JPH05236941A - 連作障害軽減材 - Google Patents
連作障害軽減材Info
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- JPH05236941A JPH05236941A JP4043681A JP4368192A JPH05236941A JP H05236941 A JPH05236941 A JP H05236941A JP 4043681 A JP4043681 A JP 4043681A JP 4368192 A JP4368192 A JP 4368192A JP H05236941 A JPH05236941 A JP H05236941A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌及びそれを
用いた連作障害軽減材が提供される。 【構成】 土壌中のカルボキシメチルセルロース（ＣＭ
Ｃ）分解菌より、農薬に対して耐性を有し且つ土壌病原
菌に対して強い拮抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌が分離された。このＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌
は、土壌病害の微生物的防除効果を有する資材として極
めて有効である。
用いた連作障害軽減材が提供される。 【構成】 土壌中のカルボキシメチルセルロース（ＣＭ
Ｃ）分解菌より、農薬に対して耐性を有し且つ土壌病原
菌に対して強い拮抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌が分離された。このＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌
は、土壌病害の微生物的防除効果を有する資材として極
めて有効である。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、新規なＴｒｉｃｈｏｄ
ｅｒｍａ菌及びそれを含有する連作障害軽減材に関す
る。更に詳細には、チモール、チウラム、ダコニールな
どの農薬に対して耐性を有し、且つキュウリつる割病
菌、苗立枯病菌などの土壌伝染性植物病原菌に対して拮
抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌、並びにこ
のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を含有し、土壌伝染性植物
病原菌による病害を軽減させる効果を有する連作障害軽
減材に関する。
ｅｒｍａ菌及びそれを含有する連作障害軽減材に関す
る。更に詳細には、チモール、チウラム、ダコニールな
どの農薬に対して耐性を有し、且つキュウリつる割病
菌、苗立枯病菌などの土壌伝染性植物病原菌に対して拮
抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌、並びにこ
のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を含有し、土壌伝染性植物
病原菌による病害を軽減させる効果を有する連作障害軽
減材に関する。
【０００２】
【従来の技術】堆肥中では土壌と同様に微生物が集団と
なって微生物社会を形成している。この微生物中には土
壌病原菌に対して拮抗力をもつ有用微生物も存在してい
る。しかし、一般の堆肥中にはこのような有用微生物は
それほど多く存在しないために、土壌病害を抑える力も
弱い。それ故、土壌病害の抑制効果の高い微生物を利用
した資材が農家から待ち望まれている。土壌病害の病原
菌に対して抑制効果を示す拮抗菌の開発が盛んに行われ
ており、例えば苗立枯病菌Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓ
ｏｌａｎｉに対して拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ ｈａｖｉｚｉａｎｕｍ、マメ・萎凋病菌Ｆｕｓａｒ
ｉｕｍ ｏｘｇｓｐｏｒｕｍ ｆ，ｌｅｎｔｉｓに対し
て拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｖｉｒｄｅな
どが知られている〔Ｐａｐａｖｉｚａｓ，Ｇ．Ｃ．（１
９８５），Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ａｎｄ Ｇｌｉｏ
ｃｌａｄｉｕｍ：Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｅｃｏｌｏｇｙ，ａ
ｎｄ Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｆｏｒ Ｂｉｏｃｏｎｔｒ
ｏｌ，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌ，２
３：２３−５４〕。これらの拮抗菌は、公害などの人体
に対する影響が低く生物学的防除剤として農業分野など
において多いに期待されるものである。
なって微生物社会を形成している。この微生物中には土
壌病原菌に対して拮抗力をもつ有用微生物も存在してい
る。しかし、一般の堆肥中にはこのような有用微生物は
それほど多く存在しないために、土壌病害を抑える力も
弱い。それ故、土壌病害の抑制効果の高い微生物を利用
した資材が農家から待ち望まれている。土壌病害の病原
菌に対して抑制効果を示す拮抗菌の開発が盛んに行われ
ており、例えば苗立枯病菌Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓ
ｏｌａｎｉに対して拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ ｈａｖｉｚｉａｎｕｍ、マメ・萎凋病菌Ｆｕｓａｒ
ｉｕｍ ｏｘｇｓｐｏｒｕｍ ｆ，ｌｅｎｔｉｓに対し
て拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｖｉｒｄｅな
どが知られている〔Ｐａｐａｖｉｚａｓ，Ｇ．Ｃ．（１
９８５），Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ａｎｄ Ｇｌｉｏ
ｃｌａｄｉｕｍ：Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｅｃｏｌｏｇｙ，ａ
ｎｄ Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｆｏｒ Ｂｉｏｃｏｎｔｒ
ｏｌ，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌ，２
３：２３−５４〕。これらの拮抗菌は、公害などの人体
に対する影響が低く生物学的防除剤として農業分野など
において多いに期待されるものである。
【０００３】従来の拮抗菌は、化学薬品などの農薬に対
して耐性が低いという問題点を有しており、また長期間
にわたって堆肥に定着できその菌数を維持できるという
点でも問題がある。
して耐性が低いという問題点を有しており、また長期間
にわたって堆肥に定着できその菌数を維持できるという
点でも問題がある。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の目的
は、農薬に対して耐性を有し且つ土壌伝染性植物病原菌
に対して高い拮抗力を有する新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌を提供することにある。更に他の目的は、これら
の新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を含有する連作障害
軽減材を提供することにある。
は、農薬に対して耐性を有し且つ土壌伝染性植物病原菌
に対して高い拮抗力を有する新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌を提供することにある。更に他の目的は、これら
の新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を含有する連作障害
軽減材を提供することにある。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本発明者は、土壌中に存
在するカルボキシメチルセルロース分解能を有する微生
物をスクリーニングすることによって、キュウリつる割
病菌及び苗立枯病菌に対して拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏ
ｄｅｒｍａ菌を分離し、更にチモール、チウラム及びダ
コニールなどの農薬に対して耐性を示すＴｒｉｃｈｏｄ
ｅｒｍａ菌の分離に成功した。そしてこれらのＴｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌は、堆肥中に高密度に長期間にわたっ
て定着させることができ、土壌伝染性植物疾病を軽減さ
せる堆肥の開発に利用可能であることを見出し、本発明
を完成させた。即ち、本発明は、農薬に対して耐性を有
し、且つ土壌伝染性植物病原菌に対して拮抗力を示すＴ
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌；及びこのＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌単独であるいはそれを堆肥及び／又は肥料に含有
せしめてなる連作障害軽減材である。
在するカルボキシメチルセルロース分解能を有する微生
物をスクリーニングすることによって、キュウリつる割
病菌及び苗立枯病菌に対して拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏ
ｄｅｒｍａ菌を分離し、更にチモール、チウラム及びダ
コニールなどの農薬に対して耐性を示すＴｒｉｃｈｏｄ
ｅｒｍａ菌の分離に成功した。そしてこれらのＴｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌は、堆肥中に高密度に長期間にわたっ
て定着させることができ、土壌伝染性植物疾病を軽減さ
せる堆肥の開発に利用可能であることを見出し、本発明
を完成させた。即ち、本発明は、農薬に対して耐性を有
し、且つ土壌伝染性植物病原菌に対して拮抗力を示すＴ
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌；及びこのＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌単独であるいはそれを堆肥及び／又は肥料に含有
せしめてなる連作障害軽減材である。
【０００６】本発明の新規なＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌
は以下のようにして分離することができる。土壌中には
多くのカルボキシルメチルセルロース（ＣＭＣ）分解菌
が存在することが知られている。従って、例えば発酵中
のバーク堆肥からサンプリングして、希釈平板法で微生
物の分離を行う。次いで得られる微生物から、常法によ
りＣＭＣ分解能を有する微生物をスクリーニングする。
得られるＣＭＣ分解菌を、更に土壌病原菌に対する拮抗
力を指標にしてスクリーニングする。即ち、例えばキュ
ウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ
ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍ、苗立枯病菌Ｐｙｔｈｉ
ｕｍ ｄｅｂａｒｙａｎｕｍ及びＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉ
ａ ｓｏｌａｎｉ（日本有用植物病名目録、第２巻、日
本植物病理学会編）に対する拮抗力を対峙培養によりス
クリーニングする。また光学顕微鏡観察によりこれらの
病原菌の菌糸の溶解、細胞質の凝集等の有無を観察する
ことにより拮抗力をスクリーニングする。
は以下のようにして分離することができる。土壌中には
多くのカルボキシルメチルセルロース（ＣＭＣ）分解菌
が存在することが知られている。従って、例えば発酵中
のバーク堆肥からサンプリングして、希釈平板法で微生
物の分離を行う。次いで得られる微生物から、常法によ
りＣＭＣ分解能を有する微生物をスクリーニングする。
得られるＣＭＣ分解菌を、更に土壌病原菌に対する拮抗
力を指標にしてスクリーニングする。即ち、例えばキュ
ウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ
ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍ、苗立枯病菌Ｐｙｔｈｉ
ｕｍ ｄｅｂａｒｙａｎｕｍ及びＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉ
ａ ｓｏｌａｎｉ（日本有用植物病名目録、第２巻、日
本植物病理学会編）に対する拮抗力を対峙培養によりス
クリーニングする。また光学顕微鏡観察によりこれらの
病原菌の菌糸の溶解、細胞質の凝集等の有無を観察する
ことにより拮抗力をスクリーニングする。
【０００７】本発明によれば、後述する実施例に詳細に
記載されているように、ＣＭＣ分解能を有するＣＭＣ分
解菌として糸状菌１８菌株が分離され、このなかから病
原菌に対して強い拮抗力を有する不完全菌の一種である
Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌１１菌株が分離された。更
に、これら１１菌株について、農薬に対する耐性をスク
リーニングした。即ち、農薬チモール、ダコニール及び
チウラムを各種濃度で含有する培地中で菌株を培養し希
釈平板法により農薬耐性をスクリーニングした。このよ
うなスクリーニングによりチモール、ダコニール及びチ
ウラムに対して強い耐性を有するＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ菌菌株No. １が分離された。この菌株No. １をＳＦ−
Ｔ−１９９２と命名し、１９９２年１月２２日に工業技
術院微生物工業技術研究所に寄託し、受託番号として微
工研菌寄第１２７２１号（ＦＥＲＭ Ｐ−１２７２１）
が付与された。
記載されているように、ＣＭＣ分解能を有するＣＭＣ分
解菌として糸状菌１８菌株が分離され、このなかから病
原菌に対して強い拮抗力を有する不完全菌の一種である
Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌１１菌株が分離された。更
に、これら１１菌株について、農薬に対する耐性をスク
リーニングした。即ち、農薬チモール、ダコニール及び
チウラムを各種濃度で含有する培地中で菌株を培養し希
釈平板法により農薬耐性をスクリーニングした。このよ
うなスクリーニングによりチモール、ダコニール及びチ
ウラムに対して強い耐性を有するＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ菌菌株No. １が分離された。この菌株No. １をＳＦ−
Ｔ−１９９２と命名し、１９９２年１月２２日に工業技
術院微生物工業技術研究所に寄託し、受託番号として微
工研菌寄第１２７２１号（ＦＥＲＭ Ｐ−１２７２１）
が付与された。
【０００８】この菌株No. １は、以下に示すポテトデキ
ストロース寒天培地及び培養条件で良好に生育し、培地
上でグリーンの胞子集団を形成する。胞子は単胞、無
色、卵形である。 培地名：ポテトデキストロース寒天培地 ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ（ＰＤＡ培地） Ｉｎｆｕｓｉｏｎ 培地の組成：Ｐｏｔｅｔｏ，Ｉｎｆｕｓｉｏｎ ｆｒｏｍ（Ｓｏｌｉｄ） ４．０ｇ Ｄｅｘｔｒｏｓｅ ２０．０ｇ Ａｇａｒ １５．０ｇ （培地１００ml当り） 培地のpH：５．６±０．２ 培地の殺菌条件：１２１℃ ２０分 培養温度：２５℃、 培養期間：７日間
ストロース寒天培地及び培養条件で良好に生育し、培地
上でグリーンの胞子集団を形成する。胞子は単胞、無
色、卵形である。 培地名：ポテトデキストロース寒天培地 ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ（ＰＤＡ培地） Ｉｎｆｕｓｉｏｎ 培地の組成：Ｐｏｔｅｔｏ，Ｉｎｆｕｓｉｏｎ ｆｒｏｍ（Ｓｏｌｉｄ） ４．０ｇ Ｄｅｘｔｒｏｓｅ ２０．０ｇ Ａｇａｒ １５．０ｇ （培地１００ml当り） 培地のpH：５．６±０．２ 培地の殺菌条件：１２１℃ ２０分 培養温度：２５℃、 培養期間：７日間
【０００９】菌株No. １の酸素要求性は好気性であっ
た。このようにして得られる病原菌に拮抗力を有し且つ
農薬耐性の本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌は、それ
単独であるいは堆肥及び／又は肥料に含有せしめて、土
壌病害の微生物的防除効果を有する資材、即ち連作障害
軽減材として用いることができる。Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌を単独で用いる場合には、例えば、バーミキュラ
イト：コメヌカ（８：２）培地などの適当な培地で培養
し、培養物として土壌、堆肥などに混合または散布する
ことによって適用することができる。適用量は通常１〜
５％（ｗ／ｗ）である。本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ菌は、堆肥、肥料などと一緒に適用することができ
る。適当な肥料としては、乾血、２−オキソ−４−メチ
ル−６−ウレイドヘキサヒドロピリミジン（ＣＤＵ）、
尿素、硫安、硝安などが挙げられる。特に乾血、ＣＤＵ
などと併用することにより、土壌病原菌に対して強い拮
抗力を有し、且つ作物の生育に良い影響を与える資材が
得られる。
た。このようにして得られる病原菌に拮抗力を有し且つ
農薬耐性の本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌は、それ
単独であるいは堆肥及び／又は肥料に含有せしめて、土
壌病害の微生物的防除効果を有する資材、即ち連作障害
軽減材として用いることができる。Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌を単独で用いる場合には、例えば、バーミキュラ
イト：コメヌカ（８：２）培地などの適当な培地で培養
し、培養物として土壌、堆肥などに混合または散布する
ことによって適用することができる。適用量は通常１〜
５％（ｗ／ｗ）である。本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａ菌は、堆肥、肥料などと一緒に適用することができ
る。適当な肥料としては、乾血、２−オキソ−４−メチ
ル−６−ウレイドヘキサヒドロピリミジン（ＣＤＵ）、
尿素、硫安、硝安などが挙げられる。特に乾血、ＣＤＵ
などと併用することにより、土壌病原菌に対して強い拮
抗力を有し、且つ作物の生育に良い影響を与える資材が
得られる。
【００１０】また、土壌改良剤を一緒に用いることもで
きる。土壌改良剤としては、例えばカキガラ、ゼオライ
ト、ミネラル宝素、イソライトなどがあげられる。また
ＣＤＵで発酵したバーク堆肥などと一緒に用いることも
でき、このような併用により病害を著しく軽減すること
ができる。本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を堆肥及
び／又は肥料と混合して連作障害軽減材として用いる場
合には、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の使用量はその培養
物として通常１〜５％（ｗ／ｗ）である。
きる。土壌改良剤としては、例えばカキガラ、ゼオライ
ト、ミネラル宝素、イソライトなどがあげられる。また
ＣＤＵで発酵したバーク堆肥などと一緒に用いることも
でき、このような併用により病害を著しく軽減すること
ができる。本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を堆肥及
び／又は肥料と混合して連作障害軽減材として用いる場
合には、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の使用量はその培養
物として通常１〜５％（ｗ／ｗ）である。
【００１１】
【実施例】以下に本発明を実施例及び試験例により更に
詳細に説明する。 実施例１Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の分離 Ａ． ＣＭＣ分解菌からの分離 (1) ＣＭＣ分解菌のスクリーニング 発酵中のバーク堆肥を深さ３０cmのところからサンプリ
ングして、ＣＭＣ培地（ＮＨ4 ＮＯ3 ０．３ｇ、Ｍｇ
ＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ０．５ｇ、Ｋ2 ＨＰＯ4１．０ｇ、
ＫＣｌ ０．５ｇ、Ｆｅ2 （ＳＯ4 ）3 ・７Ｈ2 Ｏ１０
mg、ＣＭＣ−Ｎａ ５．０ｇ、Ａｇａｒ １８ｇ、蒸留
水１０００ml）を用いて希釈平板法で微生物の分離を行
ない、プレート上に現れたコロニーを斜面培地に移植し
た。これらの微生物は、ＣＭＣ培地を流し込んだシャー
レの中央に植え付けて２８℃で一週間培養後、１％セチ
ルトリメチルアンモニウムブロマイド液を５cc流し込ん
で形成されたクリヤーゾーンの直径を計り、ＣＭＣ分解
菌をスクリーニングした。 (2) ＣＭＣ分解菌の土壌病原菌に対する拮抗力の試験 (1) の方法で得られたＣＭＣ分解菌を用いて、土壌病害
菌−キュウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐ
ｏｒｕｍ ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍ、苗立枯病菌Ｐ
ｈｙｔｈｉｕｍ ｄｅｂａｒｙａｎｕｍ及びＲｈｉｚｏ
ｃｔｏｎｉａｓｏｌａｎｉに対する拮抗力を調べた。拮
抗力のテストは対じ培養で行い、酵母ＭＹ培地（酵母エ
キス３ｇ、麦芽エキス３ｇ、ペプトン５ｇ、ブドウ糖１
０ｇ、寒天２０ｇ、蒸留水１０００ml）、２８℃で培養
した。表１に示したように、ＣＭＣ分解能を有する糸状
菌１８菌株が得られた。これらの菌株のなかには、３種
類の病原菌に対して拮抗力を示す菌株も認められた。
詳細に説明する。 実施例１Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の分離 Ａ． ＣＭＣ分解菌からの分離 (1) ＣＭＣ分解菌のスクリーニング 発酵中のバーク堆肥を深さ３０cmのところからサンプリ
ングして、ＣＭＣ培地（ＮＨ4 ＮＯ3 ０．３ｇ、Ｍｇ
ＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ０．５ｇ、Ｋ2 ＨＰＯ4１．０ｇ、
ＫＣｌ ０．５ｇ、Ｆｅ2 （ＳＯ4 ）3 ・７Ｈ2 Ｏ１０
mg、ＣＭＣ−Ｎａ ５．０ｇ、Ａｇａｒ １８ｇ、蒸留
水１０００ml）を用いて希釈平板法で微生物の分離を行
ない、プレート上に現れたコロニーを斜面培地に移植し
た。これらの微生物は、ＣＭＣ培地を流し込んだシャー
レの中央に植え付けて２８℃で一週間培養後、１％セチ
ルトリメチルアンモニウムブロマイド液を５cc流し込ん
で形成されたクリヤーゾーンの直径を計り、ＣＭＣ分解
菌をスクリーニングした。 (2) ＣＭＣ分解菌の土壌病原菌に対する拮抗力の試験 (1) の方法で得られたＣＭＣ分解菌を用いて、土壌病害
菌−キュウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐ
ｏｒｕｍ ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍ、苗立枯病菌Ｐ
ｈｙｔｈｉｕｍ ｄｅｂａｒｙａｎｕｍ及びＲｈｉｚｏ
ｃｔｏｎｉａｓｏｌａｎｉに対する拮抗力を調べた。拮
抗力のテストは対じ培養で行い、酵母ＭＹ培地（酵母エ
キス３ｇ、麦芽エキス３ｇ、ペプトン５ｇ、ブドウ糖１
０ｇ、寒天２０ｇ、蒸留水１０００ml）、２８℃で培養
した。表１に示したように、ＣＭＣ分解能を有する糸状
菌１８菌株が得られた。これらの菌株のなかには、３種
類の病原菌に対して拮抗力を示す菌株も認められた。
【００１２】
【表１】 −：抑制帯形成せず ＋：１〜５mm抑制帯形
成 ＋＋：５〜10mm抑制帯形成 ＋＋＋：10mm以上抑制帯
形成
成 ＋＋：５〜10mm抑制帯形成 ＋＋＋：10mm以上抑制帯
形成
【００１３】(3) Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の分離 表１に示した糸状菌のなかから不完全菌の１つであるＴ
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌１１菌株を選択し、苗立枯病菌
Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力
を再度テストした。Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａ
ｎｉはＲ−Ｋ−１０（ラージパッチ）及びＲ−Ｋ−１１
（ブラウンバッチ）の２系統を用いた。拮抗力のテスト
は対じ培養で行い、培地は酵母ＭＹ培地を用いた（目で
みるゴルフ場の芝草病害−発生特性と防除、谷利一著、
ソフトサイエンス社）。拮抗力のテスト結果は表２に示
した。
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌１１菌株を選択し、苗立枯病菌
Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力
を再度テストした。Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａ
ｎｉはＲ−Ｋ−１０（ラージパッチ）及びＲ−Ｋ−１１
（ブラウンバッチ）の２系統を用いた。拮抗力のテスト
は対じ培養で行い、培地は酵母ＭＹ培地を用いた（目で
みるゴルフ場の芝草病害−発生特性と防除、谷利一著、
ソフトサイエンス社）。拮抗力のテスト結果は表２に示
した。
【００１４】
【表２】 −：抑制帯形成せず ＋：１〜５mm抑制帯形
成 ＋＋：５〜10mm抑制帯形成 ＋＋＋：10mm以上抑制帯
形成
成 ＋＋：５〜10mm抑制帯形成 ＋＋＋：10mm以上抑制帯
形成
【００１５】表２から明らかなように、芝草ラージパッ
チ及びブラウンパッチの両者のＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ
に対して拮抗性を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の菌株
が１１菌株の中から４菌株認められた。 (4) 農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌のスクリーニン
グ 上記したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の１１菌株を用い
た。 ア）チモール（Ｔｈｙｍｏｌ）をメチルアルコールに溶
かし１０％液を作って、１０mlのＭＹ液体殺菌培地に２
５０、５００、７５０及び１０００倍になるよう添加
し、上述のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を植え付けた。チ
モール耐性のスクリーニングの結果は表３に示した通り
である。
チ及びブラウンパッチの両者のＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ
に対して拮抗性を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の菌株
が１１菌株の中から４菌株認められた。 (4) 農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌のスクリーニン
グ 上記したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の１１菌株を用い
た。 ア）チモール（Ｔｈｙｍｏｌ）をメチルアルコールに溶
かし１０％液を作って、１０mlのＭＹ液体殺菌培地に２
５０、５００、７５０及び１０００倍になるよう添加
し、上述のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を植え付けた。チ
モール耐性のスクリーニングの結果は表３に示した通り
である。
【００１６】
【表３】
【００１７】表３に示したように、チモール５００倍で
は菌株No. １及び８が耐性を示し、７５０倍ではNo.
１、２、３、５、６及び８が、１０００倍においてはN
o. ９及び１１を除いていずれも耐性を示した。 イ）５００倍チモール耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌
株No. １及びNo. ８をＰＤＡ培地で培養し、２５０、５
００、７５０及び１０００倍のベンレート及びダコニー
ルを含んだＭＹ培地の表面に胞子懸濁液を流し込み、ま
たは希釈平板法でスクリーニングした。スクリーングの
結果は表４に示した通りである。
は菌株No. １及び８が耐性を示し、７５０倍ではNo.
１、２、３、５、６及び８が、１０００倍においてはN
o. ９及び１１を除いていずれも耐性を示した。 イ）５００倍チモール耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌
株No. １及びNo. ８をＰＤＡ培地で培養し、２５０、５
００、７５０及び１０００倍のベンレート及びダコニー
ルを含んだＭＹ培地の表面に胞子懸濁液を流し込み、ま
たは希釈平板法でスクリーニングした。スクリーングの
結果は表４に示した通りである。
【００１８】
【表４】
【００１９】ウ）ダコニール耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍ
ａの菌株No. １を用いてイ）と同じ方法でベンレート１
５００及び２０００倍、チウラム１００、２５０、５０
０及び１０００倍の耐性菌のスクリーニングを行った。
スクリーニングの結果は表５に示した通りである。
ａの菌株No. １を用いてイ）と同じ方法でベンレート１
５００及び２０００倍、チウラム１００、２５０、５０
０及び１０００倍の耐性菌のスクリーニングを行った。
スクリーニングの結果は表５に示した通りである。
【００２０】
【表５】
【００２１】表４及び表５に示した通り、菌株No. １、
No. ８ともにベンレートに対する耐性菌はスクリーニン
グできなかった。ダコニールに対する耐性はNo. １がN
o. ８よりも強く２５０倍においても耐性を示した。ま
た、チウラム５００倍においてもNo. １は耐性を示す菌
株がスクリーニングできた。かくして得られるＴｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌の菌株No. １をＳＦ−Ｔ−１９９２と
命名し、１９９２年１月２２日に工業技術院微生物工業
技術研究所に寄託し、受託番号として微工研菌寄第１２
７２１号（ＦＥＲＭ Ｐ−１２７２１）が付与されてい
る。 試験例１Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の病原菌に対する
拮抗力の試験 (1) 実施例１の(3) に示した方法と同様にしてＲｈｉｚ
ｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力をテスト
した。得られる結果は表６に示した通りである。
No. ８ともにベンレートに対する耐性菌はスクリーニン
グできなかった。ダコニールに対する耐性はNo. １がN
o. ８よりも強く２５０倍においても耐性を示した。ま
た、チウラム５００倍においてもNo. １は耐性を示す菌
株がスクリーニングできた。かくして得られるＴｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌の菌株No. １をＳＦ−Ｔ−１９９２と
命名し、１９９２年１月２２日に工業技術院微生物工業
技術研究所に寄託し、受託番号として微工研菌寄第１２
７２１号（ＦＥＲＭ Ｐ−１２７２１）が付与されてい
る。 試験例１Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の病原菌に対する
拮抗力の試験 (1) 実施例１の(3) に示した方法と同様にしてＲｈｉｚ
ｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力をテスト
した。得られる結果は表６に示した通りである。
【００２２】
【表６】
【００２３】農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株N
o. １のＲ．ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力はｉｎ ｖｉ
ｔｒｏにおいて、表２で得られた結果と比べて変化は認
められなかった。 (2) キュウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐ
ｏｒｕｍ ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍに対する拮抗力
をテストした。農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株
No. １をバーミキュライト：コメヌカ（８：２）培地で
培養し、あらかじめ作成しておいたＦｕｓａｒｉｕｍ汚
染土に添加して両者の経時的菌数を調査した。Ｔｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌の分離には２５０倍ダコニール・５０
０倍チウラム加用ローズベンガル培地、Ｆｕｓａｒｕｉ
ｍ菌は駒田培地を用いた。分離方法は希釈平板法で行っ
た。ローズベンガル培地及び駒田培地の組成は以下の通
りである。ローズベンガル培地 ＫＨ2 ＰＯ4 １．０ｇ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ０．５ｇ ペプトン ５．０ｇ グルコース １０．０ｇ ローズベンガル ０．０３３ｇ 寒天 ２０．０ｇ 蒸留水 １リットル駒田培地 Ｋ2 ＨＰＯ4 １ｇ Ｋｃｌ ５００ｇ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ５００ｇ Ｆｅ−ＥＤＴＡ １０mg Ｌ−アスパラギン ２ｇ Ｄ−ガラクトース ２０ｇ ＰＣＮＢ（７５％水和剤） １ｇ コール酸ナトリウム ５００mg Ｎａ2 Ｂ4 Ｏ7 ・１０Ｈ2 Ｏ １ｇ 硫酸ストレプトマイシン ３００mg 寒天 １５ｇ 蒸留水 １リットル 得られる結果は図１に示した。図１から判るように、農
薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １を土壌中に
混入すると日数の経過にともなって生息密度がやや減少
する傾向を示したが、Ｆｕｓａｒｉｕｍ菌の影響を受け
ないようであった。一方、Ｆｕｓａｒｉｕｍ菌も日数に
ともなって生息密度が減少した。しかし、Ｔｒｉｃｈｏ
ｄｅｒｍａ菌菌株No. １を入れた土壌中の減少が極端に
早いのでＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の影響を
受けることが明らかとなった。
o. １のＲ．ｓｏｌａｎｉに対する拮抗力はｉｎ ｖｉ
ｔｒｏにおいて、表２で得られた結果と比べて変化は認
められなかった。 (2) キュウリつる割病菌Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐ
ｏｒｕｍ ｆ．ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍに対する拮抗力
をテストした。農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株
No. １をバーミキュライト：コメヌカ（８：２）培地で
培養し、あらかじめ作成しておいたＦｕｓａｒｉｕｍ汚
染土に添加して両者の経時的菌数を調査した。Ｔｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌の分離には２５０倍ダコニール・５０
０倍チウラム加用ローズベンガル培地、Ｆｕｓａｒｕｉ
ｍ菌は駒田培地を用いた。分離方法は希釈平板法で行っ
た。ローズベンガル培地及び駒田培地の組成は以下の通
りである。ローズベンガル培地 ＫＨ2 ＰＯ4 １．０ｇ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ０．５ｇ ペプトン ５．０ｇ グルコース １０．０ｇ ローズベンガル ０．０３３ｇ 寒天 ２０．０ｇ 蒸留水 １リットル駒田培地 Ｋ2 ＨＰＯ4 １ｇ Ｋｃｌ ５００ｇ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ５００ｇ Ｆｅ−ＥＤＴＡ １０mg Ｌ−アスパラギン ２ｇ Ｄ−ガラクトース ２０ｇ ＰＣＮＢ（７５％水和剤） １ｇ コール酸ナトリウム ５００mg Ｎａ2 Ｂ4 Ｏ7 ・１０Ｈ2 Ｏ １ｇ 硫酸ストレプトマイシン ３００mg 寒天 １５ｇ 蒸留水 １リットル 得られる結果は図１に示した。図１から判るように、農
薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １を土壌中に
混入すると日数の経過にともなって生息密度がやや減少
する傾向を示したが、Ｆｕｓａｒｉｕｍ菌の影響を受け
ないようであった。一方、Ｆｕｓａｒｉｕｍ菌も日数に
ともなって生息密度が減少した。しかし、Ｔｒｉｃｈｏ
ｄｅｒｍａ菌菌株No. １を入れた土壌中の減少が極端に
早いのでＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の影響を
受けることが明らかとなった。
【００２４】実施例２連作障害軽減材の製造及び活性テスト バーミキュライト・コメヌカ培地培養農薬耐性Ｔｒｉｃ
ｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １、カキガラ、ゼオライト、
過燐酸石灰、コメヌカ、ＣＤＵ、乾血、尿素及び硫加に
よって構成される連作障害軽減材を製造した。この資材
中のＮ：Ｐ：Ｋの含量はそれぞれ４％、２％、１％であ
る。この連作障害軽減材の活性テストを行った。供試植
物は野芝を用いた。施用量は２０坪当り１０kgの割合で
１０月下旬に枯れた芝草に上から出来るだけ均一になる
ように散布した。効果は肉眼による観察及び芝地より芝
草を採取して緑色の芽数を調査し、評価した。得られる
結果は表７に示した。
ｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １、カキガラ、ゼオライト、
過燐酸石灰、コメヌカ、ＣＤＵ、乾血、尿素及び硫加に
よって構成される連作障害軽減材を製造した。この資材
中のＮ：Ｐ：Ｋの含量はそれぞれ４％、２％、１％であ
る。この連作障害軽減材の活性テストを行った。供試植
物は野芝を用いた。施用量は２０坪当り１０kgの割合で
１０月下旬に枯れた芝草に上から出来るだけ均一になる
ように散布した。効果は肉眼による観察及び芝地より芝
草を採取して緑色の芽数を調査し、評価した。得られる
結果は表７に示した。
【００２５】
【表７】
【００２６】表７から判るように、本発明の連作障害軽
減材を芝草に使用すると真冬でも芝の枯死が少なく新芽
を出して緑色になる、すなわち活性が非常に高いことが
認められた。 試験例２農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌のキュウリ苗立枯病
の発病に及ぼす影響 イソライト４リットル、コメヌカ１リットル及び水２リ
ットルを混合して広口三角フラスコに適量つめて殺菌
し、苗立枯病を起こすＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌を植え
付けて、２８℃で３週間培養した。３週間培養した病原
菌を洪積層土壌（Ｎ：Ｐ：Ｋ＝０．０１３：０．０３
１：０．０５６％、ＣＥＣ４．７ｍｅ／１００ｇ）１リ
ットル当り１０ｇ及び５０ｇを混合して汚染土壌とし
た。農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の培
養は上記の方法と同じ方法で行い、汚染土壌に０．５、
１及び５％（ｗ／ｗ）混合し、幅３２cm、長さ４７cm、
深さ７cmのコンテナーにつめて、１コンテナー４０粒の
キュウリを播種して、苗立枯病の発生数を調べて発病率
とした。実験は各区２コンテナーの２反復である。結果
は図２に示した通りである。図２から明らかなように、
Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌１０ｇを土壌１リットルに混
合した場合、苗の立枯病発病率が低かったが、５０ｇを
１リットルに混合した土壌では発病率が高かった。一方
発病率はＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の接種量によって異
なり、接種量が多い程発病の減少が認められた。すなわ
ちＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の発病軽減効果が認められ
た。
減材を芝草に使用すると真冬でも芝の枯死が少なく新芽
を出して緑色になる、すなわち活性が非常に高いことが
認められた。 試験例２農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌のキュウリ苗立枯病
の発病に及ぼす影響 イソライト４リットル、コメヌカ１リットル及び水２リ
ットルを混合して広口三角フラスコに適量つめて殺菌
し、苗立枯病を起こすＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌を植え
付けて、２８℃で３週間培養した。３週間培養した病原
菌を洪積層土壌（Ｎ：Ｐ：Ｋ＝０．０１３：０．０３
１：０．０５６％、ＣＥＣ４．７ｍｅ／１００ｇ）１リ
ットル当り１０ｇ及び５０ｇを混合して汚染土壌とし
た。農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １の培
養は上記の方法と同じ方法で行い、汚染土壌に０．５、
１及び５％（ｗ／ｗ）混合し、幅３２cm、長さ４７cm、
深さ７cmのコンテナーにつめて、１コンテナー４０粒の
キュウリを播種して、苗立枯病の発生数を調べて発病率
とした。実験は各区２コンテナーの２反復である。結果
は図２に示した通りである。図２から明らかなように、
Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌１０ｇを土壌１リットルに混
合した場合、苗の立枯病発病率が低かったが、５０ｇを
１リットルに混合した土壌では発病率が高かった。一方
発病率はＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の接種量によって異
なり、接種量が多い程発病の減少が認められた。すなわ
ちＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の発病軽減効果が認められ
た。
【００２７】試験例３有機肥料と農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の混合使
用がキュウリ苗立枯病の発生に及ぼす影響 ＣＤＵ１０ｇ（窒素成分３１％）と乾血３０ｇ（窒素成
分１１％）を混合して窒素成分が１６％になるようにし
た。Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌菌株No. １の培養は試験
例２と同じ方法で行い、５０ｇ／リットル洪積層土壌と
混合して汚染土壌とした。汚染土壌に１％（ｗ／ｗ）の
Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を混合した後、上記の有機肥
料の窒素成分が１００mg／リットル土壌になるよう添加
してよく攪拌し、直径１５cmの素焼鉢につめた。１ポッ
トにキュウリ種子を１０粒ずつ播種して苗立枯病数を調
べて発病率とした。実験は各区５ポットの３反復行っ
た。対照肥料は有機入り化成肥料８−８−８を用いた。
結果は図３に示した通りである。図３に示した通り、Ｔ
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １と有機肥料を併用し
た区で発病が最も少なかった。
用がキュウリ苗立枯病の発生に及ぼす影響 ＣＤＵ１０ｇ（窒素成分３１％）と乾血３０ｇ（窒素成
分１１％）を混合して窒素成分が１６％になるようにし
た。Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ菌菌株No. １の培養は試験
例２と同じ方法で行い、５０ｇ／リットル洪積層土壌と
混合して汚染土壌とした。汚染土壌に１％（ｗ／ｗ）の
Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌を混合した後、上記の有機肥
料の窒素成分が１００mg／リットル土壌になるよう添加
してよく攪拌し、直径１５cmの素焼鉢につめた。１ポッ
トにキュウリ種子を１０粒ずつ播種して苗立枯病数を調
べて発病率とした。実験は各区５ポットの３反復行っ
た。対照肥料は有機入り化成肥料８−８−８を用いた。
結果は図３に示した通りである。図３に示した通り、Ｔ
ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌株No. １と有機肥料を併用し
た区で発病が最も少なかった。
【００２８】試験例４Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌接種、ＣＤＵ発酵バーク堆肥
の単独及び複合処理がキュウリ苗立枯病の発生に及ぼす
影響 Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ 汚染土壌の作成は試験例３と同
じである。ＣＤＵ発酵バーク堆肥は当組合の良質腐熟化
調整技術で報告した堆肥を用いた。施用量は直径１５cm
ポット当り５０ｇである。Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌
株No. １の接種量は汚染土壌に１％（ｗ／ｗ）混合し
た。実験は各区５ポットの３反復で、苗立枯病数を調べ
て発病率とした。結果は図４に示した。図４に示した通
り、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌単独でも発病の軽減が認
められたが、ＣＤＵで発酵したバーク堆肥はより発病を
軽減した。さらに両者を併用した場合は最も発病が少な
く、著しい効果が認められた。
の単独及び複合処理がキュウリ苗立枯病の発生に及ぼす
影響 Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ 汚染土壌の作成は試験例３と同
じである。ＣＤＵ発酵バーク堆肥は当組合の良質腐熟化
調整技術で報告した堆肥を用いた。施用量は直径１５cm
ポット当り５０ｇである。Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌菌
株No. １の接種量は汚染土壌に１％（ｗ／ｗ）混合し
た。実験は各区５ポットの３反復で、苗立枯病数を調べ
て発病率とした。結果は図４に示した。図４に示した通
り、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌単独でも発病の軽減が認
められたが、ＣＤＵで発酵したバーク堆肥はより発病を
軽減した。さらに両者を併用した場合は最も発病が少な
く、著しい効果が認められた。
【００２９】
【発明の効果】以上に詳述した通り、本発明によれば、
少なくともチモール、チウラム及びダコニールに対して
耐性を有し、且つ少なくともキュウリつる割病菌及び苗
立枯病菌に対して拮抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅ
ｒｍａ菌が提供される。このＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌
は、堆肥などに高密度に定着させることが可能であり、
土壌中に存在している土壌伝染性植物病原菌の微生物的
防除効果を有する連作障害軽減材として極めて有用であ
る。
少なくともチモール、チウラム及びダコニールに対して
耐性を有し、且つ少なくともキュウリつる割病菌及び苗
立枯病菌に対して拮抗力を示す新規なＴｒｉｃｈｏｄｅ
ｒｍａ菌が提供される。このＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌
は、堆肥などに高密度に定着させることが可能であり、
土壌中に存在している土壌伝染性植物病原菌の微生物的
防除効果を有する連作障害軽減材として極めて有用であ
る。
【図１】本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌のキュウリ
つる割病菌に対する拮抗力を示すグラフである。
つる割病菌に対する拮抗力を示すグラフである。
【図２】本発明の農薬耐性Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌の
キュウリ苗立枯病の発病に及ぼす影響を示すグラフであ
る。
キュウリ苗立枯病の発病に及ぼす影響を示すグラフであ
る。
【図３】本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌、肥料及び
複合処理がキュウリ苗立枯病の発病に及ぼす影響を示す
グラフである。
複合処理がキュウリ苗立枯病の発病に及ぼす影響を示す
グラフである。
【図４】本発明のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌、ＣＤＵ発
酵バーク堆肥及び複合処理がキュウリ苗立枯病の発病に
及ぼす影響を示すグラフである。
酵バーク堆肥及び複合処理がキュウリ苗立枯病の発病に
及ぼす影響を示すグラフである。
Claims (7)
- 【請求項１】 農薬に対して耐性を有し、且つ土壌伝染
性植物病原菌に対して拮抗力を示すＴｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ菌。 - 【請求項２】 少なくともチモール、チウラム及びダコ
ニールに対して耐性を有し、且つ少なくともキュウリつ
る割病菌及び苗立枯病菌に対して拮抗力を示す請求項１
のＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ菌。 - 【請求項３】 受託番号として微工研菌寄第１２７２１
号（ＦＥＲＭ Ｐ−１２７２１）が付与された菌株ＳＦ
−Ｔ−１９９２である請求項１または２のＴｒｉｃｈｏ
ｄｅｒｍａ菌。 - 【請求項４】 請求項１から３のいずれかのＴｒｉｃｈ
ｏｄｅｒｍａ菌単独であるいはそれを堆肥及び／又は肥
料に含有せしめてなる連作障害軽減材。 - 【請求項５】 更に、乾血を含有する請求項４の連作障
害軽減材。 - 【請求項６】 更に、２−オキソ−４−メチル−６−ウ
レイドヘキサヒドロピリミジンを含有する請求項４また
は５の連作障害軽減材。 - 【請求項７】 更に、土壌改良剤を含有する請求項４か
ら６のいずれかの連作障害軽減材。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4043681A JPH05236941A (ja) | 1992-02-28 | 1992-02-28 | 連作障害軽減材 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4043681A JPH05236941A (ja) | 1992-02-28 | 1992-02-28 | 連作障害軽減材 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05236941A true JPH05236941A (ja) | 1993-09-17 |
Family
ID=12670585
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4043681A Pending JPH05236941A (ja) | 1992-02-28 | 1992-02-28 | 連作障害軽減材 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05236941A (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6750176B2 (en) * | 2001-04-26 | 2004-06-15 | Kumiai Chemical Industry Co., Ltd. | Wettable compositions for use in agriculture, preparation method therefor, and storage method therefor |
| WO2007059583A1 (en) * | 2005-11-25 | 2007-05-31 | Barry Hayes | Fertilizer and soil ameliorant |
| JP2009517447A (ja) * | 2005-11-30 | 2009-04-30 | エーデン リサーチ ピーエルシー | チモール、オイゲノール、ゲラニオール、シトラール、及びｌ−カルボンから選択されたテルペン又はテルペン混合物を含む組成物及び方法 |
| US10383329B2 (en) | 2012-11-21 | 2019-08-20 | Eden Research Plc | Preservatives |
| US10638750B2 (en) | 2004-05-20 | 2020-05-05 | Eden Research Plc | Compositions containing a hollow glucan particle or a cell wall particle encapsulating a terpene component, methods of making and using them |
| US10667512B2 (en) | 2005-11-30 | 2020-06-02 | Eden Research Plc | Terpene-containing compositions and methods of making and using them |
| US10729130B2 (en) | 2004-01-23 | 2020-08-04 | Eden Research Plc | Nematicidal compositions and methods of using them |
-
1992
- 1992-02-28 JP JP4043681A patent/JPH05236941A/ja active Pending
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| US10258033B2 (en) | 2005-11-30 | 2019-04-16 | Eden Research Plc | Compositions and methods comprising terpenes or terpene mixtures selected from thymol, eugenol, geraniol, citral and L-carvone |
| US10667512B2 (en) | 2005-11-30 | 2020-06-02 | Eden Research Plc | Terpene-containing compositions and methods of making and using them |
| US10383329B2 (en) | 2012-11-21 | 2019-08-20 | Eden Research Plc | Preservatives |
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