要聚电解质溶液中的正负电荷量刚好中和，因而需要考虑所使用的聚电解质溶液的电荷密度，具体地，FITC标记的聚赖氨酸溶液和DNA溶液的浓度比为1:1.5。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度一般在1mg/ml至4mg/ml；DNA溶液的浓度一般在1.5mg/ml至6mg/ml。即比较适宜形成微液滴的FITC标记的聚赖氨酸溶液和DNA溶液的浓度为1.0mg/mL：1.5mg/mL至4.0mg/mL：6.0mg/mL。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，每对进液孔中的设定流速一般相同，以便在主通道中两种聚电解质溶液的液体交汇界面相对稳定。并且，设定流速越小，生成的微液滴效果越好，但生成效率较差，因此，综合考虑，设定流速一般为小于或等于1μL/min。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，依据所需微液滴的大小(直径)和聚电解质的浓度来确定复核时间。一般来说，复设定复合时间越长，聚电解质溶液的浓度越高，复合物微量样品的直径越大。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，在FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为1mg/ml，DNA溶液的浓度为1.5mg/ml时，设定复合时间为4分钟，复合物微量样品的直径在20μm；
在FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为4mg/ml，DNA溶液的浓度为6mg/ml时，设定复合时间为1.5分钟至2分钟，复合物微量样品的直径在20μm。
具体地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，可以在两个1.5mL的离心管中分别加入DNA(1.5mg/mL)和FITC标记的PLL(1.0mg/mL)溶液各200μL，混合(Vortex)10秒后静置30分钟，之后使用移液枪吸取10微升的微滴悬浊液至生成芯片对应的进液孔301和302(或303和304)中。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，如图1所示，还可以包括：
S102、在复合物微量样品生长到设定直径后，从进液孔和储液孔中移出废液。
具体地，例如以图3所示的生成芯片为例，当复合物微滴(即复合物微量样品)成长到径约10-20微米时，用针筒移去进液孔301和302中的废液以及其它4个孔(进液孔303和304，储液孔501和502)中的废液。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，如图1所示，还可以包括：
S103、在移出废液后，向进液孔和储液孔加入缓冲液。以对复合物微量样品起到稀释作用，以备后续电学检测使用。
具体地，例如以图3所示的生成芯片为例，在移出废液后，向6个孔(进液孔301、302、303和304，储液孔501和502)中加入含有1％(w/w)聚乙烯吡咯烷酮的0.2×PBS缓冲液各10微升。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，对微量样品的生成芯片进行预处理，如图2所示，具体包括：
S201、采用浓硫酸处理微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；例如，采用98％的浓硫酸处理10分钟，之后用二次去离子水冲洗10分钟，以起到羟基活化的作用，使玻璃基底的表面更亲水；
S202、采用氢氧化钠溶液处理微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；例如，采用约1mol/L的氢氧化钠溶液处理2小时，之后用二次去离子水冲洗10分钟，以起到中和处理，去主通道和进样通道的油脂；
S203、采用盐酸溶液处理微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗，例如，采用约1mol/L的盐酸溶液处理10分钟，使主通道和进样通道保持中性，再用二次去离子水冲洗10分钟，以起到中和羟基的作用。
并且，在生成芯片不用时一般保存在二次去离子水中，防止干燥，否则要重新进行上述预处理。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成方法中，如图2所示，对微量样品的生成芯片进行预处理之后，还可以包括：
S204、采用缓冲液冲洗微量样品的生成芯片，以起到对其表面进行动态涂层，抑制电泳中的电渗流和聚赖氨酸(PLL)的表面吸附，以利于后续微量样品的检测使用。例如，在生成芯片每次使用之前，用0.2×PBS缓冲液配制1％(w/w)的聚乙烯吡咯烷酮溶液，冲洗生成芯片10分钟。
基于同一发明构思，本发明实施例还提供了一种微量样品的生成芯片，如图3所示，包括：基底100，以及位于基底100上的主通道200、至少一对进液孔301和302(303和304)、与各进液孔301和302(303和304)一一对应的进样通道401和402(403和404)；其中，
进样通道401和402(403和404)的一端与对应的进液孔301和302(303和304)导通，另一端与主通道200导通；
各对进液孔301和302(303和304)中的两个进液孔301和302(或303和304)镜像位于主通道200延伸方向的两侧，即可以认为一对进液孔301和302(或303和304)到主通道200的距离相同，一对进液孔301和302(或303和304)的连线与主通道200的延伸方向相互垂直，一对进液孔301和302(或303和304)相对于主通道200构成对流结构；各对进液孔用于以设定流速分别加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使进液孔中的聚电解质溶液分别通过生成芯片的进样通道在生成芯片的主通道汇合，并在设定复合时间内在主通道的原位形成具有设定直径的复合物微量样品；其中，在每对进液孔中加入的聚电解质溶液带有的正电荷和负电荷的电荷量比例一致。
具体地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，由进样通道401和402(403和404)和主通道200构成的对流结构较为简单，在使用时，以生成芯片作为平台，在经过预处理后的生成芯片的至少一对进液孔301和302(303和304)中，分别加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使进液孔301和302(303和304)中的聚电解质溶液分别通过进样通道401和402(403和404)在主通道200汇合，并在主通道200中形成复合物微量样品，即生成聚电解质凝聚物液滴。由于液滴发生方式以聚阳离子和聚阴离子为反应原料，以具有镜像分布的进液孔401和402(403和404)的生成芯片作为平台，可以以更简便的方式生成与实际生物体环境更为接近的微液滴，使所得液滴具有形态高度均一化，排列规整等特点。相较于现有的液滴技术，具有pH和温度的双稳定性、相对分子拥挤的状态、生物分子的相对富集、增强的催化转化活性、相较于周围水环境较低的介电常数等优点。并且利用生成芯片作为平台，可以具有高通量、检测方便等优点。
具体地，本发明实施例提供的上述生成芯片，可以应用于体外诊断、药性筛选、细胞培养、免疫荧光检测、人造细胞等所需的微液滴体系，具体可应用于聚电解质凝聚物液滴的生成。
微流控芯片技术(Microfluidics)可以把生物、化学、医学分析过程的样品制备、反应、分离、检测等基本操作单元集成到一块微米尺度的芯片上，自动完成分析全过程。由于其可以降低成本，检测时间短，灵敏度高等优点，可以在生物、划线、医学领域展现巨大的前景。微流控芯片又可称为芯片实验室(lab-on-a-chip)，具有微型化、集成化等优点，可以将生物、化学等实验室的基本功能微缩到一个仅有几平方厘米的芯片上。本发明实施例提供的微量样品的生成芯片可以为微流控芯片。并且，微量样品可以为尺寸在纳米级或微米级的连续的流体，或者也可以为离散的液滴，在此不做限定。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3至图8所示，在主通道200的至少一端，主通道200与一对进液孔301和302(303和304)通过进样通道401和402(403和404)导通。
具体地，如图4所示，可以仅在主通道200的一端设置一对进液孔301和302。或者，如图3、图5至图8所示，可以在主通道200的两端分别设置一对进液孔301和302(303和304)。或者，还可以在主通道200的其他位置处设置至少一对进液孔，在此不做限定。
具体地，当设置多对进液孔时，可以在其中一对或多对进液孔分别加入反应溶液以便在主通道200生成微液滴，而其他对进液孔作为储液孔，以排出废液，或者作为检测孔，以进行电学检测，在此不做限定。例如图3所示的结构中，可以在进液孔301和302分别加入反应溶液以便在主通道200生成微液滴，而进液孔303和304作为储液孔，以排出废液，或者作为检测孔，以进行电学检测，在此不做限定。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3至图8所示，主通道200可以为直线型通道，即主通道200沿着直线延伸，以有利于在主通道生成的微量样品流动；如图3、图4、图6至图8所示，进样通道401和402(403和404)可以垂直于主通道200的延伸方向，以有利于加入进液孔301和302(303和304)的液体(或液滴)可以通过进样通道401和402(403和404)进入主通道200汇合。
或者，如图5所示，进样通道401和402(403和404)也可以与主通道200的延伸方向具有一定的角度(该角度不为直角)，在此不做限定。值得注意的是，一对进液孔301和302(或303和304)连接的进样通道401和402(或403和404)应与主通道200具有相同的夹角，对于不同对进液孔301和302(或303和304)连接的进样通道401和402(或403和404)与主通道200的夹角无限制。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3、图5、图7和图8所示，在主通道200的两端，主通道200可以分别与两对进液孔301和302(303和304)通过进样通道401和402(403和404)导通，各进样通道401、402、403、404的长度相同，以便多对液孔301和302(303和304)可以交替使用。
或者，如图6所示，进样通道401和402的长度相同，进样通道403和404的长度相同，而进样通道401和403的长度不同。以便根据所需生成的微量样品性质选择对应不同进样通道长度的进液孔。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3、图4、图7和图8所示，还可以包括：位于基底100上的储液孔501和502，与储液孔501和502一一对应的连接通道601(与储液孔501对应)和602(与储液孔502对应)；
连接通道601和602的一端与对应的储液孔501和502导通，另一端与主通道200导通。
具体地，储液孔501和502的作用为在生成微量样品后排出废液使用，也可以为进行电学检测时加入缓冲液稀释微量样品使用，还可以为电学检测时检测孔使用，在此不做限定。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3、图4和图8所示，在主通道200的至少一端，主通道200与储液孔501和502通过连接通道601和602导通。
具体地，如图3所示，可以在主通道200的两个端部分别设置储液孔501和502，如图4和图8所示，可以仅在主通道200的一个端部设置储液孔501。在主通道200的端部设置储液孔501和502有利于液体从主通道200流动至储液孔501和502。或者，如图7所示，也可以在主通道200的非端点部位设置储液孔501，例如在主通道200的中间位置设置储液孔501，在此不做限定。在主通道200的中间位置设置储液孔501，且主通道200的两端各设置一对进液孔301和302(303和304)时，可以分别利用进液孔301和302(303和304)在主通道200生成不同或相同的微量样品，利用同一储液孔501排出废液。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3至图8所示，主通道200可以为直线型通道；如图3、图4和图8所示，连接通道601和602与主通道200的延伸方向可以一致，以有利于液体从主通道200流动至储液孔501和502。并且，在主通道200的一端，可以由一对进液孔301和302(303和304)连接的进样通道401和402(403和404)以及一储液孔501(502)连接的连接通道601(602)构成十字结构的流道，即十字对流结构。
或者，如图7所示，连接通道也可以与主通道200的延伸方向不一致，例如两者为垂直关系，在此不做限定。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，如图3所示，在主通道200的两端，主通道200分别与两个储液孔501和502通过连接通道601和602导通，各连接通道601和602的长度相同。或者，连接通道601和602的长度也可不同，在此不做限定。实际应用时可以根据所需生成的微量样品性质选择对应的连接通道601和602的长度。
值得注的是，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，对主通道200、进样通道401和402(403和404)和连接通道601和602的宽度不进行限定，三者的宽度可以相同，也可以不同。并且，对主通道200、进样通道401和402(403和404)和连接通道601和602的长度也不进行限定，可以根据实际需要设定。并且，对于进液孔301和302(303和304)和储液孔501和502的形状也不进行限定，可以是圆形等形状。
可选地，在本发明实施例提供的上述生成芯片中，基底100的材料一般为玻璃，以便将生成芯片的制备兼容至现有的显示面板生产线中，以降低成本。或者，基底100也可以采用其他材料，在此不做限定。
具体地，本发明实施例提供的上述生成芯片可以通过光刻刻蚀工艺进行制备，有利于和现有的显示设备生产线兼容，以降低生产成本。具体地生成芯片的制备方法可以包括以下步骤：
(1)光刻：在涂覆光刻胶的具有铬层的玻璃基底上放置掩膜，在光刻机上曝光7s，曝光后，将玻璃基底浸入在0.7％NaOH溶液中显影15s-20s，之后立即在流动的超纯水中漂洗干净，置于干燥箱中120℃坚膜30分钟。
(2)去铬：坚膜后，玻璃基底置于去铬液中轻轻震荡2分钟左右，待曝光部位的铬层脱落后，用超纯水洗净；
(3)第一次湿法刻蚀：使用透明胶带将玻璃基底无铬层的一面进行保护，将玻璃基底浸入呈有刻蚀液的塑料器皿中，在常温下进行湿法刻蚀30分钟，玻璃基底用超纯水冲洗干净；
(4)光胶去除：用去光胶液处理腐蚀后的玻璃基底，待玻璃基底表面由红棕色变为亮黄色，取出洗净；
(5)再次去铬：用去铬液除去剩余铬层；
(6)第二次湿法刻蚀：把玻璃基底背面和正面的反应腔体和主通道部分保护，其余部分裸露，湿法刻蚀30分钟，刻蚀后将玻璃基底用超纯水冲洗干净；
(7)第三次湿法刻蚀：去除主通道部分的保护层，其余部分裸露，再次湿法刻蚀100分钟并清洗干净。
值得注意的是，上述制备过程中出现的时间和温度等参数仅是举例说明，并不作为限定条件。
本发明实施例提供的上述微量样品的方法及生成芯片，利用两种带有相反电荷且分子量比例一致的聚电解质，在一对进液孔同时进样，使聚电解质溶液在主通道中汇合，利用复合物液液相分离可以在不同位点原位生成形状规整、排列有序、与实际生物体环境更为接近的微液滴，相较于传统液滴发生器的生成方式，即在同一位置生成的微液滴需要被液流带走以便持续生成的微液滴的模式，避免了现有的生成方式中由于生成的微液滴粘性粘连而需要大量液流进行冲刷以便持续生成液滴。并且，由于微液滴形成过程中，在主通道的两个聚电解质溶液的液体交汇界面处生成的微液滴，自身处于两个相邻的不同环境中，因此自身也就相应具有各向异性的性质。
显然，本领域的技术人员可以对本发明进行各种改动和变型而不脱离本发明的精神和范围。这样，倘若本发明的这些修改和变型属于本发明权利要求及其等同技术的范围之内，则本发明也意图包含这些改动和变型在内。

Claims (10)

1.一种微量样品的生成方法，其特征在于，包括：
在经过预处理后的微量样品的生成芯片的至少一对进液孔中，分别以设定流速加入带有相反电荷的聚电解质溶液，使所述进液孔中的聚电解质溶液分别通过所述生成芯片的进样通道在所述生成芯片的主通道汇合，并在设定复合时间内在所述主通道的原位形成具有设定直径的复合物微量样品；其中，在每对进液孔中加入的聚电解质溶液带有的正电荷和负电荷的电荷量比例一致；
所述聚电解质溶液为FITC标记的聚赖氨酸溶液和DNA溶液；所述FITC标记的聚赖氨酸溶液和所述DNA溶液的浓度比为1:1.5。
2.如权利要求1所述的生成方法，其特征在于，所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度在1mg/ml至4mg/ml；所述DNA溶液的浓度在1.5mg/ml至6mg/ml。
3.如权利要求1所述的生成方法，其特征在于，每对进液孔中的设定流速相同；所述设定流速为小于或等于1μL/min。
4.如权利要求1所述的生成方法，其特征在于，所述设定复合时间越长，所述聚电解质溶液的浓度越高，所述复合物微量样品的直径越大。
5.如权利要求4所述的生成方法，其特征在于，所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为1mg/ml，所述DNA溶液的浓度为1.5mg/ml；所述设定复合时间为4分钟，所述复合物微量样品的直径在20μm；
所述FITC标记的聚赖氨酸溶液的浓度为4mg/ml，所述DNA溶液的浓度为6mg/ml；所述设定复合时间为1.5分钟至2分钟，所述复合物微量样品的直径在20μm。
6.如权利要求1所述的生成方法，其特征在于，还包括：
在所述复合物微量样品生长到设定直径后，从所述进液孔和储液孔中移出废液。
7.如权利要求6所述的生成方法，其特征在于，还包括：
在移出废液后，向所述进液孔和储液孔加入缓冲液。
8.如权利要求1所述的生成方法，其特征在于，对所述微量样品的生成芯片进行预处理，具体包括：
采用浓硫酸处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；
采用氢氧化钠溶液处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗；
采用盐酸溶液处理所述微量样品的生成芯片，之后采用二次去离子水冲洗。
9.如权利要求8所述的生成方法，其特征在于，对所述微量样品的生成芯片进行预处理之后，还包括：
采用缓冲液冲洗所述微量样品的生成芯片。
10.如权利要求9所述的生成方法，其特征在于，所述缓冲液为含有1％(w/w)聚乙烯吡咯烷酮的0.2×PBS缓冲液。
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