SU1532583A1 - Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i - Google Patents
Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i Download PDFInfo
- Publication number
- SU1532583A1 SU1532583A1 SU884392191A SU4392191A SU1532583A1 SU 1532583 A1 SU1532583 A1 SU 1532583A1 SU 884392191 A SU884392191 A SU 884392191A SU 4392191 A SU4392191 A SU 4392191A SU 1532583 A1 SU1532583 A1 SU 1532583A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- strain
- pde
- restriction
- producer
- paracoccus
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии. Целью изобретени вл етс вы вление штамма - продуцента PARACOCCUS DENITRIFICANS ВКПМ В - 4152, обеспечивающего получение эндонуклеазы рестрикции PDE 12 1, вл ющейс изошизомером рестриктазы SAU 96 1 и способной узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов GGNCC. Штамм выделен в результате поиска штаммов - продуцентов рестриктаз среди микроорганизмов, обитающих в озере Балхаш, непатогенен дл человека, нетребователен к питательным средам, легко разрушаетс ультразвуком, обеспечивает повышенный выход целевого продукта, составл ющий 3000 ед/г биомассы. Штамм PARACOCCUS DENITRIFICANS В - 4152 продуцирует эндонуклеазу рестрикции PDE 12 1, имеет сайт узнавани GGNCC, идентичный сайту узнавани SAU 96 1. This invention relates to biotechnology. The aim of the invention is to identify the producer strain PARACOCCUS DENITRIFICANS VKPM B-4152, which provides the restriction endonuclease PDE 12 1, which is an isoschizomer of the restriction enzyme SAU 96 1 and capable of recognizing and cleaving the GGNCC nucleotide sequence. The strain was identified as a result of searching for strain-producing restriction enzymes among microorganisms living in Lake Balkhash, non-pathogenic for humans, undemanding to nutrient media, easily destroyed by ultrasound, provides an increased yield of the target product, which is 3000 u / g of biomass. The PARACOCCUS strain DENITRIFICANS B - 4152 produces a restriction endonuclease PDE 12 1, and has a GGNCC recognition site identical to the SAU 96 1 recognition site.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии , в частности к получению эндо- нуклеазы рестрикции, способной узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов GGNCC.The invention relates to biotechnology, in particular, to the production of restriction endonucleases capable of recognizing and cleaving the GGNCC nucleotide sequence.
Целью изобретени вл етс вы вление нового штамма - продуцента.The aim of the invention is to find out a new strain - producer.
обеспечивающего более высокий выход целевого продукта, непатогенного дл человека и нетребовательного к питательным средам.providing a higher yield of the target product, non-pathogenic for humans and undemanding to nutrient media.
Штамм бактерий Paracoccus denitrif leans ВКПМ В-415 2 выделен вреэуль-- тате поиска штаммов-продуцентовThe bacterial strain Paracoccus denitrif leans VKPM B-415 2 was selected during the search for producer strains.
ростриктаз среди микроорганизмов, о(5итающих в озере Балхаш, .-,Rostriktaz among microorganisms, about (5thuchushchikh in the lake Balkhash, .-,
Штамм Paracoccus denitrifleans В--4152 характеризуетс следующими морфологическими, культуральными и физиологическими признаками: клетки с(Ьерические 1-1,1 мкм в диаметре, встречаютс поодиночке, в парах или а:-регатах„ В молодых культурах могут встречатьс короткие палочковидные клетки. Неподвижные. Накапливают поли В-оксибутираТо ГрамотрицаТельные. Метаболизм дыхательный. Реакции на ок- С1дазу и каталазу положительные. Не Г1ЛОФИЛЫ, нет потребностей в росто- в )Гх факторах, желатину не разжижают Шгамм хранитс в 50%-ном глицерине в, L-бульоне при t -20°С.The strain Paracoccus denitrifleans B-4152 is characterized by the following morphological, cultural and physiological features: cells with (Phenic 1-1.1 µm in diameter, are found singly, in pairs or a: -regates. In young cultures, short rod-shaped cells can be found. Stationary They accumulate poly B-oxybutyra GramotriceTeline. Respiratory metabolism. Reactions to C-daza and catalase are positive. Not G1LOFILA, no need for growth. Gh factors, gelatin is not diluted. t -20 ° C.
На рыбопептонном агаре образует колонии серовато-белые, блест щие 8-9 мм в диаметре с неровными кра ми , плоские, не врастают в агар. Рост обильньш. В РПБ образует равномерную муть, осадок. Хороший рост на синте- тртеской среде с минеральным азотом.On fish peptone agar, forms colonies grayish-white, shiny 8–9 mm in diameter with uneven edges, flat, do not grow into the agar. Growth is abundant. The RPB forms a uniform turbidity, sediment. Good growth on synthetic medium with mineral nitrogen.
Продуцируема предпагаемым штаммом ;стриктаза характеризуетс следую- ми свойствами: узнает и специфически расщепл ет последовательность нукл отидов GGNCC; оптимальное значение рН дл действи рестриктазы 7,5-9,0; оптимальна температура действи дл активности рестриктазы требуютс ионы Мо , оптимапьна концентраци 5-15 мМ.Produced by the alleged strain; strictase is characterized by the following properties: it recognizes and specifically splits the sequence of nucleotides of the GGNCC; the optimum pH for restriction enzyme action is 7.5-9.0; optimal temperature for restriction enzyme activity, Mo ions are required, with an optimum concentration of 5-15 mM.
Дл культивировани Par.den В-4152 примен ют питательную среду следующего состава, г/л дистиллированной воFor the cultivation of Par.den B-4152, a nutrient medium of the following composition is used, g / l distilled
ры; триптон 10, дрожжевой экстрактry; Trypton 10, yeast extract
Культивирование провод т при 4 хорошей аэрацией в течение 2 сут. ыход биомассы 2-3 г/л культуральной } сидкости. Выход рестриктазы Pde 12 1: 45 ед/г биомассы.Cultivation was carried out at 4 with good aeration for 2 days. The output of biomass is 2-3 g / l of culturedness. The output of restrictase Pde 12 1: 45 u / g biomass.
Пример. Клетки Par. den., :(сран щиес в 50%-ном глицерине в L- Ьульоне при t -20 С высевают на чаш- ijcy с L А. После 2 сут инкубировани |1ри клетки собирают петлей и внос т в 100 мл В и выращивают до Плотности 1,5 при . Затем куль- Ьуру внос т в 2 л В выращивают до Ьлотности 2,5 при . После охлаж- Йени клетки собирают центрифугированием . Выход биомассы 2,3 г сырого вес b 1 л средьк.Example. Par cells. den.,: (stored in 50% glycerol in L-bulone at t -20 C are seeded on a plate with L A. After 2 days of incubation | 1 or the cells are collected in a loop and added to 100 ml B and grown to Density is 1.5 at. Then the culture is introduced into 2 liters of B. grown to a density of 2.5 at. After cooling, the cells are harvested by centrifugation. Biomass yield 2.3 g wet weight b 1 liter.
5.five.
00
SS
5 five
п P
00
5five
00
5 five
00
5five
4 г клеток суспендируют в 20 мл 0.02 М буффера трис-НС1 рН 7,5, содержащего 0,001 м /2|-меркаптоэтанол и 0,1% тритон Х-100, и разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе. .Обломки клеток удал ют центрифугированием (18000 об/мин, 30 мин при ) и на- досадочную жидкость нанос т на 30 мл фосфоцеллюлозы Р-11 (Whatman), уравновешенной буфером А (0,02 М калийфос- фатный буфер, рН 7.5; 0,001 М,6-мер- каптоэтанол, 5 ЭДТА), затем колонку промьшают буфером А до исчезновени УФ-поглощающего материала в элюате.4 g of cells are suspended in 20 ml of 0.02 M Tris-HC1 buffer pH 7.5, containing 0.001 m / 2 | -mercaptoethanol and 0.1% Triton X-100, and are destroyed in an ultrasonic disintegrator. Cell debris is removed by centrifugation (18000 rpm, 30 min at) and the supernatant is applied to 30 ml of Whatman phosphocellulose P-11 (equilibrated with buffer A (0.02 M potassium phosphate buffer, pH 7.5; 0.001 M, 6-mercaptoethanol, 5 EDTA), then the column is rinsed with buffer A until the UV absorbing material disappears from the eluate.
Адсорбированный материал элюируют раствором 1 М NaCl в буфере А. Затем 60 мл полученного смыва белков с колонией диализуют в течение ночи против 2 л буфера Л и нанос т на 10 мл ДЕАЕ- целлюлозы (,ЦЕ-52, Whatman, Англи ), уравновешенной буфером А и элюируют 100 мл градиентом 0-1,0 М NaCl в буфере А. Объем каждой фракции 5 мл. Али- кваты из каждой фракции (1 мкл) инкубируют 1 ч при с 1 мкл ДНК фага С1857 и анализируют в геле агарозы. Фракции, расщепл ющие ДНК фага / (7-9), объедин ют, диализугот 3 ч против 2 л буфера А и нанос т на 4 мл фосфоцеллюлозы Р-11 (Whatman, Англи ) и элюируют 40 мл градиентом 0-0,1 М NaCl в буфере А. Объем каждой фракции 2 мл. Фракции, содержащие Pde 12 I, определ ют также, как при хроматографии на ДЕАЕ-целлюлозе. Фракции 14, 15, содержащие Pde 12 I, объедин ют и диализуют против буфера А, содержащего 0,1 М NaCl и 50%-ный глицерин. Полученный препарат фермента (1 мл) имеет удельную активность 12000 ед/мл. За единицу активности принимают минимальное количество фермента, нег.-б- ходимое дл полного расщеплени 1 йкл ДНК фага Л в течение 1 ч при 37 С. Ферментный препарат хран т . при . Из 1 г биомассы получают 3000 ед. рестриктазы Pde 12 I.The adsorbed material was eluted with a solution of 1 M NaCl in buffer A. Then, 60 ml of the resulting protein washes with a colony were dialyzed overnight against 2 liters of buffer L and applied to 10 ml of DEAE-cellulose (, TSE-52, Whatman, England), balanced with buffer A and elute with 100 ml gradient of 0-1.0 M NaCl in buffer A. The volume of each fraction is 5 ml. Aliquats from each fraction (1 μl) are incubated for 1 h with 1 μl of phage C1857 DNA and analyzed in agarose gel. The fractions cleaving the DNA of phage / (7-9) are pooled, dialized for 3 hours against 2 liters of buffer A and applied to 4 ml of P-11 phosphocellulose (Whatman, England) and eluted with 40 ml of 0-0.1 M gradient NaCl in buffer A. The volume of each fraction is 2 ml. The fractions containing Pde 12 I are determined as well as by chromatography on DEAE-cellulose. Fractions 14, 15 containing Pde 12 I are combined and dialyzed against buffer A containing 0.1 M NaCl and 50% glycerol. The resulting enzyme preparation (1 ml) has a specific activity of 12000 units / ml. The minimum amount of enzyme, neg., Required for complete cleavage of 1 µl of phage L DNA for 1 hour at 37 ° C is taken as a unit of activity. The enzyme preparation is stored. at. From 1 g of biomass receive 3000 units. restrictase Pde 12 I.
Дл определени последовательности нуклеотидов, узнаваемой рест- риктазой Pde 12 I, провод т гидролиз дак фаза и pBR 322 рестрикта- зами Pde 12 I и Sau 96 1 по отдельности , а также совместный гидролиз iэтими рестриктазами. Наблюдаетс .картина полного совпадени фрагментов , полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Pde 12 I и Sau 96 ITo determine the sequence of nucleotides recognized by the Pde 12 I restriction enzyme, the dac phase and pBR 322 restriction enzymes Pde 12 I and Sau 96 1 are separately hydrolyzed, as well as the co-hydrolysis with these restrictases. A complete picture of the fragments obtained during DNA hydrolysis with Pde 12 I and Sau 96 I was observed.
//
515325836515325836
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884392191A SU1532583A1 (en) | 1988-03-15 | 1988-03-15 | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884392191A SU1532583A1 (en) | 1988-03-15 | 1988-03-15 | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1532583A1 true SU1532583A1 (en) | 1989-12-30 |
Family
ID=21361177
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884392191A SU1532583A1 (en) | 1988-03-15 | 1988-03-15 | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1532583A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1062904C (en) * | 1994-07-28 | 2001-03-07 | 宝酒造株式会社 | A novel restriction endonuclease |
-
1988
- 1988-03-15 SU SU884392191A patent/SU1532583A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Roberts R.I. Restriction and. modification enzymes and their rocognition seguences. - Nucl. Acids. Res, 1985, 13. Suppl. 165-200. Jentsch S., GunthertU., Trau- ther T.A. Nucl. Acids Res. 1981, 12, 2753-2759. Hyghes S.G., Bruce T. and Murray K. (1980), Biochem I., 1985, 59-63. Sussenbach I.S., Steenbergh P.M., Rost I.A., Van De emven W.I., Van Enbden I.D.A. ,A second site - specific reistriction endonuclease from sta- phylococcus aureus. - Nucl. Acids. Res. 1978, 5, 1153-1163.; * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1062904C (en) * | 1994-07-28 | 2001-03-07 | 宝酒造株式会社 | A novel restriction endonuclease |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU94035744A (en) | Dna, microorganism, method of l-threonine producing | |
CN110452845B (en) | Escherichia coli for producing sucrose phosphorylase | |
SU1532583A1 (en) | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i | |
DE69738080T2 (en) | BIO-CATALYSTS WITH AMIN ACYLASE ACTIVITY | |
SU1659480A1 (en) | Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 | |
SU1532584A1 (en) | Strain of brevibacterium immotum as producer of endonuclease of restriction bim i | |
SU1631080A1 (en) | Strain of bacteria bacilius megaterium - producer of restrictase bme 361 i | |
SU1440919A1 (en) | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease | |
RU2077577C1 (en) | Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing | |
SU1650697A1 (en) | The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I | |
SU1694647A1 (en) | Strain of bacteria bacillus brevis - a producer of restrictase bbvi 21 | |
Silliker et al. | Spore-to-spore cultivation of Didymium iridis on heat-killed bacteria | |
DK157562B (en) | PROCEDURE FOR PREPARING AT LEAST TWO DEOXYRIBONUCLEASES | |
SU1095645A1 (en) | Method of producing restriction endonuclease | |
SU1661212A1 (en) | Strain of bacteria acinetobacter calcoaceticus a producer of restrictase aca 1 | |
SU1442546A1 (en) | Method of producing restrictase sfa ni capable of identifying and splitting mucleotid sequence | |
RU2073717C1 (en) | Strain of bacterium bacillus schlegelii - a producer of restriction endonuclease recognizing and splitting the nucleotide sequence 5'-ccnnnnnnngg-3' | |
RU2044054C1 (en) | Strain of bacterium escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 110 ki | |
RU2046142C1 (en) | Strain of bacterium bacillus pumilus - a producer of restriction endonuclease bpu 19-1 | |
RU2026347C1 (en) | Strain of bacterium alteromonas haloplanktis - a producer of polyuridyl-endoribonuclease | |
RU2044055C1 (en) | Strain of bacterium klebsiella azeanae - a producer of restriction endonuclease kaz 48 ki | |
RU2115728C1 (en) | Strain of bacterium bacillus stearothermophilus - a producer of restriction endonuclease recognizing and splitting nucleotide sequence 5'-ggtnacc-3' | |
RU2053299C1 (en) | Strain of bacterium bacillus badius - a producer of restriction endonuclease recognizing and splitting the nucleotide sequence 5′-(a/t)ccgg(a/t)-3′ | |
RU2021373C1 (en) | Strain of bacterium bacillus pumilis producing restriction endonuclease recognizing and cleaving nucleotide sequence 5′- cctnagc- 3′ | |
RU2001952C1 (en) | Strain of bacterium rhizobium leguminosarum - a producer of restriction endonuclease rle 691 |