RU2676478C1 - Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости - Google Patents
Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости Download PDFInfo
- Publication number
- RU2676478C1 RU2676478C1 RU2017136241A RU2017136241A RU2676478C1 RU 2676478 C1 RU2676478 C1 RU 2676478C1 RU 2017136241 A RU2017136241 A RU 2017136241A RU 2017136241 A RU2017136241 A RU 2017136241A RU 2676478 C1 RU2676478 C1 RU 2676478C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- capsule
- filling mass
- bone
- coral
- bone defect
- Prior art date
Links
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 33
- 230000007547 defect Effects 0.000 title claims abstract description 24
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 235000014653 Carica parviflora Nutrition 0.000 claims abstract description 29
- 241000243321 Cnidaria Species 0.000 claims abstract description 28
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims abstract description 19
- 239000002775 capsule Substances 0.000 claims abstract description 11
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 claims abstract description 11
- 239000007903 gelatin capsule Substances 0.000 claims abstract description 11
- 210000000115 thoracic cavity Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 241000700159 Rattus Species 0.000 claims description 9
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 abstract description 17
- 238000002513 implantation Methods 0.000 abstract description 8
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 abstract description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 7
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 6
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 abstract description 5
- 239000008280 blood Substances 0.000 abstract description 5
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 abstract description 4
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000008030 elimination Effects 0.000 abstract description 3
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 abstract description 3
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 abstract description 3
- 206010020649 Hyperkeratosis Diseases 0.000 abstract description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 18
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 17
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 12
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 6
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 6
- 210000001564 haversian system Anatomy 0.000 description 6
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 6
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 5
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 5
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 4
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 4
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 206010031256 Osteomyelitis chronic Diseases 0.000 description 4
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 4
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 4
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 4
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 4
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 3
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 3
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 3
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 3
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 3
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 3
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 3
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010031252 Osteomyelitis Diseases 0.000 description 2
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L Sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 2
- 229940064004 antiseptic throat preparations Drugs 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 230000000975 bioactive effect Effects 0.000 description 2
- 239000002639 bone cement Substances 0.000 description 2
- 239000004068 calcium phosphate ceramic Substances 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 description 2
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 2
- 235000012907 honey Nutrition 0.000 description 2
- RXPAJWPEYBDXOG-UHFFFAOYSA-N hydron;methyl 4-methoxypyridine-2-carboxylate;chloride Chemical compound Cl.COC(=O)C1=CC(OC)=CC=N1 RXPAJWPEYBDXOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- OKJPEAGHQZHRQV-UHFFFAOYSA-N iodoform Chemical compound IC(I)I OKJPEAGHQZHRQV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 2
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 2
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 2
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 2
- 238000002271 resection Methods 0.000 description 2
- 102220240796 rs553605556 Human genes 0.000 description 2
- YGSDEFSMJLZEOE-UHFFFAOYSA-N salicylic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=CC=C1O YGSDEFSMJLZEOE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 229910021653 sulphate ion Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 description 2
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 2
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 241000242733 Acropora Species 0.000 description 1
- 229910000497 Amalgam Inorganic materials 0.000 description 1
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 241000242757 Anthozoa Species 0.000 description 1
- ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N Boron Chemical compound [B] ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 244000302413 Carum copticum Species 0.000 description 1
- QDHHCQZDFGDHMP-UHFFFAOYSA-N Chloramine Chemical compound ClN QDHHCQZDFGDHMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100032392 Circadian-associated transcriptional repressor Human genes 0.000 description 1
- 101710130150 Circadian-associated transcriptional repressor Proteins 0.000 description 1
- RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N Copper Chemical compound [Cu] RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QXNVGIXVLWOKEQ-UHFFFAOYSA-N Disodium Chemical class [Na][Na] QXNVGIXVLWOKEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 1
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 1
- 239000000899 Gutta-Percha Substances 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 238000012404 In vitro experiment Methods 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 206010029113 Neovascularisation Diseases 0.000 description 1
- 240000000342 Palaquium gutta Species 0.000 description 1
- 206010072170 Skin wound Diseases 0.000 description 1
- 208000033809 Suppuration Diseases 0.000 description 1
- 208000002847 Surgical Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 231100000131 acute cytotoxicity Toxicity 0.000 description 1
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 1
- 208000030961 allergic reaction Diseases 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000003110 anti-inflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 1
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 description 1
- 239000003429 antifungal agent Substances 0.000 description 1
- 239000004599 antimicrobial Substances 0.000 description 1
- 238000004500 asepsis Methods 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 239000011173 biocomposite Substances 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 1
- 229910052796 boron Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 229960001714 calcium phosphate Drugs 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000003610 charcoal Substances 0.000 description 1
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 1
- 239000004927 clay Substances 0.000 description 1
- 238000010411 cooking Methods 0.000 description 1
- 229910052802 copper Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010949 copper Substances 0.000 description 1
- 230000001054 cortical effect Effects 0.000 description 1
- 238000002316 cosmetic surgery Methods 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 231100000135 cytotoxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000003013 cytotoxicity Effects 0.000 description 1
- 238000001804 debridement Methods 0.000 description 1
- 210000004262 dental pulp cavity Anatomy 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 1
- 210000002969 egg yolk Anatomy 0.000 description 1
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000007717 exclusion Effects 0.000 description 1
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 1
- 239000000945 filler Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 239000011491 glass wool Substances 0.000 description 1
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 229920000588 gutta-percha Polymers 0.000 description 1
- 239000010440 gypsum Substances 0.000 description 1
- 229910052602 gypsum Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000023597 hemostasis Effects 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 230000002262 irrigation Effects 0.000 description 1
- 238000003973 irrigation Methods 0.000 description 1
- 210000001930 leg bone Anatomy 0.000 description 1
- 239000010871 livestock manure Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 238000007726 management method Methods 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003387 muscular Effects 0.000 description 1
- VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N n'-amino-n-iminomethanimidamide Chemical compound N\N=C\N=N VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 239000002674 ointment Substances 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 150000002894 organic compounds Chemical class 0.000 description 1
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 1
- FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N papa-hydroxy-benzoic acid Natural products OC(=O)C1=CC=C(O)C=C1 FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003415 peat Substances 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 1
- 235000019271 petrolatum Nutrition 0.000 description 1
- 238000001050 pharmacotherapy Methods 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 1
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 1
- 229920000058 polyacrylate Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 230000036515 potency Effects 0.000 description 1
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- BOLDJAUMGUJJKM-LSDHHAIUSA-N renifolin D Natural products CC(=C)[C@@H]1Cc2c(O)c(O)ccc2[C@H]1CC(=O)c3ccc(O)cc3O BOLDJAUMGUJJKM-LSDHHAIUSA-N 0.000 description 1
- 229960004889 salicylic acid Drugs 0.000 description 1
- 239000004576 sand Substances 0.000 description 1
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 239000003826 tablet Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 1
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 1
- 239000011800 void material Substances 0.000 description 1
- 239000002023 wood Substances 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/56—Materials from animals other than mammals
- A61K35/614—Cnidaria, e.g. sea anemones, corals, coral animals or jellyfish
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/56—Surgical instruments or methods for treatment of bones or joints; Devices specially adapted therefor
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/14—Blood; Artificial blood
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
- A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Surgery (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Physical Education & Sports Medicine (AREA)
- Immunology (AREA)
- Virology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине, а именно к травматологии и ортопедии, и может быть использовано при закрытии дефекта плоских и трубчатых костей. Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости у крысы в эксперименте включает измельчение коралла семейства Acropridae до размера гранул не более 145 мкм, которым на две трети объема наполняют желатиновую капсулу, затем капсулу заполняют аутокровью до полного ее объема, причем стенку капсулы предварительно перфорируют отверстиями с диаметром 0,1 мм в количестве 4-х на 1 мм, далее капсулу имплантируют под кожу крысы в области грудного отдела позвоночника на 14-ть суток, затем извлекают пломбировочную массу и применяют для закрытия дефекта кости. Изобретение обеспечивает исключение необходимости выполнять контроль на биосовместимость в связи с применением аутокрови; сокращение времени и упрощение методики приготовления пломбировочной массы к имплантации, что повышает качество антибактериальной защиты; и в том, что не используется специальное дорогостоящее оборудование и реагенты для приготовления пломбировочной массы к имплантации; а также в формировании костной мозоли уже на 14-е сутки после операции. 10 ил.
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к травматологии и ортопедии, и может быть использовано при закрытии дефекта плоских и трубчатых костей.
Исторически предпочтение закрытию дефекта в кости отдавалось его пломбировке. По данным Т.Я. Арьева и Г.Д. Никитина (1955), первоначально хирурги использовали вещества, которые были абсолютно чужеродные для организма: йодоформ (Moseting-Moorhof, 1880); губки (Hamilton, 1881); салициловую кислоту (Schmidt, 1882); медную амальгаму (Maier, 1893); гипс (Deesman, 1893); стекло (Salzer, 1896); свинец (Lesser, 1896); желатин (Schepelman, 1918); вазелин (Orr, 1919); стеклянную вату и древесный уголь (Kummel, 1920); парафин (Silvestrini, 1920); мазь А.В. Вишневского (A.M. Рыжих, 1943) [5]. Кроме этого, применяли: куриный желток [18]; белую глину, азотнокислый и сернокислый висмут, древесные опилки и торф, гуттаперчу, морской песок, Poultry manure (птичий помет), молотый кофе, смесь сахара и хлорамина, столярный клей, расплавленный парафин, азотнокислый и сернокислый висмут, и еще около 50 разновидностей наполнителей [5]. Результаты применения этих материалов, как пломб для закрытия дефекта кости не оправдывали ожидания хирургов и пациентов. Эти пломбы являлись инородными телами в костной полости, а также обладали токсичным действием на живой организм. Поэтому все перечисленные материалы отторгались и вызывали нагноение раны. Однако некоторые вещества нашли свое применение в медицине и в настоящее время.
Современные способы закрытия дефекта кости включают: санацию дефекта кости ультразвуком, антибиотиками и химическими реагентами, например раствор динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты [3, 20, 26, 29, 37]; стимуляцию регенерации кости; введение в полость сложного полимерного состава, основой которого служил полиакрилат («костный цемент») с антибиотиками [39]; применение резорбируемых пломб, обладающих способностью стимулировать остеогенез и оказывать противовоспалительное и противомикробное действие [11]. В состав современных резорбируемых пломб могут входить как неорганические вещества (гидроксиаппатит), так и полимерные органические соединения (полилактид, биоситалл, гидроксиапол) [17]. В некоторые резорбируемые пломбы могут быть добавлены антибиотики или молекулы, способствующие более выраженному остеогенному эффекту, например коллаген [38].
Одним из самых популярных современных биодеградирующих пломб является комбинированный препарат «КоллапАн» в его состав входит гидроксиапатит, коллаген и комплекс антимикробных средств [8]. Особенностью «КоллапАна» является то, что на его поверхности формируется полноценная костная ткань без формирования соединительно-тканных прослоек между его гранулами [18].
Несмотря на многообразие современных способов пломбировки остаточных полостей костей, процент неудовлетворительных результатов при лечении остается достаточно велик: по данным ряда авторов положительный эффект достигается лишь в 55-65% случаев [6].
Современные исследователи сходятся во мнении, что более физиологичным способом замещения остаточных полостей, в сравнении с пломбировкой, является трансплантация, то есть пластика биологическими тканями [1, 5, 7, 16, 19, 21, 23, 24, 40]; костные «гранулы», использование кожи, мышцы кости, крови, кровяных сгустков и другие замещающие субстанции [22, 42].
Для активизации репаративного остеогенеза используют: кальций-фосфатный материала, например препарат КоллапАн - биокомпозиционный материал на основе синтетического гидроксиапатита, коллагена и антибиотика (производится отечественной фирмой «Интермедапатит»); препарат Остим (Ostim) - синтетический гидроксиапатит ультравысокой дисперсности в виде пасты («Osartis», Германия); препарат Хронос (chronOs) - гранулы β-трикальцийфосфатной керамики («Mathys Medical Ltd» Швейцария); препарат Церосорб (Cerosorb) - гранулы β-трикальцийфосфатной керамики («Curasan», Германия) [8, 9, 15, 31, 32, 34, 35].
Близким к предлагаемому способу является техническое решение, суть которого заключается в применении механически измельченного натурального коралла (НК) до размера частиц 300-600 мкм. Стерилизацию коралла выполняют γ облучением в дозе 25 КГр. Оценку острой цитотоксичности и матриксных свойств поверхности НК проверяют на культуре иммортализованных нормальных фибробластов человека (ФЧ). Для этого за сутки до начала опыта in vitro частицы НК помещают в 96 луночные культуральные планшеты и для насыщения заливают полной ростовой средой (ПРС) следующего состава: среда ДМЕМ («ПанЭко» Россия), 10% эмбриональная телячья сыворотка («HyClone», США), глютамин (292 мг/л), гентамицин (50 мг/л) («ПанЭко» Россия). Затем среду с образцами НК (опыт) декантурируют и вносят суспензию ФЧ в объеме 200 мкл ПРС (плотность посева 70 тыс. клеток на лунку). Контролем служит культура ФЧ на полистирене (культуральный пластик). Культивирование осуществляют при 37°C и атмосфере влажного воздуха, содержащего 5% CO2. Смену ПРС в планшетах осуществляют дважды в неделю [33].
Цитотоксичность НК определяют через 24 ч. Матриксные свойства кораллов оценивают в динамике культивирования на них клеток 3, 7 и 14 сут. Жизнеспособность ФЧ на этапах экспериментов оценивают с помощью МТТ-теста [41], для чего рассчитывают пул жизнеспособных клеток (ПЖК) в каждый конкретный срок по оптической плотности раствора формазана, в сравнении с контролем.
Для исследования биосовместимости образцов НК в экспериментах in vivo используют модель подкожной трансплантации. Для этого крысам-самкам линии Wistar весом 180-200 г - под наркозом делают кожный надрез в области грудного отдела позвоночника и в образованный «карман» имплантируют образец НК весом 120 мг. Рану закрывают узловатыми швами. Животных выводят из эксперимента через 3, 6, 9 и 12 недель. Проводят визуальную и гистологическую оценку (окраска гематоксилином и эозином) фрагмента ткани с НК.
Исследования in vivo остеозамещающих потенций НК проводят на дефекте после краевой резекции большеберцовой кости. У крыс на границе верхней и средней трети кости голени с помощью бора формируют «окончатый дефект» (длина 6-8 мм, ширина 1,5-2 мм, глубина 2,5-3 мм) до нижнего кортикального слоя. Область дефекта заполняют стерильными частицами НК. Операционную рану послойно ушивают. Для проведения морфологических исследований зоны дефекта животных выводят из эксперимента через 3, 6, 9 и 12 нед. (по 2 животных в каждый срок), производят гистологические исследования [33].
На микропрепаратах из периферической части этой зоны выявляли почти полное замещение вещества НК компактной костной тканью с формированием органотипических структур (остеонов). В отдельных полях зрения между остеонами были остатки вещества коралла, зоны скопления остеобластов, активная неоваскуляризация. В центре некоторых остеонов определяли полости с жировой тканью и цепочки остеобластов по периферии полости, по мнению авторов, с зачатками костномозгового матрикса. Авторы полагали, что данные эксперимента при краевой резекции большеберцовой кости крысы при закрытии костного дефекта имплантатом на основе натурального коралла свидетельствуют о выраженных остеорепаративных потенциях скелета коралла из семейства Acropridae [33].
К недостаткам известного технического решения [33] можно отнести: долгосрочность и сложность подготовки коралла для закрытия дефекта в кости, требующей специального дорогостоящего оборудования и реагентов для подготовки пломбировочной массы к имплантации; применение культуры иммортализованных нормальных фибробластов человека, что вызвало необходимость контроля НК на биосовместимость; опасность аллергической реакции на применяемую культуру иммортализованных нормальных фибробластов человека; повышение риска инфекционных осложнений связанного с многочисленными манипуляциями при подготовке коралла к имплантации. Выявленные пустоты на гистологических препаратах, по мнению заявителей предполагаемого изобретения, могло быть связано с большим объемом коралловых грану. Что может являться существенным недостатком прототипа.
Задачей предлагаемого технического решения было: устранение недостатков прототипа путем упрощения методики приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости; исключение необходимости выполнять контроль на биосовместимость применяемой пломбировочной массы; сокращение времени ее приготовления к имплантации; повышение качества антибактериальной защиты; исключение использования специального дорогостоящего оборудования и реагентов для приготовления пломбировочной массы к имплантации; определение оптимального размера коралловых гранул для качественного остеорепаративного процесса.
На фиг. 1-10 показана аргументация основных позиций технического решения:
на фиг. 1 - схема желатиновой капсулы с перфорированной стенкой;
на фиг. 2 - вид раны после имплантации желатиновой капсулы с измельченным кораллом семейства Acropridae, пропитанным аутокровью;
на фиг. 3 - 14-е сутки инкубации пломбировочной массы в тканях животного: вид и размеры извлеченного имплантата;
на фиг. 4 - 7-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул 200-320 мкм и крупнее;
на фиг. 5 - 7-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул менее 145 мкм;
на фиг. 6 - 14-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул 200-320 мкм и крупнее;
на фиг. 7 - 14-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул менее 145 мкм;
на фиг. 8 - 21-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул 200-320 мкм и крупнее;
на фиг. 9 - 21-е сутки инкубации: гистологический препарат имплантата на основе измельченного коралла с размером гранул менее 145 мкм;
на фиг. 10 - 14-е сутки после закрытия дефекта кости пломбировочной массой: гистологический препарат кости в проекции дефекта.
Для определения оптимального размера коралловых гранул проводили эксперименты на беспородных крысах-самцах с массой 300-340 г, которые были разделены на две группы. На животных первой группы апробировали измельченный коралл с размером гранул 200-320 мкм и крупнее. На животных второй группы апробировали измельченный коралл с размером гранул не более 145 мкм. Порции измельченного коралла помещали в желатиновые капсулы с перфорированной стенкой (фиг. 1), имеющей 4 отверстия на 1 мм2 с диаметром до 0,1 мм. Капсулы с соблюдением правил асептики и антисептики на две трети их объема заполняли коралловой крошкой. Затем из хвостовой вены животных брали кровь, которой заливали коралловую крошку до полного заполнения желатиновой капсулы. Каждому животному под общим обезболиванием под кожу в области грудного отдела позвоночника имплантировали капсулу с измельченным кораллом, обработанным аутокровью. Кожную рану закрывали узловатыми швами (1) наглухо (фиг. 2). Кожный шов обрабатывали жидким антисептиком.
Имплантаты извлекали у четырех крыс из каждой группы на 7, 14 и 21 сутки инкубации. У извлеченного имплантата желатиновая капсула в процессе инкубации рассасывалась и была замещена плотным тканевым формированием с размерами больше, чем была желатиновая капсула (фиг. 3). Имплантат фиксировали в 10% кислом формалине, заключали в парафин и изготовляли серийные срезы толщиной 12-15 мкм. Срезы окрашивали гематоксилином и эозином. Гистологические препараты описывали под микроскопом Leica DM2500 с цифровой обработкой изображения.
На 7-е сутки инкубации в имплантатах животных первой (фиг. 4) и второй (фиг. 5) групп определяли развитие стромы из рыхлой волокнистой соединительной ткани (2) от периферии к центру препарата, которая окружала пустоты (3), оставшиеся от гранул декальцинированного коралла. Размеры пустот от измельченного коралла с размером гранул менее 145 мкм были значительно меньше, чем от гранул с размером 200-320 мкм и крупнее. Кроме этого, у животных второй группы (фиг. 5) имплантат имел капсулу, состоящей из компактной (4А) и рыхлой (4Б) соединительной ткани толщиной 88,86-136,03 мкм, которая была пронизана многочисленными кровеносными сосудами (5), диаметр которых колебался в пределах 21,98-34,92 мкм. В строме из рыхлой волокнистой соединительной ткани (2) проходили единичные стромальные кровеносные сосуды (6), которые были ориентированы ближе к соединительнотканной капсуле (фиг. 5).
После 14-суточной инкубации на гистологических препаратах имплантатов животных первой группы (фиг. 6) выявлено обилие фибробластов (7) и лимфоцитов (8). На гистологических препаратах имплантатов животных второй группы (фиг. 7) по периферии выявлено скопление фибробластов (7), которые окружали крупные очаги формирования хрящеподобной (9) и молодой костной ткани (10).
На 21-е сутки инкубации имплантаты животных первой группы (фиг. 8) были хорошо васкуляризированы, выявлено обилие фибробластов (7) и лимфоцитов (8). На гистологических препаратах имплантатов животных второй группы (фиг. 9) определяли формирование компактной костной ткани (11) с гаверсовыми каналами (12).
Анализ полученных экспериментальных данных дал нам возможность выполнить поставленную задачу путем приготовления пломбировочной массы с применением измельченного коралла семейства Acropridae с размером гранул не более 145 мкм, которым на две трети объема наполняли желатиновую капсулу, а затем вводили аутокровь до полного ее заполнения, причем стенку капсулы предварительно перфорировали отверстиями с диаметром 0,1 мм в количестве 4-х на 1 мм2, а желатин капсулы использовали вместо коллагена, и для завершения процесса приготовления пломбировочной массы желатиновую капсулу с содержимым, с учетом биоэтики [43], правил асептики и антисептики имплантировали под кожу в области грудного отдела позвоночника крысы на 14-ть суток.
С целью оценки эффективности применения пломбировочной массы для закрытия дефекта кости, приготовленной по разработанному способу авторами предложенного способа, был поставлен эксперимент. Под общим обезболиванием с соблюдением асептики и антисептики с помощью шаровидной стоматологической фрезы у крыс в средней трети бедренной кости на ее латеральной стороне формировали дефект размером 8×2×2,5 мм (40 мм3). Сформированный дефект кости заполняли приготовленной пломбировочной массой и прикрывали ее прилежащей мышечной тканью. После гемостаза рану послойно закрывали наглухо. Кожный шов обрабатывали жидким антисептиком.
На 14-е сутки после операции животных выводили из эксперимента. При гистологическом исследовании (окраска гематоксилин-эозином и по Маллори) выявлено формирование костной мозоли, по внутренней поверхности которой происходило проникновение в костную ткань бедренной кости молодой костной (10) и фиброзной (13) тканей. Матрикс костной мозоли был представлен компактной костной тканью (11), имеющей остеоны с кровеносными сосудами, проходящими в гаверсовых каналах (12) (фиг. 10).
Положительный эффект при применении способа заключался: в исключении необходимости выполнять контроль на биосовместимость в связи с применением аутокрови; в сокращении времени и упрощении методики приготовления пломбировочной массы к имплантации, что повысило качество антибактериальной защиты; в том, что не использовалось специальное дорогостоящее оборудование и реагенты для приготовления пломбировочной массы; в формировании костной мозоли уже на 14-е сутки после операции.
Список использованной литературы
1. Агафонов, И.А. Пластика кровоснабжаемыми тканями при лечении хронического остеомиелита: автореф. дис. … канд. мед. наук: 14.00.22 / Агафонов И.А. - Л., 1971. - 26 с.
2. Авторское свидетельство СССР 602179, А61Н 9/00, опубл. 15.04.1974.
3. Авторское свидетельство СССР 1122323, А61К 31/71, опубл. 07.11.84.
4. Авторское свидетельство СССР 1503775, МПК: А61В 17/56, опубл. 30.08.89.
5. Арьев, Т.Я. Мышечная пластика костных полостей / Т.Я. Арьев, Г.Д. Никитин. - М.: Медгиз, 1955. - 175 с.
6. Батаков, В.Е. Применение плазменного аутофибронектина в комплексном лечении хронического остеомиелита: дис. … канд. мед. наук / В.Е. Батаков - Самара, 2010. - 139 с.
7. Барабаш, А.А. Свободная костная пластика в дистракционный регенерат при ортопедической патологии (экспериментально-клиническое исследование): автореф. дис. … канд. мед. наук. - Новосибирск, 1998. - 19 с.
8. Берченко Г.Н., Кесян Г.А. Уразгильдеев Р.З., Арсеньев ИГ., Микелаишвили Д.С. Сравнительное экспериментально-морфологическое исследование влияния некоторых используемых в травматолого-ортопедической практике кальций-фосфатных материалов на активизацию репаративного остеогенеза // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения РАМН. - 2006. - №4(50). - 327-333.
9. Бушуев О.М. Использование Коллапана в комплексном лечении хронического остеомиелита: автореф. дис. … канд. мед. наук. - Москва, 1999. - 21 с.
10. Гурин А.В. Роль монооксида азота в центральных механизмах регуляции температуры тела: автореф. дисс. на соиск. уч. степ к.б.н. - Москва, 1995. - 22 с.
11. Глухов А.А., Алексеева Н.Т., Микулич Е.В. Экспериментальное обоснование применения струйной санации и тромбоцитарного концентрата в лечении хронического остеомиелита длинных трубчатых костей // Вестник экспериментальной и клинической хирургии. - 2012. - Т. 5, №1. - С. 131-136.
12. Двужильная Е.Д., Южаков С.Ф. Применение вакуум-терапии при гнойных воспалительных процессах // Клиническая хирургия. - 1967. - №5. С. 32.
13. Ефименко Н.А., Хрупкий В.И., Марахонич Л.А. и др. Воздушно-плазменные потоки и NO-терапия - новая технология в клинической практике военных лечебно-профилактических учреждений // Военно-мед. журнал. - 2005. - №5. - С. 51-54.
14. Исаков Ю.Ф., Долецкий С.Я. Детская хирургия. - М.: Медицина, 1971. - С. 148.
15. Кесян Г.А., Берченко Г.Н., Уразгильдеев Р.З. и др. Сочетанное применение обогащенной тромбоцитами аутоплазмы и биокомпозиционного материала коллапан в комплексном лечении больных с длительно не срастающимися переломами и ложными суставами длинных костей конечностей // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова. 2011, №2. - С. 26-32.
16. Козлов, И.В. Пластическое замещение остеомиелитических дефектов голени и стопы лоскутами с осевым типом кровоснабжения: клинико-анатомическое исследование: автореф. дис. … канд. мед. наук / И.В. Козлов. - СПб., 2008. - 22 с.
17. Котельников Г.П., Сонис А.Г. Влияние гравитационной терапии на репаративный остеогенез у пациентов с остеомиелитом нижних конечностей // Саратовский научно-медицинский журнал. - 2010. - Т. 6. - №3. - С. 695-700.
18. Кузнецов Н.А., Никитин В.Г., Телешова Е.Б., Мильчаков А.А. Антисептики и биодеградирующие импланты в лечении хронического послеоперационного остеомиелита // Хирургия. - 2009. - №5. - С. 31-35.
19. Лубегина, З.П., Штин В.П. Взаимоотношение сосудов остеомиелитической полости и пересаженной мышцы после некрэктомии в эксперименте // Ортопедия, травматология и протезирование. - 1976. - №6. - С. 76-77.
20. Машковский М.Д. Лекарственные средства: Изд. 12-е. - М.: Медицина, 1993. - Т. 2. - С. 227-228.
21. Мельникова, А.В. Замещение клетками пуповинной крови костных полостей экспериментального остеомиелита: экспериментальное исследование: автореф. дис. … канд. мед. наук. - Уфа, 2009. - 21 с.
22. Микулич Е.В. Современные принципы лечения хронического остеомиелита // Вестник новых медицинских технологий - 2012. - Т. XIX, №2 - С. 180-184.
23. Никитин Г.Д., Рак А.В., Линник С.А., Николаев В.Ф., Никитин Д.Г. / Костная мышечно-костная пластика при лечении хронического остеомиелита и гнойных ложных суставов. - СПб: Издательство «ЛИГ», 2002, 185 с. (93-94).
24. Никитин, Г.Д., Рак А.В., Линник С.А. и др. Хирургическое лечение остеомиелита. - СПб: Русская графика, 2000. - 288 с. (90-94).
25. NO терапия: теоретические аспекты, клинический опыт и проблемы применения экзогенного оксида азота в медицине", под ред. Грачева С.В., Шехтера А.Б., Козлова Н.П. - М.: Издательский дом «Русский врач», 2001. - С. 122-124.
26. Охотский В.П. Активное дренирование в лечении больных с хроническим посттравматическим остеомиелитом длинных трубчатых костей // Первый Белорусский международный конгресс хирургов. - Витебск, 1996. - С. 81-82.
27. Патент SU 1140767, А61В 17/56, опубл. 23.02.1985.
28. Патент RU 2221573, A61K 33/08, А61М 25/00, А61Р 19/08, опубл. 20.01.2004.
29. Патент RU 2222324, A61K 31/198, A61N 7/00, А61Р 19/08, опубл. 27.01.2004.
30. Патент RU 2288665, А61В 17/56, опубл. 10.12.2006.
31. Патент RU 2356508, А61В 17/56, опубл. 27.05.2009.
32. Рак А.В. Оперативное лечение ложных суставов длинных трубчатых костей: автореферат дис. на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. - Ленинград, 1974. - 17 с.
33. Свиридова И.К., Сергеева Н.С., Франк Г.А., Тепляков В.В., Кирсанова В.А., Ахмедова С.А., Мыслевцов И.В., Шанский Я.Д. Скелет натуральных кораллов сем. Acropora в замещении дефекта костной ткани у мелких и крупных лабораторных животных // Клеточная травматология и тканевая инженерия. - 2010. - Т. 5, №4. - С. 43-48.
34. Терновой К.С., Прокопова Л.В., Алексюк К.П. Лечение остеомиелита у детей. - Киев: Здоровье, 1979. - С. 131-132.
35. Уразгильдеев З.И., Бушуев О.М., Берченко Г.Н. Применение Коллапана для пластики остеомиелитических дефектов костей // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова. - 1998. - №2. - С. 31-35.
36. Хронический остеомиелит. Сборник научных трудов / под ред. проф. Г.Д. Никитина // Труды ЛСГМИ. - Ленинград, 1982. - 134 с. (30 и 79).
37. Cameron J.A. The choice of irrigant during hand instrumentation and ultrasonic irrigation of the root canal: a scanning electron microscope study. // Austral. Dental. Jorn. - 1995. - Vol. 40 (2). - P. 85-90.
38. Carpenter, J., Khang T.J., Webster D. Nanometer polymer surface features: the influence on surface energy, protein adsorption and endothelial cell adhesion // Nanotechnology. - 2008. - Vol. 19 (50). - P. 505-508.
39. Sealy P.I. et al. Delivery of antifungal agents using bioactive and non-bioactive bone cements // Annual of pharmacotherapy. - 2009. - Vol. 43. - P. 1606-1615.
40. Me GRow J.B. et all. Atlas of muscle a musculocuteon fons flaps norflok, - Hampton Press, 1986. - 485 p.
41. Mossman T.J. Rapid colorivetric, assay for cellular growth and cytotoxity assays // Immunol. Methods. - 1983. - Vol. 65. - P. 55-63.
42. Parsons, В., Straus E. Surgical management of chronic osteomyelitis // Am. J. Surg. - 2004. - Vol. 188 Suppl. - P. 57-66.
43. European convention for the protection of vertebral animals used for experimental and other scientific purpose: Council of Europe 18.03.1986. - Strasbourg, 1986. - 52 p.
Claims (1)
- Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости у крысы в эксперименте, включающий измельчение коралла семейства Acropridae до размера гранул не более 145 мкм, которым на две трети объема наполняют желатиновую капсулу, затем капсулу заполняют аутокровью до полного ее объема, причем стенку капсулы предварительно перфорируют отверстиями с диаметром 0,1 мм в количестве 4-х на 1 мм2, далее капсулу имплантируют под кожу крысы в области грудного отдела позвоночника на 14-ть суток, затем извлекают пломбировочную массу и применяют для закрытия дефекта кости.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017136241A RU2676478C1 (ru) | 2017-10-12 | 2017-10-12 | Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017136241A RU2676478C1 (ru) | 2017-10-12 | 2017-10-12 | Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2676478C1 true RU2676478C1 (ru) | 2018-12-29 |
Family
ID=64958597
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2017136241A RU2676478C1 (ru) | 2017-10-12 | 2017-10-12 | Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2676478C1 (ru) |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1994026283A1 (fr) * | 1993-05-13 | 1994-11-24 | Inoteb | Utilisation de particules d'un sel de calcium biocompatible et bioresorbable comme ingredient actif dans la preparation d'un medicament destine au traitement local des maladies demineralisantes de l'os |
| WO2009066283A2 (en) * | 2007-11-19 | 2009-05-28 | Ben Gurion University Of The Negev Research And Development Authority | Calcium-mediated effects of coral and methods of use thereof |
| RU2472516C1 (ru) * | 2011-06-16 | 2013-01-20 | Общество с ограниченной ответственностью "АйБИОСТ" | Биоматериал для замещения костных дефектов |
| US20150147397A1 (en) * | 2012-05-17 | 2015-05-28 | Cartiheal (2009) Ltd. | Biomatrix Hydrogels and Methods of Use Thereof |
| RU2599022C1 (ru) * | 2015-07-29 | 2016-10-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Способ получения композиционного материала для замещения костных дефектов с использованием гидролитической конверсии |
-
2017
- 2017-10-12 RU RU2017136241A patent/RU2676478C1/ru active
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1994026283A1 (fr) * | 1993-05-13 | 1994-11-24 | Inoteb | Utilisation de particules d'un sel de calcium biocompatible et bioresorbable comme ingredient actif dans la preparation d'un medicament destine au traitement local des maladies demineralisantes de l'os |
| WO2009066283A2 (en) * | 2007-11-19 | 2009-05-28 | Ben Gurion University Of The Negev Research And Development Authority | Calcium-mediated effects of coral and methods of use thereof |
| RU2472516C1 (ru) * | 2011-06-16 | 2013-01-20 | Общество с ограниченной ответственностью "АйБИОСТ" | Биоматериал для замещения костных дефектов |
| US20150147397A1 (en) * | 2012-05-17 | 2015-05-28 | Cartiheal (2009) Ltd. | Biomatrix Hydrogels and Methods of Use Thereof |
| RU2599022C1 (ru) * | 2015-07-29 | 2016-10-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Способ получения композиционного материала для замещения костных дефектов с использованием гидролитической конверсии |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| MANASSERO M et al. Bone regeneration in sheep using acropora coral, a natural resorbable scaffold, and autologous mesenchymal stem cells. Tissue Engineering Part A, Vol. 19, No. 13-14, p. 1554-1563. * |
| СВИРИДОВА И.К. и др. Скелет натуральных кораллов сем. Acropora в замещении дефекта костной ткани у мелких и крупных лабораторных животных. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия, 2010, т. V, N4, 2010, с. 43-49. * |
| СВИРИДОВА И.К. и др. Скелет натуральных кораллов сем. Acropora в замещении дефекта костной ткани у мелких и крупных лабораторных животных. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия, 2010, т. V, N4, 2010, с. 43-49. MANASSERO M et al. Bone regeneration in sheep using acropora coral, a natural resorbable scaffold, and autologous mesenchymal stem cells. Tissue Engineering Part A, Vol. 19, No. 13-14, p. 1554-1563. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2831708T3 (es) | Preparaciones de células para uso extemporáneo, útiles para cicatrización y rejuvenecimiento in vivo | |
| Miguez-Pacheco et al. | Bioactive glasses beyond bone and teeth: Emerging applications in contact with soft tissues | |
| JP6622416B2 (ja) | 骨修復のための注入可能な複合材料およびそれを調製する方法 | |
| KR102136314B1 (ko) | 상처 치유 조성물의 제조를 위한 방법, 튜브 및 장치 | |
| DE69433920T2 (de) | Supplementierte verdichtungsmittel für gewebe, methoden für ihre herstellung und ihre verwendung | |
| van Houdt et al. | The performance of CPC/PLGA and Bio‐Oss® for bone regeneration in healthy and osteoporotic rats | |
| KR20120092632A (ko) | 경조직 재생 유도용 재료 | |
| Cho et al. | Natural sources and applications of demineralized bone matrix in the field of bone and cartilage tissue engineering | |
| JP7542880B2 (ja) | オルガノイドの生体移植用組成物 | |
| JP6765540B2 (ja) | 生着率を増加させた移植用真皮層及びその製造方法 | |
| Zhang et al. | Biological fixation of bioactive bone cement in vertebroplasty: the first clinical investigation of borosilicate glass (BSG) reinforced PMMA bone cement | |
| Wong et al. | Effectiveness of treating segmental bone defects with a synergistic co-delivery approach with platelet-rich fibrin and tricalcium phosphate | |
| WO2006007780A1 (fr) | Matiere pour reparation d'os sous forme de gelatine injectable et son procede de preparation | |
| RU2360663C1 (ru) | Гель для регенерации костной ткани | |
| RU2710252C1 (ru) | Способ замещения костных полостей при лечении больных хроническим остеомиелитом | |
| US20250032673A1 (en) | Bone repair composition and kit | |
| RU2524618C1 (ru) | Комбинированный костный аллотрансплантат и способ его получения | |
| US20220249736A1 (en) | Foraminifera-derived bone graft material | |
| RU2676478C1 (ru) | Способ приготовления пломбировочной массы для закрытия дефекта кости | |
| Hassan et al. | Application of Aloe vera gel blended polymer-collagen scaffolds for bone tissue engineering | |
| KR20110043610A (ko) | 칼슘 포스페이트를 함유하는 생체재료 | |
| RU2544303C1 (ru) | Способ лечения хронического остеомиелита длинных костей конечностей | |
| RU2644828C1 (ru) | Способ закрытия дефекта в кости | |
| WO2017101021A1 (zh) | 一种改良的骨修复材料 | |
| RU2375007C1 (ru) | Способ замещения костных дефектов |