[go: up one dir, main page]

JPS61111688A - Bio-engineering preparation of human elastase i - Google Patents

Bio-engineering preparation of human elastase i

Info

Publication number
JPS61111688A
JPS61111688A JP59231832A JP23183284A JPS61111688A JP S61111688 A JPS61111688 A JP S61111688A JP 59231832 A JP59231832 A JP 59231832A JP 23183284 A JP23183284 A JP 23183284A JP S61111688 A JPS61111688 A JP S61111688A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
amino acid
elastase
figures
acid sequences
human elastase
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP59231832A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Yutaka Ikenaga
池永 裕
Junichi Tanaka
純一 田中
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kirin Brewery Co Ltd
Original Assignee
Kirin Brewery Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kirin Brewery Co Ltd filed Critical Kirin Brewery Co Ltd
Priority to JP59231832A priority Critical patent/JPS61111688A/en
Publication of JPS61111688A publication Critical patent/JPS61111688A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6448Elastases, e.g. pancreatic elastase (3.4.21.36); leukocyte elastase (3.4.31.37)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

PURPOSE:To produce and separate human elastase I, in high efficiency, by carrying out specific transformation and cultivation of a DNA chain having a base sequence coding the polypeptide of amino acid sequences selected from specific three groups. CONSTITUTION:A DNA chain having a base sequence coding a polypeptide of amino acid sequences selected from specific three groups, is prepared beforehand, and a plasmid containing said DNA chain in a state to enable the exression of the genetic information is prepared. A microbial cell is transformed by the plasmid, and the obtained transformation is cultured to accumulate human elastase I in the culture product. Human elastase I can be produced by the transformed microorganism by this process. Accordingly, the production and separation of human elastase I can be carried out more effectively than the extraction from pancreas.

Description

【発明の詳細な説明】 発明の背景 技術分野 本発明、ヒトエラスターゼエの生物工学的製造に関する
。さらに具体的には、本発明は、(1)ヒトエラスター
ゼ■の生物工学的産生能を有するDNA鎖、(2)この
DNA鎖をその遺伝情報が発現可能な状態で含むプラス
ミドによって形質転換されたヒトエラスフーゼエ産生性
微生物、すなわち上記DNA鎖の性質を専ら利用する物
、および(3)この微生物の培養によるヒトエラスター
ゼエの生産法、すなわち上記DNA鎖を使用する方法、
に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION TECHNICAL FIELD This invention relates to the biotechnological production of human elastase. More specifically, the present invention relates to (1) a DNA strand capable of producing human elastase in a biotechnological manner; (2) a plasmid transformed with a plasmid containing this DNA strand in a state in which its genetic information can be expressed. A human elastase producing microorganism, that is, one that exclusively utilizes the properties of the above DNA strand, and (3) a method for producing human elastase by culturing this microorganism, that is, a method that uses the above DNA strand.
Regarding.

一般に、エラスターゼは、哺乳動物膵臓細胞等によって
産生される所謂セリンプロテアーゼの一種であって、不
溶性硬蛋白であるエラスチンを分解するきわめて特異な
プロテアーゼである。エラスターゼは経口投与で人の動
脈硬化症等の治療に有効であることが確認されており、
従来ブタの膵臓から抽出された所謂ブタエラスターゼが
医薬品(血管代謝改善剤)として既に実用化されており
、ヒトエラスターゼについて同様の薬効が期待されてい
る。
Generally, elastase is a type of so-called serine protease produced by mammalian pancreatic cells, etc., and is a very specific protease that degrades elastin, which is an insoluble hard protein. Elastase has been confirmed to be effective in treating arteriosclerosis in humans when administered orally.
So-called porcine elastase, which has been conventionally extracted from pig pancreas, has already been put into practical use as a drug (vascular metabolism improving agent), and human elastase is expected to have similar medicinal effects.

哺乳動物の膵臓細胞では、2種類のエラスターゼが産生
され、それらは互いに物理化学的に、酵素学的にまた抗
原性の面から異なっていて、エラスターゼ■およびエラ
スターゼ■とそれぞれ呼ばれている。なお、医薬品とし
て実用化されているブタエラスターゼは、前者を有効成
分とするものである。
In mammalian pancreatic cells, two types of elastase are produced, which are different from each other physicochemically, enzymologically, and antigenically, and are called elastase ① and elastase ②, respectively. Incidentally, porcine elastase, which has been put into practical use as a pharmaceutical, has the former as its active ingredient.

エラスターゼは、■、■ともに、それぞれ、膵QfRJ
胞内でプレプロエラスターゼとして産生され、これが細
胞外に分泌されるときにプロエラスターゼ(不活性なエ
ラスターゼ前駆体)となり、さらに細胞外でトリプシン
等の酵素作用を受けてエラスチン分解活性を有するエラ
スターゼに変化するものと考えられている。
Elastase is the pancreatic QfRJ for both ■ and ■, respectively.
It is produced as pre-proelastase within the cells, becomes proelastase (an inactive elastase precursor) when secreted outside the cell, and then undergoes the action of enzymes such as trypsin outside the cell to transform into elastase with elastin-degrading activity. It is considered to be.

先5M泣 ブタエラスターゼエについては、D、H,5hotto
net alによりそのアミノ酸配列が報告されている
(Nature、 225 Feb 28.802(1
970) )。
For the previous 5M crying pig elastase, D, H, 5hotto
The amino acid sequence has been reported by Net al. (Nature, 225 Feb 28.802 (1
970) ).

また、ラットエラスターゼエおよび■については、Ra
ymond J、 MacDonald et alら
が行った分子生物学的解析により、関連するmRNAの
塩基配列並びにアミノ酸配列が解明されている(Bio
chemistry、 21.1453−1463(1
982) )。
In addition, for rat elastase and ■, Ra
ymond J, MacDonald et al., the base and amino acid sequences of related mRNAs have been elucidated (Bio
chemistry, 21.1453-1463(1
982) ).

さらにヒトエラスターゼについてはC,Largman
et alにより、■と■がヒトの膵臓組織からI%u
されて、それらの性質が調査報告されている( Bio
chemistry、 15(11)、2491(19
71)) 。さらに、ヒトエラスターゼ■のプロ体につ
いては、そのN末端のアミノ酸配列(16ケ)も報告さ
れている(C,Largman et al  : B
iochimica et BiophysicaAc
ta 623(1980)208−212 )。
Furthermore, for human elastase, C.Largman
et al., ■ and ■ are I%u from human pancreatic tissue.
and their properties have been investigated and reported (Bio
chemistry, 15(11), 2491(19
71)). Furthermore, the N-terminal amino acid sequence (16 sequences) of the pro form of human elastase ■ has also been reported (C, Largman et al: B
iochimica et BiophysicaAc
ta 623 (1980) 208-212).

発明の概要 要  旨 本発明は、組換えDNA技術による新規などトエラスタ
ーゼエの製造手段を提供するものである。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention provides a novel means for producing Toelastase using recombinant DNA technology.

すなわち、本発明によるヒトエラスターゼエの生物工学
的産生能を有するDNA鎖は、下記の(1)〜(3)か
らなる群から選ばれるアミノ酸配列のポリペプチドをコ
ードする塩基配列を有すること、を特徴とするものであ
る。
That is, the DNA chain capable of biotechnological production of human elastase according to the present invention has a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below. This is a characteristic feature.

また、本発明によるヒトエラスターゼエ産生能を有する
微生物は、下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれ
るアミノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を
有するDNAIをその遺伝情報が発現可能な状態で含む
プラスミドによって形質転換されたものであること、を
特徴とするものである。
Furthermore, the microorganism capable of producing human elastase according to the present invention is capable of expressing DNAI having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below. It is characterized in that it has been transformed with a plasmid containing the same state.

ざらにまた、本発明によるヒトエラスターゼエの生物工
学的製造法は、下記の(1)〜(3)からなる群から選
ばれるアミノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配
列を有するDNA鎖を用意し、このDNA鎖を、これを
その遺伝情報が発現可能な状態で含むプラスミドの作成
、このプラスミドによる微生物の形質転換および得られ
た形質転換体の培養からなる工程に付して、iB養動物
中ヒトエラスターゼエを産生させることを特徴とするも
のである。
Furthermore, the biotechnological production method of human elastase according to the present invention involves preparing a DNA strand having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below. , this DNA strand is subjected to a process consisting of creating a plasmid containing the genetic information in a state capable of expressing it, transforming a microorganism with this plasmid, and culturing the obtained transformant. It is characterized by producing human elastase.

(1) 第1図および第2図にわたって示されているア
ミノ酸配列のうち、CからDまでのらの、(2) 第1
図および第2図にわたって示されているアミノ酸配列の
うち、BからDまでのもの、(3) 第1図および第2
図にわたって示されているアミノ酸配列のうち、Aから
Dまでのらの。
(1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, from C to D, (2) the first
Among the amino acid sequences shown in Figures and Figures 2, those from B to D, (3) Figures 1 and 2.
Among the amino acid sequences shown throughout the figures, those from A to D.

なお、本発明は上記の(1)〜(3)からなる群から選
ばれるアミノ酸配列のポリペプチドからなる、微生物に
よって生産されたヒトエラスターゼエ、に関するものと
もいえる。
The present invention can also be said to relate to human elastase produced by a microorganism, which is composed of a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) above.

効  果 本発明によれば、ヒトエラスターゼ■を、形質転換させ
た微生物により産生きぼることができる。
Effects According to the present invention, human elastase (2) can be produced by a transformed microorganism.

従って、膵臓器から抽出する方法に比べ、より有効にと
トエラスフーゼエを産生さぜ、単離し得る可能性がある
Therefore, compared to the method of extracting from pancreatic organs, it is possible to produce and isolate Toelas fusae more effectively.

本発明によって産生されるヒトエラスターゼ■はヒト型
であるので、医薬として用いる場合にはブタエラスター
ゼエを凌ぐ薬効が期待される。
Since the human elastase (2) produced by the present invention is of human type, it is expected to have a medicinal efficacy superior to that of porcine elastase when used as a medicine.

また、本発明の好ましい一実IM態様(詳細後記)によ
れば、DNAの発現産物として直接活性を有するヒトエ
ラスターゼ■を産生させることができる(膵臓からエラ
スターゼを抽出する場合には、不活性なプロエラスター
ゼとして存在するので、精製操作に加えて活性化処理を
行なうことが必要であった)。
Furthermore, according to a preferred IM embodiment of the present invention (details will be described later), it is possible to produce human elastase (2), which has direct activity as a DNA expression product (when elastase is extracted from the pancreas, an inactive Since it exists as proelastase, it was necessary to perform an activation treatment in addition to a purification operation).

なお、組換えDNA技術が今日非常な発展を遂げている
とはいえ、個々の蛋白に関して常にそれをコードする遺
伝子のクローニングとその発現(産生)成功を予測し得
るほどには到っていないのが現状なので、本発明により
ヒトエラスターゼfを産生させ得たことは思いがけなか
ったことというべきであろう。
Although recombinant DNA technology has made great progress today, it has not yet reached the point where it is possible to always predict the success of cloning and expression (production) of genes encoding individual proteins. Since this is the current situation, it should be said that it was unexpected that human elastase f could be produced by the present invention.

定  義 本発明によるヒトエラスターゼ■の生物工学的産生能を
有するDNA鎖すなわちヒトエラスターゼエ遺伝子は、
アミノ酸配列が第1図および第2図にわたって示されて
いるアミノ酸配夕IノのうちCからDまでのもの、Bか
らDまでのもの、またはAからDまでのもの、であるポ
リペプチドをコードするものである。なお、第1図は八
から始まるアミノ酸配列の1〜180番を、第2図はそ
れに続く181〜269番を示すものであることはいう
までもない(第2図には、269番目のアミノ酸に対応
するコードンに続<DNAも示されている)。
Definition The DNA chain capable of biotechnological production of human elastase according to the present invention, that is, the human elastase gene,
encodes a polypeptide whose amino acid sequence is from C to D, from B to D, or from A to D among the amino acid sequences shown in FIGS. 1 and 2; It is something to do. It goes without saying that Figure 1 shows numbers 1 to 180 of the amino acid sequence starting from 8, and Figure 2 shows the following numbers 181 to 269 (Figure 2 shows the 269th amino acid). Following the cordon corresponding to <DNA is also shown).

ここで、rDNA鎖」とはある長さを有するポリデオキ
シリボ核酸の相補的二本鎖を意味するも □のである。
Here, the term "rDNA strand" means a complementary double strand of polydeoxyribonucleic acid having a certain length.

そして、本発明ではこのrDNA鎖」はそれがコードす
るポリペプチドのアミノ酸配列によって特定されている
ところ、このポリペプチドは上記にように有限の長さの
ものであるから、このDNA鎖も有限の長さのものであ
る。しかし、こDNA鎖はヒトエラスターゼエの遺伝子
を含んでいてこのポリペプチドの生物工学的産生を行な
わせるものであるところ、この有限の長さのDNA鎖の
みによってこのような生物工学的産生が行なえるのでは
なく、その5′ −側上流および(または)3′ −側
下流に適当長さのDNA鎖が結合した状態でこのポリペ
プチドの生物工学的産生が可能となる訳である。従って
、本発明でrDNA鎖」というときは、この特定の長さ
のものく第1〜2図の対応アミノ酸配列でいえばC−D
、B−DまたはA−Dの長さ)の外に、この特定の長さ
のDNA鎖を構成■とする鎖状または環状DNA鎖の形
態に在るものをも包含するものとする(ただし、発明の
性質からいって、このDNA鎖はヒト膵臓中に存在する
場合を含まないことはいうまでもない。本発明によるD
NA鎖を「ヒトエラスターゼエの生物工学的産生能を有
するDNA′a」と呼ぶ所以である)。
In the present invention, this rDNA chain is specified by the amino acid sequence of the polypeptide it encodes, and since this polypeptide has a finite length as described above, this DNA chain also has a finite length. It is of length. However, this DNA strand contains the human elastase gene and enables the biotechnological production of this polypeptide, but such biotechnological production cannot be performed only with this finite length of DNA chain. Instead, this polypeptide can be produced biotechnologically with a DNA chain of an appropriate length attached to its 5'-upstream and/or 3'-downstream. Therefore, when referring to "rDNA chain" in the present invention, the corresponding amino acid sequence in Figures 1 and 2 of this specific length is C-D.
, B-D or A-D), it also includes DNA chains of this specific length that are in the form of linear or circular DNA chains (however, It goes without saying that the nature of the invention does not include the case where this DNA strand exists in the human pancreas.
This is why the NA chain is called ``DNA'a having biotechnological production ability of human elastase.'')

本発明によるDNA鎖の存在状態のうち代表的なのは、
このDNA鎖を構成員の一部とするプラスミドの形態な
らびにプラスミドとして微生物、特に大腸菌および酵母
菌、中に存在する形態である。
Representative states of the DNA strand according to the present invention are:
This DNA strand is in the form of a plasmid as a member, and as a plasmid it exists in microorganisms, especially Escherichia coli and yeast.

本発明によるDNA鎖の一つのそして好ましい存在形態
としてのプラスミドは、パラセンジャーないし外来遺伝
子としての本発明DNA鎖ど微生物中で安定に存在して
複製可能なプラスミドベクターと本発明DNA鎖をmR
N△へ転写させるプロモーターとを一体に結合させたも
のである。プラスミドベクターおよびプロモーターとし
ては公知のものを適宜組合わせて用いることができるが
、次のものを例示することができる。
A plasmid as one and preferred form of existence of the DNA strand of the present invention includes a plasmid vector that stably exists and can replicate in microorganisms, such as a parasenger or a foreign gene, and a plasmid vector that can be used to mR the DNA strand of the present invention.
It is a combination of a promoter and a promoter for transcription into NΔ. As the plasmid vector and promoter, known vectors can be used in appropriate combination, and the following can be exemplified.

上記のように、本発明によるDNA鎖はこれがコードす
るポリペプチドのアミノ酸配列によって特定されている
As mentioned above, a DNA chain according to the invention is specified by the amino acid sequence of the polypeptide it encodes.

このポリペプチドは、アミノ酸配列が第1〜2図にわた
って示されているアミノ酸配列のうちC−018−Dま
たはA−Dのものであるものである。ここで、アミノ酸
配列がC−D、B−DおよびA−Dのポリペプチドは、
それぞれヒトエラスターゼ■、ヒトプロエラスターゼ■
およびヒトプレプロエラスターゼエである。
This polypeptide has the amino acid sequence C-018-D or AD among the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2. Here, polypeptides whose amino acid sequences are CD, BD, and AD are:
Human elastase■, human proelastase■
and human preproelastase.

ヒトエラスターゼエは、242個のアミノ酸からなるも
のである。
Human elastase consists of 242 amino acids.

ヒトプロエラスターゼ(B−D)は、上記のヒトエラス
ターゼI (C−D)のN−末端に12個のアミノ酸が
結合したものに相当する。
Human proelastase (B-D) corresponds to the above human elastase I (C-D) with 12 amino acids bonded to the N-terminus.

ヒトプレプロエラスターゼI(A−D)は、このヒトプ
ロエラスターゼI (B−D)のN−末端にざらに15
個のアミノ酸が結合したものである。
Human preproelastase I (A-D) contains roughly 15 nucleotides at the N-terminus of human proelastase I (B-D).
It is a combination of amino acids.

これらのエラスターゼエ化合物(上記3種を含めたbの
)は従来そのアミノ酸配列が知られていなかったもので
ある。
The amino acid sequences of these elastase compounds (b including the above three types) have not been previously known.

DNA鎖の塩基配列 ヒトエラスターゼ■化合物が3種存在することによって
、それをコードする塩基配列を有するDNA鎖も基本的
には3種存在する。
Base Sequence of DNA Strand Human Elastase ■ Since there are three types of compounds, there are basically three types of DNA strands that have the base sequences encoding them.

ヒトエラスターゼエをコードするDNAIは、第1〜2
図のC−Dの塩基配列を持つものまたはその縮重異性体
である。ここで「縮重異性体」とは、縮重コードンにお
いてのみ異なっていて同一のポリペプチドをコードする
ことのできるDNA鎖を意味するものとする。たとえば
、第1〜2図のC−Dの塩基配列を持つDNA鎖に対し
て、そのアミノ酸のどれかに対応するニートンたとえば
N−末端のValに対応するコードン(GTT)がこれ
と縮重関係にあるたとえばGTCに変ったものを本発明
では縮重異性体と呼ぶものとする。
The DNAI encoding human elastase is
It has the base sequence CD in the figure or its degenerate isomer. As used herein, "degenerate isomers" shall mean DNA strands that differ only in degenerate codons and are capable of encoding the same polypeptide. For example, for a DNA chain with the base sequence C-D in Figures 1 and 2, the Neton corresponding to any of its amino acids, for example, the codon (GTT) corresponding to Val at the N-terminus, has a degenerate relationship with this. In the present invention, those which are changed to, for example, GTC, are referred to as degenerate isomers.

好ましい具体例は、5′ −側上流に接して開始コード
ンATGと3′ −側末端に接して停止コードンを少な
くとも1個(そのうちの一つは、たとえばTGA)を持
つものである。
A preferred embodiment is one having a start codon ATG adjacent to the 5'-side upstream and at least one stop codon (one of which is, for example, TGA) adjacent to the 3'-end.

ヒトプロエラスターゼ■をコードするDNA鎖は、第1
〜2図のB−Dの塩基配列を持つものまたはその縮重異
性体である。ヒトプロエラスターL’IをコードするD
NA鎖も、その5′ −末端に、開始コードンATGを
、また3′ −末端に停止コードンを少なくとも1個(
そのうちの一つは、たとえばTGA)を有することが好
ましい。
The DNA strand encoding human proelastase■ is the first
It has the base sequence B-D in Figure 2 or its degenerate isomer. D encoding human proelastase L'I
The NA chain also has a start codon ATG at its 5'-end and at least one stop codon at its 3'-end (
Preferably, one of them has, for example, TGA).

ヒトプロエラスターゼエをコードするDNA鎖は、第1
〜2図のA−Dの塩基配列を持つものまたはその縮重異
性体である。このDNA鎖はその5′ −末端に開始コ
ードン△TGを有するが、このDNA鎖もその3′ −
末端に停止コードンを少なくとも1個(そのうちの一つ
は、たとえばTGA)を有することが好ましい。
The DNA strand encoding human proelastase is the first
It has the base sequence A to D in Figure 2 or its degenerate isomer. This DNA strand has an initiation codon ΔTG at its 5'-end, but this DNA strand also has an initiation codon ΔTG at its 3'-end.
It is preferable to have at least one stop codon (one of which is TGA, for example) at the end.

上記のいずれのヒトエラスターゼ■化合物をコードする
DNAaにおいても、該ポリペプチドのC−末端のト1
isに対応するコードン(図示の例ではCAC)の3′
 −側下流には、非翻訳領域としてのDNA鎖(その最
初の部分は、TAGのような停止コードンであることが
ふつうである)がある長さで続いていることができ、ま
たそのざらに3′ −側下流に真核生物遺伝子共通のポ
リ(A)鎖が付加していてもよい。ポリ(A)鎖が付加
している場合には、それの5′ −側上流の上記非翻訳
領域にはAΔTAAAというポリ(A>付加シグナルが
含まれていることがふつうである。なJ5、第1〜2図
に示したDNA鎖(5′ −末端のATGから3′ −
末端のポリ(A>鎖まで)の塩基配列は、ヒトプレプロ
エラスターゼエのm1llAがら得たCDNAについて
マギサム・ギルバート法によって決定したものである。
In any of the above-mentioned human elastase compound DNAa, the C-terminal tol of the polypeptide is
3' of the cordon (CAC in the illustrated example) corresponding to is
- Downstream, a DNA strand as an untranslated region (the first part of which is usually a stop codon, such as TAG) can continue for a certain length, and its rough A poly(A) chain common to eukaryotic genes may be added to the downstream of the 3'-side. When a poly(A) chain is added, the above-mentioned untranslated region upstream on the 5' side usually contains a poly(A> addition signal called AΔTAAA.J5, The DNA strand shown in Figures 1 and 2 (from the 5'-terminal ATG to the 3'-
The base sequence of the terminal poly(A>chain) was determined by the Magisam-Gilbert method for CDNA obtained from m1llA of human preproelastase.

DNA鎖の取得 上記のヒトエラスターゼ■化合物のアミノ酸配列をコー
ドする塩基配列を有するDNA鎖を取得する一つの手段
は、核酸合成の方法に従ってその鎖長の少なくとも一部
を化学合成することである。
Obtaining a DNA strand One means of obtaining a DNA strand having a base sequence encoding the amino acid sequence of the human elastase compound described above is to chemically synthesize at least a portion of the strand according to a nucleic acid synthesis method.

結合アミノ酸が少なくとも242個であるということを
考えれば、この化学合成法よりもヒト膵臓から得たmR
NAからの酵素的な方法による方が好ましいといえる。
Considering that there are at least 242 bound amino acids, mR obtained from human pancreas is better than this chemical synthesis method.
It can be said that it is preferable to use an enzymatic method using NA.

すなわち、ヒトエラスターゼlff1伝子の製造のため
にはヒトエラスターゼmRNAを含む臓器よりmRNA
を取得し、これをテンプレートとして逆転写酵素を用い
てcDNAバンクを作成し、そのCDNAバンクの中か
ら適当なプローブを用いて、ヒトエラスターゼII伝子
を含むクローンを取得するのが一般的方法である。この
プローブとしては、ラットエラスターゼ■遺伝子の一部
を利用するのが便利である。一般に、生物界において同
一の機能を司るタンパク質はアミノ酸−次構造レベルと
ともにDNA塩基配列レベルでも相同性があることが知
られており、その場合に系統発生的に近縁のものほど相
同性は高い。ヒトとラットではかなり近いといえ、本発
明者らが遺伝子取得後に比較した結果では、アミノ酸、
DNA配列とも60%程度の相同性が見られた程度であ
る。ラットエラスフーゼII伝子についてはすでに報告
があって(前掲文献)、DNA塩基配列が知られている
That is, in order to produce human elastase lff1 gene, mRNA is extracted from an organ containing human elastase mRNA.
The general method is to obtain a human elastase II gene, use this as a template to create a cDNA bank using reverse transcriptase, and use an appropriate probe from the cDNA bank to obtain a clone containing the human elastase II gene. be. As this probe, it is convenient to use a portion of the rat elastase gene. In general, it is known that proteins that control the same function in the living world have homology not only at the amino acid-substructure level but also at the DNA base sequence level, and in this case, the more closely related they are phylogenetically, the higher the homology. . It can be said that humans and rats are quite similar, and the results of the comparison after gene acquisition by the present inventors show that amino acids,
Approximately 60% homology was observed in both DNA sequences. There has already been a report on the rat elastuse II gene (cited above), and the DNA base sequence is known.

そこで、本発明者らの行なった方法は、下記の通りであ
る。すなわち、ラットエラスターゼl1ll伝子のDN
A塩基配列の一部を化学合成し、それをプロ−ブとして
用いて、ラット膵臓mRNAより逆転写酵素を用いて作
成したCDNAバンクよりスクリーニングを行なって、
クツ1−エラスターゼ■遺伝子クローンを取得した。こ
の遺伝子がラットエラスターゼ■遺伝子であることはD
NA塩基配列を調べることにより推定した。この遺伝子
を制限酵素で切断して約700bp (塩基対)はどの
断片を取得し、この断片に32Pラベルを入れてプロー
ブとして用いた。ヒト膵RmRNAより逆転写酵素を用
いて作成したCDNAバンクについて、上記プローブを
用いてスクリーニングを行なった。得られたクローンの
うち一番CDNA部分の長いものについて塩基配列をマ
キナムギルバート法により決定した。
Therefore, the method performed by the present inventors is as follows. That is, the DN of the rat elastase l1ll gene
A part of the A base sequence was chemically synthesized, and using it as a probe, a CDNA bank created from rat pancreatic mRNA using reverse transcriptase was screened.
A shoe 1-elastase ■ gene clone was obtained. It is D that this gene is the rat elastase■ gene.
It was estimated by examining the NA base sequence. This gene was cut with a restriction enzyme to obtain a fragment of about 700 bp (base pairs), which was labeled with 32P and used as a probe. A CDNA bank created from human pancreatic R mRNA using reverse transcriptase was screened using the above probe. The nucleotide sequence of the clone with the longest CDNA portion among the obtained clones was determined by the Mackinham-Gilbert method.

このように、本発明DNA鎖は上記のようにヒト膵臓c
DNAバンクより大腸菌プラスミド上に組み込まれた形
で冑られたが、もちろんこのDNA鎖を化学合成によっ
てすべてもしくは途中から作成して取得することも可能
であることは前記だところで必る。
In this way, the DNA strand of the present invention is derived from human pancreatic cDNA as described above.
Although the DNA strand was obtained by being integrated into an Escherichia coli plasmid from a DNA bank, it is of course possible to obtain the DNA strand by chemically synthesizing it completely or partially.

形質転換体 上記のようにして取得される本発明DNA鎖はヒトエラ
スターゼI蛋白をつくるための遺伝情報を含んでいるの
で、これを生物工学的手法によって微生物に導入して形
質転換体をつくり、この形質転換微生物にヒトエラスタ
ーゼI蛋白をつくらU゛ることができる。
Transformants Since the DNA strand of the present invention obtained as described above contains genetic information for producing human elastase I protein, it is introduced into a microorganism by biotechnological techniques to create a transformant. Human elastase I protein can be produced in this transformed microorganism.

宿主微生物 適当なプラスミドベクターが存在する限り、各種の微生
物が杏発明DNA!Qを構成員として含むプラスミドに
より形質転換の対象となりうる。
Host microorganisms As long as a suitable plasmid vector exists, various microorganisms can be used as an invention DNA! It can be transformed with a plasmid containing Q as a member.

そのような微生物の一群はEscherichia c
oliであり、他の一群はSaccharomyces
 cerevisiaeである。
One group of such microorganisms is Escherichia c.
oli, and the other group is Saccharomyces
cerevisiae.

形質転換 前記のように本発明DNA鎖の持つ遺伝情報が微生物中
で発現したということは本発明によってはじめて確認さ
れたことであるが、形質転換体の作成(およびそれによ
るヒトエラスターゼエの産生)のための手順ないし方法
そのものは、分子生物学、生物工学ないし遺伝子工学の
分野において慣用されているものでありうるので、本発
明においても下記したところ以外のものについてはこれ
ら慣用技術に準じて実施すればよい。
Transformation As mentioned above, it was confirmed for the first time by the present invention that the genetic information possessed by the DNA strand of the present invention was expressed in microorganisms, but the creation of transformants (and the production of human elastase) The procedures or methods themselves may be those commonly used in the fields of molecular biology, bioengineering, or genetic engineering, and therefore, in the present invention, procedures other than those described below may be carried out in accordance with these commonly used techniques. do it.

微生物中で本発明DNA鎖の遺伝子を発現させるために
は、まずその微生物中で安定に存在するプラスミドベク
ター中にこの遺伝子をつなぎかえる必要がある。この際
用いられるプラスミドベクターは、大腸菌に対してはp
BR322等、酵母に対してはYRp7等種々知られて
いるものすべてが用いられる。
In order to express the gene of the DNA strand of the present invention in a microorganism, it is first necessary to connect the gene to a plasmid vector that stably exists in the microorganism. The plasmid vector used at this time is p
All known compounds such as BR322 and YRp7 for yeast can be used.

一方、本発明DNA鎖の遺伝子を微生物で発現させるた
めには、そのDNAをrr+RNAへ転写させる必要が
ある。そのためには、転写のためのシグナルであるプロ
モーターの遺伝子を本発明DNA鎖の5′ −側上流に
組込めばよい。このプロモーターについてはすでにtr
p、lac、ompF (以上、大腸菌用)、ADHI
、GAL7、PGK、TRPl (以上、酵母用)等種
々用られており、本発明でもこれらのいずれをも利用・
 することができる。
On the other hand, in order to express the gene of the DNA strand of the present invention in a microorganism, it is necessary to transcribe the DNA into rr+RNA. For this purpose, a promoter gene, which is a signal for transcription, may be incorporated into the 5'-upstream of the DNA strand of the present invention. This promoter has already been tr
p, lac, ompF (for E. coli), ADHI
, GAL7, PGK, TRPl (all for yeast), etc., and the present invention does not use any of these.
can do.

また、mRNAを蛋白に翻訳させる段階では蛋白合成の
場合であるリポソームが翻訳開始部位の先端に結合する
ために必要な配列(大腸菌ではSD配列と呼ばれる)を
蛋白合成の開始信号であるATGの前につける必要があ
る。なお、ポリ(A)付加シグナルを含む3′非翻訳領
域については蛋白を合成させるために特に必要ではない
と考えられているので、場合によっては削り取ることも
できる。ただし、宿主微生物が酵母であるときはこの3
′非翻訳領域の有無が蛋白合成量の大小に関与するとい
われている場合もあるので、多山にヒトエラスターゼI
蛋白を合成しようというときは注意を要する。
In addition, at the stage of translating mRNA into protein, a sequence necessary for liposomes to bind to the tip of the translation initiation site (called the SD sequence in E. coli) is placed in front of ATG, which is the initiation signal for protein synthesis. It is necessary to put it on. Note that the 3' untranslated region containing the poly(A) addition signal is not considered to be particularly necessary for protein synthesis, so it can be removed depending on the case. However, when the host microorganism is yeast, these three
'The presence or absence of an untranslated region is said to be involved in the amount of protein synthesis, so human elastase I
Care must be taken when trying to synthesize proteins.

さて、一般的には、エラスターゼ蛋白をつくろうとすれ
ば上記のような操作が必要であるが、本発明DNA鎖の
うち塩基配列がB−DおよびA−Dのものは前駆体ペプ
チドをコードする配列が含まれているので、ヒトエラス
ターゼI蛋白をつくる際に前駆体ペプチドを含むヒトエ
ラスターゼI蛋白(ヒトエラスターゼエ前駆体蛋白と呼
ぶ)すなわちプロモーターゼエまたはプレプロエラスタ
ーゼエをつくることができ、また塩基配列C−Dのもの
からはこの前駆体ペプチド(A−C)を含まない場合は
蛋白合成開始のためのシグナルであるATGが必要なの
で、最低1個のメチオニンをN−末端アミノ酸の前に付
加させておかなければならない。また、とトエラスフー
ゼエ蛋白をつくるばあにエラスターゼ活性さえ保持され
れば、N−末端アミノ酸、の前に1個または複数個のア
ミノ酸を付加することや、いくつかのアミノ酸をN−末
端側もしくはC−末端側で削ることもできる。
Now, generally speaking, if you want to make elastase protein, the above operations are necessary, but among the DNA strands of the present invention, those with base sequences B-D and A-D encode precursor peptides. When making human elastase I protein, it is possible to make human elastase I protein (referred to as human elastase precursor protein), that is, promoterase or preproelastase, when making the human elastase I protein. If the sequence C-D does not contain this precursor peptide (A-C), at least one methionine is added before the N-terminal amino acid because ATG, which is a signal for starting protein synthesis, is required. I have to let it happen. In addition, if elastase activity is maintained when producing Toelasfusae protein, it is possible to add one or more amino acids before the N-terminal amino acid, or add some amino acids to the N-terminal side or C-terminal amino acid. -Can also be scraped at the end.

また、読枠の調整その他の目的で適当な長さのDNA鎖
をリンカ−として結合させることもできる。このような
りNA鎖の加工は、現在の遺伝子工学技術では、制限酵
素およびDNA化学合成技術を利用すれば容易に実施す
ることができる。
Furthermore, a DNA strand of an appropriate length can be attached as a linker for adjusting the reading frame or for other purposes. With current genetic engineering technology, such processing of the NA strand can be easily carried out using restriction enzymes and DNA chemical synthesis technology.

このようにしてつくったプラスミドによる微生物の形質
転換は、遺伝子工学ないし生物工学の分野で慣用されて
いる合口目的な任意の方法によって行なうことができる
。その一般的な事項については適当な成因または総説た
とえばT、Haniatis。
Transformation of microorganisms with the plasmid thus prepared can be carried out by any method commonly used in the fields of genetic engineering and biotechnology. For general information, please refer to suitable etiology or reviews, such as T. Haniatis.

E、F、Fr1tsch、 J、SambrooK: 
rHolecular C1onina−A Labo
raroy HanualJ 、Co1d Sprin
g HarborLaboratory、 (1982
)を参照すればよく、本発明での特定な例については後
記の実験例を参照することができる。
E, F, Frltsch, J, Sambroo K:
rHolecular C1onina-A Labo
raroy HanualJ, Co1d Sprin
g Harbor Laboratory, (1982
), and for specific examples of the present invention, reference may be made to Experimental Examples described later.

形質転換体は、本発明DNA鎖によって導入された遺伝
情報による新しい形質(すなわらヒトエラスターゼエの
産生能)および使用ベクター由来の形質ならびに場合に
よっては生じているかも知れない遺伝子組換時の使用ベ
クターからの一部の遺伝情報の欠落による対応形質の欠
落を除けば、そのゼノタイブないしフェノタイプあるい
は菌学的性質において使用宿主微生物と同じである。
The transformant includes new traits (i.e., the ability to produce human elastase) due to the genetic information introduced by the DNA strand of the present invention, traits derived from the used vector, and, in some cases, new traits resulting from the genetic recombination that may have occurred. Except for the lack of corresponding traits due to the lack of some genetic information from the vector used, it is the same as the host microorganism used in terms of its xenotype or phenotype or mycological properties.

遺伝情報の発現/蛋白の生産 上記のようにして得られる形質転換体のクローンは、こ
れを培養すれば培養物中にヒトエラスターt’I、ヒト
ブロエラスフーゼエまたはヒトブレプロエラスターゼエ
を産生ずる。プレブロエラスフーゼエは、膵臓外に分泌
されるときにプロエラスターゼ■となり、これがさらに
十二指腸で1〜リブシン等により分解されて成?A蛋白
すなわちとl・エラスターゼエに変化するといわれてい
るので、本発明によってこのようなヒトエラスターピT
萌駆体蛋白が得られたときはこれをトリプシン等によっ
て処理ずればヒトエラスターゼエと同一のものが得られ
ると考えられる。
Expression of genetic information/Production of protein When the transformant clone obtained as described above is cultured, it produces human elastase t'I, human broelastus fusae, or human breproelastasee in the culture. arise. Prebroelas fuzee becomes proelastase■ when secreted outside the pancreas, and this is further degraded by 1~ribusin etc. in the duodenum. It is said that the human elastase T.
When the precursor protein is obtained, it is thought that if it is treated with trypsin or the like, a protein identical to human elastase can be obtained.

また、キモシン遺伝子を酵母で発現させるとぎにキモシ
ンを直接つくらせるよりもプロキモシンをつくらせたと
きに10倍以上の生産効率があったとの報告があるので
(J、He1lor、 H,J、Dobson。
Furthermore, it has been reported that when the chymosin gene is expressed in yeast, the production efficiency is more than 10 times higher when prochymosin is produced than when chymosin is produced directly (J, Helor, H, J, Dobson.

N、A、Roberts、  H,F、Tuitc、 
 J、S、Emtagl、  S、W旧te。
N.A., Roberts; H.F., Tuitc;
J, S, Emtagl, S, W old te.

P、八、cowe、  T、Pate、  A、J、K
ingSman、  s、+4.にingsmanGe
ne、 24.1〜14 (1983) ) 、本発明
でもこのプレプロ部分の配列を利用して大量生産を容易
にすることも考えられる。
P, 8, Cowe, T, Pate, A, J, K
ingSman, s, +4. niingsmanGe
ne, 24.1-14 (1983)), and the present invention may also utilize the sequence of this prepro portion to facilitate mass production.

形質転換体の培養ないし増殖条件は、使用宿主微生物に
対するそれと本質的には変らない。また、培養物すなわ
ち菌体内および(または)培養液からの産生蛋白の回収
も常法に従って行なうことができる。
The culture or growth conditions for the transformant are essentially the same as those for the host microorganism used. In addition, the produced protein can be recovered from the culture, that is, the bacterial cells and/or the culture solution, according to conventional methods.

実  験  例 ■、ラットエラススフゼエ遺伝子のクローニンウィスタ
ーラット(日本チャールスリバー社より入手)をエーテ
ル麻酔後、ただちに膵臓を取り出し、グアニジンチオシ
アネートを変性剤として用い、かつ塩化セシウム密度勾
配遠心で精製する方法によって、RNAを取得したく詳
細な実験条件C31、十用和傅、藤井義明:「細胞工学
」L、298〜303 (1982)参照)。このRN
AよりmRNAを得るため、これをオリゴdTセルロー
スカラムクロマトグラフィーにより精製し、オリゴdT
に吸着するポリ(A>をもったmRNAだ1プを取得し
た。ラット1匹より約1gの膵臓が得られ、mRNAは
200μg得られた。次に、このmRNAをテンプレー
トとしてオカヤマバーク法によりcDNAを作成した。
Experimental Example ■: A method of cloning Wistar rats (obtained from Charles River Japan) with the rat Elasfusae gene and immediately removing the pancreas after ether anesthesia, using guanidine thiocyanate as a denaturing agent, and purifying it by cesium chloride density gradient centrifugation. Detailed experimental conditions for obtaining RNA C31, Kazufu Juyo, Yoshiaki Fujii: "Cell Engineering" L, 298-303 (1982)). This RN
In order to obtain mRNA from A, it was purified by oligo dT cellulose column chromatography, and oligo dT
We obtained an mRNA sample with poly(A>) that adsorbs to . Approximately 1 g of pancreas was obtained from one rat, and 200 μg of mRNA was obtained. Next, using this mRNA as a template, cDNA was extracted by the Okayama-Burk method. It was created.

実験手順は下記の通りである(詳細な実験条件は、重定
勝哉:「細胞工学」虹、 616〜626 (1983
)を参照)。
The experimental procedure is as follows (detailed experimental conditions can be found in Katsuya Shigesada: "Cell Engineering" Niji, 616-626 (1983)
).

すなわち、mRNAとオリゴdTを末端に50個はど付
加されたベクタープライマーDNAとをまぜ、逆転写酵
素を加えて、ベクタープライマーDNAの67部分をブ
ライマーにしてmRNAに対する相補鎖DNAを合成さ
せる。次にこのDNA断片にdCTPとターミナルトラ
ンスフェラーゼとを加えて両末端にdCを20個はど付
加する。制限酵素1−1ind[でこのベクターブライ
マーDNA部分の一部を切断して、dCC付加郡部ある
長さにわたって取り除く。一方、一方の端がl−1in
dnrと同じ切断末端をもちかつ他方の末端にdGを2
0個程度付加したリンカ−DNA断片を用意して、これ
を前記1−1indl[[消化物に加え、両DNAを環
状に結合させる。
That is, mRNA and vector primer DNA having 50 oligo dT added to the end are mixed, and reverse transcriptase is added to convert 67 portions of the vector primer DNA into a primer to synthesize complementary strand DNA to the mRNA. Next, dCTP and terminal transferase are added to this DNA fragment to add 20 dCs to both ends. A portion of this vector primer DNA portion is cut with restriction enzyme 1-1ind to remove a certain length of the dCC-added region. On the other hand, one end is l-1in
It has the same cleavage end as dnr and 2 dG at the other end.
A linker-DNA fragment with approximately 0 linkers added is prepared, and added to the 1-1indl [[[[[[[]] digested product, both DNAs are linked in a circular form.

次に、RNaseH,DNAポリメラーゼエおよびDN
AリガーゼによりmRNA部分をとりのぞいてDNAに
置きかえる。このようにして、ラット膵臓mRNA2.
5μqとベクタープライマーDNA1.5μqとを使用
し、リンカ−DNA断片0607μqを加えてC0NA
を得た。
Next, RNaseH, DNA polymerase and DN
A ligase removes the mRNA portion and replaces it with DNA. In this way, rat pancreatic mRNA2.
Using 5μq and vector primer DNA 1.5μq, add linker DNA fragment 0607μq to create C0NA.
I got it.

このcDNAで大腸菌RRI株(Bol 1var、 
F、 :Gene、 2 、95 (1977) ’)
を形質転換させたところ、形質転換体として約5万個の
クローンが得られた。
Using this cDNA, E. coli RRI strain (Bol 1var,
F.: Gene, 2, 95 (1977)')
About 50,000 clones were obtained as transformants.

この大腸菌の中からラットエラスターゼII伝子を持つ
ものを探すため、既知のラットエラスターゼII伝子(
前記Biochemistry、 21. 1453−
1463(1982))の一部を化学合成してプローブ
とした。
In order to search for E. coli that has the rat elastase II gene, we investigated the known rat elastase II gene (
The Biochemistry, 21. 1453-
1463 (1982)) was chemically synthesized and used as a probe.

さらに詳しくは、ラットエラスターゼIm伝子のC−末
端部分に相当する の塩基配列である。上側がラットエラスターゼmRNA
であり、下側が合成されたオリゴヌクレオチドのプロー
ブであって、mRNAに対する相補鎖となっている。合
成法は同相リン酸トリエステル法に依った(詳細は、E
、0htsuka、 H,Ikehara。
More specifically, it is a base sequence corresponding to the C-terminal portion of the rat elastase Im gene. The top is rat elastase mRNA
The lower part is a synthesized oligonucleotide probe, which is a complementary strand to mRNA. The synthesis method was based on the in-phase phosphotriester method (for details, see E.
, Ohtsuka, H, Ikehara.

D、5oll : Nucoeic Ac1ds It
esearch  10.6553〜6570 (19
82)参照)。この合成オリゴヌクレオチドにT4ポリ
ヌクレオチドキナーゼをつかってγ〔32P)ATPよ
りリン酸基を転移させて、これを標識した。これをプロ
ーブとして、cDNAの入った形質転換体をスクリーニ
ングした。スクリーニング法はコロニーハイブリダイゼ
ーション法でおこなった。すなわち、ニトロセルロース
フィルター上で成育した菌体をアルカリ変性させて、菌
体内のDNAをフィルター上に焼付ける。そのフィルタ
ーをプローブDNAを含むハイブリダイゼーション液中
におくと、DNAの塩基配列に相同性のあるものだけが
ある条件下で結合する(詳細は、高木康敬編「遺伝子操
作マニュアル」 (講談社)参照)。これをオートラジ
オグラフィーに付して、プラスかマイナスかを判定する
。相同の配列を含むクローンは黒く着色される。実際に
は、約2000個のクローンをスクリーニングして。
D, 5oll: Nucoeic Ac1ds It
esearch 10.6553~6570 (19
82)). This synthetic oligonucleotide was labeled by transferring a phosphate group from γ[32P)ATP using T4 polynucleotide kinase. Using this as a probe, transformants containing cDNA were screened. The screening method was performed using colony hybridization method. That is, the bacterial cells grown on the nitrocellulose filter are denatured with an alkali, and the DNA inside the bacterial cells is burned onto the filter. When the filter is placed in a hybridization solution containing probe DNA, only DNA with homology to the base sequence binds under certain conditions (for details, see "Gene Manipulation Manual" edited by Yasutaka Takagi (Kodansha)) . This is subjected to autoradiography to determine whether it is positive or negative. Clones containing homologous sequences are colored black. Actually, we screened about 2000 clones.

8個のポジティブクローンが得られた。ハイブリダイゼ
ーションの条件は6XPSC15xデンハルト溶液/3
5°C/16時間であり、6XSSC/35℃/30分
で2回洗浄した。これらのクローンについて、プラスミ
ドをアルカリ法(T、Haniatis、 E、F、F
r1tsch、 J、5anbrook :1N1o1
ecular Cloning−A Laborato
ry Manual J参照)により取得し、制限酵素
切断地図を作成して文献報告のものと比較したところ、
完全に一致した。このようにして、ラットエラスターゼ
エ遺伝子が得られた。
Eight positive clones were obtained. Hybridization conditions were 6X PSC15x Denhardt's solution/3
5°C/16 hours and washed twice with 6XSSC/35°C/30 minutes. For these clones, the plasmids were purified using the alkaline method (T, Haniatis, E, F, F
r1tsch, J, 5anbrook:1N1o1
ecular Cloning-A Laborato
ry Manual J), created a restriction enzyme cleavage map, and compared it with that reported in the literature.
It was a perfect match. In this way, the rat elastase gene was obtained.

■、ヒトエラススフゼエ遺伝子のクローニングラットエ
ラスターゼ■遺伝子の場合とまったく同じ方法でmRN
Aを取得し、ざらにcDNAを作成した。ヒトの膵臓的
2gよりmRNA200μqが得られた。ざらに、mR
NA5.0μq1ベクターブライマーDNA1.5μq
およびリンカ−DN、Ao、08μQを使って、CDN
Aを含んだ形質転換体が約3万個得られた。この中から
ヒトエラスターゼIm伝子をスクリーニングしたわけで
あるが、プローブとしてラットエラスターゼI ’+H
伝子の一部を利用した。ラットエラスターゼIm伝子を
制限酵素Kpn工とBclMとで分解したのちアガロー
スゲル電気泳動で分離を行なっで、約700bpのフラ
グメントを得た。この断片にニックトランスレーション
法によりαC32P)CJCTPを用いてアイソトープ
ラベルを入゛れたにツクトランスレーション法の詳細は
前掲「遺伝子操作マニュアル」参照)これをプローブに
用い、先にラットエラスターゼIJ伝子のクローニング
の際に採用したコロニーハイブリダイゼーション法でス
クリーニングした。ハイブリダイゼーションの条件は6
XSSC15Xデンハルト溶液中/60’C/16時間
であり、洗いは60℃/30分/2回で行ナツタ。約1
0,000個より10個のクローンが得られ、その中で
最も長いCDNA部分を有するもの(El−IEL1株
と呼ぶ。また、これに含まれるCDNA含有プラスミド
をpHELlと呼ぶ)についてベクタープライマー以外
のDNA部分の塩基配列を決定した。
■ Cloning of the human elastase gene mRNA using exactly the same method as for the rat elastase ■ gene.
A was obtained and cDNA was roughly constructed. 200 μq of mRNA was obtained from 2 g of human pancreas. Zarani, mR
NA5.0μq1 Vector Brimer DNA1.5μq
and using linker-DN, Ao, 08μQ, CDN
Approximately 30,000 transformants containing A were obtained. Among these, we screened the human elastase Im gene, and used rat elastase I'+H as a probe.
I used part of the transmission. The rat elastase Im gene was digested with restriction enzymes Kpn and BclM, and then separated by agarose gel electrophoresis to obtain a fragment of approximately 700 bp. An isotope label was inserted into this fragment using αC32P (CJCTP) using the nick translation method. Screening was performed using the colony hybridization method used for cloning. Hybridization conditions are 6
XSSC15X in Denhardt's solution/60'C/16 hours, washed at 60°C/30 minutes/twice. Approximately 1
10 clones were obtained from 0,000 clones, and among them, the one with the longest CDNA portion (called El-IEL1 strain. Also, the CDNA-containing plasmid contained in this is called pHEL1) was The base sequence of the DNA portion was determined.

塩基配列決定はマキサムギルバート法を用い、両方向の
鎖を読むようにして行なった(方法の詳細は、高浪満、
大井龍夫纒rDNAシーケンス解析マニュアル」(講談
社)参照)。決定された配列は、第1〜2図に示した通
りである(なお、現実に得られた塩基配列は、その5′
 −側上流にCGT−CCT−ATC−ATC−ACA
−AAA−CTC−ATGなる配列を有していた)。こ
のDNA塩基配列よりコードン表に従ってアミノ酸に翻
訳したものも同時に示されている。
Base sequencing was performed using the Maxam-Gilbert method, reading strands in both directions (for details on the method, see Mitsuru Takanami,
(See Tatsuo Oi's rDNA Sequence Analysis Manual (Kodansha)). The determined sequence is as shown in Figures 1 and 2 (the actually obtained base sequence is the 5'
- side upstream CGT-CCT-ATC-ATC-ACA
-AAA-CTC-ATG). Also shown is the translation of this DNA base sequence into amino acids according to the codon table.

このアミノ酸配列をり、 H,sho t tonらの
報告(前掲)にあるブタエラスターゼエのそれと比較し
たところ、第3図に示すように58%の相同性が認めら
れた。
When this amino acid sequence was compared with that of porcine elastase reported by H. Shotton et al. (cited above), 58% homology was found as shown in FIG.

■、ヒトエラススフゼIi伝子の′生 でのlacプロ
モータを含むプラスミドpUc8はファルマシアジャパ
ン株式会社より入手した。このプラスミドを制限酵素H
i nclrで切断した。
(2) Plasmid pUc8 containing the lac promoter of the human elassus Ii gene was obtained from Pharmacia Japan Co., Ltd. Use this plasmid with restriction enzyme H
It was cut with inclr.

一方、ヒトエラスターゼII伝子については前記のpH
ELIを制限酵素AccIで切断後、ざらにNcoIで
部分切断した後、dATP、dC丁P、dG丁P、dT
TPの存在下でDNAポリメラーゼエクレノウ断片を動
らかせて、制限酵素切断点を平滑化した。この後、アガ
ロースゲル電気泳動により約1kbの断片を取得した。
On the other hand, for human elastase II gene, the above pH
After cutting ELI with the restriction enzyme AccI and partially cutting with NcoI, dATP, dC-P, dG-P, dT
Restriction enzyme cut points were blunted by running DNA polymerase Eklenow fragment in the presence of TP. Thereafter, a fragment of approximately 1 kb was obtained by agarose gel electrophoresis.

この二つの断片を混ぜ合せ、T4リガーゼで結合後、大
腸菌に導入したく第4図参照)。生成形質転換体よりプ
ラスミドを取得してその各種制限酵素による分解パター
ンを調べて、意図どおり組込みが行なわれたことを確認
した。この場合に得られたプラスミド(1)KB4と呼
ぶ)はそのDNA塩基配列より推定すると、ヒトエラス
ターゼ■蛋白のN末端のValが1後脱落し10個のア
ミノ酸が付加したものに相当する。
These two fragments are mixed, ligated with T4 ligase, and then introduced into E. coli (see Figure 4). Plasmids were obtained from the resulting transformants and their degradation patterns with various restriction enzymes were examined to confirm that the integration had been carried out as intended. The plasmid (1) KB4 obtained in this case is estimated from its DNA base sequence to correspond to human elastase (2) protein with Val at the N-terminus removed after one step and 10 amino acids added.

このプラスミドpK84を含む大腸菌をし培地100d
でアンピシリン存在下に一夜37℃で培養後、遠心分離
して集菌した。これを20mMTris−HCI (p
H8,0)緩衝液1.5dに懸濁させ、超音波で破砕後
、この菌体液に水酸化ナトリウム溶液を0.0INにな
るように加え、5℃で3分間撹拌後、等モルの塩酸溶液
を加えて中和した。5℃で10.OOOrpmにて20
分間遠心分離して、上清を取得した。この上清100μ
mを用いてエラスターゼ■のRIAキット(ダイナボッ
ト■製造)により上清中のヒトエラスター12I含吊を
測定した。なお、このキットは原理としてラジオイムノ
アッセイを用い、血中のヒトエラスターゼ■を定量する
目的でつくられたものである。この結果、上記培養菌体
中には1.8■のヒトエラスターゼエが同定された。菌
体あたり102分子発現していると推定された。
E. coli containing this plasmid pK84 was cultured for 100 d.
After culturing at 37°C overnight in the presence of ampicillin, the cells were collected by centrifugation. This was mixed with 20mM Tris-HCI (p
H8,0) was suspended in 1.5 d of buffer solution and disrupted by ultrasonication, then sodium hydroxide solution was added to this bacterial cell solution to a concentration of 0.0 IN, and after stirring at 5°C for 3 minutes, equimolar hydrochloric acid was added. Solution was added to neutralize. 10. at 5°C. 20 at OOOrpm
The supernatant was obtained by centrifugation for a minute. 100μ of this supernatant
The content of human elastase 12I in the supernatant was measured using an elastase 1 RIA kit (manufactured by Dynabot 2) using m. This kit was created for the purpose of quantifying human elastase (■) in blood using radioimmunoassay as its principle. As a result, 1.8 μ of human elastase was identified in the cultured cells. It was estimated that 102 molecules were expressed per bacterial cell.

微生物の寄託 本発明に関係する下記の微生物は、工業技術院微生物工
業技術研究所から受託が拒否された。
Deposit of Microorganisms The following microorganisms related to the present invention were rejected by the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology.

(1) ヒトエラスターゼエ遺伝子含有プラスミドDH
ELIを含む大腸菌RRI株(EHEL1株)。
(1) Human elastase gene-containing plasmid DH
E. coli RRI strain (EHEL1 strain) containing ELI.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1〜2図は、ヒトエラスターゼIEI伝子およびその
前駆体遺伝子のDNA塩基配列とその塩基配列より推定
されるアミノ酸配列とを示すものであって、第1図は1
80番目のアミノ酸までを、第2図は181番目以降の
アミノ酸を示すものである。 第3図は、ヒトエラスターゼエ道伝子(上段)とブタエ
ラスターゼエ遺伝子(下段)の相同性を示すものである
。*じるしは、対応するアミノ酸が一致していることを
示す。 第4図は、Iacプロモーターを利用した大腸菌プラス
ミドpKB4の作成法を示すフローシートである。 出願人代理人  猪  股    清 +10 Ala Ser Leu Pro Pro Ala G
ly Asp Ile Leu Pr。 GCCTCA CTG CCT  CCCGCT GG
T  GACATCCTT  CCC。 ’、CCCAG CrG GGA GAT GCCGT
CCAG CTC域mにA CCCTGCTにATCA
CC印C第2図 AACTGCCCCACA GAG GAT GGT 
GGCTGG CAG GTC1m GGCTGCAA
CTTCATCTGG AAG CCT ACA GT
G ’TCCCACATCCTG AAT AAA G
AA TAA AGA TCT CTCTrp Trp
 Gly Ser Thr Val Lys Lys 
Thr丁GG  TGG  GGT  TCCACCG
TG  AハG  AAA  ACCSACGGT G
TG ACC、AGCTTT GTT TCT GGC
rTCACT CGA GTCTCCGCCTTCAT
CGAC:AA GGCCCA GCT GGCAGT
 CCT GAT CGA手続補正書動式) 昭和60年3月28日 1 事件の表示 昭和59年 特許願 第231832号2 発明の名称 ヒトエラスターゼエの生物工学的製造 3 補正をする者 事件との関係  特許出願人 11M   麦  酒  株  式  会  社4代理
人 昭和60年2月6日 (発送日 昭和60年2月26日) 6 補正の対象 明細書の「特許請求の範囲」、「発明の詳細な説明J7
 補正の内容 1) 特許請求の範囲を別紙の通り補正する。 2) 明細書を、下記の通りに補正する。 (1)  第6頁第2行 「D、」を、 [ディー・エム・ショットンら<[)、Jと補正。 (2)  第6頁第3行 「al」を、ral)Jと補正。 (3)  第6頁第4行 r (Nature)J を、 [(ネーチw−(、Nature))Jと補正。 (4)  第6頁第6行 「RaymondJを、「レイモント・シエー・マクド
ナルドら(RaymondJと補正。 (5)  第6頁6行 「al」を、ra I ) Jと補正。 (6)  第6頁第9行 r(BiochemistryJを、U(バイオケミス
トリー([3iochemistry)Jと補正。 川r)   弔 0具弔 101丁 力・工・ビオフィジ力・アクタ(C,Jと補正。 (8)  第6頁第17行 rActaJを、rACta)Jと補正。 (9)  第12頁表の最左欄上際 「E、coliJを、[ニジエリギア・コリ」(E、c
oli)Jと補正。 (10)第12頁表の最左欄下際 rs、cerev i s i aeJを、[サツカロ
マイセス・セレビシェ(S、cerev i s i 
ae)」と補正。 (11)第19頁第13行 「一群は」とrEJとの間に、[エシェリキア・コリ(
」を加入。 (12)  第19頁第13行 [coliJを、rcOIi)Jと補正。 (13)第19頁第14行 「一群は」と「S」との間に、[サツカロマイセス・セ
レビシェ(」を加入。 114J粥I MjR5tS 1 仔[(15)第23
頁第3行 「王、」を、[ティー・マニアテイス、イー・エフ、フ
リツチュ、ジエー・サムルツク:モレキュラー・クロー
ニングーア・ラボラトリ−・アニュアル、コールド・ス
プリング・ハーバ−・ラボラトリ−(T、」と補正。 (16)第23頁第6行 [1aboratoryJを、rLaboratory
)Jと補正。 (17)第24頁第13行 r(J、Jを、[(ジエー・メラー、エム・ジ工−・ド
ブノン、エフ・ニー・ロバーツ、エム、エフ・ラード、
ジエー・ニス・エムタグル、ニス・ホワイト、ビー・ニ
ー・ロウ、ティー・ベート、ニー・ジエー・キンゲスマ
ン、ニス・エム・キンゲスマン:ジーン(J、」と補正
。 (18)第24頁第16行 rGeneJをrGene)Jと補正。 (19)第27頁第2行 「(B」を、「(エフ・ポリバー:ジーン(BJと補正
。 (20)第27頁第3行 rGeneJを、l”Gene)Jと補正。 (21)第27頁第7行 rBiochemistryJを、[バイオヶミスリリ
−(Biochemistry)J と補正。 (22)第27頁下から第4行 「E、」を、「イー・オーツカ、エム・イヶハラ、ディ
ー・ソル:ヌイレイック・アシッズ・リサーチ(E、」
と補正。 (23)第27真下から第3行 rResearchJを、rResearch)jと補
正。 (24)第29頁第2行 r (T、Jを、「ティー・マニアティスら:モレキュ
ラー・クローニングーア・ラボラトリ−・マニュアル(
T、」と補正。 (25)第29頁第3〜4行 「参照」を、「)参照」と補正。 (26)  第31頁第7行 「D、」を、「ディー・エム・ショットン(D、」と補
正。 (27)  第31頁第7行 「nら」を、rn)ら」と補正。 3) 図面を別紙の通りに浄書する(内容に変更なし)
。 特許請求の範囲 1、 下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるア
ミノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有す
ることを特徴とする、ヒトエラスターゼ■の生物工学的
産生能を有するDNA鎖。 (1) 第1図および第2図にわたって示されているア
ミノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2) 第1
図および第2図にわたって示されているアミノ酸配列の
うち、BからDまでのもの、(3) 第1図および第2
図にわたって示されているアミノM配列のうち、Aから
Dまでのもの。 2、 ポリペプチドをコードする塩基配列が第1図およ
び第2図にわたって示されている塩基配列のうちCから
Dまでのもの、BからDまでのもの、またはAからDま
でのもの、である特許請求の範囲第1項に記載のDNA
鎖。 3、 下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるア
ミノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有す
るDNA鎖をその遺伝情報が発現可能な状態で含むプラ
スミドによって形質転換されたものであることを特徴と
する、ヒトエラスターゼエ産生能を有する微生物。 (1) 第1図および第2図にわたって示されているア
ミノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2) 、第
1図および第2図にわたって示されているアミノ酸配列
のうち、BからDまでのもの、(3) 第1図および第
2図にわたって示されているアミノ酸配列のうち、Aか
らDまでのもの。 4、 微生物がエシェリキア・コリ(Escheric
hia coli)である、特許請求の範囲第3項に記
載の微生物。 5、  DNA鎖が、その塩基が第1図および第2図に
わたって示されている塩基配列のうちCからDまでのも
の、BからDまでのもの、または八からDまでのもの、
である特許請求の範囲第3〜4項のいずれか1項に記載
の微生物。 6、 下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるア
ミノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有す
るDNA鎖を用意し、このDNA鎖を、これをその遺伝
情報が発現可能な状態で含むプラスミドの作成、このプ
ラスミドによる微生物の形質転換および得られる形質転
換体の培養からなる工程に付して、培養物中にヒトエラ
スターゼエを産生させることを特徴とする、ヒトエラス
ターゼエの生物工学的製造法。 (1) 第1図および第2図にわたって示されているア
ミノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2) 第1
図および第2図にわたって示されているアミノ酸配列の
うち、BからDまでのもの、(3) 第1図および第2
図にわたって示されているアミノ酸配列のうち、Aから
Dまでのもの。 7、 微生物がエシエ1ギ ・コリ l Escherichia cot i >である、
特許請求の範囲第6項に記載の方法。 8、  DNA鎖が、その塩基が第1図および第2図に
わたって示されている塩基配列のうちCからDまでのも
の、BからDまでのもの、またはAからDまでのもの、
である特許請求の範囲第6〜7項のいずれか1項に記載
の方法。 0     ”dl  7C77%  rh  夛マ手
続補正書 昭和60年5月20日
Figures 1 and 2 show the DNA base sequence of the human elastase IEI gene and its precursor gene, and the amino acid sequence deduced from the base sequence.
Figure 2 shows the amino acids up to the 80th amino acid and from the 181st onwards. FIG. 3 shows the homology between the human elastase gene (upper row) and the porcine elastase gene (lower row). *A symbol indicates that the corresponding amino acids are identical. FIG. 4 is a flow sheet showing a method for constructing E. coli plasmid pKB4 using the Iac promoter. Applicant's representative Kiyoshi Inomata +10 Ala Ser Leu Pro Pro Ala G
ly Asp Ile Leu Pr. GCCTCA CTG CCT CCCGCT GG
T GACATCCTT CCC. ', CCCAG CrG GGA GAT GCCGT
CCAG CTC area m A CCCT GCT ATCA
CC mark C Figure 2 AACTGCCCCACA GAG GAT GGT
GGCTGG CAG GTC1m GGCTGCAA
CTTCATCTGG AAG CCT ACA GT
G 'TCCCACATCCTG AAT AAA G
AA TAA AGA TCT CTCTrp Trp
Gly Ser Thr Val Lys Lys
Thr Ding GG TGG GGT TCCACCG
TG AhaG AAA ACCSACGGT G
TG ACC, AGCTTT GTT TCT GGC
rTCACT CGA GTCTCCGCCTTCAT
CGAC:AA GGCCCA GCT GGCAGT
CCT GAT CGA procedural amendment form) March 28, 1985 1 Display of the case 1988 Patent Application No. 231832 2 Name of the invention Biotechnological production of human elastaseae 3 Person making the amendment Relationship to the case Patent Applicant 11M Beer Co., Ltd. Company 4 Agent February 6, 1985 (Delivery date February 26, 1985) 6 “Claims” and “Detailed description of the invention” in the specification to be amended J7
Contents of amendment 1) The scope of claims is amended as shown in the attached sheet. 2) The description shall be amended as follows. (1) Page 6, line 2, “D,” was corrected to [DM Shotton et al. < [), J. (2) Page 6, line 3, “al” was corrected to ral)J. (3) Correct page 6, line 4 r (Nature)J to [(Nach w-(, Nature))J. (4) Page 6, line 6, ``RaymondJ'' was corrected as ``Raymond Shea McDonald et al. (RaymondJ.) (5) Page 6, line 6, ``al'' was corrected as ra I) J. (6) Page 6, line 9 r (Biochemistry J is corrected as U (Biochemistry ([3iochemistry) J. River r) Condolences 0gucondolences 101 Ding force, Engineering, Biophysics force, Acta (Corrected as C, J. 8) Page 6, line 17, rActaJ is corrected to rACta)J. (9) At the top of the leftmost column of the table on page 12, "E, coli
oli) J and correction. (10) At the bottom of the leftmost column of the table on page 12, select rs, cerevis i aeJ, [S, cerevis i
ae)” and amended. (11) Page 19, line 13, between “A group is” and rEJ, [Escherichia coli (
” has been added. (12) Page 19, line 13 [coliJ, rcOIi) Corrected as J. (13) Page 19, line 14, between “Ichiwa” and “S”, add [Satsucharomyces cerevisiae (”).
The third line of the page, "King," is changed to [T. Maniatitis, E.F., Fritzsch, J. Samlczuk: Molecular Cloning Laboratory Annual, Cold Spring Harbor Laboratory (T.] Correction. (16) Page 23, line 6 [1laboratoryJ, rLaboratory
) J and correction. (17) Page 24, line 13 r (J, J,
G. N. M. Tagle, N. N. White, B. N. Law, T. Bate, N. G. Kingesman, N. M. Kingesman: Corrected as Gene (J,). (18) Page 24, Line 16 rGeneJ Corrected with rGene)J. (19) Correct “(B” in the second line of page 27 to “(F Poliver: Gene (BJ).” (20) Correct rGeneJ in the third line of page 27 to l”Gene)J. (21) Page 27, line 7, rBiochemistryJ, is corrected to [Biochemistry J. (22) Page 27, line 4 from the bottom, ``E,'' is changed to ``E.・Aids Research (E)
and correction. (23) Correct the third line rResearchJ from directly below the 27th line to rResearch)j. (24) Page 29, line 2 r (T, J, “T. Maniatis et al.: Molecular Cloning Laboratory Manual (
T,” he corrected. (25) On page 29, lines 3 and 4, "reference" was corrected to "reference in parentheses". (26) Page 31, line 7, “D,” is corrected to “DM Shotton (D,”). (27) Page 31, line 7, “n et al.” is corrected to “rn) et al.” . 3) Print the drawing as shown in the attached sheet (no changes to the content)
. Claim 1: Having the biotechnological production ability of human elastase (2), characterized by having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below. DNA strand. (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) the first
Among the amino acid sequences shown in Figures and Figures 2, those from B to D, (3) Figures 1 and 2.
Among the amino M sequences shown throughout the figures, those from A to D. 2. The nucleotide sequence encoding the polypeptide is from C to D, from B to D, or from A to D among the nucleotide sequences shown in Figures 1 and 2. DNA according to claim 1
chain. 3. Transformed with a plasmid containing a DNA chain having a base sequence encoding a polypeptide with an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below in a state in which the genetic information can be expressed. A microorganism capable of producing human elastase, characterized by the following. (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) Among the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from B to D. (3) Among the amino acid sequences shown in FIGS. 1 and 2, those from A to D. 4. The microorganism is Escherichia coli.
The microorganism according to claim 3, which is Hia coli. 5. A DNA strand whose bases are from C to D, from B to D, or from 8 to D among the base sequences shown in Figures 1 and 2;
The microorganism according to any one of claims 3 to 4. 6. Prepare a DNA strand having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below, and transform this DNA strand into a state in which its genetic information can be expressed. An organism of human elastase, characterized in that it produces human elastase in a culture by subjecting it to the steps of creating a plasmid containing the plasmid, transforming a microorganism with the plasmid, and culturing the resulting transformant. Engineering manufacturing methods. (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) the first
Among the amino acid sequences shown in Figures and Figures 2, those from B to D, (3) Figures 1 and 2.
Among the amino acid sequences shown throughout the figures, those from A to D. 7. The microorganism is Escherichia coli >
A method according to claim 6. 8. A DNA strand whose bases are from C to D, from B to D, or from A to D among the base sequences shown in Figures 1 and 2;
The method according to any one of claims 6 to 7. 0 ”dl 7C77% rh 夛まProceedings Amendment May 20, 1985

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1、下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるアミ
ノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有する
ことを特徴とする、ヒトエラスターゼ I の生物工学的
産生能を有するDNA鎖。 (1)第1図および第2図にわたって示されているアミ
ノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2)第1図お
よび第2図にわたって示されているアミノ酸配列のうち
、BからDまでのもの、(3)第1図および第2図にわ
たって示されているアミノ酸配列のうち、AからDまで
のもの。 2、ポリペプチドをコードする塩基配列が第1図および
第2図にわたつて示されている塩基配列のうちCからD
までのもの、BからDまでのもの、またはAからDまで
のもの、である特許請求の範囲第1項に記載のDNA鎖
。 3、下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるアミ
ノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有する
DNA鎖をその遺伝情報が発現可能な状態で含むプラス
ミドによって形質転換されたものであることを特徴とす
る、ヒトエラスターゼ I 産生能を有する微生物。 (1)第1図および第2図にわたって示されているアミ
ノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2)第1図お
よび第2図にわたって示されているアミノ酸配列のうち
、BからDまでのもの、(3)第1図および第2図にわ
たって示されているアミノ酸配列のうち、AからDまで
のもの。 4、微生物が、Escherichia coliであ
る、特許請求の範囲第3項に記載の微生物。 5、DNA鎖が、その塩基が第1図および第2図にわた
って示されている塩基配列のうちCからDまでのもの、
BからDまでのもの、またはAからDまでのもの、であ
る特許請求の範囲第3〜4項のいずれか1項に記載の微
生物。 6、下記の(1)〜(3)からなる群から選ばれるアミ
ノ酸配列のポリペプチドをコードする塩基配列を有する
DNA鎖を用意し、このDNA鎖を、これをその遺伝情
報が発現可能な状態で含むプラスミドの作成、このプラ
スミドによる微生物の形質転換および得られる形質転換
体の培養からなる工程に付して、培養物中にヒトエラス
ターゼ I を産生させることを特徴とする、ヒトエラス
ターゼ I の生物工学的製造法。 (1)第1図および第2図にわたって示されているアミ
ノ酸配列のうち、CからDまでのもの、(2)第1図お
よび第2図にわたって示されているアミノ酸配列のうち
、BからDまでのもの、(3)第1図および第2図にわ
たって示されているアミノ酸配列のうち、AからDまで
のもの。 7、微生物がEscherichia coliである
、特許請求の範囲第6項に記載の方法。 8、DNA鎖が、その塩基が第1図および第2図にわた
って示されている塩基配列のうちCからDまでのもの、
BからDまでのもの、またはAからDまでのもの、であ
る特許請求の範囲第6〜7項のいずれか1項に記載の方
法。
[Claims] 1. Biotechnological production ability of human elastase I, characterized by having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below. A DNA strand with (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) Among the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from B to D. (3) Among the amino acid sequences shown in FIGS. 1 and 2, those from A to D. 2. Of the base sequences that code for polypeptides shown in Figures 1 and 2, C to D
The DNA strand according to claim 1, which is from B to D, or from A to D. 3. Transformed with a plasmid containing a DNA strand having a base sequence encoding a polypeptide with an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below in a state in which the genetic information can be expressed. A microorganism capable of producing human elastase I, characterized by: (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) Among the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from B to D. (3) Among the amino acid sequences shown in FIGS. 1 and 2, those from A to D. 4. The microorganism according to claim 3, wherein the microorganism is Escherichia coli. 5. The DNA strand has the base sequence from C to D among the base sequences shown in Figures 1 and 2,
The microorganism according to any one of claims 3 to 4, which is a microorganism from B to D or from A to D. 6. Prepare a DNA strand having a base sequence encoding a polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of (1) to (3) below, and transform this DNA strand into a state in which its genetic information can be expressed. 1. A human elastase I organism characterized by producing human elastase I in a culture by subjecting it to a process consisting of creating a plasmid containing the plasmid, transforming a microorganism with this plasmid, and culturing the resulting transformant. Engineering manufacturing methods. (1) Of the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from C to D; (2) Among the amino acid sequences shown in Figures 1 and 2, those from B to D. (3) Among the amino acid sequences shown in FIGS. 1 and 2, those from A to D. 7. The method according to claim 6, wherein the microorganism is Escherichia coli. 8. The DNA strand has the base sequence from C to D among the bases shown in Figures 1 and 2,
8. A method according to any one of claims 6 to 7, wherein the method is from B to D or from A to D.
JP59231832A 1984-11-02 1984-11-02 Bio-engineering preparation of human elastase i Pending JPS61111688A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP59231832A JPS61111688A (en) 1984-11-02 1984-11-02 Bio-engineering preparation of human elastase i

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP59231832A JPS61111688A (en) 1984-11-02 1984-11-02 Bio-engineering preparation of human elastase i

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPS61111688A true JPS61111688A (en) 1986-05-29

Family

ID=16929712

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59231832A Pending JPS61111688A (en) 1984-11-02 1984-11-02 Bio-engineering preparation of human elastase i

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS61111688A (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62276A (en) * 1985-06-25 1987-01-06 Sankyo Co Ltd Production of pancreas elastase
EP0244189A2 (en) * 1986-04-26 1987-11-04 Sankyo Company Limited Human pancreatic elastase I
EP0398621A2 (en) * 1989-05-18 1990-11-22 SHIONOGI SEIYAKU KABUSHIKI KAISHA trading under the name of SHIONOGI &amp; CO. LTD. Immunoassay of elastase-1
JPH0818144B2 (en) * 1988-10-20 1996-02-28 コンタクツ・メタルズ・アンド・ウェルディング・インコーポレーテッド Resistance welding electrode and resistance welding method
US6602984B1 (en) 1994-07-05 2003-08-05 Human Genome Sciences, Inc. Human elastase IV

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62276A (en) * 1985-06-25 1987-01-06 Sankyo Co Ltd Production of pancreas elastase
EP0244189A2 (en) * 1986-04-26 1987-11-04 Sankyo Company Limited Human pancreatic elastase I
JPH0818144B2 (en) * 1988-10-20 1996-02-28 コンタクツ・メタルズ・アンド・ウェルディング・インコーポレーテッド Resistance welding electrode and resistance welding method
EP0398621A2 (en) * 1989-05-18 1990-11-22 SHIONOGI SEIYAKU KABUSHIKI KAISHA trading under the name of SHIONOGI &amp; CO. LTD. Immunoassay of elastase-1
US6602984B1 (en) 1994-07-05 2003-08-05 Human Genome Sciences, Inc. Human elastase IV

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU638277B2 (en) Fusion proteins, their preparation and use
JP2781459B2 (en) Fusion protein containing N-terminal fragment of human serum albumin
AU689569B2 (en) Enhanced secretion of polypeptides
FR2730495A1 (en) PROINSULIN DERIVATIVE AND PROCESS FOR THE PRODUCTION OF HUMAN INSULIN
CS250655B2 (en) Method of microorganisme&#39;s viable culture&#39;s cultivation with means content for asexual regeneration
JPS62272976A (en) Mutant tissue plasminogen activator and its production
PL183228B1 (en) Production of anzymatically active recombinative carboxypeptidase b
US5552302A (en) Methods and compositions for production of human recombinant placental ribonuclease inhibitor
KR940000199B1 (en) Human REG protein
US5459051A (en) Methods and vectors for over-expression of ubiquitin fusion proteins in host cells
JPS61111688A (en) Bio-engineering preparation of human elastase i
JPS60221094A (en) Incidence vehicle
EP0422217B1 (en) Human recombinant placental ribonuclease inhibitor and method of production
JPS62502657A (en) DNA array
JPS60186284A (en) Biotechnological production of butaerastase i
JPS61192288A (en) Bionic production of human elastase ii
US5045471A (en) Cloned DNA for P450scc and expression thereof
KR0145325B1 (en) REG protein
EP0622459A1 (en) Fused proteins for preparing vasoactive intestinal polypeptide analogs, method of preparing same and recombinant plasmids and transformant microorganisms
JP2002541793A (en) Production of pancreatic procarboxypeptidase B, its isoforms and muteins and their use
JPH11500919A (en) Multidrug resistance gene of Aspergillus flavus
JPS61192289A (en) Bionic production of swine elastase ii
JP2623807B2 (en) Serine protease and serine protease gene
DE3851864T2 (en) Acyl peptide hydrolase, process for its preparation and use.
JPH0683670B2 (en) Deoxyribonucleic acid