SU968036A1 - Способ получени меченого белка - Google Patents
Способ получени меченого белка Download PDFInfo
- Publication number
- SU968036A1 SU968036A1 SU802894059A SU2894059A SU968036A1 SU 968036 A1 SU968036 A1 SU 968036A1 SU 802894059 A SU802894059 A SU 802894059A SU 2894059 A SU2894059 A SU 2894059A SU 968036 A1 SU968036 A1 SU 968036A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- protein
- labeled
- concentration
- myoglobin
- titer
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
(З) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МЕЧЕ ННОГО БЕЛКА
Изобретение относитс к улучшенному способу получени меченного белка , биологически активного соединени , которое южет найти применение в биологии и медицине дл радиационной диагностики различных заболеваний .
Известны меченные.белки, которые различаютс природой изотопа, обуславливающего радиоактивность, и методами введени данного изотопа в молекулу белка. Наиболее широко известны способы промемивани белков изотопами иода - 125) и ,131J вл ющимис у-источниками .11 и 2.
При этом введение радиоактивного иода осуществл ют либо непосредственно в аминокислотные остатки белка, содержащие ароматические группы, либо химической модификацией различных реакционных центров белка специальными реагентами, содержащими изотопы иода.
Несмотр на то, что техника регистрации -излучени проста, работа с изотопами иода неудобна из-за их малого периода полуспада. Кроме того, включение иода в белковую молекулу часто приводит к нарушени м структуры молекулы белка, в частности к изненению антигенной специфичности.
Известны способы введени в белок долгоживуцих изотопов трити и углеро10 да- Т, обладающих м гким 5-излучением .
Например, описан способ получени радиоактивного препарата белка реакцией восстановительного алкилировани
15 с использованием .С-Лормальдегида. По этому способу на первой стадии реакции происходит взаи -юдейстпие формальдегида с Е-аминогруппами, лизина ° белка с образованием лабильных оснований Шиффй. Втора стади реакции заключаетс в восстановлении лабильных оснований Пиффа до стабильных метиль396803 ных групп при помощи боргидрида натри . Обработка белков данным способом осуществл етс при рН близком к в температуре около 3. Недостатком метода Ъл етс узкий j диапазон значений рН и температуры обработки белка, св занный с неустойчивостью боргидрида натри . При помо-. щи метода восстановительного алкилиро-г вани с использованием боргидрида нат-Ю ри можно променивать только ограниченный круг белков, стабильных именно при данных строгих параметрах обработ ки. . . , . . Наиболее близким к предлагаемому вл етс апр(соб получени меченных тритием или углеродог- -1 белков, который состоит в обработке белка радио Ьктивным формальдегидом с последующи) восстановлением образующихс лабильных оснований Юиффа до стабильных соединений цианоборгидридом натри ,, NotBHjCN . 6N Этот способ позвол ет проводить реакцию восстановлени при нейтральных значени х рН и иироком температурном интервале (от , до 37°С), что позво:Л ет расширить номенклатуру белков, способных к промачиванию при указанных режимах обработки t. Известные способы обработки белков реакцией восстановительного алкилировани с использованием в качестве восстанавливающих агентов боргидрида и цианборгидрида натри дают возможность получать меченные белки, сохран ющие антигенную специйичность, с удельной радиоактивностью 0,,0 мкК /г белка, котора ,однако,часто недостаточна дл тестировани микроколичеств белка, с которыми приходитс иметь дело в биохимических исследовани х . Вследствие того, что радиоактив ность меченного препарата определ етс количеством С-формальдегида, необратимо св занного с аминогруппами белка, данный метод не позвол ет получать препараты с большей удельной радиоактивностью, чем указано выше, без наруиени антигенной специфичности белка. Изменени в структуре белка при использовании значительных количеств формальдегида и, особенно, .восстанавливающих агентов, обусловле4 |ны,во-первых, блокированием большого числа -аминогрупп белка, а во-вторых способностью боргидрида и цианборгидрида натри восстанавливать не только основани (Ьфа, но и карбоксильные группы, сульфидные св зи, определ ющие стабильность конформации белка. Целью изобретени вл етс повышение удельной радиоактивности промечиваемого белка при сохранении.его антигенной специфичности. . Поставленна цель достигаетс тем, что со| ласно способу получени меченного белка с помощью формальдегида, заключающемус в том, что формальдегид подвергают взаимодействию с алифатической аминокислотой, меченной тритием или углеродом-1, и образующимс при этом производным общей формулы R- СН-СОО-Н I N CHij где Г ал кил или С-алкил, обрабатывают белок в водном буферном растворе при рН 5,5-10,0 и температуре , при мол рном соотношении компонентов формальдегида, аминсжислоты и белка О, ,ОбО:1 ,9x10 . . Предпочтительными вариантами, проведени процесса вл ютс использование в качестве водного буферного раствора фосфатного и боратного буферов; в качестве алифатической аминокислоты используют Н-лизин, И-глицин %-лейцин. . Предлагаемый способ позвол ет получить белок с удельной радиоактивностью 120-909 мкК/мг белка. Антигенна специфичность белка, промеченных путем восстановительного алкилиррвани в указанных концентрационных параметрах формальдегида и восстановител , также практически не измен етс . Однако нельз получить более высокопромеченные препараты белков методом восстановительного алкилировани формальдегида без серьезного нарушени антигенной специфичности. Дл экономного расходовани радиоактивных аминокислот, белков и прочих материалов важное значение имеет возможность получени высокопромеченных белков с заданной удельной радиоактивностью путем варьировани удельной радиоактивности или концентрации аминокислот (.фиг. 1и пример 2,3). Из табл, 2 также видно, что с увеличением температуры возрастает удель на радиоактивность промечюваемого белка. Однако дл конкретного белка имеетс верхний предел температурного режима обработки, св занный с дeнatypaциoнными процессами,. Установлено, что существует определенное значение рН, завис щее от .природы конкретного белка, при котором удельна радиоактивность промечиваемого предлагаемым способом белка достигает максимального значени (фиг. 2К. . На фиг. 1 представлена зависимость величины удельной радиоактивности миоглобина, промеченного предлагаемым способом, от концентрации используемой радиоактивной аминокислоты, в частности моногидрохлорида И-лизина на фиг. 2 - зависимость величины удельной радиоактивности (а ) миоглобина и (б ) бычьего сывороточного альбумина , меченных предлагаемым способом , от величины рН среды. ; -Совокупность отмеченных преимущест способа промечивани белков обеспечивает возможность создани р да отеЧественных комплектов препаратов дл радио.изотопного анализа в биохимических ив медицинских исследовани х, например дл диагностики инфаркта миокарда и т.д. Обща схема получени меченного белка., К 0,1 мл раствора радиоактивной коммерческой алифатической аминокислоты требуемой удельной радиоактивности или концентраций добавл ют последовательно 0,01 мл 0,9-1,2 М раст эора формальдегида (оптимально 1,12 d 0,1 мл раствора белка концентрации 0,08-0,20 мг/мл. Реакцию белка с лабильными производными формальдегид и алифатической аминокислоты, образующимс практически мгновенно при их смешении, провод т в течение су так как за это времч, согласно кинетическим измерени м, взаимодействие практически заканчиваетс . Процесс промечивани провод т при соответствующем значении рН от 5,5 до 10,0 задаваемым в области рН 8,0-10,0 боратным буфером, а в области 5,5-8,0 фосфатным буфером, и температуре 20-48°С Режим обработки р(Г и температура огра ничиваютс областью устойчивости каждого конкретного белка. Меченный белок отдел ют от низкомолекул рных компонентов элюированием через хроматографическую колонку с сет фадексом или посредством диализа. Удельную радиоактивность белка опре- ; дел ют нанесением пробы объемом 0,02 МЛ наг мембранный фильтр Сынпор с последующим просчитыванием (Ь-излучени и толуольном ацинтилл торе на сцинтилл ционном счетчике. Пример 1. Дл получени меченного тритием человеческого миогло;бина вз то на 1 мг белка 10,0 мК моногидрохлорида Н-лизина удельной радиоактивности kQ,0 К/мМ и радиоактивной концентрации 1,0 мК/мл. Режим обработки: рН 10,0 и температура 20С. В результате промечивани полу1иен белок с удельной радиоактивностью 50,0 мкК/мг. Титр меченного белка во встречном электроосмофорезе составл л 1:25б, титр нативного белка 1:25б. Примеры 2 и 3. Дл получени сравнительных данных по вли нию на удельную радиоактивность человеческого миогло(5ина удельной радиоактивности и концентрации используемой аминокислоты , вз то на 1 мг белка 10,0 мК моногидрохлорида Н-лизина удельной радиоактивности соответственно ,0 К/мН и (0,25 К/мМ с радиоактивной концентрацией в обоих случа х 1,0 мК/мл. Режим обработки: pfl 7,9и температура . В результате промечивани получены белки с удельной радиоактивностью соответственно 617,0 мкК/мг и 175,0 мкК/мг. Титры меченных белков в обоих случа х во встречном электроосмофорезе. составл в Ьи 1:256, титр исходного белка также 1:256. Пример 4. Дл получени меченного тритием бычьего сывороточного альбумина вз то на 1 мг белка 10,0 мК моногидрохлорида Н-лизина удельной радиоактивности 0,0 К/мМ и радиоактивной концентрации 1,0 мК/ /мл. Режим обработки: рН 5,5 и температура 25®С. В результате промечивани получен белок с удельной радиоактивностью 273«0 мкК/мг.Титр меченного белка в реакции нейтрализации антител составл л 1:f096, титр исходного белка . Пример 5. Дл получени меченного углеродом-1 бычьего сыаороточного альбумина вз то на 1 мг белка 10,0 мК С-лейцина удельной радио активности 5«0 K/м и радиоактивной концентрации 1,0 . Режим обработки: рН 9,0 и температура . В результате промечивани получен белок с удельной радиоактивностью 291,0 мкК/мг. Титр меченного белка в реакции нейтрализации антител состав л л 1:409б, титр нативного белка . Пример 6. Дл получени меченного по тритию бычьего сывороточного альбумина вз то на 1 мг белка
Челове25 7,0 ческий миоглобин
0,058 0,2П 10,0 мК моногидрохлорида Эн-лизина удельной радиоактивности kQ,Q к/мМ и радиоактивной концентрации 1,0 мК/ /мл. Режим обработки: рН 9,0 и температура 8°С. В результате промечивани получен белок с удельной радиоактивностью 909,0 мкК/мл. Титр меченного белка в реакции нейтрализации антител составл л 1:409б, титр исходного белка 1 . В приведенных табл. 1 и . даны конкретные примеры составлени реакционн }1х смесей дл получени меченного белка. Таблица 1
1
То же
10,0 20
37 7,9
37 7,9
Бычий
25 7,0 сывороточный альбумин
То же
25
5,5
II
37 9,0
Примечание. Числитель - удельна радиоактивность , К/мМ.
Знаменатель - радиоактивна проба, мК/мг белка.
0,058 0,20
НатиоТо же ный белок Пример 7. Получение меченного человеческого миоглобина при исполь зовании формальдегида с концентрацией меньшей нижнего предела. Дл получени меченного тритием человеческого миоглобина вз то на 1 кг белка 10,0 мК моногидрохлорида Н-лизина удельной радиоактивности 0,0 К/ /мМ и радиоактивной концентрации 1,0 , при этом концентраци белка в пробе составл ла 10,0 мкг. Режим обработки: рН 10,0 и температура 20°С Концентраци используемого формальдегида 0, М. В результате промечивани в течение 4 сут получен белок с удельной радиоактивностью 280 мкК/мг, в течение 8 сут мкК/мг. Титр меченного белка во встречном электроocMO (bope3e составл л 1,25б, титр нативного белка - .i Пр и м е р 8. Получение меченно- го бычьего сывороточного альбумина при
Таблица 2
Claims (3)
1:256 использовании формальдегида с концентрацией большей верхнего предела.. Дл получени меченного тритием бычьего сывороточного альбумина вз то н.э Гкгбелка 10,0 мК моногидрохлорида К-лизина удельной радиоактивности 0,0 К/мМ .и радиоактивной концентрации 1,0 мК/mi, при этом концентраци белка в пробе составл ла 10,0 мкг. Режим обработки: рН 5,6, температура 25°С. Концентраци используемого формальдегида 0,08 М. В результате промечивани в течение 2 сут получен белок с удельной радиоактивностью 120 мкК/мг, в течение V сут 70 мкК/мг. Титр меченного белка в реакции нейтрализации антител составл ет: через 2 сут ийкубации 1: , через Л сут - 1:102. Титр нативного белка - 1: +096. Пример 9. Использование Н-глицина в качестве меченной аминокислоты. Дл полумени меченного тритием человеческого миоглобина вз то на 1 мг.белка 12,5 мК, Н-глицина удельной радиоактивности 19,0 К/мМ и радиоактипной концентрации 1,0 мК/мл, при i этом концентраци белка в пробе составл ла 8,0 мкг. Режим обработки: рН 8,0 и температура 37°С. В результате промечивани получен белок с удельной радиоактивностью 310 мкК/мг Титр меченного белка во встречном электроосмофорезе составл л 1:256, Титр нативного белка: 1:25б. Пример 10, Использование Н-глицина в качестве меченной амино- 15 кислоты. Дл получени меченного тритием человеческого миоглобина вз то на 1 мг. белка 5,0 мМ Н-глицина удельной радиоактивности 19,0 К/мМ и радиоактив- 20 ной концентрации Т 1,0 мК/мл,,при этом концентраци белка составл ла 20,0 мкг в пробе,. Режим обработки: рН 8,0 и температуре . В результате промечивани получен белок с удельной 25 радиоактивностью 130 мкК/мг. Титр меченного белка во встречном электроосмофорезе составл л 1:526, титр нативного белка - 1:256. Сохранность антигенной спёцифич- до ности человеческого миоглобина проверена во встречном электроосмофорезе, сохранность антигенной специфичности бычьего .сывороточного альбумина проверена в реакции нейтрализации анти- jj тел. Данные табл. 2 показывают, что по сравнению с известным способом значительно увеличиваетс удельна радиоактивность белков, промеченных пред- о лагаемым способом, что позвол ет npo-t водить биохимические и медицинские исследовани с меньшими концентраци ми белков. Так получен Н-миоглобин высокой удельной радиоактивности без нарушени его антиге+нной специфичности. На основе этого препарата метод радиоиммунологического определени уровн миоглобина в ыворо,тках позвол ет определ тьмиоглобин в концентрации не менее 15 х 1(. В результате параллельного определени уровн миоглобина в сыворотках больных и здоровых людей с помощью импортного набора (Sorin Biomedica , Итали ) и с помощью описываемой петодики, где меченным антигеном вл етс Н-миоглобин, оказалось. что ны рал опр рот пол гло Нмым ка ча пов бел спе ют нок лер про , где полученные результаты сопоставле (табл. 3). В табл. 3 приведены результаты палельного радиоиммунологического еделени уровн миоглобина в сывоках больных инфарктом миокарда, ученные при использовании J-миобина (Sorin Biomedica, Итали ) и миоглобина, .промеченного предлагаеспособом . Таблица 3 Формула изобретени 1. Способ получени меченного бел с помощью формальдегида, отлиющийс тем, что, с целью ышени удельной радиоактивности ка при сохранении его антигенной цифичности, формальдегид подвергавзаимодействию с алифатической амиислотой , меченной тритием, или. одрм-Н и образую1цимс при этом изводным общей формулы |-сн-соои Н-СН е - . И - алмил илис-алкил,
13
оОрае)атывают белок в водном буферном pacTUope при рН 5, и температуре при мол рном соотношении формальдегида, аминокислоты и белка 0,,0(0:1,9x10 -4x10 :
2.Способ по п. Г, отличающий с тем, что в качестве водно буферного раствора используют фосфатный и боратный буферы.
3.Способ по п. 1, о т л и ч а ющ и и с тем, что в качестве алифатической аминокислоты используют Н-лизин , Н-глицин и С-лейцин.
Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе
1. Во Eton Л.Р.., Hunter W.M. The FabeB.ing of proteins to highspecific radioactivities by conjugation
И
to a 125J-containinq acylatinq agent. AppFication to the radToimmunoassay. Biochem. J. 1973 , U3, 3, 529.
2.Greenwood F.C., Hunter A/.M, The preparation of ISU-tabetFed hunan growth hornone of high specific radioactivitg , Biochen. J. 1963, 89,N 1, lU.
3.RTce R.H., fTenns G.E. Radioactive rabcFPinq of protein In vjtrP j.Biof.Chen,1971, , N 3, 331.
t. Dottarlo-Martln D., Ravet J.Mj Radiotabefting of proteins by reductive aFkytation with € -formaМёhyde and sodium cyanoborohydride AnaP. Biochen. 1978, 87, N 2, c. 5б2 (прототип).
s
678
10 рН
Фнг.1
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802894059A SU968036A1 (ru) | 1980-03-10 | 1980-03-10 | Способ получени меченого белка |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802894059A SU968036A1 (ru) | 1980-03-10 | 1980-03-10 | Способ получени меченого белка |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU968036A1 true SU968036A1 (ru) | 1982-10-23 |
Family
ID=20882711
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU802894059A SU968036A1 (ru) | 1980-03-10 | 1980-03-10 | Способ получени меченого белка |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU968036A1 (ru) |
Cited By (13)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992007265A1 (en) * | 1990-10-18 | 1992-04-30 | Michal Lebl | Selective peptide labeling with hydrogen isotopes |
US7307059B2 (en) * | 2001-10-24 | 2007-12-11 | The Regents Of The University Of California | Measurement of protein synthesis rates in humans and experimental systems by use of isotopically labeled water |
US7357913B2 (en) | 2003-07-03 | 2008-04-15 | The Regents Of The University Of California | Methods for detecting, prognosing, or monitoring a disorder by comparing relative flux rates of two or more biological molecules in vivo |
US7910323B2 (en) | 2002-11-04 | 2011-03-22 | The Regents Of The University Of California | Methods for identifying the effect of a drug agent on the metabolism of sugars and fats in an individual |
US8005623B2 (en) | 2004-02-20 | 2011-08-23 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US8021644B2 (en) | 2002-09-13 | 2011-09-20 | The Regents Of The University Of California | Methods for measuring rates of reverse cholesterol transport in vivo, as an index of anti-atherogenesis |
US8084016B2 (en) | 2002-02-12 | 2011-12-27 | The Regents Of The University Of California | Measurement of biosynthesis and breakdown rates of biological molecules that are inaccessible or not easily accessible to direct sampling, non-invasively, by label incorporation into metabolic derivatives and catabolitic products |
US8129335B2 (en) | 2002-07-30 | 2012-03-06 | The Regents Of The University Of California | Method for automated, large-scale measurement of the molecular flux rates of the proteome or the organeome using mass spectrometry |
US8663602B2 (en) | 2003-11-25 | 2014-03-04 | The Regents Of The University Of California | Method for high-throughput screening of compounds and combinations of compounds for discovery and quantification of actions, particularly unanticipated therapeutic or toxic actions, in biological systems |
US8741589B2 (en) | 2005-06-10 | 2014-06-03 | The Regents Of The University Of California | Monitoring two dimensions of diabetes pathogenesis |
US9134319B2 (en) | 2013-03-15 | 2015-09-15 | The Regents Of The University Of California | Method for replacing biomarkers of protein kinetics from tissue samples by biomarkers of protein kinetics from body fluids after isotopic labeling in vivo |
US9737260B2 (en) | 2011-12-07 | 2017-08-22 | Glaxosmithkline Llc | Methods for determining total body skeletal muscle mass |
US10386371B2 (en) | 2011-09-08 | 2019-08-20 | The Regents Of The University Of California | Metabolic flux measurement, imaging and microscopy |
-
1980
- 1980-03-10 SU SU802894059A patent/SU968036A1/ru active
Cited By (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992007265A1 (en) * | 1990-10-18 | 1992-04-30 | Michal Lebl | Selective peptide labeling with hydrogen isotopes |
US7307059B2 (en) * | 2001-10-24 | 2007-12-11 | The Regents Of The University Of California | Measurement of protein synthesis rates in humans and experimental systems by use of isotopically labeled water |
US7410633B2 (en) | 2001-10-24 | 2008-08-12 | The Regents Of The University Of California | Measurement of protein synthesis rates in humans and experimental systems by use of isotopically labeled water |
US8084016B2 (en) | 2002-02-12 | 2011-12-27 | The Regents Of The University Of California | Measurement of biosynthesis and breakdown rates of biological molecules that are inaccessible or not easily accessible to direct sampling, non-invasively, by label incorporation into metabolic derivatives and catabolitic products |
US8129335B2 (en) | 2002-07-30 | 2012-03-06 | The Regents Of The University Of California | Method for automated, large-scale measurement of the molecular flux rates of the proteome or the organeome using mass spectrometry |
US8969287B2 (en) | 2002-07-30 | 2015-03-03 | The Regents Of The University Of California | Method for automated, large-scale measurement of the molecular flux rates of the proteome or the organeome using mass spectrometry |
US8481478B2 (en) | 2002-07-30 | 2013-07-09 | The Regents Of The University Of California | Method for automated, large-scale measurement of the molecular flux rates of the proteome or the organeome using mass spectrometry |
US8021644B2 (en) | 2002-09-13 | 2011-09-20 | The Regents Of The University Of California | Methods for measuring rates of reverse cholesterol transport in vivo, as an index of anti-atherogenesis |
US7910323B2 (en) | 2002-11-04 | 2011-03-22 | The Regents Of The University Of California | Methods for identifying the effect of a drug agent on the metabolism of sugars and fats in an individual |
US7357913B2 (en) | 2003-07-03 | 2008-04-15 | The Regents Of The University Of California | Methods for detecting, prognosing, or monitoring a disorder by comparing relative flux rates of two or more biological molecules in vivo |
US8663602B2 (en) | 2003-11-25 | 2014-03-04 | The Regents Of The University Of California | Method for high-throughput screening of compounds and combinations of compounds for discovery and quantification of actions, particularly unanticipated therapeutic or toxic actions, in biological systems |
US8005623B2 (en) | 2004-02-20 | 2011-08-23 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US8849581B2 (en) | 2004-02-20 | 2014-09-30 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US8401800B2 (en) | 2004-02-20 | 2013-03-19 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US9037417B2 (en) | 2004-02-20 | 2015-05-19 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling In Vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US9043159B2 (en) | 2004-02-20 | 2015-05-26 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US9720002B2 (en) | 2004-02-20 | 2017-08-01 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US9778268B2 (en) | 2004-02-20 | 2017-10-03 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US10466253B2 (en) | 2004-02-20 | 2019-11-05 | The Regents Of The University Of California | Molecular flux rates through critical pathways measured by stable isotope labeling in vivo, as biomarkers of drug action and disease activity |
US8741589B2 (en) | 2005-06-10 | 2014-06-03 | The Regents Of The University Of California | Monitoring two dimensions of diabetes pathogenesis |
US10386371B2 (en) | 2011-09-08 | 2019-08-20 | The Regents Of The University Of California | Metabolic flux measurement, imaging and microscopy |
US9737260B2 (en) | 2011-12-07 | 2017-08-22 | Glaxosmithkline Llc | Methods for determining total body skeletal muscle mass |
US9134319B2 (en) | 2013-03-15 | 2015-09-15 | The Regents Of The University Of California | Method for replacing biomarkers of protein kinetics from tissue samples by biomarkers of protein kinetics from body fluids after isotopic labeling in vivo |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
SU968036A1 (ru) | Способ получени меченого белка | |
US4472509A (en) | Metal chelate conjugated monoclonal antibodies | |
EP0237150B1 (en) | Improved radionuclide antibody coupling | |
RU2221807C2 (ru) | Способ радиоактивного мечения белков терапевтическим радиоактивным изотопом и набор для осуществления способа | |
Khaw et al. | Technetium-99m labeling of antibodies to cardiac myosin Fab and to human fibrinogen | |
Zalutsky et al. | Astatination of proteins using an N-succinimidyl tri-n-butylstannyl benzoate intermediate | |
Boyce et al. | Total nondialyzable solids (TNDS) in human urine. XIII. Immunological detection of a component peculiar to renal calculous matrix and to urine of calculous patients | |
CA1266344A (en) | High molecular compounds having amino groups, and their utilization | |
AU597208B2 (en) | Method of radioactively labelling diagnostic and therapeutic agents containing a chelating group | |
US4479930A (en) | Amines coupled wth dicyclic dianhydrides capable of being radiolabeled product | |
US5219556A (en) | Stabilized therapeutic radiopharmaceutical complexes | |
Yeh et al. | Decomposition rates of radiopharmaceutical indium chelates in serum | |
DE68915476T2 (de) | Diäthylentriaminpentaessigsäure-Derivate. | |
US4705686A (en) | Process for the preparation of acellular Bordetalla pertussis vaccine | |
CH649924A5 (de) | Reduktionsmaterial zur reduktion von technetium unter bildung eines technetiummarkierten liganden. | |
Wadzinski et al. | Derivatization of the human erythrocyte glucose transporter using a novel forskolin photoaffinity label. | |
Cohen et al. | Immobilized enzymes in the production of radiopharmaceutically pure amino acids labeled with 13N | |
Fish et al. | Tumour-bound immunoglobulins. The fate of immunoglobulin disappearing from the surface of coated tumour cells | |
US3925020A (en) | Method for determining the total iron-binding capacity of blood serum | |
EP0123314A2 (en) | Radioactive diagnostic agent and its preparation | |
Wu et al. | Investigations of N-linked macrocycles for 111In and 90Y labeling of proteins | |
Hayes et al. | Radioiodination of sulfhydryl-sensitive proteins | |
JPH03163097A (ja) | タンパク質又はポリペプチドをテクネチウム―99mで標識する方法、生成複合体、画像処理剤としての用途、および複合体の再調製用キット | |
Boucher | Immunoelectrophoresis of human sera with antiserum to Raben growth hormone | |
Kamel et al. | Preparation of 125iodine-labelled methotrexate and its use in a magnetisable particle solid-phase radioimmunoassay |