SU1707070A1 - Способ аэробной и анаэробной ферментации - Google Patents
Способ аэробной и анаэробной ферментации Download PDFInfo
- Publication number
- SU1707070A1 SU1707070A1 SU894645361A SU4645361A SU1707070A1 SU 1707070 A1 SU1707070 A1 SU 1707070A1 SU 894645361 A SU894645361 A SU 894645361A SU 4645361 A SU4645361 A SU 4645361A SU 1707070 A1 SU1707070 A1 SU 1707070A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- gas
- liquid
- aerobic
- biomass
- Prior art date
Links
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к микробиологической промышленности Цель изобретени - повышение активности продуцента, снижение затрат на приготовление носител и унифицировэние оборудовани . Цепь изобретени - увеличение выхода продукта и упрощение способа. Дл этого закрепление клеток производ т е пене на межфазной поверхности газ - жидкость при удельных затратах мощности на создание межфэзной поверхности от 0,5 до 3.0 кВт/м3 ч. При этом дл проведени аэробной ферментации используют бзрботаж воздухом, а анаэробной - бароотзж рецирку.лируемым в фермента- торе газом. 2 тэбл.
Description
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, в частности к псоизеодстеэм з энолэ, фуранкарбоновой кислоты, антибиотиков, биомассы дрожжей, ферментов и других продуктов трансформации органических субстратов иммобилизованными клетками микроорганизмов.
Использование иммобилизованных клеток е аэробной и анаэробной ферментации позвол ет более эффективно использовать каталитические свойства микроорганизмов: по вл етс возможность создани непрерывно действующих стабильных процессов без затрат на получение и выделение биомассы.
Известен способ анаэробной ферментации с использованием иммобилизованных дрожжевых клеток дл получени этанола. В этом способе клетки Saccharomyces
cerevisiae включают в фотосшиваемые смолы , пол ризаци которых происходит под действием света 300 - 400 нм. Гелевые пластинки толщиной 0,8 - 1.0 мм укладывают вертикально в реактор непрерывного действи . В качестве субстрата подают разбавленную тростниковую мелассу.В установке, оборудованной таким образом, выход спирта составл ет 600 л/день. 1.
Однако продуктивность реактора постепенно снижаетс из-за накоплени в нем осадка мелассы, который необходимо периодически удал ть.
Известен также способ анаэробной ферментации дл получени этанола с использованием дрожжевых клеток, иммобилизованных в пектине. Дл иммобилизации клеток S. serevisiae CM-1-20 равные объемы пектина и дрожжевой суспензии ввод т D
С
V
с
V
с
смесь 0.2 М Мэ2Вл07. Концентрации дрожжей в пектине и в исходной суспензии обычно равны 70 г/л сухой массы и 2 - 6 об.% массы соответственно. При сбраживании глюкозы иммобилизованными на твердом носителе клетками максимальный выход этанола составл ет 0,43 г/л глюкозы, а продуктивность 12 кг/м3 ч 2.
Недостатками способов аэробной и анаэробной ферментации, включающих инкубацию субстратов с иммобилизованными на твердых носител х клетками, вл ютс снижение активности клеток биомассы при закреплении на носителе из-за затрудненного доступа субстрата и кислорода при аэробных процессах и недостаточной вентил ции при анаэробных процессах, необходимость регенерации носител , загр знение носител осадками субстрата и необходимость удалени осадков; неконтролируемость количества биомассы на матрице и ограниченна скорость потока через носитель, а также необходимость специального оборудовани дл накоплени биомассы продуцента, приготовлени носител и ферментации.
Целью изобретени вл етс увеличение выхода продукта и упрощение способа.
Указанна цель достигаетс тем, что согласно способу аэробной и анаэробной фер- м е н т а ц и и. включающему инкубацию cv6cTp3TQBC иммобилизованными клетками и последующее отделение продуктов реакции , используют клетки, обладающие фло- тирующей способностью, а их иммобилизацию осуществл ют путем закреплени клеток нэ межфазной поверхности газ - жидкость при удельных затратах мощности 0.5 - 3 кВт.м ч. при этом дл иммобилизации при проведении аэробной ферментации используют барботаж воздухом , а при проведении анаэробной - барботаж рециркулируемым в ферментаторе газом.
Способность клеток адсорбироватьс нэ поверхности раздела фаз газ - жидкость известна и используетс при выделении клеток из культуральной жидкости методом флотации. Флотир , ющей способностью обладают дрожжс-подобные грибы рода Candida, Trlchosporon, Hansenula. Kluyveromyces.
Asperg .Hus.
тет;ии Bacillus subtllls, базидальные грибы Trichoderma nitornlum и другие. Эта способность микроорганизмов используетс дл их иммобилизации на поверхности фаз газ - жидкость.
В предлагаемом способе клетки закреплены на поверхности раздела фаз в пленках жидкости, окружающих пузырьки, и не обладают способностью свободно передвигатьс в основном объеме жидкости. Об этом свидетельствует полное отсутствие клеток в жидкости, выводимой из аппарата, несмотр на их значительную концентрацию в объеме реактора (12-40 г/л абсолютно сухой биомассы) и высокие скорости протока среды (D - 1-2 ).
Среди известных способов аэробной и анаэробной ферментации, включающих ии0 кубацию субстратов с иммобилизованными клетками и последующее отделение продуктов реакции, не обнаружено признаков, сходных с отличительными признаками предлагаемого изобретени .
5 В отличие от способа аэробной и анаэробной ферментации с использованием традиционной иммобилизации на твердых носител х, где поверхность раздела фаз фиксируют, создание поверхности раздела
0 фаз в системе газ - жидкость требует введени энергии на диспергирование газа, так как така двухфазна система обладает только динамической устойчивостью и в отсутствии подвода энергии на перемешива5 ние расслаиваетс с образованием газовой и жидкой фаз. Дл создани и поддержани раздела фаз в зависимости от пенообразую- щей способности раствора требуетс различный вклад мощности на перемешивание.
0 Увеличение выхода продукта в предлагаемом способе аэробной и анаэробной ферментации обусповлечс повышением эк- гиг:ности продуцента по сравнению со способом , где используют иммобилизацию нэ
5 твердых носител х, так как в предлагаемом способе субстрат, кислород и другие компоненты среды абсолютно доступны клетке и последн не ингибируетс химическими соединени ми, применение которых неиз0 бежно при формировании твердых носителей . Поверхность раздела фаз газ - жидкость не загр зн етс осадками субстратов и способствует активному массооб- мену газов.
5 Дл накоплени биомассы продуце.н- тов, проведени процесса иммобилизации и получени продуктов не требуетс специального оборудовани , а все три процесса протекают в одном ферментаторе. Унифика0 ци оборудовани , а также снижение затрат на приготовление носител достигаетс тем, что дл аэробных и анаэробных процессов требуетс один ферментатор, с той лишь разницей, что при проведении аэробных
5 процессов используетс воздух, а анаэробных - С02. любой инертный газ Все указанное приводит к упрощению предлагаемого способа.
Иммобилизованные клетки микроорга: низмов на поверхности раздела фаз газ жидкость используют Б аэробном процессе ЬиотрансФормации фурфурола (Ф) в фуран- г-кэрбоновую. кислоту (ГФКК), в аэробном процессе очистки сточных вод и анаэробном процессе сбрэживани Сахаров на спирт.
Ферментацию провод т с различными видами микроорганизмов из музе ВНИИ- гидролиз в ферментаторе емкостью 3 л при определенном вкладе мощности на создание межфазной поверхности газ - жидкость , снабженном мешалкой, системами подачи воздуха, те; остатировани подачи субстрата и отбора ультурэлъной жидкости через зону, лишенную подвода энергии перемешивани .
Зона, лишенна подвода энергии, создаетс искусственно, в виде кармана или ложного дна ферментэтора. В этой зоне происходит расслоение на газовую и жид- к/ю фазы. Микроорганизмы, закрепленные на поверхности пузыг -OB. всплывают в активную зону фермеь. ора.а культуральна жидкость, свободна от клеток и содержаща целевой продукт, выводитс из зоны, лишенной энергии.
В фэрментатор непрерывно подают пи- тательные среды газ. поддерживают температуру и рН. Одновременно с подачей питательней ществл ют непрерывный СТбОр KV oTy;: .ЗЛЬНОЙ ЖИДКОСТИ ИЗ
зоны, лишенной подвида энергии. Удержание биомассы в Ферментаторе осуществл ют за счет им м о б и лvза ц ии клеток на поверхности раздела фЈ- газ жидкость. В культуральной жидкс-ти определ ют концентрации продуктов методом ж.идкостной хроматографии, спектрофотометрически, химически.
Осуществл способ аэробной и анаэробной ферментации с использованием клеток, обладающих флотирующей способностью , иммобилизованных на межфазной поверхности газ - жидкость, накопление биомассы продуцента и биотрансформацию фурфурола иммобилизованными клетками провод т в одном ферментаторе.
Пример 1. Дрожжи Candida tropicalls 649(У-699) внос т в ферментатор с питательной средой, а активную зону которого непрерывно подают воздух и осуществл ют активное перемешивание среды с помощью мешалки (М 500 мин ) дл создани межфазной поверхности газ - жидкость. Вклад мощности на перемешивание 1.2 кВт/м поверхности , на которой удерживаютс клетки дрожжей. При достижении концентрации биомассы в ферментэторе 12 г/л вместо питательной среды начинают подачу раствора Ф с концентрацией 1.5%. Из зоны ферментатора , лишенной подс-одл энергии, отбирают культуральную жидкость без биомассы продуцента, в которой Ф окислен до ГФКК. Процесс биотрэнсфсрмэции Ф протекает
5 при 37°С и рН 6,0. Скорость подами раствора составл ет D 0,2 ч .
Выход целевого продукта - ГФКК составл ет 95%. Процесс трэнсформэции осу- ществл ют непрерывно в течение 120 «,
0 концентраци биомассы в ферментаторе составл ет 12 г/л, а в культуральной жидкости -0,12 г/л.
Пример 2. Накопление и иммобилизацию продуцента ФКК дрожжей Hansennla
5 anomala Кир-5(У-251) и трансформацию Ф в ГФКК осуществл ют по методике примера 1. Выход ГФКК 94,3%. Унос клеток продуцента с культуральной жидкостью составл ет 0,12 г/л сухой биомассы, концентраци
0 иммобилизованных дрожжей в ферментаторе 11.8 г/л.
Пример 3. Накопление и иммобилизацию продуцента ФКК дрожжей Candida melinii Георг-1(70) (штамм не депонирован)
5 осуществл ют по методике примера 1. Выход целевого продукта 88%. Унос клеток продуцента с культуральной жидкостью 0,20 - 0,30 г/л, концентраци иммобилизованных дрожжей 11 г/л.
0 П р и м е р 4. Накопление и иммобили- зацию продуцента ФКК Candida gulllermondll Лу-2 (У-248) и бистрэнсфсрмэ- цию Ф в ФКК осуществл ют.по методике примера 1. Выход целевого продукта 90.0% .
5 Унос клеток продуцента с культуральнсй жидкостью 0,23 г/л сухой биомассы, концентраци иммобилизованных дрожжей 12 г/л.
Пример 5. Анаэробную ферментацию
0 сбраживаемых Сахаров гидролиззта древесины провод т при помощи иммобилизованных в пене на межфазной поверхности газ - жидкость клеток дрожжей С. troplcalis 649 (У-696). Межфазную поверхность созда5 ют в ферментаторе с мешалкой пои удельных затратах мощности 0,5 кВт/м .
В аппарат, снабженный мешалкой с отношениемс
dannapaia 0Ймешалки
и числом оборотов п 125 , а также системами подачи воздуха и рециркул ции газа, заливают 1 л питательного субстрата - гидролизата древесины, содержащего 6,9 5 г/л гексоз и 2,3 г/л пентоз.
В посевную среду, содержащую 420 мг/л азота и 70 мг/л P20s, внос т дрожжевые клетки С. tropicalis 649(У-696). Иммобилизаци клеток происходит одновременно с
и накоплением в аэробной стадии на меж- { . i и о й по орхности газ жидкость, созд - р, за счет подачи воздуха со скоростью 1 л/с и работы мешалки (п мин ). концентраци составл ет 12.5 г/л сухих ДГ;О.жей.
При переходе на анаэробный процесс сбражиеани гидролизата вместо подачи воздуха наминают рециркул цию углекислого газа , образующего при сбраживэнии гидролизата. Сбраживание Сахаров гидролизата на спирт происходит при 32°С, рН 4,0, подаче субстрата со скоростью D 1.0 ч .
Выход этанола составл ет 0.46 г/г от сброженных редуцирующих веществ (РВ) гидролизатз
Концентраци биомассы в культурэль- ной жидкости, отбираемой из зоны, лишенной подвода энергии, составл ет 0,1 - 0.25 г/л.
Пример 6. По методике примера 5 получают этанол при помощи иммобилизованных на межфазной поверхности газ - жидкость клеток Kluyveromyces marxianus WC. При вкладе мощности на создание меж- фазной поверхности газ - жидкость 1,5 кВт/м выход спирта составл ет 0.42 г/г. концентраци биомассы в культуральной жидкости составл ет 0,5 г/л.
Пример 7 По методике примера 5 поучают этанол при помощи иммобилизованных на межфэзной поверхности газ - жидкость ето С. tropical is ОН-2 (штамм не депонирован Пг. i вкладе мощности на создание межфазной поверхности газ - жидкость 1,5 кВт/м выход спирта составл ет О 36 г/г, а концентраци биомассы в культура льне и жидкости составл ет 0.1 -0,18 г/л.
В табл. 1 приведены результаты других анаэробных Ферментации гидролизата дрересины и мелассы иммобилизованными клетками
Пример 8. Очистку сточных вод гидролизного производства провод т путем аэробного культивировани Tr. cutaneum Лд-Ю(У491). Процесс провод т в лабораторном ферментэторе емкостью 5 л, число оборотов мешалки 400 мин . расход воздуха 2 л/ч. Вклад мощности на перемешивание 3,0 кВт/м3; рИ среды 5,5: t 36°С: скорость подачи сточной воды D 3.0 ч ;концентраци биомассы е ферментаторе 9.5 г/л сухой биомассы: концентраци загр знений на входе по ХПК 6000 мг 02/л.
Очищенную сточную воду отбирают из зоны ферментатора. лишенной подвода энергии, в количестве 13.5 л/ч, концентраци биомассы в ней составл ет 0,1 - 0,2 г/л сухой биомассы: ХПКост 2000 мг 02/л. Избыточную биомассу отбирают из верхней
части ферментатора с концентрацией 9.5 г/л с потеком жидкости 1.5 л/ч. Глубина очистки составл ет 66 - 70% (по ХПК) Удельна окислительна мощность 12 г 0:/пч
ПримерЭ Очистку воды гидролизно- дрожжевсго производства производ т ассоциацией культур микроорганизмов Aspergillus niger и penicUlium chrisogenum (не депонированы) по методике примера 8.
0 Концентраци загр знений на входе по ХПК 6700 мг 02/л. Глубина очистки 75-78% (по ХПК), удельна окислительна мощность системы 9,2 02/л ч.
В табл. 2 приведены результаты других
5 аэробных ферментации сточной воды иммобилизованными клетками.
Как видно из приведенных примеров различных ферментации, биомасса микроорганизмов п результате закреплени на по0 верхности раздела фаз газ - жидкость имеет врем пребыБЗни в объеме ферментатора значительно большее, чем врем пребывани жидкости.
Так, в примерах 1 - 4 при биотрансфор5 мации Ф среднее врем пребывани жидкости в ферментаторе составл ет 5 ч пои времени трансформации более 120 ч
В пример. 5 - 8 при сбражгей-ши с.д- харосодержащих растворов в этанол р зни0 ца времени отбывани дрожжей 250 ч и жидкости (1 н) еще больше. Аналогичные данные получены и при очистке стсччь х вод: 0,3 и 250 ч соответственно (прг .-сры В и 9).
5Способ ферментации с исполt зо&анн м клеток, обладающих флотирующей способностью , иммобилизованных путем закреплени клеток на межфазной поверхности газ - жидкость может быть применен как
0 дл аэробных процессов (примеры 1 - 4, 8 и 9), так и анаэробных (примеры 5 - 8) В зависимости от ис. ользуемого субстрата и по пенообразующей способности вклад мощности на перемешивание, необходимой
5 дл создани поверхности раздела фаз газ - жидкость и обеспечени массообмена кислорода , составл ет от 0,5 кВт/м (дл мелассы до 3 кВт/м (дл сточных вод гидролизного производства) Процессы первичного накоп0 лени биомассы продуцентов во всех примерах и различные процессы с использованием иммобилизованных на поверхности раздела фаз газ - жидкость клеток провод т в одном и том же ферментаторе дл аэробных и анаэ5 робных процессов.
В примерах 8-9 приведены ферментации с использованием флотирующихс микроорганизмов различных классов и родов, что указывает на широкую возможность применени предлагаемого способа дл
получени продуктов метаболизма, биомассы и дл очистки сточных вод.
Claims (1)
- Формула изобретени Способ аэробной и анаэробной ферментации , включающий инкубацию субстратов с иммобилизованными клетками и последующее отделение продуктов реакции , отличающийс тем, что, с целью увеличени выхода продукта и упрощени способа, используют клетки, обладающиефлотирующей способностью, а их иммобилизацию осуществл ют путем закреплени клеток на межфазной поверхности газ - жидкость при удельных затратах мощности на создание межфазной поверхности 0,5 - 3.0 кВт/м3- ч, при этом дл иммобилизации при проведении аэробной ферментации используют барботаж воздухом, а при проведении анаэробной - барботаж рециркули- руемым в ферментаторе газом.Таблм ц а IТаблида2
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894645361A SU1707070A1 (ru) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | Способ аэробной и анаэробной ферментации |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894645361A SU1707070A1 (ru) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | Способ аэробной и анаэробной ферментации |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1707070A1 true SU1707070A1 (ru) | 1992-01-23 |
Family
ID=21426396
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894645361A SU1707070A1 (ru) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | Способ аэробной и анаэробной ферментации |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1707070A1 (ru) |
-
1989
- 1989-01-30 SU SU894645361A patent/SU1707070A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Ada I. ef al. Continuous aleohol fer.Tientation technologic using Immobilized yeach ceM. - Biotechnol, 83. Pros Just, conf Commer Appl H. Implicat Blotechnol, Ho:thvod. 1933, p. 597-611. Havarro A.R. ef al. Production of ethand bv irnmoh i ed in pecfin. - Eur. J. App microbici. Biotechnol. 1983. v.17, N°3, p.148-151 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4044500A (en) | Integrated fermentation-photosynthesis biomass process | |
US4409329A (en) | Saccharification method | |
EP0964831B1 (en) | Method for acquiring grain-shaped growth of a microorganism in a reactor | |
Jianlong | Enhancement of citric acid production by Aspergillus niger using n-dodecane as an oxygen-vector | |
CN86101142A (zh) | 利用微生物转化法在气态氢存在下除去硝酸盐的方法 | |
US3969190A (en) | Apparatus and method for microbial fermentation in a zero gravity environment | |
CN113307377A (zh) | 一种利用活性微藻耦合处理发酵排放废气与废水的方法 | |
CA1210716A (en) | Continuous production of ethanol by use of respiration deficient mutant yeast | |
Chibata et al. | Immobilized microbial cells and their applications | |
WO2008126669A2 (en) | Method for producing pyruvic acid | |
JP3549444B2 (ja) | 微生物による水素の生産方法 | |
HÄggström et al. | Continuous production of butanol with immobilized cells of Clostridium acetobutylicum | |
SU1707070A1 (ru) | Способ аэробной и анаэробной ферментации | |
CN1048282C (zh) | 生产2-酮-l-古洛糖酸的方法 | |
FI85501B (fi) | Foerfarande foer framstaellning av polyoler genom pao industriell skala baserad fermentation av socker. | |
US5707825A (en) | Interface bioreactor system | |
JP2579595B2 (ja) | 新規微生物および該微生物を用いた2,6−ナフタレンジカルボン酸の製造法 | |
Toda | Theoretical and methodological studies of continuous microbial bioreactors | |
Taillandier et al. | Malate degradation by Schizosaccharomyces yeasts included in alginate beads | |
US5418166A (en) | Process and device for the biological treatment of effluents from wine cellars | |
EP1114869A1 (en) | Process for producing ursodeoxycholate | |
Málek et al. | Continuous cultivation of microorganisms: A review | |
Malek et al. | Continuous cultivation of microorganisms | |
RU1839186C (ru) | Штамм бактерий ALCALIGENES EUTROPHUS - продуцент НАД-зависимой гидрогеназы | |
SU724462A1 (ru) | Способ очистки сточных вод гидролизно-дрожжевого производства |