RU2412240C1 - Culture medium for growing legionella - Google Patents
Culture medium for growing legionella Download PDFInfo
- Publication number
- RU2412240C1 RU2412240C1 RU2009144595/10A RU2009144595A RU2412240C1 RU 2412240 C1 RU2412240 C1 RU 2412240C1 RU 2009144595/10 A RU2009144595/10 A RU 2009144595/10A RU 2009144595 A RU2009144595 A RU 2009144595A RU 2412240 C1 RU2412240 C1 RU 2412240C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- potassium phosphate
- substituted
- distilled water
- agar
- legionella
- Prior art date
Links
Landscapes
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, именно к получению питательных сред для выращивания легионелл.The invention relates to biotechnology, namely to obtain nutrient media for growing legionella.
Известна питательная среда для выращивания легионелл, основой которой является мясная вода до 1000,0 мл; пептон ферментативный 10,0 г; натрия хлорид 5,0 г; кровь 10, г; агар-агар 15,0-20,0 г рН 7,3±0,2. Среду автоклавируют 30 мин при температуре 121°С (М.С.Поляк; В.И.Сухаревич; М.Э.Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СП6. - 2008. - С.64-65.; С. - 269).Known nutrient medium for growing Legionella, the basis of which is meat water up to 1000.0 ml; peptone enzymatic 10.0 g; sodium chloride 5.0 g; blood 10 g; agar-agar 15.0-20.0 g pH 7.3 ± 0.2. The medium is autoclaved for 30 min at a temperature of 121 ° C (M.S. Polyak; V.I. Sukharevich; M.E. Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. St. Petersburg: ELBI-SP6. - 2008. - P.64 -65 .; S. - 269).
Недостатком данной среды является недостаточная эффективность.The disadvantage of this environment is the lack of effectiveness.
Наиболее близкой к предлагаемой питательной среде является среда, содержащая г/л: экстракт дрожжей 10,0 г; уголь активированный 2,0 г; ACES буфер (амино-2-оксиэтил-аминоэтан сульфоновая кислота) 10,0 г; а-кетоглуторат 1,0 г; L-цистеин 0,4 г; железа пирофосфат 0,25 г; агар-агар 15,0 г; дистиллированная вода до 1 л; рН 6,9±0,2. (М.С.Поляк; В.И.Сухаревич; М.Э.Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб. - 2008. - С.268-270).Closest to the proposed nutrient medium is a medium containing g / l: yeast extract 10.0 g; activated carbon 2.0 g; ACES buffer (amino-2-hydroxyethyl-aminoethane sulfonic acid) 10.0 g; a-ketoglutorate 1.0 g; L-cysteine 0.4 g; iron pyrophosphate 0.25 g; agar agar 15.0 g; distilled water up to 1 liter; pH 6.9 ± 0.2. (M.S. Polyak; V.I. Sukharevich; M.E. Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. St. Petersburg: ELBI-St. Petersburg. - 2008. - P.268-270).
Недостатком данной среды является дороговизна не производимого в РФ препарата.The disadvantage of this environment is the high cost of a drug not produced in the Russian Federation.
Целью настоящего изобретения является конструирование качественной питательной среды животного происхождения, которая обеспечивает ростовые свойства легионелл.The aim of the present invention is the construction of a high-quality nutrient medium of animal origin, which provides the growth properties of legionella.
Поставленная цель достигается тем, что питательная среда в качестве питательной основы содержит ферментативный гидролизат легкого свиньи; 0,01 М калий фосфатный буфер (состав калий фосфатного буфера: калий фосфорнокислый 1-замещенный; калий фосфорнокислый 2-замещенный - 3-водный), а также активированный уголь, L-цистеина гидрохлорид; дистиллированную воду, агар микробиологический с добавлением в среду эмбрионального стимулятора роста микроорганизмов при следующем соотношении ингредиентов, г/л:This goal is achieved in that the nutrient medium as a nutrient base contains an enzymatic hydrolyzate of pig lungs; 0.01 M potassium phosphate buffer (composition of potassium phosphate buffer: potassium phosphate 1-substituted; potassium phosphate 2-substituted - 3-aqueous), as well as activated carbon, L-cysteine hydrochloride; distilled water, microbiological agar with the addition of an embryonic growth stimulator of microorganisms to the medium in the following ratio of ingredients, g / l:
Легкое свиньи ТУ-8-5344-113607. Биологическая ценность легкого свиньи, относящейся к субпродуктам II категории, состоит в наличии в среднем 13,6% белка, минеральные вещества легкого, состоящего из солей натрия, калия, кальция, фосфора и высокого содержания железа; общее их количество достигает 1%, 0,5-1,4% золы. Легкое содержит также витамины, микроэлементы, экстрактивные вещества Из белковых веществ в легком свиньи при ферментативном гидролизе образуются следующие аминокислоты: лизин, метионин, триптофан, цистин, треонин, серин, фенилаланин, пролин, аланин, глицин, валин, лейцин, тирозин, гистидин (И.В.Петрухин. Корма и кормовые добавки. Москва. Росагропромиздат. 1989. С. - 104-108).Pig lung TU-8-5344-113607. The biological value of a pig’s lung belonging to category II offal consists in an average of 13.6% protein, minerals of the lung, consisting of sodium, potassium, calcium, phosphorus and high iron; their total amount reaches 1%, 0.5-1.4% of ash. The lung also contains vitamins, trace elements, extractive substances The following amino acids are formed from protein substances in a pig’s lung during enzymatic hydrolysis: lysine, methionine, tryptophan, cystine, threonine, serine, phenylalanine, proline, alanine, glycine, valine, leucine, tyrosine, histidine ( I.V. Petrukhin. Feed and feed additives. Moscow. Rosagropromizdat. 1989. S. - 104-108).
Питательная среда в качестве стимулятора роста содержит эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов («Способ получения эмбрионального стимулятора роста микроорганизмов» Патент РФ №2283347 - Опубл. 10.09.2006. - Бюл. №25).The nutrient medium as a growth promoter contains an embryonic growth stimulator of microorganisms ("Method for producing an embryonic growth stimulator of microorganisms" RF Patent No. 2283347 - Publish. 09/10/2006. - Bull. No. 25).
Способ получения эмбрионального стимулятора роста микроорганизмов заключается в следующем: проводят отбор свежих, неинфицированных куриных яиц, затем их инкубируют в течение 9 суток. Причем на 5, 6, 7 сутки куриные яйца облучают по 30 секунд при частоте модуляции 9 Гц и мощности излучения 9 мВт, затем куриные яйца охлаждают в течение 6-7 суток при температуре 2-4°С, проводят гомогенизацию, центрифугирование при 15000 об/мин, затем полученную массу фильтруют и подвергают тиндализации при температуре 60-65°С в течение 5-6 суток, фасуют и лиофилизируют.A method of obtaining an embryonic growth stimulator of microorganisms is as follows: they select fresh, uninfected chicken eggs, then they are incubated for 9 days. Moreover, on the 5th, 6th, 7th day, chicken eggs are irradiated for 30 seconds at a modulation frequency of 9 Hz and a radiation power of 9 mW, then the chicken eggs are cooled for 6-7 days at a temperature of 2-4 ° C, homogenization, centrifugation at 15,000 r / min, then the resulting mass is filtered and subjected to tindialization at a temperature of 60-65 ° C for 5-6 days, packaged and lyophilized.
Легионеллы являются факультативными внутриклеточными паразитами, поэтому растут в желточном мешке куриных эмбрионов, в культуре клеток животных и человека (фибробласты легкого) (Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: Учебник для студентов медицинских вузов /Под редакцией А.А.Воробьева. - 2-е изд., испр. и доп. - М.: OOO »Медицинское информационное агентство», 2008. - С.-400).Legionella are facultative intracellular parasites, therefore, they grow in the yolk sac of chicken embryos, in the culture of animal and human cells (lung fibroblasts) (Medical Microbiology, Virology and Immunology: Textbook for medical students / Edited by A.A. Vorobyov. - 2nd ed., rev. and add. - M .: OOO "Medical Information Agency", 2008. - S.-400).
Включение в состав среды калий фосфатного буфера 0,01 М (состав калий фосфатного буфера: калий фосфорнокислый 1-замещенный; калий фосфорнокислый 2-замещенный 3-водный) обосновано широким использованием фосфатов при приготовлении питательных сред, т.к. это единственные неорганические соединения, обладающие буферным действием в физиологически важном диапазоне рН, они малотоксичны (Методические рекомендации по изготовлению и использованию питательных сред и растворов для микробиологических целей, культивирования клеток и вирусов-М., 1989). (М.С.Поляк; В.И.Сухаревич; М.Э.Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб. - 2008. - С.37-38).The inclusion of 0.01 M potassium phosphate buffer in the medium (potassium phosphate buffer composition: 1-substituted potassium phosphate; 2-substituted 3-aqueous potassium phosphate) is justified by the widespread use of phosphates in the preparation of culture media, since these are the only inorganic compounds that have a buffering effect in a physiologically important pH range, they are low toxic (Guidelines for the manufacture and use of culture media and solutions for microbiological purposes, the cultivation of cells and viruses-M. 1989). (M.S. Polyak; V.I. Sukharevich; M.E. Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. St. Petersburg: ELBI-St. Petersburg. - 2008. - P.37-38).
При приготовлении питательной среды допускается применение только дистиллированной воды без применения растворов, содержащих ионы натрия, ввиду их губительного действия.When preparing a nutrient medium, it is allowed to use only distilled water without the use of solutions containing sodium ions, due to their destructive effect.
Сочетанное применение указанных компонентов обеспечивает получение чистых культур через 48 ч.The combined use of these components provides pure crops after 48 hours
В отличие от прототипа, предлагаемая среда экономична, выгодна и обеспечивает оптимальные условия для размножения легионелл за 2-е суток.Unlike the prototype, the proposed environment is economical, profitable and provides optimal conditions for the reproduction of legionella in 2 days.
Приготовление ферментативного гидролизатаPreparation of enzymatic hydrolyzate
Легкое свиньи в количестве 1 кг режут на кусочки размером 2×2 см, ссыпают в эмалированную кастрюлю, заливают водопроводной водой в количестве 1,5 л, варят в течение 10 мин, остужают до 46°С. Отвар сливают в 3 л стеклянный баллон. Остывшие кусочки легкого пропускают через мясорубку, затем помещают в баллон с отваром. Фермент панкреатин в количестве 9,5 г/л (или поджелудочную железу крупного рогатого скота, дважды пропущенную через мясорубку, в количестве 150 г/кг) помещают в баллон с фаршем легкого и отваром его. Доводят рН до 8,2±0,1 с помощью калия гидроокиси по фенолфталеину. В качестве консерванта добавляют хлороформ в количестве 1% к объему жидкости. Баллон закрывают ватно-марлевой пробкой, тщательно перемешивают и помещают в термокамеру при температуре 37±1°С. Содержимое баллона в течение суток перемешивают, через каждые 20±1 мин по 5 мин, а в последующие сутки через 1,5±0,2 ч по 5 мин. Динамику процесса гидролиза контролируют путем определения аминного азота. Об окончании гидролиза судят по достижению аминного азота 0,5%-0,6% (через 5 суток). После этого подогрев и перемешивание прекращают, гидролизат отстаивают. Отстоявшийся верхний слой гидролизата декантируют с помощью резинового шланга и фильтруют через полотняный фильтр. Сбор фильтрата ведут в стеклянный баллон емкостью 3 л, для консервации добавляют хлороформ в количестве 1% к объему содержимого баллона, закрывают резиновой пробкой и транспортируют в холодовую камеру, где хранят при температуре от +2 до +8°С.The pig’s lung in the amount of 1 kg is cut into pieces 2 × 2 cm in size, poured into an enameled pan, poured with tap water in an amount of 1.5 l, boiled for 10 minutes, cooled to 46 ° C. The broth is poured into a 3 liter glass bottle. The cooled pieces of the lung are passed through a meat grinder, then placed in a container with a decoction. The enzyme pancreatin in an amount of 9.5 g / l (or the pancreas of cattle, twice passed through a meat grinder, in an amount of 150 g / kg) is placed in a balloon with minced lung and a decoction of it. The pH was adjusted to 8.2 ± 0.1 with potassium hydroxide according to phenolphthalein. Chloroform is added as a preservative in an amount of 1% to the volume of liquid. The cylinder is closed with a cotton-gauze stopper, mixed thoroughly and placed in a heat chamber at a temperature of 37 ± 1 ° C. The contents of the balloon are stirred during the day, every 20 ± 1 minutes for 5 minutes, and the next day after 1.5 ± 0.2 hours for 5 minutes. The dynamics of the hydrolysis process is controlled by determining amine nitrogen. The end of hydrolysis is judged by the achievement of amino nitrogen of 0.5% -0.6% (after 5 days). After that, heating and stirring are stopped, the hydrolyzate is defended. The settled upper layer of the hydrolyzate is decanted with a rubber hose and filtered through a linen filter. The filtrate is collected in a glass container with a capacity of 3 l, chloroform is added in an amount of 1% to the volume of the contents of the container for preservation, closed with a rubber stopper and transported to a cold chamber, where it is stored at a temperature of +2 to + 8 ° С.
Питательную среду на ферментативной основе легкого свиньи для выращивания легионелл готовят следующим способом. Берут ферментативный гидролизат из легкого свиньи, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,12% 260,0 мл; калий фосфорнокислый 1-замещенный 0,9; калий фосфорнокислый 2-замещенный 3-водный 2,2; активированный уголь 2,0; агар микробиологический 8,5; дистиллированную воду до 1 л. Смесь доводят до кипения и кипятят до полного расплавления агара в течение 2 мин, рН корректируют раствором соляной кислоты (1:1) до 6,8±0,1 в количестве 5 мл. Приготовленную питательную среду разливают в градуированные флаконы по 200±0,5 мл, которые герметично укупоривают ватно-марлевыми пробками и бумагой Крафт. Стерилизуют при 1 атм. в течение 15 мин. После расплавления в кипящей водяной бане в остуженный до 56°С агар добавляют 0,4 г L-цистеина гидрохлорид и 2,5 мл эмбрионального стимулятора роста микроорганизмов, затем разливают в стерильные чашки Петри. Просушивают в течение 30 минут и используют для посева.An enzymatic medium on the basis of light pigs for growing legionella is prepared in the following way. Take the enzymatic hydrolyzate from the lungs of a pig diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.12% 260.0 ml; potassium phosphate 1-substituted 0.9; potassium phosphate 2-substituted 3-aqueous 2.2; activated carbon 2.0; microbiological agar 8.5; distilled water up to 1 liter. The mixture is brought to a boil and boiled until the agar is completely melted for 2 min, the pH is adjusted with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to 6.8 ± 0.1 in an amount of 5 ml. The prepared nutrient medium is poured into graduated bottles of 200 ± 0.5 ml, which are hermetically sealed with cotton gauze plugs and Kraft paper. Sterilized at 1 atm. within 15 minutes After melting in a boiling water bath, 0.4 g of L-cysteine hydrochloride and 2.5 ml of embryonic growth stimulator of microorganisms are added to the agar cooled to 56 ° C, then it is poured into sterile Petri dishes. Dry for 30 minutes and use for sowing.
Эффективность полученной питательной среды оценивали в соответствии с методическими указаниями «Контроль диагностических питательных сред по биологическим показателям для чумы, холеры, сибирской язвы, туляремии, бруцеллеза, легиоиеллеза», (Москва, 2006), с использованием в качестве тест-культур легионелл Legionella pneumophilla АТСС 33155 Bloomington, Legionella pneumophilla ATCC 33152 Philadelphia.The effectiveness of the obtained nutrient medium was evaluated in accordance with the guidelines “Control of diagnostic nutrient media according to biological indicators for plague, cholera, anthrax, tularemia, brucellosis, legioellosis”, (Moscow, 2006), using Legionella pneumophilla ATCC as test cultures 33155 Bloomington, Legionella pneumophilla ATCC 33152 Philadelphia.
Испытуемые культуры выращивали на пластинках плотного агара рН 6,8 при температуре 37°С 24 ч. Из суточных культур готовили 1 млрд. взвесь м.т. тест-штаммов, равной 10 ед. по оптическому стандарту мутности ОСО ГИСК им. Л.А.Тарасовича, затем серийными десятикратными разведениями в физиологическом растворе в объеме 4,5 мл доводили до содержания в 1 мл 10-7 100 м.к. Из данных разведений взвесей культур высевали по 0,1 мл на 3 чашки Петри разлитого подсушенного агара. Посевы инкубировали при 37°С в течение 5 суток при ежедневном просмотре. Через 24-120 ч учитывали результаты путем подсчетов выросших колоний.The test cultures were grown on solid agar plates with a pH of 6.8 at 37 ° C for 24 hours. From the daily cultures, 1 billion bw was prepared. test strains equal to 10 units according to the optical turbidity standard OSO GISK im. L.A.Tarasovicha then serial tenfold dilutions in saline in a volume of 4.5 ml was adjusted to a content of 1 ml 10 7100 MK From these dilutions of culture suspensions, 0.1 ml were sown in 3 Petri dishes of spilled dried agar. Crops were incubated at 37 ° C for 5 days with daily viewing. After 24-120 hours, the results were taken into account by counting the grown colonies.
Пример 1. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из легкого свиньи, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,100% 240,0 мл; калий фосфорнокислый 1-замещенный 0,7; калий фосфорнокислый 2-замещенный - 3-водный 2,0; активированный уголь 1,0; L-цистеина гидрохлорид 0,2; эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов 0,5; агар микробиологический 6,5; дистиллированную воду до 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект был меньше, чем 50% плоско-выпуклых, синевато-сероватых колоний диаметром 1,-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалось.Example 1. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from light pigs diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.100% 240.0 ml; potassium phosphate 1-substituted 0.7; potassium phosphate 2-substituted-3-aqueous 2.0; activated carbon 1.0; L-cysteine hydrochloride 0.2; embryonic microorganism growth stimulator 0.5; microbiological agar 6.5; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect was less than 50% of flat-convex, bluish-grayish colonies with a diameter of 1, -2.0 mm after 48 hours, whereas on the SEL control medium growth was observed only after 72 hours, on the Hottinger agar there was no growth observed.
Пример 2. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из легкого свиньи, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,12% - 260,0 мл; калий фосфорнокислый 1-замещенный 0,9; калий фосфорнокислый 2-замещенный - 3-водный 2,2; активированный уголь 2,0; L-цистеина гидрохлорид 0,4; эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов 2,5; агар микробиологический 8,5; дистиллированную воду до 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект превышает 50% плоско-выпуклых, синевато-сероватых колоний диаметром 1,-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалось.Example 2. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from light pigs diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.12% - 260.0 ml; potassium phosphate 1-substituted 0.9; potassium phosphate 2-substituted - 3-aqueous 2.2; activated carbon 2.0; L-cysteine hydrochloride 0.4; embryonic growth stimulator of microorganisms 2.5; microbiological agar 8.5; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect exceeds 50% of plano-convex, bluish-grayish colonies with a diameter of 1, -2.0 mm after 48 h, while on the SEL control medium growth was observed only after 72 h, no growth was observed on the Hottinger agar.
Пример 3. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из легкого свиньи, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,14% - 280,0 мл; калий фосфорнокислый 1-замещенный 1,1; калий фосфорнокислый 2-замещенный - 3-водный 2,4; активированный уголь 3,0; L-цистеина гидрохлорид 0,6; эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов 4,0; агар микробиологический 10,5; дистиллированную воду до 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект наблюдался менее 50% плоско-выпуклых, синевато-сероватых колоний диаметром 1,-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалось.Example 3. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from light pigs diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.14% - 280.0 ml; potassium phosphate 1-substituted 1,1; potassium phosphate 2-substituted - 3-aqueous 2,4; activated carbon 3.0; L-cysteine hydrochloride 0.6; embryonic microorganism growth stimulator 4.0; microbiological agar 10.5; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect was observed in less than 50% of plano-convex, bluish-grayish colonies with a diameter of 1, -2.0 mm after 48 h, while on the SEL control medium growth was observed only after 72 h, no growth was observed on the Hottinger agar.
Полученные результаты позволили определить оптимальный вариант питательной среды на ферментативной основе легкого свиньи (пример 2).The results obtained allowed us to determine the optimal variant of the nutrient medium on the enzymatic basis of a light pig (example 2).
Предлагаемая среда качественная, в основу берется ферментативный гидролизат легкого свиньи, а в качестве стимулятора эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов.The proposed environment is of high quality, based on an enzymatic hydrolyzate of the lung of a pig, and as a stimulator, an embryonic stimulator of the growth of microorganisms.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009144595/10A RU2412240C1 (en) | 2009-12-01 | 2009-12-01 | Culture medium for growing legionella |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009144595/10A RU2412240C1 (en) | 2009-12-01 | 2009-12-01 | Culture medium for growing legionella |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2412240C1 true RU2412240C1 (en) | 2011-02-20 |
Family
ID=46310064
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009144595/10A RU2412240C1 (en) | 2009-12-01 | 2009-12-01 | Culture medium for growing legionella |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2412240C1 (en) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2460774C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for legionella cultivation |
RU2460768C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium for legionella cultivation |
RU2460775C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Enriched nutrient medium for legionella cultivation |
RU2510828C1 (en) * | 2013-01-09 | 2014-04-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for growing legionella |
RU2528101C2 (en) * | 2012-11-12 | 2014-09-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for legionella culture |
-
2009
- 2009-12-01 RU RU2009144595/10A patent/RU2412240C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ПОЛЯК М.С., СУХАРЕВИЧ В.И., СУХАРЕВИЧ М.Э. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. - ЭЛБИ-СПб, 2008, с.269-270. * |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2460774C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for legionella cultivation |
RU2460768C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium for legionella cultivation |
RU2460775C1 (en) * | 2011-07-04 | 2012-09-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Enriched nutrient medium for legionella cultivation |
RU2528101C2 (en) * | 2012-11-12 | 2014-09-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for legionella culture |
RU2510828C1 (en) * | 2013-01-09 | 2014-04-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient medium for growing legionella |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
RU2415923C1 (en) | Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon | |
RU2460774C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2425871C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2460768C1 (en) | Solid nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2394905C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of plague microbe | |
RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
RU2415922C1 (en) | Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation | |
RU2528101C2 (en) | Nutrient medium for legionella culture | |
RU2510828C1 (en) | Nutrient medium for growing legionella | |
RU2728379C1 (en) | Nutrient medium dense for brucella cultivation | |
CN108850640A (en) | Express application of the Pichia pastoris fermented product of human lysozyme in broiler chicken feed additive | |
RU2245362C2 (en) | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain | |
RU2525637C2 (en) | Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent | |
RU2348686C2 (en) | Nutrient medium for microorganism cultivation | |
RU2644248C2 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe | |
RU2410424C1 (en) | Culture medium for growing microorganism | |
RU2460775C1 (en) | Enriched nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
RU2756601C1 (en) | Enriched solid nutrient medium for cultivating brucella biomass | |
RU2534355C1 (en) | Method of production of hydrolyzate from fruit and skin of bananas as growth stimulator for cultivation of leptospira | |
RU2748492C1 (en) | Dense nutrient medium for monitoring the number of live microbial cells of the vaccine strain of the plague microbe y.pestis ev |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20111202 |