[go: up one dir, main page]

RU2835209C1 - Test system for detection of apple chlorotic leafspot virus by real-time pcr method - Google Patents

Test system for detection of apple chlorotic leafspot virus by real-time pcr method Download PDF

Info

Publication number
RU2835209C1
RU2835209C1 RU2024124256A RU2024124256A RU2835209C1 RU 2835209 C1 RU2835209 C1 RU 2835209C1 RU 2024124256 A RU2024124256 A RU 2024124256A RU 2024124256 A RU2024124256 A RU 2024124256A RU 2835209 C1 RU2835209 C1 RU 2835209C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
apple
virus
insdseq
insdqualifier
detection
Prior art date
Application number
RU2024124256A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Александрович Стахеев
Дмитрий Юрьевич Рязанцев
Лариса Вадимовна Самохвалова
Сергей Кириакович Завриев
Виталий Юрьевич Величко
Мария Владимировна Селиванова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ГНЦ ИБХ РАН)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ГНЦ ИБХ РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ГНЦ ИБХ РАН)
Application granted granted Critical
Publication of RU2835209C1 publication Critical patent/RU2835209C1/en

Links

Abstract

FIELD: molecular biology.
SUBSTANCE: described is a test system for detecting chlorotic leafspot virus of apple leaves, comprising a mixture for carrying out amplification, consisting of a reaction buffer, deoxynucleotide triphosphates, two oligonucleotide primers Seq1 and Seq2, specific to a fragment of a gene encoding a virus envelope protein, one oligonucleotide probe Seq3 labelled with a fluorescent dye FAM. Mixture also includes a positive control sample, which is a recombinant plasmid DNA Seq4 containing the corresponding fragment of the virus genome.
EFFECT: invention enables highly specific identification of DNA of chlorotic leafspot virus of apple-tree leaves, with high sensitivity.
1 cl, 4 dwg, 3 tbl

Description

В открытых базах данных не было обнаружено российских патентов, посвященных ПЦР-диагностике вируса хлоротической пятнистости листьев яблони. Единственным обнаруженным патентом является RU2384045C2, предметом которого является разработка способа оценки растений яблони на вирусную инфекцию с использованием оптических характеристик листьев - степени когерентности светорассеяния и оценки изменения оптической плотности листа. Данный подход предполагает выявление заражённости ACLSV, в том числе при латентном протекании инфекции. Однако, эффективность предполагаемого подхода в значительной степени зависит от квалификации персонала, а также использование специализированного оборудования. No Russian patents devoted to PCR diagnostics of apple leaf chlorotic spot virus were found in open databases. The only patent found is RU2384045C2, the subject of which is the development of a method for assessing apple plants for viral infection using optical characteristics of leaves - the degree of coherence of light scattering and assessment of changes in leaf optical density. This approach involves identifying ACLSV infection, including latent infection. However, the effectiveness of the proposed approach largely depends on the qualifications of personnel, as well as the use of specialized equipment.

Было обнаружено несколько патентов Китайской Народной Республики, предметом которых являются методы ПЦР-диагностики ACLSV.Several patents of the People's Republic of China have been identified that cover PCR diagnostic methods for ACLSV.

CN103382508A (прекратил свое действие, но может быть восстановлен). Предметом патентования являются 4 тест-системы на 3 ключевых вируса (в т.ч. ACLSV) с использованием мультиплексной ПЦР с обратной транскрипцией. При этом, способом детекции в предлагаемом подходе является гель-электрофорез, использование которого сопряжено с высокими рисками контаминации рабочего пространства продуктами амплификации, приводящей, в конечном итоге к получению ложноположительных результатов. Также проблемой мультиплексного подхода является возможное конкурентное ингибирование параллельных реакций, особенно в случаях, когда генетический материал патогена находится в низкой концентрации. Кроме того, не вполне понятна чувствительность разработанных систем.CN103382508A (expired but may be reinstated). The subject of the patent is 4 test systems for 3 key viruses (including ACLSV) using multiplex PCR with reverse transcription. At the same time, the detection method in the proposed approach is gel electrophoresis, the use of which is associated with high risks of contamination of the working space with amplification products, ultimately leading to false positive results. Another problem with the multiplex approach is the possible competitive inhibition of parallel reactions, especially in cases where the pathogen's genetic material is in low concentration. In addition, the sensitivity of the developed systems is not entirely clear.

CN111057794A (прекратил свое действие, но может быть восстановлен). Предмет патентования - несколько праймерных систем для выявления ключевых вирусных патогенов яблони, в т.ч. ACLSV. Однако и в данном случае детекция осуществляется исключительно электрофоретическим методом. CN111057794A (expired, but may be reinstated). The subject of the patent is several primer systems for detecting key apple viral pathogens, including ACLSV. However, in this case, detection is carried out exclusively by the electrophoretic method.

CN103966362A (прекратил свое действие, но может быть восстановлен). Метод определения 4-х вирусов яблони в формате мультиплексной ПЦР с обратной транскрипцией. Преимуществом данной разработки является то, что, помимо специфических праймеров, в её состав входят также праймеры внутреннего контроля (ген фактора элонгации трансляции 1 альфа яблони), позволяющие проводить выявление ложноотрицательных результатов. Детекция результатов также осуществляется исключительно в формате гель-электрофореза. Также не приводятся данные по чувствительности тест-системы.CN103966362A (has ceased to be effective, but can be restored). A method for detecting 4 apple viruses in the format of multiplex PCR with reverse transcription. The advantage of this development is that, in addition to specific primers, it also includes internal control primers (the gene of the apple translation elongation factor 1 alpha), allowing for the detection of false negative results. Detection of results is also carried out exclusively in the format of gel electrophoresis. Also, no data on the sensitivity of the test system are provided.

Анализ опубликованных на сегодняшний день литературных источников показывает, что для диагностики ACLSV используются, главным образом три подхода: визуальная диагностика, иммунохимические методы (ELISA), и различные модификации методов, основанных на амплификации нуклеиновых кислот. При этом визуальные методы диагностики трудоемки и не позволяют выявлять латентную инфекцию. Иммунохимические подходы недостаточно чувствительны, и этот факт существенно снижает возможность их применения с учетом того факта, что в растительном соке вирусы содержатся, как правило, в низких концентрациях. Кроме того, существуют сложности с получением моноклональных антител. Что касается методов, основанных на амплификации нуклеиновых кислот, то на эту тематику опубликован целый ряд работ, но детальный анализ опубликованных разработок позволяет выявить их некоторые недостатки. Некоторые статьи описывают разработку методов ПЦР-диагностики, при которых детекция осуществляется методом гель-электрофореза, что, как сказано выше, влечет высокий риск контаминации рабочей зоны [1-3]. Salmon et al., [4] предложили вариант флуоресцентной детекции ACLSV с использованием красителя, связывающегося с большой бороздкой ДНК. Такой подход позволяет снизить до минимума риск контаминации, однако поскольку интеркалирующий краситель может связываться с любой двуцепочечной ДНК, то существует риск неспецифической флуоресценции. An analysis of the literature published to date shows that three approaches are mainly used for the diagnosis of ACLSV: visual diagnostics, immunochemical methods (ELISA), and various modifications of methods based on nucleic acid amplification. However, visual diagnostic methods are labor-intensive and do not allow for the detection of latent infection. Immunochemical approaches are not sensitive enough, and this fact significantly reduces the possibility of their use, given the fact that viruses are usually contained in plant juice in low concentrations. In addition, there are difficulties in obtaining monoclonal antibodies. As for methods based on nucleic acid amplification, a number of works have been published on this topic, but a detailed analysis of the published developments allows us to identify some of their shortcomings. Some articles describe the development of PCR diagnostic methods, in which detection is carried out by gel electrophoresis, which, as stated above, entails a high risk of contamination of the working area [1-3]. Salmon et al., [4] proposed a variant of fluorescent detection of ACLSV using a dye that binds to the major groove of DNA. This approach minimizes the risk of contamination, but since the intercalating dye can bind to any double-stranded DNA, there is a risk of non-specific fluorescence.

Альтернативой классической и флуоресцентной ПЦР могут быть изотермические методы амплификации, при использовании которых синтез специфического продукта происходит при постоянной температуре. Lu et al., [5] предложили системы выявления ACLSV и других вирусов яблони с использованием петлевой изотермической амплификации (LAMP). Jeong et al., [6] разработали системы выявления ACLSV с использованием рекомбиназно-полимеразной амплификации (RPA), которые, согласно опубликованным данным, в 100 раз превосходят тест-системы на основе классической ПЦР с точки зрения чувствительности. Однако авторы проводили сравнение с тест-системами, не обладающими высокой чувствительностью, поэтому сделать окончательный вывод относительно этого параметра затруднительно. Очевидным недостатком систем на основе изотермических методов является необходимость дизайна 6-8 праймеров, что существенно сужает перечень потенциальных генов-мишеней, а также создаёт риски недостаточной специфичности. An alternative to classical and fluorescent PCR may be isothermal amplification methods, in which the synthesis of a specific product occurs at a constant temperature. Lu et al., [5] proposed systems for detecting ACLSV and other apple viruses using loop-mediated isothermal amplification (LAMP). Jeong et al., [6] developed systems for detecting ACLSV using recombinase polymerase amplification (RPA), which, according to published data, are 100 times more sensitive than test systems based on classical PCR. However, the authors conducted a comparison with test systems that do not have high sensitivity, so it is difficult to make a final conclusion regarding this parameter. An obvious disadvantage of systems based on isothermal methods is the need to design 6-8 primers, which significantly narrows the list of potential target genes and also creates risks of insufficient specificity.

Canales et al., [7] и Costa et al. [8] для изучения спектра вирусов, заражающих яблоню, использовали мультиплексную ПЦР и высокопроизводительное секвенирование. Метод высокопроизводительного секвенирования позволяет получать информацию о полном спектре вирусных патогенов, присутствующих в пробе, однако является дорогостоящим и не может быть использован в рутинной диагностической практике.Canales et al., [7] and Costa et al. [8] used multiplex PCR and high-throughput sequencing to study the spectrum of viruses infecting apple trees. High-throughput sequencing provides information on the full spectrum of viral pathogens present in a sample, but is expensive and cannot be used in routine diagnostic practice.

Тест-системой с наиболее оптимальными характеристиками, и наиболее близкой к разработке, описываемой в настоящем патенте, является предложенный Nickel and Fajardo [9] предложили метод мультиплексной ПЦР с использованием гидролизуемых (TaqMan) зондов для определения трех вирусов яблони в одной пробе. Как было упомянуто выше, ограничением мультиплексной ПЦР может быть ингибирование одной или инескольких параллельных реакций амплификации. Кроме того, авторы не дают точной информации о чувствительности тест-системы: предел обнаружения составил 2 фг тотальной кДНК, однако данных по минимально детектируемому количеству геном-эквивалентов на реакцию не приводится.The test system with the most optimal characteristics and the closest to the development described in this patent is the one proposed by Nickel and Fajardo [9] who proposed a multiplex PCR method using hydrolyzable (TaqMan) probes for the detection of three apple viruses in one sample. As mentioned above, a limitation of multiplex PCR may be the inhibition of one or more parallel amplification reactions. In addition, the authors do not provide precise information on the sensitivity of the test system: the detection limit was 2 fg of total cDNA, but no data on the minimum detectable number of genome equivalents per reaction are provided.

Список иллюстрацийList of illustrations

Рис. 1. Выравнивание фрагментов генов белка оболочки ACLSV и близкородственных вирусов, использованных для подбора прямого (ACLSVF) и обратного (ACLSVR) праймеров. Последовательности праймеров подчёркнуты. Fig. 1. Alignment of the envelope protein gene fragments of ACLSV and closely related viruses used to design the forward (ACLSVF) and reverse (ACLSVR) primers. Primer sequences are underlined.

Рис. 2. Карта вектора pAL2T, использованного для клонирования положительных контролей.Fig. 2. Map of the pAL2T vector used for cloning positive controls.

Рис. 3. Результаты ПЦР последовательных десятикратных разведений плазмиды, содержащей специфический продукт амплификации. По оси абсцисс показано логарифмические значения концентраций (геном-эквиваленты/реакцию), по оси ординат - значения соответствующих пороговых циклов. Fig. 3. Results of PCR of successive tenfold dilutions of a plasmid containing a specific amplification product. The abscissa axis shows the logarithmic values of concentrations (genome equivalents/reaction), and the ordinate axis shows the values of the corresponding threshold cycles.

Рис. 4. Флуоресцентный сигнал, детектируемый при ПЦР-анализе последовательных десятикратных разведений плазмид, содержащих специфический ампликон, с парой праймеров ACLSVF-ACLSVR и зондом ACLSVT Fig. 4. Fluorescent signal detected during PCR analysis of serial tenfold dilutions of plasmids containing a specific amplicon with the primer pair ACLSVF-ACLSVR and probe ACLSVT

Техническим результатом является разработка тест-системы для проведения высокоспецифичной идентификации кДНК, с высокой чувствительностью для обнаружения вируса хлоротической пятнистости листьев яблони методом пцр в реальном времени.The technical result is the development of a test system for highly specific identification of cDNA, with high sensitivity. for detection of apple leaf chlorotic spot virus by real-time PCR.

Предлагаемое техническое решение позволяет повысить чувствительность детекции, а также избежать проблем, связанных с контаминацией рабочего пространства продуктами амплификации. The proposed technical solution allows to increase detection sensitivity and avoid problems associated with contamination of the working space with amplification products.

Тест-система включает: смесь для проведения амплификации, состоящую из реакционного буфера, дезоксинуклеотидтрифосфатов, двух олигонуклеотидных праймеров, специфичных к фрагменту гена, кодирующего белок оболочки вируса, одного олигонуклеотидного зонда, меченного флуоресцентным красителем FAM, положительного контрольного образца, представляющего собой рекомбинантную плазмидную ДНК, содержащую соответствующий фрагмент генома вируса. Изобретение позволяет проводить высокоспецифичную идентификацию кДНК, с высокой чувствительностью (количество геном-эквивалентов, детектируемое в одной реакционной пробирке - не менее 10).The test system includes: a mixture for carrying out amplification, consisting of a reaction buffer, deoxynucleotide triphosphates, two oligonucleotide primers specific to a fragment of the gene encoding the virus envelope protein, one oligonucleotide probe labeled with a fluorescent dye FAM, a positive control sample, which is a recombinant plasmid DNA containing the corresponding fragment of the virus genome. The invention allows for highly specific identification of cDNA, with high sensitivity (the number of genome equivalents detected in one reaction tube is at least 10).

Дизайн праймеров проводили с помощью выравнивания последовательностей нуклеотидов, депонированных в базе данных NCBI c использованием алгоритма ClustalW. Помимо последовательностей нуклеотидов ACLSV, для выравнивания использовались последовательности нуклеотидов близкородственных видов. Наиболее вариабельным и пригодным для подбора праймеров был фрагмент гена белка оболочки. На рис. 1 приведены выравнивания фрагментов генов белка оболочки ACLSV и близкородственных вирусов, использованных для подбора праймеров.Primers were designed by aligning nucleotide sequences deposited in the NCBI database using the ClustalW algorithm. In addition to ACLSV nucleotide sequences, nucleotide sequences of closely related species were used for alignment. The most variable and suitable for primer selection was the coat protein gene fragment. Figure 1 shows the alignments of the coat protein gene fragments of ACLSV and closely related viruses used for primer selection.

В результате проведённого биоинформатического анализа был проведён дизайн олигонуклеотидов: прямого праймера (Seq1), обратного праймера (Seq2) и флуоресцентно-меченого зонда (Seq3). As a result of the conducted bioinformatics analysis, the design of oligonucleotides was carried out: a forward primer (Seq1), a reverse primer (Seq2) and a fluorescently labeled probe (Seq3).

Оценку специфичности тест-системы проводили с использованием заражённых образцов листьев и коры яблони, предоставленных сотрудниками Ставропольского государственного аграрного университета. Диагностика проводилась визуально с использование контрольных (не заражённых) растений в качестве референсов. The specificity of the test system was assessed using infected samples of apple leaves and bark provided by employees of the Stavropol State Agrarian University. Diagnostics were carried out visually using control (non-infected) plants as references.

Ниже приведены результаты ПЦР-анализа 18 образцов растений яблони.Below are the results of PCR analysis of 18 apple plant samples.

Табл. 1. Результаты ПЦР-анализа специфичности используемых систем. Table 1. Results of PCR analysis of the specificity of the systems used.

№ образцаSample No. МатериалMaterial Зараженность ACLSV, данные визуального осмотраACLSV infection, visual inspection data Результат ПЦР, +/- PCR result, +/- 11 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 22 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 33 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected ++ 44 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 55 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 66 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 77 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected + + 88 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 99 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1010 Яблоня, листApple tree, leaf ЗараженInfected + + 1111 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1212 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1313 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1414 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected + + 1515 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1616 Яблоня, листApple tree, leaf Не зараженNot infected -- 1717 Яблоня, кораApple tree, bark Не зараженNot infected -- 1818 Яблоня, кораApple tree, bark Не зараженNot infected --

Продукты ПЦР, полученные в результате амплификации фрагмента ДНК «положительных» образцов были проклонированы в плазмидный вектор pAL2T (схема вектора приведена на рис. 2). Соответствие проклонированной последовательности фрагменту генома ACLSV подтверждали с помощью секвенирования по методу Сэнгера. Для вектора, содержащего вставку специфического продукта (pAL2T-ACLSV, Seq4), было проведено определение концентрации с использованием флуориметра QUBIT. Плазмида pAL2T-ACLSV затем использовалась в качестве положительного контрольного образца.The PCR products obtained from amplification of the DNA fragment of the “positive” samples were cloned into the pAL2T plasmid vector (the vector diagram is shown in Fig. 2). The correspondence of the cloned sequence to the ACLSV genome fragment was confirmed by Sanger sequencing. The vector containing the insert of the specific product (pAL2T-ACLSV, Seq4) was analyzed for concentration using a QUBIT fluorometer. The pAL2T-ACLSV plasmid was then used as a positive control sample.

Чувствительность тест-системы определяли с использованием последовательных десятикратных разведений плазмиды pAL2T-ACLSV. The sensitivity of the test system was determined using serial tenfold dilutions of the pAL2T-ACLSV plasmid.

Табл. 2. Определение чувствительности тест-системыTable 2. Determination of the sensitivity of the test system

МатрицаMatrix Количество, нг/реакциюQuantity, ng/reaction Число геном-эквивалентов/реакциюNumber of genome equivalents/reaction Результат ПЦР, CqPCR result, Cq pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.53.5 1*109 1*10 9 + (6,1)+ (6.1) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-1 3.5*10 -1 1*108 1*10 8 + (8,4)+ (8.4) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-2 3.5*10 -2 1*107 1*10 7 + (11,4)+ (11.4) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-3 3.5*10 -3 1*106 1*10 6 + (14,5)+ (14.5) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-4 3.5*10 -4 1*105 1*10 5 + (17,6)+ (17.6) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-5 3.5*10 -5 1*104 1*10 4 + (20,8)+ (20.8) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-6 3.5*10 -6 1*103 1*10 3 + (24,0)+ (24.0) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-7 3.5*10 -7 1*102 1*10 2 + (27,2)+ (27.2) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-8 3.5*10 -8 1*101 1*10 1 + (30,4)+ (30.4) pAL2T-ACLSVpAL2T-ACLSV 3.5*10-9 3.5*10 -9 1*100 1*10 0 + (33,2)+ (33.2)

Зависимость сигнала ПЦР (пороговый цикл) от концентрации ДНК в реакционной пробирке, выраженной в количестве геном-эквивалентов, приведена на рис. 3. На рис. 4 показаны уровни флуоресцентного сигнала при ПЦР последовательных десятикратных разведений положительного контрольного образца. The dependence of the PCR signal (threshold cycle) on the DNA concentration in the reaction tube, expressed as the number of genome equivalents, is shown in Fig. 3. Fig. 4 shows the levels of the fluorescent signal in PCR of successive tenfold dilutions of the positive control sample.

Тест-системы для определения РНК вируса хлоротической пятнистости листьев яблони используется следующим образом.The test system for detection of RNA of apple leaf spot virus is used as follows.

Предварительно выделяют РНК из биологического материала любым подходящим методом. В настоящей работе использовался подход, основанный на использовании реагента TRIZOL с последующей очисткой смесью фенол:хлороформ и переосаждением этиловым спиртом. RNA is preliminarily isolated from biological material by any suitable method. In this work, an approach based on the use of the TRIZOL reagent, followed by purification with a phenol:chloroform mixture and reprecipitation with ethyl alcohol, was used.

Проводится реакция обратной транскрипции, для чего может быть использован термостат, либо ПЦР-амплификатор.A reverse transcription reaction is carried out, for which a thermostat or a PCR amplifier can be used.

Для проведения реакции используют готовую смесь для амплификации, состоящую из буфера, дезоксинуклеозидтрифосфатов, олигонуклеотидных праймеров, флуоресцентно-меченого зонда, Taq-полимеразы. Готовую реакционную смесь смешивают с образцами кДНК, положительным контрольным образцом и отрицательным контрольным образцом. Амплификацию проводят в течение в соответствии со следующей программой амплификации: ПЦР проводили в амплификаторе ДТ96 по следующей программе аплификации с детекцией в каналах FAM и HEX: 94°C - 90 сек 1 цикл; 94°C - 30 сек, 60°С - 30 сек - 5 циклов; 94°С - 10 сек, 60°С - 30 сек - 45 циклов.To carry out the reaction, a ready-made amplification mixture is used, consisting of a buffer, deoxynucleoside triphosphates, oligonucleotide primers, a fluorescently labeled probe, and Taq polymerase. The ready-made reaction mixture is mixed with cDNA samples, a positive control sample, and a negative control sample. Amplification is carried out in accordance with the following amplification program: PCR was carried out in a DT96 amplifier according to the following amplification program with detection in the FAM and HEX channels: 94°C - 90 sec 1 cycle; 94°C - 30 sec, 60°C - 30 sec - 5 cycles; 94°C - 10 sec, 60°C - 30 sec - 45 cycles.

Результат, для конкретного образца, считается положительным образца при превышении порового уровня флуоресценции в канале FAM выше определённого уровня. При этом. Пороговый уровень флуоресценции определяется программным обеспечением оборудования. The result for a specific sample is considered positive when the threshold fluorescence level in the FAM channel exceeds a certain level. In this case. The threshold fluorescence level is determined by the equipment software.

Для апробации разработанной тест-системы сотрудниками Ставропольского государственного аграрного университета было передано 6 образцов листьев яблони (вместе с черешками), выделенных в различных хозяйствах в разных районах Ставропольского края. Для проведения анализа на первом этапе проводилось выделение РНК. Для этого зелёную массу листьев гомогенизировали в 1 мл реагента TRIZOL (Ambion, Германия), после чего к гомогенату добавляли 0.3 мл хлороформа, центрифугировали 10 мин при 13400 об/мин, к верхней фазе добавляли 500 мкл изпропанола, инкубировали 10 мин во льду. После чего повторно центрифугировали 10 мин при 13400 об/мин, удаляли надосадочную жидкость, осадок промывали 75 % этанолом, после чего растворяли в 50 мкл деионизированной воды. Полученные РНК использовали для обратной транскрипции, которую проводили с использованием набора MMLV RT kit (Евроген, Россия) по протоколу производителя. Полученные кДНК использовали в качестве матриц в ПЦР в реальном времени с использованием разработанных специфических праймеров и зонда. ПЦР и анализ результатов проводили по протоколам, приведённым выше. В таблице 3 приведены результаты ПЦР-анализа. To test the developed test system, the employees of the Stavropol State Agrarian University transferred 6 samples of apple leaves (together with petioles), isolated in different farms in different areas of the Stavropol Territory. For the analysis, RNA was isolated at the first stage. For this, the green mass of the leaves was homogenized in 1 ml of the TRIZOL reagent (Ambion, Germany), after which 0.3 ml of chloroform was added to the homogenate, centrifuged for 10 min at 13,400 rpm, 500 μl of isopropanol were added to the upper phase, and the mixture was incubated for 10 min in ice. After that, the mixture was centrifuged again for 10 min at 13,400 rpm, the supernatant was removed, the sediment was washed with 75% ethanol, and then dissolved in 50 μl of deionized water. The obtained RNAs were used for reverse transcription, which was performed using the MMLV RT kit (Eurogen, Russia) according to the manufacturer's protocol. The obtained cDNAs were used as templates in real-time PCR using the developed specific primers and probe. PCR and analysis of the results were performed according to the protocols given above. Table 3 shows the results of the PCR analysis.

Табл. 3. Результаты ПЦР-анализа образцов, переданных из Ставропольского государственного аграрного университета Table 3. Results of PCR analysis of samples transferred from the Stavropol State Agrarian University

ОбразецSample ПроисхождениеOrigin МатрицаMatrix Результат ПЦР, CqPCR result, Cq Яблоня, листApple tree, leaf Ставропольский край, Александровский районStavropol Krai, Aleksandrovsky District кДНКcDNA + (22,1)+ (22.1) Яблоня, листApple tree, leaf Ставропольский край, Новоселицкий районStavropol Krai, Novoselitsky District кДНКcDNA + (24,4)+ (24.4) Яблоня, лист+черенокApple tree, leaf + stalk Ставропольский край, Александровский районStavropol Krai, Aleksandrovsky District кДНКcDNA + (25,1)+ (25.1) Яблоня, лист+черенокApple tree, leaf + stalk Ставропольский край, Новоалександровский районStavropol Krai, Novoalexandrovsky District кДНКcDNA -- Яблоня, листApple tree, leaf Ставропольский край, Новоалександровский районStavropol Krai, Novoalexandrovsky District кДНКcDNA -- Яблоня, листApple tree, leaf Ставропольский край, Шпаковский районStavropol Krai, Shpakovsky District кДНКcDNA + (22,6)+ (22.6)

Как видно из полученных данных, 4 из 6 переданных образцов заражены ACLSV. Достоверность полученных данных была подтверждена секвенированием полученных продуктов, показавшим соответствие их нуклеотидных последовательностей структурам специфического фрагмента ACLSV. As can be seen from the data obtained, 4 of the 6 samples transferred were infected with ACLSV. The reliability of the data obtained was confirmed by sequencing the obtained products, which showed that their nucleotide sequences corresponded to the structures of a specific fragment of ACLSV.

По результатам проведённого исследования были предложены рекомендации по принятию мер фитосанитарного контроля. В частности, рекомендовано не использовать зараженные растения в качестве посадочного и/или прививочного материала; желательно утилизировать уже собранный материал. Based on the results of the study, recommendations were proposed for the adoption of phytosanitary control measures. In particular, it was recommended not to use infected plants as planting and/or grafting material; it is advisable to dispose of already collected material.

Перечень используемых нуклеотидных последовательностейList of nucleotide sequences used

Seq1Section 1

Олигонуклеотид: прямой праймерOligonucleotide: forward primer

Наименование: ACLSVF Name: ACLSVF

Последовательность (5’-3’): GGAAAGACAGGGGCAATYCSequence (5’-3’): GGAAAGACAGGGGCAATYC

Seq2Section 2

Олигонуклеотид: обратный праймерOligonucleotide: reverse primer

Наименование: ACLSVRName: ACLSVR

Последовательность (5’-3’): TBACYTTCTGRTCCTCCATBGASequence (5’-3’): TBACYTTCTGRTCCTCCATBGA

В структуру входят вырожденные нуклеотиды: B=C или G или T; Y=C или T; R=G или АThe structure includes degenerate nucleotides: B=C or G or T; Y=C or T; R=G or A

Seq3Section 3

Олигонуклеотид: флуоресецнтно-меченый зондOligonucleotide: fluorescently labeled probe

Наименование: ACLSVTName: ACLSVT

Последовательность (5’-3’): (BHQ1) - TGGAGTCCATCTT(FAMdT)CGCGARCATAGCSequence (5’-3’): (BHQ1) - TGGAGTCCATCTT(FAMdT)CGCGARCATAGC

В структуру входят флуорофор 6-карбоксифлуоресцеин (6-FAM) и гаситель флуоресценции Black Hole Quencher 1 (BHQ1)The structure contains the fluorophore 6-carboxyfluorescein (6-FAM) and the fluorescence quencher Black Hole Quencher 1 (BHQ1)

Seq4Section 4

Специфический продукт амплификации, представляющий собой фрагмент гена белка оболочки вируса хлоротической пятнистости листьев яблони, проклонированный в плазмидный вектор pAL2T, длина 133 п.о.A specific amplification product, which is a fragment of the coat protein gene of the apple leaf chlorotic spot virus, cloned into the pAL2T plasmid vector, 133 bp in length.

Последовательность (5’-3’): GGAAAGACAGGGGTAATCCTGGAACAGATACTGGAGTCCATCTTCGCGAACATAGCAATCCAAGGGACGTCAGAGCAGACAGAGTTTCTGGACCTGATGGTGGAGGTAAAATCAATGGAGGACCAGAAGGTGASequence (5’-3’): GGAAAGACAGGGGTAATCCTGGAACAGATACTGGAGTCCATCTTCGCGAACATAGCAATCCAAGGGACGTCAGAGCAGACAGAGTTTCTGGACCTGATGGTGGAGGTAAAATCAATGGAGGACCAGAAGGTGA

Список литературыReferences

1. Kinard G.R., Scott S. W. Detection of Apple chlorotic leaf spot and Apple stem grooving viruses using RT-PCR. Plant Disease 1996, 80, 616-621. 1. Kinard G.R., Scott S.W. Detection of Apple chlorotic leaf spot and Apple stem grooving viruses using RT-PCR. Plant Disease 1996, 80, 616-621.

2. Park H., Yoon J., Kim H., Baek K. Multiplex RT-PCR assay for the detection of Apple stem grooving virus and apple chlorotic leaf spot virus in infected Korean apple cultivars. Plant Pathology Journal 2006, 22, 168-173.2. Park H., Yoon J., Kim H., Baek K. Multiplex RT-PCR assay for the detection of Apple stem grooving virus and apple chlorotic leaf spot virus in infected Korean apple cultivars. Plant Pathology Journal 2006, 22, 168-173.

3. Paduch-Cichal E., Tomala K. Detection of Apple chlorotic leaf spot virus (ACLSV) and Apple stem grooving virus (ASGV) in different tissues of ‘mustu’ apple cultivar trees by ELISA. Phytopathologia Polonica 2007, 43, 53-59. 3. Paduch-Cichal E., Tomala K. Detection of Apple chlorotic leaf spot virus (ACLSV) and Apple stem grooving virus (ASGV) in different tissues of ‘mustu’ apple cultivar trees by ELISA. Phytopathologia Polonica 2007, 43, 53-59.

4. Salmon M.A., Vendrame M., Kummert J., Lepoivre P. Detection of apple chlorotic leaf spot virus using a 5’ nuclease assay with a fluorescent 3’ minor groove binder-DNA probe. Journal of Virological Methods 2002, 104, 99-106.4. Salmon M.A., Vendrame M., Kummert J., Lepoivre P. Detection of apple chlorotic leaf spot virus using a 5’ nuclease assay with a fluorescent 3’ minor groove binder-DNA probe. Journal of Virological Methods 2002, 104, 99-106.

5. Lu Y., Yao B., Wang G., Hong N. The detection of ACLSV and ASPV in pear plants by RT-LAMP assays. Journal of Virological Methods 2017, 252, 80-85. 5. Lu Y., Yao B., Wang G., Hong N. The detection of ACLSV and ASPV in pear plants by RT-LAMP assays. Journal of Virological Methods 2017, 252, 80-85.

6. Jeong H.-W., Go S.-M., Jeong R.-D. Rapid and specific detection of apple chlorotic leaf spot virus in pear by reverse-transcription recombinase polymerase amplification. Acta Virology 2021, 65, 237-241. 6. Jeong H.-W., Go S.-M., Jeong R.-D. Rapid and specific detection of apple chlorotic leaf spot virus in pear by reverse-transcription recombinase polymerase amplification. Acta Virology 2021, 65, 237-241.

7. Canales C., Morán F., Olmos A., Ruiz-García A.B. First detection and molecular characterization of Apple stem grooving virus, Apple chlorotic leaf spot virus and Apple hammerhead viroid in Loquat in Spain. Plants 2021, 10, 2293. 7. Canales C., Morán F., Olmos A., Ruiz-García A.B. First detection and molecular characterization of Apple stem grooving virus, Apple chlorotic leaf spot virus and Apple hammerhead viroid in Loquat in Spain. Plants 2021, 10, 2293.

8. Costa L.C., Athalli B., Hu X., Lamour K., Yang Y., O’Connell M., McFarland C., Foster J.A., Hurtado-Gonzales O.P. High-throughput detection of a large set of viruses and viroids of pome and stone fruit trees by multiplex PCR-based amplicon sequencing. Frontiers in Plant Science 2022, 13, 1072768. 8. Costa L.C., Athalli B., Hu X., Lamour K., Yang Y., O'Connell M., McFarland C., Foster J.A., Hurtado-Gonzales O.P. High-throughput detection of a large set of viruses and viroids of pome and stone fruit trees by multiplex PCR-based amplicon sequencing. Frontiers in Plant Science 2022, 13, 1072768.

9. Nickel O., Fajardo T.V.M. Detection of viruses in apples and pears by real time RT-PCR using 5’-hydrolysis probes. Journal of Plant Pathology 2014, 96, 207-213.9. Nickel O., Fajardo T.V.M. Detection of viruses in apples and pears by real time RT-PCR using 5’-hydrolysis probes. Journal of Plant Pathology 2014, 96, 207-213.

--->--->

<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?><?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>

<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing <!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing

1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">

<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ <ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="TEST SYSTEM FOR

ОБНАРУЖЕНИЯ ВИРУСА ХЛОРОТИЧЕСКОЙ ПЯТНИСТОСТИ ЛИСТЬЕВ ЯБЛОНИ МЕТОДОМ DETECTION OF APPLE CHLOROTIC LEAF SPOT VIRUS BY THE METHOD

ПЦР В РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИ.xml" softwareName="WIPO Sequence" REAL-TIME PCR.xml" softwareName="WIPO Sequence"

softwareVersion="2.2.0" productionDate="2024-08-13">softwareVersion="2.2.0" productionDate="2024-08-13">

<ApplicationIdentification><ApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode> <IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText>ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ВИРУСА <ApplicationNumberText>VIRUS DETECTION TEST SYSTEM

ХЛОРОТИЧЕСКОЙ ПЯТНИСТОСТИ ЛИСТЬЕВ ЯБЛОНИ МЕТОДОМ ПЦР В РЕАЛЬНОМ CHLOROTIC SPOT OF APPLE LEAF BY REAL-TIME PCR

ВРЕМЕНИ</ApplicationNumberText>TIME</ApplicationNumberText>

<FilingDate></FilingDate><FilingDate></FilingDate>

</ApplicationIdentification></ApplicationIdentification>

<ApplicantFileReference>ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ВИРУСА <ApplicantFileReference>VIRUS DETECTION TEST SYSTEM

ХЛОРОТИЧЕСКОЙ ПЯТНИСТОСТИ ЛИСТЬЕВ ЯБЛОНИ МЕТОДОМ ПЦР В РЕАЛЬНОМ CHLOROTIC SPOT OF APPLE LEAF BY REAL-TIME PCR

ВРЕМЕНИ</ApplicantFileReference>TIME</ApplicantFileReference>

<ApplicantName languageCode="ru">Федеральное государственное <ApplicantName languageCode="ru">Federal State

бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской budgetary scientific institution State Scientific Center of the Russian Federation

Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина Federation Institute of Bioorganic Chemistry named after Academicians M.M. Shemyakin

и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук</ApplicantName>and Yu.A. Ovchinnikov of the Russian Academy of Sciences</ApplicantName>

<ApplicantNameLatin>Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic <ApplicantNameLatin>Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic

Chemistry</ApplicantNameLatin>Chemistry</ApplicantNameLatin>

<InventionTitle languageCode="ru">ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ <InventionTitle languageCode="en">TEST SYSTEM FOR DETECTION

ВИРУСА ХЛОРОТИЧЕСКОЙ ПЯТНИСТОСТИ ЛИСТЬЕВ ЯБЛОНИ МЕТОДОМ ПЦР В APPLE CHLOROTIC LEAF SPOT VIRUS BY PCR IN

РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИ</InventionTitle>REAL TIME</InventionTitle>

<SequenceTotalQuantity>4</SequenceTotalQuantity> <SequenceTotalQuantity>4</SequenceTotalQuantity>

<SequenceData sequenceIDNumber="1"> <SequenceData sequenceIDNumber="1">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>19</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>19</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..19</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..19</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q2"><INSDQualifier id="q2">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>ggaaagacaggggcaatyc</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>ggaaagacaggggcaatyc</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="2"> <SequenceData sequenceIDNumber="2">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>22</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>22</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..22</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..22</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q4"><INSDQualifier id="q4">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>tbacyttctgrtcctccatbga</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>tbacyttctgrtcctccatbga</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="3"> <SequenceData sequenceIDNumber="3">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>25</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>25</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..25</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..25</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q6"><INSDQualifier id="q6">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>tggagtccatcttcgcgarcatagc</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>tggagtccatcttcgcgarcatagc</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="4"> <SequenceData sequenceIDNumber="4">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>133</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>133</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..133</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..133</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unassigned DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q8"><INSDQualifier id="q8">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>unidentified</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>ggaaagacaggggtaatcctggaacagatactggagtccatcttcgcga <INSDSeq_sequence>ggaaagacaggggtaatcctggaacagatactggagtccatcttcgcga

acatagcaatccaagggacgtcagagcagacagagtttctggacctgatggtggaggtaaaatcaatggaacatagcaatccaagggacgtcagagcagacagagtttctggacctgatggtggaggtaaaatcaatgga

ggaccagaaggtga</INSDSeq_sequence>ggaccagaaggtga</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

</ST26SequenceListing></ST26SequenceListing>

<---<---

Claims (1)

Тест-система для обнаружения вируса хлоротической пятнистости листьев яблони, включающая смесь для проведения амплификации, состоящую из реакционного буфера, дезоксинуклеотидтрифосфатов, двух олигонуклеотидных праймеров Seq1 и Seq2, специфичных к фрагменту гена, кодирующего белок оболочки вируса, одного олигонуклеотидного зонда Seq3, меченного флуоресцентным красителем FAM, положительного контрольного образца, представляющего собой рекомбинантную плазмидную ДНК Seq4, содержащую соответствующий фрагмент генома вируса. A test system for detection of apple leaf chlorotic spot virus, including a mixture for carrying out amplification consisting of a reaction buffer, deoxynucleotide triphosphates, two oligonucleotide primers Seq1 and Seq2, specific to a fragment of the gene encoding the virus envelope protein, one oligonucleotide probe Seq3, labeled with the fluorescent dye FAM, a positive control sample, which is a recombinant plasmid DNA Seq4, containing the corresponding fragment of the virus genome.
RU2024124256A 2024-08-21 Test system for detection of apple chlorotic leafspot virus by real-time pcr method RU2835209C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2835209C1 true RU2835209C1 (en) 2025-02-24

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001108572A (en) * 1998-08-31 2004-08-20 Монсанто Компани A NEW METHOD FOR IDENTIFICATION OF THE GENES OF THE UNPLANTED RESISTANCE OF PLANTS TO DISEASES
CN104531904B (en) * 2015-01-27 2016-09-07 河北科技师范学院 A kind of apple chlorotic leaf spot virus real-time fluorescence quantitative PCR detection method

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001108572A (en) * 1998-08-31 2004-08-20 Монсанто Компани A NEW METHOD FOR IDENTIFICATION OF THE GENES OF THE UNPLANTED RESISTANCE OF PLANTS TO DISEASES
CN104531904B (en) * 2015-01-27 2016-09-07 河北科技师范学院 A kind of apple chlorotic leaf spot virus real-time fluorescence quantitative PCR detection method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101903535A (en) System and method for high resolution of nucleic acids to detect sequence variations
CN113186313A (en) Salmonella detection primer group, method and kit based on RPA-LbCas12a-TTECDS system
WO2009006743A1 (en) Nucleic acid sequences and combination thereof for sensitive amplification and detection of bacterial and fungal sepsis pathogens
US6867021B2 (en) Multiplex RT-PCR/PCR for simultaneous detection of bovine coronavirus, bovine rotavirus, Cryptosporidium parvum, and Escherichia coli
JP2017516466A (en) Compositions and methods for detecting yellow dragon disease
CN111286559A (en) Primer, probe and kit for detecting African swine fever virus
CN103725798A (en) Primer, kit and detection method of detecting haemorrhagic fever with renal syndrome virus by RT-LAMP (Reverse Transcription Loop-Mediated Isothermal Amplification) method
US20090246754A1 (en) Optimized probes and primers and methods of using same for the detection and quantitation of bk virus
RU2835209C1 (en) Test system for detection of apple chlorotic leafspot virus by real-time pcr method
CN118600085A (en) Application of SNP molecular markers for YZCd1 gene related to cadmium content in rice grains
RU2837395C1 (en) Test system for apple stem pitting virus detection by real-time pcr method
RU2835202C1 (en) Test system for detection of apple stem grooving virus by real-time pcr method
González-Garza Evolution of diagnostic technics for plant viruses
CN116377112A (en) Universal polymorphism microsatellite molecular marker for twelve kinds of armillaria parasitica, and primers and application thereof
CN112226541A (en) Special primer, kit and detection method for detecting strawberry vein banding virus
WO2021183902A1 (en) Methods and kits for the detection of sars-cov-2
RU2791958C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES FOR DETECTION OF SARS-CoV-2 MUTATION S:N501Y
RU2795016C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES FOR DETECTION OF MUTATION S:delVYY143-145 OF SARS-CoV-2
RU2795018C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES FOR DETECTION OF SARS-CoV-2 MUTATION S:L452R
CN110578014A (en) A kit and detection method for nucleic acid detection of Candida parapsilosis
RU2795017C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES FOR DETECTION OF SARS-COV-2 MUTATION S:Ins214EPE
CN112626263B (en) Kit for detecting respiratory tract infection fungal pathogens at constant temperature by using enzyme digestion probe
RU2795019C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES FOR DETECTION OF SARS-CoV-2 MUTATION S:P681R
RU2762759C1 (en) METHOD FOR SAMPLE PREPARATION OF SARS-CoV-2 CORONAVIRUS ISOLATES AND OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS FOR ITS IMPLEMENTATION
Yimer et al. Diagnostics of the peach root-knot nematode, Meloidogyne floridensis using multiplex real-time PCR