SU593439A1 - Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем - Google Patents
Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем Download PDFInfo
- Publication number
- SU593439A1 SU593439A1 SU752163635A SU2163635A SU593439A1 SU 593439 A1 SU593439 A1 SU 593439A1 SU 752163635 A SU752163635 A SU 752163635A SU 2163635 A SU2163635 A SU 2163635A SU 593439 A1 SU593439 A1 SU 593439A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- oxidized
- solution
- electrically conductive
- enzyme
- graphite
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Изобретение относитс к способу получени электропроводных фермент-ко- факторных систем, которые могут найти применение в ферментативных электро химических реакторах, ТОПЛИВНЬЕХ элементах и индикаторных электродах. Известен р д способов получени иммобилизованных коферментов. Такие системы используютс в основном дл целей аминной хроматографии. Известен, в частности способ получени кофермекта никотинамидадениндшуклеотида (HA/f) ковалентно св занного с полиэтиленом С Это водорастворимое производное, обладающее коферментной активностью со сво бодной и св занной с матрицей дегидрогеназой (кофермент может быть восстановлен до НАДИ). Ковалентно св занное восстановленное производное НАДН) в свою очередь может быть окислено с участием лактатдегидрогеназы . Однако полученные до последнего времени продукты иммобилизации коферментов на нерастворимых и растворимых неэлектропровоцнь1х полимерах и продуктах неорганической природы непригодны дл использовани их в ферментативных электрохимических реакторах, топливных элементах и индикаторных электродах, вследствие их неспособности обеспечить электропроводность иммобилизованной системы . С целью получени ферменткофакторных систем, обладающих проводниковыми свойствами и способных обеспечить перенос зар да с иммобилизованных кофакторов на электропроводный материал матрицы, а также с целью разработки способа удалени с электропроводной основы отработанных неактивных веществ и нанесени на нее новых активных компонентов в предлагаемом способе сорбцию кофактора производ т на различные электропроводные материалы (графит, окисленный графит, металлы, карбохромы ). Замена инактивированных в процессе длительной работы кофактора и фермента на новые осуществл етс посредстBOM десорбции в услови х, отличных от тех, в которых работает система - ферментиммобилизованный кофермент.
Предлагают способ получени электропроводных ферменткофакторных систем путем адсорбции кофакторов - никотинамидадениндинуклеотиаа в окисленной (НАД) или восстановленной (НАДН) форме , никотинамидапениндннуклеотидфосфат в окисленной (НАДФ) или восстановленной (НАДФН) формах или флавинаденин .динуклеотида в окисленной (ФАД) или восстановленной (ФАДН) формах - на различные электропроводные материалы - графит, окисленный графит,- металлы , карбохромы, с последующим контактированием полученной системы с раствором , содержащим соответствук цие субстраты и ферменты.
Возможность получени фермент-ко- . факторных систем на различных электропроводных материалах проверена на системе; окисленный графит - НАД алкогольдегидрогеназа . Дл этого кофермент НАД сорбируют из водного 0,015 М буферного раство15а фосфора . кали с рН 7,7 на гранулированный графит , который предварительно обрабатывают кип щей концентрированной азотной кислотой в течение 6 ч. Получен-. на таким образом ферменткофермент- на система прочно удерживаетс на электропроводном метериале - окисленном графите. Система работает в течение 250 ч в услови х работы системы фермент-кофактор, при этом не наблюдаетс заметной инакт1тации активных компонентов, В случае потери активности системы, например, во времени , осуществл ют ее десорбцию водноспиртовой смесью (3:1) при рН Ю с последующей иммобилизацией активных компонентов.
Пример I. Из исходного раствора восстановленного никотинамидадениндинуклеотида (НАДНд) с концентрацией О,005 моль/л в буферном 0,0 15 М растворе фосфата кали с рН 7,7 берут аликвоту, содержшцую 26О 10 г -НАДН в 2 мл буферного раствора (количество вз того дл сорбции НАДН провер ют спектрофотометрическим методом при 340 ммк в 1 см кювете, учитьта , что коэ44ициент светопоглощени дл НАДН, 6,2). Приготовленный раствор кофермента приливают к 0,1 г гранулиро ваннотх) гранита, преовзрительно окисленного кип щей концентрированной азотной кислотой в течение 6 ч. Сорбцию кофермента провод т при 5С в течение 1 ч и периодическом перемешивании. После сорбции графит отдел ют от раствора и последний спектрофотометрируют. По разности исходных и конечных количеств НАДНа зпредел ют величину сорбции. Дл окисленного графита она соответствует 62%. Слабо св занный с сорбентом НАДН отмывают буферным раствором.
Количественное опрецеление иммобилизированного на графите НАДН осуществл ют по цингиарин-сериокислотной методике C2j. Дл этого готов т раствор , содержащий следующие компоненты: Oj 15 ммоль/мп буфера фосфата кали и рН 7,7, 5О мкмоль/мл этанола, 17 мкмоль/мл лактальдегица и 0,16 мг/ мл алкоголь дегидро ген азы (все компоненты реакционной смеси смешивают
при О С). 0,2 мл полученной смеси приливают в пробирки: со стандартными растворами, содержащими известное количество , , и с 0,1 г графита с сорбированным НАДН2 . Реакционные смеси инкубируют в термостате при 37 С в течение 45 мин, после чего графит отдел ют от раствора, ферментативную реакцию останавливают добавлением I мл концентрированной серной кислоты
в выделенный и стандартные растворы. Растворы пцательно перемешивают и снова инкубируют при 70 С в течение 10 мин. Затем реакционную смесь охлаждают до комнатной температуры и
при тщательном перемешивании добавл ют 40 мкл свежеприготовленного раствора нингидрина (3% нингидрина и 5% бисульфита натри ). Раствор оставл ют сто ть при комнатной темпе-ратуре в течение вО мин, затем в
смесь приливают еще 1 мл концейтри- .рованной серной кислоты и оставл ют сто ть при комнатной температуре в течение 5 мин. Оптическую плотность
раствора замер ют при 595 ммк. Количество сорбированного кофермента определ ют по калибровочной кривой в зависимости от величины оптической плотности. Получают количественное
значение сорбированного НАДН , про вл ющего физиологическую активность ь иммобилизованном состо нии. Оно равно 74% от общего количества кофермента , сорбированного на графит. 55 Многократные опыты по определению активности иммобилизованного на окисленную поверхность графита кофермента аают стабильное дают стабильные результаты. При м е р 2. К 100 мг карбохром прилршают 2,5 мл 0,002 М раствора КАДФН, соцержащего 0,015 М буферный раствор фосфата кали с рН . Количественную оценку содержани НАДФН осуществл ют спектрофотомётрическим методом при 340 ммк в 1 см кварцевой кювете. Коэффициент светопоглощени дл НАДФН равен Ез4о 6,3- 10 . Сорбцию провод т в течение 2,5 ч при 5 С , раствор затем отдел ют центрифугированием и спектрофотометрируют, По разности исходных и конечных количеств НАДФН определ ют величину сорбции . На карбохроме сорбци НАДФН составл ет 4,8 мг на 1 г сорбента Много кратное промывание сорбента 0,0 15 М буферным раствором с рН 7,8и последую щее спектрофотометрирование промывных вод свидетельствует о стабильности иммобилизованной системы. Сорбцию коферментов НАДН И ФАД н карбохроме провод т аналогичным путем Разница лишь в том, что дл ФАД в качестве буферного раствора используют 0,1 М раствор фосфата кали с рН 7,0, Коэффициент светопоглощени дл ФАД 25,3 - 10 , Сорбци ФАД на карбохроме составл ла-1,2 мг/г, НАДН3 ,1 .мг/г. Пример 3, К 10О мг окисленного графита приливают 2,5 мл О,ОО32 М раствора ФАД, содержащего 0,1 М буферный раствор фосфата кали с рН 7, Количество ФАД определ ют спектрофото метрически по максимуму поглощени в области 260 ммк. Анализ выполн ют в 1 см кварцевой кювете, 25,3 -10 . Сорбцию провод т в течение 2,5 ч при 5 С, затем раствор фильтруют :центрифугированием. По количеству ФАД до и после сорбции суд т о ее величине. На 1 г окисленного графита сорбируегс 2,1 мг ФАД, Промывание сорбента 0,1 М буферным раствором с рН 7,0 и последующий анализ промывных эоц свидетельствует о стабильности полученной системы. Аналогично провод т сорбцию НАДФН на окисленном графите. Дл этого исполь зуют О,О15 Мфосфатный буферный раствор с рН 7,8, Количественную оценку сорбции осуществл ют спектрофотометрич 9 ки по максимуму поглощени при 340 ммк. Esf4o- 10 . Найдено, чтосорбци НАДФН на окисленном г рафите составл ет 7,8 мг на I г сорбента. П р и м е р 4. 2,5 мл О,, раствора НАДФН Б 0,015 М раствора фосфата кали с рН 7,8 приливают к 1ОО мг платиновой черни. Сорбцию провод т fe течение 2,5 ч при С. Затем лорошок отдел ют от раствора дентриф ггнрованием Раствор спектрофотометрирутот и определ ют количество сорбированного НАДФН, На платиновой черни сор- . бируютс 4,4 мг НАДФН на 1 г сорбента . Многократное промывание буфернымраствором сорбента с иммобилизованным НАДФН показывает стабильность системы , Аналогично провод т сорбцию коферментов НАДН и ФАД на платиновой черни. Величина сорбции НАДН 3,6 мг/г, ФАД 2,6 мг/г. Сорбци рассматриваемых коферментов на графите незначительна ( в пределах 0,1-О,5 мг на I г),- Восстановленные и окисленные формы коферментов сорбируютс одинаково, П р и м е р 5. С целью доказательства способности фермент-кофакторной системы обеспечивать перенос зар да на электропроводный материал матрицы использован биологический топливный элемент, в котором ЭДС возникает за счет сопр женной ферментативной окислительно-восстановительной реакции. Перенос зар да в элементе достигаетс за счет того, что в качестве катализатора используетс иммобилизованный на электропроводной основе ферк ент-кофа торный комплекс. В этом случае фермент и его кофактор вл5иотс частью электрода, на котором происходит непосредственный перенос зар да с материала электрода в активные центры ферментов, На фиг, I приведена схема реконструированной НАД-вависимой ферментатиЬнрй системы, где Е и иммобилизованные ферменты, АН и В - продукты окис, лени и восставовлениЯ5-на фиг. 2 - механизм работы двухэлектродной системы, построенной по указанному принципу на фиг. 3 - схема топливного элемента. Чтобы исключить возможность протекаи побочных процессов, используетс симетрична система из эквивалентных пс уэлементов с одним и тем же НАД-зависимым ферментом и фоновым электролитом . В качестве модельной ферментативной системы выбрана алкогольцегицрогеназа (АДГ) в сочетании с никотинамидадениндинуклеотидом (НАД). Ферменткофакторна система получена иммобилизацией на электропроводной матрице. В качестве электролита используют О,О15 М фосфатный буфер с рН 7,7 на фоне 0,5 М раствора хлорида натри . Электро химические исследовани провод т в .микро чейках, изготовленных из полиметилметакрилата и фторопласта. В одном из полуэлементов проходит окислетаге спирта цо ацетальцегида, в другом восстановление лактальдегида до 1,2 пропандиола . В результате электрохимического сопр жени указанных процессов в системе возникает ЭДС. При замыкании полуэлементов через нагрузку в системе генерируетс устойчивый ток. Биологический топливный элемент, работающий по предлагаемому способу, в котором используетс иммобилизованна на электропроводном носителе фермент-кофакторна система, имеет р д преимуществ; исключаетс стади диффузии компонентов в объем.- раствора, а также перенос кофактора между электродом и ферментом, лимитирующие окислительно-восстановительную реак-. цию;обеспечиваете эффективный перенос зар аа с кофермента на матрицу электрода; по вл етс возможность распространени этого принципа на многие ферменткофакторные системы, что позвол ет использовать в топливных элементах самые разнообразные субстраты в качестве топлива и окислител .
Топливный элемент состоит из симметричных эквивалентных камер А и Б. Графитовый электропроводный корпус I каме заполн етс гранулированным окисленным гра4итом 2 с сорбированной ферменткофакторной системой. В цел х эффектнаной подачи продуктов в зону реакции и удалени отработанных веществ провод т рециркул5щию растворов в камерах А и Б. Рециркул цию субстратов осуществл ю с помощью перестальтического насоса 3.
Электрическа схема топливного эле мента состоит из электролитического мотика 4, заполненного сефадексом в 0,0 15 М буферном растворе фосфата кали с рН 7,7 и содержащим 0,5 М
раствор хлорида натриа Дл эффективного сн ти зар да к омедненной снаружи поверхности 5 графитового корпуса I топливного элемента лрипа н контакт 6.
Дл контрол тока .и напр жени , возникающего в результате ферментативных окислительно-восстановительных .процессов, используютс микроамперметр
7и милливольтметр 8.
В качестве модели выбрана НАД-зависима фермент-кофакторна система. Она создаетс сорбцией НАДНд на окисленном графите в растворе 0,О15 М буферного раствора фосфата кали с рН 7,7 и последующей иммобилизацией ферментаалкогольдегидрогеназы (АДГ),
8предлагаемой системе фермент АДГ участвует как в окислении этилового спита до аце та льде гида, так и в восстановлении лактальдегида в 1,2-пропанциол. Камера А биологического топливного элемента , в которой идет окисление спирта по схеме
СН5 СН 2.
CHj СНО + 2Н , содержит 1 М раствор этилового спирта в О,015 М фосфатном буферном растворе с рН 7,7 на фоне 0,5 М раствора хлорида натри . Спирт, окисл сь , отдает .два электрона, которые посредством фермента по сопр женной
иммобиЛИЗированной алектропроводной цепи включающей кофактор, перенос тс камеру Б4.
НАДН-2еНАД + Н , (камера А - генераци восстановленной формы кофактора)
ie
НАД + Н
.-НАДН, (камера Б - генераци окисленной формы кофактора) и затем принимают участие в восстановлении лактальцегида в 1,2пропандиол СН, СН (ОН) СН +
. CHgCH (ОН) СНдО
В камере Б используетс 0,03 М раствор лактальдегида в фосфатном буферном растворе на фоне 0,5 М хлорида натри .
Опыты показьтают, что реконструированна ферментативна .система может эксплуатироватьс в течение длительного времени без потери каталитической %ктивности . Увеличение скорости рециркул ции субстратов приводит к значительному воэростанию тока, что обусловлено интенсификацией транспорта субстрата к ферментативной системе.
Фор .мул а изобретени
1, Способ получени электропроводных фер мент-кофакторных систем, о т л и ч аю .щ и и с тем, что производ т адсорбvjfao кофакторов икотинамидааенинаинуклеотида в окисленной или восстановленной 959 1юрмё, никотинамицацекинаинуклеотйафосфата в окисленной или восстановленной форме или фпавинадениндикухлеотнда в окисленной или восстановленной форме на электропроводный материал - матрицу, с последующим контактированием полученной системы с раствором, содержащим соответствующие субстраты и ферменты. 2. Способ по п. I, о т л и ч а ющ и и с тем, что в качестве электропроводных материалов используют графкт , окисленный грабит, металлы, кар- бохромы. Источи (ОС и информации, прин тые во внимание при экспертизе t.I.R., P.D MnitE,M.DEiEe j, B ochiw.biOpfiss.AStOi,1972, 286, 260268 . ,2..c.L.WeocEBev, N.K.GUPtoi, AnatficaE Biochemists 1971. 43, 343.
Фаг. 2
Claims (2)
- Формула изобретения1. Способ получения электропроводных фер мент-кофак торных систем, отличающийся тем, что производят адсорбцию кофакторов-никотинамидаденинцинуклеотида в окисленной или восстановленной форме, никотин ами дадениндинуклеотй цфосфата в окисленной или восстановленной форме или флавинадениндинуклеотида в окисленной или восстановленной форме на электропроводный материал — матрицу, с последующим контактированием полученной системы с раствором, содержащим соответствующие субстраты и ферменты.
- 2. Способ поп. 1, о т д и ч a tout и й с я тем, что в качестве электро проводных материалов используют грабит, окисленный грабит, металлы, кар— бохромы.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU752163635A SU593439A1 (ru) | 1975-08-04 | 1975-08-04 | Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU752163635A SU593439A1 (ru) | 1975-08-04 | 1975-08-04 | Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU593439A1 true SU593439A1 (ru) | 1980-10-07 |
Family
ID=20628918
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU752163635A SU593439A1 (ru) | 1975-08-04 | 1975-08-04 | Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU593439A1 (ru) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2495843A1 (fr) * | 1980-12-10 | 1982-06-11 | Nat Res Dev | Procede et electrode de bioelectrocatalyse |
EP0172504A2 (de) * | 1984-08-18 | 1986-02-26 | BASF Aktiengesellschaft | Biologischer Reaktor |
US5122456A (en) * | 1987-05-01 | 1992-06-16 | Cambridge Life Science Plc | Amperometric method for the quantitative determination of 1,4-dihydronicotinamide adenine dinucleotide (nadh) in solution |
WO1997045720A1 (en) * | 1996-05-27 | 1997-12-04 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Electrochemical and photochemical electrodes and their use |
-
1975
- 1975-08-04 SU SU752163635A patent/SU593439A1/ru active
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2495843A1 (fr) * | 1980-12-10 | 1982-06-11 | Nat Res Dev | Procede et electrode de bioelectrocatalyse |
EP0172504A2 (de) * | 1984-08-18 | 1986-02-26 | BASF Aktiengesellschaft | Biologischer Reaktor |
US5122456A (en) * | 1987-05-01 | 1992-06-16 | Cambridge Life Science Plc | Amperometric method for the quantitative determination of 1,4-dihydronicotinamide adenine dinucleotide (nadh) in solution |
WO1997045720A1 (en) * | 1996-05-27 | 1997-12-04 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Electrochemical and photochemical electrodes and their use |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7459223B2 (en) | Electrochemical methods for generation of a biological proton motive force | |
Cass et al. | Ferricinium ion as an electron acceptor for oxido-reductases | |
US6495023B1 (en) | Electrochemical methods for generation of a biological proton motive force and pyridine nucleotide cofactor regeneration | |
US7544438B2 (en) | Electron mediator, electron mediator immobilized electrode, and biofuel cell using the electrode | |
JP5207576B2 (ja) | 燃料電池、ポータブル電源及び電子機器 | |
WO2012115278A1 (ja) | 微生物燃料電池、該電池の燃料と微生物、およびバイオリアクタとバイオセンサ | |
JPS5912135B2 (ja) | 酵素電極 | |
US20050067303A1 (en) | Electrochemical detection of nadh or naph | |
JP4300743B2 (ja) | 燃料電池 | |
JP2012151130A (ja) | 燃料電池 | |
JPS5816696B2 (ja) | 酵素電極 | |
SU593439A1 (ru) | Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем | |
Laurinavicius et al. | Amperometric glyceride biosensor | |
Hossain et al. | Effect of pore size of MgO-templated porous carbon electrode on immobilized crosslinked enzyme–mediator redox network | |
US7410709B2 (en) | Bio-battery | |
JP2006049215A (ja) | 燃料電池 | |
RU2229515C1 (ru) | Водород-кислородный топливный элемент на основе иммобилизованных ферментов | |
JP4000708B2 (ja) | 酵素固定化電極を用いる物質の測定方法 | |
CN115236158A (zh) | 葡萄糖生物传感器、MXene纳米片及其制备方法 | |
Sonawat et al. | Covalent immobilization of FAD and glucose oxidase on carbon electrodes | |
Park et al. | Bioelectrocatalysts: engineered oxidoreductase system for utilization of fumarate reductase in chemical synthesis, detection, and fuel cells | |
JPH029303B2 (ru) | ||
Kajiya et al. | Electron transfer between an electron mediator-adsorbed glucose oxidase and an electrode | |
JP2008059800A (ja) | 酵素電極並びにこれを備える燃料電池及び酵素センサー | |
Treu et al. | Bioelectrocatalysis of pyruvate with PQQ-dependent pyruvate dehydrogenase |