NO841810L - Fremgangsmaate ved fremstilling av dextran-sakkarase - Google Patents
Fremgangsmaate ved fremstilling av dextran-sakkaraseInfo
- Publication number
- NO841810L NO841810L NO841810A NO841810A NO841810L NO 841810 L NO841810 L NO 841810L NO 841810 A NO841810 A NO 841810A NO 841810 A NO841810 A NO 841810A NO 841810 L NO841810 L NO 841810L
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- dextran
- medium
- phase
- sucrose
- enzyme
- Prior art date
Links
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 title claims description 42
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 30
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims description 5
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 28
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 28
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 22
- 238000000746 purification Methods 0.000 claims description 21
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 claims description 21
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 claims description 13
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 claims description 13
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 11
- 229920000570 polyether Polymers 0.000 claims description 10
- 239000004721 Polyphenylene oxide Substances 0.000 claims description 9
- 241000192130 Leuconostoc mesenteroides Species 0.000 claims description 7
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 6
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 6
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 5
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 4
- 238000000622 liquid--liquid extraction Methods 0.000 claims description 4
- 238000000638 solvent extraction Methods 0.000 claims description 4
- 230000007774 longterm Effects 0.000 claims description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims 1
- 229920000151 polyglycol Polymers 0.000 claims 1
- 239000010695 polyglycol Substances 0.000 claims 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 49
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 23
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 17
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 17
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 15
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 15
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 14
- 235000011073 invertase Nutrition 0.000 description 14
- 108010051210 beta-Fructofuranosidase Proteins 0.000 description 13
- 229930091371 Fructose Natural products 0.000 description 11
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 description 11
- 239000001573 invertase Substances 0.000 description 11
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 11
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 10
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 9
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 7
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 7
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 5
- 230000001523 saccharolytic effect Effects 0.000 description 5
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 4
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 4
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 3
- 108010042194 dextransucrase Proteins 0.000 description 3
- AIHDCSAXVMAMJH-GFBKWZILSA-N levan Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)OC[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@](CO)(CO[C@@H]2[C@H]([C@H](O)[C@@](O)(CO)O2)O)O1 AIHDCSAXVMAMJH-GFBKWZILSA-N 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 2
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000192132 Leuconostoc Species 0.000 description 2
- 229920002535 Polyethylene Glycol 1500 Polymers 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 238000005192 partition Methods 0.000 description 2
- -1 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 239000007974 sodium acetate buffer Substances 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 2
- VUYXVWGKCKTUMF-UHFFFAOYSA-N tetratriacontaethylene glycol monomethyl ether Chemical compound COCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO VUYXVWGKCKTUMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 2
- GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N trimethylamine Chemical compound CN(C)C GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 2
- WDMUXYQIMRDWRC-UHFFFAOYSA-N 2-hydroxy-3,4-dinitrobenzoic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=C([N+]([O-])=O)C([N+]([O-])=O)=C1O WDMUXYQIMRDWRC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100031126 6-phosphogluconolactonase Human genes 0.000 description 1
- 108010029731 6-phosphogluconolactonase Proteins 0.000 description 1
- 108010018962 Glucosephosphate Dehydrogenase Proteins 0.000 description 1
- 102000005548 Hexokinase Human genes 0.000 description 1
- 108700040460 Hexokinases Proteins 0.000 description 1
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 description 1
- 108010036940 Levansucrase Proteins 0.000 description 1
- XJLXINKUBYWONI-NNYOXOHSSA-O NADP(+) Chemical compound NC(=O)C1=CC=C[N+]([C@H]2[C@@H]([C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]3[C@H]([C@@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](O3)N3C4=NC=NC(N)=C4N=C3)O)O2)O)=C1 XJLXINKUBYWONI-NNYOXOHSSA-O 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 101710184309 Probable sucrose-6-phosphate hydrolase Proteins 0.000 description 1
- 241000194017 Streptococcus Species 0.000 description 1
- 102400000472 Sucrase Human genes 0.000 description 1
- 101710112652 Sucrose-6-phosphate hydrolase Proteins 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 241000385732 bacterium L Species 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 230000009229 glucose formation Effects 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 239000012510 hollow fiber Substances 0.000 description 1
- WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N hydroxyacetaldehyde Natural products OCC=O WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 description 1
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 1
- 238000003760 magnetic stirring Methods 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 1
- 125000000956 methoxy group Chemical group [H]C([H])([H])O* 0.000 description 1
- 238000001471 micro-filtration Methods 0.000 description 1
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 1
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 description 1
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000003208 petroleum Substances 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001451 polypropylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000012070 reactive reagent Substances 0.000 description 1
- 125000000185 sucrose group Chemical group 0.000 description 1
- 150000005846 sugar alcohols Polymers 0.000 description 1
- BDHFUVZGWQCTTF-UHFFFAOYSA-M sulfonate Chemical compound [O-]S(=O)=O BDHFUVZGWQCTTF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/10—Transferases (2.)
- C12N9/1048—Glycosyltransferases (2.4)
- C12N9/1051—Hexosyltransferases (2.4.1)
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/816—Enzyme separation or purification by solubility
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for samtidig rensning og konsentrasjon av et enzym bestående av dekstransakkarase fra supernatantfasen av kulturen av de enzymproduserende bakterier.
Dekstranene er glukosepolymerer som oppnås ved enzymatisk'transformasjon av sakkarose. Disse polysakkarider har for-skjellig industriell anvendelse, avhengig av deres molekylvekt. Som eksempler kan nevnes anvendelsen av høymolekylar-vekt-dekstraner i petroleumsindustri som viskositetsgiven.de middel, anvendelsen av dekstraner med gjennomsnittlig molekylvekt i næringsmiddelindustrien og av lavmolekylvekt-dekstraner i.den farmasøytiske industri.
Tallrike bakteriestammer som utgjør deler av Lactobacillus, Streptococcus eller Leuconostoc typer har en dekstran-sakkarase aktivitet. Blant disse har imidlertid stammen Leuconostoc Mesenteroides NRRL B 512 (F), som utskiller dekstrån-sakkarase-enzymet, når den .dyrkes i nærvær av sakkarose, spesielt interessante stabilitetsegenskaper, god produktivitet og ikke patogen karakter, hvilket har gjort det mulig å bruke den i en industriell skala. Videre gir dekstransakkarasen som. stammer fra denne bakter-iestamme et eneste svakt forgre-
. net lineært dekstran (.95 % al — > 6 glykoside bindinger) , som
er løselig i vann, kvaliteter som gjør den til et meget verdi-fult produkt i industriell skala.
Tidligere industrielle fremgangsmåter for enzymatisk syntese
av dekstraner,'hvori dekstran-sakkarase av Leuconostoc Mesenteroides B 512 (F) brukes, medfører imidlertid ulem<p>er.
Den industrielle prosess består fraktisk i å produsere dekstran;—sakkarase-enzymet i meget store fermenteringstanker. Såsnart enzymet er utskilt av bakterien L. Mesenteroides NRRL
B 512 (F), lite eller ikke renset, bringes den i kontakt med sitt substrat, sakkarose, og man får således produksjon av rått dekstran hvis syntesebetingelser.ikke effektivt kan kon-trolleres. Dette dekstran behandles deretter på forskjellige fysikalsk-kjemiske måter for isolering og rensning, men to-talutbyttet av reaksjonen blir således relativt lav.
Foreliggende oppfinnelse vedrører en økonomisk renseprosess for dekstran-sakkarase-enzymet fra Leuconostoc-Mesenteroides, som videre kan lett Integreres i en produksjonslinjeprosess for enzymet. Den derved erholdte høye produktivitet i forbindelse med en- enkelt og■bemerkelsesverdig effektiv renseteknikk, som. er gjenstand for foreliggende oppfinnelse, beretti-ger anvendelsen av denne enzymatiske fremstilling i industriell skala og tillater ytterligere,, ved en nøyaktig kontroll av syntesebetingelsene, oppnåelsen av forskjellige typer dekstraner innenfor det angitte bruksfe.lt.
Nye utviklinger av enzymatiske synteseprosesser har ført for-skere til å interessere seg for renseproblemene for enzymer. Tallrike renseteknikker er anvendt for å oppnå dette, og som eksempel kan nevnes filtrering og dens mikro- og ultra-fil-treringsutførelsesformer, sentrifugering, kromatografi, ut-felling, væske-væske-ekstraksjon, som nylig har vært gjenstand for utviklinger innbefattet fenomenet som er kjent som "fasefordeling". I denne forbindelse kan nevnes arbeidene til M.R. Kula (Applied Biochemistry and Bioengineering Vol. 2, s. 71-95 Academic Press 1977 og USP 4 144 130), som beskriver en renseteknikk for forskjellige enzymer som medfører faseforde-^-ling mellom to polymerer, glykolpolyetylen og dekstranet soin ved visse konsentrasjoner i vandig løsning blir uforenelige, og således frembringer to adskilte flytende faser, mellom.hvilke substansene som er tilstede i mediet fordeles som funksjon av deres løselighet eller deres affinitet til den ene eller den andre av de to faser under operasjonsbetingelsene.
Dyrkningsmediet.for stammen som produserer dekstran-sakkarase inneholder andre ekstra cellulære enzymer som det er viktig,
å kunne fjerne. Spesielt to sakkarolytiske.enzymer som er i stand til å anvende sakkarose utskilles av Leuconostoc Mesenteroides type stammer levan-sakkarase og invertase. Disse to enzymer er spesielt skadelige, for på den ene side reduserer de dekstranutbyttet., og på den annen side forhindrer de til-
fredsstillende kontroll av dekstranproduks jonen.' Disse to kontaminerende aktiviteter kan vises skjematisk som følger:
Nærværet av glukose viser en kontaminerende virkning; faktisk produserer en ren løsning av dekstran-sakkarase i nærvær av sakkarose ikke glukose i fri form. Analysen av den relative andel av glukose og fruktose som foretas under rensningen etter måling av dekstran-sakkarase-aktiviteten er således et kriterium på enzymets renhet.
Formålet for foreliggende oppfinnelse er å overvinne de tidligere ulemper ved å tilveiebringe.en virkningsfull, enkelt og økonomisk prosess for samtidig rensning, og konsentrering av dekstran-sakkarase som virker på en original måte ved væske-væske-ekstraks jon ved fasefordeling.
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for samtidig rensning og konsentrering av dekstran-sakkarase-enzymet fra dyrkningsmediet på sakkarose av Leuconostoc. Mesenteroides bakterier som danner det ekstra cellulære enzym, hvilket medium inneholder dekstran, hvori under et første trinn'en vandig løsning av en polyeter settes til mediet i en slik mengde at to ikke blandbare faser opptrer i mediet, og dette medium holdes under røring for å sikre intim og langvarig kontakt mellom de to polymerer og de biokjemiske substanser, og deretter i et andre trinn skilles den lavere dekstran-rike fase av mediet fra.den øvre pqlyeter-rike fase, idet den nedre fase utgjør et dekstran-sakkarase anriket enzympreparat.
Fremgangsmåten kommer til .uttrykk ved en separasjon i to faser av dyrkningsmediet: en tung dekstran-anriket fase som inneholder det konsen-
trerte og rensete dekstran-sakkarase-enzym med en forde- lingskoeffisient
nær null;
en lettere polyeter-rik fase som inneholder forurensninger, spesielt proteiner og sukre samt de kontaminerende enzymatiske aktiviteter, hvilken fase fjernes.
Som eksempel på anvendelige polyetere ved fremgangsmåten, iføl-ge oppfinnelsen kan nevnes:
polyetylenglykol (PEG)',
polypropylenglykol,
og deres derivater, slik som
metoksypolyetylenglykol,
polyetylenglykoltrimetylamin,
pOlyety lenglykolsulf onat, etc...
Den gjennomsnittlige molekylvekt til polyeteren som anvendes vil generelt ligge mellom 400 og 2 000. Denne molekylvekt vil velges som funksjon, av arten av det foreliggende dekstran i mediet.
Mengden av polyeter som tilsettes vil i alminnelighet være slik at utbyttet av mediet i polyalkoholen etter tilsetningen vil ligge mellom 1 og 15 vekt%. Det optimale utbytte vil bestemmes som funksjon av dekstraninnholdet i mediet.
Fremgangsmåten utføres i det vesentlige ved romtemperatur, dvs. ved en maksimumstemperatur på 30°C. Videre vil pH for me-, diet i alminnelighet ligge mellom 4,5 og 7.
Det vil være fordelaktig for å lette utførelsen av fremgangsmåten å forutfjerne cellene fra mediet, f.eks. ved sentrifu-. gering.
Fra arbeidene til M.R. Kula som er nevnt forut er vist at det var mulig å rense enzymer ved å gjøre bruk av fasefordelings-fenomenet. Imidlertid viste det seg tydelig at under rense prosessen fordeles enzymene mellom de to faser, men at den rensete enzymfraks jon bare oppnås fra den øverste PEG-fase, idet"den nedre dekstranfase hovedsakelig virket ved å opp-samle det cellulære avfall og forurensninger som var tilstede i mediet.
Nå har man funnet at ved fremgangsmåten ifølge foreliggende oppfinnelse kommer nesten alt dekstran-sakkarase-enzymet i den nedre dekstranfase, mens de andre kontaminerende enzymatiske aktiviteter fortrinnsvis går i den øvre polyeterfase. Den lavere dekstranfase kan også virke som en kilde for dekstran-sakkarase-enzymatiske preparater, og spesielt for-di denne rensning fører til en meget høy konsentrasjon., idet volumet til den nedre fase tilsvarer flere % av volumet til mediet .som underkastes fasefordelingen.
Selvfølgelig kan prosessen utføres i to eller flere trinn, under hvilke den nedre fase som stammer fra det foregående trinn vil underkastes en videre ekstraksjon ved fasefordeling under analogt virkende betingelser, og etter, om nød-vendig, lett fortynning for å lette utførelsen.
Denne renseprosess' i flere trinn kan utføres i serie i en væske-væske-ekstråksjonskolonne som virker i mots.trøm.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen er illustrert ved eksempler som er gitt nedenunder, hvilke skal forstås i lys av de følgende definisjoner.
Definisjon av enzymatiske aktiviteter
Ved å starte fra sakkerose, kan tre enzymatiske hovedreak-sjoner foregå:
G-F : sakkarose
G : glukose
F : fruktose..
Dekstran-sakkarasen frigjorde utelukkende fruktose. Levan-sakkarasen frigjør utelukkende glukose. Invertasen friajør en lik mengde fruktose og glukose.
Hvis en glukoseproduksjon observeres under måling av den sakkarolytiske aktivitet, stammer dette fra en kontamine-
rende aktivitet, invertase eller leva sakkarase. For klart å uttrykke resultatene tilskrives■imidlertid produksjonen av glukose en levan-sakkarase-aktivitet som er sterkt over-veiende. Derfor bestemmes levan-sakkarase-aktiviteten og dekstran-sakkarase-aktiviteten som opptrer i tabellene som følger: levan-sakkarase-aktivitet (ULS) : totalt frigjort
glukose dekstran-sakkarase-aktivitet (UDS) : totalt frigjort
fruktose
total sakkarolytisk aktivitet : fruktose + glukose.
Målemetoder
For å spesifikt fordele glukosen og fruktosen er en metode for enzymatisk titrering (heksokinase/ATP, glukose-6-fosfat dishydrogenase/NADP<+>, fosfogluko-isome-rase) blitt anvendt.
Den totale sakkarolytiske aktivitet måles ved titre-
ring av de samlete reduserende sukre (glukose + fruktose) ved en reakjon med DNS (dinitro-salicylsyre);
Summer, J.B. J. Biol. Chém. ;47 , 5 1921).
2^ MåIi!22_SY_PI2i§i?2e.£'
Lowry's metode er blitt anvendt [Lowry, O.H., Rose-
brough NM, Farr A.L. , og R.M. Randall, J.Biol.Chem. 193
(1951) 265-275].
Det foreliggende polyetylenglykol og oligosakkarider fjernes først fullstendig ved ultrafiltrering i en pa-tron av hule fibre (Amicon) ved en kutt-ut terskel på 100.000, og polymeren titreres deretter ved bruk av et antron-reaktivt reagens; Scott, T.A. og Melvin,
J E.H. (1953) Anal. Chem. 25, 1656.
Levanet titreres spesifikt ifølge den teknikk som er beskrevet av P. Perlot, Doctorate thesis, Engineer. Institut Na-tional des Sciences Apøliquées, Toulouse (1980). Det ble kontrollert at dekstraner ikke interfererte med denne teknikk.
Prinsipp for beregning av aktiviteten
•1 mg sakkarose (molekylvekt 342) frigjør 0,474.mg i form
av polymer (levan eller dekstran: molekylvekt av monomerde-len: 162), og 0,526 mg fritt sukker (fruktose eller glukose: molekylvekt 180).
Aktiviteten måles i enheter pr. ml løsning eller pr. mg proteiner. En enhet representerer overføringen av 1 mg sakkarose pr. time ved 30°C i natriumacetat-puffer 20 mM ved 5,2.
Produksjon av supernatant- fasen av kulturen
I en fermenteringskjeie dyrkes Leuconostoc Mesenteroides . NRRL B 512 (F) bakterier i nærvær av sakkarose. Under fermenteringen utskilles de sakkarolytiske enzymer og spesielt dekstran-sakkarase i mediet av bakteriene. Dekstran-sakkarase-enzymet syntetiserer dekstranet i mediet. Fermenteringen avbrytes så, de tilstedeværende celler fjernes ved sentrifugering og supernatant-fasen i kulturen oppsamles for å underkastes renseprosessen.
EKSEMPEL 1
I dette eksempel, behandles en supernatant fase av en kultur oppnådd som ovenfor angitt med et volum på 500 ml ved gradvis tilsetning av.175 ml av en vandig løsning av PEG 1500 på 50 % (vekt/ volum), idet mediets homogenitet sikres ved magnetrøring.
Deretter skilles det nedre dekstran-sjikt fra den øvre PEG fase. Fraksjonene av disse faser tas prøver av for analyse.' Så tas 2,7 ml dekstranfase ut og fortynnes til 45 ml med en natriumacetatpufferløsning 20 mM pH 5,2 og en andre separe-ring utføres ved fasefordeling ved å tilsette dertil 11,7 ml PEG løsning.
De erholdte resultater er sammensatt i de følgende tabeller.
Disse resultater (IA og IB) ble oppnådd etter det første trinn i prosessen. De viser nærvær av levaner i en betydelig mengde (35 %) i supernatantsjiktet fra fermenteringen, hvilket angir tilstedeværelse av levai-sakkarase i supernatantsjiktet..Videre går dette levan fortrinnsvis over i PEG fa- . sen (90 %), til forskjell fra dekstranet. De erholdte resultater er sammensatt i tabell IB som viser at enkie glukose-og' fruktosesukre fortrinnsvis går.i PEG fasen.
henholdsvis 0,84 for glukosen og 0,65 for fruktosen (sml. tabell 1C nedenunder).
En konsentrasjonseffekt vil man se ved å undersøke resultatene av tablene 1C da nesten hele dekst-ran-sakkaraseaktiviteten (90 %) gjenfinnes i et volum tilsvarende ca. 5 % av den opprinnelige løsningsvolum.
Videre observerer man at fasefordelingen som oppnås fra su-pernatentsjiktet av kulturen erkarakterisert vedat den gjenvinnes, i den nedre fase med bare 53 % dekstran tilstede i den- opprinnelige løsning, som imidlertid inneholder 90 % av dekstran-sakkaraseaktiviteten.
Resultatene som er sammenfattet i tabell ID viser at under den første fasefordeling går hoveddelen av dekstran-sakkaraseaktivitet i den nedre dekstranfase, mens levavsakkarasen fordeles likt mellom de to faser, idet fordelingskoeffi-sientene henholdsvis er 0,00253 for dekstran-sakkarase og 0,033 for levan-sakkar.asen. Under den andre adskillelse går. all dekstran-sakkaraseaktiviteten i dekstranfasen (forde-.lingskoeffisient~0).
E KSEMPEL 2
Dette eksempel skal illustrere rensningen av dekstransakkarase ved fasefordeling i to trinn dg dette foregår i nærvær av et tilsatt protein (bovinalbumen) for å studere dets inn-virkning på renseprosessen..Under det første trinn tilsettes 4144 mg bovinalbumen til 200 ml av et supernatantsjikt av kulturen. Supernatantsjiktet behandles deretter ifølge fremgangsmåten i to trinn beskrevet i eksempel 1. Under det første trinn settes 52 ml av en PEG 1500 løsning med 50 % vekt/volum. Under det andre trinn tas 6 ml av dekstranfasen fra det første trinn ut, og det fortynnes til 33 ml ved hjelp av pufferløsningen anvendt i eksempel 1, og fasefordelingen utføres ved tilsetning av 10,3 ml PEG. De oppnådde resultater er sammenfattet i tabell 2. De viser en konsentrasjon i dekstranfasen for den spesifikke dekstran-sakkaraseaktivitet til tross for nærværet av proteiner som fjernes fra dekstrånfasen i store mengder (ca. 90 %).
EKSEMPEL 3
I dette eksempel behandles ifølge fremgangsmåten, beskrevet
i eksempel 1, men bare omfattende ett trinn, 279 ml av et supernatant sjikt av kulturen som er tilsatt 170.000 eksogeninvertase-enheter gjennorn 89 ml PEG. Hensikten med tilsetning av invertase-enheter er å studere innflytelsen til nærvær av overskytende invertase på rensningens kvalitet.
Resultatene, er sammenfattet i tabell 3A. Det observeres at tilstedeværelsen av invertaseoverskudds-enheter på ingen må-te modifiserer rensningen av dekstran-sakkarasen i dekstranfasen, mere enn 97 % av invertase-enhetene går i den øvre PEG fase.
Utbyttene er angitt i tabell 3B, og divisjonskoeffisientene
som oppnås er henholdsvis 0,002 for dekstran-sakkarase og 1»37 for invertasen....
EKSEMPEL 4
I dette eksempel behandles 40 ml av en allerede renset deks-tran—sakkaraseløsning i et enkelt rensetrinn i nærvær av eksogeninvertase ved å tilsette mediet 13,5 ml PEG løsning.
De erholdte resultater er sammenfattet i tabell 4. Man vil
se, som i foregående eksempel 3, at ingen ytterligere deks-tran—sakkarase-aktivitet forblir i PEG fasen, mens hoved-
delen av. invertaseaktiviteten forblir i den øvre PEG fase.
EKSEMPEL 5
I dette eksempel behandles 150 ml av et supernatant sjikt
fra fermentering ifølge fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen,
men ved å underkaste det fem påfølgende fasefordelinger som på det kvantitative nivå er representativt for hva som kan oppnås i en ekstraksjonskolonne som drives kontinuerlig.
De erholdte resultater er sammenfattet i tabell 5A. Det kan ses.at praktisk talt all dekstran-sakkaraseaktivitet er for-blitt i dekstranfasen med en konsentrasjonskoefficient på
mere enn 20.
Videre er mere enn 75 % levan-sakkarase-enheter fjernet. Den spesifikke aktivitet er multiplisert mer enn 1000 ganger. Fordelingskoeffisienten for dekstran-sakkarasen er nær 0,002. Utbyttene er vist i tabell 5B..
Til slutt skal man merke seg at konsentrasjonen og rensnin-
gen utføres i et stabilt miljø som følger med en rask fjer-
ning av sakkaroseresten som stammer fra fermenteringen og således tillater avbrudd av syntesen av dekstranene i fra-
vær av substrat, og det er faktisk viktig å begrense deks-transkonsentrasjonen i enzymløsningen til et maksimum.
Claims (8)
1. Fremgangsmåte ved samtidig rensning og konsentrering av dekstran-sakkarasenzymet fra dyrkningsmediet på sakkarose av Leuconostoc Mesenteroides bakterier som produserer det ekstracellulære enzym, hvilket medium inneholder dekstran, karakterisert ved at det under det første trinn tilsettes en vandig løsning av en polyeter til mediet i en slik mengde at mediet danner to ikke-blandbare faser og dette medium holdes under røring for å sikre intim og langvarig kontakt mellom de to polymerer og de biokjemiske forbindelser, og i et andre trinn skilles så den lavere dekstran-rike fase av mediet fra den øvre polyeter-rike fase, idet den nedre fase utgjør et dekstrah-sakkarase-anriket enzympreparat.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at det som polyeter anvendes en polygly-kol med en molekylvekt mellom 400 og 20 000.
3. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 og 2, karakterisert ved at det anvendes en poly-etermengde i mediet som etter tilsetning gir 1 til 15 vekt%.
4. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 og 3, karakterisert ved at den utføres ved en temperatur under eller lik 30°G og en pH mellom 4,5 og 7.
5. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 til 4, karakterisert ved at dyrkningsmediet forut behandles for å fjerne cellene.
6. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 til 5, karakterisert ved at den utføres i flere påfølgende trinn, idet den behandlete løsning i hvert trinn utgjøres av dekstranfasen som oppsamles fra det foregående trinn.
7. Fremgangsmåte ifølge krav 6, karakterisert ved at den utføres kontinuerlig i væske-væske-ekstraksjonskolonne som virker motstrøms.
8. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 til 7, karakterisert ved at den anvendes for rensning av dekstran-sakkaraseenzymet fra Leuconostoc Mesenteroides NRRL B 512. (F) bakterier.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR8307650A FR2545501B1 (fr) | 1983-05-06 | 1983-05-06 | Procede de purification de la dextrane-saccharase |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO841810L true NO841810L (no) | 1984-11-07 |
Family
ID=9288678
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO841810A NO841810L (no) | 1983-05-06 | 1984-05-04 | Fremgangsmaate ved fremstilling av dextran-sakkarase |
Country Status (10)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4591563A (no) |
EP (1) | EP0125981B1 (no) |
JP (1) | JPS6091982A (no) |
BR (1) | BR8402101A (no) |
CA (1) | CA1213232A (no) |
DE (1) | DE3462609D1 (no) |
DK (1) | DK222984A (no) |
FR (1) | FR2545501B1 (no) |
IL (1) | IL71754A (no) |
NO (1) | NO841810L (no) |
Families Citing this family (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4728613A (en) * | 1985-09-04 | 1988-03-01 | Miles Laboratories, Inc. | Method for the recovery of extracellular enzymes from whole fermentation beer |
US5151358A (en) * | 1989-06-13 | 1992-09-29 | Genencor International, Inc. | Processes for the recovery of naturally produced chymosin |
US5139943A (en) * | 1989-06-13 | 1992-08-18 | Genencor International, Inc. | Processes for the recovery of microbially produced chymosin |
US5290474A (en) * | 1990-10-05 | 1994-03-01 | Genencor International, Inc. | Detergent composition for treating cotton-containing fabrics containing a surfactant and a cellulase composition containing endolucanase III from trichoderma ssp |
CA2093422C (en) * | 1990-10-05 | 2001-04-03 | DETERGENT COMPOSITIONS CONTAINING LOW CBH I CONTENT CELLULASE COMPOSITIONS | |
US5328841A (en) * | 1990-10-05 | 1994-07-12 | Genencor International, Inc. | Methods for isolating EG III cellulase component and EG III cellulase in polyethylene glycol using inorganic salt and polyethylene glycol |
GB2256869B (en) * | 1991-06-14 | 1995-07-19 | Mitsubishi Chem Ind | Process for preparing sucrose fatty acid esters |
JPH0668501U (ja) * | 1993-03-11 | 1994-09-27 | 聚上企業股▲ひん▼有限公司 | 滑り止めおよび爪先ガード機能付きスリッパ |
MXPA04011485A (es) * | 2002-05-21 | 2005-02-14 | Unilever Nv | Producto aireado congelado en un recipiente de aerosol. |
US20070108224A1 (en) * | 2003-11-25 | 2007-05-17 | Campbell Iain J | Method for dispensing a food product |
WO2006003134A1 (en) * | 2004-06-29 | 2006-01-12 | Ares Trading S.A. | Process for the purification of il-18 binding protein |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1589581A (en) * | 1976-04-14 | 1981-05-13 | Biotechnolog Forschung Gmbh | Process for the separation of enzymes |
GB2079290B (en) * | 1980-07-05 | 1984-05-16 | Fisons Ltd | Preparation and purification process |
US4508825A (en) * | 1983-03-30 | 1985-04-02 | Miles Laboratories, Inc. | Method for the separation of extracellular amylase and protease produced during the fermentation of enzyme producing microorganisms |
-
1983
- 1983-05-06 FR FR8307650A patent/FR2545501B1/fr not_active Expired
-
1984
- 1984-05-01 CA CA000453262A patent/CA1213232A/fr not_active Expired
- 1984-05-03 US US06/606,642 patent/US4591563A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-05-03 EP EP84400909A patent/EP0125981B1/fr not_active Expired
- 1984-05-03 DE DE8484400909T patent/DE3462609D1/de not_active Expired
- 1984-05-04 JP JP59088553A patent/JPS6091982A/ja active Pending
- 1984-05-04 NO NO841810A patent/NO841810L/no unknown
- 1984-05-04 DK DK222984A patent/DK222984A/da not_active Application Discontinuation
- 1984-05-04 IL IL71754A patent/IL71754A/xx unknown
- 1984-05-04 BR BR8402101A patent/BR8402101A/pt unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DK222984D0 (da) | 1984-05-04 |
FR2545501B1 (fr) | 1985-08-02 |
EP0125981A1 (fr) | 1984-11-21 |
EP0125981B1 (fr) | 1987-03-11 |
JPS6091982A (ja) | 1985-05-23 |
DK222984A (da) | 1984-11-07 |
FR2545501A1 (fr) | 1984-11-09 |
IL71754A0 (en) | 1984-09-30 |
US4591563A (en) | 1986-05-27 |
CA1213232A (fr) | 1986-10-28 |
DE3462609D1 (en) | 1987-04-16 |
IL71754A (en) | 1987-10-20 |
BR8402101A (pt) | 1984-12-11 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Grootwassink et al. | Non-specific β-fructofuranosidase (inulase) from Kluyveromyces fragilis: Batch and continous fermentation, simple recovery method and some industrial properties | |
EP0541676A1 (en) | Novel thermostable pullulanases | |
JP2002524080A (ja) | アミロスクラーゼをコードする核酸分子 | |
NO841810L (no) | Fremgangsmaate ved fremstilling av dextran-sakkarase | |
FR2504148A1 (fr) | Substance enzymatique deramifiante, procede pour sa preparation et utilisation de celle-ci | |
WO1999027124A9 (en) | Enzymatic starch saccharification including a membrane separation step | |
US4276379A (en) | Preparation of high fructose syrups from sucrose | |
de Nadra et al. | Polysaccharide production by Pediococcus pentosaceus from wine | |
Wang et al. | Improved detection of polygalacturonase activity due to Mucor piriformis with a modified dinitrosalicylic acid reagent | |
US5882520A (en) | Use of arabinogalactan in aqueous two phase extractions | |
Monsan et al. | [23] Dextran synthesis using immobilized Leuconostoc mesenteroides dextransucrase | |
JPS6013677B2 (ja) | シュクロ−スの酵素的トランスフルクトシレ−ション法 | |
JP4656620B2 (ja) | スクロースホスホリラーゼの調製法 | |
JPS63102678A (ja) | アミラーゼ酵素並びにその生成方法 | |
Van Oevelen et al. | Slime production by brewery strains of Pediococcus cerevisiae | |
JP5314955B2 (ja) | 新規微生物、イヌリナーゼ、イヌリン分解剤、イヌロオリゴ糖の製造方法及びイヌリナーゼの製造方法 | |
US4423150A (en) | Preparation of high fructose syrups from sucrose | |
de Pascale et al. | Recombinant thermophilic enzymes for trehalose and trehalosyl dextrins production | |
Loos et al. | Cell-wall-bound lytic activity in Chlorella fusca: function and characterization of an endo-mannanase | |
JPH10506524A (ja) | スルホロブス種由来の新規な耐酸耐熱性酵素 | |
Gottschalk | The mechanism of selective fermentation of d-fructose from invert sugar by Sauternes yeast | |
Ali et al. | Purification and characterization of a thermostable glucoamylase from a Myrothecium isolate | |
CN109182321A (zh) | 肝素黄杆菌肝素酶ⅰ的高效制备方法 | |
JPH11508127A (ja) | ラムノガラクツロナン▲ii▼を劣化させる酵素および微生物 | |
Matsuo et al. | Xylanase of Malbranchea pulchella var. sulfurea |