JPH0618526A - Immune measuring method - Google Patents
Immune measuring methodInfo
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- JPH0618526A JPH0618526A JP17701392A JP17701392A JPH0618526A JP H0618526 A JPH0618526 A JP H0618526A JP 17701392 A JP17701392 A JP 17701392A JP 17701392 A JP17701392 A JP 17701392A JP H0618526 A JPH0618526 A JP H0618526A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は免疫測定方法に関し、更
に詳しくは蛍光物質の消光を抑制せしめることが可能な
高感度で簡便な免疫測定方法に関する。FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to an immunoassay method, and more particularly to a highly sensitive and simple immunoassay method capable of suppressing the quenching of a fluorescent substance.
【0002】[0002]
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】近年、
抗原抗体反応を利用する免疫測定方法は各種内分泌疾患
の臨床診断等においてますます重要なものとなってい
る。2. Description of the Related Art In recent years,
Immunoassay methods utilizing the antigen-antibody reaction have become increasingly important in clinical diagnosis of various endocrine diseases.
【0003】上記免疫測定方法は、標識法と非標識法と
に大別されるが、これらのうち標識法が、測定感度が高
いことから、多く採用されている。The above-mentioned immunoassay methods are roughly classified into a labeling method and a non-labeling method. Among them, the labeling method is widely used because of its high measurement sensitivity.
【0004】標識法においては各種の標識物質、例えば
ラジオアイソトープ、蛍光物質、酵素、酵素関連物質が
使用されるが、なかでも蛍光物質を利用する方法が簡便
なものとして注目されている。In the labeling method, various labeling substances such as radioisotopes, fluorescent substances, enzymes and enzyme-related substances are used. Among them, the method utilizing fluorescent substances has been attracting attention as a simple method.
【0005】一方、免疫測定における反応系は、標識物
質のうち反応に関与したものとしなかったものとを反応
後に分離(B/F分離)するヘテロジニアス系と、該B
/F分離を要しないホモジニアス系とに分けられる。ホ
モジニアス系は、B/F分離のための洗浄操作を要しな
いことから簡便迅速な測定を可能とするものであり、と
くに標識物質として蛍光物質を用いる場合には、高感度
で、かつ大量検体処理が可能な測定方法を構築すること
ができるはずである。On the other hand, the reaction system in the immunoassay is a heterogeneous system which separates (B / F separation) after labeling the reaction substances which are involved in the reaction and those which are not involved in the reaction, and the B
/ F is separated into homogeneous systems that do not require separation. The homogeneous system enables simple and quick measurement because it does not require a washing operation for B / F separation. In particular, when a fluorescent substance is used as a labeling substance, it is highly sensitive and can process a large amount of sample. It should be possible to construct a measurement method capable of
【0006】しかし、一般に蛍光物質は、検体である血
清中に加えると主としてアルブミンへの吸着による消光
現象を生起するため、正確な測定が困難であるという問
題があり、この点の解決が望まれていた。However, in general, when a fluorescent substance is added to serum as a sample, it causes a quenching phenomenon mainly due to adsorption to albumin, so that there is a problem that accurate measurement is difficult, and a solution to this point is desired. Was there.
【0007】[0007]
【課題を解決するための手段】本発明者らは、かかる実
情に鑑み鋭意検討した結果、後述する化合物(1)と蛍
光物質とを測定系中に併存させれば、免疫測定を高感度
で、かつ簡便に行ない得ることを見出し、本発明を完成
するに至った。Means for Solving the Problems The inventors of the present invention have made extensive studies in view of such circumstances, and as a result, if compound (1) described below and a fluorescent substance are coexistent in a measurement system, immunoassay can be performed with high sensitivity. Moreover, they have found that they can be carried out easily and have completed the present invention.
【0008】すなわち、本発明は、蛍光物質を標識物質
として測定系内に存在せしめる免疫測定方法において、
該測定系内に下記一般式(1)That is, the present invention provides an immunoassay method in which a fluorescent substance is present as a labeling substance in the assay system,
In the measurement system, the following general formula (1)
【0009】[0009]
【化2】 [Chemical 2]
【0010】で表わされる化合物を存在せしめることを
特徴とする免疫測定方法を提供するものである。The present invention provides an immunoassay method characterized by allowing the compound represented by
【0011】本発明に使用される一般式(1)で表わさ
れる化合物は、蛍光物質の血清等の被検液中での消光を
防止する作用を有するいわゆる蛍光消光防止剤である。
当該一般式(1)中、低級アルキル基としては、炭素数
1〜6のアルキル基、例えばメチル基、エチル基、n−
プロピル基、イソプロピル基、n−ブチル基等が挙げら
れる。低級アルコキシ基としては、炭素数1〜6のアル
コキシ基、例えばメトキシ基、エトキシ基、イソプロポ
キシ基等が挙げられる。また、アルカリ金属原子として
は、ナトリウム、カリウム等が挙げられる。The compound represented by the general formula (1) used in the present invention is a so-called fluorescence quenching inhibitor having a function of preventing quenching of a fluorescent substance in a test solution such as serum.
In the general formula (1), as the lower alkyl group, an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms, for example, a methyl group, an ethyl group, n-
Examples thereof include propyl group, isopropyl group, n-butyl group and the like. Examples of the lower alkoxy group include an alkoxy group having 1 to 6 carbon atoms, such as a methoxy group, an ethoxy group and an isopropoxy group. Further, examples of the alkali metal atom include sodium and potassium.
【0012】本発明に使用される一般式(1)で表わさ
れる化合物の具体例としてはN−エチル−N−スルホプ
ロピル−m−アニシジン(ADPS)、N−エチル−N
−スルホプロピルアニリン(ALPS)、N−エチル−
N−スルホプロピル−3,5−ジメトキシアニリン(D
APS)、N−スルホプロピル−3,5−ジメトキシア
ニリン(HDAPS)、N−エチル−N−スルホプロピ
ル−3,5−ジメチルアニリン(MAPS)、N−エチ
ル−N−スルホプロピル−m−トルイジン(TOP
S)、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホ
プロピル)−m−アニシジン(ADOS)、N−エチル
−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)アニリ
ン(ALOS)、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−
3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン
(DAOS)、N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロ
ピル)−3,5−ジメトキシアニリン(HDAOS)、
N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピ
ル)−3,5−ジメチルアニリン(MAOS)、N−エ
チル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−
m−トルイジン(TOOS)、N−スルホプロピルアニ
リン(HALPS)、m−キシレン等が挙げられる。Specific examples of the compound represented by the general formula (1) used in the present invention include N-ethyl-N-sulfopropyl-m-anisidine (ADPS) and N-ethyl-N.
-Sulfopropylaniline (ALPS), N-ethyl-
N-sulfopropyl-3,5-dimethoxyaniline (D
APS), N-sulfopropyl-3,5-dimethoxyaniline (HDAPS), N-ethyl-N-sulfopropyl-3,5-dimethylaniline (MAPS), N-ethyl-N-sulfopropyl-m-toluidine ( TOP
S), N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -m-anisidine (ADOS), N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) aniline (ALOS), N-. Ethyl-N- (2-hydroxy-
3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (DAOS), N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (HDAOS),
N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethylaniline (MAOS), N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl)-
Examples thereof include m-toluidine (TOOS), N-sulfopropylaniline (HALPS) and m-xylene.
【0013】これら蛍光消光防止剤は、必要に応じ、更
に他の任意成分、緩衝剤、界面活性剤、酸化防止剤等と
組合せて使用してもよく、また液状、粉末状等いずれの
剤型とすることもできる。These fluorescence quenching inhibitors may be used in combination with other optional components, buffers, surfactants, antioxidants, etc., if necessary, and may be in liquid or powder form. Can also be
【0014】また、これら蛍光消光防止剤の1種又は2
種以上が、測定系内に濃度が10mM以下であるよう添加
される。Further, one or two of these fluorescence quenching inhibitors are used.
The seeds or more are added to the measurement system so that the concentration is 10 mM or less.
【0015】本発明に標識物質として使用される蛍光物
質は、カルボキシフルオレセイン(CF)、フルオレセ
インイソチオシアネート(FITC)等がとくに好まし
い。The fluorescent substance used as the labeling substance in the present invention is particularly preferably carboxyfluorescein (CF), fluorescein isothiocyanate (FITC) or the like.
【0016】本発明の免疫測定方法は、上記蛍光消光防
止剤及び蛍光物質を測定系内で使用するものであれば、
とくに制限されないが、例えば蛍光物質結合抗原又は抗
体を利用する方法、リポソーム等にマーカーとして蛍光
物質を封入する方法等が挙げられる。In the immunoassay method of the present invention, as long as the above-mentioned fluorescence quenching inhibitor and fluorescent substance are used in the assay system,
The method is not particularly limited, and examples thereof include a method using a fluorescent substance-bound antigen or antibody, a method of encapsulating a fluorescent substance as a marker in liposomes, and the like.
【0017】具体的には、上記リポソームを使用する方
法において、抗原又は抗体を含有する検体と該抗原又は
抗体にそれぞれ対応する抗体又は抗原を結合した蛍光マ
ーカー封入リポソームとを反応させ、破壊したリポソー
ムから流出した蛍光物質を検出し、検体中の抗原又は抗
体を測定する。このとき、蛍光消光防止剤は、検体とリ
ポソームとの反応前又は反応中に反応液中に添加しても
よく、更にリポソーム破壊後の反応液中に添加してもよ
い。Specifically, in the method using the above-mentioned liposome, the sample containing the antigen or the antibody is reacted with the antibody corresponding to the antigen or the antibody or the fluorescent marker-encapsulated liposome bound with the antigen to destroy the liposome. The fluorescent substance flowing out from the sample is detected, and the antigen or antibody in the sample is measured. At this time, the fluorescence quenching inhibitor may be added to the reaction solution before or during the reaction between the sample and the liposome, or may be added to the reaction solution after the liposome is destroyed.
【0018】本発明に使用される前記蛍光消光防止剤
は、上記免疫測定方法のタイプに応じ、種々の形態のも
のに調製することができる。例えば蛍光物質結合抗原又
は抗体を使用する方法においては、化合物(1)単独で
又は他の適当な試薬と組合せて測定系内に添加でき、一
方リポソームを使用する方法においては、補体反応を停
止させ得る緩衝液と組合せ、必要に応じ凍結乾燥させた
後、測定系内に添加することができる。添加は反応のい
ずれの段階で行なってもよい。The fluorescence quenching inhibitor used in the present invention can be prepared in various forms depending on the type of the immunoassay method. For example, in the method using a fluorescent substance-bound antigen or antibody, compound (1) can be added to the assay system alone or in combination with other appropriate reagents, while in the method using liposomes, the complement reaction is stopped. It can be added to the measurement system after being combined with a buffer solution capable of being mixed and lyophilized if necessary. The addition may be done at any stage of the reaction.
【0019】[0019]
【発明の効果】本発明の免疫測定方法は、ヒト血清中に
含まれるアルブミンによる蛍光物質消光作用を効率的に
抑制することから、免疫測定を高感度で、かつ簡便に行
なうことができる。INDUSTRIAL APPLICABILITY The immunoassay method of the present invention efficiently suppresses the quenching action of a fluorescent substance by albumin contained in human serum, so that immunoassay can be carried out with high sensitivity and easily.
【0020】[0020]
【実施例】以下に本発明を実施例により具体的に説明す
るが、本発明はこれらに限定されるものではない。EXAMPLES The present invention will be described in detail below with reference to examples, but the present invention is not limited thereto.
【0021】参考例 以下に示す各化合物が有する、ヒト血清による蛍光消光
作用に対する抑制効果を調べた。試験管に10-7Mカル
ボキシフルオレセイン(CF)水溶液(ゼラチン−ベロ
ナール緩衝液(GVB-)に溶解したもの)2mlを入
れ、次いで各濃度に調整した蛍光消光防止剤(図2〜図
9)を含有するGVB-2ml及びヒトプール血清50μ
lを分注した。ボルテックスミキサーで撹拌後、その蛍
光強度を蛍光光度計(励起;490nm、蛍光;530n
m、「日立F−4000」日立製作所(株)製)で測定
した。なお、10-7MCF水溶液2mlにGVB-2.0
5mlを分注したものの蛍光強度を100%として図2〜
9に示すように各化合物の各濃度における相対蛍光強度
(%)を求めた。Reference Example The inhibitory effect of each compound shown below on the fluorescence quenching action by human serum was examined. 10 -7 M carboxyfluorescein (CF) solution in a test tube (gelatin - veronal buffer (GVB -) those that have been dissolved in) were placed 2 ml, and then fluorescent anti-quenching agent adjusted to each concentration (FIGS. 2-9) containing for GVB - 2 ml and pooled human serum 50μ
1 was dispensed. After stirring with a vortex mixer, the fluorescence intensity was measured with a fluorimeter (excitation; 490 nm, fluorescence; 530 n
m, "Hitachi F-4000" manufactured by Hitachi, Ltd.). GVB - 2.0 in 2 ml of 10 -7 MCF aqueous solution
Figure 2 shows the fluorescence intensity of 5 ml dispensed as 100%.
As shown in 9, the relative fluorescence intensity (%) at each concentration of each compound was determined.
【0022】図2〜9に示す結果より明らかなように、
蛍光消光防止剤を含まない場合にはヒトプール血清の作
用による消光がみられる(約−20%)が、それぞれの
蛍光消光防止剤の添加により消光が抑制され、100%
前後にまで回復することがわかる。As is clear from the results shown in FIGS.
When the fluorescence quenching inhibitor is not contained, quenching due to the action of human pool serum is observed (about -20%), but quenching is suppressed by addition of each fluorescence quenching inhibitor, and 100%.
You can see that it recovers to the front and back.
【0023】実施例 蛍光物質としてCFを、蛍光消光防止剤としてMAOS
を使用して、下記に示す免疫測定を行なった。Example CF is used as a fluorescent substance, and MAOS is used as a fluorescence quenching inhibitor.
Was used to perform the immunoassay shown below.
【0024】(リポソームの調製)ジパルミトイルホス
ファチジルコリン(DPPC)1μモル、コレステロー
ル1μモル及びジチオピリジル化ジパルミトイルホスフ
ァチジルエタノールアミン(DTP−DPPE)0.0
5μモルをナシ型フラスコにとり、脂質を溶解していた
クロロホルムをエバポレーターで留去した。真空デシケ
ーターで1時間乾燥後、ナシ型フラスコに0.2MCF
200μlを入れて激しく振とうし、該ナシ型フラスコ
ガラス壁上の脂質薄膜をはがしてCF封入リポソームを
調製した。(Preparation of Liposomes) 1 μmol dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC), 1 μmol cholesterol and dithiopyridylated dipalmitoylphosphatidylethanolamine (DTP-DPPE) 0.0
5 μmol was placed in a pear-shaped flask, and chloroform in which the lipid was dissolved was distilled off with an evaporator. After drying in a vacuum desiccator for 1 hour, add 0.2 MCF to a pear-shaped flask.
200 μl was added and shaken vigorously, and the lipid thin film on the glass wall of the pear-shaped flask was peeled off to prepare a CF-encapsulated liposome.
【0025】未封入のCFは、0.01Mヘペス緩衝液
(0.15M NaCl含有;pH7.5)で遠心洗浄を
3回行ない分離した。The unencapsulated CF was separated by centrifugation with 0.01 M Hepes buffer (containing 0.15 M NaCl; pH 7.5) three times.
【0026】(抗HBs抗体のリポソームへの感作)抗
HBsモノクローナル抗体(バイオキット社製)2mg/
mlをIgG分画してN−ハイドロオキシサクシンイミジ
ル−3−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート(SP
DP)30mMのエタノール溶液5μlを添加し、室温で
30分間反応させた。過剰のSPDPを除去するため、
0.1M酢酸緩衝液(0.15M NaCl含有、pH
4.5)で平衡化したセファデックスG−25でゲル濾
過した。得られたタンパク分画(1.5ml)にジチオス
レイトール(DTT)12mgを添加し室温で30分間反
応させた後、予め0.01Mヘペス緩衝液(0.15M
NaCl含有、pH7.5)で平衡化しておいたセファデ
ックスG−25でゲル濾過し、過剰のDTTとタンパク
分画とを分離した。このタンパク分画1mlに予め遠心洗
浄して得られたリポソームペレットを懸濁させ、6〜1
0℃で、18〜20時間ゆっくり撹拌しながら反応させ
た。(Sensitization of anti-HBs antibody to liposome) Anti-HBs monoclonal antibody (manufactured by Biokit) 2 mg /
IgG was fractionated into ml to give N-hydroxysuccinimidyl-3- (2-pyridyldithio) propionate (SP
DP) 5 μl of a 30 mM ethanol solution was added, and the mixture was reacted at room temperature for 30 minutes. To remove excess SPDP,
0.1M acetate buffer (containing 0.15M NaCl, pH
Gel filtration was performed on Sephadex G-25 equilibrated in 4.5). 12 mg of dithiothreitol (DTT) was added to the obtained protein fraction (1.5 ml) and the mixture was reacted at room temperature for 30 minutes, and then 0.01 M Hepes buffer (0.15 M) was added in advance.
The excess DTT and the protein fraction were separated by gel filtration with Sephadex G-25 equilibrated with NaCl, pH 7.5). The liposome pellet obtained by preliminarily washing by centrifugation in 1 ml of this protein fraction was suspended to give 6-1.
The reaction was allowed to proceed at 0 ° C. for 18-20 hours with slow stirring.
【0027】反応後、リポソーム懸濁液を遠心洗浄し、
未反応タンパク溶液を除去した後、ゼラチン−ベロナー
ル緩衝液(0.1%NaNO3含有、pH7.4)1mlに
再懸濁した。After the reaction, the liposome suspension is washed by centrifugation,
After removal of the unreacted protein solution, gelatin - veronal buffer (0.1% NaNO 3 containing, pH 7.4) and resuspended in 1 ml.
【0028】(抗HBs抗体感作リポソームを用いたH
Bs抗原測定)96穴マイクロプレートを用いて反応を
行なった。抗HBs抗体感作リポソームを0.15mM
CaCl2と0.5mM MgCl2とを含むゼラチン−ベ
ロナール緩衝液(GVB2+)で500倍に希釈し、25
μlずつ各ウェルに分注した。それらに非働化処理した
ヒトHBs陰性血清に精製HBs抗原を添加して調製し
た希釈系列(12.5、6.25、3.13、1.5
6、0.78、0.39、0.2ng/ml)をそれぞれ2
5μl分注した。37℃で1時間反応させた後、更に二
次抗体としてGVB2+で至適濃度に希釈したウサギ抗H
Bs抗体(IgG分画)25μl及びGVB2+で希釈し
たモルモット補体(3CH50)25μlをそれぞれ分注
し、37℃で1時間反応させた。(H using anti-HBs antibody-sensitized liposome
Bs antigen measurement) The reaction was performed using a 96-well microplate. 0.15 mM anti-HBs antibody-sensitized liposome
Dilute 500-fold with gelatin-veronal buffer (GVB 2+ ) containing CaCl 2 and 0.5 mM MgCl 2, and add 25
μl was dispensed into each well. A dilution series (12.5, 6.25, 3.13, 1.5) prepared by adding purified HBs antigen to inactivated human HBs negative serum.
6, 0.78, 0.39, 0.2ng / ml) 2 each
5 μl was dispensed. After reacting at 37 ° C for 1 hour, rabbit anti-H was further diluted to the optimum concentration with GVB 2+ as a secondary antibody.
25 μl of Bs antibody (IgG fraction) and 25 μl of guinea pig complement (3CH 50 ) diluted with GVB 2+ were dispensed, respectively, and reacted at 37 ° C. for 1 hour.
【0029】上記補体反応の停止液として10mM MA
OS及び10mM EDTA含有ベロナール緩衝液(pH
7.4)100μlを添加し、また、比較のため10mM
EDTA含有ベロナール緩衝液(pH7.4)100μ
lを別に添加し、それぞれの希釈系列についてのCF放
出率(%)を求めた。CF放出率は、前記HBs抗原の
替りに10%トライトンX−100を25μl添加した
ときの蛍光強度を100%とし、その相対蛍光強度
(%)として求めた。なお、対照としてGVB2+に精製
HBs抗原のみを添加して調製した希釈系列(12.
5、6.25、3.13、1.56、0.78、0.3
9、0.2ng/ml)についても同様にCF放出率を求め
た。As a stop solution for the above-mentioned complement reaction, 10 mM MA
Veronal buffer containing OS and 10 mM EDTA (pH
7.4) 100 μl was added and 10 mM for comparison
Veronal buffer containing EDTA (pH 7.4) 100μ
1 was added separately, and the CF release rate (%) was obtained for each dilution series. The CF release rate was determined as the relative fluorescence intensity (%) with 100% as the fluorescence intensity when 25 μl of 10% Triton X-100 was added instead of the HBs antigen. As a control, a dilution series prepared by adding only purified HBs antigen to GVB 2+ (12.
5, 6.25, 3.13, 1.56, 0.78, 0.3
(9, 0.2 ng / ml), the CF release rate was similarly obtained.
【0030】これらの各希釈系列に対するCF放出率測
定結果を図1に示す。図1に示す結果より明らかなよう
に、EDTAのみを含有する停止液を使用した場合には
かなりの程度の消光がみられるが、MAOSを含有する
停止液を使用した場合には消光現象は殆んどみられな
い。The CF release rate measurement results for each of these dilution series are shown in FIG. As is clear from the results shown in FIG. 1, when the stop solution containing only EDTA was used, the quenching was observed to a considerable extent, but when the stop solution containing MAOS was used, the quenching phenomenon was hardly observed. I can't see it.
【0031】これらのことから、ヒト血清によるCFの
消光をMAOSが抑制し、ヒト血清を含まない純粋系に
おける反応感度と同程度の感度が得られることがわか
る。From these facts, it is understood that MAOS suppresses the quenching of CF by human serum, and the same sensitivity as the reaction sensitivity in a pure system containing no human serum can be obtained.
【図1】実施例で得られた各希釈系列に対するCF放出
率を示す図面である。FIG. 1 is a drawing showing a CF release rate for each dilution series obtained in Examples.
【図2】参考例で得られたADOS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 2 is a drawing showing relative fluorescence intensity with respect to ADOS concentration obtained in Reference Example.
【図3】参考例で得られたADPS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 3 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the ADPS concentration obtained in Reference Example.
【図4】参考例で得られたALPS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 4 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the ALPS concentration obtained in the reference example.
【図5】参考例で得られたALOS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 5 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the ALOS concentration obtained in Reference Example.
【図6】参考例で得られたMAOS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 6 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the MAOS concentration obtained in Reference Example.
【図7】参考例で得られたDAPS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 7 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the DAPS concentration obtained in Reference Example.
【図8】参考例で得られたMAPS濃度に対する相対蛍
光強度を示す図面である。FIG. 8 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the MAPS concentration obtained in Reference Example.
【図9】参考例で得られたm−キシレン濃度に対する相
対蛍光強度を示す図面である。FIG. 9 is a drawing showing the relative fluorescence intensity with respect to the m-xylene concentration obtained in Reference Example.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 梅田 衛 茨城県結城市北南茂呂1075−2 日水製薬 株式会社診断薬研究所内 ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Mamoru Umeda 1075-2 Kitanan Moro, Yuki City, Ibaraki Prefecture Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.
Claims (2)
在せしめる免疫測定方法において、該測定系内に下記一
般式(1) 【化1】 で表わされる化合物を存在せしめることを特徴とする免
疫測定方法。1. In an immunoassay method in which a fluorescent substance is present as a labeling substance in a measurement system, the following general formula (1): An immunoassay method comprising the presence of a compound represented by:
び/又はフルオレセインイソチオシアネートである請求
項1記載の免疫測定方法。2. The immunoassay method according to claim 1, wherein the fluorescent substance is carboxyfluorescein and / or fluorescein isothiocyanate.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17701392A JPH0618526A (en) | 1992-07-03 | 1992-07-03 | Immune measuring method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP17701392A JPH0618526A (en) | 1992-07-03 | 1992-07-03 | Immune measuring method |
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JPH0618526A true JPH0618526A (en) | 1994-01-25 |
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JP17701392A Withdrawn JPH0618526A (en) | 1992-07-03 | 1992-07-03 | Immune measuring method |
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Country | Link |
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JP (1) | JPH0618526A (en) |
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-
1992
- 1992-07-03 JP JP17701392A patent/JPH0618526A/en not_active Withdrawn
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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WO1992003666A1 (en) * | 1990-08-17 | 1992-03-05 | Junkers John K | Fastening device |
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