RU2713273C1 - Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation - Google Patents
Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation Download PDFInfo
- Publication number
- RU2713273C1 RU2713273C1 RU2018143793A RU2018143793A RU2713273C1 RU 2713273 C1 RU2713273 C1 RU 2713273C1 RU 2018143793 A RU2018143793 A RU 2018143793A RU 2018143793 A RU2018143793 A RU 2018143793A RU 2713273 C1 RU2713273 C1 RU 2713273C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bifidobacterium
- starch
- lactobacillus
- containing grain
- grain raw
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/225—Lactobacillus
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к получению питательных сред с использованием крахмалосодержащего зернового сырья для выращивания бифидо- и лактобактерий, и может быть использовано в биотехнологии, пищевых производствах и при получении кормовых добавок для сельскохозяйственных животных, птиц и аквакультур.The present invention relates to the production of nutrient media using starch-containing grain raw materials for growing bifidobacteria and lactobacilli, and can be used in biotechnology, food production and in the preparation of feed additives for farm animals, birds and aquaculture.
Известен способ получения питательной среды для выращивания бифидобактерий на основе кислотно-щелочного гидролизата бобовых, в частности гороха, с добавлением пептона, лактозы, хлористого натрия и агара (патент RU №94026139). При этом среды, получаемые на основе кислотно-щелочного гидролизата гороха, люпина или люцерны, обеспечивают наращивание биомассы бифидобактерий к 16-24 ч культивирования с числом живых клеток не ниже 108 КОЕ/мл. Основным недостатком изобретения является использование для гидролиза возобновляемого растительного сырья химически агрессивных кислот и щелочей, что может приводить к образованию побочных продуктов, ингибирующих рост пробиотических микроорганизмов.A known method of obtaining a nutrient medium for growing bifidobacteria based on an acid-base hydrolyzate of legumes, in particular peas, with the addition of peptone, lactose, sodium chloride and agar (patent RU No. 94026139). At the same time, the media obtained on the basis of the acid-base hydrolyzate of peas, lupine or alfalfa provide an increase in the biomass of bifidobacteria by 16-24 hours of cultivation with the number of living cells not lower than 10 8 CFU / ml. The main disadvantage of the invention is the use for the hydrolysis of renewable plant materials of chemically aggressive acids and alkalis, which can lead to the formation of by-products that inhibit the growth of probiotic microorganisms.
Известен способ получения функционального продукта питания культивированием штамма пробиотических бактерий Bifidobacterium lactis Bb-12 на гидролизатах пшеничных отрубей, полученных при обработке а-амилазами и комплексами ксиланаз, гемицеллюлаз, глюканаз и целлюлаз. Содержание активных бифидобактерий в конечном продукте составляло 105 КОЕ/г (Radenkovs V. et al. Wheat Bran Carbohydrates as Substrate for Bifidobacterium lactis Development. International Journal of Biological, Biomolecular, Agricultural, Food and Biotechnological Engineering. 2013. Vol.7. No.7. P. 605-610). При этом дополнительные компоненты, а именно источники белковых соединений, которые могли бы стимулировать рост культуры, в гидролизаты не вносили и в то же время предварительную обработку белковых веществ субстрата для повышения их биодоступности протеолитическими ферментными препаратами также не осуществляли, в результате чего содержание бактерий в продукте было сравнительно не велико.A known method of obtaining a functional food product by cultivating a strain of probiotic bacteria Bifidobacterium lactis Bb-12 on wheat bran hydrolysates obtained by treatment with a-amylases and complexes of xylanases, hemicellulases, glucanases and cellulases. The content of active bifidobacteria in the final product was 10 5 CFU / g (Radenkovs V. et al. Wheat Bran Carbohydrates as Substrate for Bifidobacterium lactis Development. International Journal of Biological, Biomolecular, Agricultural, Food and Biotechnological Engineering. 2013. Vol. 7. .7. P. 605-610). In this case, additional components, namely sources of protein compounds that could stimulate the growth of culture, were not added to the hydrolysates and at the same time, preliminary treatment of protein substances of the substrate to increase their bioavailability with proteolytic enzyme preparations was also not carried out, as a result of which the content of bacteria in the product was comparatively not great.
Известен способ получения питательных сред для молочнокислых бактерий на основе солода, ячменя и пшеницы, заключающийся в четырехкратной экстракции белковых и углеводных компонентов центрифугированием водных суспензий муки с последующей стерилизацией. При этом наибольший рост лактобактерий наблюдался на солодовой питательной среде и достигал 8,1-10,1 log10 (КОЕ/мл) (Charalampopoulos D. et al. Growth studies of potentially probiotic lactic acid bacteria in cereal-based substrates. Journal of Applied Microbiology. 2002. No.92. P. 851-859). Основным недостатком такого способа получения питательных сред является неполное использование потенциала компонентов муки зерновых молочнокислыми бактериями, лишь частично экстрагируемых в раствор.A known method of obtaining a nutrient medium for lactic acid bacteria based on malt, barley and wheat, which consists in four times the extraction of protein and carbohydrate components by centrifugation of aqueous suspensions of flour with subsequent sterilization. The highest growth of lactobacilli was observed on malt culture medium and reached 8.1-10.1 log 10 (CFU / ml) (Charalampopoulos D. et al. Growth studies of potentially probiotic lactic acid bacteria in cereal-based substrates. Journal of Applied Microbiology. 2002. No.92. P. 851-859). The main disadvantage of this method of obtaining nutrient media is the incomplete use of the potential of the components of cereal flour with lactic acid bacteria, which are only partially extracted into the solution.
Наиболее близким к заявленному способу является патент США №6159724 «Способ получения питательных сред для культивирования дрожжей и молочнокислых бактерий» (прототип). Способ включает в себя три варианта приготовления питательной среды: 1) питательную среду готовят с использованием автолизата дрожжей, зерна и ростков пшеницы, а также крахмала и глютена; 2) питательную среду готовят аналогично первой, но вместо глютена, она содержит белки 3) питательную среду готовят объединением питательных сред, полученных по 1 и 2 варианту. В питательные среды добавляют ферменты альфа-амилазы и амилоглюкозидазу для гидролиза крахмала в глюкозу. Кроме того, для гидролиза клейковины и протеинов в ароматические пептиды и свободные аминокислоты, стимулирующие микробный рост, также добавляют протеолитические ферменты. Среду стерилизуют и добавляют поваренную или морскую соль. Гидролиз ферментами проводят без поддержания рН. Питательные среды инокулируют индивидуальными культурами дрожжей или молочнокислых бактерий, либо проводят совместное культивирование. Недостатком изобретения является использование в среде дрожжевого автолизата и поваренной соли, которые могут повлиять на органолептические свойства конечного жидкого функционального пищевого продукта. Также в работе не рассматривается возможность культивирования на гидролизатах зернового сырья бифидобактерий.Closest to the claimed method is US patent No. 6159724 "Method for producing culture media for the cultivation of yeast and lactic acid bacteria" (prototype). The method includes three options for preparing a nutrient medium: 1) a nutrient medium is prepared using an autolysate of yeast, wheat and wheat germ, as well as starch and gluten; 2) the nutrient medium is prepared similarly to the first, but instead of gluten, it contains proteins; 3) the nutrient medium is prepared by combining the nutrient medium obtained in option 1 and 2. Alpha amylase and amyloglucosidase enzymes are added to culture media to hydrolyze starch into glucose. In addition, proteolytic enzymes are also added to the aromatic peptides and free amino acids that stimulate microbial growth to hydrolyze gluten and proteins. The medium is sterilized and table or sea salt is added. Hydrolysis by enzymes is carried out without maintaining the pH. Nutrient media are inoculated with individual cultures of yeast or lactic acid bacteria, or they are co-cultured. The disadvantage of the invention is the use of yeast autolysate and sodium chloride in the medium, which can affect the organoleptic properties of the final liquid functional food product. Also, the possibility of culturing bifidobacteria on cereal raw materials on hydrolysates is not considered.
Технической задачей настоящего изобретения является повышение биодоступности протеина и глюкозы для пробиотических бактерий в питательных средах на основе крахмалосодержащего зернового сырья путем обработки протеолитическими и амилолитическими ферментными препаратами таким образом, что внесение дополнительных дорогостоящих компонентов животного происхождения не требуется, а внесение дрожжевых добавок, которые отрицательно влияют на органолептические показатели пробиотических продуктов, ограничено.An object of the present invention is to increase the bioavailability of protein and glucose for probiotic bacteria in nutrient media based on starch-containing grain raw materials by treatment with proteolytic and amylolytic enzyme preparations so that the introduction of additional expensive components of animal origin is not required, and the introduction of yeast additives that adversely affect organoleptic indicators of probiotic products, limited.
Поставленная задача решается путем получения питательных сред для культивирования бифидо- и лактобактерий, представляющих собой Lactobacillus rhamnosus или Lactobacillus bulgaricus или Lactobacillus acidophilus или Lactobacillus helveticus или Lactobacillus paracasei или Lactobacillus plantarum или Bifidobacterium adolescentis или Bifidobacterium breve или Bifidobacterium bifidum или Bifidobacterium infantis или Bifidobacterium pseudolongum или Bifidobacterium longam, полученных посредством предварительной обработки суспензий возобновляемого крахмалосодержащего зернового сырья в соотношении с водой 1:5 - 1:40 протеолитическим ферментным препаратом Protex 40Е или Панкреатин в дозировке 0,5-4,0% по отношению к содержанию белка и амилолитическим ферментным препаратом Duozyme в дозировке 1,0-3,0%. по отношению к содержанию сухого вещества. Содержание пробиотических: бактерий на конец культивирования без поддержания рН составляет не менее 108 КОЕ/мл, в условиях pH-статирования - не менее 109 КОЕ/мл.The problem is solved by preparing culture media for the cultivation of bifidobacteria and lactobacilli, representing Lactobacillus rhamnosus or Lactobacillus bulgaricus or Lactobacillus acidophilus or Lactobacillus helveticus, or Lactobacillus paracasei or Lactobacillus plantarum or Bifidobacterium adolescentis or Bifidobacterium breve or Bifidobacterium bifidum, or Bifidobacterium infantis and Bifidobacterium pseudolongum or Bifidobacterium longam obtained by pre-treating suspensions of renewable starch-containing grain raw materials in a ratio of 1: 5 to 1:40 with proteolytic enzyme preparation Protex 40E or Pancreatin in dosage of 0.5-4.0% in relation to the protein content and amylolytic enzyme preparation Duozyme in a dosage of 1.0-3.0%. in relation to the dry matter content. The content of probiotic: bacteria at the end of cultivation without maintaining the pH is at least 10 8 CFU / ml, under conditions of pH-statization - at least 10 9 CFU / ml.
Технический результат настоящего изобретения заключается в повышении биодоступности крахмалосодержащего зернового сырья, как источника азота и углерода для пробиотических бактерий, что ведет к увеличению концентрации жизнеспособных клеток с 105-106 КОЕ/мл до 108-109 КОЕ/мл, и создании на основе полученных гидролизатов питательных сред и новых ферментированных пробиотических продуктов, способствующих расширению ассортимента продукции, в том числе, с высоким содержанием бифидобактерий, для производства которых не используется сырье животного происхождения, а также либо сокращении (за счет ферментативных гидролизатов и экстрактов растительного сырья), либо полном исключении дополнительных питательных компонентов в среде. Ниже приведены примеры реализации способа.The technical result of the present invention is to increase the bioavailability of starch-containing grain raw materials as a source of nitrogen and carbon for probiotic bacteria, which leads to an increase in the concentration of viable cells from 10 5 -10 6 CFU / ml to 10 8 -10 9 CFU / ml, and the creation of based on the obtained hydrolysates of nutrient media and new fermented probiotic products that contribute to the expansion of the product range, including those with a high content of bifidobacteria, for the production of which raw materials are not used deleterious origin, as well as any reduction (through enzymatic hydrolysates and plant extracts raw materials), or complete elimination of additional nutrients in the environment. The following are examples of the implementation of the method.
Пример 1. Крахмалосодержащее зерновое сырье смешивают с дистиллированной водой в соотношении 1:5-1:40, суспензию стерилизуют автоклавированием и инокулируют пробиотическими микроорганизмами. Рост бактерий В. adolescentis после 24 ч ферментации отсутствовал. При культивировании на суспензиях лактобактерий конечное содержание L. plantarum не превышало 105 КОЕ/мл при использовании гречневой муки и 106 КОЕ/мл при использовании пшеничной муки.Example 1. Starch-containing grain raw materials are mixed with distilled water in a ratio of 1: 5-1: 40, the suspension is sterilized by autoclaving and inoculated with probiotic microorganisms. The growth of B. adolescentis bacteria after 24 hours of fermentation was absent. When cultured on suspensions of lactobacilli, the final content of L. plantarum did not exceed 10 5 CFU / ml when using buckwheat flour and 10 6 CFU / ml when using wheat flour.
Пример 2. Муку крахмалосодержащего зернового сырья смешивают с дистиллированной водой, суспензию стерилизуют автоклавированием в течение 5 мин, охлаждают до температуры гидролиза, помещают в термостатируемую водяную баню и вносят амилолитический ферментный препарат Duozyme (Novosymes). Осахаривание и разжижение крахмала проводят в течение 90 мин при температуре 60°С и рН 5,5. Затем вносят протеолитический ферментный препарат Protex 40Е (Genencor). Гидролиз протеина муки проводят в течение 90 мин при температуре 60°С и рН 8,6. В полученный стерильный ферментолизат вносят инокулят суточной культуры молочнокислых бактерий и ферментируют в течение 15-24 ч без поддержания рН (таблица 1).Example 2. The flour of starch-containing grain raw materials is mixed with distilled water, the suspension is sterilized by autoclaving for 5 minutes, cooled to the hydrolysis temperature, placed in a thermostatic water bath and the Duozyme amylolytic enzyme preparation (Novosymes) is introduced. Saccharification and liquefaction of starch is carried out for 90 minutes at a temperature of 60 ° C and a pH of 5.5. Then make proteolytic enzyme preparation Protex 40E (Genencor). The hydrolysis of protein flour is carried out for 90 min at a temperature of 60 ° C and a pH of 8.6. The inoculum of a daily culture of lactic acid bacteria was added to the obtained sterile fermentolizate and fermented for 15-24 hours without maintaining the pH (table 1).
Использование гидромодуля менее 1:5 приводит к ухудшению реологических свойств, а гидромодуля более 1:40 к уменьшению численности жизнеспособных клеток.The use of a hydromodule less than 1: 5 leads to a deterioration in the rheological properties, and a hydromodule more than 1:40 leads to a decrease in the number of viable cells.
Пример 3. Пшеничную муку высшего сорта смешивают с дистиллированной водой, помещают в термостатируемую водяную баню и вносят протеолитический ферментный препарат Панкреатин (Panreac). Гидролиз протеина пшеничной муки проводят в течение 90 мин при температуре 40°С и рН 8,0. Ферментолизат фильтруют через бельтинг и на его основе готовят питательную среду с добавлением дрожжевого экстракта (5 г/л), L-цистеина (0,5 г/л), аскорбиновой кислоты (0,5 г/л), глюкозы (10 г/л) и минеральной составляющей среды MRS. При этом все компоненты животного происхождения в питательной среде заменены на ферментолизат. В полученную питательную среду вносят 18 ч инокулят бифидобактерий и ферментируют в течение 15-24 ч без поддержания рН (таблица 2).Example 3. Premium wheat flour is mixed with distilled water, placed in a thermostatic water bath and the proteolytic enzyme preparation Pancreatin (Panreac) is added. Hydrolysis of wheat flour protein is carried out for 90 min at a temperature of 40 ° C and a pH of 8.0. The fermentolizate is filtered through belting and a nutrient medium is prepared on its basis with the addition of yeast extract (5 g / l), L-cysteine (0.5 g / l), ascorbic acid (0.5 g / l), glucose (10 g / k) and the mineral component of the MRS medium. Moreover, all components of animal origin in the nutrient medium are replaced by fermentolizate. Bifidobacteria inoculum is introduced into the obtained nutrient medium for 18 hours and fermented for 15-24 hours without maintaining the pH (table 2).
Использование гидромодуля менее 1:5 приводит к ухудшению реологических свойств и невозможности фильтрования через бельтинг, а гидромодуля более 1:40 к ухудшению роста бифидобактерий.Using a hydromodule of less than 1: 5 leads to a deterioration in the rheological properties and the inability to filter through belting, and a hydromodule of more than 1:40 leads to a deterioration in the growth of bifidobacteria.
Пример 4. Пшеничную муку высшего сорта смешивают с дистиллированной водой в соотношении 1:5,43, помещают в биореактор, нагревают до температуры гидролиза и дробно на 0 мин и 90 мин вносят протеолитический ферментный препарат Панкреатин (Panreac) в суммарной дозировке 2% от содержания белка в муке. Гидролиз проводят в течение 180 мин при температуре 45°С в условиях поддержания рН 8,0. На основе фильтрованного через бельтинг ферментолизата готовят питательную среду с добавлением дрожжевого экстракта (5 г/л), L-цистеина (0,5 г/л), аскорбиновой кислоты (0,5 г/л), глюкозы (10 г/л) и минеральной составляющей среды MRS. При этом все компоненты животного происхождения заменены на ферментолизат. В готовую стерильную питательную среду вносят 18 ч инокулят бифидобактерий В. adolescentis и ферментируют в течение 18-24 ч при температуре 37°С в условиях поддержания pH 6,5-7,0. Получаемый при этом титр бифидобактерий не менее 3,0×109 КОЕ/мл.Example 4. Premium wheat flour is mixed with distilled water in a ratio of 1: 5.43, placed in a bioreactor, heated to a hydrolysis temperature and the proteolytic enzyme preparation Panreac is added fractionally for 0 min and 90 min in a total dosage of 2% of the content protein in flour. Hydrolysis is carried out for 180 min at a temperature of 45 ° C under conditions of maintaining a pH of 8.0. On the basis of a fermentolizate filtered through belting, a nutrient medium is prepared with the addition of yeast extract (5 g / l), L-cysteine (0.5 g / l), ascorbic acid (0.5 g / l), glucose (10 g / l) and the mineral component of the MRS medium. In this case, all components of animal origin are replaced by fermentolizate. Inoculate sterile nutrient medium 18 h. Inoculate bifidobacteria B. adolescentis and ferment for 18-24 hours at 37 ° C under conditions of maintaining a pH of 6.5-7.0. The resulting titer of bifidobacteria is not less than 3.0 × 10 9 CFU / ml.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018143793A RU2713273C1 (en) | 2018-12-11 | 2018-12-11 | Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018143793A RU2713273C1 (en) | 2018-12-11 | 2018-12-11 | Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2713273C1 true RU2713273C1 (en) | 2020-02-04 |
Family
ID=69625555
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018143793A RU2713273C1 (en) | 2018-12-11 | 2018-12-11 | Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2713273C1 (en) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2410423C2 (en) * | 2005-10-11 | 2011-01-27 | Анидрал С.Р.Л. | Method of producing at least one non-allergenic probiotic bacterial culture for producing food product or pharmaceutical composition for persons suffering from coeliacs disease and especially sensitive to allergenic substances of gluten and/or lactic type (versions) |
-
2018
- 2018-12-11 RU RU2018143793A patent/RU2713273C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2410423C2 (en) * | 2005-10-11 | 2011-01-27 | Анидрал С.Р.Л. | Method of producing at least one non-allergenic probiotic bacterial culture for producing food product or pharmaceutical composition for persons suffering from coeliacs disease and especially sensitive to allergenic substances of gluten and/or lactic type (versions) |
Non-Patent Citations (4)
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US8361778B2 (en) | Composition comprising enzymatically digested yeast cells and method of preparing same | |
| CN113444664B (en) | Lactobacillus brevis for producing gamma-aminobutyric acid and application thereof | |
| US20190014794A1 (en) | Preparation method for fermented corn gluten | |
| CN109161496A (en) | Lactobacillus rhamnosus high density bacterium solution and its preparation method for embedding bacterium powder | |
| CN110591943A (en) | A high-yielding complex enzyme Bacillus subtilis, composition and application thereof | |
| TW201715042A (en) | Method of concentrating protein in grain powder | |
| CN109468259B (en) | Culture medium for promoting spore generation | |
| Khardziani et al. | Optimization of enhanced probiotic spores production in submerged cultivation of Bacillus amyloliquefaciens B-1895 | |
| Elsayed et al. | Production of β-galactosidase in shake-flask and stirred tank bioreactor cultivations by a newly isolated Bacillus licheniformis strain | |
| KR101134324B1 (en) | Media of powder for mass culture of microorganism | |
| TW201300526A (en) | Method for manufacturing culture medium, and culture medium manufactured by method | |
| CN114214247A (en) | Bacillus licheniformis and application thereof | |
| CN112391317B (en) | Probiotic bacterial strain composition for producing cubilose acid and application | |
| CN115927032A (en) | Bacillus subtilis, leaven, preparation method and application thereof | |
| CN102669432B (en) | Compound probiotics preparation for geese and method for preparing same | |
| RU2713273C1 (en) | Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation | |
| Kanpiengjai et al. | High efficacy bioconversion of starch to lactic acid using an amylolytic lactic acid bacterium isolated from Thai indigenous fermented rice noodles | |
| KR20080040134A (en) | Compositions for promoting the growth of effective microorganisms and methods for promoting the growth of effective microorganisms | |
| JP2015167474A (en) | Lactobacillus lactic acid bacteria culture-grade culture medium, Lactobacillus lactic acid bacteria culture method, and Lactobacillus lactic acid bacteria culture production method | |
| Karetkin et al. | Heterogeneous submerged fermentation of probiotic in media based on wheat meal and by-products of wheat starch production | |
| CN106689671A (en) | Biological bacterium-containing livestock feed and preparation method thereof | |
| RU2658977C1 (en) | Method for producing protein fodder additive | |
| KR20180060767A (en) | Novel Lactobacillus sakei CH1 and fermented food using the same | |
| Oshoma et al. | Growth Enhancement of Lactic Acid Bacteria for Production of Bacteriocin Using a Local Condiment Supplemented with Nitrogen Sources: doi. org/10.26538/tjnpr/v4i8. 16 | |
| Karetkin et al. | New Integrated Technology Of Probiotics Production Using Cereal Hydrolysates |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20201212 |