SU1010128A1 - Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances - Google Patents
Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances Download PDFInfo
- Publication number
- SU1010128A1 SU1010128A1 SU813276684A SU3276684A SU1010128A1 SU 1010128 A1 SU1010128 A1 SU 1010128A1 SU 813276684 A SU813276684 A SU 813276684A SU 3276684 A SU3276684 A SU 3276684A SU 1010128 A1 SU1010128 A1 SU 1010128A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- microorganisms
- concentration
- sample
- culture
- contamination
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
1. СПОСОБ ИНДИКАЦИИ ЗАГРЯЗНЕНИЯ ОБЪЕКТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ ХИМИЧЕСКИМИ ВЕЩЕСТВАМИ путем воздействи пробой на гест -культуру микроорганизмов с последующим контролем изменений в культуре, отличающийс тем, что, с целью повышени чувствительности и сокращени времени индикации, пробу ввод т в один конец прот женной кюветы, содержащей взвесь микроорганизмов, про вл ющих эффект хемотаксиса к индицируемым веществам, измер ют перераспределение концентрации микроорганизмов вдоль кюветы и по разности концентрации микроорганизмов в контрюлируемых участках определ ют степень загр знени . (/) С -/3 -/ -/7 -л -ff1. METHOD OF INDICATION OF POLLUTION OF OBJECTS OF THE ENVIRONMENT BY CHEMICAL SUBSTANCES by affecting the sample on the gest culture of microorganisms with subsequent control of changes in the culture, characterized in that, in order to increase the sensitivity and shorten the display time, the sample is introduced into one end of the culture by passing the sample to the one end, if the sensitivity is increased and the display time is reduced, the sample is applied to the culture of microorganisms. a suspension of microorganisms exhibiting the effect of chemotaxis on the substances to be displayed, measures the redistribution of the concentration of microorganisms along the cuvette and the difference in the concentration of microorganisms in Contaminated areas determine the degree of contamination. (/) C - / 3 - / - / 7 -l -ff
Description
ьэuh
0000
-Й7 л1,а Л-Y7 l1, and L
2,Способ по п. 1, отличающийс тем, что перераспределение концентрации микроорганизмов по кювете измер ют фотометрическим методом.2, the method according to claim 1, characterized in that the redistribution of the concentration of microorganisms in the cuvette is measured by the photometric method.
3.Способ по пп. 1и2, отличающийс тем, что при индикации загр знени т желыми металлами в качестве микроорганизмов используют3. Method according to paragraphs. 1 and 2, characterized in that in the indication of contamination by heavy metals, microorganisms are used as microorganisms.
Изобретение относитс к окру , жающей среды, а именно к методам оп-. ределени степени загр зненности воды, Боадуха, почвы в области промышпенной и санитарной гигиены, и может быть использовано дл токсикологического контрол в пищевой, химико-фармацевтической и других отрасл х промышленности.The invention relates to the environment, namely to the methods of the op. determine the degree of contamination of water, boadukh, and soil in the field of industrial and sanitary hygiene, and can be used for toxicological control in the food, chemical, pharmaceutical, and other industries.
К веществам, загр зн ющим воздух, почву, воду, относ тс аммиак, сероводо . род, соли т желых металлов (Си, N.i Н) и другие.Substances that pollute air, soil, water, include ammonia, sulfurous water. genus, salts of heavy metals (Cu, N.i H) and others.
Известны различные способы определени загр знений окружающей среды, в TOK-i числе с помощью простейших микроорганизмов.Various methods are known for the determination of environmental pollution, including TOK-i using the simplest microorganisms.
Известен способ оценки токсичности сточных и природных вод, включающий инкубадию CfiEoreK a ругепоЫозс 82 в пробе и определение разниць роста в опытной и контрольной пробах l .There is a method of assessing the toxicity of waste and natural waters, including the incubation CfiEoreK a rugepozyoz 82 in the sample and the determination of the difference in growth in the experimental and control samples l.
Наиболее к предлагаемому вл етс способ определени загр знени химическими веществами, о котором суд т по уровню токсичности их, заключающийс в том, что пробу исследуемого материала ввод т во зэзаимодействие с тест купьтзфой и инокулируют в услови х, поддерживающих хороший их рост (опыт). Затем выросшие MHKpoopraHH3Na i отфильтровывают от жидкости и количество их определ ют турбидиметрически Сравнивают с количеством микроорганизмов, выросших в контрагте без исследуемой пробы , и по разнице роста в опыте и контроле определ ют степень токсичности исследуемог о материала 3.The most suggested method is the determination of contamination with chemicals, judged by their toxicity level, which consists in introducing a sample of the test material into interaction with the test and inoculating it under conditions that support their good growth (experience). Then, the grown MHKpoopraHH3Na i is filtered from the liquid and their number is determined turbidimetrically. It is compared with the number of microorganisms grown in the counterpart without the test being examined, and the degree of toxicity of the material under study 3 is determined by the difference in growth in experiment and control.
Недостатками этого способа ЯШЕЯЮТс невысока чувствительность и длительность проведени анализа. Чувствительность способа Mtuia, так как физиологИческие процессы клетки xopoiuo защищены , от нрблагопри ттлх воздействпй, по8c (oiB8us mec oiterium к концентрации ог ./мл.The disadvantages of this method YAS are low sensitivity and duration of the analysis. The sensitivity of the Mtuia method, since the physiological processes of the xopoiuo cell are protected from nrblagopri ttlh impact, according to 8c (oiB8us mec oiterium to a concentration of os. / Ml.
4, Способ по пп« 1и2, отличаю П1 и и с тем, что при индикации загржзнени объектов окружакхпей среды газообразными соединени ми серы в качестве микроорганизмов используют РагсгтлеCiurn cau oi-tom;B KoHneHTpalimi от 1О до 1О ед,/мл.4, The method according to PP "1 and 2, I differ from P1 and the fact that when indicating the loading of objects surrounded by gaseous sulfur compounds as microorganisms, RagsgleCiurn cau oi-tom; B KoHneHTpalimi from 1O to 1O units / ml are used as microorganisms.
22
этому требуютс высокие концентрации токсикантов, чтобы изменить скорость роста микроорганизмов.This requires high concentrations of toxicants to alter the growth rate of microorganisms.
Врем анализа по скорости роста определ етс не менее чем двойным временем генерации тест-культуры и достигает -нескольких часов и даже суток.The analysis time for the growth rate is determined by no less than twice the generation time of the test culture and reaches several hours and even days.
Целью изобретени вл етс повышение чувствительности и сокращение времани индикации загр знени объектов окружающей среды.The aim of the invention is to increase the sensitivity and shorten the time of the pollution indication of environmental objects.
Поставленна цель достигаетс тем, что согласно способу индикации загр знени химическими веществами объектов окружающей среды, заключающемус в воздействии пробой на тест-культуру микроорганизмов с последующим контролем изменений в культуре, пробу ввод т в один конец прот женной кюветы, заполненной взвесью микроорганизмов, про вл Ю1ДИХ эффект Хемотаксиса к индицируемым веществам, измер ют перераспределение концентрации микроорганизмов вдоль кюветы и по разности концентрации микроорганизмов в контролируемых участках -определ ют степень загр знени .The goal is achieved by the fact that, according to the method of indicating contamination by chemical substances of environmental objects, which involves exposing the test culture of microorganisms to subsequent changes in the culture, the sample is introduced into one end of the extended cuvette filled with a suspension of microorganisms effect of chemotaxis on the displayed substances, measure the redistribution of the concentration of microorganisms along the cuvette and the difference in the concentration of microorganisms in controlled areas -determine dissolved degree of contamination.
Перераспределение концентрации микроорганизмов по кювете обычно измен ют фотометрическим методом. При индикации загр знени т желыми металлами в качестве микроорганизмов обычно используют BaeiC(;5 tnec qtBriUm в концентрации 10-10 ед./мл.The redistribution of the concentration of microorganisms in the cuvette is usually changed by the photometric method. In the indication of contamination with heavy metals, BaeiC (; 5 tnec qtBriUm at a concentration of 10-10 units / ml) are commonly used as microorganisms.
При индикации загр знени объектов окружающей среды газообразными соединени ми серы используют PotranieciuTri С«и61а-Ьитв концентрации 1й Гб ед./мл:When indicating the contamination of environmental objects with gaseous sulfur compounds, use PotranieciuTri C "i 61a-beta concentration 1 GB units / ml:
Предлагаемый способ дает возможность реализовать дл индикации загр знений принципиально более чувствительную и быструю по сравнению с известным способом тест-реакцию микроорганизмовхемотаксис , направленнор дпиженин А(1The proposed method makes it possible to implement a fundamentally more sensitive and faster test reaction of microorganisms, chemotaxis, directed by dispersion A (1
31010128 431010128 4
под действием химических вешеств .Чувст-по чувствительности и быстроте иэвесгвителъность и быстрота этой тест-реак-ного и предлагаемого способов, подтверции св зана с тем, что взаимодействиеждают это положение, клетки с химикатами происходит на ре-В таблице показана чувствительностьunder the influence of chemical substances. Sensitivity and speed of this test reaction and the proposed methods, confirmation of the fact that this position interacts, the cells with chemicals occur on the re-table.
пепторном уровне на поверхности клетки. 5разных тест-реакиий миЕфоорганнзмсе кpeptone level on the cell surface. 5 different test-response myeofoorganisms to
Сравнительные экспериментальные данныехимикатам.Comparative experimental data of chemicals.
концентраци , необходима дл гибели 50%клеток за J2 ч; концентраци вещества, необходима дл 50% торможени роста клеток за 1 и за 4 сут; минимальна концентраци вещества, вызывающа хемотаксис. Хемотаксическа реакци имеет место только при разности концентраций химических веществ вдоль кюветы, в противном случае движение микроорганизмов но сит хаотичный характер, и они распределены по кювете равномерно. ИсполЕ зование в предлагаемом способе удлиненной кюветы, ввод исследуемой пробы только в один ее конец.создает разность кон центраций зсимикатов по длине кюветы, что побуждает микроорганизмы, активно перемешатьс в тот конец кюветы, где услови дл жизнеде тельности благопри тнее. Перераспределение микроорганизмов по кювете можно измерить фотометрическим , кондуктометрическим или другими методами. Рассто ние, на котором возможно вы вить перераспределение концентраций микроорганизмов, определ етс техническими характеристиками соответствующих измерительных устройств и размерами микроорганизмов и составл ет около 2 мм. Это рассто ние бактерии могут пройти за 18О с 3J,Pcirame ciumicaucldtumaa 0,8с 4 засчетдиф-фуани вещества из пробы проникнут во взвесь микроорганизмов на рассто ние 2 мм за 10 с (рассчитано по уровнению нестационарной диффузии из ограниченного объема по самым быстрым ионам). Следовательно, микроорганизмы во вс ех известных случа х могут пока- дать зону введени пробы быстрее, чем идет диффузи . Таким образом, необходимо всего от 0,8 до 180 с дл получени в кювете с участка с достаточно выраженной дл измерени разностью кон центраций микроорганизмов. Этим временем и определ етс скорость индикаци по предлагаемому способу,/,: При реализации способа можно примен ть все микроорганизмы, обладающие эффектом хемотаксиса к индицируемым веществам . В каждом конкретном случае можно выбрать тот микроорганизм, кот( рый дает наибольший положительный эффект способа. Большое разнообразие микроорганизмов и их избирательность рюак- ции на определенные вещества дает возможность утверждать, что при. решении задачи индикации определенного вещества можно выбрать подход щую культуру. 51О Кроме Poircimpcium txaudalutn апробирован Hfl культурах Batieeus SuttiBiS, BociSBus me cjterium, Serraties rnarsences , Proteus . Дл всех исследованных культур вы влена возможность индикации химическо го загр знени по предлагаемому способу Предлагаемый способ реализуетс следующим образом, Готов т дл анализа пробу в жидкости индифферентной дл используемых микроорганизмов и не вызывающей у их хемотаксиса . Водную пробу развод т при необ ходимости до концентрации, не вызывающей гибели тест-культуры, из почвы делают, выт жку и при необходимости ее развод т; анализируемый воздуз барботи руют через ловдкостьр Готов т стаддарт ную взвесь микроорганизмов, в среде, поддерживающей подвижность клеток в течение времени индикации, например воде , физиологическом растворе, причем используют подвижные микроорганизмы, обладающие эффектом хематоксиса к индицируемь м веществам (водоросли, простейщие бактерии). Заполн ют мерно , стандартной взвесью тест-культуры. уд линейную кювет}, в один ее конец внос т индицируемую пробу в количестве 1/201/5 от объема взвеси. Затем контролиру ют изменение концентрации микроорганиз мов в нескольких участках кюветы фотометрическим , кондуктометрическим или apyiTiMi методами от момента ввода пробы и до окончани индикации, которое определ етс интенсивностью хемотаксического процесса, природой химических веществ и скоростью движени используемых индикаторных микроорганизмов. Измерение ведут непрерывно или дискретно и по разности концентрации микроорга низмов по длине кюветы оценивают степень загр знени . Отсутствует необходимость в измерении абсолютного значени концентрации. Достаточно использовать косвенрпзге параметры, характеризующие величпггу концентрации микроорганизмов, например оптичсзскую плотность, электро-г проводи ость и т. п. На фиг. 1 показана зависимость вели шны хемотаксической реакции ( &Э } от концентрации ионов (с моль/л); на 4нг. 2 - зависимостр, величины хемотаксической реакции ( uJ ) от конпентрапии ионов с(С мопь/л); на фиг. 3 зависимость величины хемотаксической 5)еакции( ЛJ ) от времени (-t ) при дойсг ВИИ ионов и t{ п концентрации 2-.I. О моль/л; ча фиг, -1 - з в1К иког:т1. випгш 8 ны хемотаксической реакции ( Д3 ) от времени ( t ) при .действии ионов сГ в концентрации 1- мопь/л; на фиг. 5 зависимость хемотаксической реакции (/ЛЭ ), а от времени при разных концен1 раци х NH,и ( 5 ) от концентрации NHj за 30 мин воздействи ; на фиг. 6 - зависимость величины хемотаксической реакции (.ДЗ ) от времени вог.действи химивеского вещества { а -Ni |6-Cu)oT кон;центрации химического вещества (6-Ni i-Cju ) за ЗО мин воздействи . Пример 1. Провод т, индидацию ионов Нс , 5 соответствующие анион и катион которых хемотаксиса у тесткультуры не вызывают, что предварительно проверено экспе|эиментально. Исследуемые концентрации испытуемых ионов готов т в среде .Лозина-Лозинского следу юшего состава, г/л: I-IO 1-10-4 КСЙ 1-10M SO4 , -4 CaceaIlo NaHCO 32-10 Тест-культуру ParofmeciUfn ccnodatom выращивают no методике 5, отмьшают от дрожжей средой Лозина-Лозинского на центрифуге (3000 об/мин, 5 мин), внос т в стекл нную кювету размеракчи 7010-5 мм в количестве 3 мл, гричем используют взвесь микроорганизмов с концентрацией ЗООО клеток в 1 мл. В гу же кювету в один ее конец внос т индицируемое вещество в количестве 0,3 мл. Измер ют перераспределение кон.центрации pqramecium CCHUdatvJm вдоль кюветы под действием пробы фотометрическим методом в двух участках кюветы дл чего используют два фотоприемника, помещенных: первый - на 26 мм от места ввода пробы, второй - на 52 мм. Измерение ведут с момента ввода пробы в течение 30 мин с интервалами в 5 мин. Степень загр знени оценивают по разности сигналов ( flj ) от первого (J) и второго ( ЗУ ) фотоприемников, так как величина сигнала пропорциональна концентрации микроорганизмов в контролируемых участках. Знак величинь .ЛЭ характеризует положительное или отрицательное направление хемотаксической реакции, F-Pзультаты индикации ионов Hoj 5 показань на фиг 1-4, Порог чувствительности способа: дл иона Htt 2 1О2мопь/л (фигЛ); 10 ° моль /л (фи г. 2 ). дл иона 3 Величина хемотаксической реак11ии п;юпорциональна концентрации химичос-.ки.х веществ в широком i диапазоне последних, а именно: дл от 2 1( 2 моль/л; (фиг. 1)Т дл 5 от 1-1О до 1-10 моль/л, (фиг. 2). Величина ЛЭ достигает значени , под|цающегос измерению предлагаемым способом , через 2-5 мин и возрастает в тече- . кие всего времени индикации (ЗО мин в данном примере) (фиг.З и4). Дл Htj величина лЭ отрицательна, микроорганизмы уход т от места ввода пробы - отрицательный хемотаксис (фиг. 1 и 3). Лл ионаЗ З 3„величина аЗ положительна , микроорганизмы остаютс , соби- раютс к месту ввода пробы, т.е. имеет место положительный хемотаксис (фиг. 2 и 4). Пример 2. Индикаци загр знеНИН пробы воздуха., Часто встречающимс загр знением воздуха вл етс аммиак, поэтому моде-( лируют загр знение воздуха этим веществом . Готов т; смесь воздуха с аммиаком. Смесь барботируют через дистиллированную воду в течение 15 мин. Определ ют концентрацию аммиака в воде по стандарт ной метчдаике (метод Несслера). Рабочие растворы с известной концентрацией аммиака готов т в среде Лозина-Лозинского разбавлением до исследуемой концентрации . Далее согласно способу провод т испытайие по методике,, данной в примере 1, Исследуют растворы аммиака в диапазоне концентраций 1, 1,7 х Х10 мопь/л. Больша концентраци (1,7 -К оль/л) вызвала гибель культуры Pctramecium саи . Rectum поэтому предлагаемым способом не определ лась. Пробы с концентраци ми аммиака 1,7- 1О р 1, вызывают отрицательную хемотаксическую реакцию, а с концентрацией аммиака 1, ,7- Ю положительную v хемотаксическую реакцию, величины которых определ ют предлагаемым способом по разности концентрации микроорганизмов по длине кюветы (по оптической j плотностиДанные экспериментов представлены на графиках фиг. 5. П р и м е р 3 Определение ионов Ni и СУ в почве. Почву моделируют отмытым песком. Песок смешивает . с навесками солей никел и меди. Навески солей берут исход из их растворимости в дистиллированной Воде. Смесь песка и соли помещают .в дистиллированную воду иавесгного объема и все перемешивают. Раствор соли сливают и готов т рабочие растворы со лей известной концентрации в среае Лозина-Лозинского . Далее испытание провод т по методике, данной в примерю 1. Результаты индикации представлены на графиках фиг. 6. Таким образом, испытани показали, что предлагаемый способ обладает высокой чувствительностью (на несколько пор дков выше прототипа) и сокреццает врем индикации с нескольких часов до минут . Аналогичные результаты по чувствительности и скорости индикации предлагаемым способом подучены и на других индицируемых объектах из воды, воздуха, почвы. Кроме того, предлагаемый способ дает возможность расширить круг индицируемых вешеств за счет использовани набора тест-культур, а также за счет использовани как положительного, так и отрицательного эффекта хемотаксиса.the concentration required to kill 50% of the cells in J2 hours; the concentration of the substance required for 50% inhibition of cell growth for 1 and 4 days; the minimum concentration of the substance causing chemotaxis. The chemotactic reaction takes place only when there is a difference in the concentration of chemical substances along the cuvette, otherwise the movement of microorganisms is chaotic, and they are distributed evenly throughout the cuvette. The use of an elongated cuvette in the proposed method, the insertion of the test sample only at one end creates a difference in the maximization of the sample along the length of the cuvette, which causes the microorganisms to actively mix up at the end of the cuvette where the conditions for livelihood are more favorable. The redistribution of microorganisms in the cuvette can be measured by photometric, conductometric, or other methods. The distance at which it is possible to detect the redistribution of the concentrations of microorganisms is determined by the technical characteristics of the respective measuring devices and the size of the microorganisms and is about 2 mm. Bacteria can pass this distance in 18O with 3J, Pcirame ciumicaucldtumaa 0.8c 4 by counting the dif-fuan substances from the sample will penetrate into the suspension of microorganisms at a distance of 2 mm per 10 sec (calculated from the level of unsteady diffusion from a limited volume by the fastest ions). Therefore, microorganisms in all known cases can show the sample introduction zone faster than diffusion occurs. Thus, it takes only from 0.8 to 180 seconds to obtain in a cuvette from a site with a sufficiently pronounced difference in the concentration of microorganisms to measure. This time is determined by the rate of indication of the proposed method, /,: When implementing the method, all microorganisms with a chemotaxis effect on the displayed substances can be used. In each case, you can choose the microorganism that cat (it gives the greatest positive effect of the method. The large variety of microorganisms and their selectivity of the reaction to certain substances makes it possible to say that when solving the problem of indicating a certain substance, you can choose the appropriate culture. Poircimpcium txaudalutn was tested by Hfl cultures of Batieeus SuttiBiS, BociSBus mecjterium, Serraties rnarsences, Proteus. For all of the studied cultures, the possibility of indicating chemical contamination by the proposed method The method is carried out as follows: Prepare for analysis a sample in a liquid that is indifferent to the microorganisms used and does not cause chemotaxis. The water sample is diluted, if necessary, to a concentration that does not cause the test culture to die, it is diluted; the analyzed air is bubbled through the device. A standard suspension of microorganisms is prepared in an environment that maintains cell mobility during the indication time, for example, water, saline, and Motile microorganisms possessing hematoxis effect to indexable substances (algae, protozoa bacteria). Fill with a standard suspension of test culture. ud linear cuvette}, at one end of the test sample in the amount of 1/201/5 of the volume of suspension is introduced. Then, the change in the concentration of microorganisms in several sections of the cuvette is controlled by photometric, conductometric or apyiTiMi methods from the moment the sample is introduced to the end of the display, which is determined by the intensity of the chemotactic process, the nature of the chemicals and the speed of movement of the indicator microorganisms. Measurements are carried out continuously or discretely and the degree of contamination is estimated from the difference in the concentration of microorganisms along the length of the cell. There is no need to measure the absolute value of the concentration. It is sufficient to use indirect parameters characterizing the magnitude of the concentration of microorganisms, for example, optical density, electrical conductivity, etc. In FIG. Figure 1 shows the dependence of the magnitude of the chemotactic reaction (& E} on the concentration of ions (mol / l); in 4ng. 2 - dependence, magnitude of the chemotactic reaction (uJ) on the concentration of ions with (C mop / l); Fig. 3 the dependence of the chemotactic value of 5) action (LJ) on time (-t) with doyc VII ions and t {n concentration 2 -.I. About mol / l; Cha fig, -1 - S v1K ikok: t1. vipgsh8 of the chemotactic reaction (D3) against time (t) under the action of cG ions in a concentration of 1 mop / l; in fig. 5 dependence of the chemotactic reaction (/ LE), and on time at different concentrations of NH, and (5) on the concentration of NHj for 30 min of exposure; in fig. 6 - dependence of the chemotactic reaction (.DZ) on the time of the chemical effect of {a –Ni | 6-Cu) oT concentration of the chemical substance (6-Ni i-Cju) per D30 min of exposure. Example 1. It is carried out, the indionation of Hc ions, 5 the corresponding anion and the cation of which do not cause chemotaxis in the test culture, which was previously checked experimentally. The test concentrations of the tested ions are prepared in a medium. Lozina-Lozinskiy following composition, g / l: I-IO 1-10-4 KCY 1-10M SO4, -4 CaceaIlo NaHCO 32-10 The test culture of ParofmeciUfn ccnodatom is grown by the method 5 , removed from yeast by Lozin-Lozinsky medium in a centrifuge (3000 rpm, 5 min), added to a glass cell of size 3010-5 mm in an amount of 3 ml, a suspension of microorganisms with a concentration of ZOOO cells in 1 ml is used in grill. In the same cuvette, a displayed substance in the amount of 0.3 ml is introduced into one of its ends. The redistribution of the concentration of pqramecium CCHUdatvJm along the cuvette under the influence of the sample by the photometric method in two sections of the cuvette is measured, for which two photodetectors are used, placed: the first - 26 mm from the place of the sample introduction, the second - 52 mm. Measurements are carried out from the moment the sample is introduced for 30 minutes at intervals of 5 minutes. The degree of contamination is estimated by the difference of signals (flj) from the first (J) and second (ZU) photodetectors, since the magnitude of the signal is proportional to the concentration of microorganisms in the monitored areas. The sign of the magnitude of LE is characterized by a positive or negative direction of the chemotactic reaction, the F-Results of Hoj 5 ion indication are shown in Figs 1–4, The sensitivity threshold of the method: for the Htt ion 2 1 O 2 m / l (Fig); 10 ° mol / l (fi 2). for ion 3 The magnitude of the chemotactic reaction n; it is proportional to the concentration of chemically chemical substances in a wide range of the latter, namely: for 2 1 (2 mol / l; (Fig. 1) T for 5 from 1-1О to 1 -10 mol / L, (Fig. 2). The LE value reaches the value under the measurement by the proposed method after 2-5 minutes and increases during the entire display time (30 minutes in this example) (Fig. 3 and 4). For Htj, the magnitude of LE is negative, the microorganisms move away from the point of entry of the sample — negative chemotaxis (Figs. 1 and 3). LL ion3 C 3 — the magnitude of a3 is positive, microorganisms are about are collected, collected at the sample entry site, i.e., there is a positive chemotaxis (Figures 2 and 4). Example 2. Indication of air sample contamination. A common air contamination is ammonia, therefore air pollution with this substance. Prepared; mixture of air with ammonia. The mixture is bubbled through distilled water for 15 minutes. The concentration of ammonia in water is determined according to standard methdac (Nessler's method). Working solutions with a known concentration of ammonia are prepared in Lozin-Lozinsky medium by dilution to the concentration studied. Further, according to the method, testing is carried out according to the procedure given in Example 1. Ammonia solutions are examined in the concentration range 1.7 x 1.7 x 10 m / l. A higher concentration (1.7-K ol / l) caused the death of the Pctramecium sai culture. Rectum is therefore not determined by the proposed method. Samples with an ammonia concentration of 1.7-1 O 1 p 1 cause a negative chemotactic reaction, and with an ammonia concentration of 1, 7–10 a positive v chemotactic reaction, the magnitudes of which are determined by the proposed method from the difference in the concentration of microorganisms along the cell Density of the experiments is presented in the graphs of Fig. 5. EXAMPLE 3 Determination of Ni and SU ions in soil. The soil is modeled with washed sand. The sand mixes with weights of nickel and copper salts. The hinges of salts are based on their solubility in distilled Water. A mixture of sand and salt is placed in distilled water of a volatile volume and mixed. The salt solution is drained and working solutions of salts of a known concentration in Lozina-Lozinsky are prepared. Next, the test is carried out as described in Example 1. Display results are presented in the graphs of Fig. 6. Thus, tests have shown that the proposed method is highly sensitive (several orders of magnitude higher than the prototype) and shortens the display time from several hours to minutes. Similar results on the sensitivity and speed of the display by the proposed method are obtained on other displayed objects from water, air, soil. In addition, the proposed method makes it possible to expand the range of indicated substances through the use of a set of test cultures, as well as through the use of both positive and negative chemotaxis.
-SO ulf ffffA-SO ulf ffffA
30thirty
10201020
П i)ffu/fP i) ffu / f
Фиг.З -J7,«r) г, . ,7-/Z7- aw 7 fJ-fO mif J.7-fO-y 20 V-fO L л1, i Ю 15 W У5 Х 5. ul, тЛ to IS 20 25 }ff t, m uI,flK -да т- .2Q , , & fBcu ffm .Q 4«7-Lw fO Ci/ fiSM л 10 Си ШР Fig.Z-J7, "r) g,. , 7- / Z7- aw 7 fJ-fO mif J.7-fO-y 20 V-fO L л1, i Ю 15 W У5 X 5. ul, tL to IS 20 25} ff t, m uI, flK - yes t- .2Q, & fBcu ffm .Q 4 "7-Lw fO Ci / fiSM l 10 Si SR
фиг. 6 gCfAftI )FIG. 6 gCfAftI)
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU813276684A SU1010128A1 (en) | 1981-04-20 | 1981-04-20 | Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU813276684A SU1010128A1 (en) | 1981-04-20 | 1981-04-20 | Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1010128A1 true SU1010128A1 (en) | 1983-04-07 |
Family
ID=20953777
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU813276684A SU1010128A1 (en) | 1981-04-20 | 1981-04-20 | Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1010128A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5614375A (en) * | 1994-03-23 | 1997-03-25 | Yissum Research Development Co. Of The Hebrew University Of Jerusalem | Method and test kit for the rapid detection of biotoxic contaminants |
-
1981
- 1981-04-20 SU SU813276684A patent/SU1010128A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1, Авторское свидетельство СССР № 557098, кл. С 12 К 1/00; 1974. 2. Патент US N9 3981777, кл, 195-103,5, опублик. 1974. З.Курносов А. И., Юдин В. В. Технологи производства полупроводниковых приборов. Л., 1975. 4.Л ликов Ю. С. Физико-химические методы анализа. М., Хими , 1974. 5.Кокова В. В. Вли ние скорости протока среды на плотность, продуктивность, удельную скорость роста культуры Рога;mecium ccnudatum, Питолпги , т. Х1У, № 4, с. 516-522. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5614375A (en) * | 1994-03-23 | 1997-03-25 | Yissum Research Development Co. Of The Hebrew University Of Jerusalem | Method and test kit for the rapid detection of biotoxic contaminants |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ellis et al. | Determination of water quality | |
Kramer et al. | Acidification of aquatic systems: A critique of chemical approaches | |
Dorigo et al. | A pulse-amplitude modulated fluorescence-based method for assessing the effects of photosystem II herbicides on freshwater periphyton | |
Nguyen et al. | Voltammetry in the analysis of atmospheric pollutants: The determination of toxic trace metals in rain water and snow by differential pulse stripping voltammetry | |
Hansell et al. | Mineralization of dissolved organic carbon in the Sargasso Sea | |
Srna et al. | Copper complexation capacity of marine water samples from southern California | |
CN101907619A (en) | Quantitative detection method for the ecotoxicity effect of low-dose polluted soil | |
Cullen | Biomonitoring and environmental management | |
SU1010128A1 (en) | Method for indicating contamination of objects of environment with chemical substances | |
Quevauviller et al. | Improvements in the determination of trace elements in seawater: Leading to the certification of Cd, Cu, Mo, Ni, Pb, and Zn (CRM 403) | |
Simon et al. | Evaluation and use of a diffusion-controlled sampler for determining chemical and dissolved oxygen gradients at the sediment-water interface | |
Kuznetsov et al. | Analysis of river water by bioluminescent biotests | |
Vinyard | A chemical and biological assessment of water quality impacts from acid mine drainage in a first order mountain stream, and a comparison of two bioassay techniques | |
JP3965546B2 (en) | Ecotoxicity assessment method for environmental pollutants | |
Maurer et al. | Marine benthos in relation to pore water chemistry and sediment geochemistry of simulated dredged material | |
Balls et al. | Rainfall events and their influence on nutrient distributions in the Ythan estuary (Scotland) | |
Lehmusluoto | Some aspects on the classification of natural waters by algal assays (AGP), prelude | |
RU2222003C2 (en) | Method of biological testing of natural water, sewage and aqueous solutions | |
Hood | Waste disposal in marine waters | |
Baker et al. | The modelling and control of the pH response of an immobilised indicator | |
Dusbabek | Chloride Contamination in Natural Water Sources | |
YAMAMOTO et al. | PORE WATER SAMPLING METHOD FOR SULFIDE MEASURING IN SEDIMENT | |
RU2123692C1 (en) | Method of estimating quality of water | |
Wilson | Soil testing for acidity | |
SU1597722A1 (en) | Method of determining toxicity of aqueous media |