RU2041716C1 - Method for obtaining myelopid - Google Patents
Method for obtaining myelopid Download PDFInfo
- Publication number
- RU2041716C1 RU2041716C1 RU93001102A RU93001102A RU2041716C1 RU 2041716 C1 RU2041716 C1 RU 2041716C1 RU 93001102 A RU93001102 A RU 93001102A RU 93001102 A RU93001102 A RU 93001102A RU 2041716 C1 RU2041716 C1 RU 2041716C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- myelopid
- temperature
- lyophilization
- sephadex
- supernatant
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии и может быть использовано в производстве иммунологически активного препарата миелопида. The invention relates to medicine, namely to immunology and can be used in the production of an immunologically active drug myelopid.
Описан способ получения миелопида, ранее известного как стимулятор антителопродуцентов, путем выделения клеток из костного мозга свиньи, их культивирования в питательной среде, отделения супернатанта центрифугированием, концентрирования и выделения целевого продукта гельхроматографией на колонке, заполненной сефадексом G-50. Фракции, элюированные в области выхода цитохрома G с молекулярной массой около 13000 Da, концентрируют лиофилизацией. A method for producing myelopid, formerly known as a stimulator of antibody producers, is described by isolating cells from a pig’s bone marrow, culturing them in a nutrient medium, separating the supernatant by centrifugation, concentrating and isolating the target product by gel chromatography on a column filled with Sephadex G-50. Fractions eluted in the exit region of cytochrome G with a molecular weight of about 13,000 Da are concentrated by lyophilization.
Известен также способ получения миелопида путем культивирования клеток костного мозга в питательной среде, отделения супернатанта центрифугированием, концентрирования, гельфильтрации концентрированного супернатанта на колонке с сефадексом G-25, отбора фракций с мол.массой 1000-2000 и обессоливание на колонке с сефадексом С-10. Готовый продукт высушивают лиофилизацией. There is also known a method for producing myelopid by culturing bone marrow cells in a nutrient medium, separating the supernatant by centrifugation, concentration, gel filtration of the concentrated supernatant on a Sephadex G-25 column, selecting fractions with a molar mass of 1000-2000 and desalting on a Sephadex C-10 column. The finished product is dried by lyophilization.
Недостатком известных способов является небольшой выход препарата (из 1 кг незачищенных костей, 1,0.1010 клеток костного мозга получают 25-30 доз препарата) и его низкая удельная активность. Миелопид стандартизировали так, чтобы 1 доза препарата содержала 3 мг белка, определенного методом Лоури. Индекс стимуляции составлял не менее 1,6 при концентрации препарата 50 мкг/мл.A disadvantage of the known methods is the small yield of the drug (from 1 kg of uncleaned bones, 1.0 . 10 10 bone marrow cells receive 25-30 doses of the drug) and its low specific activity. Myelopid was standardized so that 1 dose of the drug contained 3 mg of protein determined by the Lowry method. The stimulation index was at least 1.6 at a drug concentration of 50 μg / ml.
Цель изобретения повышение иммуностимулирующей активности миелопида. The purpose of the invention is an increase in the immunostimulating activity of myelopid.
Поставленная цель достигается тем, что клетки костного мозга свиней культивируют в питательной среде, супернатант отделяют центрифугированием, подвергают ультрафильтрации на мембранах с порогом проницаемости 10.000 Da при температуре от +4оС до комнатной, затем концентрируют лиофилизацией, проводят гель-хроматографию на сефадексе G-25, отобранные фракции с молекулярной массой 600-3000 Da повторно концентрируют лиофилизацией.The goal is achieved in that the bone marrow cells of pigs cultured in a culture medium, the supernatant was separated by centrifugation and subjected to an ultrafiltration on membranes with 10.000 Da threshold permeability at a temperature from about 4 C to room temperature, then concentrated by lyophilization, is performed by gel chromatography on Sephadex G- 25, selected fractions with a molecular weight of 600-3000 Da are re-concentrated by lyophilization.
Отличительным приреалом способа является то, что выделение целевого продукта проводят ультрафильтрацией на мембранах с порогом проницаемости 10.000 Da при температуре от +4оС до комнатной.Prirealom distinguishing method is that the isolation of the desired product is carried out by ultrafiltration on membranes with 10.000 Da threshold permeability at a temperature from about 4 C to room temperature.
Более подробно способ осуществляют следующим путем. In more detail, the method is carried out in the following way.
Костный мозг из реберных костей свиней после их измельчения вымывают встряхиванием в термостатируемом шейкере при 37оС в течение 1 ч в бессывороточной питательной среде 199. Далее клетки отмывают двукратным центрифугированием и помещают в среду для культивирования. Среда для культивирования готовится на основе 199 среды. Культивирование осуществляют в термостатируемом шейкере или в роллерной установке при 37оС в течение 20 ч. Супернатант отделяют от клеточной массы центрифугированием при температуре +4оС со скоростью 8000 об/мин в течение 20 мин.Bone marrow from swine rib bones after they are washed grinding shaking thermostatic shaker at 37 ° C for 1 h in serum free medium 199. Next, the cells were washed twice by centrifugation and placed in a culture medium. The culture medium is prepared based on 199 medium. Cultivation was carried out in a thermostated shaker or spinner apparatus at 37 ° C for 20 hours. The supernatant was separated from the cell mass by centrifugation at + 4 ° C at a speed of 8000 rev / min for 20 min.
Полученный супернатант культуры клеток костного мозга подвергают ультрафильтрации на кассетах фирмы "Миллипор" с порогом проницаемости 10000 Da при температуре от +4оС до комнатной и избыточном давлении на входе системы 0,5 атм. Полученный на выходе стерильный ультрафильтрат лиофилизируют при температуре (-30)-0оС. Сухой лиофилизированный продукт растворяют в стерильной апирогенной воде, центрифугируют, осветленный концентрат подвергают микрофильтрации, а затем гель-хроматографии на колонке, заполненной сефадексом G-25, отобранные фракции с молекулярной массой 600-3000 Da повторно подвергают лиофилизации. Из 1 кг сырья (1,0х1010 клеток) получают 250-300 доз препарата.The resultant culture supernatant was subjected to bone marrow cells ultrafiltration cassettes company "Millipore" with a threshold of 10,000 Da permeability at a temperature from about 4 C to room temperature and excess pressure system at the inlet 0.5 atm. The sterile ultrafiltrate obtained at the outlet is lyophilized at a temperature of (-30) -0 о С. The dry lyophilized product is dissolved in sterile pyrogen-free water, centrifuged, the clarified concentrate is subjected to microfiltration, and then gel chromatography on a column filled with Sephadex G-25, selected fractions with molecular weight 600-3000 Da re-subjected to lyophilization. From 1 kg of raw materials (1.0x10 10 cells) receive 250-300 doses of the drug.
Проверка заявленного технического решения на соответствие его критерию "Изобретательский уровень" показала, что ни в патентной ни в научно-технический литературе не обнаружено совокупности признаков, приведенной в формуле изобретения. Checking the claimed technical solution for compliance with its criterion of "Inventive step" showed that neither in the patent nor in the scientific and technical literature found the totality of the features given in the claims.
Ниже приводятся конкретные примеры исполнения способа и анализа биологических свойств миелопида. The following are specific examples of the method and analysis of the biological properties of myelopid.
П р и м е р 1. 25 кг зачищенных реберных костей свиней измельчают в стерильных условиях. К гомогенизату добавляют 3 литра стерильной 199 среды. Суспензию встряхивают на шейкере при 37оС в течение 1 ч для вымывания клеток костного мозга. Фильтрацией отделяют содержащий клетки супернатант объемом 3 л. Клетки дважды отмывают центрифугированием 199 средой при температуре +4оС. Полученные клетки объемом 50 мл (15-25.1010) заливают 25 л и 199 среды, доводя концентрацию клеток до 1010 клеток/литр и инкубируют в течение 20 ч при 37оС. Клетки отделяют центрифугированием при 5000 об/мин при температуре +4оС. Супернатант объемом 25 л подвергают ультрафильтрации на мембранах фирмы "Millipor" проницаемостью 10.000 дальтон при давлении не более 0,5 атм и температуре +4оС. Полученный фильтрат объемом 23 л лиофильно высушивают при температуре (-30оС)-0оС. Сухой продукт растворяют при +4оС в 350 мл апирогенной стерильной воды в течение 30 мин при интенсивном перемешивании. Нерастворившийся осадок отделяют центрифугированием при 8000 об/мин при +4оС в течение 20 мин. Супернатант объемом 300 мл стерильно фильтруют на фильтре с диаметром пор 0,2 мкм и наносят на колонку с сефадексом G-25 размером 10х100 см. Гель-хроматографию проводят в стерильных условиях при +4оС, используя в качестве элюата 10 mМ фосфатный буфер рН 7,00, отбирая фракцию с мол. массой, соответствующей 2000 Da. Концентрацию миелопида в полученном элюате доводят до 0,1-0,2 мг/мл добавлением стерильного 10 mМ фосфатного буфера рН 7,0. Раствор миелопида стерильно фильтруют через фильтр с диаметром пор 0,2 мкм, разливают во флаконы по 3 мл и лиофильно высушивают при температуре (-30)-0оС.PRI me
Выход продукта составляет 300 доз препарата с содержанием белка по Лоури 0,3-0,6 мг/дозу. Коэффициент стимуляции составляет при этом 1,9. The product yield is 300 doses of the drug with a Lowry protein content of 0.3-0.6 mg / dose. The stimulation coefficient is 1.9.
П р и м е р 2. Способ осуществляют аналогично описанному в примере 1, но проводят ультрафильтрацию на мембранах с порогом проницаемости 10000 Da при комнатной температуре. PRI me R 2. The method is carried out similarly to that described in example 1, but carry out ultrafiltration on membranes with a permeability threshold of 10,000 Da at room temperature.
Выход миелопида 350 доз (из 1010 клеток костного мозга) с коэффициентом стимуляции 1,8.The output of myelopid is 350 doses (from 10 10 bone marrow cells) with a stimulation coefficient of 1.8.
П р и м е р 3. Эффект стимуляции антителообразования оценивают на пике иммунного ответа к эритроцитам барана in vitro, добавляя тестируемый материал в культуру клеток лимфатических узлов, полученных от мышей на четвертые сутки после иммунизации. PRI me R 3. The effect of stimulation of antibody formation is assessed at the peak of the immune response to ram red blood cells in vitro, adding test material to the cell culture of lymph nodes obtained from mice on the fourth day after immunization.
Коэффициент стимуляции рассчитывают как отношение количества антителообразующих клеток (АОК) в культуре с тестируемым образцом к количеству АОК в контрольной культуре. The stimulation coefficient is calculated as the ratio of the number of antibody-forming cells (AOK) in the culture with the test sample to the number of AOK in the control culture.
Антителостимулирующий эффект миелопида, полученного известным и предложенным способами, приведен в табл.1. The anti-stimulating effect of myelopid obtained by known and proposed methods is shown in table 1.
Из данных табл.1 следует, что миелопид, полученный предложенным способом, имеет в 100 раз большую удельную активность. From the data of table 1 it follows that the myelopid obtained by the proposed method has a 100 times greater specific activity.
Антителостимулирующий эффект миелопида при разных температурах процесса ультрафильтрации приведен в табл.2. The anti-stimulating effect of myelopid at different temperatures of the ultrafiltration process is given in Table 2.
Проведение процесса ультрафильтрации при температуре выше комнатной или ниже +4оС приводит к снижению выхода и потере активности препарата.Conducting ultrafiltration process at a temperature above room temperature or below 4 ° C leads to reduction in yield and loss of activity of the drug.
Миелопид, полученный по предлагаемому способу, имеет в 100 раз большую удельную иммуностимулирующую активность, что позволяет снизить дозу вводимого препарата при лечении и из одного и того же количества клеток костного мозга получать в 10 раз больше доз. Myelopid obtained by the proposed method has a 100 times greater specific immunostimulating activity, which allows to reduce the dose of the drug administered during treatment and to receive 10 times more doses from the same number of bone marrow cells.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93001102A RU2041716C1 (en) | 1993-01-05 | 1993-01-05 | Method for obtaining myelopid |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93001102A RU2041716C1 (en) | 1993-01-05 | 1993-01-05 | Method for obtaining myelopid |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2041716C1 true RU2041716C1 (en) | 1995-08-20 |
RU93001102A RU93001102A (en) | 1996-11-10 |
Family
ID=20135379
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU93001102A RU2041716C1 (en) | 1993-01-05 | 1993-01-05 | Method for obtaining myelopid |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2041716C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2522250C2 (en) * | 2012-09-24 | 2014-07-10 | Игорь Викторович Опутин | Method of obtaining personal medication for treatment of diabetes, personal preparation obtained by said method, method of treating diabetes by said preparation |
RU2553334C2 (en) * | 2013-07-23 | 2015-06-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования Дальневосточный Государственный Аграрный Университет | Method of extracting proteins from bone marrow cells |
RU2630302C1 (en) * | 2016-11-02 | 2017-09-06 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр "Институт иммунологии" Федерального медико-биологического агентства России | Method for purification of recombinant protein containing myelopeptides sequences |
-
1993
- 1993-01-05 RU RU93001102A patent/RU2041716C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 1005790, кл. A 61K 39/00, 1982. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2522250C2 (en) * | 2012-09-24 | 2014-07-10 | Игорь Викторович Опутин | Method of obtaining personal medication for treatment of diabetes, personal preparation obtained by said method, method of treating diabetes by said preparation |
RU2553334C2 (en) * | 2013-07-23 | 2015-06-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования Дальневосточный Государственный Аграрный Университет | Method of extracting proteins from bone marrow cells |
RU2630302C1 (en) * | 2016-11-02 | 2017-09-06 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр "Институт иммунологии" Федерального медико-биологического агентства России | Method for purification of recombinant protein containing myelopeptides sequences |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4465624A (en) | Process for producing erythropoietin | |
US4565784A (en) | Hydrogels capable of supporting cell growth | |
JPH11505512A (en) | Method for preparing macrophages, and kits and compositions therefor | |
JPH0789950B2 (en) | Method for producing protein having immunological cross-reactivity with diphtheria toxin | |
JP2538224B2 (en) | Purification of pertussis antigen | |
EP0221748A2 (en) | A process for the production of human antibodies | |
US5106743A (en) | Hydrogels capable of supporting cell growth | |
US3105012A (en) | Antigen products and means for producing the same | |
JPH0331691B2 (en) | ||
EP0407037A1 (en) | Process for removing bacterial endotoxin from gram-negative polysaccharides | |
US5489261A (en) | Hydrogels capable of supporting cell growth | |
RU2041716C1 (en) | Method for obtaining myelopid | |
US4100022A (en) | Process for preparing a curing agent for myelogenic leukemia | |
US4469790A (en) | Continuous and spontaneous interferon producing lymphoblastoid cell lines, process for preparing the same, and process for the human interferon production by the same | |
GB2121053A (en) | Production of interleukin and its analogous immune regulating factors | |
CN115537390B (en) | Continuous production method of stem cell exosomes and paracrine active macromolecules | |
US4189535A (en) | Serum cell growth promoting materials | |
US4661447A (en) | Regulatory glycoprotein for immune response and the use there of in the production of T-cell growth factor | |
US4681844A (en) | Process for producing an Interleukin-1 preparation | |
US4752578A (en) | Collagenase inducing factor | |
SU1493260A1 (en) | Method of producing cultural antigen from truchinella spiralis | |
US4558011A (en) | Method for preparation of pure hepatitis B surface antigen from human plasma | |
CA1239104A (en) | Method for the purification of lpf-ha | |
NO850152L (en) | PROCEDURE FOR MANUFACTURING HUMAN, EVEN CANCER REGULATORY FACTOR. | |
SU1477741A1 (en) | Method of producing hydrogenase |