RU2203089C2 - Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis - Google Patents
Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2203089C2 RU2203089C2 RU2001117483/13A RU2001117483A RU2203089C2 RU 2203089 C2 RU2203089 C2 RU 2203089C2 RU 2001117483/13 A RU2001117483/13 A RU 2001117483/13A RU 2001117483 A RU2001117483 A RU 2001117483A RU 2203089 C2 RU2203089 C2 RU 2203089C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- culture medium
- vaccine
- purification
- protamine sulfate
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано при получении культуральных вакцин клещевого энцефалита (КЭ). The invention relates to microbiology and can be used to obtain tick-borne encephalitis (CE) culture vaccines.
Вакцина клещевого энцефалита может быть изготовлена на основе культуральных вирусных сборов, для получения которых используют первичные или перевиваемые клеточные культуры. Tick-borne encephalitis vaccine can be made on the basis of viral culture cultures, for which primary or transplantable cell cultures are used.
Согласно требованиям ВОЗ в вакцинах на основе перевиваемых клеточных культур жестко лимитируется содержание остаточной ДНК: оно не должно превышать 10 нг на 1 дозу вакцины для исключения потенциальной возможности ее онкогенного и трансформирующего действия. According to WHO requirements, vaccines based on transplantable cell cultures strictly limit the residual DNA content: it should not exceed 10 ng per 1 dose of the vaccine to exclude the potential for its oncogenic and transforming effects.
Содержание гетерологичных белков в вакцине регламентируется Национальным Органом Контроля страны-производителя. При получении вакцины клещевого энцефалита с использованием первичной культуры клеток куриных эмбрионов существуют ограничения по содержанию в конечном продукте таких гетерологичных белков, как белки сыворотки крови крупного рогатого скота и белки куриного эмбриона. Согласно требованиям Национального Органа Контроля медицинских иммунобиологических препаратов - Государственного института стандартизации и контроля им. Л. А.Тарасевича (ГИСК им Л.А.Тарасевича) содержание гетерологичных белков в вакцине клещевого энцефалита должно быть не более 1 мкг/дозу. The content of heterologous proteins in the vaccine is regulated by the National Control Authority of the country of origin. When obtaining a tick-borne encephalitis vaccine using a primary chicken embryo cell culture, there are restrictions on the content of heterologous proteins such as cattle serum proteins and chicken embryo proteins in the final product. According to the requirements of the National Body for the Control of Medical Immunobiological Preparations - State Institute of Standardization and Control named after L. A. Tarasevich (GISK named after L. A. Tarasevich), the content of heterologous proteins in the tick-borne encephalitis vaccine should be no more than 1 μg / dose.
Известен способ получения культуральных вакцин КЭ, предусматривающий заражение вирусом культуры клеток с последующей репродукцией и выходом вируса в культуральную среду, его инактивированием, выделением, очисткой и сорбцией на адъюванте (пат. SU 1003738, кл. А 61 К 39/12, 22.12.78). A known method of obtaining culture vaccines CE, providing for virus infection of cell culture with subsequent reproduction and release of the virus into the culture medium, its inactivation, isolation, purification and sorption on adjuvant (US Pat. SU 1003738, class A 61 K 39/12, 22.12.78 )
Использование этого способа получения вирусной суспензии как в суспензионной, так и в монослойной культуре клеток куриных эмбрионов связано с достаточно высоким накоплением в ней белков куриного эмбриона. The use of this method of producing a viral suspension both in suspension and in a monolayer culture of chicken embryo cells is associated with a fairly high accumulation of chicken embryo proteins in it.
Задачей предлагаемого способа является получение высокоиммуногенной очищенной вакцины клещевого энцефалита, снижение количества белков куриного эмбриона в вакцине клещевого энцефалита, полученной известным методом на культуре клеток куриных эмбрионов. The objective of the proposed method is to obtain a highly immunogenic purified vaccine of tick-borne encephalitis, a decrease in the number of chicken embryo proteins in a tick-borne encephalitis vaccine obtained by a known method on a cell culture of chicken embryos.
Поставленная задача достигается тем, что заявляемый способ предусматривает заражение вирусом КЭ культуры клеток с последующей репродукцией и выходом вируса в культуральную среду, его инактивированием, очисткой и сорбцией на адъюванте. На стадии репродукции в культуральную среду добавляют куриный экстракт, добавление протаминсульфата осуществляют в неосветленную инактивированную культуральную среду, концентрирование инактивированного вируса осуществляют ультрафильтрацией после осветления культуральной среды проточным центрифугированием и фильтрацией, очистку концентрированного вируса проводят хроматографией на диолмодифицированном сорбенте. Куриный экстракт используют с конечной концентрацией в среде от 0,5 мкг/мл до 1 мкг/мл. Протаминсульфат добавляют в неосветленную культуральную среду до конечной концентрации от 50 до 100 мкг/мл. Осветление культуральной вируссодержащей среды центрифугированием проводят после добавления в среду формальдегида и протаминсульфата. Осветление проводят на проточной центрифуге с ускорением от 12000 до 15000 g с последующей фильтрацией через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом полуфабрикат концентрируют в 30-50 раз ультрафильтрацией на синтетических фильтрах или трековых мембранах с диаметром пор от 40 до 60 нм. Далее концентрат очищают гель-хроматографией на колонке с макропористым кремнеземом. Кремнезем используют с порами диаметром от 50 до 100 мкм. This object is achieved in that the claimed method involves infection of the CE virus with cell culture, followed by reproduction and release of the virus into the culture medium, its inactivation, purification and sorption on the adjuvant. At the stage of reproduction, chicken extract is added to the culture medium, protamine sulfate is added to the unclarified inactivated culture medium, the inactivated virus is concentrated by ultrafiltration after clarification of the culture medium by flow centrifugation and filtration, and the concentrated virus is purified by chromatography on a di-modified sorbent. Chicken extract is used with a final concentration in the medium from 0.5 μg / ml to 1 μg / ml. Protamine sulfate is added to the non-clarified culture medium to a final concentration of 50 to 100 μg / ml. Clarification of the culture virus-containing medium by centrifugation is carried out after adding formaldehyde and protamine sulfate to the medium. Clarification is carried out in a flow centrifuge with an acceleration from 12000 to 15000 g, followed by filtration through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. Thus obtained semi-finished product is concentrated 30-50 times by ultrafiltration on synthetic filters or track membranes with pore diameters from 40 to 60 nm. Next, the concentrate is purified by gel chromatography on a column of macroporous silica. Silica is used with pores with a diameter of 50 to 100 microns.
Предложенный способ осуществляют следующим образом. The proposed method is as follows.
Вирусный сбор (вирусную суспензию) получают путем репродукции вируса в суспензионной первичной культуре клеток куриных эмбрионов. Для увеличения репродукции добавляют куриный экстракт. Культивирование проводят в бутылях объемом 6,0 л в течение 4-х суток при температуре 36-37oС при непрерывном перемешивании на роллерной установке со скоростью вращения 8-10 об/мин. Затем вирусную суспензию инактивируют формальдегидом в конечной концентрации 200 ± 20 мкг/мл в течение 3-х суток при температуре (32±1)oС. Концентрацию инфекционного вируса в вирусной суспензии контролируют до инактивации, а инактивированную вирусную суспензию контролируют на отсутствие вирусной активности. Перед объединением культуральную среду, содержащую клеточный дебрис, вирусную взвесь и клетки с вирусом, обрабатывают протаминсульфатом, затем вирусный сбор центрифугируют, объединяя в общую емкость, и фильтруют для освобождения от клеточного субстрата. Операцию производят следующим образом: в инактивированную вирусную суспензию добавляют 4%-ный раствор протаминсульфата до конечной концентрации 50-100 мкг/мл. Оставляют для взаимодействия при температуре (6±2)oС на 0,5-12 часов. Далее преципитат удаляют последовательным центрифугированием полуфабриката из отдельных емкостей на проточной центрифуге ОТР-101К-01 при ускорении ~13000g с последующей фильтрацией объединенного полуфабриката через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом объединенный полуфабрикат концентрируют в 30-50 раз ультрафильтрацией на синтетических или асимметричных трековых мембранах. Концентрат дополнительно очищают хроматографией на колонке с модифицированным пористым кремнеземом. Тип сорбента - диол кремнезем или кремнезем, модифицированный поливинилпирролидоном. В собираемой хроматографической фракции контролируют антигенную активность вируса клещевого энцефалита, количество общего белка и белков куриного эмбриона. Затем полученный очищенный концентрат фильтруют через фильтр с размером пор 0,22 мкм, разводят в соответствии с его антигенной активностью и используют для приготовления сорбированной вакцины.Viral collection (viral suspension) is obtained by reproduction of the virus in a suspension primary culture of chicken embryonic cells. Chicken extract is added to increase reproduction. Cultivation is carried out in 6.0 liter bottles for 4 days at a temperature of 36-37 o With continuous stirring on a roller unit with a rotation speed of 8-10 rpm. Then the virus suspension is inactivated with formaldehyde at a final concentration of 200 ± 20 μg / ml for 3 days at a temperature of (32 ± 1) o C. The concentration of the infectious virus in the viral suspension is monitored before inactivation, and the inactivated virus suspension is monitored for the absence of viral activity. Before combining, the culture medium containing cell debris, virus suspension and cells with the virus is treated with protamine sulfate, then the viral collection is centrifuged, combining in a common container, and filtered to release from the cellular substrate. The operation is performed as follows: a 4% solution of protamine sulfate is added to an inactivated viral suspension to a final concentration of 50-100 μg / ml. Leave for interaction at a temperature of (6 ± 2) o C for 0.5-12 hours. Next, the precipitate is removed by sequential centrifugation of the semi-finished product from individual containers on an OTR-101K-01 flowing centrifuge at an acceleration of ~ 13000g, followed by filtration of the combined semi-finished product through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. Thus obtained, the combined semi-finished product is concentrated 30-50 times by ultrafiltration on synthetic or asymmetric track membranes. The concentrate is further purified by chromatography on a column of modified porous silica. The type of sorbent is diol silica or silica modified with polyvinylpyrrolidone. In the collected chromatographic fraction, the antigenic activity of tick-borne encephalitis virus, the amount of total protein and proteins of the chicken embryo are controlled. Then the obtained purified concentrate is filtered through a filter with a pore size of 0.22 μm, diluted in accordance with its antigenic activity and used to prepare a sorbed vaccine.
Пример 1. Example 1
Вирусную суспензию получают путем репродукции вируса (штамм ВКЭ 205) в суспензионной первичной культуре клеток куриных эмбрионов. Для увеличения репродукции добавляют куриный эмбриональный экстракт в конечной концентрации 1 мкг/мл. Культивирование вируса проводят в бутылях объемом 6,0 л в течение 4-х суток при температуре (37±1)oC при непрерывном перемешивании на роллерной установке со скоростью вращения 8-10 об/мин. Затем вирусную суспензию инактивируют формальдегидом в конечной концентрации 200±20 мкг/мл в течение 3-х суток при температуре (32±1)oC. Концентрацию инфекционного вируса в вирусной суспензии контролируют до инактивации, а количество белков куриного эмбриона в полуфабрикате после инактивации. Далее следует стадия освобождения от клеточного субстрата и объединение полуфабриката. Операцию выполняют следующим образом: в бутыли с инактивированной культуральной средой, содержащей клеточный дебрис, вирусную взвесь и клетки с вирусом, добавляют протаминсульфат до конечной концентрации 50 мкг/мл. Оставляют для взаимодействия при температуре (6+2)oС на 30-40 мин. Затем клеточный детрит и образовавшийся преципитат удаляют центрифугированием на проточной центрифуге ОТР-101К-01 при ускорении 13200 g. Сбор поступающего с центрифуги полуфабриката производят в общую емкость, затем его фильтруют через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом объединенный полуфабрикат концентрируют в 30 раз ультрафильтрацией на синтетических фильтрах. Далее концентрат очищают гель-хроматографией на колонке с пористым кремнеземом. Тип сорбента - диол кремнезем. В собираемой хроматографической фракции контролируют антигенную активность вируса клещевого энцефалита и количество белков куриного эмбриона. Затем полученный очищенный концентрат разводят равным количеством буферного раствора, фильтруют через фильтр с размером пор 0,22 мкм и используют для приготовления сорбированной вакцины. Определение концентрации белков куриного эмбриона проводят методом встречного иммуноэлектрофореза.A viral suspension is obtained by reproduction of the virus (strain TBEV 205) in a suspension primary culture of chicken embryo cells. To increase reproduction, chicken embryonic extract is added at a final concentration of 1 μg / ml. The cultivation of the virus is carried out in 6.0 liter bottles for 4 days at a temperature of (37 ± 1) o C with continuous stirring on a roller unit with a rotation speed of 8-10 rpm. Then the viral suspension is inactivated with formaldehyde at a final concentration of 200 ± 20 μg / ml for 3 days at a temperature of (32 ± 1) o C. The concentration of the infectious virus in the viral suspension is controlled before inactivation, and the amount of chicken embryo proteins in the semi-finished product after inactivation. This is followed by the stage of release from the cellular substrate and the union of the semi-finished product. The operation is performed as follows: in a bottle with an inactivated culture medium containing cell debris, a virus suspension and cells with a virus, protamine sulfate is added to a final concentration of 50 μg / ml. Leave for interaction at a temperature of (6 + 2) o C for 30-40 minutes Then, cell detritus and the precipitate formed are removed by centrifugation on an OTP-101K-01 flowing centrifuge with an acceleration of 13,200 g. Collection of the semi-finished product coming from the centrifuge is carried out in a common container, then it is filtered through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. The combined semi-finished product thus obtained is concentrated 30 times by ultrafiltration on synthetic filters. Next, the concentrate is purified by gel chromatography on a column of porous silica. The type of sorbent is diol silica. In the collected chromatographic fraction, the antigenic activity of tick-borne encephalitis virus and the amount of chicken embryo proteins are controlled. Then, the obtained purified concentrate is diluted with an equal amount of buffer solution, filtered through a filter with a pore size of 0.22 μm and used to prepare a sorbed vaccine. Determination of protein concentration of the chicken embryo is carried out by the method of counter immunoelectrophoresis.
Пример 2. Example 2
Вирусную суспензию получают путем репродукции вируса (штамм ВКЭ 205) в суспензионной первичной культуре клеток куриных эмбрионов. Для увеличения репродукции добавляют куриный эмбриональный экстракт в конечной концентрации 1 мкг/мл. Культивирование вируса проводят в бутылях объемом 6,0 л в течение 4-х суток при температуре (37±1)oС при непрерывном перемешивании на роллерной установке со скоростью вращения 8-10 об/мин. Затем вирусную суспензию инактивируют формальдегидом в конечной концентрации 200±20 мкг/мл в течение 3-х суток при температуре (32±1)oС. Концентрацию инфекционного вируса в вирусной суспензии контролируют до инактивации, а количество белков куриного эмбриона в полуфабрикате после инактивации. Далее следует стадия освобождения от клеточного субстрата и объединение полуфабриката. Операцию выполняют следующим образом: в бутыли с инактивированной культуральной средой, содержащей клеточный дебрис, добавляют протаминсульфат до конечной концентрации 100 мкг/мл. Оставляют для взаимодействия при температуре (6+2)oС на 12 час. Затем клеточный детрит и образовавшийся преципитат удаляют центрифугированием на проточной центрифуге ОТР-101К-01 при ускорении 15000 g. Сбор поступающего с центрифуги полуфабриката производят в общую емкость, затем его фильтруют через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом объединенный полуфабрикат концентрируют в 50 раз ультрафильтрацией на асимметричных трековых мембранах. Далее концентрат очищают гель-хроматографией на колонке с модифицированным пористым кремнеземом. Тип сорбента - диасорб-750-диол. В собираемой хроматографической фракции контролируют антигенную активность вируса клещевого энцефалита и количество белков куриного эмбриона. Затем полученный очищенный концентрат разводят соответствующим количеством буферного раствора, фильтруют через фильтр с размером пор 0,22 мкм и используют для приготовления сорбированной вакцины. Определение концентрации белков куриного эмбриона проводят методом встречного иммуноэлектрофореза.A viral suspension is obtained by reproduction of the virus (strain TBEV 205) in a suspension primary culture of chicken embryo cells. To increase reproduction, chicken embryonic extract is added at a final concentration of 1 μg / ml. The cultivation of the virus is carried out in 6.0 liter bottles for 4 days at a temperature of (37 ± 1) o C with continuous stirring on a roller unit with a rotation speed of 8-10 rpm. Then the viral suspension is inactivated with formaldehyde at a final concentration of 200 ± 20 μg / ml for 3 days at a temperature of (32 ± 1) o C. The concentration of the infectious virus in the viral suspension is controlled before inactivation, and the amount of chicken embryo proteins in the semi-finished product after inactivation. This is followed by the stage of release from the cellular substrate and the union of the semi-finished product. The operation is performed as follows: in a bottle with an inactivated culture medium containing cell debris, protamine sulfate is added to a final concentration of 100 μg / ml. Leave for interaction at a temperature of (6 + 2) o C for 12 hours. Then, cell detritus and the precipitate formed are removed by centrifugation on an OTP-101K-01 flow-through centrifuge at an acceleration of 15,000 g. Collection of the semi-finished product coming from the centrifuge is carried out in a common container, then it is filtered through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. The combined semifinished product thus obtained was concentrated 50 times by ultrafiltration on asymmetric track membranes. The concentrate is then purified by gel chromatography on a column of modified porous silica. The type of sorbent is diasorb-750-diol. In the collected chromatographic fraction, the antigenic activity of tick-borne encephalitis virus and the amount of chicken embryo proteins are controlled. Then, the obtained purified concentrate is diluted with an appropriate amount of a buffer solution, filtered through a filter with a pore size of 0.22 μm and used to prepare a sorbed vaccine. Determination of protein concentration of the chicken embryo is carried out by the method of counter immunoelectrophoresis.
Пример 3. Example 3
Вирусную суспензию получают путем репродукции вируса (штамм ВКЭ 205) в суспензионной первичной культуре клеток куриных эмбрионов. Для увеличения репродукции добавляют куриный эмбриональный экстракт в конечной концентрации 1 мкг/мл. Культивирование вируса проводят в бутылях объемом 6,0 л в течение 4-х суток при температуре (37±1)oС при непрерывном перемешивании на роллерной установке со скоростью вращения 8-10 об/мин. Затем вирусную суспензию инактивируют формальдегидом в конечной концентрации 200±20 мкг/мл в течение 3-х суток при температуре (32±1)oС. Концентрацию инфекционного вируса в вирусной суспензии контролируют до инактивации, а количество белков куриного эмбриона в полуфабрикате после инактивации. Далее следует стадия освобождения от клеточного субстрата и объединение полуфабриката. Операцию выполняют следующим образом: в бутыли с инактивированной культуральной средой, содержащей клеточный дебрис, вирусную взвесь и клетки с вирусом, добавляют протаминсульфат до конечной концентрации 75 мкг/мл. Оставляют для взаимодействия при температуре (6+2)oС на 1 час. Затем клеточный детрит и образовавшийся преципитат удаляют центрифугированием на проточной центрифуге ОТР-101К-01 при ускорении 13200 g. Сбор поступающего с центрифуги полуфабриката производят в общую емкость, затем его фильтруют через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом объединенный полуфабрикат концентрируют в 40 раз ультрафильтрацией на синтетических фильтрах. Далее концентрат очищают гель-хроматографией на колонке с пористым кремнеземом. Тип сорбента - диасорб-1000-диол. В собираемой хроматографической фракции контролируют антигенную активность вируса клещевого энцефалита и количество белков куриного эмбриона. Затем полученный очищенный концентрат разводят соответствующим количеством буферного раствора, фильтруют через фильтр с размером пор 0,22 мкм и используют для приготовления сорбированной вакцины. Определение концентрации белков куриного эмбриона проводят методом встречного иммуноэлектрофореза.A viral suspension is obtained by reproduction of the virus (strain TBEV 205) in a suspension primary culture of chicken embryo cells. To increase reproduction, chicken embryonic extract is added at a final concentration of 1 μg / ml. The cultivation of the virus is carried out in 6.0 liter bottles for 4 days at a temperature of (37 ± 1) o C with continuous stirring on a roller unit with a rotation speed of 8-10 rpm. Then the viral suspension is inactivated with formaldehyde at a final concentration of 200 ± 20 μg / ml for 3 days at a temperature of (32 ± 1) o C. The concentration of the infectious virus in the viral suspension is controlled before inactivation, and the amount of chicken embryo proteins in the semi-finished product after inactivation. This is followed by the stage of release from the cellular substrate and the union of the semi-finished product. The operation is performed as follows: in a bottle with an inactivated culture medium containing cell debris, virus suspension and cells with the virus, protamine sulfate is added to a final concentration of 75 μg / ml. Leave for interaction at a temperature of (6 + 2) o C for 1 hour. Then, cell detritus and the precipitate formed are removed by centrifugation on an OTP-101K-01 flowing centrifuge with an acceleration of 13,200 g. Collection of the semi-finished product coming from the centrifuge is carried out in a common container, then it is filtered through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. The combined semi-finished product thus obtained is concentrated 40 times by ultrafiltration on synthetic filters. Next, the concentrate is purified by gel chromatography on a column of porous silica. The type of sorbent is diasorb-1000-diol. In the collected chromatographic fraction, the antigenic activity of tick-borne encephalitis virus and the amount of chicken embryo proteins are controlled. Then, the obtained purified concentrate is diluted with an appropriate amount of a buffer solution, filtered through a filter with a pore size of 0.22 μm and used to prepare a sorbed vaccine. Determination of protein concentration of the chicken embryo is carried out by the method of counter immunoelectrophoresis.
Пример 4. Example 4
Вирусную суспензию получают путем репродукции вируса (штамм ВКЭ 205) в суспензионной первичной культуре клеток куриных эмбрионов. Для увеличения репродукции добавляют куриный эмбриональный экстракт в конечной концентрации 1,5 мкг/мл. Культивирование вируса проводят в бутылях объемом 6,0 л в течение 4-х суток при температуре (37±1)oС при непрерывном перемешивании на роллерной установке со скоростью вращения 8-10 об/мин. Затем вирусную суспензию инактивируют формальдегидом в конечной концентрации 200±20 мкг/мл в течение 3-х суток при температуре (32±1)oC. Концентрацию инфекционного вируса в вирусной суспензии контролируют до инактивации, а количество белков куриного эмбриона в полуфабрикате после инактивации. Далее следует стадия освобождения от клеточного субстрата и объединение полуфабриката. Операцию выполняют следующим образом: в бутыли с инактивированной культуральной средой, содержащей клеточный дебрис, вирусную взвесь и клетки с вирусом, добавляют протаминсульфат до конечной концентрации 70 мкг/мл. Оставляют для взаимодействия при температуре (6+2)oС на 30-40 мин. Затем клеточный детрит и образовавшийся преципитат удаляют центрифугированием на проточной центрифуге ОТР-101К-01 при ускорении 13200 g. Сбор поступающего с центрифуги полуфабриката производят в общую емкость, затем его фильтруют через пакет фильтров с конечным размером пор 0,45 мкм. Полученный таким образом объединенный полуфабрикат концентрируют в 40 раз ультрафильтрацией на синтетических фильтрах. Далее концентрат очищают гель-хроматографией на колонке с макропористым кремнеземом. Тип сорбента - МПС-1000-ПВП. В собираемой хроматографической фракции контролируют антигенную активность вируса клещевого энцефалита и количество белков куриного эмбриона. Затем полученный очищенный концентрат разводят соответствующим количеством буферного раствора, фильтруют через фильтр с размером пор 0,22 мкм и используют для приготовления сорбированной вакцины. Определение концентрации белков куриного эмбриона проводят методом встречного иммуноэлектрофореза.A viral suspension is obtained by reproduction of the virus (strain TBEV 205) in a suspension primary culture of chicken embryo cells. To increase reproduction, chicken embryonic extract is added at a final concentration of 1.5 μg / ml. The cultivation of the virus is carried out in 6.0 liter bottles for 4 days at a temperature of (37 ± 1) o C with continuous stirring on a roller unit with a rotation speed of 8-10 rpm. Then the virus suspension is inactivated with formaldehyde in a final concentration of 200 ± 20 μg / ml for 3 days at a temperature of (32 ± 1) o C. The concentration of the infectious virus in the virus suspension is controlled before inactivation, and the amount of chicken embryo proteins in the semi-finished product after inactivation. This is followed by the stage of release from the cellular substrate and the union of the semi-finished product. The operation is performed as follows: in a bottle with an inactivated culture medium containing cell debris, virus suspension and cells with the virus, protamine sulfate is added to a final concentration of 70 μg / ml. Leave for interaction at a temperature of (6 + 2) o C for 30-40 minutes Then, cell detritus and the precipitate formed are removed by centrifugation on an OTP-101K-01 flowing centrifuge with an acceleration of 13,200 g. Collection of the semi-finished product coming from the centrifuge is carried out in a common container, then it is filtered through a filter bag with a final pore size of 0.45 μm. The combined semi-finished product thus obtained is concentrated 40 times by ultrafiltration on synthetic filters. Next, the concentrate is purified by gel chromatography on a column of macroporous silica. Type of sorbent - MPS-1000-PVP. In the collected chromatographic fraction, the antigenic activity of tick-borne encephalitis virus and the amount of chicken embryo proteins are controlled. Then, the obtained purified concentrate is diluted with an appropriate amount of a buffer solution, filtered through a filter with a pore size of 0.22 μm and used to prepare a sorbed vaccine. Determination of protein concentration of the chicken embryo is carried out by the method of counter immunoelectrophoresis.
Данная технология позволяет снижать количество белков куриного эмбриона с 10-16 мкг/мл в объединенном полуфабрикате до 1 мкг/мл и менее в очищенном полуфабрикате вакцины. При этом повышается эффективность производства вакцины клещевого энцефалита, так как в 2-2,5 раза снижается расход фильтров для осветляющей фильтрации вирусной суспензии и расход синтетических фильтров для последующего концентрирования ее ультрафильтрацией. Значительно сокращается время выполнения этих операций. Уменьшается количество операций, необходимых для получения вакцины из вирусной суспензии. This technology allows you to reduce the number of proteins of the chicken embryo from 10-16 μg / ml in the combined semi-finished product to 1 μg / ml or less in the purified semi-finished vaccine. This increases the efficiency of the production of tick-borne encephalitis vaccine, since the consumption of filters for clarifying the filtration of the viral suspension and the consumption of synthetic filters for subsequent concentration by ultrafiltration are reduced by a factor of 2–2.5. Significantly reduced time to complete these operations. The number of operations required to obtain a vaccine from a viral suspension is reduced.
Claims (8)
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001117483/13A RU2203089C2 (en) | 2001-06-28 | 2001-06-28 | Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis |
CN02131812A CN1398638A (en) | 2001-06-28 | 2002-06-27 | Preparation of tick-borne encephalitis resisting vaccine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001117483/13A RU2203089C2 (en) | 2001-06-28 | 2001-06-28 | Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2203089C2 true RU2203089C2 (en) | 2003-04-27 |
Family
ID=20251093
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001117483/13A RU2203089C2 (en) | 2001-06-28 | 2001-06-28 | Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN1398638A (en) |
RU (1) | RU2203089C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2678431C1 (en) * | 2017-09-25 | 2019-01-29 | Акционерное общество "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" (АО "НПО "Микроген") | Method for producing tick-borne encephalitis virus vaccine |
-
2001
- 2001-06-28 RU RU2001117483/13A patent/RU2203089C2/en active
-
2002
- 2002-06-27 CN CN02131812A patent/CN1398638A/en active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2678431C1 (en) * | 2017-09-25 | 2019-01-29 | Акционерное общество "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" (АО "НПО "Микроген") | Method for producing tick-borne encephalitis virus vaccine |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN1398638A (en) | 2003-02-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2484135C2 (en) | Method of cleaning intended to produce cleaned virus of vesicular stomatitis from cellular culture | |
US6149917A (en) | Industrial production process for a vaccine against Japanese encephalitis virus and vaccine produced | |
CN111920944B (en) | Preparation method of influenza virus subunit vaccine stock solution | |
JP2538224B2 (en) | Purification of pertussis antigen | |
AU2021107276A4 (en) | Purification process of chicken embryo allantoic fluid of tetravalent influenza virus, tetravalent influenza virus split vaccine and preparation method thereof | |
RU2203089C2 (en) | Method for obtaining vaccine of tick- borne encephalitis | |
CN108660119B (en) | Method for purifying pseudorabies virus | |
CN108823245A (en) | A kind of purification process of virus-like particle | |
US3547779A (en) | Process for producing purified concentrated influenza virus | |
CN107365362B (en) | Method for large-scale production of high-purity porcine circovirus ORF2 protein | |
CN114645024B (en) | Method for reducing cell protein and DNA residues in rabies virus products | |
JP2006515568A (en) | Method for purifying recombinant protein from complex media and purified protein obtained thereby | |
CN109134622A (en) | The multistep continuous Integration purification process of foot-and-mouth disease virus antigen | |
US3514374A (en) | Method of purification of myxovirus vaccine | |
SU1003738A3 (en) | Method for preparing vaccine of russian tick-borne vernal-estival encephalitis virus | |
Wang et al. | Efficient purification of cell culture-derived classical swine fever virus by ultrafiltration and size-exclusion chromatography | |
CN114525263A (en) | Purification and concentration method of porcine acute diarrhea syndrome coronavirus antigen | |
RU2120804C1 (en) | Method of preparing vaccine against tick-borne or japanese encephalitis from viral suspension | |
RU2493872C1 (en) | Method for influenza virus purification | |
CN110904276A (en) | Application of bacteriophage in verification of virus removal process of biological product | |
RU2678431C1 (en) | Method for producing tick-borne encephalitis virus vaccine | |
CN117844747B (en) | Conditional medium for promoting secretion of mesenchymal stem cell exosome and application thereof | |
SU520778A1 (en) | Method of filtration of solutions and suspensions of microorganisms and/or proteins | |
RU2067767C1 (en) | Method of preparing subunit gene engineering vaccine against hepatitis b | |
CN108531462A (en) | A kind of method of aviadenovirus consummateization |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HE4A | Change of address of a patent owner | ||
PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20180716 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner |