RU2024021C1 - Способ диагностики туберкулеза - Google Patents
Способ диагностики туберкулеза Download PDFInfo
- Publication number
- RU2024021C1 RU2024021C1 SU4934091A RU2024021C1 RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1 SU 4934091 A SU4934091 A SU 4934091A RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- evaporation
- minutes
- chloroform
- supernatant
- extraction
- Prior art date
Links
Landscapes
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
Использование: медицина, пульмонология. Цель - сокращение времени определения и упрощение способа. Сущность изобретения: забор пробы мокроты, ее автоклавирование, экстракция хлороформ-метанольной смесью, упаривание, метилирование, растворение в гексене и последующее хроматомасс-спектрометрическое определение туберкулостеариановой кислоты. Отличие способа заключается в отделении органического слоя после экстракции хлороформ-метанольной смесью, в высушивании его над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования при температуре кипения метилирующей смеси в течение 15 - 20 мин.
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к бактериологии, и может быть использовано для идентификации микробактерий туберкулеза (Mycobacterium tuberculosis).
Известны различные способы диагностики туберкулеза, включающие выявление микробактерий туберкулеза (МБТ) в патологическом материале.
Известен способ обнаружения МБТ путем прямой бактериоскопии (см. Перельман М. И. , Корякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Для этого на обезжиренное стекло наносят каплю физиораствора и мокроту больного, которые тщательно растирают до однородности. Высушивают, фиксируют спиртом и красят фуксином Циля-Нильсена. Препарат микроскопируют. МБТ окрашиваются в красный цвет, а окружающий фон - в синий.
Также известен и бактериологический способ диагностики туберкулеза, включающий посев исследуемого материалa на питательную среду Левенштейна-Йенсена. Культивирование проводят в течение 14-90 дней (см. Перельман М.И., Карякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Затем культуру пересевают на глицериновые среды, инкубируют с последующей обработкой кислотами и щелочами. В заключение проводят пробу на устойчивость - мазки опускают в растворы: 1 - серной кислоты, 2 - едкого калия (натрия), 3 - жавелевой воды. После чего мазки докрашивают и микроскопируют.
По наличию в микроскопической картине бесцветных продолговатых и морщинистых палочек микобактерий туберкулеза диагностируют туберкулез.
К недостаткам данных способов следует отнести низкую чувствительность методов и длительные сроки постановки диагноза, обусловленные культивированием бактерий.
Наиболее близкими по технической сущности к предлагаемому является способ диагностики туберкулеза путем обнаружения туберкулостеариновой кислоты, являющейся биомаркером микобактерий туберкулеза (J, Clin. Investig., v. 63, N 5, 1979, p. 813-819).
Известный способ осуществляют следующим образом.
2-4 мл мокроты больного обеззараживают автоклавированием (при 121оС в течение 60 мин при Р = 1,1 кр/см2), обрабатывают 5 мл 3%-ного водного раствора лаурилсульфата и 1%-ным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин. Полученную смесь центрифугируют при 3 тыс. оборотов в мин в течение 30 мин, рН раствора доводят серной кислотой до 7,0 и лиофилизируют. Затем образцы переносят в 2-миллилитровую стеклянную ампулу и экстрагируют в течение ночи смесью хлороформ - метанол (2 : 1, V/V) при комнатной температуре. После центрифугирования в течение 20 мин при 4000 об/мин супернатант переносят в новую ампулу и концентрируют досуха в токе азота. После чего приливают 1 мл 3%-ного метанольного раствора хлористого водорода и ампулу запаивают. Метанолиз проходит при 80оС в течение 20 ч, по окончании ампулу центрифугируют при 4000 об/мин 20 мин. Супернатант упаривают досуха в токе азота и добавляют 100 мл н-гексана. Полученную смесь обрабатывают в ультрасониковой бане 1 мин при 125 В, затем раствор анализируют методом тонкослойной хроматографии (ТСХ). Условия TCX: пластины приготавливают нанесением слоя 0,25 мм силикагеля (Silicagel Go F 254, Merсk A.G., Darmstadt, Germany). В качестве растворителя используют смесь н-гексана и диэтилового эфира (9 : 1). Через 30-40 мин пятно, соответствующее метиловому эфиру, соскабливают с пластины и экстрагируют этилацетатом. Перед инжекцией в газохроматографическую колонку образец был упарен досуха и растворен в гексане.
Образец снимали на приборе: масс-спектрометр (Varian Assaciatis, Instrument Dis, Palo Alto, Calif, MaT model 112), соединенный с газовым хроматографом (Varian. Associates, model 112).
Условия хроматографирования следующие: стеклянная колонка, вн. диаметр 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе W, HP 80/100 меш, длина колонки - 3 м. Температура инжектора - 270оС, температура печи - 230оС. Газ-носитель - гелий, его скорость - 20 мл/мин. Условия работы масс-спектрометра следующие. Температура сепаратора - 250оС, температура ионного источника - 230оС, энергия электронов 70 еВ. Измерение проводили при детектировании по одному иону, соответственно по 312 m/z (молекулярный ион) и по 167 m/z. По наличию в полученном масс-спектре характерного молекулярного иона туберкулостеариновой кислоты диагностируют туберкулез. Общее время анализа составляет 4 сут. К недостаткам данного способа следует отнести длительность и многоэтапность операций, предшествующих хромато-масс-спектрометрическому исследованию пробы.
Целью предлагаемого способа диагностики является сокращение времени определения и упрощение способа.
Поставленная цель достигается тем, что способ диагностики туберкулеза проводят путем забора пробы, ее автоклавирования, экстракции хлороформ-метанольной смесью, упаривания, метилирования, растворения в гексане и хромато-масс-спектрометрического определения туберкулостеариновой кислоты.
Сопоставительный анализ с прототипом показывает, что отличительными признаками заявляемого способа являются: отделение органического слоя после проведения экстракции, его высушивание над безводным сульфатом натрия и проведение метилирования при температуре кипения метилирующей смеси в течение 15-20 мин.
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию изобретения "новизна".
Сравнение заявляемого решения с другими техническими решениями показывает, что прием отделения органического слоя от водной фазы образца является широко используемым в органической химии, так же как и удаление следов воды из органического экстракта с помощью безводной соли Na2SO4.
Однако указанные приемы не использовались ранее для подготовки безводного образца к хромато-масс-спектрометрическому анализу. Введение данных приемов в заявленный способ позволило исключить технически сложный прием - лиофильную сушку биосубстрата и тем самым сократить общее время анализа на 4-6 ч.
Авторами заявляемого способа экспериментальным путем установлено, что в предлагаемом способе процесс метилирования происходит за 15-20 мин. Необходимым условием является проведение этой реакции при температуре кипения метилирующей смеси (t = 65-70оС) в колбе с обратным холодильником. Данный прием позволяет сократить время диагностики на сутки, поскольку в известном способе процесс метилирования идет в течение 20 ч (при t = 80оС).
Таким образом, авторами заявляемого способа диагностики установлено новое свойство анализируемой смеси - процесс метилирования происходит за 15-20 мин, что позволяет сделать вывод о соответствии технического решения критерию "существенные отличия".
Заявленный способ диагностики туберкулеза осуществляют следующим образом.
Для анализа забирают от 2 до 10 мг биосубстрата-мокроты, содержимого плевральной полости или дренажной жидкости. Биосубстрат автоклавируют при температуре 121оС в течение 60 мин, к нему добавляют 5 мл гидроксида натрия (4%), встряхивают 10 мин, нейтрализуют разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливают экстрагирующей смесью - хлороформ : метанол, взятых в соотношении 2 : 1. Соотношение биосубстрата и экстрагента составляет 1 : 1. Экстракцию проводят при комнатной температуре в течение 20 ч. Затем смесь центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин, отделяют нижний органический слой, который высушивают над Na2SO4(безводным). После чего экстракт отфильтровывают от Na2SO4 и упаривают досуха в токе азота. Остаток метилируют в 3%-ном растворе HCl в метаноле при температуре кипения 65-70оС в течение 15-20 мин. Затем раствор упаривают в токе азота, остаток растворяют в 10 мл гексана и анализируют на хромато-масс-спектрометре (ХМС) методом селективного ионного детектирования (SIM) при m/z 312 и записи полного масс-спектра метилата С19 кислоты. Основные фрагментарные ионы масс-спектра туберкулостеариновой (TbS) кислоты: (m/z) 312, 269, 199, 171, 167, 149, 141, 113.
ХМС-анализ выполняют на приборе хромато-масс-спектрометре фирмы LKB 20-91 с ЭВМ РДП1134. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка (l = 25) с неподвижной жидкой фазой SE-30; температура инжектора - 350оС; температура термостата - 140 ->> 320оС, 4'/мин; газ-носитель - Не, VHe - 20 мл/мин.
Условия снятия масс-спектра: температура сепаратора - 320оС; температура ионного источника - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еВ. Ионный ток записывали по одному иону - m/z 312, т.е. в режиме селективного ионного детектирования. Минимальная определяемая концентрация TbS кислоты в образце составляла 100 мг/мл. Общее время анализа занимало 2 сут.
П р и м е р 1. Взята на исследование мокрота от больного Г., поступившего в гнойное отделение центра хирургической инфекции с предварительным диагнозом - гангрена легкого (N истории болезни 5850, дата взятия анализа 20.12.90). 10 мл мокроты автоклавировали при 121оС 30 мин, Р = =1,1 кР/см2. К обеззараженному биосубстрату добавили 5 мл 4%-ного раствора NaOH, содержимое встряхивали в течение 10 мин, затем нейтрализовали разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над безводным Na2SO4 в течение 20 мин. Отфильтровывали экстракт от Na2SO4 и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором соляной кислоты в метаноле, приготовленном добавлением 5 мл хлористого ацетила к 100 мл сухого МеОН. Метилирование проводили десятью мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 15 мин. Метилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре фирмы IKB 2091 с ЭВМ РДП-1134 с использованием стеклянной капиллярной колонки l = 25 м с неподвижной жидкой фазой SE-30. Хроматографирование проводили при температуре 140-320оС, 4о/мин; газ-носитель Не; температура инжектора - 350оС; температура ионного источника - 320оС; температура сепаратора - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еV. Запись масс-спектра ТBS кислоты вели при максимальной интенсивности 1357. В результате проведенного анализа установлено присутствие туберкулостеариновой кислоты в образце.
П р и м е р 2. Проведен забор мокроты от больного С. с предварительным диагнозом двухсторонняя абсцедирующая пневмония (N истории болезни 1899). 10 мл мокроты автоклавировали (121оС, 30 мин, Р = 1,1 кр/см2) с добавлением к ней 5 мл 4%-ного водного раствора NaOH, содержимое встряхивали 10 мин, раствор нейтрализовали разбавленной H2SO4до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1, V/V) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над 15 г безводной NaSO4 в течение 20 мин. Экстракт отфильтровывали и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором HCl в метаноле. Метилирование проводили 10 мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 20 мин. Прометилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре (условия ХМС-анализа приведены выше). Запись масс-спектра в интервале выхода TbS кислоты проводили при интенсивности 2857. Туберкулостеариновой кислоты не обнаружено.
Из представленных материалов следует, что заявленный способ позволяет в 2 раза сократить общее время проведения анализа (2 сут вместе 4 по способу-прототипу) и значительно упростить его за счет исключения приемов лиофилизации. Для наглядного выявления различий сравниваемых технических решений приведен их сопоставительный анализ:
Известный способ 1. Взятие биопробы (мокрота) 2. Автоклавирование пробы при 121оС в течение 60 мин 3. Обработка 3%-ным водным раствором лаурилсульфата и 1% -ным водным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин 4. Центрифугирование при 3 тыс. об. в мин в течение 30 мин. 5. Доведение рН до 7,0 (с использованием серной кислоты) 6. Лиофилизация 7. Экстракция смесью хлороформ - метанол (1 : 1) в течение 20 ч 8. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 9. Концентрация в токе азота (досуха) 10. Добавление 1 мл 3%-ного метанольного раствора кислоты 11. Метанолиз при 80оС в течение 20 ч 12. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 13. Упаривание супернатанта в токе азота 14. Добавление 100 мл н-гексана 15. Обработка смеси в ультрасониковой бане в течение 1 мин при 125 В 16. Анализ методом тонкослойной хроматографии на силикагеле, элюент н-гексан - диэтиловый эфир (9 : 1) 17. Соскабливание пятна через 30-40 мин, соответствующего метиловому эфиру и экстрагирования его этилацетатом 18. Упаривание досуха 19. Растворение в гексане 20. Анализ на хромато-масс-спектрометре 21. Условия хроматографирования: стеклянная колонка, l = 3 м, внутренний d = 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе WHP 80/100 меш,
t инжектора = 270оС.
Известный способ 1. Взятие биопробы (мокрота) 2. Автоклавирование пробы при 121оС в течение 60 мин 3. Обработка 3%-ным водным раствором лаурилсульфата и 1% -ным водным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин 4. Центрифугирование при 3 тыс. об. в мин в течение 30 мин. 5. Доведение рН до 7,0 (с использованием серной кислоты) 6. Лиофилизация 7. Экстракция смесью хлороформ - метанол (1 : 1) в течение 20 ч 8. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 9. Концентрация в токе азота (досуха) 10. Добавление 1 мл 3%-ного метанольного раствора кислоты 11. Метанолиз при 80оС в течение 20 ч 12. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 13. Упаривание супернатанта в токе азота 14. Добавление 100 мл н-гексана 15. Обработка смеси в ультрасониковой бане в течение 1 мин при 125 В 16. Анализ методом тонкослойной хроматографии на силикагеле, элюент н-гексан - диэтиловый эфир (9 : 1) 17. Соскабливание пятна через 30-40 мин, соответствующего метиловому эфиру и экстрагирования его этилацетатом 18. Упаривание досуха 19. Растворение в гексане 20. Анализ на хромато-масс-спектрометре 21. Условия хроматографирования: стеклянная колонка, l = 3 м, внутренний d = 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе WHP 80/100 меш,
t инжектора = 270оС.
t термостата = 230оС,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 250оС,
t ионного источника = 230оС,
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном детектировании по ионам m/z 312 и 167.
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 250оС,
t ионного источника = 230оС,
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном детектировании по ионам m/z 312 и 167.
Общее время анализа - 4 сут
Заявляемый способ 1. + 2. + 3. Обработка 4%-ным водным раствором гидроксида натрия, встряхивание в течение 10 мин 4. - 5. + 6. - 7. +, соотношение растворителей 2 : 1, соотношение экстракта и экстрагента 1 : 1, + 8. +, при 3 тыс. об. в мин в течение 15 мин, отделение нижнего органического слоя, его высушивание над безводным сульфатом натрия, фильтрование 9. + 10. + 11. +, при 65-70оС в течение 15-20 мин 12. - 13. + 14. +, 10 мл н-гексана 15. - 16. - 17. - 18. - 19. - 20. + 21. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка, l = 25 м, заполненная 5% SE-30 на хромосорбе,
t инжектора 350oС,
t термостата 140-320оС, 4о/мин,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 320оС,
t ионного источника = 320оС
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном ионном детектировании по иону m/z 312.
Заявляемый способ 1. + 2. + 3. Обработка 4%-ным водным раствором гидроксида натрия, встряхивание в течение 10 мин 4. - 5. + 6. - 7. +, соотношение растворителей 2 : 1, соотношение экстракта и экстрагента 1 : 1, + 8. +, при 3 тыс. об. в мин в течение 15 мин, отделение нижнего органического слоя, его высушивание над безводным сульфатом натрия, фильтрование 9. + 10. + 11. +, при 65-70оС в течение 15-20 мин 12. - 13. + 14. +, 10 мл н-гексана 15. - 16. - 17. - 18. - 19. - 20. + 21. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка, l = 25 м, заполненная 5% SE-30 на хромосорбе,
t инжектора 350oС,
t термостата 140-320оС, 4о/мин,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 320оС,
t ионного источника = 320оС
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном ионном детектировании по иону m/z 312.
Общее время анализа - 2 сут
Основными отличительными приемами заявленного способа/ обеспечивающими движение поставленной цели/ являются высушивание органического слоя над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования в течение 15-20 мин при 65-70оС.
Основными отличительными приемами заявленного способа/ обеспечивающими движение поставленной цели/ являются высушивание органического слоя над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования в течение 15-20 мин при 65-70оС.
Claims (1)
- СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА, включающий взятие пробы мокроты, автоклавирование пробы при 121oС в течение 60 мин при давлении 1,1 кр/см2, экстракцию хлороформ-метанольной смесью, взятой в соотношении 2 : 1, центрифугирование, упаривание супернатанта в токе азота, добавление к высушенному супернатанту 3%-ного метанольного раствора хлористого водорода и инкубацию полученной смеси при 80oС, повторное центрифугирование и упаривание супернатанта, растворение последнего в гексане с последующим определением туберкулостеариновой кислоты хроматографическим и масс-спектрометрическим методами, отличающийся тем, что, с целью ускорения и упрощения способа, органический слой отделяют после центрифугирования и перед упариванием его высушивают над безводным сульфатом натрия, а инкубацию проводят при 65 - 70oС в течение 15 - 20 мин.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (ru) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Способ диагностики туберкулеза |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (ru) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Способ диагностики туберкулеза |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2024021C1 true RU2024021C1 (ru) | 1994-11-30 |
Family
ID=21573359
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (ru) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Способ диагностики туберкулеза |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2024021C1 (ru) |
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7906277B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-03-15 | Corixa Corporation | Compound and methods for diagnosis of tuberculosis |
US7927610B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927609B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7973153B2 (en) | 2001-02-01 | 2011-07-05 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US7982025B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-07-19 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7989605B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-08-02 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US8110201B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8143386B2 (en) | 1999-04-07 | 2012-03-27 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses |
RU2832069C1 (ru) * | 2023-12-04 | 2024-12-18 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России) | Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур |
-
1991
- 1991-05-05 RU SU4934091 patent/RU2024021C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Y. Clin. Ynvestig., 1979, V.63, N 5, P.813-819. * |
Cited By (16)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7906277B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-03-15 | Corixa Corporation | Compound and methods for diagnosis of tuberculosis |
US8084042B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-12-27 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7927609B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7989605B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-08-02 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7935353B2 (en) | 1997-05-20 | 2011-05-03 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927611B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927610B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US8071747B2 (en) | 1998-12-30 | 2011-12-06 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8143386B2 (en) | 1999-04-07 | 2012-03-27 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses |
US7982025B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-07-19 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US8067016B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-11-29 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7976844B2 (en) | 2000-06-20 | 2011-07-12 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7973153B2 (en) | 2001-02-01 | 2011-07-05 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8110201B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8110200B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
RU2832069C1 (ru) * | 2023-12-04 | 2024-12-18 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России) | Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP2227692B1 (en) | Identification of pathogens in body fluids | |
EP2454377B2 (en) | Mass spectrometric diagnosis of septicemia | |
Odham et al. | Demonstration of tuberculostearic acid in sputum from patients with pulmonary tuberculosis by selected ion monitoring. | |
Larsson et al. | Diagnosis of pulmonary tuberculosis by selected-ion monitoring: improved analysis of tuberculostearate in sputum using negative-ion mass spectrometry | |
Tabor et al. | Rapid determination of dipicolinic acid in the spores of Clostridium species by gas-liquid chromatography | |
RU2024021C1 (ru) | Способ диагностики туберкулеза | |
Clark et al. | New fluorometric method for the determination of cortisol in serum | |
US20110086384A1 (en) | Identification of bacterial species and subspecies using lipids | |
US5059527A (en) | Detection of endotoxins of gram negative bacteria | |
Jenden et al. | Simultaneous microestimation of choline and acetylcholine by gas chromatography | |
Zezulak et al. | Simultaneous analysis of codeine, morphine, and heroin after B-glucuronidase hydrolysis | |
CN108865918A (zh) | 一种标记存活的革兰氏阳性细菌及其细胞壁的方法 | |
Wang et al. | Cell envelope of an iron-oxidizing bacterium: studies of lipopolysaccharide and peptidoglycan | |
Gilbart et al. | Carbohydrate profiling of bacteria by gas chromatography-mass spectrometry: chemical derivatization and analytical pyrolysis | |
Sud et al. | Detection of 3-hydroxy fatty acids at picogram levels in biologic specimens. A chemical method for the detection of Neisseria gonorrhoeae? | |
JP5265357B2 (ja) | マススペクトロメーターを用いた脂質抗原検出法 | |
Ziegler et al. | Hippurate hydrolysis as a taxonomic criterion in the genus Streptomyces (order Actinomycetales) | |
RU2093581C1 (ru) | Способ определения чистоты биомассы микобактерий | |
Odham et al. | Mass spectrometric determination of selected microbial constituents using fused silica and chiral glass capillary gas chromatography | |
RU2832069C1 (ru) | Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур | |
Harley et al. | Trace analysis of muramic acid in indoor air using an automated derivatization instrument and GC–MS2 or GC–MS3 | |
RU2067620C1 (ru) | Способ идентификации грибов рода candida в жидком биологическом субстрате | |
Drucker | Fast atom bombardment-mass spectrometry | |
Schweda et al. | Profiling LPS glycoforms of non-typeable Haemophilus influenzae by multiple-stage tandem mass spectrometry | |
Elmroth et al. | Detection of bacterial contamination in cultures of eucaryotic cells by gas chromatography–mass spectrometry |