RU2143489C1 - Способ получения лизостафина - Google Patents
Способ получения лизостафина Download PDFInfo
- Publication number
- RU2143489C1 RU2143489C1 RU94042304A RU94042304A RU2143489C1 RU 2143489 C1 RU2143489 C1 RU 2143489C1 RU 94042304 A RU94042304 A RU 94042304A RU 94042304 A RU94042304 A RU 94042304A RU 2143489 C1 RU2143489 C1 RU 2143489C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lysostaphin
- isolation
- strain
- producing
- staphylococci
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области медицинской микробиологии и биотехнологии, в частности к получению микробного ферментного препарата лизостафина. Способ включает выращивание продуцента Staphylococcus simulans М-БУ 7-201 на питательной среде и выделение конечного ферментного препарата методом ступенчатой диафильтрации. Предлагаемый способ увеличивает выход и стандартность конечного продукта, а также позволяет усовершенствовать дифференциальную диагностику стафилококков и выделение их ДНК с применением современных молекулярно-генетических методов исследования. 3 табл.
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и биотехнологии, в частности к получению ферментного препарата лизостафина.
Известны способы получения очищенных препаратов лизостафина [Sugai M., 1990; Патент Германия C 12 N 9/00; 9/96; 1/20; N 4033752], однако они сложны, многоэтапны, так как включают в себя комбинацию разных методов очистки: высаливание, диализ, многоступенчатая хроматография на различных носителях и требуют для своего исполнения сложного и дорогостоящего аппаратурного и реактивного обеспечения.
Ряд зарубежных фирм (ICN, Sigma) выпускают коммерческие препараты очищенного лизостафина, однако в связи с высокой валютной стоимостью они малодоступны.
Отечественные препараты лизостафина нам неизвестны.
Имеются данные об использовании лизостафина при дифференциальной диагностике стафилококков и микрококков [Pourell B., Caffin Y., 1981; Schleifer K. , Kloos W., 1975] и в молекулярно-биологических исследованиях для разрушения и изучения клеточной оболочки и выделения ДНК стафилококков [Ranhard Y., 1982, Kado C., Liu S., 1981].
При этом, как правило, применяют жидкие супернатанты микробных взвесей штамма-продуцента Staphylococcus simulans, содержащие комплекс экзопродуктов, в том числе, лизостафин. Однако они не обеспечивают стандартности проводимых работ, малоактивны, имеют короткий срок хранения.
Целью предлагаемого изобретения является повышение активности, выхода и стандартности конечного продукта - лизостафина за чет использования специально полученного штамма - суперпродуцента Staphylococcus simulans М-БУ 7-201, а выделение конечного ферментного препарата осуществляют методом ступенчатой диафильтрации.
Предлагаемый способ получения лизостафина с целью его последующего использования позволяет усовершенствовать дифференциальную диагностику стафилококков и выделение их ДНК с применением современных молекулярно-генетических методов исследования.
Предлагаемое изобретение иллюстрируется следующими примерами:
Пример 1. Штамм-продуцент.
Пример 1. Штамм-продуцент.
В качестве исходного был использован штамм Staphylococcus spec. RN 3239, обладающий способностью продуцировать лизостафин. В ходе работы штамм был идентифицирован по фенотипическим и генотипическим признакам как Staphylococcus simulans. Методом химического мутагенеза с последующим клонированием был получен штамм-суперпродуцент лизостафина, существенно превосходящий по продуктивности исходный. Были изучены культурально-морфологические, фенотипические свойства и генетические особенности штамма.
Культурально-морфологические свойства: грамположительные клетки, образуют неправильные скопления, неподвижны, капсул и спор не имеют. На мясо-пептонном агаре (pH 7,0-7,4) через 18 часов роста образуют непрозрачные беловатые, круглые с ровным краем колонии, вызывают равномерное помутнение среды при росте в мясо-пептонном бульоне.
Не требователен к питательному субстрату, хемоорганотроф, растет в присутствии NaCl, 15% и 40% желчи.
Биохимическая активность: метаболизм дыхательный и бродильный. Утилизирует глюкозу с образованием кислоты без газа, не способен к утилизации арабинозы, маннозы, сахарозы, лактозы, мальтозы. Гидролизуют аргинин, лизин, отсутствует активность коагулазы, орнитиндекарбоксилазы и фенилаланиндезаминазы, образует каталазу и уреазу. Индол не образуется.
Штамм устойчив к лизоциму (100 мкг/мл), лизостафину (1 ед./мл), чувствителен к антибиотикам - бензилпенициллину, ампициллину, оксациллину, метициллину, стрептомицину, канамицину, гентамицину, линкомицину, левомицетину, хлорамфениколу, эритромицину, олеандомицину, тетрациклину, рифампицину. Нуклеотидный состав ДНК 33,5% ГЦ. Штамм лизируется серийным антистафилококковым бактериофагом.
Характерной особенностью штамма является способность продуцировать в большей степени, чем исходный, лизостафин, что было показано методом диффузии на твердой питательной среде с газоном контрольного штамма Staphylococcus aureus CCM 885. При этом за счет действия лизостафина через 24 часа при 37oC образовывались зоны лизиса диаметром 7-10 мм.
Полученный и охарактеризованный штамм-суперпродуцент лизостафина Staphylococcus simulans N М-БУ 7-201 депонирован в ГИСК им. Л.А. Тарасевича под номером 246.
Пример 2. Условия накопления целевого продукта (лизостафина).
С целью накопления лизостафина штамм-продуцент культивируют в шюттель-аппарате в течение 18-24 часов при температуре 28oC на мясо-пептонном бульоне pH 7,0-7,4 в условиях непрерывного перемешивания при 45 об/мин. После окончания культивирования добавляют мертиолат до конечной концентрации 1: 10000. После этого микробные клетки отделяют центрифугированием при 6000 об/мин в течение 25 минут. Полученный супернатант используют для выделения целевого продукта.
Пример 3. Выделение лизостафина.
Выделение лизостафина проводят методом ступенчатой диафильтрации на полых волокнах по следующей схеме:
1) концентрирование 1 л супернатанта до 100 мл на модуле ВПУ-15 (0,2 м2) в течение 45 минут при 0,5 атм.
1) концентрирование 1 л супернатанта до 100 мл на модуле ВПУ-15 (0,2 м2) в течение 45 минут при 0,5 атм.
2) диафильтрация 100 мл концентрата на модуле ВПУ-15 (0,2 м2) против 1 л (10 объемов) 0,05 М фосфатного буфера pH 7,5 в течение 2 часов при 0,5 атм.
3) диафильтрация 100 мл диализата на модуле ВПУ-50 (0,2 м2) против 500 мл (5 объемов) 0,05 М фосфатного буфера pH 7,5 в течение 10 минут при 0,5 атм.
4) концентрирование 500 мл фильтрата на ВПУ-15 (0,2 м2) в течение 1 часа до 100 мл при 0,5 атм.
5) концентрирование 100 мл фильтрата на ВПУ-15 (0,02 м2) до 40-50 мл течение 30 минут при 0,5 атм.
Полученный конечный продукт содержит очищенный лизостафин, что подтверждается методом электрофореза в полиакриламидном геле с додецилсульфатом натрия. При этом показано, что в конечном продукте содержится одна белковая зона с молекулярной массой 25 кДа. Примесей других белков не обнаружено. Соблюдение описанного выше режима выделения позволяет обеспечить высокий выход и стандартность конечного продукта.
Полученный лизостафин разливают по 5 мл в ампулы и лиофильно высушивают.
Пример 4. Испытание свойств очищенного лизостафина.
С целью проверки способности полученного лизостафина лизировать наружную оболочку стафилококков были проведены сравнительные исследования с различными видами микроорганизмов. Полученные результаты представлены в таблице 1.
Из приведенных данных видно, что очищенный лизостафин способен лизировать большинство видов и штаммов стафилококков и не лизирует оболочку микрококков, а также представителей сарцин, бацилл и некоторых коагулазоотрицательных стафилококков. Таким образом, полученный лизостафин может быть использован при идентификации стафилококков и микрококков трудно дифференцируемых по другим фенотипическим характеристикам.
Кроме того, полученный очищенный лизостафин применяли для разрушения клеточной оболочки у различных видов стафилококков с целью последующего выделения и изучения их ДНК. Полученные результаты представлены в таблице 2 и 3.
Из приведенных результатов видно, что полученный описанным выше способом очищенный лизостафин обладает высокой активностью по лизису клеточной стенки при выделении ДНК из Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidеrmidis. Из 1 г клеток представителей этих видов извлекалось 2-3 мг нативной ДНК хорошего качества и чистоты. Клетки остальных исследованных видов лизировались существенно слабее.
Claims (1)
- Способ получения лизостафина, предусматривающий выращивание продуцента Staphylococcus simulans на питательной среде с последующим выделением целевого продукта, отличающийся тем, что в качестве продуцента используют штамм Staphylococcus simulans М-БУ 7-201 (ГИСК N 246), а выделение целевого продукта осуществляют методом ступенчатой диафильтрации.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU94042304A RU2143489C1 (ru) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Способ получения лизостафина |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU94042304A RU2143489C1 (ru) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Способ получения лизостафина |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU94042304A RU94042304A (ru) | 1996-10-20 |
RU2143489C1 true RU2143489C1 (ru) | 1999-12-27 |
Family
ID=20162686
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU94042304A RU2143489C1 (ru) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Способ получения лизостафина |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2143489C1 (ru) |
-
1994
- 1994-11-25 RU RU94042304A patent/RU2143489C1/ru active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU94042304A (ru) | 1996-10-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4348478A (en) | Method for preparation of a recombinant DNA phage | |
Dobrynina et al. | Disruption of bacterial biofilms using recombinant dispersin B | |
US5702939A (en) | Glucosamine-6-phosphate deaminase and process for producing the same | |
RU2143489C1 (ru) | Способ получения лизостафина | |
CA1188643A (en) | Production of aryl acylamidases | |
Mahesh et al. | Optimization for the production of extracellular alkaline phosphatase from Proteus mirabilis | |
JP2824508B2 (ja) | N−アセチルグルコサミン6−リン酸デアセチラーゼ | |
Kannaiyram et al. | Production and characterization of alkaline phosphatase produced by Bacillus Species | |
RU2193063C2 (ru) | Бактериолитический комплекс, способ его получения и штамм для осуществления способа | |
US4264734A (en) | Process for producing antibiotic desacetyl 890A10 | |
Suzuki et al. | Serratia marcescens-lytic enzyme produced by Micromonospora sp. strain no. 152 | |
KR100373151B1 (ko) | 입체선택성 리파제와 이를 생산하는 악시네토박터 균주 | |
SU1645293A1 (ru) | Штамм бактерий SтRертососсUS FaecaLIS - продуцент рестриктазы SFa N @ | |
SU1659480A1 (ru) | Штамм бактерий КLевSIеLLа рNеUмоNIае-продуцент рестриктазы Кр @ 378 1 | |
RU2718802C1 (ru) | Способ получения нибомицина | |
Imada et al. | A bacteriolytic enzyme from Chaetomium globosum, a marine-isolate | |
CH650796A5 (fr) | Plasmides derives d'actinomycetes. | |
Suzuki et al. | SAF, a new cell aggregation factor produced by Streptomyces murinus strain no. A-2805 | |
JP4009677B2 (ja) | プロトプラストの再生率を向上させる微生物及びプロトプラストの再生方法 | |
SU1458388A1 (ru) | Способ получени эндонуклеаз-рестриктаз, обладающих способностью узнавать и расщепл ть последовательности нуклеотидов 5 @ -GPUCGPYC-3 @ и 5 @ -CATG-3 @ | |
SU1724689A1 (ru) | Способ получени эндонуклеазы рестрикции, узнающей и расщепл ющей последовательность нуклеотидов 5 @ - TGATCA-3 @ | |
JP4752024B2 (ja) | 細胞壁分解酵素と産生する微生物、並びにそれを用いたプロトプラスト調製法 | |
SU1449582A1 (ru) | Способ получени рестриктазы AI и I | |
JPH01137973A (ja) | アシルアミノ酸ラセマーゼ、その製造法および用途 | |
Kim et al. | Purification and Characterization of Proteinaceous ${\beta}-Lactamase $ Inhibitor from the Culture Broth of Streptomyces sp. SMF-19 |