JPH07113000A - Monoclonal antibody against anti-mink-growth hormone and hybridoma - Google Patents
Monoclonal antibody against anti-mink-growth hormone and hybridomaInfo
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- JPH07113000A JPH07113000A JP5258463A JP25846393A JPH07113000A JP H07113000 A JPH07113000 A JP H07113000A JP 5258463 A JP5258463 A JP 5258463A JP 25846393 A JP25846393 A JP 25846393A JP H07113000 A JPH07113000 A JP H07113000A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、抗ミンク成長ホルモン
モノクローナル抗体及びそれを産生するハイブリドーマ
に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to an anti-mink growth hormone monoclonal antibody and a hybridoma producing the same.
【0002】[0002]
【従来の技術】従来、ミンク成長ホルモンを定量する方
法としては、例えば、他の動物の成長ホルモンを定量す
る方法、すなわち、ratGH[125I]アッセイシステム(ア
マシャム社製)を用いる方法等が挙げられる。2. Description of the Related Art Conventionally, as a method for quantifying mink growth hormone, for example, a method for quantifying growth hormone of other animals, that is, a method using ratGH [ 125 I] assay system (manufactured by Amersham) and the like can be mentioned. To be
【0003】しかしながら上記方法によるときには、放
射性同位元素を用いるために特別な施設を必要とし、
又、危険性を伴い、更に、そのアツセイには約1.5日間
と長時間必要とする等の欠点があった。そこで、このよ
うな欠点のないモノクローナル抗体の開発が望まれてい
た。However, according to the above method, a special facility is required to use the radioisotope,
In addition, there are some drawbacks such as the danger and the need for a long time of about 1.5 days. Therefore, it has been desired to develop a monoclonal antibody that does not have such drawbacks.
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする課題】そこで本発明者等は、
上記実情に鑑み種々検討した結果、組み換え型ミンク成
長ホルモンにより免疫を施した動物より得た抗体産生細
胞と増殖性の高い細胞との融合細胞より、目的とする抗
原、すなわち、ミンク成長ホルモンに対して特異的に反
応する抗体を産生するクローンを選択し、モノクローン
化することにより、特異性の高い抗体を作り出すことが
出来ること、また、この抗体を用いてミンク成長ホルモ
ンを定量すれば、安全かつ数時間のうちにミンク成長ホ
ルモンを測定出来ること等を知見し、本発明を完成し
た。Therefore, the present inventors
As a result of various examinations in view of the above circumstances, from a fused cell of antibody-producing cells and highly proliferative cells obtained from an animal immunized with recombinant mink growth hormone, a target antigen, that is, to mink growth hormone It is possible to produce a highly specific antibody by selecting a clone that produces an antibody that specifically reacts with it and monocloning it, and it is safe to quantify mink growth hormone using this antibody. Moreover, they have found that mink growth hormone can be measured within a few hours, and completed the present invention.
【課題を解決するための手段】すなわち、本発明は、ミ
ンク成長ホルモンと反応性を有するモノクローナル抗体
である。さらに、本発明は、動物を、ミンク成長ホルモ
ンで免疫し、該動物からの抗体産生細胞と増殖性の高い
細胞との細胞融合によって形成されたハイブリドーマか
ら産生されるIgM型抗ミンク成長ホルモンモノクロー
ナル抗体である。さらに、本発明は、動物を、ミンク成
長ホルモンで免疫し、該動物からの抗体産生細胞と増殖
性の高い細胞との細胞融合によって形成されたIgM型
抗ミンク成長ホルモンモノクローナル抗体産生能を有す
るハイブリドーマである。That is, the present invention is a monoclonal antibody reactive with mink growth hormone. Furthermore, the present invention relates to an IgM type anti-mink growth hormone monoclonal antibody produced from a hybridoma formed by immunizing an animal with mink growth hormone and fusing antibody-producing cells from the animal with highly proliferative cells. Is. Furthermore, the present invention provides a hybridoma having the ability to produce an IgM type anti-mink growth hormone monoclonal antibody, which is formed by immunizing an animal with mink growth hormone and cell fusion of antibody-producing cells from the animal with highly proliferative cells. Is.
【0005】以下、本発明を詳細に説明する。本発明の
目的を達成するためには、抗体を産生する新規なモノク
ローンハイブリドーマを確立することにある。このハイ
ブリドーマを確立する方法は、1.抗原の調製、2.免
疫、3.細胞融合、及び4.ハイブリドーマの選択とモ
ノクローン化の4工程からなる。次にこの各工程につい
て説明する。 1.抗原ミンク成長ホルモンとしては、天然型ミンク成
長ホルモン、組み換え型ミンク成長ホルモン等、由来は
いずれのものであってもよい。 2.免疫動物は、細胞融合に使用する腫瘍細胞株によっ
て決定され、例えば、マウス、ラットが用いられ、マウ
スの種類の中でも免疫グロブリンを産生しない腫瘍細胞
株の確立されているBALB/c系統が好ましい。 上記抗原を、等張緩衝液或いは生理食塩水などに溶解し
て、マウスの場合1匹当り1回に10〜300μgを投与す
る。通常免疫は数回に分けて行ない、初回免疫は、アジ
ュバンドと共に投与する。アジュバンドとしては、ミョ
ウバン、結核死菌、核酸等を常用する。免疫は、2〜4週
間隔で行ない、最終免疫はアジュバンドを使用せず行な
う。投与方法はマウスの場合、腹腔、皮下等が一般的で
あり、静脈内投与等も行なうことができる。最終免疫2
〜4日後にリンパ節或いは脾臓を摘出し、得られたリン
パ球を増殖性の高い細胞との細胞融合に供する。増殖性
の高い細胞として、例えば、P3X63Ag8U.1(U1)、P3X63Ag
8.653(653)、P3/NS1/1-Ag4-1(NS-1)、SP2/0-Ag14(SP2)
等が挙げられる。The present invention will be described in detail below. In order to achieve the object of the present invention, a novel monoclonal clone hybridoma producing an antibody is established. The method for establishing this hybridoma is 1. Preparation of antigen, 2. Immunity, 3. Cell fusion, and 4. It consists of four steps: selection of hybridoma and monocloning. Next, each of these steps will be described. 1. The antigen mink growth hormone may be derived from any of natural mink growth hormone and recombinant mink growth hormone. 2. The animal to be immunized is determined by the tumor cell line used for cell fusion, and for example, mice and rats are used, and among the types of mice, the BALB / c strain in which a tumor cell line that does not produce immunoglobulin is established is preferable. The above-mentioned antigen is dissolved in an isotonic buffer solution or a physiological saline solution, and in the case of a mouse, 10 to 300 μg is administered once per mouse. Usually, immunization is divided into several times, and the first immunization is administered together with an adjuvant. As adjuvants, alum, killed tuberculosis bacteria, nucleic acids and the like are commonly used. Immunization is performed every 2 to 4 weeks, and final immunization is performed without using adjuvant. In the case of mice, the administration method is generally intraperitoneal or subcutaneous, and intravenous administration or the like can also be performed. Final immunity 2
~ 4 days later, the lymph node or spleen is removed, and the obtained lymphocytes are subjected to cell fusion with highly proliferative cells. As highly proliferative cells, for example, P3X63Ag8U.1 (U1), P3X63Ag
8.653 (653), P3 / NS1 / 1-Ag4-1 (NS-1), SP2 / 0-Ag14 (SP2)
Etc.
【0006】3.細胞融合は、例えば、[G.Galfre,Natu
re,266,550(1977)]に記載の方法又はこれに準ずる方法
によって行なうことができる。この際、30〜50%ポリエ
チレングリコール(平均分子量1,000〜4,000)を用いて
30〜40℃の温度下、約1〜3分間ほど反応させると好適
である。なお、フィーダ細胞としては、BALB/cマウスの
胸腺細胞あるいはヒト・インターロイキンVI等の細胞増
殖促進成分等を用いることができる。 4.細胞融合によって得られた融合細胞は、常法に従
い、目的とするモノクローナル抗体を産生するクローン
のスクリーニングに供する。すなわち、当該細胞を、例
えば、マイクロプレート(96穴培養プレート等)中で培
養し、増殖の見られた穴の培養上清中の抗体価を、例え
ば酵素抗体法(ELISA)等によって測定し、適切な
抗体を産生している穴を得る。このような穴から更に例
えばFACS(Fluoresent Activated Cell Sorter)、Sof
t Agarを用いてコロニーを拾い上げる方法、一般によく
用いられる限界稀釈法等によってクローニングを行なっ
てクローンを得る。このクローンは、例えば、予めプリ
スタンを投与したBALB/cマウスあるいはヌードマウスの
腹腔内へ移植し、7〜14日後にモノクローナル抗体を高
濃度に含む腹水を採取し検定する。または、牛血清アル
ブミン(0.1〜1%)含有無血清培地中でも増殖させる
ことができる。すなわち、0.5%牛血清アルブミン含有
無血清培地(例えばRITC55-9培地)中で増殖させ、
培養上清を採取する。選ばれたクローンの産生するモノ
クローナル抗体の回収は、免疫グロブリンの精製法とし
て従来既知の硫安分画法、ポリエチレングリコール分画
法、エタノール分画法、陰イオン交換体、或いはイムノ
グロブリン・アフィニティーカラム等を応用することで
容易に行なうことができる。かくして本発明は、ミンク
成長ホルモンを抗原としてマウス腹腔内投与により得ら
れた抗体を提供する。すなわち、ミンク成長ホルモンに
特異的な抗原を認識し、ミンク成長ホルモンへの結合が
ミンク成長ホルモンにより阻害され、コントロール(ミ
ルク蛋白質によるブロックのみを行なったELISAプ
レート)に反応しないIgM型の抗ミンク成長ホルモン
モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローン
3株、MGH-1(11E)、MGH-3(14B6)及びMGH-3(15B10)を提供
する。3. Cell fusion is described, for example, in [G. Galfre, Natu
re, 266, 550 (1977)] or a method analogous thereto. At this time, use 30-50% polyethylene glycol (average molecular weight 1,000-4,000)
It is suitable to react at a temperature of 30 to 40 ° C. for about 1 to 3 minutes. As the feeder cells, thymocytes of BALB / c mice, cell growth promoting components such as human interleukin VI and the like can be used. 4. The fused cells obtained by cell fusion are subjected to screening of clones producing the desired monoclonal antibody according to a conventional method. That is, the cells are cultured in, for example, a microplate (96-well culture plate, etc.), and the antibody titer in the culture supernatant of the hole in which proliferation is observed is measured by, for example, the enzyme-antibody method (ELISA), Obtain holes producing the appropriate antibody. From such holes, for example, FACS (Fluoresent Activated Cell Sorter), Sof
A clone is obtained by cloning by a method of picking up a colony using t Agar or a commonly used limiting dilution method. This clone is, for example, transplanted into the abdominal cavity of BALB / c mouse or nude mouse to which pristane was previously administered, and after 7 to 14 days, ascites containing a high concentration of monoclonal antibody is collected and assayed. Alternatively, it can be grown in a serum-free medium containing bovine serum albumin (0.1 to 1%). That is, it is grown in a serum-free medium containing 0.5% bovine serum albumin (for example, RITC55-9 medium),
Collect the culture supernatant. Monoclonal antibodies produced by the selected clones are recovered by conventional ammonium sulfate fractionation methods, polyethylene glycol fractionation methods, ethanol fractionation methods, anion exchangers, immunoglobulin affinity columns, etc. It can be easily done by applying. Thus, the present invention provides an antibody obtained by intraperitoneal administration to mice using mink growth hormone as an antigen. That is, an anti-mink growth of IgM type that recognizes an antigen specific to mink growth hormone, its binding to mink growth hormone is inhibited by mink growth hormone, and does not react with a control (ELISA plate blocked only with milk protein). Provided are 3 hybridoma clones producing hormone monoclonal antibodies, MGH-1 (11E), MGH-3 (14B6) and MGH-3 (15B10).
【0007】[0007]
【発明の効果】本発明により、ミンク成長ホルモンと反
応性を有する新規なモノクローナル抗体及びそれを産生
するハイブリドーマが提供された。そして、このモノク
ローナル抗体は、ミンク成長ホルモンのみならずブタ、
ウシ及びヒトの成長ホルモンに対しても反応性を示す。
このモノクローナル抗体を用いてミンク成長ホルモンを
定量すれば、従来放射性同位元素を用いるため使用され
ていた特別な施設を使用することなく、安全かつ短時間
の内にミンク成長ホルモンを定量することができる。ま
た、ミンク以外のブタ、ウシ及びヒトの成長ホルモンも
定量することができる。したがって、本発明は産業上極
めて有用である。INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention provides a novel monoclonal antibody reactive with mink growth hormone and a hybridoma producing the same. And this monoclonal antibody is not only for mink growth hormone but also for pigs,
It is also reactive with bovine and human growth hormone.
If mink growth hormone is quantified using this monoclonal antibody, mink growth hormone can be quantified safely and in a short period of time without using a special facility that has been used to use radioactive isotopes. . In addition, porcine, bovine and human growth hormones other than mink can be quantified. Therefore, the present invention is extremely useful industrially.
【0008】[0008]
【実施例】以下に、本発明を実施例により具体的に説明
する。ただし、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限
定されるものではない。 実施例 抗ミンク成長ホルモンモノクローナル抗体を産生するハ
イブリドーマ及び抗体の作成: 1.組み換え型ミンク成長ホルモンの調製 特開平5-30974号公報の実施例記載の方法により組み換
え型ミンク成長ホルモンを得た。 2.免疫 組み換え型ミンク成長ホルモンをホウ酸緩衝液にて500
μg/mlになるように稀釈し、稀釈液1ml及びフロイント
の完全アジュバント1mlを混合してエマルジョンとし、
その200,100μlをBALB/cマウス(雌、8週齢)に
腹腔内投与した。14日後に同量の抗原をフロイントの
不完全アジュバントと共に腹腔内投与を行ない追加免疫
を施した。更に28日目、融合3日前に同量の抗原をア
ジュバント無で腹腔内に投与し、最終免疫を行なった。 3.胸腺細胞浮遊液の調製 ハイブリドーマ形成率を高めるフィーダー細胞として使
用する胸腺細胞浮遊液を調製した。ddYマウス、4〜6
週齢、雌を頚椎脱臼法により斃死させ、胸腺を摘出し、
10mlの生細胞洗浄液(MEM培地)を入れたプラスチッ
ク・シャーレ中で胸腺細胞を注意深くほぐし出した(マ
ウス3〜4匹分)。ほぐされた胸腺細胞は、メッシュ濾
過後遠心管に移し、2,000回転で5分間遠心し、上清を吸
引後30mlの生細胞洗浄液を加え洗浄、遠心し、HAT培
地(ヒポキサンチン13.6mg/l、アミノプテリン0.176mg/
l、チミジン3.8mg/l[HAT溶液]を含むハイブリドーマ増
殖培地)を加え、5×108個の胸腺細胞を含む浮遊液100m
lを得た。本細胞浮遊液は、200cm2フラスコに移し、炭
酸ガス培養装置内で1日培養した。なお、ハイブリドー
マ増殖培地は、抗生物質を含む20%FCS−IMDM培
地にL−グルタミン酸、2−メルカプト・エタノール、
トランスフェリン及びインスリンを添加した培地であ
る。EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples. However, the technical scope of the present invention is not limited to these examples. Example Preparation of hybridoma and antibody producing anti-mink growth hormone monoclonal antibody: Preparation of Recombinant Mink Growth Hormone Recombinant mink growth hormone was obtained by the method described in the example of JP-A-5-30974. 2. Immunorecombinant mink growth hormone 500 in borate buffer
Dilute to μg / ml, mix 1 ml of diluted solution and 1 ml of Freund's complete adjuvant to make an emulsion,
200,100 μl thereof was intraperitoneally administered to BALB / c mice (female, 8 weeks old). After 14 days, the same amount of antigen was intraperitoneally administered together with Freund's incomplete adjuvant to perform booster immunization. On the 28th day, 3 days before the fusion, the same amount of the antigen was intraperitoneally administered without an adjuvant for the final immunization. 3. Preparation of thymocyte suspension A thymocyte suspension used as feeder cells for increasing the rate of hybridoma formation was prepared. ddY mouse, 4-6
At the age of a week, females were killed by cervical dislocation and the thymus was removed,
Thymocytes were carefully loosened in a plastic petri dish containing 10 ml of a live cell washing solution (MEM medium) (for 3 to 4 mice). The loosened thymocytes were transferred to a centrifuge tube after mesh filtration, centrifuged at 2,000 rpm for 5 minutes, and the supernatant was aspirated, followed by washing with 30 ml of a live cell washing solution, centrifugation, and HAT medium (hypoxanthine 13.6 mg / l, Aminopterin 0.176 mg /
l, hybridoma growth medium containing thymidine 3.8 mg / l [HAT solution]), and a suspension 100 m containing 5 × 10 8 thymocytes
got l. The cell suspension was transferred to a 200 cm2 flask and cultured in a carbon dioxide gas culture device for 1 day. The hybridoma growth medium was prepared by adding 20% FCS-IMDM medium containing antibiotics to L-glutamic acid, 2-mercapto ethanol,
This is a medium supplemented with transferrin and insulin.
【0009】4.細胞融合 最終免疫より4日後、マウスの脾臓を摘出し、10mlの生
細胞洗浄液(MEM培地)を入れたプラスチック・シャ
ーレ中で脾臓リンパ球を注意深く押し出した(マウス3
〜4匹分)。ほぐされた脾臓リンパ球は、メッシュ濾過
後遠心管に移し、更に生細胞洗浄液を添加し全量を50ml
とし、1,600回転で5分の遠心操作を繰り返して2回洗浄
し、1〜2×108個の脾臓リンパ球を含む浮遊液50mlを得
た。6−チオグアニン耐性ミエローマ Sp-2/O-Ag14細胞
の浮遊液(2×107個の細胞を含む)と1×108個の脾臓リ
ンパ球を含む浮遊液を混合し1,600回転で5分間遠心して
ペッレト化した。上清の培地を吸引除去し、ペレットを
丁寧にほぐした。PEG溶液(PEG#4,000+DMSO他)1ml
を1分間かけてゆっくりと加え、用いたピペットで撹拌
しながら37℃で1分間融合させた。続けて基本培地(IMD
M培地)1mlを37℃で1分間かけて添加した。更にもう一
度同様の操作を繰り返した後、基本培地8mlを37℃で3分
間かけて添加した。得られた融合細胞浮遊液を項目3で
調製した胸腺細胞(フィーダー細胞)HAT培地浮遊液
に添加し良く懸濁させ、96穴培養プレート10〜14枚にこ
の細胞懸濁液を1穴当り0.1ml分注し、炭酸ガス培養装置
内で培養を行なった。 5.HAT選択 培養後1日目に、HAT培地を1穴当り更に0.15ml添加
し、第3日、6日および10日目に培地の半分を吸引除去
し、HAT培地を1穴当り0.1〜0.15ml加えた。10日目で
ハイブリドーマの増殖を確認したところ、ほぼ全穴での
増殖が観察された。4. Cell fusion 4 days after the final immunization, the spleen of the mouse was excised, and spleen lymphocytes were carefully extruded in a plastic petri dish containing 10 ml of a living cell washing solution (MEM medium) (mouse 3
~ 4). The loosened spleen lymphocytes are transferred to a centrifuge tube after mesh filtration, and a live cell washing solution is added to bring the total volume to 50 ml.
And washed twice by repeating centrifugation at 1,600 rpm for 5 minutes to obtain 50 ml of a suspension containing 1-2 × 10 8 spleen lymphocytes. A suspension of 6-thioguanine-resistant myeloma Sp-2 / O-Ag14 cells (containing 2 × 10 7 cells) and a suspension containing 1 × 10 8 spleen lymphocytes were mixed and spun at 1,600 rpm for 5 minutes. I made it into a pellet. The supernatant medium was removed by suction and the pellet was carefully loosened. PEG solution (PEG # 4,000 + DMSO, etc.) 1 ml
Was added slowly over 1 minute and allowed to fuse for 1 minute at 37 ° C. with stirring with the pipette used. Continue to basic medium (IMD
1 ml of M medium) was added at 37 ° C. for 1 minute. After repeating the same operation once more, 8 ml of the basic medium was added at 37 ° C. for 3 minutes. The resulting fused cell suspension was added to the thymocyte (feeder cell) HAT medium suspension prepared in item 3 and well suspended, and this cell suspension was added to 10 to 14 96-well culture plates at 0.1 per well. The solution was dispensed in ml and cultured in a carbon dioxide incubator. 5. HAT selection On the 1st day after culturing, 0.15 ml of HAT medium was added per well, and half of the medium was removed by suction on the 3rd, 6th, and 10th days, and 0.1 to 0.15 ml of HAT medium was added per well. added. When the growth of the hybridoma was confirmed on the 10th day, the growth in almost all the holes was observed.
【0010】6.ハイブリドーマの選択 融合して12〜13日後に培養上清を集め、ELISA法に
て抗体陽性穴の選択を行なった。ELISA用96穴プレ
ートに、組み換え型ミンク成長ホルモンを100μl分注
し、4℃で一晩または室温で1時間放置して抗原をプレ
ートに固定した。液を良く取り除き、培養上清中の蛋白
質の非特異的吸着を避けるために、2%スキムミルクブ
ロッキング液を100μl各穴に分注し、室温で5分間放置
した。液を良く取り除いた後、上記の各細胞培養上清を
100μl分注し、室温で1時間静置した。なお、陰性対照
としては20%FCS-IMDM培地を100μl分注した。次に、0.0
2%のTween20を含む緩衝液(洗浄液)で3〜5回洗浄し、
マウス免疫グロブリン抗体−西洋ワサビパーオキシダー
ゼ複合体溶液100μlをプレートに分注し室温1時間放置
し、同上洗浄液で3〜5回洗浄後、ABTS(2,2'-Azino-
bis(3-etylbenzthiazoline)-6-sulfonic acid)溶液(0.6
mg/ml)を100μlずつ加え、室温で1時間反応後、酵素反
応停止液(Sodium dodecyl aulfate 5%溶液)を100μl
加え反応を停止し、O.D.405nmを測定して、パーオキシ
ダーゼ活性を定量した。まき込み細胞672穴中の10
穴にミンク成長ホルモン抗体産生が認められた。 7.培養のスケール拡大 どの穴でミンク成長ホルモン抗体を産生しているかが判
明したら、HT培地(ヒポキサンチン13.6mg/l、チミジ
ン3.8mg/l[HT溶液]を含むハイブリドーマ増殖培地)を
分注した24穴培養プレートへ植え換えスケールの拡大
を行なった。すなわち、予めHT培地500μlを24穴培
養プレート分注し、夫々の穴に96穴培養プレートにお
ける抗体産生穴の細胞懸濁液を24穴培養プレートへ移
植し、炭酸ガス培養装置内で培養を行なった。培養2〜
3日後、各穴に、更に1mlのHT培地を加え、各穴の上
清をELISA法により抗体活性の再テストを行ない、
クローニングを行なう細胞穴を再選択した。6. Selection of hybridoma 12 to 13 days after the fusion, the culture supernatant was collected and the antibody positive hole was selected by the ELISA method. 100 μl of recombinant mink growth hormone was dispensed into a 96-well plate for ELISA and left at 4 ° C. overnight or at room temperature for 1 hour to immobilize the antigen on the plate. To remove the liquid well and avoid non-specific adsorption of protein in the culture supernatant, 100 μl of 2% skim milk blocking liquid was dispensed into each well and left at room temperature for 5 minutes. After removing the liquid well, add the above cell culture supernatants
100 μl was dispensed and left at room temperature for 1 hour. As a negative control, 100 μl of 20% FCS-IMDM medium was dispensed. Then 0.0
Wash 3-5 times with buffer containing 2% Tween 20 (wash),
100 μl of mouse immunoglobulin antibody-horseradish peroxidase complex solution was dispensed to the plate, left at room temperature for 1 hour, and washed 3-5 times with the same washing solution, followed by ABTS (2,2'-Azino-
bis (3-etylbenzthiazoline) -6-sulfonic acid) solution (0.6
(100 mg / ml), and after reacting for 1 hour at room temperature, 100 μl of enzyme reaction stop solution (Sodium dodecyl aulfate 5% solution)
The addition reaction was stopped and OD405 nm was measured to quantify the peroxidase activity. 10 cells in 672 holes
Mink growth hormone antibody production was observed in the hole. 7. Scale expansion of culture Once it was determined which hole was producing mink growth hormone antibody, HT medium (hybridoma growth medium containing hypoxanthine 13.6 mg / l and thymidine 3.8 mg / l [HT solution]) was dispensed 24 The replanting scale was expanded to a well culture plate. That is, 500 μl of HT medium was preliminarily dispensed in a 24-well culture plate, and the cell suspension in the antibody-producing hole in the 96-well culture plate was transplanted into each well, and the cells were cultured in a carbon dioxide culture device. It was Culture 2
After 3 days, 1 ml of HT medium was further added to each well, and the supernatant of each well was retested for antibody activity by ELISA.
The cell holes for cloning were reselected.
【0011】8.モノクローン化 クローニング培地はヒトIL-6(1U/ml)を含むハイブリド
ーマ増殖培地を用いた。抗ミンク成長ホルモン抗体産生
ハイブリドーマを計数し、クローニング培地1ml当りに
5個の細胞が含まれるように稀釈した。この懸濁液を200
μlずつ、96穴培養プレートにまき込み炭酸ガス培養
装置内で培養を行なった。約10日目に増殖をチェックし
ながら、ELISAにより上清の抗体活性を測定し、コ
ロニーが大きく抗体活性の高い細胞穴を1〜2穴選択、
培養し、同じ方法で再クローニングを行ない、抗ミンク
成長ホルモン抗体産生ハイブリドーマのクローン3株、
MGH-1(11E)、MGH-3(14B6)及びMGH-3(15B10)を得た。な
お、ハイブリドーマMGH-3(15B10)は、工業技術院生命工
学工業技術研究所にFERM P-13892として寄託されてい
る。 9.モノクローナル抗体の生産 得られた各抗体産生ハイブリドーマを増殖培地により順
次拡大培養し、大量の培養上清を得た。その例をハイブ
リドーマMGH-3(15B10)について説明する。ハイブリドー
マMGH-3(15B10)をASF104培地1,300mlに加え、37℃、240
時間培養して培養物を得る。この培養物を1,000r.p.m.
で5分間遠心分離したのち、飽和硫酸アンモニウム溶液
で塩折処理してモノクローナル抗体約10mgを得た。 10.モノクローナル抗体のクラスの決定 夫々のハイブリドーマクローンの産生する免疫グロブリ
ンのクラスは、マウスモノクローナル抗体のアイソタイ
プ決定用キット(アマシャム・ジャパン製、RPN29
/ウエスタン・ブロット法)を用いて行なった。その結
果、3株とも免疫グロブリンのタイプがIgMで共にL
鎖がκであった。 11.モノクローナル抗体の精製 ハイブリドーマより得られた培養上清は硫安塩析処理に
より精製を行なった。8. Monocloning As a cloning medium, a hybridoma growth medium containing human IL-6 (1 U / ml) was used. Anti-mink growth hormone antibody-producing hybridomas were counted and added to 1 ml of cloning medium.
Diluted to include 5 cells. 200 this suspension
Each 96 μl culture plate was seeded in an amount of μl and cultured in a carbon dioxide culture device. On the 10th day, while checking the growth, the antibody activity of the supernatant was measured by ELISA, and 1-2 cell wells with large colonies and high antibody activity were selected.
After culturing and recloning in the same manner, 3 clones of anti-mink growth hormone antibody-producing hybridoma,
MGH-1 (11E), MGH-3 (14B6) and MGH-3 (15B10) were obtained. The hybridoma MGH-3 (15B10) has been deposited as FERM P-13892 at the Institute of Biotechnology, Institute of Biotechnology, AIST. 9. Production of Monoclonal Antibody Each of the obtained antibody-producing hybridomas was sequentially expanded and cultured in a growth medium to obtain a large amount of culture supernatant. An example will be described for hybridoma MGH-3 (15B10). Hybridoma MGH-3 (15B10) was added to 1,300 ml of ASF104 medium and incubated at 37 ° C for 240
The culture is obtained by culturing for a period of time. 1,000 rpm for this culture
After centrifuging for 5 minutes, the solution was subjected to salt folding treatment with a saturated ammonium sulfate solution to obtain about 10 mg of the monoclonal antibody. 10. Determination of Class of Monoclonal Antibody The class of immunoglobulin produced by each hybridoma clone is determined by isotype determination kit of mouse monoclonal antibody (RPN29 manufactured by Amersham Japan).
/ Western blotting). As a result, all three strains have immunoglobulin type IgM and L
The chain was kappa. 11. Purification of Monoclonal Antibody The culture supernatant obtained from the hybridoma was purified by salting out with ammonium sulfate.
【0012】12.モノクローナル抗体交差性 抗ミンク成長ホルモンモノクローナル抗体の交差性を調
べるため、組み換え型ミンク成長ホルモンの類似化合物
である数種類の動物の成長ホルモンとの交差反応性を、
ELISAにて検討した。測定方法は、上記項目6に記
載されているハイブリドーマ選択法に準拠して行なっ
た。具体的には濃度を調整した組み換え型ミンク成長ホ
ルモン、ミンク成長ホルモン(天然型)、ブタ成長ホル
モン(天然型)、ウシ成長ホルモン(天然型)及びヒト
成長ホルモン(天然型)各5μg/mlを96穴マイクロプ
レートのウェルに100μlずつ吸着させた後、各抗体との
反応性を通常のELISA法により発色させ測定した。
そして、各抗体の抗原である組み換え型ミンク成長ホル
モンとの反応性(交差性)を100%としてその他の成
長ホルモンの交差性を計算した。その結果、図1より明
らかな如くある抗体は、幅広く他の動物の成長ホルモン
と交差性を示し[MGH-3(15B10)株]、また、他の株はミン
ク(天然型)、ブタ、ウシ及びヒト成長ホルモンの順に
交差性が減じていた[MGH-1(11E)株]。更に、ミンク(天
然型)とヒト成長ホルモンにのみ交差性を示さず、ウシ
成長ホルモンに交差性を示さない株も得られた[MGH-3(1
4B6)株]。12. Monoclonal antibody cross-reactivity To investigate the cross-reactivity of anti-mink growth hormone monoclonal antibody, cross-reactivity with several animal growth hormones, which are similar compounds of recombinant mink growth hormone,
It was examined by ELISA. The measurement method was performed according to the hybridoma selection method described in the above item 6. Specifically, each concentration of recombinant mink growth hormone, mink growth hormone (natural type), pig growth hormone (natural type), bovine growth hormone (natural type) and human growth hormone (natural type) 5 μg / ml each After 100 μl of each was adsorbed to the wells of a 96-well microplate, the reactivity with each antibody was developed by a conventional ELISA method and measured.
Then, the reactivity (reactivity) with the recombinant mink growth hormone, which is the antigen of each antibody, was defined as 100%, and the reactivity with other growth hormones was calculated. As a result, as is clear from Fig. 1, some antibodies showed a wide range of cross-reactivity with growth hormones of other animals [MGH-3 (15B10) strain], and other strains were mink (natural type), pig, bovine. And the cross-reactivity was reduced in the order of human growth hormone [MGH-1 (11E) strain]. Furthermore, a strain that does not cross-react with mink (natural type) and human growth hormone and does not cross-react with bovine growth hormone was also obtained [MGH-3 (1
4B6) Stock].
【0013】[0013]
【図1】 本発明のモノクローナル抗体、MGH-1(11E)、
MGH-3(14B6)及びMGH-3(15B10)について、組み換え型ミ
ンク成長ホルモン類似物質であるミンク成長ホルモン
(天然型)、ブタ成長ホルモン(天然型)、ウシ成長ホ
ルモン(天然型)及びヒト成長ホルモン(天然型)に対
する交差性を示す図である。FIG. 1 is a monoclonal antibody of the present invention, MGH-1 (11E),
MGH-3 (14B6) and MGH-3 (15B10) are recombinant mink growth hormone analogs, mink growth hormone (natural type), porcine growth hormone (natural type), bovine growth hormone (natural type) and human growth It is a figure which shows the crossability with respect to a hormone (natural type).
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12P 21/08 9161−4B G01N 33/53 B 33/577 B (72)発明者 菊地 護 千葉県野田市野田339番地 キッコーマン 株式会社内─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI Technical display location C12P 21/08 9161-4B G01N 33/53 B 33/577 B (72) Inventor Mamoru Kikuchi Chiba Prefecture 339 Noda, Noda City Kikkoman Corporation
Claims (3)
ノクローナル抗体。1. A monoclonal antibody having reactivity with mink growth hormone.
該動物からの抗体産生細胞と増殖性の高い細胞との細胞
融合によって形成されたハイブリドーマから産生される
IgM型抗ミンク成長ホルモンモノクローナル抗体。2. Immunizing an animal with mink growth hormone,
An IgM type anti-mink growth hormone monoclonal antibody produced from a hybridoma formed by cell fusion of antibody-producing cells from the animal with highly proliferative cells.
該動物からの抗体産生細胞と増殖性の高い細胞との細胞
融合によって形成されたIgM型抗ミンク成長ホルモン
モノクローナル抗体産生能を有するハイブリドーマ。3. Immunizing an animal with mink growth hormone,
A hybridoma capable of producing an IgM type anti-mink growth hormone monoclonal antibody, which is formed by cell fusion of an antibody-producing cell from the animal with a highly proliferative cell.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5258463A JPH07113000A (en) | 1993-10-15 | 1993-10-15 | Monoclonal antibody against anti-mink-growth hormone and hybridoma |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5258463A JPH07113000A (en) | 1993-10-15 | 1993-10-15 | Monoclonal antibody against anti-mink-growth hormone and hybridoma |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH07113000A true JPH07113000A (en) | 1995-05-02 |
Family
ID=17320580
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP5258463A Pending JPH07113000A (en) | 1993-10-15 | 1993-10-15 | Monoclonal antibody against anti-mink-growth hormone and hybridoma |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07113000A (en) |
-
1993
- 1993-10-15 JP JP5258463A patent/JPH07113000A/en active Pending
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