[go: up one dir, main page]

RU2024021C1 - Способ диагностики туберкулеза - Google Patents

Способ диагностики туберкулеза Download PDF

Info

Publication number
RU2024021C1
RU2024021C1 SU4934091A RU2024021C1 RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1 SU 4934091 A SU4934091 A SU 4934091A RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
evaporation
minutes
chloroform
supernatant
extraction
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Т.И. Маякова
С.А. Плюснин
М.Г. Ковалева
Original Assignee
Научно-исследовательский институт хирургии Восточно-Сибирского филиала СО РАМН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт хирургии Восточно-Сибирского филиала СО РАМН filed Critical Научно-исследовательский институт хирургии Восточно-Сибирского филиала СО РАМН
Priority to SU4934091 priority Critical patent/RU2024021C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2024021C1 publication Critical patent/RU2024021C1/ru

Links

Landscapes

  • Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)

Abstract

Использование: медицина, пульмонология. Цель - сокращение времени определения и упрощение способа. Сущность изобретения: забор пробы мокроты, ее автоклавирование, экстракция хлороформ-метанольной смесью, упаривание, метилирование, растворение в гексене и последующее хроматомасс-спектрометрическое определение туберкулостеариановой кислоты. Отличие способа заключается в отделении органического слоя после экстракции хлороформ-метанольной смесью, в высушивании его над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования при температуре кипения метилирующей смеси в течение 15 - 20 мин.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к бактериологии, и может быть использовано для идентификации микробактерий туберкулеза (Mycobacterium tuberculosis).
Известны различные способы диагностики туберкулеза, включающие выявление микробактерий туберкулеза (МБТ) в патологическом материале.
Известен способ обнаружения МБТ путем прямой бактериоскопии (см. Перельман М. И. , Корякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Для этого на обезжиренное стекло наносят каплю физиораствора и мокроту больного, которые тщательно растирают до однородности. Высушивают, фиксируют спиртом и красят фуксином Циля-Нильсена. Препарат микроскопируют. МБТ окрашиваются в красный цвет, а окружающий фон - в синий.
Также известен и бактериологический способ диагностики туберкулеза, включающий посев исследуемого материалa на питательную среду Левенштейна-Йенсена. Культивирование проводят в течение 14-90 дней (см. Перельман М.И., Карякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Затем культуру пересевают на глицериновые среды, инкубируют с последующей обработкой кислотами и щелочами. В заключение проводят пробу на устойчивость - мазки опускают в растворы: 1 - серной кислоты, 2 - едкого калия (натрия), 3 - жавелевой воды. После чего мазки докрашивают и микроскопируют.
По наличию в микроскопической картине бесцветных продолговатых и морщинистых палочек микобактерий туберкулеза диагностируют туберкулез.
К недостаткам данных способов следует отнести низкую чувствительность методов и длительные сроки постановки диагноза, обусловленные культивированием бактерий.
Наиболее близкими по технической сущности к предлагаемому является способ диагностики туберкулеза путем обнаружения туберкулостеариновой кислоты, являющейся биомаркером микобактерий туберкулеза (J, Clin. Investig., v. 63, N 5, 1979, p. 813-819).
Известный способ осуществляют следующим образом.
2-4 мл мокроты больного обеззараживают автоклавированием (при 121оС в течение 60 мин при Р = 1,1 кр/см2), обрабатывают 5 мл 3%-ного водного раствора лаурилсульфата и 1%-ным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин. Полученную смесь центрифугируют при 3 тыс. оборотов в мин в течение 30 мин, рН раствора доводят серной кислотой до 7,0 и лиофилизируют. Затем образцы переносят в 2-миллилитровую стеклянную ампулу и экстрагируют в течение ночи смесью хлороформ - метанол (2 : 1, V/V) при комнатной температуре. После центрифугирования в течение 20 мин при 4000 об/мин супернатант переносят в новую ампулу и концентрируют досуха в токе азота. После чего приливают 1 мл 3%-ного метанольного раствора хлористого водорода и ампулу запаивают. Метанолиз проходит при 80оС в течение 20 ч, по окончании ампулу центрифугируют при 4000 об/мин 20 мин. Супернатант упаривают досуха в токе азота и добавляют 100 мл н-гексана. Полученную смесь обрабатывают в ультрасониковой бане 1 мин при 125 В, затем раствор анализируют методом тонкослойной хроматографии (ТСХ). Условия TCX: пластины приготавливают нанесением слоя 0,25 мм силикагеля (Silicagel Go F 254, Merсk A.G., Darmstadt, Germany). В качестве растворителя используют смесь н-гексана и диэтилового эфира (9 : 1). Через 30-40 мин пятно, соответствующее метиловому эфиру, соскабливают с пластины и экстрагируют этилацетатом. Перед инжекцией в газохроматографическую колонку образец был упарен досуха и растворен в гексане.
Образец снимали на приборе: масс-спектрометр (Varian Assaciatis, Instrument Dis, Palo Alto, Calif, MaT model 112), соединенный с газовым хроматографом (Varian. Associates, model 112).
Условия хроматографирования следующие: стеклянная колонка, вн. диаметр 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе W, HP 80/100 меш, длина колонки - 3 м. Температура инжектора - 270оС, температура печи - 230оС. Газ-носитель - гелий, его скорость - 20 мл/мин. Условия работы масс-спектрометра следующие. Температура сепаратора - 250оС, температура ионного источника - 230оС, энергия электронов 70 еВ. Измерение проводили при детектировании по одному иону, соответственно по 312 m/z (молекулярный ион) и по 167 m/z. По наличию в полученном масс-спектре характерного молекулярного иона туберкулостеариновой кислоты диагностируют туберкулез. Общее время анализа составляет 4 сут. К недостаткам данного способа следует отнести длительность и многоэтапность операций, предшествующих хромато-масс-спектрометрическому исследованию пробы.
Целью предлагаемого способа диагностики является сокращение времени определения и упрощение способа.
Поставленная цель достигается тем, что способ диагностики туберкулеза проводят путем забора пробы, ее автоклавирования, экстракции хлороформ-метанольной смесью, упаривания, метилирования, растворения в гексане и хромато-масс-спектрометрического определения туберкулостеариновой кислоты.
Сопоставительный анализ с прототипом показывает, что отличительными признаками заявляемого способа являются: отделение органического слоя после проведения экстракции, его высушивание над безводным сульфатом натрия и проведение метилирования при температуре кипения метилирующей смеси в течение 15-20 мин.
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию изобретения "новизна".
Сравнение заявляемого решения с другими техническими решениями показывает, что прием отделения органического слоя от водной фазы образца является широко используемым в органической химии, так же как и удаление следов воды из органического экстракта с помощью безводной соли Na2SO4.
Однако указанные приемы не использовались ранее для подготовки безводного образца к хромато-масс-спектрометрическому анализу. Введение данных приемов в заявленный способ позволило исключить технически сложный прием - лиофильную сушку биосубстрата и тем самым сократить общее время анализа на 4-6 ч.
Авторами заявляемого способа экспериментальным путем установлено, что в предлагаемом способе процесс метилирования происходит за 15-20 мин. Необходимым условием является проведение этой реакции при температуре кипения метилирующей смеси (t = 65-70оС) в колбе с обратным холодильником. Данный прием позволяет сократить время диагностики на сутки, поскольку в известном способе процесс метилирования идет в течение 20 ч (при t = 80оС).
Таким образом, авторами заявляемого способа диагностики установлено новое свойство анализируемой смеси - процесс метилирования происходит за 15-20 мин, что позволяет сделать вывод о соответствии технического решения критерию "существенные отличия".
Заявленный способ диагностики туберкулеза осуществляют следующим образом.
Для анализа забирают от 2 до 10 мг биосубстрата-мокроты, содержимого плевральной полости или дренажной жидкости. Биосубстрат автоклавируют при температуре 121оС в течение 60 мин, к нему добавляют 5 мл гидроксида натрия (4%), встряхивают 10 мин, нейтрализуют разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливают экстрагирующей смесью - хлороформ : метанол, взятых в соотношении 2 : 1. Соотношение биосубстрата и экстрагента составляет 1 : 1. Экстракцию проводят при комнатной температуре в течение 20 ч. Затем смесь центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин, отделяют нижний органический слой, который высушивают над Na2SO4(безводным). После чего экстракт отфильтровывают от Na2SO4 и упаривают досуха в токе азота. Остаток метилируют в 3%-ном растворе HCl в метаноле при температуре кипения 65-70оС в течение 15-20 мин. Затем раствор упаривают в токе азота, остаток растворяют в 10 мл гексана и анализируют на хромато-масс-спектрометре (ХМС) методом селективного ионного детектирования (SIM) при m/z 312 и записи полного масс-спектра метилата С19 кислоты. Основные фрагментарные ионы масс-спектра туберкулостеариновой (TbS) кислоты: (m/z) 312, 269, 199, 171, 167, 149, 141, 113.
ХМС-анализ выполняют на приборе хромато-масс-спектрометре фирмы LKB 20-91 с ЭВМ РДП1134. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка (l = 25) с неподвижной жидкой фазой SE-30; температура инжектора - 350оС; температура термостата - 140 ->> 320оС, 4'/мин; газ-носитель - Не, VHe - 20 мл/мин.
Условия снятия масс-спектра: температура сепаратора - 320оС; температура ионного источника - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еВ. Ионный ток записывали по одному иону - m/z 312, т.е. в режиме селективного ионного детектирования. Минимальная определяемая концентрация TbS кислоты в образце составляла 100 мг/мл. Общее время анализа занимало 2 сут.
П р и м е р 1. Взята на исследование мокрота от больного Г., поступившего в гнойное отделение центра хирургической инфекции с предварительным диагнозом - гангрена легкого (N истории болезни 5850, дата взятия анализа 20.12.90). 10 мл мокроты автоклавировали при 121оС 30 мин, Р = =1,1 кР/см2. К обеззараженному биосубстрату добавили 5 мл 4%-ного раствора NaOH, содержимое встряхивали в течение 10 мин, затем нейтрализовали разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над безводным Na2SO4 в течение 20 мин. Отфильтровывали экстракт от Na2SO4 и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором соляной кислоты в метаноле, приготовленном добавлением 5 мл хлористого ацетила к 100 мл сухого МеОН. Метилирование проводили десятью мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 15 мин. Метилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре фирмы IKB 2091 с ЭВМ РДП-1134 с использованием стеклянной капиллярной колонки l = 25 м с неподвижной жидкой фазой SE-30. Хроматографирование проводили при температуре 140-320оС, 4о/мин; газ-носитель Не; температура инжектора - 350оС; температура ионного источника - 320оС; температура сепаратора - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еV. Запись масс-спектра ТBS кислоты вели при максимальной интенсивности 1357. В результате проведенного анализа установлено присутствие туберкулостеариновой кислоты в образце.
П р и м е р 2. Проведен забор мокроты от больного С. с предварительным диагнозом двухсторонняя абсцедирующая пневмония (N истории болезни 1899). 10 мл мокроты автоклавировали (121оС, 30 мин, Р = 1,1 кр/см2) с добавлением к ней 5 мл 4%-ного водного раствора NaOH, содержимое встряхивали 10 мин, раствор нейтрализовали разбавленной H2SO4до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1, V/V) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над 15 г безводной NaSO4 в течение 20 мин. Экстракт отфильтровывали и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором HCl в метаноле. Метилирование проводили 10 мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 20 мин. Прометилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре (условия ХМС-анализа приведены выше). Запись масс-спектра в интервале выхода TbS кислоты проводили при интенсивности 2857. Туберкулостеариновой кислоты не обнаружено.
Из представленных материалов следует, что заявленный способ позволяет в 2 раза сократить общее время проведения анализа (2 сут вместе 4 по способу-прототипу) и значительно упростить его за счет исключения приемов лиофилизации. Для наглядного выявления различий сравниваемых технических решений приведен их сопоставительный анализ:
Известный способ 1. Взятие биопробы (мокрота) 2. Автоклавирование пробы при 121оС в течение 60 мин 3. Обработка 3%-ным водным раствором лаурилсульфата и 1% -ным водным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин 4. Центрифугирование при 3 тыс. об. в мин в течение 30 мин. 5. Доведение рН до 7,0 (с использованием серной кислоты) 6. Лиофилизация 7. Экстракция смесью хлороформ - метанол (1 : 1) в течение 20 ч 8. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 9. Концентрация в токе азота (досуха) 10. Добавление 1 мл 3%-ного метанольного раствора кислоты 11. Метанолиз при 80оС в течение 20 ч 12. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 13. Упаривание супернатанта в токе азота 14. Добавление 100 мл н-гексана 15. Обработка смеси в ультрасониковой бане в течение 1 мин при 125 В 16. Анализ методом тонкослойной хроматографии на силикагеле, элюент н-гексан - диэтиловый эфир (9 : 1) 17. Соскабливание пятна через 30-40 мин, соответствующего метиловому эфиру и экстрагирования его этилацетатом 18. Упаривание досуха 19. Растворение в гексане 20. Анализ на хромато-масс-спектрометре 21. Условия хроматографирования: стеклянная колонка, l = 3 м, внутренний d = 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе WHP 80/100 меш,
t инжектора = 270оС.
t термостата = 230оС,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 250оС,
t ионного источника = 230оС,
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном детектировании по ионам m/z 312 и 167.
Общее время анализа - 4 сут
Заявляемый способ 1. + 2. + 3. Обработка 4%-ным водным раствором гидроксида натрия, встряхивание в течение 10 мин 4. - 5. + 6. - 7. +, соотношение растворителей 2 : 1, соотношение экстракта и экстрагента 1 : 1, + 8. +, при 3 тыс. об. в мин в течение 15 мин, отделение нижнего органического слоя, его высушивание над безводным сульфатом натрия, фильтрование 9. + 10. + 11. +, при 65-70оС в течение 15-20 мин 12. - 13. + 14. +, 10 мл н-гексана 15. - 16. - 17. - 18. - 19. - 20. + 21. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка, l = 25 м, заполненная 5% SE-30 на хромосорбе,
t инжектора 350oС,
t термостата 140-320оС, 4о/мин,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 320оС,
t ионного источника = 320оС
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном ионном детектировании по иону m/z 312.
Общее время анализа - 2 сут
Основными отличительными приемами заявленного способа/ обеспечивающими движение поставленной цели/ являются высушивание органического слоя над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования в течение 15-20 мин при 65-70оС.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА, включающий взятие пробы мокроты, автоклавирование пробы при 121oС в течение 60 мин при давлении 1,1 кр/см2, экстракцию хлороформ-метанольной смесью, взятой в соотношении 2 : 1, центрифугирование, упаривание супернатанта в токе азота, добавление к высушенному супернатанту 3%-ного метанольного раствора хлористого водорода и инкубацию полученной смеси при 80oС, повторное центрифугирование и упаривание супернатанта, растворение последнего в гексане с последующим определением туберкулостеариновой кислоты хроматографическим и масс-спектрометрическим методами, отличающийся тем, что, с целью ускорения и упрощения способа, органический слой отделяют после центрифугирования и перед упариванием его высушивают над безводным сульфатом натрия, а инкубацию проводят при 65 - 70oС в течение 15 - 20 мин.
SU4934091 1991-05-05 1991-05-05 Способ диагностики туберкулеза RU2024021C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4934091 RU2024021C1 (ru) 1991-05-05 1991-05-05 Способ диагностики туберкулеза

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4934091 RU2024021C1 (ru) 1991-05-05 1991-05-05 Способ диагностики туберкулеза

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2024021C1 true RU2024021C1 (ru) 1994-11-30

Family

ID=21573359

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4934091 RU2024021C1 (ru) 1991-05-05 1991-05-05 Способ диагностики туберкулеза

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2024021C1 (ru)

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7906277B2 (en) 1995-09-01 2011-03-15 Corixa Corporation Compound and methods for diagnosis of tuberculosis
US7927610B2 (en) 1998-05-05 2011-04-19 Corixa Corporation Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis
US7927609B2 (en) 1995-09-01 2011-04-19 Corixa Corporation Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis
US7973153B2 (en) 2001-02-01 2011-07-05 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis
US7982025B2 (en) 1999-10-07 2011-07-19 Corixa Corporation Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis
US7989605B2 (en) 1995-09-01 2011-08-02 Corixa Corporation Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis
US8110201B2 (en) 2002-02-15 2012-02-07 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis
US8143386B2 (en) 1999-04-07 2012-03-27 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses
RU2832069C1 (ru) * 2023-12-04 2024-12-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России) Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Y. Clin. Ynvestig., 1979, V.63, N 5, P.813-819. *

Cited By (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7906277B2 (en) 1995-09-01 2011-03-15 Corixa Corporation Compound and methods for diagnosis of tuberculosis
US8084042B2 (en) 1995-09-01 2011-12-27 Corixa Corporation Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis
US7927609B2 (en) 1995-09-01 2011-04-19 Corixa Corporation Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis
US7989605B2 (en) 1995-09-01 2011-08-02 Corixa Corporation Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis
US7935353B2 (en) 1997-05-20 2011-05-03 Corixa Corporation Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis
US7927611B2 (en) 1998-05-05 2011-04-19 Corixa Corporation Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis
US7927610B2 (en) 1998-05-05 2011-04-19 Corixa Corporation Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis
US8071747B2 (en) 1998-12-30 2011-12-06 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis
US8143386B2 (en) 1999-04-07 2012-03-27 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses
US7982025B2 (en) 1999-10-07 2011-07-19 Corixa Corporation Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis
US8067016B2 (en) 1999-10-07 2011-11-29 Corixa Corporation Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis
US7976844B2 (en) 2000-06-20 2011-07-12 Corixa Corporation Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis
US7973153B2 (en) 2001-02-01 2011-07-05 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis
US8110201B2 (en) 2002-02-15 2012-02-07 Corixa Corporation Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis
US8110200B2 (en) 2002-02-15 2012-02-07 Corixa Corporation Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis
RU2832069C1 (ru) * 2023-12-04 2024-12-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России) Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2227692B1 (en) Identification of pathogens in body fluids
EP2454377B2 (en) Mass spectrometric diagnosis of septicemia
Odham et al. Demonstration of tuberculostearic acid in sputum from patients with pulmonary tuberculosis by selected ion monitoring.
Larsson et al. Diagnosis of pulmonary tuberculosis by selected-ion monitoring: improved analysis of tuberculostearate in sputum using negative-ion mass spectrometry
Tabor et al. Rapid determination of dipicolinic acid in the spores of Clostridium species by gas-liquid chromatography
RU2024021C1 (ru) Способ диагностики туберкулеза
Clark et al. New fluorometric method for the determination of cortisol in serum
US20110086384A1 (en) Identification of bacterial species and subspecies using lipids
US5059527A (en) Detection of endotoxins of gram negative bacteria
Jenden et al. Simultaneous microestimation of choline and acetylcholine by gas chromatography
Zezulak et al. Simultaneous analysis of codeine, morphine, and heroin after B-glucuronidase hydrolysis
CN108865918A (zh) 一种标记存活的革兰氏阳性细菌及其细胞壁的方法
Wang et al. Cell envelope of an iron-oxidizing bacterium: studies of lipopolysaccharide and peptidoglycan
Gilbart et al. Carbohydrate profiling of bacteria by gas chromatography-mass spectrometry: chemical derivatization and analytical pyrolysis
Sud et al. Detection of 3-hydroxy fatty acids at picogram levels in biologic specimens. A chemical method for the detection of Neisseria gonorrhoeae?
JP5265357B2 (ja) マススペクトロメーターを用いた脂質抗原検出法
Ziegler et al. Hippurate hydrolysis as a taxonomic criterion in the genus Streptomyces (order Actinomycetales)
RU2093581C1 (ru) Способ определения чистоты биомассы микобактерий
Odham et al. Mass spectrometric determination of selected microbial constituents using fused silica and chiral glass capillary gas chromatography
RU2832069C1 (ru) Способ пробоподготовки образцов для идентификации микобактерий из положительных гемокультур
Harley et al. Trace analysis of muramic acid in indoor air using an automated derivatization instrument and GC–MS2 or GC–MS3
RU2067620C1 (ru) Способ идентификации грибов рода candida в жидком биологическом субстрате
Drucker Fast atom bombardment-mass spectrometry
Schweda et al. Profiling LPS glycoforms of non-typeable Haemophilus influenzae by multiple-stage tandem mass spectrometry
Elmroth et al. Detection of bacterial contamination in cultures of eucaryotic cells by gas chromatography–mass spectrometry