RU2735251C1 - Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. - Google Patents
Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. Download PDFInfo
- Publication number
- RU2735251C1 RU2735251C1 RU2020113861A RU2020113861A RU2735251C1 RU 2735251 C1 RU2735251 C1 RU 2735251C1 RU 2020113861 A RU2020113861 A RU 2020113861A RU 2020113861 A RU2020113861 A RU 2020113861A RU 2735251 C1 RU2735251 C1 RU 2735251C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- breeding
- plutella xylostella
- cabbage
- seedlings
- cabbage moth
- Prior art date
Links
- 241000500437 Plutella xylostella Species 0.000 title claims abstract description 53
- 238000009395 breeding Methods 0.000 title claims abstract description 34
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 title claims abstract description 34
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 28
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims abstract description 14
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 claims abstract description 13
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims abstract description 13
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims description 15
- 240000007124 Brassica oleracea Species 0.000 claims description 14
- 235000003899 Brassica oleracea var acephala Nutrition 0.000 claims description 14
- 235000011301 Brassica oleracea var capitata Nutrition 0.000 claims description 14
- 235000001169 Brassica oleracea var oleracea Nutrition 0.000 claims description 14
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims description 14
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 14
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 claims description 8
- 239000011490 mineral wool Substances 0.000 claims description 8
- 235000011293 Brassica napus Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000004744 fabric Substances 0.000 claims description 6
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 5
- 238000005286 illumination Methods 0.000 claims 1
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 238000009434 installation Methods 0.000 abstract 1
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 description 16
- 238000011161 development Methods 0.000 description 13
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 13
- 244000144987 brood Species 0.000 description 7
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 description 4
- 241000255777 Lepidoptera Species 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 description 4
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 description 4
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 4
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000009193 crawling Effects 0.000 description 3
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 3
- 239000004459 forage Substances 0.000 description 3
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 3
- 235000012907 honey Nutrition 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 239000004476 plant protection product Substances 0.000 description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 3
- 235000014698 Brassica juncea var multisecta Nutrition 0.000 description 2
- 235000006008 Brassica napus var napus Nutrition 0.000 description 2
- 235000006618 Brassica rapa subsp oleifera Nutrition 0.000 description 2
- 244000188595 Brassica sinapistrum Species 0.000 description 2
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 2
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 2
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 2
- 241000500441 Plutellidae Species 0.000 description 2
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 2
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 2
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 description 2
- 230000003203 everyday effect Effects 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 2
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 2
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 2
- 238000013021 overheating Methods 0.000 description 2
- 230000017448 oviposition Effects 0.000 description 2
- 230000003032 phytopathogenic effect Effects 0.000 description 2
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000006188 syrup Substances 0.000 description 2
- 235000020357 syrup Nutrition 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000223600 Alternaria Species 0.000 description 1
- 241000411802 Atheta coriaria Species 0.000 description 1
- ZAKOWWREFLAJOT-CEFNRUSXSA-N D-alpha-tocopherylacetate Chemical compound CC(=O)OC1=C(C)C(C)=C2O[C@@](CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)(C)CCC2=C1C ZAKOWWREFLAJOT-CEFNRUSXSA-N 0.000 description 1
- 241000255925 Diptera Species 0.000 description 1
- 206010021033 Hypomenorrhoea Diseases 0.000 description 1
- 150000000996 L-ascorbic acids Chemical class 0.000 description 1
- VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N Methyl methacrylate Chemical compound COC(=O)C(C)=C VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000046052 Phaseolus vulgaris Species 0.000 description 1
- 235000010627 Phaseolus vulgaris Nutrition 0.000 description 1
- 229920005372 Plexiglas® Polymers 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 241000256095 Sciaridae Species 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 241000209140 Triticum Species 0.000 description 1
- 235000021307 Triticum Nutrition 0.000 description 1
- 241001466336 Yponomeutidae Species 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 235000021405 artificial diet Nutrition 0.000 description 1
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000006399 behavior Effects 0.000 description 1
- 239000003124 biologic agent Substances 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 230000002354 daily effect Effects 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000249 desinfective effect Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000003670 easy-to-clean Effects 0.000 description 1
- 238000005265 energy consumption Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 230000035558 fertility Effects 0.000 description 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002917 insecticide Substances 0.000 description 1
- 238000003973 irrigation Methods 0.000 description 1
- 230000002262 irrigation Effects 0.000 description 1
- 235000020778 linoleic acid Nutrition 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 230000008635 plant growth Effects 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 150000004672 propanoic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000019260 propionic acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000004685 pupal development Effects 0.000 description 1
- 230000019617 pupation Effects 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000002791 soaking Methods 0.000 description 1
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 description 1
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 1
- 229910052902 vermiculite Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010455 vermiculite Substances 0.000 description 1
- 235000019354 vermiculite Nutrition 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/30—Rearing or breeding invertebrates
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Catching Or Destruction (AREA)
- Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
Abstract
Изобретение относится к сельскому хозяйству. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. предусматривает выращивание проростков рапса на неорганическом субстрате, установку контейнеров с проростками для откладки яиц в садки с имаго капустной моли, размещенных на стеллажах с искусственным освещением, перемещение контейнеров с яйцами, отложенными на проростки рапса, на стеллажи с искусственным освещением, выращивание личинок моли до необходимого возраста, причем для выращивания проростков рапса и разведения насекомых устанавливают 16-часовой световой день. Изобретение позволяет увеличить количество особей рабочей и маточной культур капустной моли (Plutella xylostella L.) при ее массовом разведении. 6 з.п. ф-лы, 1 табл., 2 пр.
Description
Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к технической энтомологии и защите растений от вредителей, и может быть использовано для массового разведения капустной моли (Plutella xylostella L.), применяемой при тестировании биологических и других средств защиты растений и разведении энтомофагов.
Капустная моль Plutella xylostella L.=Plutella maculipennis Curt. (Lepidoptera: Plutellidae) является космополитом и в настоящее время приобрела статус особо вредоносного вредителя в силу изменения поведенческих реакций, пищевой специализации и отсутствия эффективных мер борьбы с ней. Периодические массовые размножения, а также резистентность капустной моли к большинству применяемых в настоящее время химическим инсектицидам вызывает необходимость разработки новых, в первую очередь, биологических средств борьбы с ней. Для изучения эффективности биологических агентов, предназначенных для контроля численности вредителя и их массового разведения, необходимо иметь рабочую и маточную культуры этого вредителя и поддерживать круглогодичное разведение капустной моли в условиях биолабораторий или биофабрик.
Известны способы разведения капустной моли [1, 2], при которых куколок помещают в садки из плексигласа, после выхода имаго их подкармливают 10%-м медово-водным раствором и помещают в садок субстрат для откладки яиц (порошок сухих листьев капусты, свежие листья капусты и др.), при появлении личинок их выращивают на искусственных питательных средах различных модификаций. Такие среды являются полусинтетическими, содержащими, в том числе натуральную пищу, свежую или сушеную. Состав предлагаемых для выкармливания личинок моли искусственных питательных сред включает порошок из семян фасоли, смесь солей Вессона, сахарозу, казеин, линолевую, аскорбиновую и пропионовую кислоты, сухие дрожжи, сухие листья капусты, агар, формальдегид и другие вещества.
К недостаткам разведения вредителя на искусственных питательных средах относится большой набор ингредиентов, входящих в их состав, в том числе дорогостоящих компонентов, что увеличивает экономические затраты технологического процесса на этапе выращивания личинок капустной моли. Использование компонентов растительного происхождения (высушенные листья капусты и проростков пшеницы) приводит к увеличению трудоемкости операций по высушиванию растительного материала, и, как следствие, к увеличению трудозатрат по подготовке питательных сред и стоимости получения биоматериала в целом.
Известен способ разведения капустной моли на проростках рапса, разработанный Yamada Н. и Koshihara Т. [3, 4]. Способ включает замачивание семян в воде на 5-6 часов, обработку семян дезинфицирующим средством, получение проростков рапса, посеянных в закрытые пластиковые сосуды с вентиляционным отверстием в центре на слой минерального субстрата (рубеллан R), выпуск на растения имаго моли для откладки яиц, выращивание личинок на семядольных листьях рапса и сбор куколок на фильтровальную бумагу [3]. Все этапы технологического процесса осуществляют при естественном освещении. Недостатками данного способа являются повышенная влажность в закрытых сосудах, приводящая к развитию фитопатогенной и сапрофитной микрофлоры, в том числе грибов p. Penecillium и Alternaria, а также выращивание растений и разведение капустной моли в условиях естественной продолжительности суток. Непостоянный световой период оказывает негативное влияние, как на рост растений, так и на развитие насекомых, и как следствие этого, влияет на количество получаемых особей вредителя.
Модифицированный способ Liu M.Y. и Sun C.N. [5], который был принят за прототип, включает проращивание семян рапса (без дезинфекции) в контейнерах на вермикулите, помещение контейнеров с 3-4-х дневными проростками рапса длиной 3 см в пластиковые садки размером 20×20×30 см, покрытых нейлоновой сеткой с верхней стороны, с находящимися в них имаго капустной моли для откладки яиц, выращивание личинок в контейнерах с проростками рапса, размещенных в клетках большего размера - 30×30×50 см, имеющих со всех сторон экран, сбор личинок последнего возраста с помощью пинцета или кисточки и помещения их в контейнеры с добавлением нескольких кусочков капусты для окукливания, ежедневный сбор куколок вручную и содержание их в пластиковых садках до вылета имаго. Разведение капустной моли осуществляют при температуре +25°С, для поддержания 12-ти часового светового дня используют люминесцентные лампы.
Недостатками данного способа являются, во-первых, отсутствие дезинфекции семенного материала, что неизбежно приводит к развитию фитопатогенных и сапрофитных грибов, и как следствие гибель кормовых растений. Во-вторых, использование пластиковых садков с нейлоновой сеткой с верхней стороны не обеспечивает достаточной циркуляции воздуха, что приводит в дальнейшем к преждевременному загниванию проростков рапса, гибели личинок и сокращению периода жизни имаго. В-третьих, при высокой численности личинок происходит полное уничтожение ими проростков рапса в контейнере, в результате чего для дополнительного питания и завершения развития личинок появляется необходимость добавлять дополнительно контейнеры со свежими проростками рапса. В четвертых, обработка и дезинфекция пластиковых садков после их использования затруднительна и трудоемка. Кроме того, при использовании люминесцентных ламп для освещения растений и разведения капустной моли выделяется много лишнего тепла, наблюдается перегрев и быстрое испарение влаги из субстрата, что вызывает необходимость частых поливов, и как следствие увеличивает трудоемкость технологического процесса.
Настоящее изобретение направлено на получение большого количества особей рабочей и маточной культур капустной моли (Plutella xylostella L.) при ее массовом разведении за счет создания оптимальных условий содержания насекомых, в частности температурного и светового режимов, режимов аэрации при содержании имаго и личинок, использования доступных кормовых растений для выращивания личинок вредителя и снижения трудозатрат.
Техническая задача решается за счет дезинфекции семян 6%-м раствором перекиси водорода, использования минеральной ваты в качестве субстрата для получения проростков рапса, садков, представляющих собой каркасы из пластиковых уголков, обтянутые чехлом из прозрачной ткани, для содержания имаго, светодиодных ламп для освещения растений и насекомых, установления 16-часового светового дня, двух видов растений для выкармливания личинок маточной культуры, снижения трудозатрат в результате сокращения, количества поливов проростков рапса и ручного труда по сбору личинок 4-го возраста за счет самостоятельного их переползания на листья капусты, размещенные на проростки рапса с питающимися на них личинками.
Способ разведения капустной моли предусматривает следующие операции: сеют продезинфицированные 6%-ным раствором перекиси водорода семена рапса для выращивания проростков на увлажненный неорганический субстрат - минеральную вату, помещают контейнеры с трехдневными проростками рапса в садки, состоящие из пластикового каркаса, обтянутого чехлом из прозрачной ткани, с находящимися в них имаго капустной моли, размещенных на стеллажах со светодиодными лампами и 16-часовым световым днем. Имаго подкармливают 9%-м медовым раствором. Размещают контейнеры с проростками рапса и отложенными на них яйцами вредителя на отдельных открытых стеллажах для выращивания личинок, полив проростков проводят при необходимости. В процессе разведения насекомых вручную осуществляют либо отбор яиц и личинок 2-3-го возрастов рабочей культуры для проведения экспериментов, либо сбор личинок моли 4-го возраста путем раскладки на проростки рапса с находящимися на них личинками листьев капусты для дополнительного питания и самостоятельного переползания на них личинок. Листья капусты с куколками собирают и помещают их в контейнеры закрытые перфорированными крышками для получения имаго следующего поколения маточной культуры.
Создаваемые оптимальные условия позволяют круглогодично иметь доступную кормовую базу для инкубации яиц и разведения личинок вредителя. Дезинфекция семян рапса позволяет практически полностью исключить развитие посторонней микрофлоры и гибель кормовых растений на протяжении всего периода развития личинок моли. Преимуществом использования перекиси водорода в качестве дезинфицирующего средства является его безопасность для насекомых и обслуживающего персонала. Кроме того, такие положительные свойства минеральной ваты, как биологическая устойчивость к разложению и гниению, высокий коэффициент водопоглощения, хорошая воздухопроницаемость позволяют создать оптимальные условия для роста и развития корневой системы проростков рапса и уменьшить расход воды за счет сокращения количества поливов. Улучшение условий для развития проростков рапса и разведения вредителя достигается также за счет освещения светодиодными лампами, позволяющими устранить такие нежелательные явления, как перегрев субстрата и проростков рапса, а также позволяет сократить расход электроэнергии. К преимуществам светодиодных ламп относят также их большой ресурс, конструкционную прочность, надежность и экологичность. Использование для содержания имаго капустной моли в период откладки яиц садков, состоящих из пластикового каркаса, заключенного в чехол из прозрачной ткани, способствует хорошей аэрации и созданию оптимального микроклимата. Садки, изготовленные из пластиковых уголков, просты в применении, каркасы и чехлы легко мыть и дезинфицировать. Исходя из необходимого для работы количества особей насекомых, используют контейнеры и садки различного размера. Использование листьев капусты для самостоятельного переползания и дополнительного питания личинок 4-го возраста значительно облегчает сбор насекомых за счет сокращения ручного труда и позволяет получить насекомых маточной культуры капустной моли с большой массой тела. Дополнительным преимуществом предлагаемого способа разведения капустной моли является возможность значительно сократить отходы производства за счет повторного использования отработанного субстрата - минеральной ваты - с оставшимися растительными остатками для разведения других видов насекомых, например, почвенных комариков (сем. Sciaridae) и хищного жука Atheta coriaria.
В заявленном способе разведение одного поколения маточной культуры капустной моли происходит в течение 21-24 дней, включая эмбриональный период - 2-3 дня, личиночный - 12-14, развитие куколки - 6-7 дней. Продолжительность жизни имаго, содержащихся по предлагаемым условиям, составляет более 20 дней.
Сущность и преимущества предлагаемого изобретения могут быть пояснены следующими примерами выполнения изобретения.
Пример 1. Получение рабочей культуры капустной моли
Сеют семена рапса, продезинфицированные перекисью водорода в 6%-ной концентрации в течение 15 минут, на слой (1-2 см) увлажненной минеральной ваты, размещенной в пластиковых контейнерах, из расчета 5 г семян на 50 см таким образом, чтобы вся поверхность субстрата была покрыта семенами. Контейнеры с семенами закрывают перфорированными крышками и помещают для проращивания на стеллажи температурой +25±1°С. Контейнеры с трехдневными проростками рапса помещают в садки, представляющие собой каркасы, изготовленные из пластиковых уголков размером 20×20×20 см, обтянутые чехлом из прозрачной ткани (мельничный газ, органза), в которых содержатся имаго капустной моли. Имаго в контейнерах подкармливают 9%-ным медовым сиропом, нанесенным на ватные тампоны. Ежедневно контейнеры с проростками рапса и отложенными на них яйцами вредителя, убирают из садка и помещают на открытые стеллажи, оборудованные светодиодными лампами, а вместо них устанавливают новые контейнеры со свежими проростками рапса. Эмбриональный и личиночный периоды развития капустной моли проходит на стеллажах со светодиодными лампами при температуре +25±1°С и 16-часовом световом дне. В период развития капустной моли необходимое количество особей собирают вручную и используют в качестве рабочей культуры (на стадии яиц и личинок - для разведения энтомофагов, на стадии личинок 2-3-го возрастов - для тестирования средств защиты растений).
Пример 2. Получение маточной культуры капустной моли Маточную культуру вредителя содержат отдельно и используют для воспроизводства популяции. Для этого сеют семена рапса, продезинфицированные перекисью водорода в 6%-ной концентрации в течение 15 минут, на слой (1-2 см) минеральной ваты полностью пропитанной водой, размещенной в пластиковых контейнерах, из расчета 5 г семян на 50 см2 таким образом, чтобы вся поверхность субстрата была покрыта семенами. Контейнеры с семенами закрывают перфорированными крышками и помещают для проращивания на стеллажи температурой +25±1°С. Открытые контейнеры с трехдневными проростками рапса помещают в садки, представляющие собой каркасы, изготовленные из пластиковых уголков размером 20×20×20 см, обтянутые чехлом из прозрачной ткани (мельничный газ, органза), в которых содержатся имаго капустной моли. Имаго в контейнерах подкармливают 9%-ным медовым сиропом, нанесенным на ватные тампоны. Ежедневно контейнеры с проростками рапса и отложенными на них яйцами вредителя убирают из садка, поливают и помещают на открытые стеллажи, оборудованные светодиодными лампами, а вместо них устанавливают новые контейнеры со свежими проростками рапса. Эмбриональный и личиночный периоды развития капустной моли проходит на стеллажах со светодиодными лампами при температуре +25±1°С и 16-часовом световом дне. Личинок содержат на проростках рапса до 4-го возраста, затем на проростки рапса помещают листья капусты, на которые гусеницы самостоятельно переползают, дополнительно питаются и в дальнейшем окукливаются. Листья капусты с куколками помещают в отдельные контейнеры, закрытые перфорированными крышками, где их содержат до вылета имаго. Вылетевших имаго выпускают в новые садки для получения следующего поколения вредителя.
В таблице приведены сравнительные характеристики способа разведения капустной моли в зависимости от температуры и вида пищевого субстрата (среднее по 3-м экспериментам) согласно изобретению с внесенными изменениями и по прототипу. По предлагаемому способу длительность развития одного поколения фитофага сокращается на 4-7 дней по сравнению с прототипом и составляет 21-24 дня, что позволяет за календарный год получить до 14 поколений маточной культуры капустной моли. Использование для дополнительного питания личинок листьев капусты позволяет увеличить массу тела имаго, и как следствие этого, повысить их плодовитость, а также значительно увеличивает количество вылетевших бабочек нового поколения по сравнению с вариантом, где для выкармливания личинок используется только один вид растения - листья капусты, и с прототипом, где личинок выкармливают только проростками рапса. Учитывая продолжительный период жизни и откладки яиц имаго капустной моли (до 20 дней), при разведении вредителя в лаборатории для научных исследований и разведения энтомофагов одновременно имеются особи разных фаз развития круглогодично.
Заявляемый способ позволяет осуществлять круглогодичное разведение капустной моли в качестве тест-объекта для проведения исследований по тестированию средств защиты растений и разведения энтомофагов. Изобретение не требует применения дорогостоящего оборудования, является экологически чистым и может быть использовано для массового производства вредителя Plutella xylostella L. в условиях биолабораторий или биофабрик.
Источники информации
l. Htwe Ah Nge, Takasu R., Takagi M. Laboratory rearing of the diamondback moth Plutella xylostella (L.) (Lepidoptera: Plutellidae) with artificial diet // Journal - Faculty of Agriculture Kyushu University. 2009. №54 (1), P. 147-151.
2. Hou R.F. Mass rearing of diamondback moth. 1986 pp. 89-95. In N. S. Talekar and T. D. Grigges [Eds], Diamondback moth management. Proceeding of l st international workshop, Asian vegetable research and development center, Shunhua. Taiwan.
3. Yamada H., Koshihara T. A simple mass rearing method for the diamondback moth. (In Japanese) // Plant. Prot. 1978. N32. P. 253-256.
4. Koshihara Т., Yamada H. A simple mass-rearing, technique of the diamondback moth, Plutella xylostella (L.), on germinating rape seeds. (In Japanese with English summary) // Jpn. J. Appl. Entomol. Zool. 1976. №20. P. 110-114.
5. Liu M.Y., Sun C.N. Rearing diamondback moth (Lepidoptera: Yponomeutidae) on rape seedlings by a modification of the Koshihara and Yamada method // J. Econ. Entomol. 1984. №75. P. 153-155.
Claims (7)
1. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L., предусматривающий выращивание проростков рапса на неорганическом субстрате, установку контейнеров с проростками для откладки яиц в садки с имаго капустной моли, размещенных на стеллажах с искусственным освещением, перемещение контейнеров с яйцами, отложенными на проростки рапса, на стеллажи с искусственным освещением, выращивание личинок моли до необходимого возраста, отличающийся тем, что для выращивания проростков рапса и разведения насекомых устанавливают 16-часовой световой день.
2. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что для искусственного освещения проростков рапса и насекомых используют светодиодные лампы.
3. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что для содержания имаго используют садки, состоящие из каркаса, изготовленного из пластиковых уголков, обтянутого чехлом из прозрачной ткани.
4. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что в качестве субстрата для выращивания проростков рапса используют минеральную вату.
5. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что дезинфекцию семян рапса проводят в течение 15 минут перекисью водорода 6%-ной концентрации.
6. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что для дополнительного питания личинок 4-го возраста и сбора куколок маточной культуры используют листья капусты.
7. Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. по п. 1, отличающийся тем, что отработанный субстрат - минеральная вата с оставшимися растительными остатками - используется повторно для разведения других видов насекомых.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2020113861A RU2735251C1 (ru) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2020113861A RU2735251C1 (ru) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2735251C1 true RU2735251C1 (ru) | 2020-10-29 |
Family
ID=73398198
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2020113861A RU2735251C1 (ru) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2735251C1 (ru) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EA012526B1 (ru) * | 2005-03-16 | 2009-10-30 | Басф Акциенгезельшафт | Бифенил-n-(4-пиридил)метилсульфонамиды |
| CN103960201A (zh) * | 2014-05-12 | 2014-08-06 | 山西省农业科学院农产品质量安全与检测研究所 | 一种小菜蛾室内繁殖方法 |
| CN106172504A (zh) * | 2016-06-29 | 2016-12-07 | 江苏邦盛生物科技有限责任公司 | 一种含多杀霉素和苏云金杆菌的杀虫剂组合物及其应用 |
-
2020
- 2020-04-03 RU RU2020113861A patent/RU2735251C1/ru active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EA012526B1 (ru) * | 2005-03-16 | 2009-10-30 | Басф Акциенгезельшафт | Бифенил-n-(4-пиридил)метилсульфонамиды |
| CN103960201A (zh) * | 2014-05-12 | 2014-08-06 | 山西省农业科学院农产品质量安全与检测研究所 | 一种小菜蛾室内繁殖方法 |
| CN106172504A (zh) * | 2016-06-29 | 2016-12-07 | 江苏邦盛生物科技有限责任公司 | 一种含多杀霉素和苏云金杆菌的杀虫剂组合物及其应用 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Murai et al. | Evaluation of an improved method for mass‐rearing of thrips and a thrips parasitoid | |
| US9844223B2 (en) | Hermetia illucens frass production and use in plant nutrition and pest management | |
| CN109601490A (zh) | 一种二化螟品系的周年高效繁殖方法 | |
| Yin et al. | No effects of elevated CO2 on the population relationship between cotton bollworm, Helicoverpa armigera Hübner (Lepidoptera: Noctuidae), and its parasitoid, Microplitis mediator Haliday (Hymenoptera: Braconidae) | |
| CN112471079B (zh) | 一种青藏高原草原毛虫的室内人工饲养方法 | |
| Rowe et al. | Production of bumblebees (Hymenoptera: Apidae) for pollination and research | |
| Smith et al. | Techniques for rearing and handling body lice, oriental rat fleas, and cat fleas | |
| CN112042598A (zh) | 一种高效饲养异色瓢虫的成套方法 | |
| CN109122597A (zh) | 一种蜂箱小甲虫的饲养方法 | |
| RU2735251C1 (ru) | Способ разведения капустной моли Plutella xylostella L. | |
| Leppla | Rearing of insects | |
| CN105393986B (zh) | 一种释放二化螟幼虫的寄生蜂的方法 | |
| Lapointe et al. | Improved technique for rearing spittlebugs (Homoptera: Cercopidae) | |
| CN214546644U (zh) | 劳氏粘虫群体饲养装置 | |
| Jensen | Effect of temperature on the development of the immature stages of Bembidion lampros [Coleoptera: Carabidae] | |
| Ferdousi et al. | Impact of daylight duration on pupation and adult emergence of black soldier fly (Hermetia illucens) | |
| JP2770012B2 (ja) | 鱗翅目昆虫の人工採卵法およびその人工採卵装置 | |
| Ashfaq et al. | Advances in mass rearing of Chrysoperla carnea (Stephen)(Neuroptera: Chrysopidae) | |
| CN105379681A (zh) | 一种监测寄生蜂寄生二化螟幼虫寄生效果的方法 | |
| Henneberry et al. | Two-spotted spider mite feeding in bean leaf tissue of plants supplied various levels of nitrogen | |
| Biswas et al. | Biology and predation of Stethorus punctillum Weise (Coleoptera: Coccinellidae) feeding on Tetranychus urticae Koch | |
| Jain et al. | BIOCONTROL POTENTIAL OF LEPTUS SPECIES OF MITE-AN ECTOPARASITE OF LEPTOCORIS AUGUR FABR.(HETEROPTERACOROIDEA-RHOPALIDAE), A PEST OF KUSUM TREE, SCHLEICHERA OLEOSA LOUR.(SAPINDACEAE). | |
| CN114766435B (zh) | 以谷物种子的水培苗盘人工饲养草地贪夜蛾幼虫的方法 | |
| RU2824407C1 (ru) | Способ разведения хищных клещей умеренного климата | |
| CN114916507B (zh) | 一种雷氏黄萤的室内人工饲养方法 |