CN105112357B - 来源于胎盘的贴壁细胞及其在疾病治疗中的应用 - Google Patents

Abstract

提供了通过给予需要其的受试者来源于胎盘的贴壁基质细胞来治疗疾病的方法。这些疾病包括：骨骼肌缺陷、神经病理性疼痛、和心肌梗塞。还提供了其中将所给予的贴壁基质细胞在2维或3维生长条件下培养的方法。也提供了其中所给予的细胞中的至少70％贴壁细胞来自于胎盘的母体或胎儿部分的方法。

Description

来源于胎盘的贴壁细胞及其在疾病治疗中的应用

本申请是2010年11月29日提交的题为“来源于胎盘的贴壁细胞及其在疾病治疗中的应用”的中国专利申请201080054298.4的分案申请。

相关申请

本申请要求2009年11月30日提交的美国临时专利申请第61/272,985 号和2010年8月6日提交的美国临时专利申请第61/371,459号的优先权，其公开内容全文通过引用并入本文。

技术领域

本发明，在其一些实施例中，涉及来源于胎盘的贴壁细胞(粘附细胞， adherentcell)及其在疾病治疗中的应用。

背景技术

近年来，大量的研究工作集中在间充质基质细胞(MSC)在各种医学应用包括损伤器官例如脑、心脏、骨骼和肝脏的组织修复以及支持骨髓移植 (BMT)中的治疗潜力。间充质基质细胞，一种从例如骨髓、脂肪组织、胎盘和血液中获得的异种细胞群，基于各种生物活性因子的影响，能够分化成不同类型的细胞，例如网状内皮细胞、成纤维细胞、脂肪细胞、成骨前体细胞。因此，在再生医学中已对作为建造用于修复损伤或取代病理组织的新组织如骨骼、软骨和脂肪的基础以及遗传性疾病和获得性疾病的治疗方法的间充质基质细胞进行了广泛研究[Fibbe and Noort,Ann N Y Acad Sci(2003)996:235-44；Horwitz et al.,Cytotherapy(2005)7(5):393-5；Zimmet and Hare,Basic Res Cardiol(2005)100(6):471-81]。此外，间充质基质细胞的多向能力、其简单的分离和培养、及其高离体扩增潜能使其成为一种有吸引力的治疗工具[Fibbe and Noort,supra；Minguell et al,Exp BiolMed(Maywood)(2001)226(6):507-20]。

最新出现的资料表明间充质基质细胞逃脱了同种异体反应细胞的识别，并且被认为是免疫豁免的[Le Blanc et al，Exp Hematol(2003)31(10):890-6]。因为具有低免疫原性，所以间充质基质细胞不被患者的免疫系统排斥，因此认为不要求做人白细胞抗原配型。

来源于胎盘的间充质基质细胞呈现许多对从其他组织中分离出的间充质基质细胞来说是常见的标记物，例如CD105、CD73、CD90和CD29，并且没有造血细胞、内皮细胞的和滋养细胞-特异性细胞标记物的表达。在适当条件下培养来源于胎盘的间充质基质细胞，已实现脂肪形成、骨形成、和神经元分化[Yen et al，Stem Cells(2005)23(1):3-9]。此外，已显示从胎盘中分离并在体外培养的间充质基质细胞与间充质基质细胞类似，是免疫豁免的[Li et al，Cell Res(2005)15(7):539-47]。因此，胎盘提供不会引起伦理学争议且易于获得的、用于实验应用和临床应用的间充质基质细胞的来源 [Zhang et al,Exp Hematol(2004)32(7):657-64]。

发明内容

根据本发明一些实施方式的一个方面提供来源于胎盘的纯化的贴壁细胞群、由本文中所述的可用于治疗可以收益于细胞或器官移植的疾病的任何贴壁细胞群所制备的条件培养基(conditioned media)。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞包含选自CD73、CD90、CD29、 CD105和D7-fib的阳性标记物表达；亦即，在一些实施方式中，贴壁细胞表达CD73、CD90、CD29、CD105或D7-fib中的一种或多种。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞包含选自CD3、CD4、CD45、 CD80、HLA-DR、CD11b、CD14、CD19、CD34、CD31、CD200、KDR、和CD79的阴性标记物表达；亦即，在一些实施方式中，贴壁细胞不表达 CD3、CD4、CD45、CD80、HLA-DR、CD11b、CD14、CD19、CD34、CD31、CD200、KDR、或CD79。

根据本发明的一些实施方式，在三维(3D)培养中培养贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，三维(3D)培养包括三维生物反应器。

根据本发明的一些实施方式，在灌注下实施贴壁细胞在三维培养中的培养。

根据本发明的一些实施方式，实施贴壁细胞的培养达至少3天。

根据本发明的一些实施方式，实施贴壁细胞的培养直到至少10％的贴壁细胞在增殖。

根据本发明的一些实施方式，在二维(2D)培养中培养贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，至少10％的贴壁细胞处于增殖状态；亦即至少10％的贴壁细胞在增殖。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞与在相同条件下生长并允许分化的来自骨髓的贴壁细胞相比，较少成为成骨谱系。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞与在相同条件下生长并允许分化的来自骨髓的贴壁细胞相比，较少成为脂肪形成谱系。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种来源于胎盘的贴壁细胞群，其中该细胞群包含至少70％的来自胎盘母体部分的贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的母体部分包括基蜕膜、壁蜕膜，或者同时包括基蜕膜和壁蜕膜。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种来源于胎盘的贴壁细胞群，其中所述细胞群包含至少70％的来源于胎盘胚胎部分(fetal portion) 的贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的胚胎部分包括羊膜。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的胚胎部分是由羊膜构成。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的胚胎部分包括绒毛膜绒毛(chorionicvilli)。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的胚胎部分是由绒毛膜绒毛构成。

根据本发明的一些实施方式，细胞群是如下的细胞群：其中不多于 3.5％、不多于3％、不多于2％、或者不多于1％的来自母体部分的贴壁细胞群表达CD200，正如由流式细胞仪并采用确定阴性表达的同种型对照所测量的。

根据本发明的一些实施方式，所述贴壁细胞具有小于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞的细胞直径。

根据本发明的一些实施方式，所述贴壁细胞具有高于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞的细胞增殖能力。

根据本发明的一些实施方式，当在混合淋巴细胞培养中进行测试时，所述贴壁细胞能够抑制免疫反应的程度低于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种从包含任何上述细胞群的培养物中分离出的条件培养基。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种药物组合物，其包括：作为活性成分的本文中所述任何细胞群或任何本文中所述条件培养基、以及药学上可接受载体。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种治疗受益于细胞或器官移植的医学疾病的方法，该方法包括：向需要其的受试者给予治疗有效量的任何本文中所述的药物组合物，因此治疗受试者。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供本文中所述的任何细胞群或条件培养基的应用，其是用于治疗可以受益于细胞或器官移植的疾病的药物的制造。

根据本发明的一些实施方式，所述疾病是选自缺血、外周动脉疾病 (PAD)、严重肢体缺血(CLI)、下肢缺血、中风、缺血性血管病、肾脏的血管病、缺血性心脏病、心肌缺血、冠状动脉疾病(CAD)、动脉粥样硬化性心血管疾病、左主冠状动脉疾病、动脉阻塞性疾病、外周缺血、外周血管疾病、动脉硬化、视网膜病变、视网膜修复、重构紊乱(重塑紊乱，remodelingdisorder)、林岛综合征、遗传性出血性毛细血管扩张、缺血性血管病、伯格氏病(Buerger’sdisease)、缺血性肾病、胎盘缺血、与生殖相关的疾病、移植物抗宿主病、实体器官移植、造血干细胞移植、糖尿病、结缔组织损伤、癌症、癌前期、骨癌、骨肉瘤、骨转移、骨折、烧伤、关节软骨缺陷、深部伤、伤口延迟愈合、溃疡延迟愈合、软骨下骨囊肿、骨质疏松、骨关节炎、骨退化、软骨损伤、关节软骨缺陷、腱损伤、自身免疫性疾病、代谢紊乱、银屑病、神经病理性疼痛、周围神经损伤、神经退行性疾病、肾移植的支持(support of kidneytransplantation)、和炎症性疾病。

根据本发明的一些实施方式，所述疾病是选自心力衰竭、心肌梗塞、神经病理性疼痛、骨骼肌缺陷、中风、和缺血性心脏病。

根据本发明一些实施方式的一个方面，所述方法是治疗骨骼肌缺陷的方法，包括向需要其的受试者给予治疗有效量的包含来源于胎盘的贴壁基质细胞的组合物，因此治疗骨骼肌缺陷。

根据本发明一些实施方式的一个方面，所述方法是治疗神经病理性疼痛的方法，包括向需要其的受试者给予治疗有效量的包括来源于胎盘的贴壁基质细胞的组合物，因此治疗神经病理性疼痛。

根据本发明的一些实施方式，神经病理性疼痛与炎性疼痛、糖尿病多发性神经病变、人类免疫缺陷病毒(HIV)感觉神经病变、中风后综合征、缺血、或多发性硬化有关。

根据本发明一些实施方式的一个方面，所述方法是治疗心肌梗塞的方法，包括：向需要其的受试者给予治疗有效量的包含来源于胎盘的贴壁基质细胞的组合物，因此治疗心肌梗塞。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种包含来源于胎盘的贴壁基质细胞的组合物的应用，其是用于治疗骨骼肌缺陷、神经病理性疼痛、心肌梗塞的药物的制造。

根据本发明一些实施方式的一个方面，提供一种药物组合物，其包括作为活性成分的用于治疗骨骼肌缺陷、神经病理性疼痛或心肌梗塞的来源于胎盘的贴壁基质细胞。

根据本发明的一些实施方式，所述药物组合物是一种用于治疗与炎性疼痛、糖尿病多发性神经病变、人类免疫缺陷病毒(HIV)感觉神经病变、中风后综合征、缺血、或多发性硬化有关的神经病理性疼痛的药物组合物。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞表达CD73、CD90、CD29、CD105 或D7-fib中的一种或多种。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞不表达CD3、CD4、CD45、CD80、 HLA-DR、CD11b、CD14、CD19、CD34、CD31、CD200、CD271、KDR、或CD79。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞表达β-内啡肽、强啡肽A、亮氨酸-脑啡肽、或甲硫氨酸-脑啡肽中的一种或多种。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞抑制T细胞活性。

根据本发明的一些实施方式，贴壁细胞包含至少70％的来自胎盘母体部分的贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，不多于3.5％、不多于3％、不多于2％、或不多于1％的来自母体部分的贴壁细胞表达CD200，正如利用流式细胞仪并使用确定阴性表达的同种型对照所测量的。

根据本发明的一些实施方式，胎盘的母体部分包括基蜕膜、壁蜕膜、或者同时包括基蜕膜和壁蜕膜。

根据本发明的一些实施方式，通过采用三维培养条件进行培养而获得贴壁细胞。

根据本发明的一些实施方式，三维(3D)培养包括三维生物反应器。

根据本发明一些实施方式的一个方面，在灌注下实施三维培养。

根据本发明一些实施方式的一个方面，实施贴壁细胞的培养达至少3 天。

根据本发明一些实施方式的一个方面，实施贴壁细胞的培养直到至少10％的所述贴壁细胞在增殖。

除非另有规定，本文中使用的所有技术和/或科学术语具有与本发明所属领域的技术人员所一般理解含义相同的含义。尽管在本发明实施方式的实施中可以使用类似于或等同于本文中所述的方法和材料，但下面将对示例性方法和/或材料加以描述。在发生矛盾的情况下，包括定义在内的本专利说明书将起支配作用。另外，这些材料、方法和例子仅仅是说明性的，并非意图一定是限制性的。

附图说明

本文中仅通过例子并参照附图来描述本发明的一些实施方式。现在详细参照附图，应强调的是通过例子来揭示详细内容，并且目的是说明性地描述本发明实施方式。在这方面，通过描述以及附图本领域技术人员将明了如何实施本发明的实施方式。

在附图中：

图1是胎盘结构及各部分的示意图。

图2A-图2C是显示从胎盘、基蜕膜(A)、绒毛间质(B)和羊膜(C)中所获得贴壁细胞的形态的显微照片。

图3是显示细胞直径与从不同胎盘部分中所得细胞的传代数的关系图。

图4是显示细胞群加倍与从不同胎盘部分中所得细胞的传代数的关系图。

图5A-图5B是显示各种胎盘部分的体外免疫调节特征的直方图。图5A 示出了四个不同实验的结果，而图5B示出了图5A中所得结果的平均值，包括标准差。

图6A-图6C是显示从各种胎盘部分中所得贴壁细胞的条件培养基对内皮细胞增殖的效果的棒图。

图7示出了经PLX处理(“PLX”)和空白对照(“Sham”)大鼠中的收缩力值。“I”-创伤后的立即移植；“DEL”-创伤7天后移植；“FT”-快速抽动收缩力；“TET”-巨大收缩力。

图8A和图8B示出了爪压力测试中PLX细胞对炎性疼痛的效果。图 8A绘出了在发炎的爪中作为时间函数的爪压阈值。图8B示出了对侧爪的相同信息。

图9A和图9B示出了在给予PLX细胞后在发炎的爪(图9A)和对侧的爪(图9B)中作为时间函数的标出的爪体积(paw volume)。

图10A和图10B 显示了PLX细胞对神经病理性疼痛中的同侧爪(图10A) 和对侧爪(图10B)的机械敏感性(von Frey测试)的影响。

图11A和图11B 绘出了在神经病理性疼痛中PLX细胞对同侧爪(图11A) 和对侧爪(图11B)热敏感性的影响(Hargreaves测试)。

图12A-图12E绘出了β-内啡肽(图12A)、强啡肽A(图12B)、亮氨酸- 脑啡肽(图12C)、甲硫氨酸-脑啡肽(图12D)、以及9种不同的PLX批次的总水平(图12E)。

具体实施方式

本发明，在一些实施方式中涉及来源于胎盘的贴壁细胞及其在疾病治疗中的应用。

在详细说明至少本发明的一个实施方式之前，应理解的是本发明不必将其应用限制在以下说明中所展示或由实施例所示例的详细内容。本发明可以采用其他实施方式或者用各种方式实施。

胎盘代表了被赋予独特的免疫抑制特性及组织再生特性的细胞容易获得的来源。来源于胎盘的经纯化贴壁细胞群或者对这些细胞群进行调整所获得的细胞对于治疗可以受益于细胞或器官移植的疾病是有价值的。

另外，本发明人已发明出从胎盘不同部分中分离出经高度纯化的细胞群的方法(见下面的实施例部分)。出人意料地发现从胎盘母体部分中分离的细胞群的特点是具有明显不同于从胚胎胎盘部分中分离的其他细胞群的独特形态特性和功能特性(参见下面的实施例部分)。这些细胞对于大量医学疾病的治疗是有价值的。

因此，根据本发明的一方面，提供一种贴壁细胞群，其包含至少大约 70％、75％、80％、85％、90％、92％、94％、95％、96％、98％、99％或者甚至100％的从胎盘母体部分中获得的细胞。

根据本发明的另一个方面，提供一种细胞群，其包含至少大约70％、 75％、80％、85％、90％、92％、94％、95％、96％、98％、99％或者甚至100％的从胎盘胚胎部分中获得的贴壁细胞。

根据具体实施方式，胎盘的胚胎部分包括羊膜。

根据具体实施方式，胎盘的胚胎部分是由羊膜构成。

根据具体实施方式，胎盘的胚胎部分包括绒毛膜绒毛。

根据具体实施方式，胎盘的胚胎部分是由绒毛膜绒毛构成。

本文中使用的术语“胎盘”是指将正在发育的胚胎与子宫壁相连的哺乳动物器官。出生后胎盘被排出(并且称为产后胎盘)。

优选地对胎盘进行充分时间的灌注以除去残留的细胞(例如，血液)。

本文中使用的“胎盘的胚胎部分”是指胎盘中不是母体的任何部分(参见图1的结构说明)。

本文中使用的“胎盘的母体部分”是指胎盘中不是胚胎的任何部分(参见图1的结构说明)，例如从基蜕膜或壁蜕膜中获得的胎盘的部分。

胎盘的胚胎部分包括羊膜、绒毛、或者绒毛膜绒毛，参见图1。

切开胎盘以获得细胞的方法，对于本领域技术人员是熟知的。在下面的实施例部分中将对一些方法加以描述。

将组织标本在生理缓冲溶液例如磷酸盐缓冲的生理盐水(PBS)或者 Hank氏缓冲液中清洗。通过用消化酶处理组织(见下文)或者/并且切碎再冲洗组织部分经过尼龙过滤器、或者通过轻缓的移液 (Falcon,Becton,Dickinson,San Jose,CA)再清洗培养基，而制作单细胞悬浮液。

通过用消化酶例如胶原酶、胰蛋白酶和/或分散酶、和/或有效浓度的透明质酸酶或DNA酶、和乙二胺四乙酸(EDTA)，于25-50℃的温度下对组织进行10分钟到3小时的处理，因此可获得从胎盘各种部分中分离的贴壁细胞。然后，可使细胞通过孔径为20微米到1毫米的尼龙或纱布过滤器。以100×g到3000×g的转速于4-50℃的温度下对细胞进行1分钟到1小时的离心(参见美国专利第7,078,230号)。

优选地在无菌条件下实施细胞恢复。一旦获得了分离细胞，则让它们附着在粘附材料上例(如，设置成一个表面)，因此分离贴壁细胞。

本文中使用的短语“贴壁细胞”是指为了在体外生长而依赖于贴壁(即需要附着于表面)的细胞。

本文中使用的“粘附材料”是指合成的、自然形成的、或者合成加自然形成的、具有可将细胞保持在表面上的化学结构(例如，带电荷的表面暴露基团)的非细胞毒性(即生物相容)的材料。

可用于本发明此方面的粘附材料的例子包括但不限于：聚酯、聚丙烯、聚烯烃、聚氟氯乙烯、聚氯乙烯、聚苯乙烯、聚砜、醋酸纤维素、玻璃纤维、陶瓷颗粒、基质胶、细胞外基质成分(例如，纤维连接蛋白、玻璃粘连蛋白、软骨粘连蛋白、层粘连蛋白)、胶原蛋白、聚乳酸、葡聚糖、和惰性金属纤维。

可利用本领域中熟知的方法来实施纯化的其他步骤或者贴壁细胞的富集(例如，通过使用标记物表达的FACS，如本文下文中的进一步说明)。

根据本发明的用于培养的基础培养基的非限制性例子包括：Eagle最低必需培养基、ADC-1、LPM(无牛血清白蛋白)、F10(HAM)、F12(HAM)、 DCCM1、DCCM2、RPMI 1640、BGJ培养基(有和无Fitton-Jackson改良)、 Eagle基础培养基(BME-添加Earle氏盐基)、Dulbecco氏改良Eagle培养基 (DMEM-无血清)、Yamane、IMEM-20、Glasgow改良的Eagle培养基(GMEM)、Leibovitz L-15培养基、McCoy 5A培养基、培养基M199(M199E-具有Earle 氏盐基)、培养基M199(M199H-具有Hank氏盐基)、Eagle最低必需培养基 (MEM-E-具有Earle氏盐基)、Eagle最低必需培养基(MEM-H-具有Hank氏盐基)和Eagle最低必需培养基(MEM-NAA，具有非必需氨基酸类)等等，包括培养基199、CMRL 1415、CMRL 1969、CMRL 1066、NCTC 135、MB 75261、MAB 8713、DM 145、Williams’G、Neuman&Tytell、Higuchi、 CDB 301、MCDB 202、MCDB 501、MCDB 401、MCDB 411、MDBC 153 的大量其他培养基。用于本发明的优选培养基是DMEM。这些培养基和其他有用培养基可从美国纽约的GIBCO，Grand Island和以色列的BiologicalIndustries，Bet HaEmek等公司获得。在《酶学中的方法(Methods In Enzymology)》中总结了这些培养基中的部分，第L VⅢ卷“细胞培养(Cell Culture)”第62-72页，由WilliamB.Jakoby和Ira H.Pastan ed.，Academic出版有限公司出版。

可用例如血清(例如牛或人或者其他种属的胚胎血清)以及可选择地或者，用生长因子、维生素(例如抗坏血酸)、细胞因子、盐类(例如B-甘油磷酸盐)、甾体药物(例如地塞米松)以及激素(例如生长激素)、地塞米松、血小板生成素、白细胞介素3、白细胞介素6、白细胞介素7、巨噬细胞集落刺激因子、c-试剂盒配体/干细胞因子、骨保护素配体、胰岛素、胰岛素样生长因子、表皮生长因子、成纤维细胞生长因子、神经生长因子、纤毛亲神经因子、血小板源性生长因子、和骨形态发生蛋白，以皮克/ml到毫克/ml 水平的浓度补充到培养基。

还公认的是可把其他成分加入到培养基中。这种成分可以是抗生素、抗霉菌剂、白蛋白、氨基酸类、以及细胞培养领域已知的其他成分。

可以在纯化工艺的各步骤中实施细胞群，即母体或者胚胎胎盘细胞。例如，可以基于胚胎或母体细胞的核型分析来认定雄性胚胎的胎盘(即，XX 细胞是母体而XY细胞是胚胎，见下面的实施例部分)。

一旦获得，来源于胎盘的贴壁细胞可以用作在培养中增殖。细胞可传代到二维条件或三维条件。应理解的是，尽管在分离后可立即将细胞转移到三维构造的基质、或者可在二维条件后传代到三维装置。

本文中使用的短语“二维培养”是指对细胞进行处理以适于细胞生长条件同时让细胞在一个平面中生长的培养。本发明的二维培养中的条件被设计成使贴壁细胞能够扩增。

本文中使用的短语“三维培养”是指对细胞进行处理以适合于细胞生长的条件(包括支架)从而允许在三维空间实现细胞与细胞的接触的培养。可理解的是，在生命有机体(或者组织)中的细胞原位环境是在三维构造中。细胞被其他细胞包围。它们被支持在允许建立各种局部微环境的细胞外基质纳米尺度纤维的复杂网络中。它们的细胞外配体不仅介导对基底膜的附着，而且进入多种血管和淋巴管。将氧、激素和营养素运送给细胞，并带走废产物。将本发明三维培养的条件设计成模拟这种环境，正如以下进一步的例示。

应理解的是，二维培养或三维培养的条件是使贴壁细胞能够扩增。

本文中使用的术语“扩大”和“扩增”是指细胞的基本上较少分化的维持以及最终的细胞生长，即伴随增加无分化的细胞群的增加(例如，至少 2倍)。

本文中使用的术语“维持”和“维护”是指基本上较少分化的细胞更新，即基本上稳定的细胞群并且伴随这种稳定性无细胞分化。

对于二维培养，通常在3±0.2×10³个细胞/cm²的培养密度下实施胎盘细胞的接种。在接种后，通常将细胞培养物在组织培养箱中在湿润条件下在5％CO₂中于37℃进行培养。

根据本发明的一个实施方式，使所述细胞在无抗生素补充的培养基中生长至少2个传代、至少3个传代、或者至少4个传代。

根据本发明的一个实施方式，使细胞进行至少4个传代、至少5个传代、至少6个传代、至少7个传代、或者至少个8传代。应理解的是，通常使细胞传代到达到大约70-90％的汇合，通常在3-5天后(例如，1-3次复制)。

对于三维培养，可在分离后立即将贴壁细胞转移到三维构造的基质中，或者作为选择在二维(2D)条件后可传代到三维装置。有时，在二维培养与三维培养之间可能需要进行细胞的低温保存。

因此，根据一些实施方式的粘附材料是构造成三维培养，因此提供基本上增加用于细胞附着的有效附接表面，从而模拟组织的基本结构即，胎盘的生长基质。

对于大规模的生产，可以在三维生物反应器中实施培养。

这种生物反应器的例子包括但不限于：推流式生物反应器、连续搅拌釜式生物反应器、固定床生物反应器(填充床生物反应器)、和流化床生物反应器。

Celligen生物反应器(New Brunswick Scientific公司)能够在受控的条件 (例如pH值、温度和氧水平)且恒定地灌注细胞生长培养基下实现贴壁细胞的三维扩增。此外，可以监测细胞培养物中的葡萄糖、乳酸盐、谷氨酰胺、谷氨酸盐和铵的浓度水平。贴壁细胞的葡萄糖消耗率和乳酸盐形成率使得研究人员能够测量细胞生长率并确定收获时间。

可以用于本发明的其他三维生物反应器包括但不限于：连续搅拌釜式生物反应器，其中将培养基连续地加入生物反应器并且将所使用的培养基连续地抽出，以维持生物反应器中的时间恒定稳态。搅拌釜式生物反应器可用于流化床(悬浮载体)或者纤维床篮(可从例如纽约Edison的New Brunswick Scientific公司获得)、固定床生物反应器、气升式生物反应器(其中通常将空气加入到向上流动从而形成气泡的中央通风管的底部并且在柱的顶部除去排气)、带Polyactive泡沫的生物反应器[正如Wendt，D.et al， BiotechnolBioeng 84:205-214(2003)的描述]、径向流灌注生物反应器中的多孔支架[如Kitagawa etal，Biotechnology and Bioengineering 93(5):947-954 (2006)中所述]、带支架或载体的径向流生物反应器、空心纤维生物反应器、和微载体。可以用于本发明的其他生物反应器描述于美国专利第6,277,151、 6，197，575、6,139,578、6,132,463、5,902,741和5,629,186号。

在一个示例性实施方式中，总共接种200±100×10⁶个细胞，接种3-10 ×10⁶个细胞/克载体、或者接种0.06-0.2×10⁶个细胞/ml。根据一个示例性实施方式，在2000-9000细胞/cm²的FibraCel盘中实施细胞接种。

当至少大约10％的细胞在增殖时则可以收获细胞，同时避免不受控制的分化和衰老。

实施培养达至少约2天、3天、4天、5天、6天、7天、10天、14天、 20天、1个月或更长时间。应理解的是，对于在生物反应器内的培养来说可延长该时间段。可以在培养基的连续流动下，实施三维培养中的贴壁细胞培养。也可以通过实施传代来增加细胞数。应理解的是，可通过改变培养基而延长并改善培养条件。

根据本发明的一个实施方式，在培养基灌注下实施细胞培养。通常，灌注率取决于贴壁细胞培养基中的葡萄糖浓度。因此，根据本发明的教导，当葡萄糖浓度约为500mg/L、约为550mg/L、或者约为600mg/L时可以更换培养基。

本发明的一些实施方式的贴壁细胞包含至少大约10％、28％、30％、 50％、80％或者更多的增殖细胞(正如可以通过利用FACS监测S相和G2/M 相来检测)。

本发明的一些实施方式的贴壁细胞可包括至少一种“基质细胞表现型”。

本文中使用的“基质细胞表现型”是指是从骨髓中获得的基质(即，间充质)细胞所特有的结构或功能表现型。

因此，例如细胞可具有纺锤形。作为选择或另外，所述细胞可表达基质细胞所特有的标记物或一系列标记物(例如表面标记物)。基质细胞表面标记物(阳性和阴性)的例子包括但不限于CD105⁺、CD29⁺、CD44⁺、CD73⁺、CD90⁺、D7-fib⁺、CD3^-、CD4^-、CD34^-、CD45^-、CD80^-、CD5^-、CD20^-、CD11b^-、 CD14^-、CD19^-、CD79^-、HLA-DR^-、CD31^-、KDR^-、和FMC7^-。

其他基质细胞标记物包括但不限于酪氨酸羟化酶、巢蛋白和H-NF。

根据本发明的一个具体实施方式，贴壁细胞包括从胎盘母体部分或者胚胎部分获得的细胞，不表达干细胞标记物CD271。

本文中使用的短语“干细胞”是指不在最后分化的细胞。

根据本发明的一个具体实施方式，从胎盘胚胎部分(例如，由绒毛膜绒毛组成、或者包括绒毛膜绒毛)获得的贴壁细胞的特征为阳性CD200表达 (见下面的实施例部分)。

根据本发明的一个具体实施方式，不多于3.5％、不多于3％、不多于 2％、或者不多于1％的来自母体部分的贴壁细胞表达CD200，正如利用流式细胞仪并使用确定阴性表达同种型对照所测量的。

基质细胞所特有的功能表现型的例子包括但不限于：T细胞抑制活性 (它们不刺激T细胞却相反地抑制T细胞，例如当在混合淋巴细胞培养中进行测试时)、和造血干细胞支持活性。

根据一个示例性实施方式，本发明的贴壁细胞与从生长骨髓中获得的贴细胞相比较少参与分化成成骨系或脂肪形成系，并且在相同条件下分化。例如，根据一个示例性实施方式，当在WO2010026575的实施例4-7(其全部内容以参考的方式并入本文中)中所述的条件下，本发明的贴壁细胞不分化成成骨系或脂肪形成系。

根据本发明的一个实施方式，本发明的贴壁细胞能够抑制受试者中的免疫反应。

本文中使用的短语“抑制受试者中的免疫反应”是指降低或抑制受试者中响应于抗原(例如，外源细胞或其一部分)所发生的免疫反应。可被贴壁细胞抑制的免疫应答包括体液免疫应答和细胞免疫反应，它们分别涉及到经由抗体和T-淋巴细胞(T细胞的增殖)特异性地识别病原体抗原。在实施例中给出了判定贴壁细胞是否抑制免疫反应的方法的一些例子。

根据一个具体实施方式，从母体胎盘获得的贴壁细胞能够抑制免疫反应的程度低于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞(例如，至少低大约2％、5％、10％、15％、20％、30％、40％或50％)。在一些实施方式中，通过测量细胞抑制混合淋巴细胞培养的能力来判定对免疫反应的抑制。在其他实施方式中，通过在体外试验中测量由植物血凝素(PHA)引起的对T细胞大量形成的抑制，而确定对免疫反应的抑制。

根据一个具体实施方式，母体胎盘的贴壁细胞的细胞直径小于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞(例如，大约2％、5％、10％、15％、20％或30％)。

根据一个具体实施方式，母体胎盘的贴壁细胞的细胞增殖能力高于来源于胎盘胚胎部分的贴壁细胞(例如，大约2％、5％、10％、15％、20％或 30％)。

根据一个具体实施方式，所述细胞可以是自体的、同基因的、异基因的或者异种的来源。

根据另一个具体实施方式，通过用遗传方法对细胞进行改良而表达外源蛋白。

根据又一个具体实施方式，用遗传学方法对细胞进行改良。

应理解的是，可以从包含所述细胞/有所述细胞组成的培养物中分离出条件培养基。

本文中使用的“条件培养基”是在特定培养期后富含在本文中所述培养物(即，包含/由任何上述细胞群组成)中所存在的分泌因子的培养基。

通过在生长培养基中在适于制造条件培养基的条件下培养上述细胞，而制作出条件培养基。

生长培养基可以是适于让本发明胎盘粘壁细胞生长的任何生长培养基，如上文中所述。可利用营养因子例如氨基酸类(例如，L-谷氨酰胺)、抗氧化剂(例如，β-巯基乙醇)和生长因子来补充生长培养基。在高达20％的有效浓度范围内添加血清和/或血清代替物。

例如，将细胞在生长培养基中培养充分长的时间，从而允许分泌因子的充分蓄积以支持免疫抑制和/或血管新生。通常，通过于37℃下培养1-5 天来调整培养基。然而，可以通过评估条件培养基对免疫抑制和/或血管新生的实施来调整培养期，例如在实施例中所述。在一些实施方式中，为了进行免疫抑制而对培养基进行3-5天的调整，为了进行血管新生而对培养基进行24-72小时的调整。

对用于调整培养基的培养装置的选择，是基于条件培养基的生产规模和目的。大规模生产优选涉及到生物反应器的使用，如上文中所述。在培养基中积累了充分的因子后，从细胞中分离并收集生长培养基(即，条件培养基)。应理解的是，可以在额外的培养期内重复使用细胞来进一步调整各批次的培养基，假设这些细胞保持调整培养基的能力。

本发明的条件培养基可直接使用(如以下进一步的说明)或者进行提取例如通过盐过滤以浓缩有效因子。为了将来的使用，优选于-80℃下冷冻条件培养基。

胚胎部分的贴壁细胞可以用于各种研究装置。例如用于测试与母体部分有关的贴壁细胞的生物学特性(例如，形态、大小)(见例如实施例部分)。

本文中所述的来源于胎盘的经纯化细胞群、或者本文中所述的任何条件培养基，可以用于治疗可受益于细胞或器官移植的疾病。

本文中使用的术语“疾病”是指可受益于细胞(例如基质细胞)或器官移植的任何病状(疾病、状态、综合症状或失调)。其例子包括缺血性疾病、心血管疾病、神经系统疾病、胃肠道疾病、整形外科病、造血病、肾病和肝病，例如但不限于外周动脉疾病(PAD)(如肢体缺血和严重肢体缺血(CLI))、下肢缺血、缺血性血管病、中风、缺血性心脏病、心肌缺血、急性心肌梗塞(MI)、冠状动脉疾病(CAD)、动脉粥样硬化性心血管疾病、左主冠状动脉疾病、动脉阻塞性疾病、外周缺血、外周血管疾病、动脉硬化、视网膜病变、视网膜修复、整形疾病、林岛综合征(von Hippel-Lindau syndrome)、遗传性出血性毛细血管扩张缺血性血管病、伯格氏病、糖尿病、肾血管病、缺血性肾病、肝病、胎盘缺血、与繁殖相关的疾病、移植物抗宿主病(GVHD)、实体器官移植、造血干细胞移植(HSCT)、胃肠(GI)道的炎症疾病、溃疡性结肠炎、伤口延迟愈合、溃疡延迟愈合、癌症(例如乳腺癌)、癌前期、以结缔组织损伤为特征的疾病(如骨癌、骨肉瘤、骨转移、骨折、视乳头变性疾病、成骨不全(OI)、烧伤、关节软骨缺陷、深部伤、伤口延迟愈合、溃疡延迟愈合、代谢紊乱、银屑病、神经病理性疼痛、周围神经损伤、肾移植的支持、软骨下-骨囊肿、骨质疏松、骨关节炎(OA)、骨退化、软骨损伤、关节软骨缺陷、腱损伤(例如伸张过度引起的腱损伤)和韧带损伤。

缺血性疾病是由于因各种因素引起血管构造中血流降低而造成组织变成缺血状态的医学疾病，所述各种因素例如是血管腔的收缩、血凝块的形成、血管闭塞、血管炎、血管收缩、或者血粘度增加。缺血性疾病包括：外周血管疾病、缺血性心脏病(例如，缺血性心肌病、心肌梗塞、缺血性心力衰竭)、缺血性脑血管疾病(包括中风)、缺血性肾病、缺血性肺病、以及与感染性疾病有关的缺血性疾病。在整个本申请中列出了缺血性疾病(本文中也称为缺血)的其他非限制性例子。

外周血管疾病是由于因例如血管腔收缩、血凝块形成、血管闭塞、血管炎、血管收缩、或血液浓度增加所造成外周动脉血流降低而导致外周组织变成缺血状态的医学疾病。与外周血管病相关的疾病包括：慢性动脉阻塞性疾病(如动脉硬化脉管炎和伯格氏病)、和进行性全身性硬化、系统性红斑狼疮、雷诺氏病、振动综合症、动脉瘤、和血管炎。在整个本申请中列出了外周缺血性疾病的其他非限制性例子。

根据一个具体实施方式，所述疾病是心力衰竭、心肌梗塞、神经病理性疼痛、骨骼肌缺陷和缺血性心脏病。

根据一个具体实施方式，本文中所述的条件培养基用于治疗中风。

本文中使用的“中风”或者“急性脑血管发作”是指由于大脑血液供应失调所造成的快速形成的大脑功能损失。其原因可以是：由血栓形成或栓塞所造成的缺血(缺乏葡萄糖和氧供应)、或者出血(蛛网膜下腔出血或者脑出血)。

应理解的是，本发明的细胞能够在受试者中引起免疫抑制和/或免疫耐受并且/或者能够引起血管新生。因此，贴壁细胞或者从贴壁细胞中获得的条件培养基可用于治疗需要血管新生和/或免疫抑制和/或免疫耐受的任何疾病。这种疾病包括但不限于自身免疫性疾病和炎症性疾病(包括急性和慢性炎性疾病)，包括但不限于心血管疾病、类风湿病、腺体疾病、胃肠疾病、皮肤病、肝病、神经系统疾病、肌肉疾病、肾病、与繁殖相关的疾病、结缔组织病、及系统性疾病。

自身免疫性心血管疾病的例子包括但不限于动脉粥样硬化(Matsuura E.et al，Lupus.1998；7Suppl 2:S135)、心肌梗塞(Vaarala O.Lupus.1998；7 Suppl 2:S132)、血栓形成(Tincani A.et al，Lupus 1998；7Suppl 2:S107-9)、韦格纳肉芽肿、多发性大动脉炎、川崎病(Praprotnik S.et al，Wien Klin Wochenschr 2000年8月25日；112(15-16):660)、抗第八因子自身免疫性疾病(Lacroix-Desmazes S.et al，Semin Thromb Hemost。2000；26(2):157)、坏死性小血管血管炎、显微镜下多血管炎、变应性肉芽肿血管炎、微量免疫病灶坏死性和新月体肾炎(Noel LH.Ann Med Interne(巴黎)。2000年5月； 151(3):178)、抗磷脂综合征(Flamholz R.et al，J Clin Apheresis 1999；14(4):171)、抗体引起的心力衰竭(Wallukat G.et al，Am J Cardiol.1999 年6月17；83(12A):75H)、血小板减少性紫癜(Moccia F.Ann Ital Med Int.1999 年4月-6月；14(2):114；Semple JW.et al，Blood1996年5月15；87(10):4245)、自身免疫性溶血性贫血(Efremov DG.et al，Leuk Lymphoma1998年1月； 28(3-4):285；Sallah S.et al，Ann Hematol 1997Mar；74(3):139)、恰加斯氏病中的心脏自身免疫(Cunha-Neto E.et al，J Clin Invest 1996年10月 15；98(8):1709)、和抗辅助T淋巴细胞自身免疫(Caporossi AP.et al，Viral Immunol 1998；11(1):9)。

自身免疫性类风湿病的例子包括但不限于类风湿关节炎(Krenn V.et al，Histol Histopathol 2000年7月；15(3):791；Tisch R，McDevitt HO.Proc Natl Acad Sciunits S A 1994年1月18；91(2):437)和强直性脊柱炎(Jan Voswinkel et al，ArthritisRes 2001；3(3):189)。

自身免疫性腺体疾病的例子包括但不限于：胰腺疾病、I型糖尿病、甲状腺疾病、甲状腺机能亢进、甲状腺炎、自发性自身免疫性甲状腺炎、慢性淋巴性甲状腺炎、粘液性水肿、卵巢自身免疫、自身免疫性抗精子不孕症、自身免疫性前列腺炎和I型自身免疫多腺体综合征包括但不限于胰脏的自身免疫性疾病、I型糖尿病(Castano L.and EisenbarthGS.Ann.Rev.Immunol. 8:647；Zimmet P.Diabetes Res Clin Pract 1996年10月；34Suppl:S125)、自身免疫性甲状腺疾病、甲状腺机能亢进(Orgiazzi J.Endocrinol etal，Ciin North Am 2000年6月；29(2):339；Sakata S.et al，Mol Cell Endocrinol 1993年3 月；92(1):77)、自发性自身免疫性甲状腺炎(Braley-Mullen H.and Yu S，J Immunol2000年12月15日；165(12):7262)、桥本氏甲状腺炎(Toyoda N.et al， NipponRinsho.1999年8月；57(8):1810)、粘液性水肿(Mitsuma T.Nippon Rinsho.1999年8月；57(8):1759)、卵巢自身免疫(Garza KM.et al,J Reprod Immunol 1998年2月；37(2):87)、自身免疫性抗精子不孕症(Diekman AB.et al,Am J Reprod ImmunoL.2000年3月；43(3):134)、自身免疫性前列腺炎 (Alexander RB.et al，Urology 1997年12月；50(6):893)、和I型自身免疫多腺体综合征(Hara T.et al，Blood.1991年5月1日；77(5):1127)。

自身免疫性胃肠疾病的例子包括但不限于：慢性炎症肠道疾病(Garcia HerolaA.et al，Gastroenterol Hepatol.2000年1月；23(1):16)、乳糜泻(Landau YE.andShoenfeld Y.Harefuah 2000年1月16日；138(2):122)、结肠炎、回肠炎、和克罗恩病。

自身免疫性皮肤病的例子包括但不限于自身免疫性大疱性皮肤病，例如但不限于寻常型天疱疮、大疱性类天疱疮和落叶性天疱疮。

自身免疫性肝病的例子包括但不限于：肝炎、自身免疫性慢性活动性肝炎(FrancoA.et al，Clin Immunol Immunopathol 1990年4月；54(3):382)、原发性胆汁性肝硬化(Jones DE.Clin Sci(Colch)1996Nov；91(5):551； Strassburg CP.et al，Eur JGastroenterol HepatoL.1999年6月；11(6):595)、和自身免疫性肝炎(Manns MP.JHepatol 2000年8月；33(2):326)。

自身免疫性神经系统疾病的例子包括但不限于：多发性硬化(Cross AH. et al,JNeuroimmunol,2001年1月；2(1-2):1)、阿尔茨海默氏病(Oron L.et al，J Neural TransmSuppL.1997；49；77)、重症肌无力(Infante AJ.and Kraig E，Int Rev Immunol 1999；18(1-2):83；Oshima M.et al，Eur J Immunol 1990年11 月；20(12):2563)、神经病变、自主神经病变(Kornberg AJ.J Clin Neurosci.2000 年5月；7(3):191)、格林巴利综合症和自身免疫性神经病变(Kusunoki S.Am J Med Sci.2000年4月；319(4):234)、肌无力、Lambert-Eaton肌无力综合征 (Takamori M.Am J Med Sci.2000年4月；319(4):204)；副肿瘤性神经系统疾病、小脑萎缩、副肿瘤性小脑萎缩、和僵人综合征(Hiemstra HS.et al，Proc Natl Acad Sci units S A2001年3月27日；98(7):3988)；非副肿瘤性僵人综合征、进行性小脑萎缩、脑炎、Rasmussen氏脑炎、肌萎缩侧索硬化、小舞蹈病、抽动-秽语综合征、和自身免疫性多内分泌腺病(Antoine JC.and Honnorat J.Rev Neurol(巴黎)2000年1月；156(1):23)；免疫异常性神经病变 (Nobile-Orazio E.et al，Electroencephalogr ClinNeurophysiol Suppl 1999；50:4-19)；获得性神经性肌强直、多关节挛缩症(Vincent A.etal，Ann N Y Acad Sci.1998年5月13日；841:482)、神经炎、视神经炎(Soderstrom M.etal，J Neurol Neurosurg Psychiatry 1994年5月；57(5):544)、和神经退行性疾病。

自身免疫性肌肉疾病的例子包括但不限于：肌炎、自身免疫性肌炎和原发性干燥综合征(Feist E.et al，Int Arch Allergy Immunol 2000Sep；123 (1):92)、及平滑肌自身免疫性疾病(Zauli D.et al，Biomed Pharmacother,1999 年6月；53(5-6):234)。

自身免疫性肾病的例子包括但不限于：肾炎和自身免疫性间质性肾炎(KellyCJ.,J Am Soc Nephrol,1990年8月；1(2):140)。

与繁殖相关的自身免疫性疾病的例子包括但不限于：反复胚胎丢失 (TincaniA.et al，Lupus 1998；7Suppl 2：S 107-9)。

自身免疫性结缔组织病的例子包括但不限于：耳病、自身免疫性耳病 (Yoo TJ.etal，Cell Immunol,1994年8月；157(1):249)和内耳的自身免疫性疾病(Gloddek B.et al,Ann N Y Acad Sci 1997年12月29日；830:266)。

自身免疫系统性疾病的例子包括但不限于：系统性红斑狼疮(Erikson J. et al,Immunol Res 1998；17(l-2):49)和系统性硬化(Renaudineau Y.et al，Clin Diagn LabImmunol.1999年3月；6(2):156)；Chan OT.et al,Immunol Rev 1999 年6月；169:107)。

此外，贴壁细胞或者条件培养基可用于治疗与移植物移植相关的疾病，包括但不限于移植物排斥、慢性移植物排斥、亚急性移植物排斥、超急性移植物排斥、急性移植物排斥、和移植物抗宿主病。

本文中使用的术语“治疗”是指抑制或者阻止病状的发展并且/或者导致病状的减轻、缓解、或复原。本领域技术人员将理解可利用各种方法和检测来评价病状的发展，并且类似地也可利用各种方法和检测来评价病状的减轻、缓解或复原。术语“治疗”也可指代减轻或降低与该病状相关的症状。

利用贴壁细胞或条件培养基治疗的受试者可以是任何受试者(例如，哺乳动物)，例如人受试者或者饲养动物，包括但不限于：诊断出或者患有可以受益于基质细胞移植的病状的马(即马)、牛、山羊、绵羊、猪、犬、猫、骆驼、羊驼、美洲驼和牦牛。

因为所述的细胞可以是天然的细胞或者可以是经基因技术改良从而获得有用的细胞系(见美国专利申请第20030219423号)。

所述细胞可以是新鲜的或者是冷冻(例如，冷冻保存)制品。

根据医学疾病，可给受试者给予其他化学药物(例如，免疫调节剂、化疗剂等)或者细胞。

所述细胞，虽然其特征为免疫抑制活性，但仍然会引起寄主或供者所产生的不良免疫应答。业者已开发出各种方法来降低对非自体细胞排斥的可能性。这些方法包括：抑制受体免疫系统、或者在移植前将非自体细胞包囊在免疫隔离的半渗透膜中。

包囊技术一般分类为微包囊，涉及小球形赋形剂和大包囊，涉及较大的平片和中空纤维膜(Uludag，H.et al,哺乳动物细胞包囊。Adv Drug Deliv Rev.2000；42:29-64)。

制备微胶囊的方法在本领域是熟知的并且包括例如由Lu MZ et al公开的方法，用海藻酸盐和α-苯氧基肉桂叉-乙酰化聚(烯丙基胺)进行细胞包囊。 BiotechnolBioeng.2000,70:479-83，Chang TM和Prakash S.enzymes,cells and geneticallyengineered microorganisms.Mol Biotechnol.2001,17:249-60，以及 Lu MZ et al，Cellencapsulation with alginate and alpha-phenoxycinnamylidene-acetylated poly(allylamine).J Microencapsul.2000,17:245-51。

例如，通过用甲基丙烯酸2-羟基乙酯(HEMA)、甲基丙烯酸(MAA)和甲基丙烯酸甲酯(MMA)的三元共聚物壳与改良胶原蛋白复合而制备微胶囊，形成2-5μm的胶囊厚度。可以用额外的2-5μm三元聚合物壳对这种微胶囊进一步包囊，以赋予带负电荷的平滑表面并且使血浆蛋白吸附最小化(Chia，S.M.et al，Multi-layered microcapsules for cellencapsulation Biomaterials. 200223:849-56)。

其他微胶囊是基于海藻酸盐，海产多糖类(Sambanis，A.Encapsulated islets indiabetes treatment.Diabetes TechnoL.Ther.2003,5:665-8)或者其衍生物。例如，可以通过在氯化钙存在下使聚阴离子海藻酸钠和纤维素硫酸钠与聚阳离子聚(亚甲基-co-胍)盐酸盐发生聚电解质复合反应而制备微胶囊。

应理解的是，当使用较小的胶囊时可改善细胞包囊。因此，当把胶囊大小从1mm减小至400μm时，可改善品质控制、机械稳定性、扩散性能、和包囊的细胞的体外活性(CanapleL.et al，Improving cell encapsulation through size control.J Biomater SciPolym ED.2002；13:783-96)。此外，发现具有良好控制孔径(小达7nm)的纳米多孔生物胶囊、定做的表面化学和精细的微体系结构可成功地使细胞的微环境免疫隔离(WilliamsD.Small is beautiful：microparticle and nanoparticle technology in medicaldevies.Med Device Technol.1999,10：6-9；Desai，T.A.Microfabrication technologyfor pancreatic cell encapsulation.Expert Opin Biol Ther.2002,2:633-46)。

免疫抑制剂的例子包括但不限于甲氨蝶呤、环磷酰胺、环孢素、环孢素A、氯喹、羟基氯喹、柳氮磺吡啶(sulphasalazopyrine)、金盐、D-青霉胺、来氟米特、硫唑嘌呤、阿那白滞素(anakinra)、英夫利昔单抗(REMICADE)、依那西普、TNF-α抑制剂(一种以抗炎细胞因子为目标的生物制剂)、和非甾体抗炎药(NSAID)。非甾体抗炎药的例子括但不限于：乙酰水杨酸、水杨酸胆碱、二氟尼柳(diflunisal)、水杨酸镁、双水杨酯、水杨酸钠、双氯芬酸、依托度酸、非诺洛芬、氟比洛芬、吲哚美辛、酮洛芬、酮咯酸、甲氯芬酯、萘普生、萘丁美酮、保泰松、吡罗昔康、舒林酸、托美汀、对乙酰氨基酚、布洛芬、Cox-2抑制剂和曲马多。

此外，应理解的是，细胞或条件培养基可以本身的形式使用，或者优选地作为还包括药学上可接受载体的药物组合物的一部分的形式而使用。

本文中使用的“药物组合物”是指细胞或由该细胞获得的条件培养基与其他化学成分(如药学上适合的载体或赋形剂)所组成的制剂。药物组合物的目的是便于将细胞给予给受试者。

在下文中，术语“药学上可接受载体”是指不引起对受试者的显著刺激并且不取消给予化合物的生物活性和性质的载体或稀释剂。载体的非限制性例子是丙二醇、生理盐水、DMSO、HAS、有机溶剂与水的乳液和混合物。

本文中的术语“赋形剂”是指加入到药物组合物中以进一步便于化合物给药的惰性物质。赋形剂的非限制性例子包括：碳酸钙、磷酸钙、各种糖和各种类型的淀粉、纤维素衍生物、明胶、植物油和聚乙二醇。

可从“Remington's Pharmaceutical Sciences”Mack Publishing Co，Easton，PA，最新版(其内容以参考的方式并入本文中)中找到药物的制剂和给药技术。

因此，可使用一种或多种生理学可接受的载体(包括赋形剂和辅料)并按常规方式用于将本发明的药物组合物制成制剂，便于将活性成分处理成制剂，可以具有药学应用。合适的剂型取决于所选的给药途径。

对于注射，可将该药物组合物的各活性成分配制在水溶液中，优选生理学相容的缓冲剂中，例如Hank氏液、林格氏液、生理盐水缓冲液，或者冷冻含冷冻保存剂的培养基。

本领域技术人员能够实施治疗有效量的确定，特别是按照本文中的详细公开内容。

可通过标准药学步骤在体外、细胞培养或者实验动物中测定本文中所描述活性成分的毒性和疗效。

根据被治疗疾病的严重长度和应答性，给药可以是单次给药或者多次给药。然而，给予的组合物量当然将取决于被治疗的受试者、病痛的严重程度、给药方式、处方医师的判断等。

在移植后，优选地使一部分的本发明细胞在患病区存活一时间段(例如大约2-6周)，以便观察到治疗效果。

也可以制备包括配制在相容的药学载体中的本发明制剂的组合物，将其置于合适的容器中并且附上所指疾病的治疗的标签。

若需要，本发明的组合物可存在于包装或者分配装置中，例如FDA批准的试剂盒，可包含一个或多个包含活性成分的单位剂型。包装可以是例如包括金属薄膜或塑料薄膜，如罩板包装。包装或者分配装置可以附带使用说明书。包装或者分配装置也可提供以管理药品制造、使用或销售的政府机构颁发的与容器相关的通知，通知是由政府机构对组合物或者人或兽医使用许可的反应。这种通式，例如可以是由美国食品药物管理局许可的用于处方药物或许可产品的插件标签。

本文中使用的术语“大约”是指±10％。

术语“包括”、“包含”、“具有”以及它们的同根变形词表示“包括但不限于”。此术语包括术语“由-构成”和“基本上由-构成”。

短语“基本上由…组成”表示组合物或者方法可包括其他成分和/或步骤，但仅仅是在其它成分和/或步骤并不显著改变申请专利保护的组合物或方法的基本的和新型的特征的情况下。

本文中使用的单数形式“一”、“一个”和“该”包括复数形式，除非上下文中明确指出。例如，术语“一个化合物”或者“至少一个化合物”可包括多个化合物，包括其混合物。

在本申请的全文中，可以用范围的形式来描述本发明的各种实施方式。应理解的是，采用范围现实的说明仅仅是为了方便和简洁并且不应理解成对本发明范围的不可改变的限制。因此，应认为对范围的描述已特异性地公开了所有可能的子范围以及该范围内的单个数值。例如，范围的描述如从1至6应该被认为具有明确公开的子范围，例如1至3、1至4、1至5、 2至4、2至6、3至6等，以及在此范围内的单独数字，例如1、2、3、4、 5、和6。无论范围的宽度如何均适用。

每当本文中指出数值范围，它表示包括在所指范围内的任何引用的数字(分数或整数)。短语“在第一指示数字和第二指示数字的范围内/在范围之间”与“在第一指示数字和第二指示数字的范围内”在本文中可互换地使用，表示包括第一个和第二个所指的数字以及两者之间的所有分数和整数。

本文中使用的术语“方法”是指用于完成给定任务的方式、手段、技术和步骤，包括但不限于化学、药理学、生物学、化学或医学领域的技术人员所了解的方式、手段、技术和步骤，或者可容易地从已知方式、手段、技术和步骤开发出的方式、手段、技术和步骤。

本文中使用的术语“治疗”包括消除、基本上抑制、减缓或逆转疾病的进展，基本上改善疾病的临床或者外观症状、或者基本上防止疾病的临床症状或外观症状的出现。

本文中使用的词语“示例性”表示用作例子、举例或者说明。任何描述成“示例性”的实施方式不必被理解成比其他实施方式优选或者有利并且/或者排除其他实施方式的特征的并入。

本文中使用的词语“可选择地”表示“在一些实施方式中提供并且在其他实施方式中不提供”。本发明的任何具体实施方式可包括多个“可选择的”特征，除非这种特征产生矛盾。

应理解的是，在单独实施方式的上下文中所描述的本发明某些特征，为了清楚起见，也可以在单个实施方式中以组合的形式提供。相反，为了简洁，单个实施方式的上下文中描述的本发明各种特征也可以单独地或者以任何适当的亚组合的形式提供或者以本发明的任何其他描述的实施方式提供。各种实施方式的上下文中所描述的某些特征不应看作是这些实施方式的基本特征，除非没有这些因素实施方式无法实施。

在上文中描述的以及在下面的权利要求部分中要求的各种实施方式以及本发明的各方面在下面的实施例中能够找到实验支持。

实施例

现在参照下面的实施例连同以上描述以非限制性方式说明本发明的一些实施方式。

一般来说，本文中使用的命名法和本发明中采用的实验室步骤包括分子技术、生物化学技术、微生物技术和重组DNA技术。这种技术完全地在文献中有说明。参见例如“分子克隆：实验手册”Sambrook et al(1989)；“分子生物学中的实验室指南"Volumes I-IIIAusubel，M.，ed.(1994)；Ausubel et al，“分子生物学中的实验室指南”John Wiley andSons，Baltimore， Maryland(1989)；Perbal“分子克隆的实用指南”John Wiley&Sons，纽约(1988)；Watson et al，“重组DNA”，Scientific American Books，纽约；Birren et al ed.“基因组分析：实验手册系列”Vol.1-4，Cold Spring Harbor Laboratory Press，纽约(1998)；如美国专利第4,666,828、4,683,202、4,801,531、5,192,659 和5,272,057号中所陈述的方法；“细胞生物学：试验室手册”，第I-III卷细胞Coligan，J.E.，ed.(1994)；"Basicand Clinical Immunology"Volumes I-III Coligan J.E.，ed.(1994)；Stites et aled.，Basic and Clinical Immunology"(第 8版)，Appleton&Lange，Norwalk，CT(1994)；Mishell and Shiigi ed.“细胞免疫中的选择方法”W.H.Freeman公司，纽约(1980)；有用的免疫检测方法广泛地描述于各专利和科学文献，见例如美国专利第3,791,932、 3,839,153、3,850,752、850,578；3,853,987、3,867,517、3,879,262、3,901,654、 3,935,074、3,984,533、3,996,345、4,034,074、4,098,876、4,879,219、5,011,771 和5,281,521；“寡核苷酸合成”Gait，M.J.，ed.(1984)；Nucleic Acid Hybridization"Hames，B.D.，and HigginsS.J.,ed.(1985)；“转录和翻译” Hames，B.D.，and Higgins S.J.，ed.(1984)；”动物细胞培养"Freshney， R.I.ed.(1986)；“固定化细胞和酶”IRL Press，1986)；“分子克隆的实用指南” Perbal，B.，1984)和“酶学中的方法”VoL.1-317，Academic Press；“PCR试验方案：方法和应用的导论”Academic Press，San Diego，CA(1990)； Marshak et al，“蛋白纯化的策略和特征-A Laboratory Course Manual"CSHL Press(1996)；所有以参考的方式并入本文，如全部在本文中列出一样。本专利文件的全文中提供其他一般性参考。认为其中的步骤对于本领域是众所周知的并且为了方便读者而提供。其中所包含的所有信息以参考的方式并入本文中。

实施例1

从胎盘分离的贴壁基质细胞(ASC)中回收和处理贴壁细胞-人胎盘是签署知情同意书后在健康供体母亲的剖腹产后获得。

将来源于胎盘的切碎的组织于37℃用0.1％胶原酶(1mg胶原酶/ml组织) 进行2-5小时培养。将包含补充有10％FBS、两性霉素B 0.25μg/ml和庆大霉素50μg/ml的DMEM的二维(2D)细胞培养基(2D-培养基)添加到经消化的组织中，粗略地过滤经过灭菌金属粗滤器，收集在灭菌烧杯中，并且离心(10 分钟，1200RPM，4℃)。采用轻缓的移液，然后用补充抗生素的二维培养基稀释悬浮细胞，接种于175cm²烧瓶中并且于37℃在组织培养培养箱中在补充5％CO₂的湿润条件下进行培养。2-3天后，让细胞附着在烧瓶表面，用PBS清洗细胞并加入二维培养基。

二维(2D)细胞生长-通常在7-15天后实施第一次传代。开始于第2代并继续直到第6-8代，将细胞传代直到培养达到70-90％的汇合，通常在4-5 天后(1.5-2倍)。利用0.25％胰蛋白酶-EDTA(4分钟，于37℃下)从烧瓶中分离出细胞并且以4±0.5×10³个细胞/cm²的培养密度进行接种。在整个的过程中，在组织培养培养箱中在湿润的条件下在5％CO₂中于37℃使培养物生长。在总共进行5-9次传代后，收集细胞并冷冻保存。

二维细胞的低温保存步骤-保存产品-为了二维细胞存量低温保存，在无菌条件下利用0.25％胰蛋白酶-EDTA收集二维培养的细胞。将细胞离心 (1200RPM，10'，4℃)，计数，再次悬浮于二维培养基中。

对于冷冻，用1:1二维冷冻混合物(最终浓度为10％DMSO，40％FBS 和50％二维培养基)稀释细胞悬浮液。以10×10⁶/ml的最终浓度将细胞保存在5ml低温保存聚丙烯玻璃小瓶中。给玻璃小瓶做上标记并且转移到控制速率的冷冻器中实施逐渐降温过程(1℃/分钟)，然后就将它们转移并保存于液氮冷冻器的气相中。

涉及在二维和三维条件下分离和培养胎盘ASC的进一步详细内容描述于以下参考文献中。WO2007/108003，其全部内容以参考的方式并入本文中，描述了三维(3D)培养条件适于来源于胎盘的ASC的扩增。 WO2009/037690，其全部内容以参考的方式并入本文中，教导了通过给予受试者治疗有效量选自胎盘和脂肪组织的组织的贴壁细胞而治疗缺血和诱导结缔组织再生的方法。WO2010/026574，其全部内容以参考的方式并入本文中，描述了适于来源于胎盘的ASC的扩增的二维(2D)培养条件。 WO2010/026575，其全部内容以参考的方式并入本文中，描述了涉及适于来源于胎盘的ASC的扩增的灌注的三维(3D)培养条件。

实施例2

胎盘部分的分离和特征。

I.从不同的胎盘部分分离贴壁细胞。

材料和方法

胎盘-在签署知情同意书后从健康供体母亲的剖腹产后从雄性胚胎中获得人胎盘。

细胞分离(见图1的结构说明)

从羊膜中分离细胞-将胎盘放置成胚胎侧朝上。通过钝的机械剥离从绒毛膜中分离出羊膜(无血管)。将羊膜转移到含有Hank氏平衡盐溶液(HBSS) 的50ml管中。将该膜切成～0.5-1cm²的小片并且置于一个新的50ml管中。

从蜕膜部分分离细胞-在除去羊膜后实施此步骤，如以上的详细说明。将胎盘放置成母体侧朝上。仅从面向母体的表面的中心区切开蜕膜(见图1)。切出约1cm³的正方形，深度不大于0.5cm。将各小片置于含HBSS的500ml 瓶中并用HBSS清洗。

从绒毛部分离细胞-在除去蜕膜部分后实施此步骤，如上面的详细说明。把胎盘再放置成胚胎侧面朝上。在大血管之间切出约4-5cm的正方形，深度约为0.5-1cm。将各小块置于灭菌玻璃板上再用解剖刀进行擦洗。分离绒毛(小血管)并且仅收集周围组织而不收集女性(chorine)羊膜层。将切碎的组织置于含HBSS的500ml瓶中并用HBSS清洗。

贴壁细胞的分离-以上述方式获得各种胎盘区的切碎组织，以上述PLX 细胞的制备中所述的方式进行处理。

细胞来源的判定–为了判定从各种胎盘源中获得的细胞在分离和扩增条件后是否为母体或胚胎来源，按照此方案对从男性新生儿中获得的5个胎盘中获得的细胞实施FISH分析。母体源性的细胞必定是XX(雌性核型) 而胚胎源性的细胞必定是XY(雄性核型)。将结果总结于以下的表1。

表1-核型

结果清楚地表明，从蜕膜中获得的细胞富含母体(XX)细胞，而从绒毛和羊膜中获得的细胞富含胚胎(XY)细胞.

II.从不同胎盘部分获得的贴壁细胞的特性

细胞形态

在细胞扩增期间以如上述方式检查从不同胎盘区中获得的细胞的形态和大小(用直径表示)。将细胞在含有8％FBS的DMEM(低葡萄糖)中进行培养并且传代达5至7细胞群增倍。图2A-图2C示出了从胎盘基蜕膜、绒毛、和羊膜中获得的细胞的形态。在x40的放大比下对照所有图的相差。(A): 从胎盘基蜕膜中获得的贴壁细胞的形态。(1):分离8天后(传代0)，(2):分离 13天后(传代1)，(3):分离20天后(传代2)，(4):分离24天后(传代3)。(B): 从胎盘绒毛间质中获得的贴壁细胞的形态。(1):分离13天后(传代0)，(2): 分离17天后(传代1)，(3):分离22天后(传代2)，(4):分离31天后(传代4)。 (C):从胎盘羊膜中获得的贴壁细胞的形态。(l):分离3天后(传代0)，(2):分离20天后(传代2)，(3):分离29天后(传代3)，(4):分离41天后(传代5)。相显微照片显示从人胎盘的基蜕膜、绒毛和羊膜中获得的细胞的形态中存在差异。这些结果是根据细胞直径的测量(如下所述)得出的。

细胞大小

利用Cedex自动细胞分析仪(Roche Innovatis AG)测量从三个不同胎盘部分获得的细胞在各传代中的细胞大小(以直径表示)。将结果表示为细胞直径相对于传代数：图3示出了所有测试批次在传代2至传代5之间的平均细胞直径。

结果显示在蜕膜、绒毛和羊膜之间在各传代中细胞直径存在显著差异。从蜕膜、绒毛和羊膜中获得的细胞的细胞大小分别为15.5-17、16.0-18.1和 18.1-21。

细胞群的增倍速率

计数各传代的细胞，并且按照方程式1计算每天的细胞群加倍率：

方程式1

Log(收获时的总活细胞/接种时的总活细胞)/培养天数。

将经过传代1至5的从蜕膜、羊膜和绒毛中获得的细胞的平均PD率示于图4。

从胎盘基蜕膜中获得的细胞的增殖速率显著高于从胎盘绒毛和羊膜中获得的细胞。

羊膜细胞增殖在传代2至4之间显著减慢，而在超过传代4时存在细胞增殖改善的倾向。

细胞免疫表型

膜标记物的FRCS分析-用单克隆抗体给细胞染色。简略地，将 400,000-600,000个细胞悬浮于5ml试管内的0.1ml流式细胞仪缓冲液中并于室温(RT)下培养15分钟。在暗处，将各单克隆抗体示于下面的表2。将细胞用流式细胞仪缓冲液清洗二次，再次悬浮于500μl流式细胞仪缓冲液中，并且利用流式细胞法使用FC-500流式细胞仪(Beckman Coulter)进行分析。用同种型匹配的荧光分子制备阴性对照。

表2-抗体

抗体	荧光	制造商	目录号
				抗人CD45	FITC	IQ产品	IQP-124F
抗人CD 105	PE	eBioscience	12-1057-73
				抗人CD 19	PE	IQ产品	IQP-515R
抗人CD 14	FITC	IQ产品	IQP-143R
				抗人CD29	FITC	eBioscience	11-0297
抗人CD73	PE	BD Pharmigen	550257
				抗人CD90	PE	BD Pharmigen	555596
抗人CD200	PE	BD Pharmigen	552475

下面的表3中概述了标记物表达的结果。

表3-来自不同细胞来源的贴壁细胞的标记物表达

注意到，从蜕膜中获得的细胞与从绒毛和羊膜中获得的细胞相比显示非常低的CD200表达。

III.各种胎盘部分的体外免疫调节特性

从外周血中分理出人源性单个核细胞(MNC)。用10μgPHA/ml(SIGMA) 在40,000个从蜕膜、绒毛和羊膜中获得的细胞存在下3天在湿润条件下在 5％CO₂于37℃对200,000MNC/200μl培养基(含有20FBS的RPMI 1640培养基/96孔)的悬浮液进行刺激。使用从4个不同胎盘中获得的细胞。将各组的三个复制细胞接种于96孔板中。在培养第三天的最后18小时期间，对细胞进行脉冲输送EdU(5-乙炔基-2’-脱氧尿苷)至10μM的最终浓度。

利用Click It试剂盒按照说明书(Invitrogen)对细胞增殖进行分析。

结果显示(图5A)从4不同胎盘中获得的所有三个细胞群抑制PHA激活的MNC的增殖。

平均抑制率(图5B)提示从羊膜和绒毛中获得的细胞与从蜕膜中获得的细胞相比，具有较强的抗增殖效果。

实施例3

从各种胎盘部分获得的条件培养基的体外血管生成特性(CM)

实验步骤

用24小时将各种部分的胎盘细胞接种于6孔板的4ml用8％FCS补充的DMEM培养基(0.5×10⁶/孔)中。

24小时后，除去DMEM，用1ml PBS轻柔地清洗各孔，并且用补充有两性霉素B(0.25μg/ml)、庆大霉素-IKA(45μg/ml)、ECGS(1mg/ml)肝素 (5U/ml)和谷氨酰胺(2Mm)的无血清4ml BIO-MPM(Biological industries)来替换。24小时后，收集CM并且以4600RPM离心1分钟。CM是使用新鲜的或者于-80℃保存直到使用。

将来源于胎盘的CM(如下所述)添加到HUVEC(人脐静脉内皮细胞，以如下方式制备)中：

将15,000细胞/孔解冻，用24小时接种在补充有20％FCS的M-199培养基中被纤维连接蛋白覆盖的12孔板中。除去培养基并且用50％新鲜全 BIO-MPM{补充有两性霉素B(0.25μg/ml)、庆大霉素-IKA(45g/ml)、 ECGS(1mg/ml)肝素(5U/ml)、和谷氨酰胺(2Mm)以及10％FCS}和50％的新鲜或者从冷冻胎盘中获得的CM混合物进行替换，如上所述。

在添加CM的72小时后，利用自动Cedex细胞计数器评估HUVEC增殖。

图6A-图6C中所示结果清楚地表明：与非调整的相似培养基BIO-MPM +5％血清培养基甚至与M199+20％血清相比，从所有三个胎盘部分中获得的CM使HUVEC增殖的提高，Ml99+20％血清是用于HUVEC扩增的标准生长培养基。

实施例4

用于测试治疗效果的体内模型

I.骨骼肌再生

具有连续功能性效率的不充分创伤后骨骼肌再生一直是整形外科手术和创伤手术中的一个严重问题。已采取了许多努力来成功地改善肌肉缺损再生的组织工程的转移技术(Li和Huard 2002；Bach，Beier et al 2004； Kamelger，Marksteiner et al 2004；Peng和Huard 2004)。将成肌细胞局部应用于肌肉缺损增强再生，从而导致收缩力提高大约40％(Arcila，Ameredes et al1997；Irintchev，Langer et al1997；Saxena，Marler etal1999；DeRosimo， Washabaugh et al，2000)。然而，将此方法转入临床例方法中受到供体发病部位的限制。自体肌肉前体细胞的移植在肌肉创伤治疗已显示积极的结果，但是与供体发病部位显著相关(Huard，Cao et al 2003；Deasy，Li et al 2004；Peng and Huard2004)。在钝的骨骼肌创伤的大鼠模型中，从自体骨髓中获得细胞的移植显示出骨骼肌拉紧损伤后其改善功能结构的潜力 (Matziolis，Winkler et al 2006)。除非此方法具有与使用自体源的细胞以及与 BM吸气有关不适的缺点。

在钝的骨骼肌创伤的大鼠模型中，对本文中所述细胞群在骨骼肌再生中的治疗潜能进行评估，如(Matziolis，Winkler et al 2006)所述。

实验研究方案

动物：雌性Sprague Dawley大鼠，大约12周龄，140-160g，每组10 只动物。

大鼠治疗：比目鱼肌的加压。

细胞：三维培养中的胎盘细胞生长描述于WO2010/026575，其全部内容以参考的方式并入本文中(在下文中称为“PLX细胞”)。

细胞制备：清洗经冷冻保存的PLX细胞，以除去DMSO和白蛋白。将细胞再次悬浮于生理盐水中并稀释成期望浓度(即，5×10⁶/40μl)。

细胞注射：

在损伤后立即注射(I)

肌肉损伤1周后(DEL)

细胞剂量：2.5×10⁶

注射量：20μl

肌肉功能评价：治疗3周后

活组织检查：治疗3周后

肌肉创伤

将动物麻醉，将左下肢剃毛(Favorita II，Aesculap，Tuttlingen，德国) 并用聚维酮碘消毒。经过皮肤2cm的后外侧的纵向切口并且将从腓肠肌内侧获得的头筋膜放在阿基利氏肌腱的下面，使比目鱼肌动并且钝性地挤压。为了此目的，使用具有被聚乙烯管围绕的顶端的弯曲夹具来避免肌筋膜的损伤。用手全长(除了提供神经血管结构的从腓肠肌内侧的中部突出的进入点)夹肌肉七次。在用生理盐水溶液进行多次刺激后，将表层肌肉和皮肤缝合。

肌力测量

将动物再次麻醉。将坐骨神经和比目鱼肌两侧暴露，保护所有神经血管结构。在未经处理侧以及未损伤的一侧，切下阿基利氏肌腱并且将下肢固定在肌力测量装置上(Fish，McKee et al1989；Racz，lllyes et al， 1997)(Experimetria，布达佩斯，匈牙利)。将比目鱼肌的远端部经缝合线连接到测力传感器(4-0，丝绸)。除了比目鱼肌，将插过阿基利氏肌腱与阿基利氏肌腱最近的所有肌肉切割。随后，用9mA/75Hz二极刺激坐骨神经5 次，每次0.1秒(8时间段)，各次脉冲之间的间隔为5秒。在快速痉挛刺激后，通过采用9mA/75Hz刺激方案进行五次刺激每次3秒间隔为5秒，在所有情况下达到强直痉挛，因此测量最大肌力。在肌力测量终止后，将动物处死。在快速痉挛(“FT”)和巨大(“TET”)刺激后比较每块肌肉的收缩力，并且在两个散点处(受损伤和未受损伤的肌肉)使可见。相对完整的右侧对照比目鱼肌，对所有力值进行单体内的标化。

将结果示于图7。

II.人胎盘扩增(TLX)细胞对炎症性神经病理性疼痛的影响

慢性神经病理性疼痛在临床实践中是常见的。患有如下疾病的患者例如糖尿病多发性神经病变、人类免疫缺陷病毒(HIV)感觉神经病变、中风后综合征、缺血、和多发性硬化频繁地经历每日的疼痛，这很大程度地损害其生活质量。虽然有许多经批准或者仍然在开发中的药物，但慢性疼痛的控制仍然是各挑战。除了缓解不充分外，对不良反应和成瘾性(Dworkin， Backonja et al 2003)也有担心。在外周组织的炎症期间，补充给损失部位的内皮细胞、常驻细胞(resident cell)、和白细胞产生许多介质。许多这些介质例如质子、细胞因子、和神经生长因子被认为通过激活称为伤害感受器的特定初级传入神经元而引起疼痛(Rittner，Brack et al 2008)。

在疼痛的动物模型中检查了本文中所述细胞群减轻疼痛的潜能：

实验研究

细胞-在三维培养条件下生长的胎盘细胞，如在WO2010/026575中描述的，其全部内容以参考的方式并入本文中[下文中的“PLX细胞”]

动物模型

1-慢性炎症模型：具有通过足内注射弗氏完全佐剂(CFA)引起的外周炎症的弗氏佐剂大鼠。将弗氏完全佐剂(CFA)给予啮齿动物产生类似疾病的状态，认为这是最接近地类似于人类类风湿关节炎病态，其特征为关节周围膜的炎症以及对骨和软骨的损伤。当给尾巴的基部给予时，在两个后爪中在若干天内发展成多发性大动脉炎状态，并且在给药大约3周后具有炎症最大体征、关节恶化和痛觉过敏。多发性大动脉炎状态可以延续数周(Cook和Nickerson 2005，其全部内容以参考的方式并入本文中)。

2-Bennett慢性神经病理性疼痛(坐骨神经的部分结扎，慢性压缩损伤 (“CCI”)模型)描述于Labuz et al 2009(Labuz，Schmidt et al 2009，其全部内容以参考的方式并入本文中)。

疼痛评估

通过测量机械和热痛觉过敏以及抗伤害作用来测定疼痛。利用爪压力痛觉计(modified Randall-Selitto test；Ugo Basile；Brack，Rittner et al 2004； Rittner，Labuz et al 2006)评估机械疼痛阈值。在进行测试的当天，将大鼠保持在软填料下，并利用楔状的钝柱塞将增加的压力(根据自动测量计)施加在后爪的背侧表面上。利用间隔为10秒的三次连续试验确定引起缩足所需的压力，即爪压力阈值(PPT)。在对侧的爪上实施相同的步骤；在各受试者之间改变爪的顺序以排除顺序效应。将治疗随机化，并且使实验人员对治疗盲化。将PPT的下降看作痛觉过敏(疼痛)，而将PPT的增加看作抗疼痛作用(止痛)。通过Hargreaves测试(Rittner，Mousa et al 2006)测量热痛觉阈值。使动物适应测试装置。用高光强度灯泡从玻璃地板的下面对后爪的足底表面施加辐射热，用电子定时器(IITC Inc/Life Science，Woodland Hills，CA) 测量缩足反应潜伏期(PWL)。PWL是采用20秒间隔的两次测量值的平均值。调节刺激强度以通过非发炎爪中9至10秒的PWL，中断时间为20秒以避免组织损伤。将PWL的增加看作痛觉过敏(疼痛)，而将PWL的增大看作抗疼痛作用(止痛)。

结果

1.炎性疼痛模型(大鼠)

我们采用炎性疼痛模型，其中在大鼠的右后爪足内直射弗氏完全佐剂 (CFA；150μl)(i.pl.；注入足底爪表面)。利用爪压力测试测量疼痛，以确定爪压力阈值(PPT)，同时用大鼠足体积测量仪评估足体积(PV；用于估计水肿)。

在CFA给予两天后，按如下防水给大鼠注射i.pL.：

组1：赋形剂(100μl)，4只大鼠

组2：100μl中有1百万个PLX细胞，4只大鼠

组3：100μl中有2百万各PLX细胞，4只大鼠

在即将进行CFA注射前测量PPT和PV，然后在CFA的2天后(且接收 PLX细胞后的大鼠)，然后每天，在PLX细胞注射1天后(即CFA后3天) 开始直到CFA后的第10天，在两个后爪中测量PPT和PV。

与CFA注射前的PPT相比(基线；Bas)，将CFA注射入一个后爪中，从第2天(2d CFA)直到10天降低此爪中的PPT(图8)。CFA不改变对侧爪的PPT(图8)。将PLX细胞(2×10⁶)注射入发炎的爪使PPT逆转到CFA注射前的水平(图8A)。PLX细胞并不改变对侧爪中的PPT(图8B)。PLX细胞似乎不改变爪水肿(如PV测量的)(图9A和图9B)。

2.神经病理性疼痛模型(小鼠)

在慢性收缩性损伤(“CCI”)的两天后，按照下列各组在CCI部位(即，在神经损伤的部位)对动物进行处理：

组1：载体(30μl)-4只小鼠

组2：在30μl中0.5百万个PLX细胞-4只小鼠

组3：在30μl中1百万个PLX细胞-4只小鼠

在CCI后立即(基线；Bas)、CCI的2天后(2d CCI；且接受PLX细胞后的小鼠)，然后每天一次共10天(PLX细胞注射后1天开始)，然后在CCI 后的第14和第21天在两个后爪之间进行机械敏感性和热敏感性的评估。

坐骨神经的CCI导致受神经支配的受伤爪而不是对侧爪的爪中机械敏感性(定义为缩足阈值下降)和热敏感性(定义为缩足反应潜伏期降低)(图10 和图11)。在神经损伤部位注射的PLX细胞轻微地减弱机械敏感性(图10A) 和热(图11A)敏感性。PLX细胞在对侧爪中不产生变化(图10B和图11B)。

III.PLX细胞中的内源性类阿片肽水平

对PLX细胞中的类阿片肽水平[即在三维培养条件下生长的胎盘细胞，如WO2010/026575中所述，其全部内容以参考的方式并入本文中]进行检查，试图确定在描述的神经病理性疼痛模型中观察到的抗疼痛感受效果是否是由从PLX细胞中释放出阿片类所介导的。

实验方案

将细胞解冻，离心以除去低温保存溶液，10×10⁶PLX细胞/250μl的最终浓度再悬浮于补充有130μM乌苯美司(bestatin)、1mM EDTA、和Roche 蛋白酶抑制剂鸡尾酒片剂Cat.No.04 693 124 001的无血清低葡萄糖 DMEM中。

对各PLX批次的10×10⁶个细胞的三个样品实施阿片类物质含量的测量-

·将0.25μl的10mM离子霉素(ionomycin)贮存液(最终浓度为10μΜ) 添加到细胞悬浮液中。

·在加热块中，将细胞悬浮液以600rpm于37℃振摇5分钟。

·将细胞悬浮液离心(350x g/4℃)，收集PLX细胞团块和上清液并且于 -20℃保存直到分析时间。

·利用EIA试剂盒(Phoenix Laboratories，Inc.and Peninsula Laboratories)测定类阿片肽的量，如以下制造商的说明书中的详细说明。

用于类阿片肽检测的试剂盒：

脑啡肽-甲硫氨酸-RIA试剂盒(Pensinsula Laboratories；#S-2119)

脑啡肽-亮氨酸-荧光EIA试剂盒(Phoenix Laboratories Inc.；# FEK-024-21)

强啡肽-荧光EIA试剂盒(Phoenix；#FEK-021-03)

内啡肽、β-荧光EIA试剂盒(Phoenix；#FEK-022-14)

结果

PLX细胞含有不同浓度的β-内啡肽、强啡肽A、亮氨酸-脑啡肽和甲硫氨酸-脑啡肽。利用荧光EIA试剂盒按照制造商的方案(Phoenix Laboratories Inc.)测定这些阿片类物质中的各物质的浓度。对各批次的10⁷个细胞进行检测。将9个不同的PLX批次中这些阿片类物质的水平示于图12A-12E中。

IV.用于去负荷心脏中的心肌再生的细胞治疗：机械辅助装置治疗的实验模型

心脏衰竭(HF)影响着患者群的快速增加。虽然在心血管疾病的许多阶段的理解和治疗中有进展，但在治疗HF中存在的进展很小。在晚期心力衰竭中，将机械心室辅助装置(VAD)用作桥-移植、桥-回收、或者用作确定性疗法。在心肌梗塞(MI)的动物模型中，测试了本文中所述细胞群的治疗效果增加VAD支持的效果。急性MI的通常模型是通过结扎小鼠冠状动脉左前降支(LAD)(Kolk，Meyberg et al 2009)，从而提供用于缺血性心脏病研究的有用和常规工具。

实验方案

疾病模型-通过LAD结扎而形成心肌梗塞

动物种-Balb/C，雄性，6-8周

小鼠的总数-15

不同实验组之间的小鼠分配

早期(第3天)实验组(PLX)-3只

晚期(第28天)实验组(PLX)-6只

晚期(第28天)对照组(梗塞，仅赋形剂)-6只

细胞量/小鼠-1×10⁶

细胞/小瓶-1×10⁶

使用的麻醉剂-克他命-甲苯胺噻嗪(Ketamine-xylaxine)

实验步骤

第0天-100-150μl的PBS中的LAD结扎和细胞注射(无Ca、Mg)

第1天-第1次超声心动描记术(所有3组)，

第3天-处死3只早期组的小鼠(PLX)，并且进行切片以寻找人类核抗原 (hNuc)。

第7天-第2次超声心动描记术(两个晚期组)

第14天-第3次超声心动描记术(两个晚期组)

第21天-第4次超声心动描记术(两个晚期组)

第28天-第5次超声心动描记术(两个晚期组)、MRI(两个晚期组)

在4周的末期处死小鼠，接着切除心脏。一部分的心脏将用于RNA分离，其他将进行石蜡切片，用于微细结构的评估以及用于心脏特异性标记检测的冷冻超薄切片。

免疫细胞化学的标记物特征：

1.人类核抗原(hNuc)-在早期阶段(第3天)

2.心肌肌球蛋白重链

尽管已结合具体实施方式说明了本发明，但显然许多替代、修改和变更对于本领域技术人员将是显而易见的。因此，意图是包括落在所附权利要求的精神和宽广范围内的所有这种替代、修改和变形。

本说明书中所述的所有出版物、专利和专利申请，其全部内容以参考的方式并入本文中；专利或专利申请是特异性和单独地以参考的方式并入本文中。另外，本申请中的任何参考的引用或确定不应被看作是认可这种参考可用作本发明的现有技术。在某种程度上使用的每部分的标题，不应将它们看作是必定的限制。

参考文献列表 (本申请中所引用的其他参考文献)

Ajmo C.T.,Jr.,Vernon D.O.,Collier L.,Hall A.A.,Garbuzova-Davis S.,Willing A.and Pennypacker K.R.,The spleen contributes to stroke-inducedneurodegeneration,J,Neurosci.Res.86(2008)2227-2234.

Arcila,M.E.,B.T.Ameredes,et al.(1997)."Mass and functional capacityof regenerating muscle is enhanced by myoblast transfer."J Neurobiol 33(2):185-98.

Bach,A.D.,J.P.Beier,et al.(2004)."Skeletal muscle tissueengineering." J Cell Mol Med 8(4):413-22.

Bliss T.,Guzman R.,Daadi M.and Steinberg G.K.,Cell transplantationtherapy for stroke,Stroke 38(2007)817-826.

Brack,A.,H.L.Rittner,et al.(2004)."Control of inflammatory pain bychemokine-mediated recruitment of opioid-containing polymorphonuclear cells."Pain 112(3):229-38.

Chang C.J.,Yen M.L.,Chen Y.C.,Chien C.C.,Huang H.I.,Bai C.H.and YenB.L.,Placenta-derived multipotent cells exhibit immunosuppressive propertiesthat are enhanced in the presence of interferon-gamma,Stem Cells 24 (2006)2466-2477.

Chen J.,Li Y.,Katakowski M.,Chen X.,Wang L.,Lu D.,Lu M.,GautamS.C.and Chopp M.,Intravenous bone marrow stromal cell therapy reducesapoptosis and promotes endogenous cell proliferation after stroke in femalerat,J. Neurosci.Res.73(2003)778-786.

Chen J.,Sanberg P.R.,Li Y.,Wang L.,Lu M.,Willing A.E., Sanchez-RamosJ,and Chopp M.,Intravenous administration of human umbilical cord bloodreduces behavioral deficits after stroke in rats,Stroke 32 (2001)2682-2688.

Chopp M.and Li Y.,Treatment of neural injury with marrow stromalcells, Lancet Neurol.1(2002)92-100.

Cook,C.D.and M.D.Nickerson(2005)."Nociceptive sensitivity and opioidantinociception and antihyperalgesia in Freund's adjuvant-induced arthriticmale and female rats."J Pharmacol Exp Ther 313(1):449-59.

Deasy,B.M.,Y.Li,et al.(2004)."Tissue engineering with muscle-derivedstem cells."Curr Opin Biotechnol 15(5):419-23.

DeRosimo,J.F.,C.H.Washabaugh,et al.(2000)."Enhancement of adultmuscle regeneration by primary myoblast transplantation."Cell Transplant 9(3): 369-77.

Dong Y.and Benveniste E.N.,Immune function of astrocytes,Glia 36(2001)180-190.

Dworkin,R.H.,M.Backonja,et al.(2003)."Advances in neuropathic pain:diagnosis,mechanisms,and treatment recommendations."Arch Neurol 60(1 1):1524-34.

Faulkner J.R.,Herrmann J.E.,Woo M.J.,Tansey K.E.,Doan N.B.andSofroniew M.V.,Reactive astrocytes protect tissue and preserve function afterspinal cord injury,J.Neurosci.24(2004)2143-2155.

Fish,J.S.,N.H.McKee,et al.(1989)."Isometric contractile functionrecovery following tourniquet ischemia."J Surg Res 47(4):365-70.

Gao Q，，Li Y.and Chopp M.,Bone marrow stromal cells increase astrocytesurvival via upregulation of phosphoinositide 3-kinase/threonine proteinkinase and mitogen-activated protein kinase kinase/extracellular signal-regulated kinase pathways and stimulate astrocyte trophic factor geneexpression after anaerobic insult,Neuroscience 136(2005)123-134.

Himeda T.,Tounai H.,Hayakawa N.and Araki T.,Postischemic alterationsof BDNF,NGF,HSP 70 and ubiquitin immunoreactivity in the gerbil hippocampus:pharmacological approach,Cell Mol.Neurobiol.27(2007) 229-250.

Hu J.,Ferreira A,and Van Eldik L.J.,SlOObeta induces neuronal celldeath through nitric oxide release from astrocytes,J.Neurochem.69(1997) 2294-2301.

Huard,J.,B.Cao,et al.(2003)."Muscle-derived stem cells:potential formuscle regeneration."Birth Defects Res C Embryo Today 69(3):230-7.

Hum P.D.,Subramanian S.,Parker S.M.,Afentoulis M.E.,Kaler L.J.,Vandenbark A.A.and Offner H.,T-and B-cell-deficient mice with experimentalstroke have reduced lesion size and inflammation,J.Cereb.Blood Flow Metab 27(2007)1798-1805.

In't Anker P.S.,Scherjon S.A.,Kleijburg-van der K.C.,de Groot-SwingsG.M.,Claas F.H.,Fibbe W.E,and Kanhai H.H.,Isolation of mesenchymal stem cellsof fetal or maternal origin from human placenta,Stem Cells 22(2004) 1338-1345.

Irintchev,A.,M.Langer,et al.(1997)."Functional improvement of damagedadult mouse muscle by implantation of primary myoblasts."J Physiol 500(Pt 3):775-85.

Jones B.J.,Brooke G.,Atkinson K.and McTaggart S.J., Immunosuppressionby placental indoleamine 2,3-dioxygenase:a role for mesenchymal stem cells,Placenta 28(2007)1 174-1 181.

Kamelger,F.S.,.Marksteiner,et al.(2004)."A comparative study of threedifferent biomaterials in the engineering of skeletal muscle using a ratanimal model."Biomaterials 25(9):1649-55.

Kolk,M.V.,D.Meyberg,et al.(2009)."LAD-ligation:a murine model ofmyocardial infarction."J Vis Exp(32).

Kundrotiene J.,Wagner A.and Liljequist S.,Extradural compression ofsensorimotor cortex:a useful model for studies on ischemic brain damage andneuroprotection,J.Neurotrauma 19(2002)69-84.

Labuz,D.,Y.Schmidt,et al.(2009)."Immune cell-derived opioids protectagainst neuropathic pain in mice."J Clin Invest 119(2):278-86.

Le Blank K.,Immunomodulatory effects of fetal and adult mesenchymalstem cells,Cytotherapy.5(2003)485-489.

Lee M.Y.,Deller T.,irsch M,Frotscher M.and Hofmann H.D.,Differentialregulation of ciliary neurotrophic factor(CNTF)and CNTF receptor alphaexpression in astrocytes and neurons of the fascia dentata after entorhinalcortex lesion,J.Neurosci.17(1997)1 137-1 146.

Li,Y.and J.Huard(2002)."Differentiation of muscle-derived cells intomyofibroblasts in injured skeletal muscle."Am J Pathol 161(3):895-907.

Li Y.,Chen J.,Chen X.G.,Wang L.,Gautam S.C.,Xu Y.X.,Katakowski M.,Zhang LJ.,Lu M.,Janakiraman N.and Chopp M.,Human marrow stromal cell therapyfor stroke in rat:neurotrophins and functional recovery,Neurology 59 (2002)514-523.

Liberto CM.,Albrecht P.J.,Herx L.M.,Yong V.W.and Levison S.W., Pro-regenerative properties of cytokine-activated astrocytes,J,Neurochem.89(2004)1092-1 100.

Marti H.H.and Risau W.,Systemic hypoxia changes the organ-specificdistribution of vascular endothelial growth factor and its receptors,Proc.Natl. Acad.Sci.U.S.A 95(1998)15809-15814.

Matziolis,G.,T.Winkler,et al.(2006)."Autologous bone marrow-derivedcells enhance muscle strength following skeletal muscle crush injury inrats." Tissue Eng l2(2):361-7.

Nishishita T.,Ouchi K.,Zhang X.,Inoue M,Inazawa T.,Yoshiura K.,Kuwabara K.,Nakaoka T.,Watanabe N.,Igura K.,Takahashi TA.and Yamashita N.,Apotential pro-angiogenic cell therapy with human placenta-derived mesenchymalcells,Biochem.Biophys.Res.Commun.325(2004)24-31.

Okawa H.,Okuda O.,Arai H.,Sakuragawa N.and Sato K.,Amnioticepithelial cells transform into neuron-like cells in the ischemic brain,Neuroreport 12(2001)4003-4007.

Peng,H.and J.Huard(2004)."Muscle-derived stem cells formusculoskeletal tissue regeneration and repair."Transpl Immunol 12(3-4):31 1-9.

Prather W.R.,Toren A.and Meiron M.,Placental-derived and expandedmesenchymal stromal cells(PLX-I)to enhance the engraftment of hematopoieticstem cells derived from umbilical cord blood,Expert.Opin.Biol. Ther.8(2008)1241-1250.

Prather W.R.,Toren A.,Meiron M.,Ofir R.,Tschope C.and Horwitz E.M.,The role of placental-derived adherent stromal cell(PLX-PAD)in die treatmentof critical limb ischemia,Cytotherapy.11(4)(2009)427-434.

Racz,I.B.,G.Ulyes,et al.(1997)."The functional and morphologicaldamage of ischemic reperfused skeletal muscle."Eur Surg Res 29(4):254-63.

Rittner,H.L.,A.Brack,et al.(2008)."Pain and the immune system."Br JAnaesth 101(1):40-4.

Rittner,H.L.,D.Labuz,et al.(2006)."Pain control by CXCR2 ligandsthrough Ca2+-regulated release of opioid peptides from polymorphonuclearcells."FASEB J 20(14):2627-9.

Rittner,H.L.,S.A.Mousa,et al.(2006)."Selective local PMN recruitmentby CXCL1 or CXCL2/3 injection does not cause inflammatory pain."J Leukoc Biol79(5):1022-32.

Roeien D.L.,van der Mast B.J.,in't Anker P.S.,Kleijburg C,Eikmans M.,van B.E.,de Groot-Swings G.M.,Fibbe W.E.,Kanhai H.H.,Scherjon S.A.and ClaasF.H.,Differential immunomodulatory effects of fetal versus maternalmultipotent stromal cells,Hum.Immunol.70(2009)16-23.

Saxena,A.K.,J.Marler,et al.(1999)."Skeletal muscle tissue engineeringusing isolated myoblasts on synthetic biodegradable polymers:preliminarystudies."Tissue Eng 5(6):525-32

Schabitz W.R.,Berger C,Kollmar R.,Seitz M.,Tanay E.,Kiessling M,Schwab S.and Sommer C,Effect of brain-derived neurotrophic factor treatmentand forced arm use on functional motor recovery after small corticalischemia, Stroke 35(2004)992-997.

Shen L.H.,Li Y.,Chen J.,Zacharek A.,Gao Q.,Kapke A.,Lu M,Raginski.,Vanguri P.,Smith A.and Chopp M.,Therapeutic benefit of bone marrow stromalcells administered 1 month after stroke,J.Cereb.Blood Flow Metab 27(2007) 6-13.

Silver J.and Miller J.H.,Regeneration beyond the glial scar,Nat.Rev.Neurosci.5(2004)146-156.

Strachan R.D.,Kane P.J.,Cook S.,Chambers I.R.,Clayton C.B.andMendelow A.D.,Immunosuppression by whole-body irradiation and its effect onoedema in experimental cerebral ischaemia,Acta Neurol.Scand.86(1992) 256-259.

Tamura A.,Graham D.I.,McCulloch J.and Teasdale G.M.,Focal cerebralischaemia in the rat:1.Description of technique and early neuropathologicalconsequences following middle cerebral artery occlusion,J.Cereb.Blood FlowMetab 1(1981)53-60.

Toyama K.,Honmou O.,Harada K，，Suzuki J.,Houkin K.,Hamada H.and KocsisJ.D.,Therapeutic benefits of angiogenetic gene-modified human mesenchymalstem cells after cerebral ischemia,Exp.Neurol.216(2009)47-55.

Trendelenburg G.and Dirnagl U.,Neuroprotective role of astrocytes incerebral ischemia:focus on ischemic preconditioning,Glia 50(2005)307-320.

Wei O.Y.,Huang Y.L.,Da CD.and Cheng J.S.,Alteration of basicfibroblast growth factor expression in rat during cerebral ischemia,ActaPharmacol.Sin.21(2000)296-300.

Yen B.L.,Huang Hi.,Chien C.C.,Jui H.Y.,Ko B.S,Yao M.,Shun C.T.,YenM.L.,Lee MX.and Chen Y.C.,Isolation of multipotent cells from human termplacenta,Stem Cells 23(2005)3-9.

Zhao M.Z.,Nonoguchi N.,Ikeda N.,Watanabe T.,Furutama D.,Miyazawa D.,Funakoshi H.,Kajimoto Y.,Nakamura T.,Dezawa M.,Shibata M.A.,Otsuki Y.,CoffinR.S.,Liu W.D.,Kuroiwa T.and Miyatake S.,Novel therapeutic strategy for strokein rats by bone marrow stromal cells and ex vivo HGF gene transfer with HSV-1vector,J.Cereb.Blood Flow Metab 26(2006)1 176-1188.

Zhu H.,Mitsuhashi N.,Klein A.,Barsky L.W.,Weinberg K.,Barr M.L.,Demetriou A.and Wu G.D.,The role of the hyaluronan receptor CD44 inmesenchymal stem cell migration in the extracellular matrix,Stem Cells 24(2006)928-935.。

Claims (11)

1.来源于胎盘的贴壁细胞群在制备用于治疗医学疾病的药物中的应用，其中所述细胞群包含至少70％的来自所述胎盘胚胎部分的贴壁细胞，且其中所述贴壁细胞与在相同条件下生长并允许分化的来自骨髓的贴壁细胞相比，较少成为成骨谱系，所述医学疾病选自：

(a)肌肉损伤；

(b)疼痛；和

(c)自身免疫性疾病和炎症性疾病。

2.来源于胎盘的贴壁细胞群在制备用于治疗医学疾病的药物中的应用，其中所述细胞群包含至少70％的来自所述胎盘胚胎部分的贴壁细胞，且其中所述贴壁细胞与在相同条件下生长并允许分化的来自骨髓的贴壁细胞相比，较少成为脂肪形成谱系，所述医学疾病选自：

(a)肌肉损伤；

(b)疼痛；和

(c)自身免疫性疾病和炎症性疾病。

3.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述贴壁细胞表达CD200。

4.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述贴壁细胞表达CD73、CD90、CD29、CD105或者D7-fib中的一种或多种。

5.权利要求4所述的应用，其中所述贴壁细胞表达CD73、CD90、CD29和CD105。

6.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述贴壁细胞不表达CD3、CD4、CD45、CD80、HLA-DR、CD11b、CD14、CD19、CD34、CD31、CD200、KDR、或CD79。

7.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述贴壁细胞表达β-内啡肽、强啡肽A、亮氨酸-脑啡肽、或甲硫氨酸-脑啡肽中的一种或多种。

8.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述肌肉损伤选自肌肉创伤和骨骼肌缺陷。

9.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述自身免疫性疾病和炎症性疾病选自周围神经损伤、神经退行性疾病和多发性硬化。

10.权利要求1或权利要求2所述的应用，其中所述疼痛选自炎性疼痛和神经病理性疼痛。

11.权利要求10所述的应用，其中所述神经病理性疼痛与炎性疼痛、糖尿病多发性神经病变、人类免疫缺陷病毒(HIV)感觉神经病变、中风后综合征、或缺血有关。

Images