JPS62107796A - Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factor - Google Patents
Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factorInfo
- Publication number
- JPS62107796A JPS62107796A JP60249851A JP24985185A JPS62107796A JP S62107796 A JPS62107796 A JP S62107796A JP 60249851 A JP60249851 A JP 60249851A JP 24985185 A JP24985185 A JP 24985185A JP S62107796 A JPS62107796 A JP S62107796A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- human
- stem cell
- cells
- growth factor
- activity
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用性〕
本発明は、新規なヒト@粒球一屯球系m訓胞増殖因子の
製造法に関し、詳しくは、本発明は顆粒球−単球系造血
障害の治療に有用な新規な1告血因子を、自発増殖性を
賦与したヒトリンパ球N11胞の培養によってW造する
方法に関する。[Detailed Description of the Invention] [Industrial Applicability] The present invention relates to a novel method for producing human @granulocyte-monocyte cell growth factor. The present invention relates to a method for producing a novel hematopoietic factor useful for the treatment of hematopoietic disorders by culturing N11 human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation.
人間の血液構成細胞は、骨髄に存在する直球幹KB泡が
様々な特異的心血因子の作用を受けて増殖、分化し、血
液中へ生産、放出されることによって維持されている。Human blood constituent cells are maintained by the direct stem KB foam present in the bone marrow, which proliferates and differentiates under the action of various specific cardiac blood factors, and is produced and released into the blood.
幹細胞が、それ自身の欠陥又は薬物、展射線等による二
次的損傷を受けると、幹細胞の増殖が狙害されて、骨髄
での細胞産生能が低下する、いわゆる骨髄低形成状態と
なり、貧血、血小板減少症或いは顆粒球減少症等の障害
が出現することになる。再生不良性貧血、骨髄性白血病
或いは@癌剤等の薬剤投与後等にみられる顆粒球減少症
は、雪粒球系幹細胞の増@障害に起因するものと考えら
れている。When stem cells receive secondary damage from their own defects or from drugs, radiation, etc., stem cell proliferation is targeted and cell production capacity in the bone marrow decreases, resulting in a so-called bone marrow hypoplasia state, which can lead to anemia, Disorders such as thrombocytopenia or granulocytopenia will appear. Granulocytopenia, which occurs after administration of drugs such as aplastic anemia, myeloid leukemia, or cancer drugs, is thought to be caused by an increase in snow granulocyte stem cells.
近年、頓粒子$減少症の治療に、顆粒球−単球系幹細胞
の特異的な造血因子であるコロニー形成刺1攻因子〔コ
ロニー・スティミュレーテイング・ファクター(col
ony −stimulating factor )
、以下C5FとW1記する〕の適用が試みられ、その
有用性が証明されて来ている。このような特異的心血因
子を造血障害及びそれに起因する各種の疾患の治療へ応
用することは、幹細胞の輸血に相当する骨髄移植と相ま
って画期的な治昂法であると期待されている。In recent years, colony stimulating factor (colony stimulating factor), a specific hematopoietic factor for granulocytic-monocytic stem cells, has been used for the treatment of hypocytosis.
one-stimulating factor)
, hereinafter referred to as C5F and W1] has been tried and its usefulness has been proven. The application of such specific cardiac and blood factors to the treatment of hematopoietic disorders and various diseases caused by them is expected to be an epoch-making cure, in combination with bone marrow transplantation, which is equivalent to stem cell transfusion.
顆粒球−車球系幹W胞に対する特異的造血因子であるC
5Fは、その作用から顆粒球を産生させるG −C5F
1顆粒球及び小球を産生させるGM −C5F、ff
i球−マクロファージを産生させるM −C3F 1更
に顆粒球、小球、赤芽球及び巨核球を産生させるMul
ti −C5Fに分類されている。これまでヒトC5F
としては、人尿C3F及びある種のam細胞が産生する
C5F 、単球−マクロファージが産生ずるC3F 、
抗原刺激リンパ球が産生ずるC3F等いくつかが知られ
ている。C, a specific hematopoietic factor for granulocyte-carocyte stem W cells
5F is G-C5F, which produces granulocytes due to its action.
1 GM-C5F, ff that produces granulocytes and globules
M-C3F, which produces i-cell-macrophages; Mul, which also produces granulocytes, globules, erythroblasts, and megakaryocytes;
It is classified as ti-C5F. Until now, human C5F
Examples include human urine C3F, C5F produced by certain am cells, C3F produced by monocytes-macrophages,
Several types of C3F produced by antigen-stimulated lymphocytes are known.
従来、正常なヒト丁−リンパ球にC5Fを産生させる方
法としては、正常なヒトT−リンパ球を各種レクチンで
刺激する方法、及びIR菌菌体等の抗原で刺激する方法
(¥j開昭59−78122号公報)が知られている。Conventionally, methods for producing C5F in normal human T-lymphocytes include a method of stimulating normal human T-lymphocytes with various lectins, and a method of stimulating with antigens such as IR bacterial cells (Kaisho et al. 59-78122) is known.
しかし、正常なヒトT−リンパ球細胞による細胞増殖及
びcsp (主としてGM −csF)i生のために
レクチン又は抗原による刺激が必要であり、C5Fの大
量生産法としては欠点があった。However, stimulation with lectin or antigen is required for cell proliferation and CSP (mainly GM-csF) i production by normal human T-lymphocytes, and this method has drawbacks as a method for mass production of C5F.
本発明者らは、新たなヒトC3F材料の検索において、
正常なヒトリンパ球細胞を成人T−リンパ球日血病ウィ
ルス(以下、ATLVと略記することがある)と混合培
養すると、形質を転換し、多機のヒト顆粒球−a球系幹
細胞の特異的な置皿因子のコロニー形成刺激因子(C5
F)の活性を産生ずること、およびこのC5F活性の産
生した培養液の加熱をヒト血清アルブミン、牛血清アル
ブミン、ヒト血清または牛血溝などの存在下に行なうと
、産生じたC5F活性を保持しうることを見出し、これ
らの知見に基づいて本発明に到達した。In the search for new human C3F materials, the present inventors
When normal human lymphocytes are mixedly cultured with adult T-lymphocyte hematopoietic virus (hereinafter sometimes abbreviated as ATLV), their transformation occurs, resulting in the development of specific human granulocyte-A cell lineage stem cells. colony formation stimulating factor (C5)
F), and when the culture medium in which this C5F activity has been produced is heated in the presence of human serum albumin, bovine serum albumin, human serum, bovine blood, etc., the produced C5F activity can be maintained. The present invention has been achieved based on these findings.
本発明の目的は、ヒト顆粒球−小球系・幹細胞増殖因子
を大量に生産しつる方法を提供することにある。An object of the present invention is to provide a method for producing large quantities of human granulocyte-globocyte stem cell growth factors.
本発明のもう1つの目的は、cM−C5F活性をも有す
るヒト顆粒球−111球系幹細胞増殖因子を提供するこ
とにある。Another object of the present invention is to provide a human granulocyte-111 stem cell growth factor that also has cM-C5F activity.
本発明は、自発増殖性を賦与したヒトリンパ球細胞を細
胞培養用培地において@養して、ヒト顆粒球−111瑚
系幹細胞の増殖を促進する作用を有する物質を生産する
こと、この培地を加熱処理すること、およびヒト顆粒球
一単球系幹細胞の増殖を促進する作用を有する有効成分
を回収することからなる所属なヒト顆粒球−単球系幹細
胞増殖因子の製造法である。The present invention involves cultivating human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation in a cell culture medium to produce a substance that promotes the proliferation of human granulocyte-111 stem cells, and heating this medium. This is a method for producing human granulocyte-monocytic stem cell growth factor, which comprises treating the human granulocyte-monocytic stem cell growth factor and recovering an active ingredient having an effect of promoting the proliferation of human granulocyte-monocytic stem cells.
自発増殖性を賦与したヒトリンパ球細胞は、正常なヒト
リンパ球細胞を成人T−リンパ球白血病ウィルス感染細
胞と混合培養することによって得ることができ、加熱処
理は、ヒト血清アルブミン、牛血清アルブミン、ヒト血
清、牛血溝またはこれらの混合物の存在下において行な
うことができ、またこの加熱処理はpH6〜8および6
o±2℃において10〜15時間行なうことができ、さ
らにこれらの加熱処理は、1〜5%(f/V)のアルブ
ミンの存在下または5〜20%(v/V)の血清のg圧
下において行なうことができる。Human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation can be obtained by mixed culture of normal human lymphocytes with cells infected with adult T-lymphocyte leukemia virus, and heat treatment is performed using human serum albumin, bovine serum albumin, human This heat treatment can be carried out in the presence of serum, bovine blood or a mixture thereof, and the heat treatment is carried out at pH 6-8 and 6.
These heat treatments can be carried out for 10-15 hours at o±2°C, and these heat treatments can be carried out in the presence of 1-5% (f/V) albumin or under g pressure of 5-20% (v/V) serum. It can be done in
(1)自発増殖性を賦与した正常なヒトリンパ球細胞の
樹立
正常人の末梢血管の血液より正常なリンパ球を採取し、
予め+5000 RのXi照射を行なったATLV形質
転換細胞のMT−2i@(三好―夫ら:ネイチ7
(Nature ) : 第294巻第770〜77
15N (+98]年)〕およびこの正常なリンパ球を
各々5×10 個/りの割合で10%(v/V>牛胎児
血清を含むRPMr −1640培地に加え、96穴マ
イクロプレートにzoouJ/穴の割合で播種し、5%
(v/v)COの通気下の37℃において30日間培養
した。培養後、MT−2細胞により形質転換され、自発
増殖性を獲得して増殖した細胞の中から増殖性の高い細
胞を選別し、これを、10%(v/v)牛胎児血清を添
加したRPMI −1640培地へ移して、さらに前記
と同様にして培養した。培養後、培聴上澄中のC5F活
性をイーレ(rhre )らの方法Cジェイ・エヌ・イ
ーレら:ザ・ジャーナル・オブ・イミューノロジー(J
、N、 Ihre et al : The Jour
nal ofTmmunologY ) @ 131巻
第282〜287頁(1983年)〕により、マウス骨
髄細胞を用いて測定し、C3F活性の高い細胞株をさら
に選別した。(1) Establishment of normal human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation ability Normal lymphocytes are collected from peripheral blood of a normal person,
MT-2i of ATLV transformed cells pre-irradiated with +5000 R of Xi (Miyoshi-fu et al.: Neichi 7
(Nature): Volume 294, Nos. 770-77
15N (+98] year)] and these normal lymphocytes were added to RPMr-1640 medium containing fetal bovine serum at a rate of 5 Sow at the rate of holes, 5%
Cultured for 30 days at 37° C. under aeration of (v/v) CO. After culturing, cells with high proliferative properties were selected from among the cells that were transformed with MT-2 cells, acquired spontaneous proliferative properties, and proliferated, and 10% (v/v) fetal bovine serum was added to these cells. The cells were transferred to RPMI-1640 medium and further cultured in the same manner as above. After culturing, the C5F activity in the culture supernatant was measured using the method of Rhre et al.
, N., Ihre et al: The Jour
C3F activity was measured using mouse bone marrow cells, and cell lines with high C3F activity were further selected.
次にこの選別された細胞株をリミテイング・ダイリュー
シゴン(Limlting Dilution )法に
よりクローニングし、C5F産生能の高い形質転換T−
リンパ球細胞Q C1−1およびQCI−2を純粋に圀
立した。Next, this selected cell line was cloned by the limiting dilution method, and transformed T-cells with high C5F production ability were cloned.
Lymphoid cells QC1-1 and QCI-2 were isolated in pure form.
C3F産生能の高い形質転換T−リンパ球細胞のQ C
1−1およびQCI−2の樹立は、上記の方法の他に、
チェノ(Chen)らの方法〔プロシーディング・オブ
・ザ・ナシ3ナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(
Proceeding of theNational
Aeademy of 5ciences )第80
巻第7006〜7009真(1983年)〕の方法によ
り行なうことができ、これによって前記と同様に、口約
とする純粋な細胞株を取得することができる。QC of transformed T-lymphocytes with high C3F production ability
1-1 and QCI-2 can be established by, in addition to the above methods,
The method of Chen et al. [Proceedings of the National Academy of Sciences (
Proceeding of the National
Aeademy of 5 Sciences) No. 80
Vol. 7006-7009 Shin (1983)], and in the same manner as described above, a pure cell line can be obtained.
(2)ヒトm粒球−車球系幹細胞増殖因子の製造前記(
1)で辱た細胞を1〜5×10 個/dの割合で、ヒト
血清、牛血清または牛脂児迎春を1.0〜10%(v/
v)の濃度において含有する細胞培養用培地〔たとえば
RPMr −+640培池、SIF、M培地、α−培地
またはハム(Ham )培地等〕:こ接種し、炭酸ガス
の通気下、37°Cにおいて2〜7日間培養する。この
H胞は支持体吸着性かあり、ガラス、プラスチックスま
たはキャリアビーズ等に吸着して増殖するが、増殖する
と同時に、2壜のヒト顆粒球一単球系幹細胞の増殖を促
進する作用を何する物質を産生ずる1、培養終了後、培
地上澄を回収し、再度新たな培地を加えて培養する。こ
の培地交換を少なくとも5回以上行ない、培養液を回収
する。次に回収した培養液を500〜2500 Gにお
いて5分間遠心分離し、上澄液を孔径帆45〜3uの濾
過膜で纏懸し、′ML過した上澄r夜に対して、ヒト迎
春アルブミン、牛血清アルブミンを1〜5%(v/v)
の濃度において加えるか、または分子f!t10000
以上を排除する限外濾過膜を使用して、この培地上澄液
を濃縮し、最初に培地に加えたヒト血潰、牛血清または
牛胎児血清の濃度を5〜20%(V/v)に調整する。(2) Manufacture of human m-granulocyte-Kura-cell stem cell growth factor (
1) Add 1.0 to 10% (v/d) of human serum, bovine serum, or beef tallow to the cells exposed in step 1 at a rate of 1 to 5 x 10 cells/d.
Cell culture medium (e.g. RPMr −+640 medium, SIF, M medium, α-medium or Ham's medium, etc.) containing a concentration of v): inoculated with this and incubated at 37°C under aeration of carbon dioxide gas. Culture for 2-7 days. These H cells are adsorbed to supports and proliferate by adsorbing them to glass, plastics, carrier beads, etc., but at the same time they proliferate, what is the effect of promoting the proliferation of two bottles of human granulocytes and monocytic stem cells? 1. After culturing, collect the medium supernatant, add new medium and culture again. This medium exchange is performed at least 5 times, and the culture solution is collected. Next, the collected culture solution was centrifuged at 500 to 2500 G for 5 minutes, the supernatant was suspended with a filter membrane with a pore size of 45 to 3 μm, and the ML-filtered supernatant was treated with human Yingshun albumin. , bovine serum albumin 1-5% (v/v)
or the molecule f! t10000
Concentrate this medium supernatant using an ultrafiltration membrane to exclude more than 5-20% (v/v) human blood serum, bovine serum or fetal bovine serum that was initially added to the medium. Adjust to.
次いテpHヲ6−8 +、:、WIIし、60”(:前
後において10〜15時間加熱処理する。Next, the pH was adjusted to 6-8 +, :, WII, and heat treated for 10 to 15 hours at around 60" (:).
加熱処理された培養液の上澄は、ATLV感染の危険性
がなく、この培養液上澄を公知のイオン交換体クロマト
グラフィー、ゲル濾過または逆相クロマトグラフィー等
の精製法に付して、新規なヒト顆粒球一単球系幹細胞増
殖因子を高度に精製することができる。The heat-treated culture supernatant has no risk of ATLV infection, and the culture supernatant can be subjected to known purification methods such as ion-exchange chromatography, gel filtration, or reversed-phase chromatography. Human granulocyte-monocytic stem cell growth factor can be highly purified.
(3)ヒト顆粒球−単球系幹細胞増殖因子の生物学的活
性
(3−1)ヒト骨髄細胞に対するコロニー形成刺激作用
(C5F活性)
正常人志願者より骨髄細胞を採取し、実施例1で得られ
たヒト順粒球−車球系幹細胞増殖因子のGM −C5F
活性およびMulti −C5F活性をアール・シー・
アッシュ(R,C,Ash )らの方法〔アール・シー
・アッシュら:ブラツト(R−C0Ash et al
:n1ood ) m 58巻j’W 309−31
6頁(1981年)〕により0.9%メチルセルロース
、30%牛脂児血清を含むイスコブ(l5cove’
s )改変培地を使用して試験した。(3) Biological activity of human granulocyte-monocyte stem cell growth factor (3-1) Colony formation stimulating effect on human bone marrow cells (C5F activity) Bone marrow cells were collected from normal volunteers, and in Example 1 GM-C5F of the obtained human normal granulocyte-Kurumyu stem cell growth factor
activity and Multi-C5F activity by R.C.
The method of Ash et al.
:n1ood) m Volume 58j'W 309-31
6 (1981)] containing 0.9% methylcellulose and 30% tallow serum.
s) tested using modified media.
その結果をg+表に示す。なお公知のC5Fと比較する
ために、GM−C5Fとして0CT−細胞培養液〔以下
、GCT−CMと略記することがある、ギブコ(Gib
co )社製の市販品〕およびMulti−C5Fとし
てフィトヘマグルチニン(Phyt。The results are shown in the g+ table. In addition, in order to compare with known C5F, GM-C5F was prepared using 0CT-cell culture medium [hereinafter sometimes abbreviated as GCT-CM, Gibco Co., Ltd.
Co., Ltd. (commercial product)] and phytohemagglutinin (Phyt.
he+aagglutinin ) 刺R白血球培養液
(以下PHA −LCMと略記する)〔ニー・ワーンシ
ャフら:エクスペリメンタル・ヘマトロジー(A、Wa
hnschaffeet at : Experime
ntal nemato+ogy) 第12巻第655
〜659画(1984年)〕を使用した。he+aagglutinin) Stimulated R leukocyte culture medium (hereinafter abbreviated as PHA-LCM) [Nie Waanschaf et al.: Experimental Hematology (A, Wa
hnschaffeet at: Experience
ntal nemato+ogy) Volume 12, No. 655
~659 paintings (1984)] were used.
(以下余白)
この結果によると、実施例1の増殖因子は、ヒト骨髄細
胞に対してGM −CSF活件を示すが、Multi
−’C3F活性を示さなかった。(Margins below) According to these results, the growth factor of Example 1 shows GM-CSF activity against human bone marrow cells, but Multi
-'C3F activity was not shown.
(3−2)ヒト顆粒球−単球系幹細胞に対する増殖促進
作用
ヒト骨Vl細胞中の顆粒球−単球系幹細胞°(以下、C
FU −CMと略記することがある)数の及ぼす作用に
ついて、公知のGM −C3Fと比較するために次の試
験を行なった。(3-2) Growth-promoting effect on human granulocyte-monocytic stem cells Granulocyte-monocytic stem cells in human bone Vl cells (hereinafter referred to as C
The following test was conducted to compare the effect of the number (sometimes abbreviated as FU-CM) with the known GM-C3F.
正常人の志頭者の骨髄細胞を前記のアール・シー・アッ
シュ等の方法で非吸着骨髄細胞として、実施例1の増殖
因子およびGCT−細胞培養液をそれぞれIooo m
位/イ(後述のマウス骨ai@胞で定fit)ならびに
因子非添加(対照)の20%(v/v)牛脂(υ血清を
含むイスコブ(l5cove’ s )改変ダルベコ(
Dulbecco’ s )MEM培地(以下rMDM
培地と略記することがある)通気下、37°Cにおいて
培養した。培養開始から0.24.48および72時間
後に、それぞれの骨髄細胞を遠心洗浄し、細胞懸濁液を
得た。ヒト顆粒球−単球系幹細胞(CFU−GM)刺激
因子として、フィトヘマグルチニン刺激白血球培養液(
PHA −LCM ) 100041位(後述のマウ
ス骨髄細胞で定量)、20%牛脂児血清および0.3%
(v/V)の寒天を含むIMDM培地に、前記の細胞懸
濁液を10%(v/v)の1度において混和し、7.5
%COの通気下、37℃において14日間培養、した。The bone marrow cells of a normal human volunteer were used as non-adsorbed bone marrow cells by the method of R.C. Ash et al., and the growth factor and GCT-cell culture medium of Example 1 were added to Iooo m, respectively.
20% (v/v) beef tallow (l5cove's containing υ serum) and modified Dulbecco's (15% (v/v) with no factor added (control))
Dulbecco's) MEM medium (hereinafter referred to as rMDM)
(sometimes abbreviated as medium) was cultured at 37°C under aeration. At 0.24, 48 and 72 hours after the start of culture, each bone marrow cell was centrifugally washed to obtain a cell suspension. As a human granulocyte-monocyte stem cell (CFU-GM) stimulating factor, phytohemagglutinin-stimulated leukocyte culture medium (
PHA-LCM) 100041st (quantified using mouse bone marrow cells described below), 20% tallow serum and 0.3%
The above cell suspension was mixed at 10% (v/v) in IMDM medium containing (v/v) agar, and 7.5
The cells were cultured for 14 days at 37° C. under aeration of % CO.
培養後、50個以上の細胞からなる集塊をCFU −G
Mとして、骨髄細胞! X 10 個当りに含まれるC
FU−CM数をtt側した。After culturing, aggregates consisting of 50 or more cells were transformed into CFU-G.
As M, bone marrow cells! C included per 10 pieces
The number of FU-CMs was changed to the tt side.
その結果は第2表に示すとおりであった。The results were as shown in Table 2.
(以下余日)
第2喪 ヒト顆粒球−単球系幹細晧に対するこの結果に
よると、GM −C5FであるC、CT −CMおよび
対照では、CFU−CM数の増加はみられなかったが、
実施例1の増殖因子はCFU −CM数を増加する作用
を有することがわかった。(Remaining days below) Second death According to these results for human granulocyte-monocyte stem cells, no increase in the number of CFU-CM was observed in GM-C5F C, CT-CM, and control. ,
It was found that the growth factor of Example 1 had the effect of increasing the number of CFU-CM.
(3−3)マウス骨髄細胞に対するコロニー形成刺激作
用(C3F活性)
マウス骨髄細胞に対する(、M −C5Pおよび5lu
ltイーC5F活性をC5713L/6Nマウス骨髄細
附を用いたこと以外は前記のイーレらの方法により試験
した。(3-3) Colony formation stimulating effect (C3F activity) on mouse bone marrow cells (, M-C5P and 5lu
ltE C5F activity was tested by the method of Ehle et al. described above, except that C5713L/6N mouse bone marrow tissue was used.
また本発明の試験で使用した各種刺激因子の生物学的力
価を統一するために、各因子の力価をマウス骨髄細胞に
対するC5F力価として表わした。Furthermore, in order to unify the biological potency of the various stimulating factors used in the tests of the present invention, the potency of each factor was expressed as a C5F titer against mouse bone marrow cells.
すなわち、C5713L/6Nマウス骨髄細抱I×10
個/−を含む20%(v/v)牛胎児血清および0
.3%寒天而面マツコイ(McCoデ5)5A培地に、
各因子を混和し、7.5%CO通気下の37°Cにおい
て7日間培養し、形成された50個以上の細胞集塊をコ
ロニーとして計測し、1コロニーを1111位としてC
5Fの力価として表示した。That is, C5713L/6N mouse bone marrow cells I×10
20% (v/v) fetal bovine serum containing /- and 0
.. 3% agar and matsukoi (McCode 5) 5A medium,
Each factor was mixed and cultured at 37°C under 7.5% CO aeration for 7 days, and 50 or more cell aggregates formed were counted as colonies.
It was expressed as a titer of 5F.
マウス骨髄細胞に対するGM−C3Fとしては(、CT
−CM 、 Multi −C5Fとしては、WEH
I −3細胞@蕾液上澄〔以下WEHr −3−CMと
略記することもある、ジェイ・エヌ・イーレら:ザ・ジ
ャーナル・オブ・イミューノ0ジー(J、N、Ihre
etal : The Journal ot f+
++unology) 第129巻第2431〜243
6頁(1982年)〕を使用した。GM-C3F against mouse bone marrow cells (, CT
-CM, Multi-C5F is WEH
I-3 cells @ bud fluid supernatant [hereinafter sometimes abbreviated as WEHr-3-CM, J.N. Ihre et al.: The Journal of Immunology (J.N.Ihre.
etal: The Journal of f+
++unology) Volume 129 No. 2431-243
6 (1982)] was used.
本発明の増殖因子のマウス骨髄細胞に対するC5F活性
は第3表に示すとおりであった。The C5F activity of the growth factor of the present invention against mouse bone marrow cells was as shown in Table 3.
(3−4)マウスインターロイキン3依存性細胞に対す
る増殖促進作用
マウスインターロイキン3 (以下比−3と略記するこ
とがある)依存性細胞であるFDC−P2訓胞を用いて
、イーレらの方法〔ジェイ・イーレら:ザ・ジャーナル
・オブ・イミューノロジー(J、Ihre et at
: The Journal of [mmunol
ogy)第129巻第2431〜2436画(1982
年)〕により、放射能標識チミジン(H−Thymid
ine )取込み肴を測定し、宴席例Iのヒト項粒球−
m球系齢れB胞増殖因子のマウスインターロイキン3の
活性を試験した。(3-4) Growth promoting effect on mouse interleukin 3-dependent cells Using FDC-P2 cells, which are mouse interleukin 3 (hereinafter sometimes abbreviated as ratio-3) dependent cells, the method of Ehle et al. [J, Ihre et al.: The Journal of Immunology
: The Journal of [mmunol
ogy) Volume 129, No. 2431-2436 (1982
radiolabeled thymidine (H-Thymid)
ine) Measuring the uptake of the human nuchal granulocytes of banquet example I -
The activity of mouse interleukin 3, a growth factor for B cells in the m cell lineage, was tested.
その結果は第1図に示すとおりであった。The results were as shown in Figure 1.
第1図において、タテ軸は 11−チミジン取込み1を
示し、横軸は希釈倍数を対数で示し、(−・−)は対照
を、(−△−)はGCT −CM 。In FIG. 1, the vertical axis shows 11-thymidine incorporation 1, the horizontal axis shows the dilution factor in logarithm, (-·-) is the control, and (-Δ-) is GCT-CM.
(−[]−> は実施例1の増殖因子を、そして(−〇
−)はWEHI −3−CMをそれぞれ示す。(-[]-> indicates the growth factor of Example 1, and (-0-) indicates WEHI-3-CM.
実施例1の増殖因子はマウスインターロイキン3標品で
あるWEHT −3−CMとほぼ@J様のIL −3活
性を示し、FDC−P2細胞の増殖を促進した。The growth factor of Example 1 exhibited IL-3 activity similar to that of WEHT-3-CM, a mouse interleukin 3 preparation, and promoted proliferation of FDC-P2 cells.
一方、GM −C3F テあるGCT −CMはIL−
3活性を全く示さなかった。On the other hand, GM-C3F Teal GCT-CM is IL-
3 activity was not shown at all.
(4)ヒト顆粒球−m球系幹細胞増殖因子の理化学的性
質および熱安定性
(、i −1)陰イオン交換体クロマトグラム実施例1
の方法により得られた加熱処理培養上澄液を0.02
Mリン酸l1ik衝液(pH: 7.0)に平衡化させ
て、陰イオン交換体であるDEAE−セファロースカラ
ムクロマトグラフィーにかけ、C3F活性をマウス@髄
細胞でTL −3活性をFDC−P2細胞を用いて、そ
れぞれ前記の方法により測定した。(4) Physical and chemical properties and thermal stability of human granulocyte-mocyte stem cell growth factor (,i-1) Anion exchanger chromatogram Example 1
The heat-treated culture supernatant obtained by the method of
Equilibrated with M phosphate lik buffer (pH: 7.0) and subjected to column chromatography using DEAE-Sepharose, an anion exchanger, to measure C3F activity in mouse spinal cord cells and TL-3 activity in FDC-P2 cells. The measurements were performed using the methods described above.
その結果は第2図に示すとおりであった。The results were as shown in Figure 2.
第2図において左タテ軸は吸光度(−〇−で表わす)を
示し、石タテ軸はC5F活性(−ム−で表わす)および
IL −3活性(−・−)を示し、横軸はフラクション
番号を示す。In Figure 2, the left vertical axis shows the absorbance (represented by -〇-), the vertical axis shows C5F activity (represented by -mu-) and IL-3 activity (-・-), and the horizontal axis shows the fraction number. shows.
第2図によると、実施例1のヒト顆粒球−m球系幹細胞
増殖因子はDEAE−セファロースに非吸着の分画とし
て溶出され、C5F活性およびrL −3活性が完全に
一致していた。According to FIG. 2, the human granulocyte-mocyte stem cell growth factor of Example 1 was eluted as a fraction not adsorbed to DEAE-Sepharose, and the C5F activity and rL-3 activity were completely consistent.
(4−2)ゲル濾過クロマトグラム
前記のDEAE−セファロースに非吸着の分画として溶
出された実施例1のヒト顆粒球−m球系幹細胞増殖因子
を限外濾過膜a線装置(アミコン社製、PH−10’)
テalraLiC1TSK 30005W (東洋
ソーダ社製)高速液体ゲル濾過クロマトグラフィーにか
け、その分子量を測定した。(4-2) Gel filtration chromatogram The human granulocyte-mocyte stem cell growth factor of Example 1, which was eluted as a fraction not adsorbed to DEAE-Sepharose, was filtered using an ultrafiltration membrane A-ray device (manufactured by Amicon). , PH-10')
It was subjected to high performance liquid gel filtration chromatography using TELRALiC1TSK 30005W (manufactured by Toyo Soda Co., Ltd.), and its molecular weight was measured.
その結果は第3図に示すとおりであった。The results were as shown in Figure 3.
第3図において、左タテ軸は吸光度を示し、右タテ軸は
C5F活性(−0−で表わす)およびルー3活性(−×
−で表わす)を示し、そして演軸はフラクション番号を
示す。In Figure 3, the left vertical axis shows absorbance, and the right vertical axis shows C5F activity (represented by -0-) and Roux 3 activity (-×
-), and the axis shows the fraction number.
第3図によると、実施例1のヒト顆粒球−単球系幹細胞
増殖因子は分子量25000〜40000の範囲著呂さ
れた。According to FIG. 3, the human granulocyte-monocyte stem cell growth factor of Example 1 had a molecular weight ranging from 25,000 to 40,000.
(4−3)コンカナバリンA−セファロースクロマトグ
ラム
前記のゲル濾過クロマトグラフィーによって得た分子@
25000〜40000の分画を限外濾過膜(旭化成
社製、ミニモジュールNM −3)により濃縮し、o、
s M NaC11lls加帆02 Mリン酸緩衝f(
pHニア、2)と平衡させ、これをコンカナバリンA−
セファロースカラムクロマトグラフィーにかけた。(4-3) Concanavalin A-Sepharose chromatogram Molecule obtained by the above gel filtration chromatography @
The fraction of 25,000 to 40,000 was concentrated using an ultrafiltration membrane (manufactured by Asahi Kasei Corporation, Mini Module NM-3), and o.
s M NaC11lls Kaho02 M phosphate buffer f(
pH near, 2) and equilibrated with concanavalin A-
It was subjected to Sepharose column chromatography.
その結果は第4図に示すとおりであった。The results were as shown in FIG.
$4図において、左タテ軸は吸光度(−・−で表わす)
を示し、右タテ軸はC3F活性(−〇−で表わす)を示
し、横軸はフラクション番号を示す。In the $4 diagram, the left vertical axis is the absorbance (expressed as -・-)
The right vertical axis shows C3F activity (represented by -0-), and the horizontal axis shows the fraction number.
8g4図によると、実施例1の増M因子はコンカナバリ
ンA−セファロースに吸着し、0.15Mのα−メチル
マンノシド溶液で溶出された。According to Figure 8g4, the M-enhancing factor of Example 1 was adsorbed on concanavalin A-Sepharose and eluted with a 0.15M α-methylmannoside solution.
(4−4>熱安定性試験
実施例1の方法によって得られた培養上FIl液を0.
45μの濾i膜で濾過した後、該培養液上澄を60±2
℃において10時間加熱し、熱安定性および安定化剤の
効果について試験した。増殖因子の安定性は、前記と同
様に、マリ^骨髄細胞に対するCSF活性およびFDC
−P2皿胞に対するIL−3活性により測定した。(4-4> Thermal Stability Test The culture FIl solution obtained by the method of Example 1 was heated to 0.
After filtering through a 45μ membrane, the culture supernatant was filtered to 60±2
℃ for 10 hours and tested for thermal stability and the effect of stabilizers. Growth factor stability is determined by CSF activity and FDC activity against marrow bone marrow cells, as described above.
- Measured by IL-3 activity against P2 dish cells.
第4表はヒト血清アルブミンまtこは牛血清アルブミン
の添加による熱安定化効果を、非加熱の対照を100と
した場合の各試料の回収率で表わした試験の結果である
。Table 4 shows the results of a test in which the heat stabilizing effect of the addition of human serum albumin and bovine serum albumin was expressed as the recovery rate of each sample when the non-heated control was set as 100.
(以下余白)
第4表によると、培養液上澄(牛胎児血清1%、pHニ
ア、1)をそのまま60℃において10時間加熱処理す
ると、増殖因子の生物活性は約5096flE少するの
に対して、ヒト血清アルブミンまたは牛血溝アルブミン
を1.0〜5.0%(v/v)において添加すると、培
地のpHは6.4〜7.0に変化するが、加熱安定性が
増大し、この添加量ではほぼ70%以上の回収率を得る
ことができた。(Margins below) According to Table 4, when the culture supernatant (fetal bovine serum 1%, pH near 1) is heat-treated as it is at 60°C for 10 hours, the biological activity of growth factors decreases by about 5096 flE. Therefore, when human serum albumin or bovine groove albumin is added at 1.0-5.0% (v/v), the pH of the medium changes to 6.4-7.0, but the heat stability increases. With this addition amount, a recovery rate of approximately 70% or more could be obtained.
第5表はヒト血清または牛血清の添加による熱安定化効
果を前記と同様にして表わした結果である。Table 5 shows the results of the thermostabilizing effect of adding human serum or bovine serum in the same manner as above.
(以下余白)
第5表によると、培養液上澄(牛胎児血清1%、pHニ
ア、I)をそのまま60℃において10時間加熱処理す
ると、増殖因子の生物活性は約40%に減少するのに対
して、ヒト血清または牛血清を5.0〜20.0%(v
/v)において添加すると、70%以上の回収部を得る
ことができた。(Margins below) According to Table 5, if the culture supernatant (fetal bovine serum 1%, pH near I) is directly heat-treated at 60°C for 10 hours, the biological activity of growth factors decreases to about 40%. human serum or bovine serum at 5.0-20.0% (v
/v), a recovery of 70% or more could be obtained.
実施例I
ATLV形質転換T−リンパ球細胞Q C1−1を1O
%(V/v)牛胎児血清添加RPMI−1640@地に
お4/)て増殖し、増殖細胞を1%(v/v)牛胎児血
清添加RPMI −1640培地1000−に、5×1
0 個/−の割合で播種し、プラスチック培養器(ヌン
ク社製、330 X 2000.2段)に移し、7.5
%(v/v)Co 通気下の37℃において4日間培養
した。培養後、培地を集め、これに紫外線を照射し、得
られた培地を400Gにおいて20分間、4°Cにおい
て遠心分離した。得られた上澄液を0.45μの濾過膜
で濾過し、これにヒト血清アルブミン(シグマ社W)を
2.5%(Y/V)の濃度において無菌的に添加し、6
0℃±2°Cにおいて12時間加熱処理した。加熱処理
後、限外濾過袋fi(旭化成社製、ラボモジュールSI
P −1013) rratm、脱塩し、0.02 M
IJ ン酸1111ti’eト平衡化させた。次に該
緩衝液と平衡化されたDEAE−セファ0−ス力ラム(
2,5X 40 cm)に接触して蛋白を除き、ヒト顆
粒球−m球系幹細胞増殖因子を含む非吸着分画約400
−を回収した。ここに得られた非吸着分画のヒトIIa
球−単球系幹細胞増殖因子の活性はマウス骨髄細胞によ
るC5F活性値→こ換算して、1.8X1081位であ
った。Example I ATLV transformed T-lymphocyte cells Q C1-1 at 1O
% (V/v) fetal bovine serum supplemented in RPMI-1640@4/), and the proliferated cells were grown in RPMI-1640 medium 1000 supplemented with 1% (v/v) fetal bovine serum, 5×1.
The seeds were sown at a ratio of 0 cells/-, transferred to a plastic culture vessel (manufactured by Nunc, 330 x 2000.2 stages), and 7.5
% (v/v) Co 2 for 4 days at 37°C under aeration. After culturing, the medium was collected, irradiated with ultraviolet light, and the resulting medium was centrifuged at 400 G for 20 minutes at 4°C. The obtained supernatant was filtered through a 0.45μ filter membrane, and human serum albumin (Sigma W) was added aseptically at a concentration of 2.5% (Y/V).
Heat treatment was performed at 0°C±2°C for 12 hours. After heat treatment, ultrafiltration bag fi (manufactured by Asahi Kasei Corporation, Lab Module SI)
P-1013) rratm, desalted, 0.02 M
IJ acid 1111ti'e was equilibrated. A DEAE-Sepha0-strength column equilibrated with the buffer (
2.5 x 40 cm) to remove proteins, and the non-adsorbed fraction containing human granulocyte-mocyte stem cell growth factor (approximately 400
− was recovered. Human IIa of the non-adsorbed fraction obtained here
The activity of the globular-monocyte stem cell growth factor was calculated from the C5F activity value of mouse bone marrow cells to 1.8×1081.
実施例2
ATLV形質転換T−リンパ球細胞としてQ C1−2
を用いたこと以外は、実施例1と同様にして、増殖させ
た細胞を2.5%(v/v)牛脂児血m添加イーグルの
MEM i地に5×10@/mAの割合で播種し、実施
例1と同様にして、培養し、濾過して、上澄液を調製し
た。得られた上澄液を限外濾過装置(旭化成社製、ラボ
モジュールSIP −1013)で2@に1lll縮し
、60℃±2°Cにおいて15時間加熱処理した。次に
実施例1と同様に処理して、DEAE−セファロースカ
ラムにより除蛋白されたヒト顆粒球−m球系幹細胞増殖
因子を含む非吸着分画を回収した。この非吸着分画のヒ
ト顆粒球−S球系幹細胞の総活性は、マウスC5F活性
量として2.4 X +07jli位であった。Example 2 Q C1-2 as ATLV-transformed T-lymphocyte cells
The proliferated cells were seeded in the same manner as in Example 1, except that 2.5% (v/v) tallow blood m was added to Eagle's MEM i at a rate of 5 x 10 @/mA. The cells were cultured and filtered in the same manner as in Example 1 to prepare a supernatant. The obtained supernatant liquid was condensed to 1 lll by 2@ using an ultrafiltration device (manufactured by Asahi Kasei Co., Ltd., Lab Module SIP-1013), and heat-treated at 60° C.±2° C. for 15 hours. Next, the same treatment as in Example 1 was carried out to collect the non-adsorbed fraction containing human granulocyte-mocyte stem cell growth factor, which had been deproteinized using a DEAE-Sepharose column. The total activity of human granulocyte-S cell stem cells in this non-adsorbed fraction was 2.4 x +07jli in terms of mouse C5F activity.
(1)ヒト顆粒球−単球系幹細胞増殖因子を大量に生産
することができる。(1) Human granulocyte-monocyte stem cell growth factor can be produced in large quantities.
(2)本発明により生産される物質は、ヒトの[;M
−C5F活性および顆粒球−単球系幹細胞そのものの増
殖を促進する作用を有する。(2) The substance produced by the present invention is a human [;M
-Has the effect of promoting C5F activity and proliferation of granulocyte-monocytic stem cells themselves.
(3)本発明により生産される物質は、マウスの骨髄細
胞に対してC,M −C3F活性、Multi −C5
F活性およびマウスインターロイキン3活性を有する。(3) The substance produced by the present invention has C,M-C3F activity against mouse bone marrow cells, Multi-C5
It has F activity and mouse interleukin 3 activity.
第1図は、実施例1のヒト顆粒球−単球系幹細胞増殖因
子のマウスインターロイキン3依存性細胞に対する増殖
促進作用を示す図表、第2図は、実施例1の加熱処理培
養上澄液のDEAE−セファロースカラムクロマトグラ
フィーによる分離の結果を示す図表、第3図は、実施例
1のヒト顆粒球−m球系幹細胞増殖因子の高速液体ゲル
濾過クロマトグラフィーによる分子量測定の結果を示す
図表、および第4図は、実施例1のヒト顆粒球−m球系
幹細胞増殖因子のコンカナバリンA−セファロースクロ
マトグラフィーの結果を示す図表である。
出頭人 森永乳業株式会社FIG. 1 is a diagram showing the proliferation-promoting effect of the human granulocyte-monocyte stem cell growth factor of Example 1 on mouse interleukin 3-dependent cells, and FIG. 2 is the heat-treated culture supernatant of Example 1. FIG. 3 is a chart showing the results of molecular weight measurement by high performance liquid gel filtration chromatography of the human granulocyte-mocyte stem cell growth factor of Example 1, and FIG. 4 is a chart showing the results of concanavalin A-Sepharose chromatography of the human granulocyte-mocyte stem cell growth factor of Example 1. Applicant: Morinaga Milk Industry Co., Ltd.
Claims (5)
養用培地において培養して、ヒト顆粒球一単球系幹細胞
の増殖を促進する作用を有する物質を生産すること、こ
の培地を加熱処理すること、およびヒト顆粒球一単球系
幹細胞の増殖を促進する作用を有する有効成分を回収す
ることを特徴とする新規なヒト顆粒球一単球系幹細胞増
殖因子の製造法。(1) Cultivating human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation in a cell culture medium to produce a substance that promotes the proliferation of human granulocyte-monocytic stem cells, and heat-treating this medium. 1. A novel method for producing human granulocyte-monocytic stem cell growth factor, which comprises recovering an active ingredient having an action of promoting proliferation of human granulocyte-monocytic stem cells.
なヒトリンパ球細胞を成人T−リンパ球白血病ウィルス
感染細胞と混合培養することにより得られたものである
ことを特徴とする特許請求の範囲第1項に記載の新規な
ヒト顆粒球一単球系幹細胞増殖因子の製造法。(2) The scope of the patent claim, characterized in that the human lymphocytes endowed with spontaneous proliferation are obtained by culturing normal human lymphocytes in combination with adult T-lymphocyte leukemia virus-infected cells. 2. A method for producing the novel human granulocyte-monocytic stem cell growth factor according to item 1.
ミン、ヒト血清、牛血清およびこれらの混合物からなる
群より選択される物質の存在下のpH6〜8および60
±2℃において10〜15時間行なわれることを特徴と
する特許請求の範囲第1項または第2項に記載の新規な
ヒト顆粒球一単球系幹細胞増殖因子の製造法。(3) The heat treatment is performed at pH 6 to 8 and 60 in the presence of a substance selected from the group consisting of human serum albumin, bovine serum albumin, human serum, bovine serum and mixtures thereof.
3. The novel method for producing human granulocyte-monocytic stem cell growth factor according to claim 1 or 2, which is carried out at ±2° C. for 10 to 15 hours.
存在下において行なわれることを特徴とする特許請求の
範囲第1項ないし第3項のいずれかに記載の新規なヒト
顆粒球一単球系幹細胞増殖因子の製造法。(4) The novel human granule according to any one of claims 1 to 3, wherein the heat treatment is performed in the presence of 1 to 5% (w/v) albumin. A method for producing monocytic stem cell growth factor.
下において行なわれることを特徴とする特許請求の範囲
第1項ないし第4項のいずれかに記載の新規なヒト顆粒
球一単球系幹細胞増殖因子の製造法。(5) The novel human granule according to any one of claims 1 to 4, wherein the heat treatment is performed in the presence of 5 to 20% (v/v) serum. A method for producing monocytic stem cell growth factor.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60249851A JPS62107796A (en) | 1985-11-07 | 1985-11-07 | Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factor |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60249851A JPS62107796A (en) | 1985-11-07 | 1985-11-07 | Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factor |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62107796A true JPS62107796A (en) | 1987-05-19 |
| JPH0552192B2 JPH0552192B2 (en) | 1993-08-04 |
Family
ID=17199128
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60249851A Granted JPS62107796A (en) | 1985-11-07 | 1985-11-07 | Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factor |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62107796A (en) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2001090315A3 (en) * | 2000-05-25 | 2002-08-01 | Novaneuron Inc | Production of neurons from stem cells |
| US6852313B1 (en) | 1989-10-16 | 2005-02-08 | Amgen Inc. | Method of stimulating growth of melanocyte cells by administering stem cell factor |
| US7144731B2 (en) | 1989-10-16 | 2006-12-05 | Amgen Inc. | SCF antibody compositions and methods of using the same |
-
1985
- 1985-11-07 JP JP60249851A patent/JPS62107796A/en active Granted
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6852313B1 (en) | 1989-10-16 | 2005-02-08 | Amgen Inc. | Method of stimulating growth of melanocyte cells by administering stem cell factor |
| US6967029B1 (en) | 1989-10-16 | 2005-11-22 | Amgen Inc. | Method for increasing hematopoietic progenitor cells by stem cell factor |
| US7144731B2 (en) | 1989-10-16 | 2006-12-05 | Amgen Inc. | SCF antibody compositions and methods of using the same |
| WO2001090315A3 (en) * | 2000-05-25 | 2002-08-01 | Novaneuron Inc | Production of neurons from stem cells |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0552192B2 (en) | 1993-08-04 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0118915B1 (en) | Human cultured cell line | |
| US4473647A (en) | Tissue culture medium | |
| CN112662626A (en) | Method for co-culturing natural killer cells by umbilical cord mesenchymal stem cells | |
| US4100022A (en) | Process for preparing a curing agent for myelogenic leukemia | |
| EP0048471B1 (en) | Lymphoblastoid cell lines capable of continuously and spontaneously producing interferon, process for preparing the same, and process for the human interferon production by the same | |
| Hooper et al. | Lack of natural killer cell activity in hairy cell leukemia patients and partial restoration with interleukin‐2 | |
| JPS62107796A (en) | Production of novel human granulocyte-monocyte stem cell proliferation factor | |
| Matsuo et al. | Production and purification of human leukocyte interferon | |
| JPS63126897A (en) | Immunosuppressive factor | |
| EP0048283A1 (en) | Virus-inhibiting substance and process for preparing the same | |
| JPH05505093A (en) | LAK cell production and proliferation method | |
| JPH0533206B2 (en) | ||
| JPS60169424A (en) | Novel human b cell differentiation factor, its preparation and its use | |
| JPH0154991B2 (en) | ||
| JPS6030656B2 (en) | Method for producing human T cell growth factor | |
| JPS5816687A (en) | Preparation of lymphotoxin | |
| JPS62278979A (en) | Culture of animal cell | |
| AU8338082A (en) | Tissue culture medium | |
| JPS6030655B2 (en) | Method for producing CSF using CSF-producing tumor transplantation method | |
| JPS5815921A (en) | Preventing agent and remedy for lymphotoxin -sensitive disease | |
| JPS6267026A (en) | Novel lymphokine iii and production and use thereof | |
| JPS62123126A (en) | Cell dna synthesis inhibitory factor | |
| JPS6238325B2 (en) | ||
| JPH02227089A (en) | Marrow cell differentiation and proliferation factor, cell producing the same and production thereof | |
| JPS5836385A (en) | Obtaining method of cellular strain for producing interferon continuously |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |