JPH0365759B2 - - Google Patents
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- JPH0365759B2 JPH0365759B2 JP61200046A JP20004686A JPH0365759B2 JP H0365759 B2 JPH0365759 B2 JP H0365759B2 JP 61200046 A JP61200046 A JP 61200046A JP 20004686 A JP20004686 A JP 20004686A JP H0365759 B2 JPH0365759 B2 JP H0365759B2
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Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は澱粉糖の製造法に関し、詳しくは特定
の多孔質キトサンに固定化した各種アミラーゼを
充填した反応器に澱粉液化液を供給して対応する
グルコース、マルトース、アルトオリゴ糖等の澱
粉糖を製造する方法に関する。 [従来の技術、発明が解決しようとする問題点] 固定化酵素を利用して澱粉糖を製造する方法に
ついては種々提案されており、たとえば固定化し
たグルコアミラーゼを利用して高濃度のグルコー
スを製造する方法が特公昭57−17517号、特開昭
58−60989号などに示されている。しかし、前者
の方法は生産されるグルコース濃度が十分でな
く、後者の方法は高濃度のグルコースは馬鈴薯系
澱粉を原料として達成されており、一般に高濃度
グルコースの作りにくいコーンスターチ等を原料
とした場合については記載されていない。 また、β−アミラーゼを固定化してマルトース
の製造に利用することは特開昭59−198977号など
に示されているが、酵素活性の維持に対してさら
に改善することが望ましい。 さらに、マルトトリオース以上の重合度を有す
るマルトオリゴ糖を生成するアミラーゼを固定化
してマルトオリゴ糖を製造する方法について本発
明者らは既に開発した(特願昭60−125093号(特
開昭61−285998号))。この技術は工業的にも十分
に実施しうるものであるが、高価な酵素をより有
効に利用することにおいて改善の余地がある。 [問題点を解決するための手段] 本発明者らは、アミラーゼを固定化する担体に
ついて検討を重ねた結果、特定の多孔質キトサン
を用いた場合に従来よりも通液速度を大きくする
ことができ、しかも酵素活性を安定的に維持しう
ることを見出し、本発明に到達した。また、固定
化酵素を組合せて複合系とすることにより目的と
する澱粉糖の収率を高めることが出来ることも見
出した。 本発明は第1に、天然高分子キチンを脱アセチ
ル化した後、ジカルボン酸、ジアルデヒド、ジイ
ソシアネート等で架橋して耐酸性を付与したもの
に、さらにスペーサーとして脂肪族または芳香族
系などの官能基を導入した多孔質キトサンに固定
化したアミラーゼを澱粉液化液に作用させること
を特徴とする澱粉糖の製造法に関するものであ
り、第2に上記多孔質キトサンに固定化したアミ
ラーゼを固定化枝切り酵素と共に澱粉液化液に作
用させることを特徴とする澱粉糖の製造法に関す
るものである。 本発明に用いるアミラーゼとしては各種のもの
があり、グルコアミラーゼはリゾプス属、アスペ
ルギルス属、ムコール属、ピリカラリア属、など
のカビ起源のものが主に用いられ、特にリゾプ
ス・デレマー起源のものが好適である。そのほか
エンドマイセス属、トリコデルマ属、サツカロミ
セス属などの酵母やクロストリジウム・アセトブ
チリカムなどの細菌起源のものが知られている。
β−アミラーゼとしては、大豆、麦芽等の植物起
源のもののほかにバチルス・ポリミキサ[D.
French,Arch.Biochem.Biophys.,104、338
(1964)]、バチルス・セレウス[Y.Takasaki,
Agric.Biol.Chem.,40、1515、1523(1976)]、シ
ユードモナス属細菌[S.Sinkeら、J.Ferment.
Technol.,53、693、698(1975)]、ストレプトミ
セス・ヒグロスコピカス[Y.Hidakaら、
Sta¨rke、26、413(1974)]、ストレプトミセス・
プレコツクス[若生勝雄ら、澱粉化学、25、155
(1978)]等の微生物起源のものがある。 また、マルトトリオース以上の重合度を有する
オリゴ糖を生成するアミラーゼとしては次のもの
が知られている。 マルトトリオース生成アミラーゼ[若生勝雄
ら:澱粉化学、26、175(1979)、ストレプトミセ
ス・グリセウス(Streptomyces griseus)起源
のもの;高埼義幸:昭和58年度日本農芸化学大会
要旨集、P169(1983)、バチルス(Bacillus)属起
源のもの] マルトテトラオース生成アミラーゼ[J.F.
Robyt and R.J.Ackerman:Arch.Biochem.
Biophys.,145、105(1971)、シユードモナス・
ストツツエリ(Pseudomonas stutzeri)起源の
もの] マルトペンタオース生成アミラーゼ[N.
Saito:Arch.Biochem.Biophys.,155.290
(1973)、バチルス・リケニホルミス(Bacillus
licheniformis)起源のもの;小林昭一ら;昭和
58年度日本澱粉学会大会要旨集、P301(1983);
吉儀尚浩ら:昭和59年度日本農芸化学大会要旨
集、P584(1984)] マルトヘキサオース生成アミラーゼ[K.
Kainumaら:FEBS Lett.,26.281(1972)、エ
アロバクター・エアロゲネス(Aerobacter
aerogenes)起源のもの;J.F.Kennedy and C.
A.White:Sta¨rke、31、93(1979);谷口肇ら:澱
粉化学、29.107(1982);Y.Takasaki:Agric.
Biol.Chem.,47.2193(1983)] 次に、上記アミラーゼの担体として用いる多孔
質キトサンとしては、たとえば商品名:キトパー
ル(富士紡績社製)があり、これは天然高分子キ
チンを脱アセチル化した後、ジカルボン酸、ジア
ルデヒド、ジイソシアネート等で架橋して耐酸性
を付与したものに、さらにスペーサーとして脂肪
族または芳香族系などの官能基を導入した多孔性
ビーズであり、PH安定性、耐薬品性、熱安定性に
すぐれている。この「キトパール」は粒径0.1〜
3.0mm、孔径3.0μm以下、比表面積15〜230m2/g
であるが、本発明ではこの値に制限されるもので
はない。 各種アミラーゼをキトサンを固定化する方法は
任意であり、たとえば緩衝液中で両者を接触させ
る方法を採用することができる。その1例を示す
と、「キトパール」100mgを0.01〜0.20モル濃度の
各種緩衝液(PH4.0〜8.0)で十分に平衝化した
後、各種アミラーゼ5〜500単位を緩衝液2mlに
溶解して添加し、十分に混合する。次いで、室温
にて0.5〜24時間放置するか、または0.5〜5.0時間
往復振とう処理(120ストローク/分)した後、
ガラスフイルターで過し、続いて種々の緩衝液
50mlで洗浄する。 このようにして得られる固定化酵素は見かけ上
の固定化率が90%以上であり、固定化酵素の発現
活性は担体湿重量1gあたり40〜2000単位であ
る。なお、見かけ上の固定化率は次式によつて算
出した値である。 供給した酵素活性−洗浄液中の酵素活性/供給した酵素
活性×100 (%) 酵素の固定化方法としては、上記方法のほか担
体をカラムに充填したのち酵素溶液を下降法また
は上昇法により通液する方法も適用できる。 本発明に用いる固定化アミラーゼは担体への固
定化が極めて容易であり、しかも酵素の発現活性
も実用に十分耐えるものである。 次に、第2の本発明で用いる固定化枝切り酵素
について説明する。枝切り酵素としては、バチル
ス・アシドプルリテイカス、グレブシエラ・ニユ
ーモニアなどの微生物起源のプルラナーゼやシユ
ードモナス・アミロデラモサ、シトフアーガ属微
生物等が生産するイソアミラーゼを用いることが
できるが、グルコース生成アミラーゼではほとん
どがPH4.0〜6.0、マルトオリゴ糖生成アミラーゼ
でほとんどがPH5.0〜8.5の範囲に至適PHを有する
ので、枝切り酵素も同様の安定かつ至適PH範囲を
有するものを用いることが望ましい。 枝切り酵素を固定化する担体については、固定
化操作により高い発現活性を示すものであれば、
どのようなものでも良いが、特に次の担体を用い
ることが望ましい。すなわち、本発明者らは数多
くの担体の中から各種枝切り酵素を効果的に固定
化しうるものを選択すべく検討した結果、特に微
弱酸性的多孔質吸着樹脂、弱酸性カチオン樹脂、
フエノール系吸着樹脂、粒状多孔質キトサンなど
が好適な担体であることを見出した。より具体的
には、デユオライト系樹脂(ダイヤモンド・シヤ
ムロツク社製)の商品名「S−761」、「S−762」、
「ES−771」、「C−464」、「A−7」、「S−587」
、
「A−562」や前記の「キトパール」を挙げること
ができる。 なお、枝切り酵素の固定化方法は制限されず、
たとえば前記した方法を適用することができる。 また、ネイテイブ枝切り酵素および固定化枝切
り酵素の活性測定方法は、基質としてプルラン
(ハヤシバラ生物化学研究所製)またはアミロペ
クチンを用い、それらの至適PHで反応を行なうこ
と以外は各種アミラーゼの場合と同じである。 本発明で使用する原料澱粉としては種々のもの
が使用できるが、通常馬鈴薯澱粉、甘薯澱粉、コ
ーンスターチ、ワキシーコーンスターチ、キヤツ
サバ澱粉等を用いる。また、反応器に通液する澱
粉液化液のグルコース当量(DE)は通常、1〜
35、好ましは5〜20の範囲にあるものを用いるの
が良い。ここで澱粉液化液のDEがワキシーコー
ンスターチの場合1以下、それ以外の澱粉では
DEが5以下のものは老化が激しく、工程上の取
扱いに工夫が必要である。一方、DEが35以上に
なると、グルコアミラーゼによるグルコース生成
に対しては逆合成が促進されてイソマルトース、
パノースなどの生成が増大し、グルコースの収量
が低下する。また、各種マルトオリゴ糖の生成に
対してグルコース、マルトース等の低分子糖の生
成が増大し、かつマルトオリゴ糖の収量が低下す
るので適当でない。なお、各種澱粉を液化する方
法は特に制限はないが、通常は液化型α−アミラ
ーゼまたは塩酸等の酸で処理する。次に、マルト
オリゴ糖とはマルトース、マルトトリオース、マ
ルトテトラオース、マルトペンタオース、マルト
ヘキサオース等を意味する。 本発明者らは、固定化酵素を用いて各種澱粉糖
を効率よく生成するため条件について種々検討を
重ねた結果、次のような因子等が大きく影響して
いることが判つた。すなわち、使用する基質の種
類、濃度およびその供給量、固定化担体の種類
(物性)、固定化した酵素量、その充填塔への充填
量、反応系の温度、PH等の条件などである。 これらを系統的に検討した結果、これら因子等
の影響は以下に示す表現および条件の範囲内にお
いて効率よくそれぞれの澱粉糖を生成することが
できることを見出した。すなわち、本発明の方法
では、固定化アミラーゼを反応器に充填し、前述
の澱粉液化液を固定化酵素単位活性あたりの重量
基準空塔速度が1×10-4〜2×10-1hr-1(IU/g)
-1の条件で供給することによつて効率良く各種澱
粉糖を製造するものである。より好ましくは、グ
ルコアミラーゼに対しては1×10-4〜3×
10-3hr-1(IU/g)-1、β−アミラーゼに対しては
1×10-4〜4×10-3hr-1(IU/g)-1、各種マルト
オリゴ糖生成アミラーゼに対しては3×10-4〜2
×10-1hr-1(IU/g)-1の条件を適用すべきであ
る。ここで、固定化酵素の単位活性あたりの重量
基準空塔速度は次のようにして求めた値である。
まず、反応器に充填するものと同じ固定化アミラ
ーゼ10mg(wet)を0.5mlの10mM各種バツフアー
(PH7.0)(50ml三角フラスコ中)に加え、十分に
馴染ませた後、反応器に供給するものと同じ基質
(澱粉の種類、濃度等も同じ)5.0mlを加えて、反
応器と同じ温度で往復振とう機により120ストロ
ークス/min.、4cm幅で振とうしながら酵素反
応を行い、生成還元糖をSomogyi−Nelson法で
測定するか、高速液体クロマトグラフイーのよう
な分析機器で直接生成する澱粉糖を測定して発現
する活性を測定する(この発現活性をA IU/
g−担体とする。)。なお、酵素活性はそれぞれの
反応条件で1分間に1μmolのグリコシド結合を切
断する酵素量を1単位(1国際単位IU)として
表わすことにする。また、反応器に充填する固定
化アミラーゼをBg(wet)、反応器に供給する澱
粉液化液量を固形分としてCg−固形分/hrとす
るとき、単位活性あたりの重量基準空塔速度を
C/(A×B)hr-1(IU/g)-1として求める。な
お、DEが大きい場合には原料中に目的とする澱
粉糖やそれよりも小さい糖を含むので、上記Cの
値としてはそれらを除いた固形分量を用いるのが
より実際的である。単位活性あたりの重量基準空
塔速度が2×10-1hr-1(IU/g)-1、グルコアミラ
ーゼの場合には3×10-3hr-1(IU/g)-1、β−ア
ミラーゼの場合には4×10-3hr-1(IU/g)-1、マ
ルトトリオース以上の重合度を有するマルトオリ
ゴ糖生成アミラーゼの場合には2×10-1hr-1
(IU/g)-1よりも大きいと、すなわち反応器中
での反応時間が短いと加水分解反応が十分におこ
なわれないため、それぞれの澱粉糖の収率が悪く
なり好ましくない。また、マルトオリゴ糖の生成
の場合には単位活性あたりの重量基準空塔速度が
1×10-4hr-1(IU/g)-1よりも小さくなると、す
なわち反応器中での反応時間が長くなると、下記
の刊行物に明らかにされているように、生成した
マルトオリゴ糖がさらに過分解されるため、グル
コース、マルトース等の低分子の糖が生成され、
製品の純度が著しく低下するばかりでなく、後に
精製分離を行なう場合の効率を悪くするので好ま
しくない。 上記したマルトトリオース以上の重合度を有す
るマルトオリゴ糖の過分解については、マルトオ
リゴ糖生成アミラーゼは、反応初期にはそれぞれ
のオリゴ糖(マルトトリオース、マルトテトラオ
ース、マルトペンタオース、マルトヘキサオース
等)を特異的に生産するが、反応後期になるにつ
れて生成物そのものを分解することが明らかにさ
れている[T.Nakakuki et al;Carbohydro.
Res.,128、297(1984)]。 また、グルコアミラーゼの場合は、単位活性あ
たりの重量基準空塔速度が1×10-3hr-1(IU/g)
-1あたりからパノース、イソマルトース等を生成
する逆反応が進行し、目的とするグルコースの収
率が低下し、効率的でなくなる。 一方、現実的にみて、単位活性あたりの重量基
準空塔速度が1×10-4hr-1(IU/g)-1以下になる
と、反応器中での滞留時間が長くなり、反応器の
大きさも過大となり、経済的にも有効性のないも
のとなると共に、原料澱粉液化液の老化による目
的澱粉糖の低下を来たし、また運転上のトラブル
の原因ともなりかねない。 本発明によれば、固定化アミラーゼの使用によ
つて固定化しない元のアミラーゼよりも反応条件
の拡大が期待できる。たとえばキトサンに固定化
した固定化マルトテトラオース生成アミラーゼの
場合には、温度安定性が10℃程度高温側に広がる
と共にPH安定性も広範囲にわたり改善される。ま
た、至適温度は固定化により10〜15℃上昇し、至
適PH曲線も酸性側に広がることを見出しており、
固定化酵素の酵素化学的性質は可成り改善され、
元の酵素を用いる場合よりも極めて有利な条件で
反応を行なうことができる。 本発明の方法により、たとえばマルトオリゴ糖
を製造する場合、マルトオリゴ糖の目的とする純
度に応じて様々な製造方式をとり得る。たとえば
純度20〜60%程度のマルトオリゴ糖は、40%
(w/w)の澱粉液化液を前述の固定化マルトオ
リゴ糖アミラーゼを充填した反応器に前述の条件
で供給することによつて得られる。また、さらに
高純度(60〜100%)のマルトオリゴ糖は、上記
反応器から得られた生成物をさらに精製分離する
ことにより得られる。この場合の精製分離手段は
特に制限はなく種々の方法をとりうるが、たとえ
ば限外過、ゲル過、カチオン交換樹脂カラム
クロマトグラフイー、カーボンカラムクロマトグ
ラフイー等の手段が有効である。また、上記精製
分離を行なつた際に得られる未分解物の一部また
は全部を固定化マルトオリゴ糖生成酵素を充填し
た反応器へ再循環させて供給原料の一部とするこ
とによつて原料澱粉液化液あたりのマルトオリゴ
糖収量を増大させることができる。さらに、該未
分解物の一部または全部をそのままリミツトデキ
ストリンとして利用することもできる。 次に固定化アミラーゼと共に固定化枝切り酵素
を併用する第2の発明について説明する。 固定化アミラーゼと併用する固定化枝切り酵素
の比率については、後者の量が増すほど澱粉糖の
濃度(収率)を高めることができるが、通常発現
活性ベースで前者1に対して後者0.1〜5、好ま
しくは0.2〜2の範囲とする。固定化枝切り酵素
の比率を上限以上としても、相応する効果が奏さ
れない上に、反応器の大きさが比例的に大きくな
るので経済的に好ましくない。ここで、枝切り酵
素を併用した場合の単位活性あたりの重量基準空
塔速度は、前述の式において発現活性(A
IU/g)としては枝切り酵素の発現活性は考慮
せずに使用するアミラーゼの発現活性だけを考慮
して求めればよい。 両酵素を併用する複合酵素系の場合、反応器の
形態と充填方法は種々の態様が考えられる。たと
えば、2種の固定化酵素を別々の容器に充填する
方法、2種の固定化酵素を混合してから同じ容器
に充填する方法、さらには2種のネイテイブ酵素
を一定の比率で混合した後、同時に固定化し、容
器に充填する方法等がある。 [発明の効果] 本発明の方法によれば、グルコース、マルトー
ス、マルトトリオース以上の重合度を有するマル
トオリゴ糖を製造するにあたり、固定化酵素単位
活性あたりの重量基準空塔速度を従来よりも大き
くでき、しかも酵素活性は長時間にわたり安定に
保持される。そのため、目的とする澱粉糖を効率
よく、かつ高収率にて製造することができる。と
りわけ、アミラーゼと共に枝切り酵素を用いて固
定化複合酵素系とした場合、目的物質の収率は格
段と向上する。 また、原料澱粉としてコーンスターチを使用し
た場合でもネイテイブ酵素と同程度に高濃度の澱
粉糖(特にグルコース)を得ることができる。 [実施例] 次に、本発明を実施例により詳しく説明する。 実施例 1 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパー
ルBCW3505、富士紡績(株)製)を用い、リゾプ
ス・デレマー起源のグルコアミラーゼ(新日本化
学(株)製)固定化した。すなわち、担体のキトサン
を20mM酢酸緩衝液(PH5.5)で十分に平衡化し
た後、100ml容の三角フラスコに湿重量で10gの
担体を秤量し、これにグルコアミラーゼを担体1
gあたり1050単位(液量10ml)添加した。次い
で、室温で1時間往復振とう(120ストローク/
分)して固定化した。さらに20mM酢酸緩衝液
(PH5.0)で蛋白質が溶出しなくなるまで十分に洗
浄し、固定化グルコアミラーゼ標品を得た。この
標品について前述した方法により発現活性を測定
したところ435IU/g−担体であつた。 この固定化グルコアミラーゼ10mlをガラスカラ
ム(直径10mm、長さ20mm)に充填し、基質として
30%(w/w)のコーンスターチ液化液(DE=
11、PH5.5)を用いて温度50℃、空塔速度0.25、
0.5および1.0hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔
速度はそれぞれ2.48×10-4、4.95×10-4および
9.89×10-4hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続的に
通液した。なお、空塔速度は下記の式により計算
した。結果を第1表に示す。 空塔速度(hr-1)=通液量(ml/hr)/床容積(ml) 比較例 1 担体として多孔製弱塩基性アニオン交換樹脂デ
ユオライトA−7(ダイヤモンドシヤムロツク社
製)を使用し、特開昭58−60989号の実施例1に
記載の方法で固定化したこと以外は実施例1と同
様に行なつた。なお、固定化酵素の発現活性は
157IU/g−担体であつた。この固定化酵素を用
いて実施例1と同様に実験を行なつた(単位活性
あたりの重量基準空塔速度はそれぞれ6.85×
10-4、1.37×10-3および2.74×10-3hr-1(IU/g)
-1)。結果を第1表に示す。 第1表 反応液中のグルコース濃度(%)空塔速度(hr-1) 実施例1 比較例1 0.25 95.2 94.2 0.5 96.7 93.8 1.0 95.2 87.4 実施例 2 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパー
ルBCW3505、富士紡績(株)製)を用い、β−アミ
ラーゼ(大豆起源、長瀬産業(株)製)を常法により
固定化した。得られた固定化β−アミラーゼの発
現活性は230IU/g−担体であつた。 この固定化β−アミラーゼをガラスカラム(直
径27mm、長さ130mm)に充填し、基質として25%
(w/w)の澱粉液化液(DE=7、PH6.0)を用
いで温度50℃、空塔速度0.2、0.5、1.0および
1.5hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔速度はそ
れぞれ3.09×10-4、7.73×10-4、1.55×10-3および
2.32×10-3hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続的に
通液した。結果を第2表に示す。また、空塔速度
1.5hr-1で連続通液したときの反応液中のマルト
ース含量の経時変化を第1図に示す。 比較例 2 担体としてデユオライト系吸着樹脂S−761(ダ
イヤモンドシヤムロツク社製)を使用し、実施例
2と同様にしてβ−アミラーゼの固定化を行なつ
た。固定化β−アミラーゼの発現活性は198IU/
g−担体であつた。 この固定化酵素10mlを実施例2と同様にガラス
カラムに充填し、基質として25%(w/w)の澱
粉液化液(DE=7、PH6.0)を用いて温度50℃、
空塔速度0.2、0.5、1.0および1.5hr-1(単位活性あ
たりの重量基準空塔速度はそれぞれ3.59×10-4、
8.98×10-4、1.80×10-3および2.70×10-3hr-1
(IU/g)-1)の各条件で連続通液した。結果を
第2表に示す。 第2表 反応液中のマルトテート濃度(%)空塔速度(hr-1) 実施例2 比較例2 0.2 52.5 52.4 0.5 52.5 44.8 1.0 52.3 37.5 1.5 52.1 30.3 第2表および第1図から明らかなように、本発
明によれば従来の固定化酵素を用いた場合よりも
速い空塔速度で高いマルトース生成量が得られ、
しかも30日後でも活性の低下はほとんど認められ
ず、半減期は1年以上であつた。 実施例 3 酵素としてマルトテトラオース生成アミラーゼ
(シユードモナス・ストツツエリ起源、比活性
80.8IU/mg・タンパク)、を用い固定化用担体と
してキトサンビーズ(商品名:キトパール
BCW3505、富士紡績社製)を使用して固定化酵
素を得た。すなわち、担体20gを50mM Tris
−HClバツフアー(PH7.0)で充分に平衡化した
後、100mlの同一バツフアーに溶解した20000IU
の酵素を添加し、室温で1時間往復振とう(300
ml容三角フラスコ中120ストローク/分、4cm幅)
しながら酵素を担体に固定化した。次いで、紙
で過した後、10mM Tris−HClバツフアー
(PH7.0)で蛋白質が溶出しなくなるまで十分に洗
浄し、発現活性が350IU/g−担体の固定化マル
トテトラオース生成酵素を得た。 次に直径27mm、長さ130mmのガラスカラムにマ
ルトテトラオース生成固定化酵素10mlを充填し
た。基質として26.2%(w/w)の澱粉液化液
(DE=7、PH7.2)を用い、温度45℃、空塔速度
2.0、5.0および10.0hr-1(単位活性あたりの重量基
準空塔速度はそれぞれ2.42×10-3、6.05×10-3お
よび1.21×10-2hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続
通液した。その結果を第3表に示す。また空塔速
度2.0hr-1の条件で連続通液したときの反応液中
のマルトテトラオース含量の経時的変化を第2図
に示す。 比較例 3 担体としてデユオライト系吸着樹脂S−761を
用いて実施例3と同様な方法で得た固定化マルト
テトラオース生成アミラーゼ10g(発現活性
215IU/g)を反応器に充填し、これに原料とし
て26.2%(w/w)の澱粉液化液(DE=7、PH
7.2)を24ml/hr、温度45℃、空塔速度2.0、5.0お
よび10hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔速度
はそれぞれ3.48×10-3、8.71×10-3および1.74×
10-2hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液した。そ
の結果を第3表に示す。また、空塔速度2.0hr-1
で連続通液したときの反応液中のマルトテトラオ
ース含量の経時変化を第2図に示す。 第3表 反応液中のマルトテトラオース濃度空塔速度(hr-1) 実施例3 比較例3 2.0 44.5 42.6 5.0 44.1 37.2 10.0 41.7 31.5 以上のように、本発明によれば、従来の固定化
酵素を用いた場合よりも高純度のマルトテトラオ
ースが得られる。 比較例 4 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテト
ラオース生成アミラーゼ(ただし、発現活性
273IU/g)6.6gを反応器に充填し、これに10%
(w/w)の澱粉液化液(DE=8.0、PH=6.8)を
用いて温度40℃、流速1.1ml/hrの条件(単位活
性あたりの重量基準空塔速度は(6.83×10-5hr-1
(IU/g)-1)で連続通液して反応生成物を得た。
この生成物の組成を第4表に示す。 比較例 5 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテト
ラオース生成アミラーゼ(ただし発現活性
46.7IU/g)6.6gを反応器に充填し、これに30
%(w/w)の澱粉液化液(DE=8.0、PH=6.8)
を用いて温度40℃、流速210ml/hrの条件(単位
活性あたりの重量基準空塔速度は2.29×10-1hr-1
(IU/g)-1)で連続通液して反応生成物を得た。
この生成物の組成を第4表に示す。 【表】 以上のように、単位活性あたりの重量基準空塔
速度が1×10-4hr-1(IU/g)-1よりも小さい場合
および2×10-1hr-1(IU/g)-1よりも大きい場合
は、いずれもマルトテトラオースの収率が小さく
なつていることが判る。 実施例 4 枝切り酵素であるプルラナーゼ(クルベシエ
ラ・ニユーモニア起源、比活性50IU/mg−蛋白
質、天野製薬株式会社製)を用いてPH6.0のリン
酢バツフアを使用したこと以外は実施例1と同様
の方法でキトパールBCW3505に固定化した。得
られた固定化プルラナーゼの発現活性は129IU/
g−担体であつた。 次に、直径10mm、長さ200mlのガラスカラム2
本を用いて固定化グルコアミラーゼ4mlと上述の
方法で得られた固定化プルラナーゼ9.0ml(発現
活性比は約3:1)を混合して充填した。一方、
基質として30%(w/w)のコーンスターチ液化
液(DE=11、PH5.5)を用い、温度50℃、空塔速
度0.25、0.5および1.0hr-1(単位活性あたりの重量
基準空塔速度はそれぞれ2.48×10-4、4.95×10-3
および9.89×10-4hr-1(IU/g)-1)の条件で連続
通液した。得られた結果を第5表に示す。 第5表 反応生成物中のグルコース濃度空塔速度(hr-1) 実施例5 実施例5 0.25 95.8 95.2 0.5 97.3 96.7 1.0 96.1 95.2 表に示すごとく、単独固定化酵素系よりも複合
固定化酵素系の方が反応生成物中のグルコース濃
度が約1%上昇した。 実施例 5 実施例2と同様にして得た固定化β−アミラー
ゼ10mlと実施例4と同様にして得た固定化プルラ
ナーゼ10mlを混合(発現活性比はβ−アミラー
ゼ:プルラナーゼ=2.1:1.0)してそれぞれ充填
した。基質として25.0%(w/w)の澱粉液化液
(DE=7、PH6.0)を用いて温度50℃、流速15
ml/hr(単位活性あたりの重量基準空塔速度は
2.32×10-3hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液し
た。運転日数0、15、30日後のカラム流出液の糖
組成を第6表に示す。表に示すごとく、複合固定
化酵素系の方がβ−アミラーゼのみの単一酵素系
よりもマルトース純度が約10〜12%上昇し、また
30日経過後でも活性の低下はほとんどみられなか
つた。 第6表 マルトース生成量の経時変化経時日数 単独酵素系 複合酵素系 0 53.0% 64.2% 15 51.8% 64.2% 30 50.1% 64.0% 実施例 6 実施例3と同様にして得た固定化マルトテトラ
オース生成酵素10mlと実施例3と同様にして得た
固定化プルラナーゼ5mlを混合(発現活性比、β
−アミラーゼ:プルラナーゼ=4.1)してそれぞ
れ充填した。基質として26.2%(w/w)の澱粉
液化液(DE=7、PH7.2)を用いて温度40℃、流
速24/hr(単位活性あたりの重量基準空塔速度
は4.06×10-3hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液
した。運転日数0、15、30日後のカラム流出液の
糖組成を第7表に示す。表に示すごとく、複合固
定化酵素系の方が固定化マルトテトラオース生成
酵素のみの単一酵素系よりもマルトテトラオース
純度が約5%上昇し、また30日経過後でも活性の
低下はほとんどみられなかつた。 第7表 マルトテトラオース生成量の経時変化経時日数 単独酵素系 複合酵素系 0 45.2% 50.5% 15 44.0% 48.3% 30 42.9% 46.2% 参考例 酵素としてマルトテトラオース生成アミラーゼ
(シユードモナス・ストツツエリ起源のもの、比
活性80.1IU/mg・タンパク質)を用い、3種の担
体を使用して固定化酵素を得た。ここで、3種の
担体とは、第1が本願発明に係る担体で、天然高
分子キチンを脱アセチル化し、乾燥、微粉砕した
ものをグルタルアルデヒドの水溶液中に加えて架
橋し、さらにスペーサーとして芳香族系の官能基
を有する4,4′−ジフエニルメタンジイソシアネ
ートを2容量加え、30℃で15時間処理した後、ア
セトンで洗浄したものである(以下、担体−1と
いう。)。第2は上記と同様にして架橋した後、ス
ペーサーとして脂肪属系の官能基を有するヘキサ
メチレンジイソシアネートを同様にして導入させ
たものである(以下、担体−2という。)。さらに
第3は上記と同様にして架橋した後、スペーサー
の導入を行なわなかつたものである(以下、担体
−3という。)。 担体0.2gに対して200IUの酵素をPH7.0の50m
Mリン酸緩衝液で2.0mlとしたものを50ml三角フ
ラスコに入れて室温で1時間、120ストローク、
4cm幅で振とうしながら酵素を担体に固定化し
た。 次いで、これをろ過してろ液を除き、さらに10
mMリン酸緩衝液(PH7.0)を用いてタンパク質
が流出しなくなるまで十分に洗浄して固定化酵素
を得た。この固定化酵素について、以下の方法で
みかけの固定化率を測定し、かつ固定化酵素の発
現活性を測定した。 みかけの固定化率は、まず上清を300倍に希釈
したもの0.1mlに対して0.5%還元可溶性澱粉溶液
0.5mlと50mMリン酸緩衝液(PH7.0)0.4mlを添加
し、40℃で10分間反応させて生成した還元糖を
Somogyi−Nelson法で測定し、上清中の酵素活
性を求め、以下の式により求めた。 添加した酵素活性−上清中の酵素活性/添加した酵素活
性×100 結果を第8表に示す。表から明らかなように、
本願発明に係る担体−1および担体−2を使用し
た固定化酵素は、固定化率が高く、活性も格段に
優れている。 一方、単に架橋のみを行つた担体−3は不十分
な結果であり、マルトオリゴ糖生成アミラーゼに
対し、単にキトサンが良好な担体であるという予
想が成立しないことを実証している。 【表】
の多孔質キトサンに固定化した各種アミラーゼを
充填した反応器に澱粉液化液を供給して対応する
グルコース、マルトース、アルトオリゴ糖等の澱
粉糖を製造する方法に関する。 [従来の技術、発明が解決しようとする問題点] 固定化酵素を利用して澱粉糖を製造する方法に
ついては種々提案されており、たとえば固定化し
たグルコアミラーゼを利用して高濃度のグルコー
スを製造する方法が特公昭57−17517号、特開昭
58−60989号などに示されている。しかし、前者
の方法は生産されるグルコース濃度が十分でな
く、後者の方法は高濃度のグルコースは馬鈴薯系
澱粉を原料として達成されており、一般に高濃度
グルコースの作りにくいコーンスターチ等を原料
とした場合については記載されていない。 また、β−アミラーゼを固定化してマルトース
の製造に利用することは特開昭59−198977号など
に示されているが、酵素活性の維持に対してさら
に改善することが望ましい。 さらに、マルトトリオース以上の重合度を有す
るマルトオリゴ糖を生成するアミラーゼを固定化
してマルトオリゴ糖を製造する方法について本発
明者らは既に開発した(特願昭60−125093号(特
開昭61−285998号))。この技術は工業的にも十分
に実施しうるものであるが、高価な酵素をより有
効に利用することにおいて改善の余地がある。 [問題点を解決するための手段] 本発明者らは、アミラーゼを固定化する担体に
ついて検討を重ねた結果、特定の多孔質キトサン
を用いた場合に従来よりも通液速度を大きくする
ことができ、しかも酵素活性を安定的に維持しう
ることを見出し、本発明に到達した。また、固定
化酵素を組合せて複合系とすることにより目的と
する澱粉糖の収率を高めることが出来ることも見
出した。 本発明は第1に、天然高分子キチンを脱アセチ
ル化した後、ジカルボン酸、ジアルデヒド、ジイ
ソシアネート等で架橋して耐酸性を付与したもの
に、さらにスペーサーとして脂肪族または芳香族
系などの官能基を導入した多孔質キトサンに固定
化したアミラーゼを澱粉液化液に作用させること
を特徴とする澱粉糖の製造法に関するものであ
り、第2に上記多孔質キトサンに固定化したアミ
ラーゼを固定化枝切り酵素と共に澱粉液化液に作
用させることを特徴とする澱粉糖の製造法に関す
るものである。 本発明に用いるアミラーゼとしては各種のもの
があり、グルコアミラーゼはリゾプス属、アスペ
ルギルス属、ムコール属、ピリカラリア属、など
のカビ起源のものが主に用いられ、特にリゾプ
ス・デレマー起源のものが好適である。そのほか
エンドマイセス属、トリコデルマ属、サツカロミ
セス属などの酵母やクロストリジウム・アセトブ
チリカムなどの細菌起源のものが知られている。
β−アミラーゼとしては、大豆、麦芽等の植物起
源のもののほかにバチルス・ポリミキサ[D.
French,Arch.Biochem.Biophys.,104、338
(1964)]、バチルス・セレウス[Y.Takasaki,
Agric.Biol.Chem.,40、1515、1523(1976)]、シ
ユードモナス属細菌[S.Sinkeら、J.Ferment.
Technol.,53、693、698(1975)]、ストレプトミ
セス・ヒグロスコピカス[Y.Hidakaら、
Sta¨rke、26、413(1974)]、ストレプトミセス・
プレコツクス[若生勝雄ら、澱粉化学、25、155
(1978)]等の微生物起源のものがある。 また、マルトトリオース以上の重合度を有する
オリゴ糖を生成するアミラーゼとしては次のもの
が知られている。 マルトトリオース生成アミラーゼ[若生勝雄
ら:澱粉化学、26、175(1979)、ストレプトミセ
ス・グリセウス(Streptomyces griseus)起源
のもの;高埼義幸:昭和58年度日本農芸化学大会
要旨集、P169(1983)、バチルス(Bacillus)属起
源のもの] マルトテトラオース生成アミラーゼ[J.F.
Robyt and R.J.Ackerman:Arch.Biochem.
Biophys.,145、105(1971)、シユードモナス・
ストツツエリ(Pseudomonas stutzeri)起源の
もの] マルトペンタオース生成アミラーゼ[N.
Saito:Arch.Biochem.Biophys.,155.290
(1973)、バチルス・リケニホルミス(Bacillus
licheniformis)起源のもの;小林昭一ら;昭和
58年度日本澱粉学会大会要旨集、P301(1983);
吉儀尚浩ら:昭和59年度日本農芸化学大会要旨
集、P584(1984)] マルトヘキサオース生成アミラーゼ[K.
Kainumaら:FEBS Lett.,26.281(1972)、エ
アロバクター・エアロゲネス(Aerobacter
aerogenes)起源のもの;J.F.Kennedy and C.
A.White:Sta¨rke、31、93(1979);谷口肇ら:澱
粉化学、29.107(1982);Y.Takasaki:Agric.
Biol.Chem.,47.2193(1983)] 次に、上記アミラーゼの担体として用いる多孔
質キトサンとしては、たとえば商品名:キトパー
ル(富士紡績社製)があり、これは天然高分子キ
チンを脱アセチル化した後、ジカルボン酸、ジア
ルデヒド、ジイソシアネート等で架橋して耐酸性
を付与したものに、さらにスペーサーとして脂肪
族または芳香族系などの官能基を導入した多孔性
ビーズであり、PH安定性、耐薬品性、熱安定性に
すぐれている。この「キトパール」は粒径0.1〜
3.0mm、孔径3.0μm以下、比表面積15〜230m2/g
であるが、本発明ではこの値に制限されるもので
はない。 各種アミラーゼをキトサンを固定化する方法は
任意であり、たとえば緩衝液中で両者を接触させ
る方法を採用することができる。その1例を示す
と、「キトパール」100mgを0.01〜0.20モル濃度の
各種緩衝液(PH4.0〜8.0)で十分に平衝化した
後、各種アミラーゼ5〜500単位を緩衝液2mlに
溶解して添加し、十分に混合する。次いで、室温
にて0.5〜24時間放置するか、または0.5〜5.0時間
往復振とう処理(120ストローク/分)した後、
ガラスフイルターで過し、続いて種々の緩衝液
50mlで洗浄する。 このようにして得られる固定化酵素は見かけ上
の固定化率が90%以上であり、固定化酵素の発現
活性は担体湿重量1gあたり40〜2000単位であ
る。なお、見かけ上の固定化率は次式によつて算
出した値である。 供給した酵素活性−洗浄液中の酵素活性/供給した酵素
活性×100 (%) 酵素の固定化方法としては、上記方法のほか担
体をカラムに充填したのち酵素溶液を下降法また
は上昇法により通液する方法も適用できる。 本発明に用いる固定化アミラーゼは担体への固
定化が極めて容易であり、しかも酵素の発現活性
も実用に十分耐えるものである。 次に、第2の本発明で用いる固定化枝切り酵素
について説明する。枝切り酵素としては、バチル
ス・アシドプルリテイカス、グレブシエラ・ニユ
ーモニアなどの微生物起源のプルラナーゼやシユ
ードモナス・アミロデラモサ、シトフアーガ属微
生物等が生産するイソアミラーゼを用いることが
できるが、グルコース生成アミラーゼではほとん
どがPH4.0〜6.0、マルトオリゴ糖生成アミラーゼ
でほとんどがPH5.0〜8.5の範囲に至適PHを有する
ので、枝切り酵素も同様の安定かつ至適PH範囲を
有するものを用いることが望ましい。 枝切り酵素を固定化する担体については、固定
化操作により高い発現活性を示すものであれば、
どのようなものでも良いが、特に次の担体を用い
ることが望ましい。すなわち、本発明者らは数多
くの担体の中から各種枝切り酵素を効果的に固定
化しうるものを選択すべく検討した結果、特に微
弱酸性的多孔質吸着樹脂、弱酸性カチオン樹脂、
フエノール系吸着樹脂、粒状多孔質キトサンなど
が好適な担体であることを見出した。より具体的
には、デユオライト系樹脂(ダイヤモンド・シヤ
ムロツク社製)の商品名「S−761」、「S−762」、
「ES−771」、「C−464」、「A−7」、「S−587」
、
「A−562」や前記の「キトパール」を挙げること
ができる。 なお、枝切り酵素の固定化方法は制限されず、
たとえば前記した方法を適用することができる。 また、ネイテイブ枝切り酵素および固定化枝切
り酵素の活性測定方法は、基質としてプルラン
(ハヤシバラ生物化学研究所製)またはアミロペ
クチンを用い、それらの至適PHで反応を行なうこ
と以外は各種アミラーゼの場合と同じである。 本発明で使用する原料澱粉としては種々のもの
が使用できるが、通常馬鈴薯澱粉、甘薯澱粉、コ
ーンスターチ、ワキシーコーンスターチ、キヤツ
サバ澱粉等を用いる。また、反応器に通液する澱
粉液化液のグルコース当量(DE)は通常、1〜
35、好ましは5〜20の範囲にあるものを用いるの
が良い。ここで澱粉液化液のDEがワキシーコー
ンスターチの場合1以下、それ以外の澱粉では
DEが5以下のものは老化が激しく、工程上の取
扱いに工夫が必要である。一方、DEが35以上に
なると、グルコアミラーゼによるグルコース生成
に対しては逆合成が促進されてイソマルトース、
パノースなどの生成が増大し、グルコースの収量
が低下する。また、各種マルトオリゴ糖の生成に
対してグルコース、マルトース等の低分子糖の生
成が増大し、かつマルトオリゴ糖の収量が低下す
るので適当でない。なお、各種澱粉を液化する方
法は特に制限はないが、通常は液化型α−アミラ
ーゼまたは塩酸等の酸で処理する。次に、マルト
オリゴ糖とはマルトース、マルトトリオース、マ
ルトテトラオース、マルトペンタオース、マルト
ヘキサオース等を意味する。 本発明者らは、固定化酵素を用いて各種澱粉糖
を効率よく生成するため条件について種々検討を
重ねた結果、次のような因子等が大きく影響して
いることが判つた。すなわち、使用する基質の種
類、濃度およびその供給量、固定化担体の種類
(物性)、固定化した酵素量、その充填塔への充填
量、反応系の温度、PH等の条件などである。 これらを系統的に検討した結果、これら因子等
の影響は以下に示す表現および条件の範囲内にお
いて効率よくそれぞれの澱粉糖を生成することが
できることを見出した。すなわち、本発明の方法
では、固定化アミラーゼを反応器に充填し、前述
の澱粉液化液を固定化酵素単位活性あたりの重量
基準空塔速度が1×10-4〜2×10-1hr-1(IU/g)
-1の条件で供給することによつて効率良く各種澱
粉糖を製造するものである。より好ましくは、グ
ルコアミラーゼに対しては1×10-4〜3×
10-3hr-1(IU/g)-1、β−アミラーゼに対しては
1×10-4〜4×10-3hr-1(IU/g)-1、各種マルト
オリゴ糖生成アミラーゼに対しては3×10-4〜2
×10-1hr-1(IU/g)-1の条件を適用すべきであ
る。ここで、固定化酵素の単位活性あたりの重量
基準空塔速度は次のようにして求めた値である。
まず、反応器に充填するものと同じ固定化アミラ
ーゼ10mg(wet)を0.5mlの10mM各種バツフアー
(PH7.0)(50ml三角フラスコ中)に加え、十分に
馴染ませた後、反応器に供給するものと同じ基質
(澱粉の種類、濃度等も同じ)5.0mlを加えて、反
応器と同じ温度で往復振とう機により120ストロ
ークス/min.、4cm幅で振とうしながら酵素反
応を行い、生成還元糖をSomogyi−Nelson法で
測定するか、高速液体クロマトグラフイーのよう
な分析機器で直接生成する澱粉糖を測定して発現
する活性を測定する(この発現活性をA IU/
g−担体とする。)。なお、酵素活性はそれぞれの
反応条件で1分間に1μmolのグリコシド結合を切
断する酵素量を1単位(1国際単位IU)として
表わすことにする。また、反応器に充填する固定
化アミラーゼをBg(wet)、反応器に供給する澱
粉液化液量を固形分としてCg−固形分/hrとす
るとき、単位活性あたりの重量基準空塔速度を
C/(A×B)hr-1(IU/g)-1として求める。な
お、DEが大きい場合には原料中に目的とする澱
粉糖やそれよりも小さい糖を含むので、上記Cの
値としてはそれらを除いた固形分量を用いるのが
より実際的である。単位活性あたりの重量基準空
塔速度が2×10-1hr-1(IU/g)-1、グルコアミラ
ーゼの場合には3×10-3hr-1(IU/g)-1、β−ア
ミラーゼの場合には4×10-3hr-1(IU/g)-1、マ
ルトトリオース以上の重合度を有するマルトオリ
ゴ糖生成アミラーゼの場合には2×10-1hr-1
(IU/g)-1よりも大きいと、すなわち反応器中
での反応時間が短いと加水分解反応が十分におこ
なわれないため、それぞれの澱粉糖の収率が悪く
なり好ましくない。また、マルトオリゴ糖の生成
の場合には単位活性あたりの重量基準空塔速度が
1×10-4hr-1(IU/g)-1よりも小さくなると、す
なわち反応器中での反応時間が長くなると、下記
の刊行物に明らかにされているように、生成した
マルトオリゴ糖がさらに過分解されるため、グル
コース、マルトース等の低分子の糖が生成され、
製品の純度が著しく低下するばかりでなく、後に
精製分離を行なう場合の効率を悪くするので好ま
しくない。 上記したマルトトリオース以上の重合度を有す
るマルトオリゴ糖の過分解については、マルトオ
リゴ糖生成アミラーゼは、反応初期にはそれぞれ
のオリゴ糖(マルトトリオース、マルトテトラオ
ース、マルトペンタオース、マルトヘキサオース
等)を特異的に生産するが、反応後期になるにつ
れて生成物そのものを分解することが明らかにさ
れている[T.Nakakuki et al;Carbohydro.
Res.,128、297(1984)]。 また、グルコアミラーゼの場合は、単位活性あ
たりの重量基準空塔速度が1×10-3hr-1(IU/g)
-1あたりからパノース、イソマルトース等を生成
する逆反応が進行し、目的とするグルコースの収
率が低下し、効率的でなくなる。 一方、現実的にみて、単位活性あたりの重量基
準空塔速度が1×10-4hr-1(IU/g)-1以下になる
と、反応器中での滞留時間が長くなり、反応器の
大きさも過大となり、経済的にも有効性のないも
のとなると共に、原料澱粉液化液の老化による目
的澱粉糖の低下を来たし、また運転上のトラブル
の原因ともなりかねない。 本発明によれば、固定化アミラーゼの使用によ
つて固定化しない元のアミラーゼよりも反応条件
の拡大が期待できる。たとえばキトサンに固定化
した固定化マルトテトラオース生成アミラーゼの
場合には、温度安定性が10℃程度高温側に広がる
と共にPH安定性も広範囲にわたり改善される。ま
た、至適温度は固定化により10〜15℃上昇し、至
適PH曲線も酸性側に広がることを見出しており、
固定化酵素の酵素化学的性質は可成り改善され、
元の酵素を用いる場合よりも極めて有利な条件で
反応を行なうことができる。 本発明の方法により、たとえばマルトオリゴ糖
を製造する場合、マルトオリゴ糖の目的とする純
度に応じて様々な製造方式をとり得る。たとえば
純度20〜60%程度のマルトオリゴ糖は、40%
(w/w)の澱粉液化液を前述の固定化マルトオ
リゴ糖アミラーゼを充填した反応器に前述の条件
で供給することによつて得られる。また、さらに
高純度(60〜100%)のマルトオリゴ糖は、上記
反応器から得られた生成物をさらに精製分離する
ことにより得られる。この場合の精製分離手段は
特に制限はなく種々の方法をとりうるが、たとえ
ば限外過、ゲル過、カチオン交換樹脂カラム
クロマトグラフイー、カーボンカラムクロマトグ
ラフイー等の手段が有効である。また、上記精製
分離を行なつた際に得られる未分解物の一部また
は全部を固定化マルトオリゴ糖生成酵素を充填し
た反応器へ再循環させて供給原料の一部とするこ
とによつて原料澱粉液化液あたりのマルトオリゴ
糖収量を増大させることができる。さらに、該未
分解物の一部または全部をそのままリミツトデキ
ストリンとして利用することもできる。 次に固定化アミラーゼと共に固定化枝切り酵素
を併用する第2の発明について説明する。 固定化アミラーゼと併用する固定化枝切り酵素
の比率については、後者の量が増すほど澱粉糖の
濃度(収率)を高めることができるが、通常発現
活性ベースで前者1に対して後者0.1〜5、好ま
しくは0.2〜2の範囲とする。固定化枝切り酵素
の比率を上限以上としても、相応する効果が奏さ
れない上に、反応器の大きさが比例的に大きくな
るので経済的に好ましくない。ここで、枝切り酵
素を併用した場合の単位活性あたりの重量基準空
塔速度は、前述の式において発現活性(A
IU/g)としては枝切り酵素の発現活性は考慮
せずに使用するアミラーゼの発現活性だけを考慮
して求めればよい。 両酵素を併用する複合酵素系の場合、反応器の
形態と充填方法は種々の態様が考えられる。たと
えば、2種の固定化酵素を別々の容器に充填する
方法、2種の固定化酵素を混合してから同じ容器
に充填する方法、さらには2種のネイテイブ酵素
を一定の比率で混合した後、同時に固定化し、容
器に充填する方法等がある。 [発明の効果] 本発明の方法によれば、グルコース、マルトー
ス、マルトトリオース以上の重合度を有するマル
トオリゴ糖を製造するにあたり、固定化酵素単位
活性あたりの重量基準空塔速度を従来よりも大き
くでき、しかも酵素活性は長時間にわたり安定に
保持される。そのため、目的とする澱粉糖を効率
よく、かつ高収率にて製造することができる。と
りわけ、アミラーゼと共に枝切り酵素を用いて固
定化複合酵素系とした場合、目的物質の収率は格
段と向上する。 また、原料澱粉としてコーンスターチを使用し
た場合でもネイテイブ酵素と同程度に高濃度の澱
粉糖(特にグルコース)を得ることができる。 [実施例] 次に、本発明を実施例により詳しく説明する。 実施例 1 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパー
ルBCW3505、富士紡績(株)製)を用い、リゾプ
ス・デレマー起源のグルコアミラーゼ(新日本化
学(株)製)固定化した。すなわち、担体のキトサン
を20mM酢酸緩衝液(PH5.5)で十分に平衡化し
た後、100ml容の三角フラスコに湿重量で10gの
担体を秤量し、これにグルコアミラーゼを担体1
gあたり1050単位(液量10ml)添加した。次い
で、室温で1時間往復振とう(120ストローク/
分)して固定化した。さらに20mM酢酸緩衝液
(PH5.0)で蛋白質が溶出しなくなるまで十分に洗
浄し、固定化グルコアミラーゼ標品を得た。この
標品について前述した方法により発現活性を測定
したところ435IU/g−担体であつた。 この固定化グルコアミラーゼ10mlをガラスカラ
ム(直径10mm、長さ20mm)に充填し、基質として
30%(w/w)のコーンスターチ液化液(DE=
11、PH5.5)を用いて温度50℃、空塔速度0.25、
0.5および1.0hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔
速度はそれぞれ2.48×10-4、4.95×10-4および
9.89×10-4hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続的に
通液した。なお、空塔速度は下記の式により計算
した。結果を第1表に示す。 空塔速度(hr-1)=通液量(ml/hr)/床容積(ml) 比較例 1 担体として多孔製弱塩基性アニオン交換樹脂デ
ユオライトA−7(ダイヤモンドシヤムロツク社
製)を使用し、特開昭58−60989号の実施例1に
記載の方法で固定化したこと以外は実施例1と同
様に行なつた。なお、固定化酵素の発現活性は
157IU/g−担体であつた。この固定化酵素を用
いて実施例1と同様に実験を行なつた(単位活性
あたりの重量基準空塔速度はそれぞれ6.85×
10-4、1.37×10-3および2.74×10-3hr-1(IU/g)
-1)。結果を第1表に示す。 第1表 反応液中のグルコース濃度(%)空塔速度(hr-1) 実施例1 比較例1 0.25 95.2 94.2 0.5 96.7 93.8 1.0 95.2 87.4 実施例 2 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパー
ルBCW3505、富士紡績(株)製)を用い、β−アミ
ラーゼ(大豆起源、長瀬産業(株)製)を常法により
固定化した。得られた固定化β−アミラーゼの発
現活性は230IU/g−担体であつた。 この固定化β−アミラーゼをガラスカラム(直
径27mm、長さ130mm)に充填し、基質として25%
(w/w)の澱粉液化液(DE=7、PH6.0)を用
いで温度50℃、空塔速度0.2、0.5、1.0および
1.5hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔速度はそ
れぞれ3.09×10-4、7.73×10-4、1.55×10-3および
2.32×10-3hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続的に
通液した。結果を第2表に示す。また、空塔速度
1.5hr-1で連続通液したときの反応液中のマルト
ース含量の経時変化を第1図に示す。 比較例 2 担体としてデユオライト系吸着樹脂S−761(ダ
イヤモンドシヤムロツク社製)を使用し、実施例
2と同様にしてβ−アミラーゼの固定化を行なつ
た。固定化β−アミラーゼの発現活性は198IU/
g−担体であつた。 この固定化酵素10mlを実施例2と同様にガラス
カラムに充填し、基質として25%(w/w)の澱
粉液化液(DE=7、PH6.0)を用いて温度50℃、
空塔速度0.2、0.5、1.0および1.5hr-1(単位活性あ
たりの重量基準空塔速度はそれぞれ3.59×10-4、
8.98×10-4、1.80×10-3および2.70×10-3hr-1
(IU/g)-1)の各条件で連続通液した。結果を
第2表に示す。 第2表 反応液中のマルトテート濃度(%)空塔速度(hr-1) 実施例2 比較例2 0.2 52.5 52.4 0.5 52.5 44.8 1.0 52.3 37.5 1.5 52.1 30.3 第2表および第1図から明らかなように、本発
明によれば従来の固定化酵素を用いた場合よりも
速い空塔速度で高いマルトース生成量が得られ、
しかも30日後でも活性の低下はほとんど認められ
ず、半減期は1年以上であつた。 実施例 3 酵素としてマルトテトラオース生成アミラーゼ
(シユードモナス・ストツツエリ起源、比活性
80.8IU/mg・タンパク)、を用い固定化用担体と
してキトサンビーズ(商品名:キトパール
BCW3505、富士紡績社製)を使用して固定化酵
素を得た。すなわち、担体20gを50mM Tris
−HClバツフアー(PH7.0)で充分に平衡化した
後、100mlの同一バツフアーに溶解した20000IU
の酵素を添加し、室温で1時間往復振とう(300
ml容三角フラスコ中120ストローク/分、4cm幅)
しながら酵素を担体に固定化した。次いで、紙
で過した後、10mM Tris−HClバツフアー
(PH7.0)で蛋白質が溶出しなくなるまで十分に洗
浄し、発現活性が350IU/g−担体の固定化マル
トテトラオース生成酵素を得た。 次に直径27mm、長さ130mmのガラスカラムにマ
ルトテトラオース生成固定化酵素10mlを充填し
た。基質として26.2%(w/w)の澱粉液化液
(DE=7、PH7.2)を用い、温度45℃、空塔速度
2.0、5.0および10.0hr-1(単位活性あたりの重量基
準空塔速度はそれぞれ2.42×10-3、6.05×10-3お
よび1.21×10-2hr-1(IU/g)-1)の各条件で連続
通液した。その結果を第3表に示す。また空塔速
度2.0hr-1の条件で連続通液したときの反応液中
のマルトテトラオース含量の経時的変化を第2図
に示す。 比較例 3 担体としてデユオライト系吸着樹脂S−761を
用いて実施例3と同様な方法で得た固定化マルト
テトラオース生成アミラーゼ10g(発現活性
215IU/g)を反応器に充填し、これに原料とし
て26.2%(w/w)の澱粉液化液(DE=7、PH
7.2)を24ml/hr、温度45℃、空塔速度2.0、5.0お
よび10hr-1(単位活性あたりの重量基準空塔速度
はそれぞれ3.48×10-3、8.71×10-3および1.74×
10-2hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液した。そ
の結果を第3表に示す。また、空塔速度2.0hr-1
で連続通液したときの反応液中のマルトテトラオ
ース含量の経時変化を第2図に示す。 第3表 反応液中のマルトテトラオース濃度空塔速度(hr-1) 実施例3 比較例3 2.0 44.5 42.6 5.0 44.1 37.2 10.0 41.7 31.5 以上のように、本発明によれば、従来の固定化
酵素を用いた場合よりも高純度のマルトテトラオ
ースが得られる。 比較例 4 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテト
ラオース生成アミラーゼ(ただし、発現活性
273IU/g)6.6gを反応器に充填し、これに10%
(w/w)の澱粉液化液(DE=8.0、PH=6.8)を
用いて温度40℃、流速1.1ml/hrの条件(単位活
性あたりの重量基準空塔速度は(6.83×10-5hr-1
(IU/g)-1)で連続通液して反応生成物を得た。
この生成物の組成を第4表に示す。 比較例 5 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテト
ラオース生成アミラーゼ(ただし発現活性
46.7IU/g)6.6gを反応器に充填し、これに30
%(w/w)の澱粉液化液(DE=8.0、PH=6.8)
を用いて温度40℃、流速210ml/hrの条件(単位
活性あたりの重量基準空塔速度は2.29×10-1hr-1
(IU/g)-1)で連続通液して反応生成物を得た。
この生成物の組成を第4表に示す。 【表】 以上のように、単位活性あたりの重量基準空塔
速度が1×10-4hr-1(IU/g)-1よりも小さい場合
および2×10-1hr-1(IU/g)-1よりも大きい場合
は、いずれもマルトテトラオースの収率が小さく
なつていることが判る。 実施例 4 枝切り酵素であるプルラナーゼ(クルベシエ
ラ・ニユーモニア起源、比活性50IU/mg−蛋白
質、天野製薬株式会社製)を用いてPH6.0のリン
酢バツフアを使用したこと以外は実施例1と同様
の方法でキトパールBCW3505に固定化した。得
られた固定化プルラナーゼの発現活性は129IU/
g−担体であつた。 次に、直径10mm、長さ200mlのガラスカラム2
本を用いて固定化グルコアミラーゼ4mlと上述の
方法で得られた固定化プルラナーゼ9.0ml(発現
活性比は約3:1)を混合して充填した。一方、
基質として30%(w/w)のコーンスターチ液化
液(DE=11、PH5.5)を用い、温度50℃、空塔速
度0.25、0.5および1.0hr-1(単位活性あたりの重量
基準空塔速度はそれぞれ2.48×10-4、4.95×10-3
および9.89×10-4hr-1(IU/g)-1)の条件で連続
通液した。得られた結果を第5表に示す。 第5表 反応生成物中のグルコース濃度空塔速度(hr-1) 実施例5 実施例5 0.25 95.8 95.2 0.5 97.3 96.7 1.0 96.1 95.2 表に示すごとく、単独固定化酵素系よりも複合
固定化酵素系の方が反応生成物中のグルコース濃
度が約1%上昇した。 実施例 5 実施例2と同様にして得た固定化β−アミラー
ゼ10mlと実施例4と同様にして得た固定化プルラ
ナーゼ10mlを混合(発現活性比はβ−アミラー
ゼ:プルラナーゼ=2.1:1.0)してそれぞれ充填
した。基質として25.0%(w/w)の澱粉液化液
(DE=7、PH6.0)を用いて温度50℃、流速15
ml/hr(単位活性あたりの重量基準空塔速度は
2.32×10-3hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液し
た。運転日数0、15、30日後のカラム流出液の糖
組成を第6表に示す。表に示すごとく、複合固定
化酵素系の方がβ−アミラーゼのみの単一酵素系
よりもマルトース純度が約10〜12%上昇し、また
30日経過後でも活性の低下はほとんどみられなか
つた。 第6表 マルトース生成量の経時変化経時日数 単独酵素系 複合酵素系 0 53.0% 64.2% 15 51.8% 64.2% 30 50.1% 64.0% 実施例 6 実施例3と同様にして得た固定化マルトテトラ
オース生成酵素10mlと実施例3と同様にして得た
固定化プルラナーゼ5mlを混合(発現活性比、β
−アミラーゼ:プルラナーゼ=4.1)してそれぞ
れ充填した。基質として26.2%(w/w)の澱粉
液化液(DE=7、PH7.2)を用いて温度40℃、流
速24/hr(単位活性あたりの重量基準空塔速度
は4.06×10-3hr-1(IU/g)-1)の条件で連続通液
した。運転日数0、15、30日後のカラム流出液の
糖組成を第7表に示す。表に示すごとく、複合固
定化酵素系の方が固定化マルトテトラオース生成
酵素のみの単一酵素系よりもマルトテトラオース
純度が約5%上昇し、また30日経過後でも活性の
低下はほとんどみられなかつた。 第7表 マルトテトラオース生成量の経時変化経時日数 単独酵素系 複合酵素系 0 45.2% 50.5% 15 44.0% 48.3% 30 42.9% 46.2% 参考例 酵素としてマルトテトラオース生成アミラーゼ
(シユードモナス・ストツツエリ起源のもの、比
活性80.1IU/mg・タンパク質)を用い、3種の担
体を使用して固定化酵素を得た。ここで、3種の
担体とは、第1が本願発明に係る担体で、天然高
分子キチンを脱アセチル化し、乾燥、微粉砕した
ものをグルタルアルデヒドの水溶液中に加えて架
橋し、さらにスペーサーとして芳香族系の官能基
を有する4,4′−ジフエニルメタンジイソシアネ
ートを2容量加え、30℃で15時間処理した後、ア
セトンで洗浄したものである(以下、担体−1と
いう。)。第2は上記と同様にして架橋した後、ス
ペーサーとして脂肪属系の官能基を有するヘキサ
メチレンジイソシアネートを同様にして導入させ
たものである(以下、担体−2という。)。さらに
第3は上記と同様にして架橋した後、スペーサー
の導入を行なわなかつたものである(以下、担体
−3という。)。 担体0.2gに対して200IUの酵素をPH7.0の50m
Mリン酸緩衝液で2.0mlとしたものを50ml三角フ
ラスコに入れて室温で1時間、120ストローク、
4cm幅で振とうしながら酵素を担体に固定化し
た。 次いで、これをろ過してろ液を除き、さらに10
mMリン酸緩衝液(PH7.0)を用いてタンパク質
が流出しなくなるまで十分に洗浄して固定化酵素
を得た。この固定化酵素について、以下の方法で
みかけの固定化率を測定し、かつ固定化酵素の発
現活性を測定した。 みかけの固定化率は、まず上清を300倍に希釈
したもの0.1mlに対して0.5%還元可溶性澱粉溶液
0.5mlと50mMリン酸緩衝液(PH7.0)0.4mlを添加
し、40℃で10分間反応させて生成した還元糖を
Somogyi−Nelson法で測定し、上清中の酵素活
性を求め、以下の式により求めた。 添加した酵素活性−上清中の酵素活性/添加した酵素活
性×100 結果を第8表に示す。表から明らかなように、
本願発明に係る担体−1および担体−2を使用し
た固定化酵素は、固定化率が高く、活性も格段に
優れている。 一方、単に架橋のみを行つた担体−3は不十分
な結果であり、マルトオリゴ糖生成アミラーゼに
対し、単にキトサンが良好な担体であるという予
想が成立しないことを実証している。 【表】
第1図は実施例2における反応液中のマルトー
ス含量の経時変化を示し、第2図は実施例3およ
び比較例3における反応液中のマルトテトラオー
ス含量の経時変化を示す。
ス含量の経時変化を示し、第2図は実施例3およ
び比較例3における反応液中のマルトテトラオー
ス含量の経時変化を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 天然高分子キチンを脱アセチル化した後、ジ
カルボン酸、ジアルデヒド、ジイソシアネート等
で架橋して耐酸性を付与したものに、さらにスペ
ーサーとして脂肪族または芳香族系などの官能基
を導入した多孔質キトサンに固定化したアミラー
ゼを澱粉液化液に作用させることを特徴とする澱
粉糖の製造法。 2 アミラーゼがグルコアミラーゼ、β−アミラ
ーゼおよびマルトオリゴ糖生成アミラーゼのいず
れかである特許請求の範囲第1項記載の方法。 3 澱粉がコーンスターチである特許請求の範囲
第1項または第2項記載の方法。 4 天然高分子キチンを脱アセチル化した後、ジ
カルボン酸、ジアルデヒド、ジイソシアネート等
で架橋して耐酸性を付与したものに、さらにスペ
ーサーとして脂肪族または芳香族系などの官能基
を導入した多孔質キトサンに固定化したアミラー
ゼを固定化枝切り酵素と共に澱粉液化液に作用さ
せることを特徴とする澱粉糖の製造法。 5 アミラーゼがグルコアミラーゼ、β−アミラ
ーゼおよびマルトオリゴ糖生成アミラーゼのいず
れかである特許請求の範囲第4項記載の方法。 6 澱粉がコーンスターチである特許請求の範囲
第4項または第5項記載の方法。 7 枝切り酵素がバチルス・アシドプルリテイカ
スまたはクレブシエラ・ニユーモニア起源のプル
ラナーゼもしくはシユードモナス・アミロデラモ
サまたはシトフアーガ属微生物起源のイソアミラ
ーゼである特許請求の範囲第4〜6項のいずれか
に記載の方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20004686A JPS6356297A (ja) | 1986-08-28 | 1986-08-28 | 澱粉糖の製造法 |
DE3788908T DE3788908T2 (de) | 1986-08-28 | 1987-08-19 | Verfahren zur Herstellung von Zuckern aus Stärke. |
EP87112006A EP0257535B1 (en) | 1986-08-28 | 1987-08-19 | Process for production of starch sugar |
US07/494,851 US5130243A (en) | 1986-08-28 | 1990-03-15 | Process for production of starch sugar |
Applications Claiming Priority (1)
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JPH0365759B2 true JPH0365759B2 (ja) | 1991-10-14 |
Family
ID=16417924
Family Applications (1)
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JP20004686A Granted JPS6356297A (ja) | 1986-08-28 | 1986-08-28 | 澱粉糖の製造法 |
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JP (1) | JPS6356297A (ja) |
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1986
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