JPS6150925A - 抗原または抗体の精製方法 - Google Patents
抗原または抗体の精製方法Info
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- JPS6150925A JPS6150925A JP59170354A JP17035484A JPS6150925A JP S6150925 A JPS6150925 A JP S6150925A JP 59170354 A JP59170354 A JP 59170354A JP 17035484 A JP17035484 A JP 17035484A JP S6150925 A JPS6150925 A JP S6150925A
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は抗体または抗原を結合しり膏体を用いたアフィ
ニティークロマト法による抗原、抗体の精製方法に関す
るものであり、特にインターフェロンの精製に適した方
法に関するものである。
ニティークロマト法による抗原、抗体の精製方法に関す
るものであり、特にインターフェロンの精製に適した方
法に関するものである。
細胞がウィルス等の刺激によってつくり出すインターフ
ェロンは、抗ウィルス作用、抗tie作用など多面的は
生物活性をもち、B型肝炎、岬 ヘル≠ス、インフルエンザ等のウィルス性疾患治療薬ま
たは予防薬として、さらに脳腫瘍、骨肉腫、白血病その
他の抗ガン剤としても期待されている。
ェロンは、抗ウィルス作用、抗tie作用など多面的は
生物活性をもち、B型肝炎、岬 ヘル≠ス、インフルエンザ等のウィルス性疾患治療薬ま
たは予防薬として、さらに脳腫瘍、骨肉腫、白血病その
他の抗ガン剤としても期待されている。
インターフェロンにはα、βおよびγと三種類知られて
おり、たとえば、ヒトインターフェロンαはヒト白血球
細胞によって産生されるインターフェロンに代表され、
ヒトインターフェロンβはヒト2倍体線維芽細胞によっ
て産生されるインターフェロン(ヒトフィブロプラスト
インターフェロン)に代表される。
おり、たとえば、ヒトインターフェロンαはヒト白血球
細胞によって産生されるインターフェロンに代表され、
ヒトインターフェロンβはヒト2倍体線維芽細胞によっ
て産生されるインターフェロン(ヒトフィブロプラスト
インターフェロン)に代表される。
またヒトインターフェロンγはTリンペ球細胞によって
産生されるインターフェロンである。
産生されるインターフェロンである。
これらインターフェロンの精製には多(アフィニティー
クロスト法が用いられているが、なかでも抗体を結合さ
せた不溶性担体(以下、抗体結合担体と略す)を用いる
抗体クロマト法はその特異性、有用性の点で特にすぐれ
た操作法である。
クロスト法が用いられているが、なかでも抗体を結合さ
せた不溶性担体(以下、抗体結合担体と略す)を用いる
抗体クロマト法はその特異性、有用性の点で特にすぐれ
た操作法である。
ところがインターフェロンは一般的な蛋白質に比べ疎水
性が高く、抗体カラムクロマト操作の際、疎水結合によ
るカラム中の抗体あるいは不溶性担体等との相互作用で
非特異的な吸着を起こしやすく、通常の抗体カラムクロ
マト操作が困難な場合が多い。
性が高く、抗体カラムクロマト操作の際、疎水結合によ
るカラム中の抗体あるいは不溶性担体等との相互作用で
非特異的な吸着を起こしやすく、通常の抗体カラムクロ
マト操作が困難な場合が多い。
また近年、遺伝子組換え技術の発達により、インターフ
ェロン遺伝子を大腸菌、酵母などの微生物あるいは哺乳
動物細胞に導入し、天然インターフェロンとは異なる産
生法による遺伝子組換え型インターフェロンの産生が可
能となったが、このインターフェロンはvj鎖の欠除な
どにより天然型インターフェロンに比べ疎水性がより高
いと考えられる。
ェロン遺伝子を大腸菌、酵母などの微生物あるいは哺乳
動物細胞に導入し、天然インターフェロンとは異なる産
生法による遺伝子組換え型インターフェロンの産生が可
能となったが、このインターフェロンはvj鎖の欠除な
どにより天然型インターフェロンに比べ疎水性がより高
いと考えられる。
従って、抗体カラム操作の上ではより顕著に非特異的吸
着が起こりやすいと言える。
着が起こりやすいと言える。
このように、疎水性の高い蛋白質を抗体結合担体を用い
て精製するには、その溶出法を十分考慮しなければなら
ず、少なくとも疎水結合による相互作用を減少させるこ
とにより回収率は高められる。
て精製するには、その溶出法を十分考慮しなければなら
ず、少なくとも疎水結合による相互作用を減少させるこ
とにより回収率は高められる。
抗体結合担体によるインターフェロン精製法で有効な溶
出法として知られている方法にOkamuraらによる
酢酸溶出剤(Biochemistry旦、 3830
1980)) 、およびNovick らによるクエ
ン酸緩衝液の溶出剤(J、gen、Virol、 69
.905(1983) )等の酸性溶出剤による方法が
知られている。
出法として知られている方法にOkamuraらによる
酢酸溶出剤(Biochemistry旦、 3830
1980)) 、およびNovick らによるクエ
ン酸緩衝液の溶出剤(J、gen、Virol、 69
.905(1983) )等の酸性溶出剤による方法が
知られている。
しかし、いずれも高収率でしかも安定なインターフェロ
ンが得られるとは限らず、効率の良い精製方法とは言え
ない。
ンが得られるとは限らず、効率の良い精製方法とは言え
ない。
この他抗体結合担体を用いたアフィニティークロマj・
法によるインターフェロン精製の実施例には単純な酸性
緩衝液だけでは高収率が得られず、高濃度の塩化ナトリ
ウム(Maeyer GuigA、−ト a#、d Nature 27L 622(1978)
)、エチレングリコールよグリセリンのような多価アル
コール(Secleer and Burke、 Na
ture 285.446(1980)、 Yoneh
ara eL al、 J、Biol、Ch會m
、256. 3770(1981)) 、あるいはポ
リオキシエチレンパラオクチルフェニルエーテル(トリ
トンX−100)のような非イオン性界面活性剤(St
aehelin et al、 J、Biol、ch針
、」剋、 9750(1981))の添加が試みられて
いるが、これらの回収剤はいずれもインターフェロンを
不安定にするため好ましくない。
法によるインターフェロン精製の実施例には単純な酸性
緩衝液だけでは高収率が得られず、高濃度の塩化ナトリ
ウム(Maeyer GuigA、−ト a#、d Nature 27L 622(1978)
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コール(Secleer and Burke、 Na
ture 285.446(1980)、 Yoneh
ara eL al、 J、Biol、Ch會m
、256. 3770(1981)) 、あるいはポ
リオキシエチレンパラオクチルフェニルエーテル(トリ
トンX−100)のような非イオン性界面活性剤(St
aehelin et al、 J、Biol、ch針
、」剋、 9750(1981))の添加が試みられて
いるが、これらの回収剤はいずれもインターフェロンを
不安定にするため好ましくない。
本発明の目的は、高純度でかつ安定性の高い抗原、抗体
(特にインターフェロン)を高収率で得ることにある。
(特にインターフェロン)を高収率で得ることにある。
抗体または抗原を結合させた不溶性担体に接触させ、該
抗原または抗体を吸着させた後、イオン強度0.05以
下、pH1,5〜3.0の酸を用いて該抗原または抗体
を回収することを特徴とする抗原または抗体の精製方法
を提供するものである。
抗原または抗体を吸着させた後、イオン強度0.05以
下、pH1,5〜3.0の酸を用いて該抗原または抗体
を回収することを特徴とする抗原または抗体の精製方法
を提供するものである。
以下、本発明方法を抗原としてインターフェロンを使用
した実施態様を中心に説明するが、本発明はこれに限定
されるものではない。
した実施態様を中心に説明するが、本発明はこれに限定
されるものではない。
インターフェロンの精製方法の具体的な繰作は次の様に
行う。
行う。
即ち、粗インターフェロン溶液を抗インターフェロン結
合担体と接触させ、該インターフェロンを吸着させた後
、未吸着の蛋白質を十分に洗浄除去する。
合担体と接触させ、該インターフェロンを吸着させた後
、未吸着の蛋白質を十分に洗浄除去する。
その後、イオン強度0.05以下、ptl 1.5〜3
.0の酸性溶液を通液し、該インターフェロンを溶ン夜
として回収する。
.0の酸性溶液を通液し、該インターフェロンを溶ン夜
として回収する。
本発明方法に適用される粗インターフェロン溶液として
は、酸性条件下でもその抗ウィルス活性を失わず安定な
構造を保つことからインターフェロンα及びβ含有溶液
が好ましい。
は、酸性条件下でもその抗ウィルス活性を失わず安定な
構造を保つことからインターフェロンα及びβ含有溶液
が好ましい。
たとえば、ヒトインターフェロンβの場合にCなどで誘
発処理した後、培養液中に産生せられるヒトインターフ
ェロンβ含有溶液をいう。
発処理した後、培養液中に産生せられるヒトインターフ
ェロンβ含有溶液をいう。
また本発明方法に適用されるヒトインターフェロンとし
ては、上記のヒト線維芽X■胞等を培養し、誘発処理後
産生ぜられた天然型ヒトインターフェロンの他に、ヒト
インターフェロンの遺伝子を組込んだ大腸菌、酵母等゛
の微生物の他、哺乳動物細胞などを含め遺伝子組換え可
能な細胞によって産生せられる遺伝子組換え型ヒトイン
ターフェロンも含まれる。
ては、上記のヒト線維芽X■胞等を培養し、誘発処理後
産生ぜられた天然型ヒトインターフェロンの他に、ヒト
インターフェロンの遺伝子を組込んだ大腸菌、酵母等゛
の微生物の他、哺乳動物細胞などを含め遺伝子組換え可
能な細胞によって産生せられる遺伝子組換え型ヒトイン
ターフェロンも含まれる。
本発明方法に用いられる抗インターフェロン抗体は、イ
ンターフェロンを結合し得る抗体であれば特に限定はな
いが、細胞融合技術によるマウスモノクロナール抗体が
代表されるモノクロナール抗体、あるいは常法により動
物に免疫して得られる抗体などが精製効率の点から好ま
しくない。
ンターフェロンを結合し得る抗体であれば特に限定はな
いが、細胞融合技術によるマウスモノクロナール抗体が
代表されるモノクロナール抗体、あるいは常法により動
物に免疫して得られる抗体などが精製効率の点から好ま
しくない。
また抗インターフェロン抗体結合担体とは、抗インター
フェロン抗体をセルロース、アガロース、架橋デキスト
ラン、ポリアクリルアミド、多孔性ガラスなど不溶性担
体に結合させたもので、この結合は抗体であるポリペプ
チド中の7ミノ基あるいはカルボキシル基と担体に扉入
された活性化置換基との反応によるものである。
フェロン抗体をセルロース、アガロース、架橋デキスト
ラン、ポリアクリルアミド、多孔性ガラスなど不溶性担
体に結合させたもので、この結合は抗体であるポリペプ
チド中の7ミノ基あるいはカルボキシル基と担体に扉入
された活性化置換基との反応によるものである。
担体の主な置換基には、シアン化ブロム活性基(たとえ
ば“CNBγ活性化セファロース4B”;ファルマシア
)、N−ヒドロキシスクシンイミドエステル基(たとえ
ば、“活性化CH−セファロース4B”;ファルマシア
社、“アフィゲルlO”;バイオランド社)、ヒドラジ
ド誘導体(ヒドラジドポリアクリルアガロ−五;マイル
ス社)、オキシラン基(″オイパーギフトC′;ローム
・ファーマ社)、アンヒドリド基(“オイパーギットA
”;ローム・ファーマ社)などがあげられる。
ば“CNBγ活性化セファロース4B”;ファルマシア
)、N−ヒドロキシスクシンイミドエステル基(たとえ
ば、“活性化CH−セファロース4B”;ファルマシア
社、“アフィゲルlO”;バイオランド社)、ヒドラジ
ド誘導体(ヒドラジドポリアクリルアガロ−五;マイル
ス社)、オキシラン基(″オイパーギフトC′;ローム
・ファーマ社)、アンヒドリド基(“オイパーギットA
”;ローム・ファーマ社)などがあげられる。
不溶性担体への抗体結合量は通常1mgゲルあたり0.
1〜10mgとする。
1〜10mgとする。
抗体結合担体と粗インターフェロン溶液との接触には、
バッチ法とカラム法とがあり、どちらも存効である。
バッチ法とカラム法とがあり、どちらも存効である。
抗体結合担体と接触させるインターフェロン溶液は通常
pH4〜10、好ましくはpH5〜9の範囲をもつこと
が必要であり、また不溶物が存在する場合には、前もっ
て遠心分離または濾過等の手段によって不溶物を除去し
ておくことかすすめられる。またこの接触にはインター
フェロンの抗体結合担体への吸着が実質的に完了するま
で行うことが好ましい。
pH4〜10、好ましくはpH5〜9の範囲をもつこと
が必要であり、また不溶物が存在する場合には、前もっ
て遠心分離または濾過等の手段によって不溶物を除去し
ておくことかすすめられる。またこの接触にはインター
フェロンの抗体結合担体への吸着が実質的に完了するま
で行うことが好ましい。
カラム法の場合、単位体積あたりの流速(S/V)0.
5〜55.p”−、、好ましくは1〜2な−・での通液
が望ましく、またバッチ法の場合、1〜100時間の接
触が行われる。
5〜55.p”−、、好ましくは1〜2な−・での通液
が望ましく、またバッチ法の場合、1〜100時間の接
触が行われる。
接触終了後、抗体結合担体を1モル塩化ナトリウム及び
30%以下のエチレングリコールを含むリン酸緩衝液さ
らには酢酸緩衝液等で洗浄することによりインターフェ
ロン以外の夾雑物の大部分を除去することができる。
30%以下のエチレングリコールを含むリン酸緩衝液さ
らには酢酸緩衝液等で洗浄することによりインターフェ
ロン以外の夾雑物の大部分を除去することができる。
この抗体結合担体に吸着したインターフェロンを回収す
るには、イオン強度0.05以下、好ましくは0.02
以下でかつpHが1.5〜3.0、好ましくは2.0〜
2.5の酸含有溶液が回収剤として用いられる。
るには、イオン強度0.05以下、好ましくは0.02
以下でかつpHが1.5〜3.0、好ましくは2.0〜
2.5の酸含有溶液が回収剤として用いられる。
本発明の酸は、上記範囲を満足する酸であれば1種でも
2種以上の混合でも特に限定されないが、たとえば塩酸
、硫酸、ギ酸、クエン酸な具体的には例えば、0.01
規定の塩酸はイオン強度0.01、al12である。
2種以上の混合でも特に限定されないが、たとえば塩酸
、硫酸、ギ酸、クエン酸な具体的には例えば、0.01
規定の塩酸はイオン強度0.01、al12である。
回収剤の量は特に限定されるものではないが、実質、的
に吸着しているインターフェロンを回収するのに必要な
量が用いられる。
に吸着しているインターフェロンを回収するのに必要な
量が用いられる。
回収率は、たとえば0.01規定の塩酸で常に90%以
上と高い値が得られる。
上と高い値が得られる。
なお、本発明はインターフェロンにかぎらず、疎水性の
強い抗原への応用も可能である。
強い抗原への応用も可能である。
たとえば、アポ−A−ISA−11、B、C−1、C−
It、C−■等の血漿リボ蛋白質の構成蛋白質、今喧?
Iアルブミン用井ヰ序などが挙げられる。
It、C−■等の血漿リボ蛋白質の構成蛋白質、今喧?
Iアルブミン用井ヰ序などが挙げられる。
この他、本発明での低イオン強度による中回収剤を用い
、目的抗原の精製とは逆に各種特異抗体も精製すること
ができる。
、目的抗原の精製とは逆に各種特異抗体も精製すること
ができる。
この場合には精製すべき抗体に対応する抗原を不溶性担
体に結合′させた抗原結合担体を作製し、精製すべき抗
体を含む溶液と接触させ、抗収剤で目的の特異抗体を回
収し精製する。
体に結合′させた抗原結合担体を作製し、精製すべき抗
体を含む溶液と接触させ、抗収剤で目的の特異抗体を回
収し精製する。
この時、回収された梱肯呵九体溶液に濃い中性緩衝液を
添加することにより、安定な中性溶液状態に飢とができ
る。
添加することにより、安定な中性溶液状態に飢とができ
る。
これらはいずれも回収剤の緩衝作用が弱いことにより目
的物を安定なpHにただちに移すことができるわけであ
る。
的物を安定なpHにただちに移すことができるわけであ
る。
(発明の効果〕
本発明の抗体結合担体を用いたインターフェロン精製法
は高牧率及び高精製度が得られるのはもとより、次の点
ですぐれている。それは1)回収されたインターフェロ
ンの安定性、2)回収溶液の溶媒、pH変更のしやすさ
3)また揮発性溶媒(HCN、ギ酸)であれば、回収物
質の各種分析操作も筒車である。
は高牧率及び高精製度が得られるのはもとより、次の点
ですぐれている。それは1)回収されたインターフェロ
ンの安定性、2)回収溶液の溶媒、pH変更のしやすさ
3)また揮発性溶媒(HCN、ギ酸)であれば、回収物
質の各種分析操作も筒車である。
さらに詳しく説明すれば、現在まで知られている回収剤
に比べ、本発明での回収剤ではインターフェロンの安定
性がはるかに良い。
に比べ、本発明での回収剤ではインターフェロンの安定
性がはるかに良い。
たとえば、0.01規定塩酸では冷蔵庫中(4〜8℃)
、1ケ月間保存でも、まったくインターフェロンの失活
はみられない。
、1ケ月間保存でも、まったくインターフェロンの失活
はみられない。
また、本発明の回収剤で回収したインターフェロン溶液
は低イオン強度で、しかも緩衝作用が弱いため、適当な
物質の添加により希望の溶液組成に変えることができる
。
は低イオン強度で、しかも緩衝作用が弱いため、適当な
物質の添加により希望の溶液組成に変えることができる
。
以下、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明する
。
。
合させ、抗体結合担体をつくる。
この担体Q、2mlを用い、4X10’単位の大腸菌産
生遺伝子&lI#Aえ型ヒトインターフェロンβを含む
溶液をパンチ式に接触させ、vIL着させる。
生遺伝子&lI#Aえ型ヒトインターフェロンβを含む
溶液をパンチ式に接触させ、vIL着させる。
所定の洗浄液で洗浄した後、吸着したインターフェロン
βを数種の回収剤にバッチ式で接触させ、回収率、精製
倍率を比較した。
βを数種の回収剤にバッチ式で接触させ、回収率、精製
倍率を比較した。
結果を表1に示す。
表1
実施例2
抗体カラムからの回収インターフェロンの溶液安定wh
施例1と同様の抗体結合担体のカラムに2 m Ilゲ
ルを充填し、これに大腸菌産生遺伝子組換え型インター
フェロンβ(比活性3X10 ’ ji′L位/mg)
を接触、吸着させる。
施例1と同様の抗体結合担体のカラムに2 m Ilゲ
ルを充填し、これに大腸菌産生遺伝子組換え型インター
フェロンβ(比活性3X10 ’ ji′L位/mg)
を接触、吸着させる。
所定の洗浄液で十分洗浄した後10mM塩酸(p H2
,2、イオン強度0.01)により抗体カラムよりイン
ターフェロンβを?容出させた。
,2、イオン強度0.01)により抗体カラムよりイン
ターフェロンβを?容出させた。
回収率92%、精製倍率50倍、比活性1.5×101
単位/mgあった。
単位/mgあった。
この回収インターフェロンβを37℃でlO日間保温し
、インターフェロン力価の経日変化を追った。
、インターフェロン力価の経日変化を追った。
結果を表2に示す。
表2
実施例3
抗ヒトインターフェロンβマウスモノクロナール抗体を
不溶性担体(アフィゲル10)にゲルl m lあたり
約7mg結合させ、抗体結合担体をつくり、このt旦体
1リットルをカラムにつめる。
不溶性担体(アフィゲル10)にゲルl m lあたり
約7mg結合させ、抗体結合担体をつくり、このt旦体
1リットルをカラムにつめる。
このカラムに1.75X10”単位の大腸菌産生遺伝子
組換え型ヒトインターフェロンβを含む溶液(pH7,
4)を通液し、完全に吸着させる。
組換え型ヒトインターフェロンβを含む溶液(pH7,
4)を通液し、完全に吸着させる。
所定の洗浄液で洗浄した後、0.O1規定塩酸(pH2
,2、イオン強度0.01)でカラム中の担体に吸着し
たインターフェロンβを溶出させると、1.70xlQ
ll+単位のインターフェロンβが回収され、収率97
%、精製倍率約6倍、比活性8X10’単位/I1gで
あった。
,2、イオン強度0.01)でカラム中の担体に吸着し
たインターフェロンβを溶出させると、1.70xlQ
ll+単位のインターフェロンβが回収され、収率97
%、精製倍率約6倍、比活性8X10’単位/I1gで
あった。
このように大型カラムでのインターフェロン精製も可能
である。
である。
実施例4
実施例3と同様の抗体結合担体2m1lをカラムに充填
し、これに2.2 XIO’IO’チャイニーズハムス
ター培養細胞産生遺伝子組換え型インターフェロン−β
(比活性6.I XIO’単位/単位/m液を通液し、
カラム中の抗体と接触させ、吸着させる。
し、これに2.2 XIO’IO’チャイニーズハムス
ター培養細胞産生遺伝子組換え型インターフェロン−β
(比活性6.I XIO’単位/単位/m液を通液し、
カラム中の抗体と接触させ、吸着させる。
所定の洗浄液で十分洗浄した後、o、oisモル塩酸(
pH2,0、イオン強度0.015)を通液し、抗体?
、3r。
pH2,0、イオン強度0.015)を通液し、抗体?
、3r。
×107単位/Bで精製倍率は許剰吟倍であった。
実施例5
実施例3と同様の抗体結合担体10mJをカラムに充填
し、これにヒト線維芽細胞産生天然型インターフェロン
−β(比活性2.5 XIO’単位/単位/m液を低い
流速で通液し、吸着させる。
し、これにヒト線維芽細胞産生天然型インターフェロン
−β(比活性2.5 XIO’単位/単位/m液を低い
流速で通液し、吸着させる。
所定の洗浄液で十分洗浄した後、0.01モル塩酸(p
H2,2、イオン強度0.01)によりインターフェロ
ン−βをカラムから溶出させると、回収率90%、比活
性lXl0”単位/mgで精製倍率は400倍であった
。
H2,2、イオン強度0.01)によりインターフェロ
ン−βをカラムから溶出させると、回収率90%、比活
性lXl0”単位/mgで精製倍率は400倍であった
。
実施例6
インターフェロン結合担体カラムによる抗インターフェ
ロン抗体の精製。
ロン抗体の精製。
精製された遺伝子組換え型ヒトインターフェロンβを不
溶性担体(アフィゲル10)にゲル1mJあたり2.4
mg結合させ、インターフェロン結合担体をつくる。
溶性担体(アフィゲル10)にゲル1mJあたり2.4
mg結合させ、インターフェロン結合担体をつくる。
このt■体I Qmj!をカラムにつめ、抗ヒトインタ
ーフェロンβ抗ウサギ血清より流安分画により集めたイ
ムノグロブリンフラクションを通液する。
ーフェロンβ抗ウサギ血清より流安分画により集めたイ
ムノグロブリンフラクションを通液する。
カラムを所定の洗浄液で洗浄した後、15mM塩Fjl
(pH12,o 、イオン強度0.015)で抗イン
ターフ二ロンβ特異抗体を溶出させると、96%の抗体
中和能が回収され、精製度は500倍以上であった。
(pH12,o 、イオン強度0.015)で抗イン
ターフ二ロンβ特異抗体を溶出させると、96%の抗体
中和能が回収され、精製度は500倍以上であった。
実施例7
抗大腸菌蛋白質抗体の精製。
ン
大腸菌菌体をマントニーゴーリン法で破砕し、遠心によ
り不溶性成分を除いた後、ポリエチレンイミンにより除
核酸を行う。
り不溶性成分を除いた後、ポリエチレンイミンにより除
核酸を行う。
この後、70%飽和流安により可溶性蛋白成分を濃縮し
、目的の可溶性大腸菌蛋白質を得る。
、目的の可溶性大腸菌蛋白質を得る。
この大腸菌蛋白質を不溶性担体(アフィゲル10)にゲ
ル1mlあたりt、img結合させ、大腸菌蛋白結合担
体をつくる。
ル1mlあたりt、img結合させ、大腸菌蛋白結合担
体をつくる。
この担体I Qmlをカラムにつめ、抗大腸菌蛋白抗ウ
サギ血清より流安分画により集めたイムノグロブリンフ
ラクション(PBS溶解液)を通液する。
1その後カ
ラムをPBSで十分洗浄した後、151塩酸(pH2,
0、イオン強度0.015)で抗大腸蘭蛋白特異抗体を
溶出させると、はじめにカラムにかけた抗体中和価の約
80%が回収され、精製度は約10倍と算出され、一般
的にいわれているイムノグロブリンフラクション中に存
在する特異抗体含量にほぼ等しい、F 【 ミ 特許出願人 東し株式会社 。
サギ血清より流安分画により集めたイムノグロブリンフ
ラクション(PBS溶解液)を通液する。
1その後カ
ラムをPBSで十分洗浄した後、151塩酸(pH2,
0、イオン強度0.015)で抗大腸蘭蛋白特異抗体を
溶出させると、はじめにカラムにかけた抗体中和価の約
80%が回収され、精製度は約10倍と算出され、一般
的にいわれているイムノグロブリンフラクション中に存
在する特異抗体含量にほぼ等しい、F 【 ミ 特許出願人 東し株式会社 。
Claims (1)
- (1)抗原または抗体を含む溶液を、それに対する抗体
または抗原を結合させた不溶性担体に接触させ、該抗原
または抗体を吸着させた後、イオン強度0.05以下、
pH1.5〜3.0の酸を用いて該抗原または抗体を回
収することを特徴とする抗原または抗体の精製方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59170354A JPS6150925A (ja) | 1984-08-17 | 1984-08-17 | 抗原または抗体の精製方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59170354A JPS6150925A (ja) | 1984-08-17 | 1984-08-17 | 抗原または抗体の精製方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6150925A true JPS6150925A (ja) | 1986-03-13 |
Family
ID=15903375
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59170354A Pending JPS6150925A (ja) | 1984-08-17 | 1984-08-17 | 抗原または抗体の精製方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6150925A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH01233298A (ja) * | 1988-03-11 | 1989-09-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | 抗体、その製造法、hmlcを測定するための試薬、ならびにモノクローナル抗体 |
JP2015503524A (ja) * | 2011-12-22 | 2015-02-02 | ジェネンテック, インコーポレイテッド | イオン交換膜クロマトグラフィー |
WO2016052584A1 (ja) * | 2014-09-30 | 2016-04-07 | 東レ株式会社 | ポリエチレングリコール修飾インターフェロン-βの検出及び定量に使用する試料液の前処理方法、ポリエチレングリコール修飾インターフェロン-βの検出方法及び定量方法 |
-
1984
- 1984-08-17 JP JP59170354A patent/JPS6150925A/ja active Pending
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH01233298A (ja) * | 1988-03-11 | 1989-09-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | 抗体、その製造法、hmlcを測定するための試薬、ならびにモノクローナル抗体 |
JP2015503524A (ja) * | 2011-12-22 | 2015-02-02 | ジェネンテック, インコーポレイテッド | イオン交換膜クロマトグラフィー |
US10364268B2 (en) | 2011-12-22 | 2019-07-30 | Genentech, Inc. | Ion exchange membrane chromatography |
JP2020040952A (ja) * | 2011-12-22 | 2020-03-19 | ジェネンテック, インコーポレイテッド | イオン交換膜クロマトグラフィー |
JP2021169454A (ja) * | 2011-12-22 | 2021-10-28 | ジェネンテック, インコーポレイテッド | イオン交換膜クロマトグラフィー |
US11945837B2 (en) | 2011-12-22 | 2024-04-02 | Genentech, Inc. | Ion exchange membrane chromatography |
WO2016052584A1 (ja) * | 2014-09-30 | 2016-04-07 | 東レ株式会社 | ポリエチレングリコール修飾インターフェロン-βの検出及び定量に使用する試料液の前処理方法、ポリエチレングリコール修飾インターフェロン-βの検出方法及び定量方法 |
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