[go: up one dir, main page]

RU2697475C1 - Method of preparing corneal histological preparations - Google Patents

Method of preparing corneal histological preparations Download PDF

Info

Publication number
RU2697475C1
RU2697475C1 RU2019114027A RU2019114027A RU2697475C1 RU 2697475 C1 RU2697475 C1 RU 2697475C1 RU 2019114027 A RU2019114027 A RU 2019114027A RU 2019114027 A RU2019114027 A RU 2019114027A RU 2697475 C1 RU2697475 C1 RU 2697475C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
eye
cornea
biomaterial
histological preparations
fixing solution
Prior art date
Application number
RU2019114027A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Светлана Леонидовна Первых
Original Assignee
Светлана Леонидовна Первых
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Светлана Леонидовна Первых filed Critical Светлана Леонидовна Первых
Priority to RU2019114027A priority Critical patent/RU2697475C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2697475C1 publication Critical patent/RU2697475C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.SUBSTANCE: invention refers to medicine, namely to ophthalmology and histology, and is intended for preparation of histological preparations of eye cornea. A method for preparation of histological preparations of an eye cornea involves sampling of a biomaterial and its fixation in a fixing solution, washing from a fixator, dehydration, filling into paraffin, preparation of sections and their colouring. Prior to sampling biomaterial, fixing solution is pre-introduced into anterior eye chamber. At 1.5–2.0 mm from limb, at 13–15 o'clock, corneal puncture is performed with the help of insulin syringe and fixing solution is introduced into anterior chamber of eye in amount of 0.25–0.5 ml. That is followed by enucleation of the eye, followed by taking the biomaterial for further treatment.EFFECT: using the invention enables improving quality of histological preparations of the eye cornea.3 cl, 2 ex

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности к офтальмологии и гистологии, и может быть использовано для приготовления гистологических препаратов роговицы глаза животного или человека.The invention relates to medicine, in particular to ophthalmology and histology, and can be used for the preparation of histological preparations of the cornea of an animal or human eye.

Гистологический метод исследования необходим для изучения строения и функции клеток в состоянии нормы, патологии и экспериментальном периоде. Для гистологического исследования берутся элементы тканей и органов, в частности роговица глаза. Однако процесс гистологического исследования сопряжен с определенными трудностями подготовки данного биологического материала: крайне малая толщина роговицы, нарушение целостности слоев оболочек глаза при извлечении (энуклеации) глазного яблока, повреждение внутренней выстилки роговицы. Все это приводит к формированию больших погрешностей в слоистой структуре оболочек глаза и, как следствие, неправильной оценке степени и выраженности патологического процесса, поэтому их предотвращение является важной технологической задачей.The histological method of research is necessary to study the structure and function of cells in the normal state, pathology, and experimental period. For histological examination, elements of tissues and organs, in particular the cornea of the eye, are taken. However, the process of histological examination is associated with certain difficulties in the preparation of this biological material: the extremely small thickness of the cornea, the violation of the integrity of the layers of the shells of the eye when removing (enucleating) the eyeball, damage to the inner lining of the cornea. All this leads to the formation of large errors in the layered structure of the membranes of the eye and, as a result, an incorrect assessment of the degree and severity of the pathological process, so their prevention is an important technological task.

Известен стандартный способ приготовления гистологических препаратов (Елисеев В.Г., Афанасьев Ю.И., Юрина Н.А. и другие, М., «Гистология», Изд-во: Медицина, 1983 г., с. 9-10), включающий следующие основные этапы: забор биологического материала и его фиксация, обезвоживание и уплотнение, заливка в парафин материала, приготовление и окрашивание срезов. В основе действия любого фиксатора лежат сложные физико-химические процессы, в первую очередь, коагуляция (свертывание) белков. В качестве фиксаторов используют: простые, содержащие один компонент (формалин, спирт, ацетон) и сложные, содержащие два и более компонентов (жидкость Карнуа: абсолютный спирт, хлороформ, ледяная уксусная кислота; жидкость Ценкера: двухромовокислый калий, сернокислый натрий, сулема, формалин, дистиллированная вода).A standard method for the preparation of histological preparations is known (Eliseev V.G., Afanasyev Yu.I., Yurina N.A. and others, M., "Histology", Publishing House: Medicine, 1983, p. 9-10) , which includes the following main steps: collection of biological material and its fixation, dehydration and compaction, pouring material into paraffin, preparation and staining of sections. The action of any fixative is based on complex physicochemical processes, primarily, coagulation (coagulation) of proteins. The following are used as fixatives: simple, containing one component (formalin, alcohol, acetone) and complex, containing two or more components (Carnoy liquid: absolute alcohol, chloroform, glacial acetic acid; Zenker liquid: potassium dichromate, sodium sulfate, mercuric chloride, formalin , distilled water).

Основным недостатком известного способа является низкое качество гистологических препаратов, имеющих слоистую структуру, из-за деформации биологического материала (биоматериала) при взятии и обработки химическими реагентами.The main disadvantage of this method is the low quality of histological preparations having a layered structure due to the deformation of the biological material (biomaterial) when taking and processing with chemical reagents.

Известен способ приготовления гистологических препаратов, включающий забор биоматериала, фиксацию последнего в растворе 10-12% кислого или нейтрального забуференного формалина, промывку в проточной воде в течение 24 часов с последующим его обезвоживанием путем проведения через спирты восходящей концентрации (50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 96% и абсолютном спирте), пропитку в растворах ароматических углеводов, затем в смеси хлороформа и парафина при 37°С. Затем биоматериал парафинируют и на парафиновом микротоме изготавливают срезы толщиной 5-7 мкм, которые монтируют на предметные стекла. Затем срезы на стеклах депарафинируют в 2-х порциях ксилола, проводят через спирты нисходящей концентрации (100%, 96%, 70% этанол), промывают дистиллированной водой, окрашивают, просветляют в двух порциях ксилола и заключают в полистирол или биомаунт (Семченко В.В., Барашкова С.А., Ноздрин В.П., Артемьев В.Н. Гистологическая техника - 3-е изд. - Омск - Орел, 2006. - 290 с.).A known method of preparing histological preparations, including sampling biomaterial, fixing the latter in a solution of 10-12% acidic or neutral buffered formalin, rinsing in running water for 24 hours, followed by dehydration by passing an ascending concentration through alcohols (50%, 60%, 70 %, 80%, 90%, 96% and absolute alcohol), impregnated in solutions of aromatic carbohydrates, then in a mixture of chloroform and paraffin at 37 ° C. Then the biomaterial is waxed and slices 5-7 microns thick are made on a paraffin microtome, which are mounted on glass slides. Then the sections on the glasses are dewaxed in 2 portions of xylene, passed through descending alcohols (100%, 96%, 70% ethanol), washed with distilled water, stained, enlightened in two portions of xylene and enclosed in polystyrene or biomount (Semchenko V. V., Barashkova S.A., Nozdrin V.P., Artemyev V.N. Histological technique - 3rd ed. - Omsk - Orel, 2006. - 290 p.).

Основным недостатком известного способа является низкое качество гистологических препаратов, имеющих слоистую структуру, из-за деформации биоматериала при взятии и обработки химическими реагентами для последующего гистологического исследования.The main disadvantage of this method is the low quality of histological preparations having a layered structure due to deformation of the biomaterial during collection and processing with chemical reagents for subsequent histological examination.

Известен способ приготовления гистологических препаратов, при котором обезвоживание производят путем четырехкратной выдержки гистологических образцов в ацетоне (Р. Лилли. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. - М.: Мир, 1969, с. 69). Обезвоживание в ацетоне происходит быстро: при использовании на каждой стадии свежего ацетона достаточного выдержать образец в каждой порции растворителя по 20 мин. Однако использование свежего растворителя на каждой стадии дорого. Поэтому свежий ацетон используют только для четвертой стадии, сдвигая сосуды на одну позицию; четырежды использованный ацетон очищают перегонкой. При обезвоживании по такой схеме образцы выдерживают в каждой порции по 40 мин. Гистологические препараты, получаемые по данной методике, нуждаются в постоянном контроле и сопровождаются перемещением среза из жидкой среды в воздушную, что приводит к нежелательной деформации биоматериала.A known method of preparing histological preparations, in which dehydration is carried out by four-time exposure of histological samples in acetone (R. Lilly. Pathological technique and practical histochemistry. - M .: Mir, 1969, p. 69). Dehydration in acetone occurs quickly: when using fresh acetone at each stage, it is sufficient to maintain the sample in each portion of the solvent for 20 minutes. However, using fresh solvent at each stage is expensive. Therefore, fresh acetone is used only for the fourth stage, shifting the vessels by one position; four times used acetone is purified by distillation. When dehydrated according to this scheme, the samples are kept in each portion for 40 minutes. The histological preparations obtained by this technique need constant monitoring and are accompanied by the transfer of the slice from the liquid medium to the air, which leads to undesirable deformation of the biomaterial.

Известен способ приготовления гистологических препаратов, в соответствии с которым для заключения и длительного хранения окрашенных гистологических препаратов применяют 19-21%-ный раствор пенопласта в ксилоле, стабилизированный добавлением диметилфталата из расчета 1:100. После нанесения капли раствора на подготовленный срез и высыхания он оказывается заключенным в прозрачный и устойчивый при хранении материал в виде пленки (патент RU 2117273 С1, опубл. 10.08.1998). Одним из недостатков известного способа является низкое качество гистологических препаратов, поскольку полученная пленка не является прочной по отношению к повреждающим агентам.A known method of preparing histological preparations, according to which for the conclusion and long-term storage of stained histological preparations, a 19-21% solution of polystyrene foam in xylene is used, stabilized by the addition of dimethyl phthalate at a rate of 1: 100. After applying a drop of the solution to the prepared slice and drying it is enclosed in a transparent and storage-stable material in the form of a film (patent RU 2117273 C1, publ. 08/10/1998). One of the disadvantages of this method is the low quality of histological preparations, since the resulting film is not durable with respect to damaging agents.

Наиболее близким к заявляемому способу - прототипом, является способ приготовления гистологических препаратов энуклеированного глаза, включающий взятие материала и его фиксацию в жидкости, обезвоживание и заливку в парафин, приготовление и окрашивание срезов, при этом перед фиксацией энуклеированного глаза его склеру прошивают нитками на глубину порядка 1 мм как минимум в двух местах - сверху или снизу, а также с боков - с назальной или височной стороны, при этом используют нить из материала, инертного к материалам, используемым при подготовке среза, - льняную или синтетическую, при этом цвет ниток варьируют по участкам прошивания, кроме того, после фиксации маркированного глаза в жидкости и его заливки в парафин глаз перед его делением на срезы располагают с учетом его исходной ориентации в пространстве, для чего ориентируются на вышеописанные нитяные метки. При этом обработку энуклеированного глаза проводят стандартным способом, используя в качестве фиксатора, преимущественно 10% формалин, а в качестве красителей гематоксилин и эозин (патент RU 2525436 С1, опубл. 10.08.2014).Closest to the claimed method, the prototype is a method for preparing histological preparations of the enucleated eye, including taking the material and fixing it in liquid, dehydration and pouring it into paraffin, preparing and staining sections, while before fixing the enucleated eye, its sclera is stitched with threads to a depth of about 1 mm at least in two places - from above or below, and also from the sides - from the nasal or temporal side, while using a thread of material inert to the materials used in preparing the section of the cut is linen or synthetic, while the color of the threads varies in the stitching areas, in addition, after fixing the marked eye in the liquid and filling it with paraffin, the eyes are positioned before dividing into sections taking into account its initial orientation in space, for which they focus on the above thread marks. In this case, the treatment of the enucleated eye is carried out in a standard way, using, mainly, 10% formalin as a fixative, and hematoxylin and eosin as dyes (patent RU 2525436 C1, publ. 08/10/2014).

Основным недостатком прототипа является низкое качество получаемых гистологических препаратов, имеющих слоистую структуру из-за деформации биоматериала при взятии и обработки химическими реагентами для последующего гистологического исследования.The main disadvantage of the prototype is the low quality of the resulting histological preparations having a layered structure due to deformation of the biomaterial during collection and processing with chemical reagents for subsequent histological examination.

Задачей предлагаемого изобретения является обеспечение сохранности гистоструктуры роговицы глаза за счет предотвращения деформации биоматериала в виде расслоения и изгиба при взятии и дальнейшей обработке.The objective of the invention is to ensure the preservation of the histostructure of the cornea of the eye by preventing deformation of the biomaterial in the form of delamination and bending during capture and further processing.

Технический результат: повышение качества гистологических препаратов роговицы глаза.Effect: improving the quality of histological preparations of the cornea of the eye.

Поставленная задача достигается предлагаемым способом, заключающимся в следующем:The problem is achieved by the proposed method, which consists in the following:

Перед забором биоматериала производят предварительное введение фиксирующего раствора в переднюю камеру глаза, для чего в роговице на 13-15 часах, в 1,5-2,0 мм от лимба, производят прокол (парацентез) передней камеры глаза с помощью инсулинового шприца, при этом срез иглы направлен к лимбу вверх (обращен к эндотелию роговицы), и вводят фиксирующий раствор в количестве 0,25-0,5 мл в переднюю камеру глаза. В качестве фиксирующего раствора используют преимущественно 10-12% раствор нейтрального (забуференного до рН 7,0) формалина. Через 10-15 минут (время, необходимое для фиксации заднего эпителия роговицы) производят извлечение (энуклеацию) глаза. Забор биоматериала (роговицы глаза) производят с использованием трепана роговицы. Отделенный от глаза биоматериал (роговицу) пускают в дальнейшую обработку, включающую фиксацию биоматериала, его промывку водой, обезвоживание, заливку в парафин, приготовление срезов и их окрашивание, которые осуществляют следующим образом.Before the biomaterial is taken, the fixing solution is preliminarily injected into the anterior chamber of the eye, for which, in the cornea, at 13-15 hours, 1.5-2.0 mm from the limbus, the anterior chamber of the eye is punctured (paracentesis) using an insulin syringe, while the needle section is directed upward towards the limb (facing the corneal endothelium), and a fixing solution of 0.25-0.5 ml is injected into the anterior chamber of the eye. A predominantly 10-12% solution of neutral (buffered to pH 7.0) formalin is used as the fixing solution. After 10-15 minutes (the time required to fix the posterior corneal epithelium), the eye is extracted (enucleated). The biomaterial (cornea of the eye) is taken using a trephine of the cornea. Separated from the eye biomaterial (cornea) is allowed for further processing, including fixing the biomaterial, washing it with water, dehydration, pouring in paraffin, preparing sections and staining them, which are carried out as follows.

Роговицу помещают в фиксирующий раствор (10-12%-ный раствор формалина) на 24 часа. После фиксации роговицу промывают проточной водой в течение нескольких часов для освобождения от остатков фиксатора. Затем проводят обезвоживание роговицы путем последовательной обработки растворами этилового спирта с возрастающей концентрацией: 70%, 80%, 96% и 100%. Далее роговицу помещают в ксилол-парафин, затем в жидкий парафин на 1 час при 56°С, после остывания и затвердевания парафина известным образом вырезают блок с заключенной в нем роговицей и известным образом закрепляют на деревянном или пластмассовом бруске.The cornea is placed in a fixing solution (10-12% formalin solution) for 24 hours. After fixation, the cornea is washed with running water for several hours to release the rest of the fixative. Then corneal dehydration is carried out by sequential treatment with ethanol solutions with increasing concentration: 70%, 80%, 96% and 100%. Next, the cornea is placed in xylene-paraffin, then in liquid paraffin for 1 hour at 56 ° C, after cooling and hardening of the paraffin, in a known manner, a block with the cornea enclosed in it is cut out and fixed in a known manner on a wooden or plastic bar.

Приготовление срезов роговицы осуществляют известным образом с использованием микротома стандартной конструкции после закрепления брусков на объектодержателе. Затем с помощью подающего устройства объектодержатель вместе с бруском перемещают за каждый шаг на фиксированное расстояние 3-6 мкм. Микротомный нож срезает с парафинового блока слой - срез - заданной толщины. После чего срезы помещают на поверхность теплой воды для их расправления, а затем на предметное стекло.The preparation of corneal sections is carried out in a known manner using a microtome of standard design after securing the bars on the object holder. Then, using the feeding device, the object holder together with the bar is moved for each step by a fixed distance of 3-6 microns. A microtome knife cuts off a layer — a slice — of a given thickness from a paraffin block. After that, the slices are placed on the surface of warm water for their expansion, and then on a glass slide.

Перед окраской срезов удаляют уплотняющую среду, освобождают от парафина (депарафинизация) с помощью спиртов (100%, 96%, 80%, 70% и 60%) и затем с помощью окраски гематоксилином и эозином достигают контрастности изучаемого гистологического препарата.Before staining the sections, the sealing medium is removed, freed from paraffin (dewaxing) using alcohols (100%, 96%, 80%, 70% and 60%) and then using the hematoxylin and eosin staining, the contrast of the studied histological preparation is achieved.

В результате получают гистологические препараты высокого качества с сохраненной гистоструктурой, позволяющей быстро и достоверно провести исследование.As a result, high-quality histological preparations with a preserved histostructure are obtained, which allows a quick and reliable study.

Определяющими отличительными признаками заявляемого способа, по сравнению с прототипом, являются:The defining hallmarks of the proposed method, compared with the prototype, are:

- до забора биологического материала производят предварительное введение фиксирующего раствора (10-12%-го раствора нейтрального забуференного формалина) в переднюю камеру глаза, после чего производят извлечение глаза с последующим забором роговицы глаза в дальнейшую обработку, что позволяет более эффективно зафиксировать слоистую структуру роговицы и исключить ее деформацию при заборе материала;- prior to the collection of biological material, a fixing solution (10-12% solution of neutral buffered formalin) is preliminarily injected into the anterior chamber of the eye, after which the eye is extracted with subsequent collection of the cornea of the eye for further processing, which allows more efficient fixation of the layered structure of the cornea and to exclude its deformation during the sampling of the material;

- для введения в переднюю камеру глаза фиксирующего раствора, в роговице на 13-15 часах, в 1,5-2,0 мм от лимба, производят прокол с помощью инсулинового шприца и вводят фиксирующий раствор в объеме 0,25-0,5 мл, что позволяет повысить качество гистологического препарата роговицы за счет экспериментально подобранного оптимального объема введенного фиксатора, достаточного для исключения деформации роговицы при заборе и обработке, а также повысить информативность полученных срезов гистологических препаратов и точность при постановке диагноза.- for the introduction of a fixing solution into the anterior chamber of the eye, in the cornea at 13-15 hours, 1.5-2.0 mm from the limbus, a puncture is made using an insulin syringe and a fixing solution is injected in a volume of 0.25-0.5 ml , which allows to improve the quality of the histological preparation of the cornea due to experimentally selected optimal volume of the inserted fixative, sufficient to exclude deformation of the cornea during sampling and processing, as well as to increase the information content of the obtained sections of histological preparations and the accuracy of the diagnosis.

Таким образом, роговица глаза после предварительной фиксации проходит все этапы стандартной гистологической обработки вплоть до изготовления срезов и окрашивания, полностью сохраняя исходную структуру, исключая возможность ее деформации, не вызывая сложностей при постановке диагноза и определения изменений.Thus, the cornea of the eye, after preliminary fixation, goes through all the stages of standard histological processing up to the production of sections and staining, completely preserving the original structure, eliminating the possibility of its deformation, without causing difficulties in making a diagnosis and determining changes.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами конкретного выполнения способа:The invention is illustrated by the following examples of specific performance of the method:

Пример 1.Example 1

Эксперимент проведен в условиях морфологической лаборатории кафедры общей патологии Сургутского медицинского института на кролях породы Новозеландский белый. В роговице глаза кролика, на 13 часах, в 1,5 мм от лимба, произвели прокол передней камеры глаза с помощью инсулинового шприца объемом 1,0 мл (срез иглы направлен к лимбу вверх) и ввели в переднюю камеру глаза 0,25 мл 12% раствора нейтрального забуференного формалина (забуферен фосфатами натрия до рН 7,0 для предотвращения пигментации). Через 10 минут произвели энуклеацию (извлечение) глазного яблока. Забор биоматериала (роговицы глаза) произвели с помощью трепана роговицы.The experiment was conducted in the morphological laboratory of the Department of General Pathology of the Surgut Medical Institute on rabbits of the breed New Zealand White. In the cornea of the rabbit’s eye, at 13 hours, 1.5 mm from the limb, the anterior chamber of the eye was punctured using an insulin syringe with a volume of 1.0 ml (the needle section is directed upward towards the limb) and 0.25 ml were injected into the anterior chamber of the eye 12 % solution of neutral buffered formalin (buffered with sodium phosphates to pH 7.0 to prevent pigmentation). After 10 minutes, the eyeball was enucleated (extracted). The biomaterial (cornea of the eye) was taken using a trephine of the cornea.

Извлеченную роговицу поместили в 12% раствор нейтрального забуференного формалина на 24 часа. После фиксации роговицу промыли проточной водой в течение нескольких часов и провели обезвоживание путем обработки растворами этилового спирта с возрастающей концентрацией: 70%, 80%, 96% и 100%. Затем роговицу поместили в ксилол-парафин, затем в жидкий парафин на 1 час при 56°С, после остывания и затвердевания парафина известным образом вырезали блок с заключенной в нем роговицей и закрепили на деревянном бруске. Приготовление срезов осуществили с использованием ротационного микротома (Leica RM 2265) после закрепления брусков на объектодержателе. Затем с помощью подающего устройства объектодержатель вместе с бруском перемещали за каждый шаг на фиксированное расстояние 3-6 мкм и получали срезы, которые помещали на поверхность теплой воды для их расправления, а затем на предметное стекло. Перед окраской срезов удалили уплотняющую среду, освободили срезы от парафина с помощью спиртов с нисходящей концентрацией: 100%, 96%, 80%, 70% и 60%, далее промыли дистиллированной водой и затем окрасили срезы гематоксилином и эозином для гистологического исследования с помощью световой микроскопии.The recovered cornea was placed in a 12% neutral buffered formalin solution for 24 hours. After fixation, the cornea was washed with running water for several hours and dehydrated by treatment with ethanol solutions with increasing concentration: 70%, 80%, 96% and 100%. Then the cornea was placed in xylene-paraffin, then in liquid paraffin for 1 hour at 56 ° C, after cooling and hardening of the paraffin, a block with the cornea enclosed in it was cut in a known manner and fixed on a wooden block. Slices were prepared using a rotary microtome (Leica RM 2265) after securing the bars on the object holder. Then, with the help of a feeding device, the object holder together with the bar was moved for each step at a fixed distance of 3-6 μm and slices were obtained, which were placed on the surface of warm water for their straightening, and then on a glass slide. Before staining the sections, the sealing medium was removed, the sections were removed from paraffin using alcohols with a descending concentration of 100%, 96%, 80%, 70% and 60%, then they were washed with distilled water and then the sections were stained with hematoxylin and eosin for histological examination using light microscopy.

При гистологическом исследовании установлено, что препараты (срезы) имеют хорошо сохранившуюся гистоструктуру, отсутствуют изгибы и деформация слоев роговицы.A histological examination revealed that the preparations (sections) have a well-preserved histostructure, there are no bends and deformation of the layers of the cornea.

Было отчетливо видно, что передний эпителий роговицы сохранил обычное строение, передняя пограничная мембрана визуализировалась четко. Собственное вещество роговицы характеризовалось выраженным отеком, наиболее распространенным в задней трети. Коллагеновые волокна стромы роговицы имели повышенно извитой характер. Задняя пограничная мембрана гомогенна, границы ее четко не определялись. Со стороны эндотелия обнаружилась выраженная пролиферация клеток отростчатой формы. При гистологическом исследовании поставлен диагноз: отек роговицы.It was clearly seen that the anterior corneal epithelium retained its usual structure, the anterior border membrane was clearly visualized. Corneal intrinsic matter was characterized by severe edema, the most common in the posterior third. Collagen fibers of the stroma of the cornea had an elevated crimped character. The posterior border membrane is homogeneous; its boundaries were not clearly defined. From the endothelium, pronounced proliferation of process cells was detected. A histological examination was diagnosed with corneal edema.

Пример 2.Example 2

Эксперимент проведен в условиях морфологической лаборатории кафедры общей патологии Сургутского медицинского института на кролях породы Новозеландский белый. В роговице глаза кролика, на 15 часах, в 2,0 мм от лимба, произвели прокол передней камеры глаза с помощью инсулинового шприца объемом 1,0 мл (срез иглы направлен к лимбу вверх), и ввели в переднюю камеру 0,5 мл 10% раствора нейтрального забуференного формалина. Через 15 минут произвели энуклеацию (извлечение глазного яблока). Забор биоматериала (роговицы глаза) произвели с помощью аппарата-трепана роговицы.The experiment was conducted in the morphological laboratory of the Department of General Pathology of the Surgut Medical Institute on rabbits of the breed New Zealand White. In the cornea of the rabbit’s eye, at 15 hours, 2.0 mm from the limbus, the anterior chamber of the eye was punctured using an insulin syringe with a volume of 1.0 ml (the needle section is directed upward towards the limb), and 0.5 ml was injected into the anterior chamber 10 % solution of neutral buffered formalin. After 15 minutes, enucleation was performed (eyeball extraction). The biomaterial (cornea of the eye) was taken using a corneal trephine apparatus.

Извлеченную роговицу поместили в 10% раствор нейтрального забуференного формалина на 24 часа. После фиксации роговицу промыли проточной водой в течение нескольких часов и провели обезвоживание путем обработки растворами этилового спирта с возрастающей концентрацией: 70%, 80%, 96% и 100%. Затем роговицу поместили в ксилол-парафин, затем в жидкий парафин на 1 час при 56°С, после остывания и затвердевания парафина известным образом вырезали блок с заключенной в нем роговицей и закрепили на пластмассовом бруске. Приготовление срезов осуществили с использованием ротационного микротома (Leica RM 2265) после закрепления брусков на объектодержателе. Затем с помощью подающего устройства объектодержатель вместе с бруском перемещали за каждый шаг на фиксированное расстояние 3-6 мкм и получали срезы, которые помещали на поверхность теплой воды для их расправления, а затем на предметное стекло. Перед окраской срезов удалили уплотняющую среду, освободили срезы от парафина с помощью спиртов (100%, 96%, 80%, 70% и 60%), промыли дистиллированной водой и затем окрасили срезы гематоксилином и эозином для гистологического исследования с помощью световой микроскопии.The recovered cornea was placed in a 10% neutral buffered formalin solution for 24 hours. After fixation, the cornea was washed with running water for several hours and dehydrated by treatment with ethanol solutions with increasing concentration: 70%, 80%, 96% and 100%. Then the cornea was placed in xylene-paraffin, then in liquid paraffin for 1 hour at 56 ° C, after cooling and hardening of the paraffin, a block with the cornea enclosed in it was cut in a known manner and fixed on a plastic bar. Slices were prepared using a rotary microtome (Leica RM 2265) after securing the bars on the object holder. Then, with the help of a feeding device, the object holder together with the bar was moved for each step at a fixed distance of 3-6 μm and slices were obtained, which were placed on the surface of warm water for their straightening, and then on a glass slide. Before staining the sections, the sealing medium was removed, the sections were removed from paraffin using alcohols (100%, 96%, 80%, 70% and 60%), washed with distilled water, and then the sections were stained with hematoxylin and eosin for histological examination using light microscopy.

При гистологическом исследовании отчетливо просматривалось нарушение строения стромы роговицы, видны участки соединительной ткани, деструктивные изменения стромы и переднего эпителия, а также проникновение васкуляризованной ткани между передним эпителием и передней пограничной пластинкой. Поставлен диагноз: лейкома роговицы, паннус.Histological examination clearly showed a violation of the structure of the corneal stroma, visible areas of connective tissue, destructive changes in the stroma and anterior epithelium, as well as penetration of vascularized tissue between the anterior epithelium and the anterior border plate. Diagnosed with corneal leukemia, pannus.

Использование предлагаемого способа позволит повысить качество гистологических препаратов путем предварительной фиксации глубоких слоев роговицы глаза до извлечения органа (энуклеации), что позволит сохранить ее структуру, форму и целостность, а также значительно повысить информативность полученных срезов гистологических препаратов и повысить точность диагноза.Using the proposed method will improve the quality of histological preparations by pre-fixing the deep layers of the cornea of the eye before removing the organ (enucleation), which will preserve its structure, shape and integrity, as well as significantly increase the information content of the obtained sections of histological preparations and increase the accuracy of the diagnosis.

Claims (3)

1. Способ приготовления гистологических препаратов роговицы глаза, включающий забор биоматериала и его фиксацию в фиксирующем растворе, промывку от фиксатора, обезвоживание, заливку в парафин, приготовление срезов и их окрашивание, отличающийся тем, что перед забором биоматериала производят предварительное введение фиксирующего раствора в переднюю камеру глаза, для чего в 1,5-2,0 мм от лимба, на 13-15 часах, производят прокол роговицы с помощью инсулинового шприца и вводят в переднюю камеру глаза фиксирующий раствор в количестве 0,25-0,5 мл, после чего производят энуклеацию глаза с последующим забором биоматериала в дальнейшую обработку.1. The method of preparation of histological preparations of the cornea of the eye, including sampling the biomaterial and fixing it in the fixing solution, washing from the fixative, dehydration, pouring in paraffin, preparing sections and staining, characterized in that prior to sampling the biomaterial, the fixing solution is preliminarily introduced into the anterior chamber eyes, for which 1.5-2.0 mm from the limbus, at 13-15 hours, the cornea is punctured with an insulin syringe and a fixation solution is injected into the anterior chamber of the eye in an amount of 0.25-0.5 ml, last which produce enucleated eyes followed fence biomaterial further processing. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве фиксирующего раствора используют 10-12% раствор нейтрального забуференного формалина.2. The method according to p. 1, characterized in that as the fixing solution use a 10-12% solution of neutral buffered formalin. 3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что энуклеацию глаза осуществляют через 10-15 минут после введения фиксирующего раствора в переднюю камеру глаза.3. The method according to p. 1, characterized in that the enucleation of the eye is carried out 10-15 minutes after the introduction of the fixing solution into the anterior chamber of the eye.
RU2019114027A 2019-05-08 2019-05-08 Method of preparing corneal histological preparations RU2697475C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019114027A RU2697475C1 (en) 2019-05-08 2019-05-08 Method of preparing corneal histological preparations

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019114027A RU2697475C1 (en) 2019-05-08 2019-05-08 Method of preparing corneal histological preparations

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2697475C1 true RU2697475C1 (en) 2019-08-14

Family

ID=67640413

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019114027A RU2697475C1 (en) 2019-05-08 2019-05-08 Method of preparing corneal histological preparations

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2697475C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2734280C1 (en) * 2020-02-03 2020-10-14 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for isolated extraction and fabrication of histological structures of vitreous body
RU2807148C1 (en) * 2023-03-27 2023-11-09 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for obtaining area of posterior pole of eyeball for histotopographic examination

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2117273C1 (en) * 1994-09-28 1998-08-10 Тюменская медицинская академия Medium for histological slice inclusion
RU2420299C1 (en) * 2010-03-04 2011-06-10 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Method of preparing histological preparations
RU2525436C1 (en) * 2013-07-04 2014-08-10 Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Дальневосточный Федеральный Университет" (Двфу) Method for fixing and producing histological preparations
RU2601317C1 (en) * 2015-07-30 2016-11-10 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2117273C1 (en) * 1994-09-28 1998-08-10 Тюменская медицинская академия Medium for histological slice inclusion
RU2420299C1 (en) * 2010-03-04 2011-06-10 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Method of preparing histological preparations
RU2525436C1 (en) * 2013-07-04 2014-08-10 Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Дальневосточный Федеральный Университет" (Двфу) Method for fixing and producing histological preparations
RU2601317C1 (en) * 2015-07-30 2016-11-10 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2734280C1 (en) * 2020-02-03 2020-10-14 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for isolated extraction and fabrication of histological structures of vitreous body
RU2807148C1 (en) * 2023-03-27 2023-11-09 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for obtaining area of posterior pole of eyeball for histotopographic examination
RU2810890C1 (en) * 2023-10-25 2023-12-29 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова" (ФГБНУ "НИИ глазных болезней им. М.М. Краснова") Method of intravital obtaining sample of internal limiting membrane of retina

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ghnenis et al. Toluidine blue staining of resin-embedded sections for evaluation of peripheral nerve morphology
Baker The structure and chemical composition of the Golgi element
Blackstad Electron microscopy of Golgi preparations for the study of neuronal relations
Morest et al. Perfusion‐fixation of the brain with chrome‐osmium solutions for the rapid Golgi method
CN106323708A (en) Transparent reagent, biological tissue transparency imaging method and application of transparent reagent
Friedrich Jr et al. Electron microscopy: preparation of neural tissues for electron microscopy
CN111610078B (en) Biological tissue clearing reagent and biological tissue clearing method
De-Giorgio et al. Post-mortem ocular changes and time since death: scoping review and future perspective
Jackson et al. Scleral hydraulic conductivity and macromolecular diffusion in patients with uveal effusion syndrome
Bisht et al. Correlative light and electron microscopy to study microglial interactions with β-amyloid plaques
Roberts et al. Lee's ophthalmic histopathology
Bard et al. The morphogenesis of the ciliary body of the avian eye: II. Differential enlargement causes an epithelium to form radial folds
RU2697475C1 (en) Method of preparing corneal histological preparations
Tu et al. Free-floating immunostaining of mouse brains
RU2734280C1 (en) Method for isolated extraction and fabrication of histological structures of vitreous body
McInnes Artifacts in histopathology
LEVY et al. Technique for preparing histologic sections of dogs' and rabbits' eyes in paraffin
JP3723204B1 (en) Impermeable tissue quick fixative
RU2420299C1 (en) Method of preparing histological preparations
Wiig Cornea fluid dynamics I: measurement of hydrostatic and colloid osmotic pressure in rabbits
RU2455937C1 (en) Method of detecting pseudoexfoliation material at early stages of eye disease
CN114923754A (en) Rapid dehydration and morphology preservation dehydration transparent reagent and tissue light transparency method
Calkins The aqueous filtration angle: a phylogenetic and ontogenetic comparative histo-anatomic study of mammalian eyes
Bull The leprous diseases of the eye
RU2617201C1 (en) Method for quantitative cytochemical evaluation of rat erythrocytes chromaffin reaction during general body cooling