RU2495425C1 - Method of extracting azathioprine from biological fluids - Google Patents
Method of extracting azathioprine from biological fluids Download PDFInfo
- Publication number
- RU2495425C1 RU2495425C1 RU2012124431/15A RU2012124431A RU2495425C1 RU 2495425 C1 RU2495425 C1 RU 2495425C1 RU 2012124431/15 A RU2012124431/15 A RU 2012124431/15A RU 2012124431 A RU2012124431 A RU 2012124431A RU 2495425 C1 RU2495425 C1 RU 2495425C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- extract
- azathioprine
- solution
- dioxane
- extraction
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биологии, токсикологической и аналитической химии, а именно к способам извлечения азатиоприна из биологических жидкостей, и может быть использовано в практике химико-токсикологических и клинических лабораторий для извлечения азатиоприна из биологических жидкостей с целью его последующего определения. Способ относится к числу массовых.The invention relates to biology, toxicological and analytical chemistry, and in particular to methods for the extraction of azathioprine from biological fluids, and can be used in the practice of chemical toxicological and clinical laboratories to extract azathioprine from biological fluids with a view to its subsequent determination. The method belongs to the mass.
Известен способ извлечения производных пурина (кофеина) из биологической жидкости (раствора альбумина), состоящий в том, что анализируемую пробу обрабатывают раствором пепсина в растворе хлороводородной кислоты, доводят реакцию среды полученной смеси до рН 4, инкубируют при температуре 37°С в течение 1 часа, экстрагируют трижды хлороформом при соотношении объемов водной и органической фаз 1:1, экстракты объединяют, остаток растворяют в фосфатном буфере с рН 7,4, полученный раствор фильтруют и определяют количество извлеченного производного пурина по величине оптической плотности фильтрата, измеренной при длине волны 273 нм (Стрелова О.Ю., Чувина Н.А. Изолирование кофеина из крови с применением ферментативного гидролиза на примере модельного вещества // Судебно-медицинская экспертиза. - 2008. - Т.51, №4. - С.28-31).A known method of extracting derivatives of purine (caffeine) from a biological fluid (albumin solution), consisting in the fact that the analyzed sample is treated with a solution of pepsin in a solution of hydrochloric acid, the reaction of the resulting mixture is adjusted to pH 4, incubated at 37 ° C for 1 hour extracted three times with chloroform at a ratio of the volumes of aqueous and organic phases 1: 1, the extracts are combined, the residue is dissolved in phosphate buffer with a pH of 7.4, the resulting solution is filtered and the amount of the derivative extracted is determined purine by the value of the optical density of the filtrate, measured at a wavelength of 273 nm (Strelova O.Yu., Chuvina N.A. Isolation of caffeine from blood using enzymatic hydrolysis using an example of a model substance // Forensic medical examination. - 2008. - T. 51, No. 4. - S.28-31).
Способ отличается трудоемкостью и относительно низкой степенью извлечения.The method is labor intensive and has a relatively low degree of extraction.
Известен способ извлечения производных пурина из биожидкостей (крови), заключающийся в том, что анализируемую пробу обрабатывают сульфатом аммония, выдерживают в течение 30 минут при перемешивании, раствор центрифугируют при 3000 оборотах в минуту, центрифугат отделяют, доводят его реакцию до рН 4,0-5,0, экстрагируют трижды хлороформом при соотношении водной и органической фаз на каждой стадии экстракции 1:1, экстракты объединяют, экстрагент испаряют, остаток растворяют в фосфатном буфере с рН 7,4, полученный раствор фильтруют и определяют количество извлеченного вещества по величине оптической плотности, измеренной при длине волны 273 нм (Стрелова О.Ю., Чувина Н.А. Оценка эффективности методов изолирования токсических веществ из крови // Судебно-медицинская экспертиза. - 2008. - Т.51, №4. - С.22-24).A known method of extracting purine derivatives from biofluids (blood), which consists in the fact that the analyzed sample is treated with ammonium sulfate, kept for 30 minutes with stirring, the solution is centrifuged at 3000 rpm, the centrifugate is separated, its reaction is adjusted to pH 4.0- 5.0, extracted three times with chloroform at a ratio of aqueous and organic phases at each extraction stage of 1: 1, the extracts are combined, the extractant is evaporated, the residue is dissolved in phosphate buffer with a pH of 7.4, the resulting solution is filtered and the quantity determined the substance of the extracted substance by the optical density measured at a wavelength of 273 nm (Strelova O.Yu., Chuvina N.A. Evaluation of the effectiveness of methods of isolating toxic substances from the blood // Forensic medical examination. - 2008. - V. 51, No. 4. - S.22-24).
Способ характеризуется недостаточно высокой степенью извлечения.The method is characterized by an insufficiently high degree of extraction.
Наиболее близким является способ извлечения производных пурина (к которым относится и азатиоприн) из плазмы крови, состоящий в том, что анализируемую пробу обрабатывают осаждающим белки реагентом, в качестве которого используется хлорная кислота, извлечение отделяют от выпавшего осадка центрифугированием, центрифугат обрабатывают раствором гидроксида натрия, избыток щелочи нейтрализуют раствором хлороводородной кислоты, полученный раствор экстрагируют смесью органических растворителей хлороформ-пропанол-2, взятых в объемном отношении 1:1, органический экстракт отделяют центрифугированием, экстрагент испаряют до сухого остатка, остаток растворяют в подвижной фазе и определяют количество перешедшего в экстракт анализируемого соединения методом ВЭЖХ по площади хроматографического пика (Dobrocky P., Bennet P.N., Natarianny L.J. Rapid method for the routine determination of caffeini and its metabolites by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. Biomed. AppL - 1994. - Vol.652, №1. - P.104-108).The closest is the method of extraction of purine derivatives (which includes azathioprine) from blood plasma, which consists in the fact that the analyzed sample is treated with a precipitating protein reagent, which is used as perchloric acid, the extraction is separated from the precipitate by centrifugation, the centrifugate is treated with sodium hydroxide solution, the excess alkali is neutralized with a solution of hydrochloric acid, the resulting solution is extracted with a mixture of organic solvents of chloroform-propanol-2, taken in a volume ratio 1: 1, the organic extract is separated by centrifugation, the extractant is evaporated to a dry residue, the residue is dissolved in the mobile phase and the amount of the analyte transferred to the extract is determined by HPLC by the area of the chromatographic peak (Dobrocky P., Bennet PN, Natarianny LJ Rapid method for the routine determination of caffeini and its metabolites by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. Biomed. AppL - 1994. - Vol.652, No. 1. - P.104-108).
Способ характеризуется недостаточно высокой степенью извлечения. Техническим результатом настоящего изобретения является повышение степени извлечения.The method is characterized by an insufficiently high degree of extraction. The technical result of the present invention is to increase the degree of extraction.
Технический результат достигается тем, что анализируемую пробу обрабатывают осаждающим белки реагентом, в качестве которого используется ацетон, извлечение отделяют от выпавшего осадка путем фильтрования, ацетон из фильтрата испаряют в токе воздуха при комнатной температуре, водный остаток разбавляют водой, образующийся раствор обрабатывают сульфатом аммония, экстрагируют 0,9 моль/дм3 раствором диметилфталата в смеси 1,4-диоксан-хлороформ, взятых в объемном отношении 1:1 при соотношении водной и органической фаз 5:1 по объему, органический экстрагент отделяют, а количество перешедшего в экстракт анализируемого соединения определяют по величине оптической плотности экстракта, разбавленного в 10 раз 1,4-диоксаном, проводя измерения при длине волны 279 нм.The technical result is achieved by the fact that the analyzed sample is treated with a protein-precipitating reagent, which uses acetone, the extraction is separated from the precipitate by filtration, the acetone from the filtrate is evaporated in an air stream at room temperature, the aqueous residue is diluted with water, the resulting solution is treated with ammonium sulfate, extracted 0.9 mol / dm 3 with a solution of dimethyl phthalate in a mixture of 1,4-dioxane-chloroform taken in a volume ratio of 1: 1 with a ratio of aqueous and organic phases of 5: 1 by volume, organically the th extractant is separated, and the amount of the analyzed compound transferred to the extract is determined by the optical density of the extract diluted 10 times with 1,4-dioxane, taking measurements at a wavelength of 279 nm.
Способ осуществляется следующим образом: плазму крови, содержащую азатиоприн, обрабатывают осаждающим белки реагентом, в качестве которого используется ацетон, извлечение отделяют от выпавшего осадка путем фильтрования, ацетон из фильтрата испаряют в токе воздуха при комнатной температуре, водный остаток разбавляют водой, образующийся раствор обрабатывают сульфатом аммония, экстрагируют 0,9 моль/дм3 раствором диметилфталата в смеси 1,4-диоксан-хлороформ, взятых в объемном отношении 1:1 при соотношении водной и органической фаз 5:1 по объему, органический экстрагент отделяют, а количество перешедшего в экстракт анализируемого соединения определяют по величине оптической плотности экстракта, разбавленного в 10 раз 1,4-диоксаном, проводя измерения при длине волны 279 нм.The method is as follows: the blood plasma containing azathioprine is treated with a protein-precipitating reagent, which uses acetone, the extraction is separated from the precipitate by filtration, the acetone from the filtrate is evaporated in a stream of air at room temperature, the aqueous residue is diluted with water, the resulting solution is treated with sulfate ammonia, extracted with 0.9 mol / dm 3 solution of dimethyl phthalate in a mixture of 1,4-dioxane, chloroform, taken in a volume ratio of 1: 1 with a ratio of the aqueous and organic phases is 5: 1 to obe y, the organic extractant is separated and passed into the extract amount of the analyte is determined by the magnitude of the optical density of the extract diluted 10 times with 1,4-dioxane, taking measurements at a wavelength of 279 nm.
Способ иллюстрируется следующими примерами.The method is illustrated by the following examples.
Пример 1Example 1
Извлечение азатиоприна из плазмы кровиRecovery of azathioprine from blood plasma
В 5 г плазмы крови человека вносят 1 мг азатиоприна в виде 0,5 см3 0,1% раствора, тщательно перемешивают биологическую жидкость с веществом. Полученную смесь обрабатывают 10 см3 осаждающего белки реагента, в качестве которого используют ацетон, и оставляют на 5 минут при перемешивании. По истечении указанного времени жидкое извлечение отделяют от выпавшего осадка путем фильтрования через бумажный фильтр. Фильтр и осадок на фильтре промывают 5 см3 ацетона. Порции фильтрата объединяют в выпарительной чашке и испаряют ацетон в токе воздуха при комнатной температуре. К водному остатку фильтрата добавляют 5 см воды, в образующийся раствор вводят сульфат аммония до получения насыщенного водно-солевого раствора, который экстрагируют 2 см3 0,9 моль/дм3 раствора диметилфталата в смеси 1,4-диоксан-хлороформ, взятых в объемном отношении 1:1, на вибросмесителе в течение 8 минут, после чего раствор оставляют на 3-5 минут для расслаивания системы, органический экстракт отделяет 0,2 см экстракта вносят в мерную колбу вместимостью 10 см, доводят до метки 1,4-диоксаном и измеряют оптическую плотность полученного раствора на спектрофотометре СФ-2000 при длине волны 279 нм в кюветах с толщиной рабочего слоя 10 мм. Измерения проводят на фоне раствора, полученного в контрольном опыте. По величине оптической плотности определяют количество азатиоприна, перешедшее в слой экстрагента, используя уравнение градуировочного графика. Рассчитывают степень извлечения азатиоприна как отношение количества вещества, перешедшего в слой экстрагента, в процентах к его количеству, внесенному в биологическую жидкость.In 5 g of human blood plasma, 1 mg of azathioprine is added in the form of 0.5 cm 3 of a 0.1% solution, the biological fluid is thoroughly mixed with the substance. The resulting mixture is treated with 10 cm 3 protein precipitating reagent, which is used as acetone, and left for 5 minutes with stirring. After the specified time, the liquid extraction is separated from the precipitate by filtration through a paper filter. The filter and filter cake are washed with 5 cm 3 of acetone. Portions of the filtrate are combined in an evaporation cup and acetone is evaporated in a stream of air at room temperature. 5 cm of water was added to the aqueous residue of the filtrate, ammonium sulfate was added to the resulting solution to obtain a saturated aqueous salt solution, which was extracted with 2 cm 3 of a 0.9 mol / dm 3 solution of dimethyl phthalate in a mixture of 1,4-dioxane-chloroform taken in volume 1: 1 ratio, on a vibratory mixer for 8 minutes, after which the solution is left for 3-5 minutes to exfoliate the system, the organic extract separates 0.2 cm of the extract and is introduced into a 10 cm volumetric flask, adjusted to the mark with 1,4-dioxane and measure the optical density of the resulting solution on spectrophotometer SF-2000 at a wavelength of 279 nm in cuvettes with a working layer thickness of 10 mm The measurements are carried out against the background of the solution obtained in the control experiment. The amount of azathioprine, transferred to the extractant layer, is determined by the optical density value using the equation of the calibration graph. The degree of extraction of azathioprine is calculated as the ratio of the amount of substance transferred to the extractant layer, as a percentage of its amount introduced into the biological fluid.
Построение градуировочного графикаBuilding a calibration graph
В ряд мерных колб вместимостью 10 мл вносят 0,1, 0,2, 0,4, 1,0, 1,6, 2,0 см3 0,01% раствора азатиоприна в хлороформе, по 0,2 см3 0,9 моль/дм3 раствора диметилфталата в смеси 1,4-диоксан-хлороформ, взятых в объемном отношении 1:1, и доводят 1,4-диоксаном до метки. Оптическую плотность образующихся растворов измеряют на спектрофотометре СФ-2000 при 279 нм в кюветах с толщиной рабочего слоя 10 мм. Измерения проводят на фоне раствора, полученного в контрольном опыте.In a series of volumetric flasks with a capacity of 10 ml add 0.1, 0.2, 0.4, 1.0, 1.6, 2.0 cm 3 of a 0.01% solution of azathioprine in chloroform, 0.2 cm 3 0, 9 mol / dm 3 of a solution of dimethyl phthalate in a mixture of 1,4-dioxane-chloroform, taken in a volume ratio of 1: 1, and adjusted with 1,4-dioxane to the mark. The optical density of the resulting solutions is measured on an SF-2000 spectrophotometer at 279 nm in cuvettes with a working layer thickness of 10 mm. The measurements are carried out against the background of the solution obtained in the control experiment.
По результатам измерения оптической плотности серии растворов с известными концентрациями азатиоприна строят график зависимости оптической плотности от концентрации определяемого вещества. График линеен в интервале концентраций 1,0 - 20,0 мкг/см3. Методом наименьших квадратов рассчитывают уравнение градуировочного графика, которое в данном случае имеет вид:According to the results of measuring the optical density of a series of solutions with known concentrations of azathioprine, a graph of the dependence of optical density on the concentration of the analyte is constructed. The graph is linear in the concentration range 1.0 - 20.0 μg / cm 3 . The least squares method calculates the equation of the calibration graph, which in this case has the form:
А=0,06285-С+0,00124,A = 0.06285-C + 0.00124,
где А - оптическая плотность; С - концентрация анализируемого вещества (мкг в 1 см3 фотометрируемого раствора).where A is the optical density; C is the concentration of the analyte (μg in 1 cm 3 photometric solution).
Результаты извлечения азатиоприна из плазмы крови представлены в таблице 1.The results of the extraction of azathioprine from blood plasma are presented in table 1.
Пример 2Example 2
Извлечение азатиоприна из мочиUrinary azathioprine recovery
В 5 г мочи человека вносят 1 мг азатиоприна в виде 0,5 см3 0,1% раствора, тщательно перемешивают биологическую жидкость с веществом. Полученную смесь обрабатывают 10 см осаждающего белки реагента, в качестве которого используют ацетон, и оставляют на 5 минут при перемешивании. По истечении указанного времени жидкое извлечение отделяют от выпавшего осадка путем фильтрования через бумажный фильтр. Фильтр и осадок на фильтре промывают 5 см3 ацетона. Порции фильтрата объединяют в выпарительной чашке и испаряют ацетон в токе воздуха при комнатой температуре. К водному остатку фильтрата добавляют 5 см3 воды, в образующийся раствор вводят сульфат аммония до получения насыщенного водно-солевого раствора, который экстрагируют 2 см3 0,9 моль/дм3 раствора диметилфталата в смеси 1,4-диоксан-хлороформ, взятых в объемном отношении 1:1, на вибросмесителе в течение 8 минут, после чего раствор оставляют на 3-5 минут для расслаивания системы, органический экстракт отделяют, 0,2 см3 экстракта вносят в мерную колбу вместимостью 10 см3, доводят до метки 1,4-диоксаном и измеряют оптическую плотность полученного раствора на спектрофотометре СФ-2000 при длине волны 279 нм в кюветах с толщиной рабочего слоя 10 мм. Измерения проводят на фоне раствора положенного в контрольном опыте. По величине оптической плотности определяют количество азатиоприна, перешедшее в слой экстрагента, используя уравнение градуировочного графика. Рассчитывают степень извлечения азатиоприна как отношение количества вещества, перешедшего в слой экстрагента, в процентах к его количеству, внесенному в биологическую жидкость.In 5 g of human urine, 1 mg of azathioprine is added in the form of 0.5 cm 3 of a 0.1% solution, the biological fluid is thoroughly mixed with the substance. The resulting mixture is treated with 10 cm of protein precipitating reagent, which is used as acetone, and left for 5 minutes with stirring. After the specified time, the liquid extraction is separated from the precipitate by filtration through a paper filter. The filter and filter cake are washed with 5 cm 3 of acetone. Portions of the filtrate are combined in an evaporation cup and acetone is evaporated in a stream of air at room temperature. 5 cm 3 of water are added to the aqueous residue of the filtrate, ammonium sulfate is introduced into the resulting solution to obtain a saturated aqueous salt solution, which is extracted with 2 cm 3 of a 0.9 mol / dm 3 solution of dimethyl phthalate in a mixture of 1,4-dioxane-chloroform taken in a volume ratio of 1: 1, on a vibratory mixer for 8 minutes, after which the solution is left for 3-5 minutes to exfoliate the system, the organic extract is separated, 0.2 cm 3 of the extract is introduced into a volumetric flask with a capacity of 10 cm 3 , adjusted to label 1, 4-dioxane and measure the optical density of the resulting solution and on an SF-2000 spectrophotometer at a wavelength of 279 nm in cuvettes with a working layer thickness of 10 mm. Measurements are carried out against the background of the solution laid in the control experiment. The amount of azathioprine, transferred to the extractant layer, is determined by the optical density value using the equation of the calibration graph. The degree of extraction of azathioprine is calculated as the ratio of the amount of substance transferred to the extractant layer, as a percentage of its amount introduced into the biological fluid.
Схема построения градуировочного графика для определения азатиоприна и уравнение этого графика представлены выше в примере 1.The scheme for constructing a calibration graph for determining azathioprine and the equation of this graph are presented above in Example 1.
Результаты извлечения азатиоприна из мочи представлены в таблице 2.The results of the extraction of azathioprine from urine are presented in table 2.
Предлагаемый способ по сравнению с прототипом на 7-8% повышает степень извлечения азатиоприна из биологических жидкостей.The proposed method in comparison with the prototype by 7-8% increases the degree of extraction of azathioprine from biological fluids.
Сравнительная характеристика предлагаемого и известного способов представлена в таблице 3.Comparative characteristics of the proposed and known methods are presented in table 3.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012124431/15A RU2495425C1 (en) | 2012-06-13 | 2012-06-13 | Method of extracting azathioprine from biological fluids |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012124431/15A RU2495425C1 (en) | 2012-06-13 | 2012-06-13 | Method of extracting azathioprine from biological fluids |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2495425C1 true RU2495425C1 (en) | 2013-10-10 |
Family
ID=49303102
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012124431/15A RU2495425C1 (en) | 2012-06-13 | 2012-06-13 | Method of extracting azathioprine from biological fluids |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2495425C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1113723A1 (en) * | 1983-06-29 | 1984-09-15 | Запорожский медицинский институт | 6-mercaptopurine quantitative determination method |
SU1686346A1 (en) * | 1989-12-04 | 1991-10-23 | Тюменский медицинский институт | Method for quantitative estimation of azathioprine |
WO2006090428A2 (en) * | 2005-02-28 | 2006-08-31 | Giuseppe Lazzarino | Method for the separation and simultaneous direct determination of compounds belonging to at least one of the groups chosen among purines and pyrimidines, n- acetylated amino acids, mono and dicarboxylic acids, sulphurylated compounds, nitrosylated compounds, bifunctional aldehydes, vitamins of group b, and derivatives ther |
-
2012
- 2012-06-13 RU RU2012124431/15A patent/RU2495425C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1113723A1 (en) * | 1983-06-29 | 1984-09-15 | Запорожский медицинский институт | 6-mercaptopurine quantitative determination method |
SU1686346A1 (en) * | 1989-12-04 | 1991-10-23 | Тюменский медицинский институт | Method for quantitative estimation of azathioprine |
WO2006090428A2 (en) * | 2005-02-28 | 2006-08-31 | Giuseppe Lazzarino | Method for the separation and simultaneous direct determination of compounds belonging to at least one of the groups chosen among purines and pyrimidines, n- acetylated amino acids, mono and dicarboxylic acids, sulphurylated compounds, nitrosylated compounds, bifunctional aldehydes, vitamins of group b, and derivatives ther |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
Коренман Я.И., Шорманов В.К., Мокшина Н.Я., Кривошеева О.А., Климанов Д.В. Экстракционное извлечение кофеина из плазмы крови / IV Международный интернет-симпозиум по сорбции и экстракции, 30.09.2011. * |
Кривошеева О.А., Коренман Я.И., Мокшина Н.Я.. Солохин С.А. Экстракционно-спектрофотометрическое определение азатиоприна в водных средах// Современные проблемы химической науки и образования. Том * |
Кривошеева О.А., Коренман Я.И., Мокшина Н.Я.. Солохин С.А. Экстракционно-спектрофотометрическое определение азатиоприна в водных средах// Современные проблемы химической науки и образования. Том II, 20.04.2012. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN108117544B (en) | Reversible sulfur dioxide/sulfite (hydrogen) salt fluorescent probe | |
Shirkhanloo et al. | Dispersive liquid-liquid microextraction based on task-specific ionic liquids for determination and speciation of chromium in human blood | |
CN115490674B (en) | Synthesis and application of fluorescent probe for selective detection of homocysteine | |
RU2495425C1 (en) | Method of extracting azathioprine from biological fluids | |
Kazi et al. | Determination of trace quantity of aluminium in dialysate concentrates using solid phase and cloud point extraction methods | |
CN109160916A (en) | A kind of fluorescence probe of quick identification benzenethiol | |
CN104198403B (en) | A kind of method of Fe3+ content in colorimetric determination water environment | |
RU2322674C1 (en) | Method of determining 2,6-bis[bis(beta-hydroxyethyl)amino]-4,8-di-n-pyperidino-pyrimido(5,4-d)pyrimidine in biological material | |
CN111505179A (en) | Method for detecting biopterin in marine water body | |
CN112083057B (en) | Astaxanthin detection method | |
CN103083379A (en) | Preparation method and application of snow chrysanthemum flavonoids | |
RU2425368C1 (en) | Method of biological material analysis for 1,1'-ethylene-2,2'-dipyridyliumdibromide | |
CN112526024A (en) | Method for detecting sulfonamide antibiotics and acetylated metabolites thereof in aquatic products | |
RU2426726C1 (en) | Method of detecting 2-dimethylamino-1,3-bis-(phenylsulphonylthio)propane in biological material | |
RU2537179C1 (en) | Method of determining procaine in blood plasma | |
RU2300765C1 (en) | Method for determination of n-(benzimidazolyl-2)-o-methylcarbamate in biological material | |
RU2430372C1 (en) | Method of determining 2,4-dinitrophenol and 2-amino-4-nitrophenol when both are present in biological fluids | |
RU2517127C1 (en) | Method of extracting novocaine from aqueous media with mixture of phenetole and ethyl acetate | |
CN109856269A (en) | The detection method of free sialic acid in a kind of milk powder | |
GB2498159A (en) | Isolation of phosphoproteins, glycoproteins and fragments thereof | |
RU2486511C2 (en) | Method of extracting theobromine from aqueous solutions | |
Mitić et al. | Quantitative determination of glycine in commercial dosage forms by kinetic spectrophotometry | |
RU2370763C1 (en) | Method of detecting ruthenium (iv) in presence of osmium (iv) | |
RU2415425C1 (en) | Method for biological material analysis for tetramethylthiuramsulphide | |
RU2324185C1 (en) | Method of quantitative determination of phthalic acid in blood serum |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140614 |