[go: up one dir, main page]

JPH03503763A - Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors, Preparations and Methods of Use - Google Patents

Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors, Preparations and Methods of Use

Info

Publication number
JPH03503763A
JPH03503763A JP1504282A JP50428289A JPH03503763A JP H03503763 A JPH03503763 A JP H03503763A JP 1504282 A JP1504282 A JP 1504282A JP 50428289 A JP50428289 A JP 50428289A JP H03503763 A JPH03503763 A JP H03503763A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
factor
phe
cancer
lymphocytes
scm
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP1504282A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
サーセク・ボリス
サーセク・リー
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Individual
Original Assignee
Individual
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Individual filed Critical Individual
Publication of JPH03503763A publication Critical patent/JPH03503763A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/08Linear peptides containing only normal peptide links having 12 to 20 amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • C07K14/4701Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
    • C07K14/4745Cancer-associated SCM-recognition factor, CRISPP
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5091Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing the pathological state of an organism
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 °−一般的癌−関連SCM−認識因子。[Detailed description of the invention] °-Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors.

調製品及び使用方法 技術分野 この発明は、癌に関連(関係)した一般的なSOM−認識因子、該SCM−認識 因子を80M試験に使用する方法、癌細胞の画像診断方法、抗癌剤を癌細胞に指 向さす方法1等に関する。Preparation products and methods of use Technical field This invention relates to a general SOM-recognition factor related to cancer, the SCM-recognition factor Method of using factors in 80M test, method of image diagnosis of cancer cells, directing anticancer drugs to cancer cells Regarding the orientation method 1, etc.

背景技術 ヒト及び動物に発生する多くの病気は、特に血液中に存在する病気又は状態と特 別に関係する異質物質によって検出することができる。そのような病気の結果と して生成される抗原又は他のそのような物質の試験は、抗原や他の物質を生成し た特定の病気の早期検出および治療の診断手段として極めて有望である。かかる 物質の検出方法は、健康管理提供者に対して実際的な診断方法を構成するために 信頼性と再現性があると共に感度が良くなければならない。Background technology Many diseases that occur in humans and animals are particularly related to diseases or conditions present in the blood. It can be detected by separately related foreign substances. The consequences of such diseases and Testing of antigens or other such substances produced by It is extremely promising as a diagnostic tool for early detection and treatment of certain diseases. It takes Detection methods for substances are required to constitute a practical diagnostic method for health care providers. It must be reliable, reproducible, and sensitive.

かかる方法は1通常の技術を有し研究方法において訓練を受けている人々によっ て迅速かつ低コストで実施できなければならない。Such methods can be carried out by persons of ordinary skill and trained in research methods. must be able to be implemented quickly and at low cost.

例えば、一般に癌といわれるヒトおよび動物を苦しめる種々の悪性腫瘍の治療に おいて、特に大部分の治療方法は病気の比較的早期においてのみ有効であるから 早期の検出が有効な治療の鍵である。例えば、悪性腫瘍細胞に有毒である多くの 化学療法用薬剤は正常な細胞にも有毒であって、癌の治療或いはさらに進行した 場合の癌の進行阻止に必要な高投与は不快および深刻な副作用をもたらす。また 手術は殆んどの場合に、病気が広がる又は転移する前だけが有効である。極めて 沢山の癌の症例は、有効な治療には余りにも遅過ぎたことだけが報告されている 。For example, it is used to treat various malignant tumors that afflict humans and animals, commonly referred to as cancer. especially since most treatments are only effective in the relatively early stages of the disease. Early detection is the key to effective treatment. For example, many are toxic to malignant tumor cells. Chemotherapy drugs are also toxic to normal cells and may be used to treat cancer or further develop cancer. The high doses required to inhibit cancer progression in some cases lead to discomfort and serious side effects. Also Surgery is most often only effective before the disease spreads or metastasizes. extremely Many cancer cases are only reported too late for effective treatment. .

従って、初期段階で癌を診断できる信頼性のある試験の要求が極めて強い、そし てこのために極めて多くの研究がされてきた。これに関して、癌の診断を早期に するために新しい試験および方法が開発されている。Therefore, there is a strong need for reliable tests that can diagnose cancer at an early stage. A great deal of research has been done on this subject. In this regard, early diagnosis of cancer New tests and methods are being developed to

かかる試験の極めて望ましい特徴の1つは、使用する材料に依存して、全てのタ イプの癌を一般的に検出できるか又は特定のタイプの癌を検出できる能力である 。かかる試験の前者の用途は、ルーチンの健康診断で行われるように大きな患者 人口の集団スクリーニングにおいて極めて重要である。かかる集団スクリーニン グにおいて、特定のタイプの癌に依存する試験は文字通り数百種の癌があるから 望ましくない、そして1つまたは数種の病気のみを見つけることかできる試験は 多くの場合の癌を極めて見落しがちである。一般に、これらの患者は特定のタイ プの癌に容易に関係づけれない症状を示さないか。One of the highly desirable features of such tests is that, depending on the materials used, all tests The ability to detect type of cancer in general or to detect a specific type of cancer. . The former use of such tests is for large patient It is extremely important in population screening. Such mass screening In research, tests that depend on a specific type of cancer are difficult to test because there are literally hundreds of types of cancer. Tests that are undesirable and can only detect one or a few diseases are Many cases of cancer are extremely easy to overlook. Generally, these patients Does the patient have symptoms that cannot be easily linked to cancer?

又は不明瞭な全身症状を示すので、特定のタイプを疑うおよびそのタイプに特定 の試験を行う基準はない。or exhibit unclear systemic symptoms, so a specific type is suspected and identified. There are no standards for testing.

一方、悪性腫瘍の存在が一旦わかる又は強く疑われる場合には、特定のタイプの 悪性腫瘍を正確に決定できる試験を有することが望ましい。かかる試験は、化学 治療のような最も効果的な癌治療の多くは1種類の癌又はせいぜい悪性の場合だ けに有効であるから、有効な治療に著しく貢献する。従って潜在的な臨床効果を 有する。On the other hand, once the presence of a malignant tumor is known or strongly suspected, certain types of It is desirable to have a test that can accurately determine malignancy. Such tests Many of the most effective cancer treatments, such as therapy, are for one type of cancer or at most malignant cases. It contributes significantly to effective treatment. Therefore, the potential clinical effect have

この要求を満たすと共に、ヒトおよび動物の体の癌の診断および早期検出を改善 する研究において。Meeting this demand and improving the diagnosis and early detection of cancer in humans and animals In the research.

植物性血球凝集素又は癌−関連抗原にさらさねたときに生きたリンパ球の細胞形 質マトリックスの組織化度(Structuredness of the O ytohlasmic Matrjx(SCM) )における変化の測定を含む 試験方法が開発されている。この方法は次の刊行物に記載されている: L、0ercek、 B、0ercek、 and C,1,V、 Frank lin。Cell shape of lymphocytes that survive when exposed to phytohemagglutinin or cancer-associated antigens Structuredness of the quality matrix ytohlasmic Matrjx (SCM)) Test methods have been developed. This method is described in the following publications: L, 0ercek, B, 0ercek, and C, 1, V, Frank lin.

“Biophy*1cal  Differentiation Betwee n LympOCytesfrom Healthy Donors 、 Pa tients with MaligontDiseases and 0th er Disorders、 Br1t、 J、0ancer“Applica tion of the Phenomenon of Changes 1n the 5trueturedness of Cytoplasmic Ma trix(SCM)in the Diagnosis of Maligan t Disorders: a Review”。“Biophy*1cal Differentiation Between n LympOCytesfrom Healthy Donors, Pa patients with MaligontDiseases and 0th er Disorders, Br1t, J,0ancer“Applica tion of the Phenomenon of Changes 1n the 5 trueness of Cytoplasmic Ma trix (SCM) in the Diagnosis of Maligan t Disorders: a Review”.

この方法によって、潜在的にSCMに反応する1ノンパ球の細分割集団を被試験 患者の血液試料力)ら分離して、リン、<球を悪性腫瘍組織と装置する又は悪性 腫瘍組織を抽出する。その血液試料提供者カニ悪性腫瘍で苦しんでる場合には、 悪性腫瘍で苦しんでいない提供者からのリンノ(球のSCM反応と区別できる特 徴的なSCM反応がある。そのSCM反応は。By this method, a subdivided population of nonpaocytes potentially responsive to SCM was tested. A patient's blood sample is separated from the blood sample to identify malignant tumor tissue or malignant tissue. Extract tumor tissue. If the blood sample donor is suffering from crab malignancy, phosphoryl from a donor not suffering from malignancy (characteristics distinguishable from bulbar SCM reactions). There is a characteristic SCM reaction. What is the SCM reaction?

SCMに反応するリンノ(球の細胞間のフルオレセイン螢光偏光作用における変 化を測定することによって決定される。Changes in the intercellular fluorescein polarization action of phosphorus cells in response to SCM determined by measuring the

80M試験に見られる変化は、リンノ(球の内部構造の変化を反映すると考えら れる。これらの変イヒは。The changes seen in the 80M test are thought to reflect changes in the internal structure of the ball. It will be done. These oddities.

偏光を用いて細胞内に存在するフルオレセインを励起するとき、細胞の螢光偏光 作用における減少(低下)として表われる。螢光偏光は細胞間の岡11性の目安 であって、細胞間の移動度カニ大きい程、 Ill定される螢光偏光作用は小さ くなる。観察される螢光偏光ギーを生起するオルガネラ)の立体配座の変化から 生じるものと考えられる。ミトコンドリアの変化はミドコシドリアの膜のクリス テ(内膜のひだ)の収縮から生じると考えられる。SCMは高分子と、水の分子 、イオン、三リン酸アデノシン、および環状リン酸アデノシンのような小分子間 の相互作用の力を反映する。これら相互作用の摂動がSOMの変化をもたらす。When polarized light is used to excite fluorescein present in cells, the polarized light of the cell Expressed as a decrease (decrease) in action. Fluorescence polarization is a measure of intercellular oka11 Therefore, the greater the mobility between cells, the smaller the determined fluorescence polarization effect. It becomes. From changes in the conformation of the organelles that produce the observed fluorescence polarization This is considered to occur. Mitochondrial changes are due to changes in the membrane of midcosidria. It is thought to result from contraction of the te (intimal fold). SCM is a polymer and water molecules , between small molecules such as ions, adenosine triphosphates, and adenosine cyclic phosphates. reflects the power of interaction. Perturbations in these interactions result in changes in the SOM.

80M試験は比較的少量の悪性細胞に反応することができる。体重約70職のヒ トで約10細胞は80M試験においてリンパ球を悪性腫瘍の固有パタ−ンで十分 反応させる。マウスにおいて、 7.5xlOと少量のエールリッヒ腹水(腫瘍 )細胞が移植されると、80M試験における反応パターンが変わ#):癌に特異 の抗原に対する反応が誘導され、一方PHAに対する正常な反応は実質的に排除 される( L、 0ercek & B。The 80M test is capable of responding to relatively small amounts of malignant cells. He weighs about 70 yen. Approximately 10 cells in the 80M test are sufficient to detect lymphocytes in a malignant tumor-specific pattern. Make it react. In mice, 7.5xlO and a small amount of Ehrlich ascites (tumor ) When the cells are transplanted, the reaction pattern in the 80M test changes #): Specific to cancer responses to antigens are induced, while normal responses to PHA are virtually eliminated. (L, 0ercek & B.

0ercek、 ” Changes in SCM−Resporses o f Lymphocytesin Mice After Implantat ion with Ehrilich AscitesSCM試験は、血液試料 を採取することを除いて患者に比較的小さな不快感を与えるだけで従来の方法よ りも著しく早期に癌の検出をすることができる。0ercek, “Changes in SCM-Responses” f Lymphocytesin Mice After Implantat ion with Ehrlich AscitesSCM test, blood sample Compared to traditional methods, it causes relatively little discomfort to the patient except for the collection of It is also possible to detect cancer at an extremely early stage.

しかしながら、この方法には欠点がある。例えば。However, this method has drawbacks. for example.

癌組織、等から粗抽出物を調製したり、癌に関係した抗原の源として癌組織自体 を使用する必要がある。Prepare crude extracts from cancer tissues, etc., or use the cancer tissues themselves as sources of cancer-related antigens. need to be used.

80M試験にお^て癌組織又は該組織の抽出物の使用はいくつかの問題がある。There are several problems with the use of cancer tissue or extracts of cancer tissue in the 80M test.

必要な量の組織を得ることが困難な場合がある。全組織又は組織の粗抽出物の使 用は試験過程に妨害物質を導入する。これらの妨害物質は試験の感度に悪影響を 与えたり、試験結果自身に悪影響を与える。これらの妨害物質の存在又は非存在 は癌組織のバッチ毎に容易に変わジ。Obtaining the required amount of tissue may be difficult. Use of whole tissues or crude tissue extracts use introduces interfering substances into the testing process. These interfering substances adversely affect the sensitivity of the test. or adversely affect the test results themselves. Presence or absence of these interfering substances can easily vary from batch to batch of cancer tissue.

80M試験に有害な変動をもたらす。さらに、妨害物質は全組織又は粗抽出物に 存在するので、それらの同定又は定量は極めて困難である。80M results in deleterious variations in the test. Additionally, interfering substances may be present in whole tissues or crude extracts. Because of their existence, their identification or quantification is extremely difficult.

従って、SOMに反応するリンパ球によって反応を誘発する因子を同定1分離お よび精製することが極めて望ましい。かかる精製された因子の使用は、妨害物質 が存在しないからSOM癌スクリーニング試験を促進し、癌の研究を助けること になる。Therefore, we have identified factors that elicit responses by lymphocytes that respond to SOM. It is highly desirable to read and purify it. The use of such purified factors may result in interference To promote SOM cancer screening tests and aid cancer research since there is no become.

発明の開示 我々は、動物およびヒトの体液、さらに詳しくは血漿と尿にドナー(供与体)の 体が癌で苦しんでいる場合に、80M試験において癌に関係した抽出物および/ または癌組織に対するリンパ球の反応と同一のSCMに反応するリンパ球におけ る反応を与える癌認識因子を発見した。本願明細書において記載するように、そ れらの因子は単数形であって、「一般的な癌〜関連SCM−認識因子J、「sO M−認識因子」又は単にrscM因子jと呼ぶ。Disclosure of invention We use donor blood in animal and human body fluids, specifically plasma and urine. Cancer-related extracts and/or or in lymphocytes reacting to the same SCM as lymphocytes reacting to cancer tissue. We have discovered a cancer recognition factor that gives a response. As described herein, These factors are in the singular, ``Common Cancer-Related SCM-Recognition Factor J,'' sO M-recognition factor" or simply rscM factor j.

80M因子はペプチド又はペプチドに似た物質であって2.3の密接に関係した ペプチドからなると考えられる。80M因子は、配列Phe−R1−Lys−P ro−Phe −R1−Phe−Rs −Met−R4−R4−R4−Rt   (但しR1はAsnとGinからなる群から選び、R2おR1およびR番はそれ ぞれ独立にVa l、 Leu、およびIleからなる群から選び、R6とR7 はそれぞれ独立にAsnとGinからなる群から選ぶ〕を有する13個のアミノ 酸フラグメント(断片)を含むと考えられる。Factor 80M is a peptide or peptide-like substance that is closely related to 2.3. It is thought to consist of peptides. The 80M factor has the sequence Phe-R1-Lys-P ro-Phe -R1-Phe-Rs -Met-R4-R4-R4-Rt (However, R1 is selected from the group consisting of Asn and Gin, and R2, R1 and R number are selected from the group consisting of Asn and Gin. R6 and R7 are each independently selected from the group consisting of Va l, Leu, and Ile. are independently selected from the group consisting of Asn and Gin]. It is thought to contain acid fragments.

この配列は80M因子のアミノ酸末端を含まない。This sequence does not include the amino acid terminus of factor 80M.

一般的な癌−関連SOM−認識因子は1本質的に公称1000ダルトンの分子量 カットオフのフィルターを通過し公称500ダルトンの分子量カットオフのフィ ルターで保持される低分子量のペプチドがらなジ、そして該ペプチドは標準の8 0M試験においてリンパ球を刺激するために使用したとき癌患者から単離された SOM−反応リンパ球の細胞間螢光偏光作用において少なくとも10%の減少を 与える。A common cancer-associated SOM-recognition factor is one with a nominal molecular weight of 1000 daltons. Passed through a filter with a nominal molecular weight cutoff of 500 daltons. A low molecular weight peptide retained in the filter, and the peptide is a standard 8 isolated from cancer patients when used to stimulate lymphocytes in the 0M study At least a 10% decrease in intercellular fluorescence polarization of SOM-reactive lymphocytes. give.

以下の記載するその方法によって精製された因子はほぼ次のアミノ酸組戊を有す る: (Asx1.Glxx。The factor purified by the method described below has approximately the following amino acid composition: : (Asx1.Glxx.

8er、His、GlyssThrsArg、Alam、Tyr、Met、Va lx。8er, His, GlyssThrsArg, Alam, Tyr, Met, Va lx.

Phem 、 II e、Leua * Lysm )。Phem, IIe, Leua*Lysm).

80M因子のトリプシン断片のアミノ酸配列に基づいて、該因子の1つの調製品 内の16個のアミノ酸セグメントは、アミノ酸配列Ph e −As n −L y s −Pr。Based on the amino acid sequence of the tryptic fragment of factor 80M, one preparation of the factor The 16 amino acid segment within has the amino acid sequence Phe-Asn-L y s -Pr.

−Phe−Val−Phe−Leu−Met−11e−Asp−Gin−Asn  −Phe−8er−Lysを有する。そしてそのセグメントは因子のアミノ酸 末端を含まない。-Phe-Val-Phe-Leu-Met-11e-Asp-Gin-Asn -Phe-8er-Lys. And that segment is the factor amino acid Does not include the end.

また、80M因子の別の標品内の14個のアミノ酸セグメントは、アミノ酸配列 Phe Asn−Lys −Pro−Phe−Val −Phe−Leu−Me t−11e−Asp−Gln −Asn−Thr−Lys ’に有する。そして そのセグメントも因子のアミノ酸末端を含まない。Additionally, a 14 amino acid segment within another preparation of factor 80M has an amino acid sequence of Phe Asn-Lys-Pro-Phe-Val-Phe-Leu-Me t-11e-Asp-Gln-Asn-Thr-Lys'. and That segment also does not include the amino acid terminus of the factor.

これら2つのトリプシン断片は共に80M試験において完全に活性である。2つ の継片に共通である最初の13個のアミノ酸はSOM−活性の生起に最も重要で ある。従って1本発明の重要な別の面は定義された配列のペプチドのみからなる 80M因子であり、それらのペプチドは80M活性を有するものとして直接水さ れているか又はかかる活性を有すると考えられる。最も広範囲には、かかる因子 は本質的に次の配列を含む少なくとも13個のアミノ酸残基全有するペプチドの みからなる: P h e −R4−L y s −Pr o−Phe −Rq  −Phe −FLs −Me t −R4−R4−R4−R−r  (但し% R1はAanとGlnからなる群から選び、R8、R,およびR番はそれぞれ独 立にva’ * Leu mおよびIleからなる群から選び、RIIはAsp とGluからなる群から選び、R6およびR,Fはそれぞれ独立にAsnとGl nからなる群から選ぶ〕。この因子は本質的に1つのペプチドを含むことが望ま しい。Both of these two tryptic fragments are fully active in the 80M test. two The first 13 amino acids, which are common to all passages, are the most important for the generation of SOM-activity. be. Therefore, another important aspect of the present invention is that the peptides consist only of peptides of defined sequences. 80M factor, and these peptides can be directly added to water as having 80M activity. or may be considered to have such activity. Most broadly, such factors is a peptide having all at least 13 amino acid residues containing essentially the following sequence: Consisting of: Ph e -R4-Lys -Pr o-Phe -Rq -Phe -FLs -Me t -R4-R4-R4-R-r (However, % R1 is selected from the group consisting of Aan and Gln, and R8, R, and R numbers are each independently selected. va'*Leu m and Ile, and RII is Asp. and Glu, and R6, R, and F are independently selected from the group consisting of Asn and Glu. Select from the group consisting of n]. It is desired that this factor essentially contains one peptide. Yes.

2つのトリプシン断片からの完全配列情報を利用するとき、それは各々が上記定 義の13個のアミノ酸断片を含む2つの異なる平行なりラスの80M因子のもと である。When utilizing the complete sequence information from two tryptic fragments, it is assumed that each The origin of the 80M factor of two different parallel sequences containing the 13 amino acid fragments of It is.

第1のクラスは最も広くは1本質的にPhe−Rt−Lys−Pro−Phe  −R4−Phe−Ra −Me t−R4−Rs −FLs −RnR,B−L ysの配列〔但し、R1〜R?は前に定義したもの、RaはSer とThrか らなる群から選ぶ〕を少なくとも15個のアミノ酸残基を有するペプチドのみか らなる。この因子は本質的に1つのペプチドのみからなることが望ましい。The first class is most broadly 1 essentially Phe-Rt-Lys-Pro-Phe -R4-Phe-Ra -Me t-R4-Rs -FLs -RnR,BL Array of ys [However, R1 to R? is defined before, Ra is Ser and Thr [selected from the group consisting of] only peptides having at least 15 amino acid residues] It will be. Preferably, this factor consists essentially of only one peptide.

このクラスの中でさらに狭く定義された因子は、本質的にPhe−Asn−Ly s−Pro−Phe −Va I−Phe −LeuMet−11e−Asp− Gin−Asn−Thr−Lysの配列を含むペプチドのみからなる。これらの ペプチドは特定配列のいずれかの側にさらにフランキング配列を含みうる。この 因子は本質的に1つのペプチドのみを含むことが望ましい。More narrowly defined factors within this class are essentially Phe-Asn-Ly s-Pro-Phe-Va I-Phe-LeuMet-11e-Asp- It consists only of peptides containing the sequence Gin-Asn-Thr-Lys. these The peptide may further include flanking sequences on either side of the specified sequence. this Desirably, the agent comprises essentially only one peptide.

このクラスの中で最も狭く定義された因子は、本質的にPhe−Asn−Lys −Pro−Phe −Va I−Phe−Leu−Met−11e−Asp−G lu−Asn−Thr−Lysからなる本質的に純粋なペプチドからなる。The most narrowly defined factors in this class are essentially Phe-Asn-Lys -Pro-Phe -Va I-Phe-Leu-Met-11e-Asp-G It consists of an essentially pure peptide consisting of lu-Asn-Thr-Lys.

第2のクラスは1本質的に最も広範囲にはPhe −Rs −Lys−Pro− Phe−R1−Phe−R1−Me t−L −R4−R4−k −Phe−R s −Lys C但し、Rt〜R,lは前に定義したもの、R8はSerとTh rからなる群から選ぶ〕の配列を含む少なくとも16個のアミノ酸残基含有する ペプチドのみからなる。この因子は本質的に1つのペプチドのみを含むことが望 ましい。The second class is 1 essentially the most widespread including Phe-Rs-Lys-Pro- Phe-R1-Phe-R1-Me t-L -R4-R4-k -Phe-R s - Lys C However, Rt ~ R, l are defined previously, R8 is Ser and Th at least 16 amino acid residues comprising the sequence selected from the group consisting of Consists only of peptides. It is desired that this factor essentially contains only one peptide. Delicious.

このクラスの中でさらに狭く定義された因子は本質的K Phe−Asn−Ly s−Pro−Phe −Va I−Phe−Leu−Met−11e−Asp  Gin−Aiu−Phe−Thr−Lysの配列を含むペプチドのみからなる。A more narrowly defined factor within this class is the essential K Phe-Asn-Ly s-Pro-Phe-Va I-Phe-Leu-Met-11e-Asp It consists only of peptides containing the sequence Gin-Aiu-Phe-Thr-Lys.

こねらのペプチドは特定配列のいすね5かの側ICさらにフランキング配列を含 みうる。この因子は本質的に1つのペプチドのみからなることが望ましい。Konera's peptide contains a specific sequence of ICs on both sides and flanking sequences. I can see it. Preferably, this factor consists essentially of only one peptide.

このクラスの中で最も狭く定義された因子は本質的K Phe−Asn−Lys −Pro−Phe −Va l−Phe−Leu−Met−11e−Asp−G in−Asn−Phe−Thr−Lys のアミノ酸からなる本質的に純粋なペ プチドからなる。このペプチドは、癌で苦しんでいるドナーからのSOM−反応 リンパ球を刺激するために使用したときペプチドの5×10 フェムトグラム( fP)が少なくとも30チの偏光値の減少を与えるような80M試験における活 性を有することか望ましい。The most narrowly defined factor in this class is the essential K Phe-Asn-Lys -Pro-Phe -Va l-Phe-Leu-Met-11e-Asp-G Essentially pure compound consisting of amino acids in-Asn-Phe-Thr-Lys Consists of petite. This peptide is a SOM-reactive protein from a donor suffering from cancer. 5 x 10 femtograms of peptide when used to stimulate lymphocytes ( activity in the 80M test such that fP) gives a decrease in polarization value of at least 30 degrees. It is desirable to have sex.

80M因子は、1000ダルトン以下の見掛は分子量を有する分子からなる$2 の両分から1000ダルトン以上の見掛は分子量を有する分子からなる体液の第 1の画分を分離するために癌で苦しんでいるドナーからの体液を限外f遇するこ とによって生成することができる。その体液は末梢血液、尿および血漿からなる 群から選ぶ。限外濾過後、その因子は各段階がさらに高精製された因子をもたら す数段階からなる精製工程をさらに受ける。The 80M factor consists of molecules with an apparent molecular weight of less than 1000 Daltons. body fluid consisting of molecules with an apparent molecular weight of 1000 Daltons or more from both sides of the body. External treatment of body fluid from a donor suffering from cancer to isolate fractions of It can be generated by Its body fluids consist of peripheral blood, urine and plasma Choose from the group. After ultrafiltration, the factor is purified with each step resulting in a more highly purified factor. It is further subjected to a purification process consisting of several steps.

この精製工程の第1段階は、θ〜約700ダルトンの分画範囲を有し限外濾過体 から塩類を分離することができるゲル濾過カラムからの溶離からなる、因子はク ロマトグラフ床全容積の約0.3〜0.5倍で溶離する。The first step in this purification process is to use an ultrafilter with a fractionation range of θ to about 700 daltons. The factor consists of elution from a gel filtration column that can separate salts from Elutes at about 0.3 to 0.5 times the total romatograph bed volume.

第2の段Ivは約1500〜30,000り/’トンノ分画範囲を有するゲル濾 過カラムがらの溶離がらなジ、因子はクロマトグラフ床全容積の約0.4〜0. 6で該カラムから溶離する。The second stage Iv is a gel filter with a fractionation range of approximately 1500 to 30,000 l/'. The elution factor of the overcolumn is approximately 0.4-0.0% of the total chromatographic bed volume. Elute from the column at 6.

この精製プロセスの次の段階は、約0.28 M〜0、31 Mの重炭酸アンモ ニウムでジメチルアミンエチル・セルロースの陰イオン交換カラムからの溶離か らなる。The next step in this purification process is about 0.28M to 0.31M ammonia bicarbonate. Elution from an anion exchange column of dimethylamine ethyl cellulose with It will be.

最終段階は、逆相高圧液体クロマトグラフィーによって因子を実質的に均一に精 製することからなる。The final step is to refine the factors to substantial homogeneity by reverse-phase high-pressure liquid chromatography. It consists of manufacturing.

80M試験においては因子のさらに高精製調製品を使用することが望ましいけれ ども、初限外P液を含む精製の全ての段階からの因子を試験に使用することがで きる。It may be desirable to use a more highly purified preparation of the factor in the 80M test. However, factors from all stages of purification, including the initial extra-P solution, can be used in the test. Wear.

80M因子は、80M因子を単離するドナーに存在する癌の種類に関係なく1種 々の異なるタイプの悪性腫瘍を有するドナーから得た潜在的にSCMに反応する リンパ球に陽性反応を与える。従って用語「一般的」が付く。因子は悪性腫瘍を 含まないドナーから誘導さね、たりンバ球に8CM反応を少ししか又は全く反応 しない。一般の癌関連抗原として作用する能力は因子を悪性腫瘍の存在に対して 血液試料の一般的スクリーニングに有用にさせる。80M factor is one type regardless of the type of cancer present in the donor from which the 80M factor is isolated. Potentially responsive to SCM obtained from donors with different types of malignancies Gives a positive reaction to lymphocytes. Hence the term "general". The factor is malignant tumor Little or no 8CM reaction was induced in the Rinba spheres when derived from non-containing donors. do not. The ability to act as a general cancer-associated antigen makes the factor sensitive to the presence of malignant tumors. Makes it useful for general screening of blood samples.

その因子は他の興味ある性質も有する。これらの性質の1つは、悪性腫瘍のない ドナーから得たリンパ球と因子が接触したときにSCMに反応するリンパ球のS CM反応を改良する性質であって、それによってリンパ球は80M試験において 癌に関係した抗原に反応するが、接触後マイトジェン(分裂促進因子)に反応し ない。第2の性質は、潜在的にSOMよって測定した際ヒトの骨髄細胞の線に5 62方向へ少なくとも90チ下げる性質である。The factor also has other interesting properties. One of these properties is the absence of malignancy S of lymphocytes that react to SCM when the factor comes into contact with lymphocytes obtained from a donor. properties that improve the CM response, whereby lymphocytes It reacts with cancer-related antigens, but does not react with mitogens (mitogens) after contact. do not have. A second property is that the line of human bone marrow cells potentially It has the property of lowering at least 90 inches in the 62 direction.

本発明の別の面は、一般的な癌に関係した80M因子を80M試験に用いる方法 に関する。最も一般的に、この方法は、(1)哺乳類のドナーのリンパ球と一般 的な癌に関係したSOM−認識因子とを接触させ:そして(2)リンパ球の懸濁 液を接触させる工程から得たリンパ球の細胞形質マトリックスの組織化度の減少 を決定することによって哺乳類ドナーからのリンパ球を試験して悪性腫瘍の存在 又は非存在を決定することからなる。Another aspect of the invention is a method of using 80M factors associated with common cancers in the 80M test. Regarding. Most commonly, this method involves (1) lymphocytes from a mammalian donor and general (2) Suspension of lymphocytes. Reduced degree of organization of the cytoplasmic matrix of lymphocytes obtained from the fluid contacting process Testing lymphocytes from mammalian donors by determining the presence of malignancy or non-existence.

組織化度の減少を定量する望ましい方法はil) 一般的な癌関連SOM−認識 因子と接触されたリンパ球の一定分量について螢光偏光Psを測定する工程:( 2)接触されなかった対照リンパ球の一定分量について螢光偏光Pcを測定する 工程:および(31P s/ PcO比を決定する工程からなる。約0.9以下 のPs/Pc比は80M因子に対する陽性反応およびリンパ球のドナーに悪性腫 瘍が存在することを示す。A preferred method to quantify the decrease in degree of organization is il) General cancer-related SOM-recognition Measuring the fluorescence polarization Ps on an aliquot of lymphocytes contacted with the factor: ( 2) Measure fluorescence polarization Pc on an aliquot of control lymphocytes that were not contacted. Step: and (31P     Contains the step of determining PcO ratio. Approximately 0.9 or less The Ps/Pc ratio indicates a positive response to factor 80M and a malignant tumor in the lymphocyte donor. Indicates the presence of a tumor.

さらに望ましい方法は、Psと、マイトジェンと接触されたリンパ球の別の一定 分量の螢光偏光PMとを比較してSOM反応比RR3CM k決定することであ る: RRscM=P S/PM 約0.9以下の几Rはリンパ球のドナーに悪性鷹CM 瘍が存在することを示す。A further preferred method is to use Ps and another constant of lymphocytes contacted with the mitogen. The SOM reaction ratio RR3CM is determined by comparing the amount of fluorescent polarized light PM. : RRscM=P S/PM A R of about 0.9 or less indicates malignant CM in the lymphocyte donor. Indicates the presence of a tumor.

これとは別に、80M試験において30M因子を用いる方法は、(1)血液試料 から潜在的にSCMに反応するリンパ球を分離する工程:(2)分離されたリン パ球に一般的な癌−関連SOM−認識因子を接触させることによりリンパ球を刺 激させる工程:(3)刺激されたリンパ球に、螢光発生化合物に対して細胞内加 水分解性の非螢光発生化合物として定義される螢光発生剤前駆物質を接触させて 、リンパ球を細胞内酵素加水分解のために螢光発生化合物に浸透させることによ って刺激さね、た螢光含有リンパ球を生成する工程:(4)刺激された螢光含有 リンパ球を偏光で励起さすことによってそれらに螢光を発生させる工程;(5) 螢光を発生するリンパ球からの偏光された螢光発光を鉛直方向および水平方向に 測定して螢光を発生するリンパ球の偏光値を決定する工程:および(6)刺激さ れた螢光を含有するリンパ球の決定された偏光値と、同一ドナー分量の対照リン パ球の偏光値とを比較することによって、リンパ球のドナーの体に癌が存在する か否かを示す工程からなる。工程(3)と(4)は同時に行うことができる。Apart from this, methods of using the 30M factor in the 80M test include (1) blood sample Step of separating lymphocytes potentially reactive to SCM from: (2) isolated lymphocytes; Stimulate lymphocytes by contacting lymphocytes with common cancer-associated SOM-recognition factors. Stimulating step: (3) The stimulated lymphocytes undergo intracellular addition to the fluorogenic compound. contacting a fluorogen precursor, defined as a water-degradable, non-fluorescent compound; , by infiltrating lymphocytes with fluorogenic compounds for intracellular enzymatic hydrolysis. Step of producing stimulated fluorescent-containing lymphocytes: (4) Stimulated fluorescent-containing lymphocytes (5) Exciting lymphocytes with polarized light to cause them to fluoresce; Polarized fluorescent light emitted from fluorescent lymphocytes in vertical and horizontal directions (6) determining the polarization value of the lymphocytes that generate fluorescence by measuring; and (6) Determined polarization values of lymphocytes containing fluorescent light and control phosphorus of the same donor volume. The presence of cancer in the lymphocyte donor's body can be determined by comparing the polarization value of the lymphocytes with the lymphocyte polarization value. It consists of a process of indicating whether or not. Steps (3) and (4) can be performed simultaneously.

リンパ球は鉛直方向に偏光した光で励起することができる。鉛直偏光を用いると きの偏光値は次の関係に従って螢光分光光度計で測定される:但し、Jvおよび IHはそれぞれ鉛直面および水平面における偏光された螢光の強さである:Gは 分光光度計の光学系を通る偏光の水平および鉛直成分の不等透過に対する補正係 数である。Lymphocytes can be excited with vertically polarized light. Using vertical polarization The polarization value of IH is the intensity of polarized fluorescence in the vertical and horizontal planes, respectively: G is Correction factor for the unequal transmission of horizontal and vertical components of polarized light through the optics of a spectrophotometer It is a number.

本発明は癌で苦しんでいる被験者を同定する診断法を提供するのみならず、該被 験者の治療法も包含する。これらの方法は、一般的な癌−関連SOM−認識因子 が癌細胞へのリンパ球の試験内自発毒性を低下させる性質を有するという観察に 基づいている。The present invention not only provides a diagnostic method for identifying subjects suffering from cancer, but also It also includes the patient's treatment method. These methods utilize common cancer-associated SOM-recognition factors. The observation that the in vitro cytotoxicity of lymphocytes towards cancer cells Based on.

かかる観察に基づいて、SOM−認識因子の生体内活性の低下は癌細胞に対する リンパ球による免疫学で監視の効率を高める筈である。Based on these observations, a decrease in the in vivo activity of SOM-recognition factors may be associated with cancer cells. Immunology with lymphocytes should increase the efficiency of surveillance.

最も一般的に、この治療は体液の少なくとも1つが一般的な癌−関連SOM−認 識因子を含む患者に対してである。その治療は、 (1) s OM−認識因子 を含有する体液を処理してそれを選択的に不活性化することにより因子の生体内 作用を低下させる工程:(2)その体液を患者に戻して癌に対する患者の抵抗を 高める工程からなる。Most commonly, this treatment involves at least one of the body fluids being diagnosed with common cancer-related SOM. This is for patients who include certain factors. The treatment is (1) s OM-recognition factor In vivo release of the factor by treating body fluids containing it to selectively inactivate it. Step of reducing the effect: (2) Returning the body fluid to the patient to reduce the patient's resistance to the cancer. It consists of a process of increasing.

この一般的な寸法の一つの用途におりで1体液は末梢血液であり1体液を処理す る工程は、その末梢血液を透析して1000ダルトン以下の見掛は分子量のペプ チドを除去し、それによってSCM−認識因子を選択的に不活性させることから なる。One use of this general size is to treat one body fluid, one body fluid is peripheral blood, and one body fluid is peripheral blood. The process involves dialyzing the peripheral blood to obtain peptides with an apparent molecular weight of less than 1000 Daltons. by removing the tide and thereby selectively inactivating the SCM-recognition factor. Become.

この一般的な方法の別の用途における体液処理工種は1体液中のSCM−認識因 子を因子に特有の抗体又は該抗体のFabフラグメントで中和することかなる。Another application of this general method for body fluid processing techniques is to identify SCM-recognized agents in body fluids. This consists in neutralizing the antibodies with antibodies specific for the factor or with Fab fragments of said antibodies.

そのFabフラグメントはSCM−認識因子と一価の結合をすることができる。The Fab fragment is capable of monovalent binding to the SCM-recognition factor.

さらに1本発明は癌細胞をイメージング(画像診断)する方法も包含する。この 方法は(1)一般的な癌関連SOM−認識因子に対する抗体をイメージング物質 で標識化する工程:および(2)その標識化抗体を利用して癌細胞を画像診断す る工程からなる。Furthermore, the present invention also includes a method of imaging (image diagnosis) cancer cells. this The method is (1) using an antibody against a common cancer-related SOM-recognition factor as an imaging substance. and (2) image diagnosis of cancer cells using the labeled antibody. The process consists of

本発明はさらに、(1)一般的な癌関連SOM−認識因子に対する抗体を抗癌物 質で標識化することによって抗癌物質を癌細胞に向け:(2)標準化抗体が患者 の癌細胞に結合できるように標識化抗体を癌患者に投与することからなる。抗癌 物質を癌細胞に向ける方法を包含する。The present invention further provides (1) using antibodies against common cancer-related SOM-recognition factors as anti-cancer drugs. Targeting anti-cancer substances to cancer cells by labeling them with The method consists of administering to a cancer patient a labeled antibody that is capable of binding to cancer cells. anti cancer Includes methods of directing substances to cancer cells.

さらに本発明は、免疫検定法において一般的な癌−関連SCM−認識因子に対す る抗体を使用して体液中の一般的な癌−関連SOM−認識因子の水準を決定する 方法を包含する。免疫検定法は放射線免疫検定法、螢光免疫検定法、酵素−結合 免疫吸着検定法、又は比濁分析検定法のような沈殿免疫検定法にすることができ る。Furthermore, the present invention provides a method for detecting common cancer-associated SCM-recognizing factors in immunoassays. Determining levels of common cancer-associated SOM-recognition factors in body fluids using antibodies Includes methods. Immunoassay methods include radioimmunoassay, fluorescence immunoassay, and enzyme-linked immunoassay. It can be an immunosorbent assay or a precipitation immunoassay, such as a turbidimetric assay. Ru.

本発明のこれらおよび他の特徴1面および利点は以下の説明および請求の範囲か らさらに良く理解できるであろう。These and other features and advantages of the invention will be found in the following description and claims. You will be able to understand it even better.

次の議論、実施例および請求の範囲において反復使用されている多数の用語の定 義を便宜上収集する。Definition of a number of terms used repeatedly in the following discussion, examples, and claims. Collect information for convenience.

「一般的な」とは1本発明の30M因子が精製される体液のドナー、または80 M試験において80M因子と共に使用されるリンパ球のドナーを苦しめている癌 の特定のタイプに関して非特定的であるということを意味する。"General" refers to 1 the donor of the body fluid from which the 30M factor of the invention is purified, or the 80M factor of the present invention. Cancer afflicting the donor of the lymphocytes used with factor 80M in the M trial means that it is non-specific with respect to a particular type of

り上げられて加水分解によって細胞内で螢光発生化合物に転化される非螢光発生 化合物を意味し1本明細書で使用されている例は二酢酸フルオレセイン(FDA )である。Non-fluorogenic compounds that are raised and converted into fluorogenic compounds within the cell by hydrolysis An example of the compound used herein is fluorescein diacetate (FDA ).

「標準80M試験J :6X10細胞/−で1.01のリンパ球懸濁液と、0. 1−のマイトジェン又は抗原と、螢光発生剤前駆物質としてのFDA″に使用し 。“Standard 80M Test J: 6X10 cells/- with 1.01 lymphocyte suspension and 0. 1- mitogen or antigen and FDA'' as a fluorogen precursor. .

螢光偏光測定用に470nmの励起波長および510nmの発光波長を使用する 80M試験。Use an excitation wavelength of 470 nm and an emission wavelength of 510 nm for fluorescence polarization measurements. 80M test.

これらの用語は共に、大きさに従った限外r過による分子の分離が80M因子の 大きさの範囲における分子に近似し、立体配座並びに大きさに依存するこ見掛は 分子量をもった分子から分離することができる。Both of these terms mean that the separation of molecules by ultrafiltration according to size is by a factor of 80M. Approximate molecules in a range of sizes and depend on conformation and size. It can be separated from molecules with molecular weight.

80M活性を示し、かつ全てのタンパク質および大きなペプチドを含む特異の生 物学的活性をもった圧倒的多数の他の分子が存在していないような純粋な状態の 物質。A unique product that exhibits 80M activity and contains all proteins and large peptides. a pure state in which the vast majority of other molecules with physical activity are not present material.

リシン又はアルギニン残基の後のペプチド連鎖を切断するタンパク質加水分解酵 素の作用によって大きなペプチドから切断されたペプチド。A proteolytic enzyme that cleaves the peptide chain after a lysine or arginine residue A peptide that has been cleaved from a larger peptide by the action of an element.

発明全実施するための最良の形態 本発明は、一般的な癌−関連scM−認識因子であるペプチドの発見および該ペ プチドを実質的均一に精製することに関する。該因子は1000ダルトンの公称 分子量カットオフをもったフィルターを通過するが、500ダルトンの公称分子 量カットオフをもったフィルターによって保持される。該因子は。Best mode for carrying out the entire invention The present invention relates to the discovery of peptides that are common cancer-associated scM-recognition factors and The present invention relates to purifying peptides to substantially uniformity. The factor is 1000 Daltons nominal Passes through a filter with a molecular weight cutoff, but with a nominal molecular weight of 500 daltons. is retained by a filter with a quantity cutoff. The factor is.

(Asx1.Gig、Ser、His、Glyg、Thr、Arg。(Asx1.Gig, Ser, His, Glyg, Thr, Arg.

Alas、Tyr、Met、ValB%Phes 、Ile%Leu@。Alas, Tyr, Met, ValB%Phes, Ile%Leu@.

LysI)の近似的なアミノ酸組成を有する。2つの活性トリプシン断片は因子 の別の標品がら単離されている。これら断片は初因子分子のアミノ酸末端を含ま ない。これら断片の第1はPhe−Asn−Lys−Pro−Phe −Va  I −Phe−Leu −Me t−I 1e−Asp−Gln−Asn−Th r−Lysの配列をもった15個のアミノ酸を有する。こね、ら断片の第2はP he−Asn−Lys−Pro −Phe−Val−Phe−Leu−Met− 11e−Asp−Gin−Asn −Phe−8e r−Lysの配列をもった 16個のアミノ酸を有する。LysI) has an approximate amino acid composition. The two active tryptic fragments are factor It has been isolated from another specimen. These fragments contain the amino acid terminus of the first factor molecule. do not have. The first of these fragments is Phe-Asn-Lys-Pro-Phe-Va I-Phe-Leu-Met-I1e-Asp-Gln-Asn-Th It has 15 amino acids with the sequence r-Lys. Kone, the second of the fragments is P he-Asn-Lys-Pro -Phe-Val-Phe-Leu-Met- Has the sequence 11e-Asp-Gin-Asn-Phe-8e r-Lys It has 16 amino acids.

因子の性質は、悪性腫瘍をもたないドナーのリンパ球のSCM反応全修飾し、該 リンパ球の悪性腫瘍細胞への試験管内細胞毒性を減少させる能力、並びにドナー から単離した因子の多くの異なるタイプの癌との交差反応を含むものが以下に記 載される。The nature of the factor is that it completely modifies the SCM response of donor lymphocytes without malignant tumors and Ability to reduce in vitro cytotoxicity of lymphocytes to malignant tumor cells as well as donor Some of the cross-reactivity of factors isolated from cancer with many different types of cancer are listed below. It will be posted.

80M因子の性質 乳癌の患者の血漿から精製した一般的な癌−関連SOM−認識因子のアミノ酸組 成を決定した。それらの結果を第1表に示す。RP−)IPLCによって精製し た因子の凍結乾燥試料を窒素雰囲気下密閉ガラス・アンプル中で6NのHO4中 2%グリコール酸で110℃において24時間加水分解させた。Properties of 80M factor Amino acid set of common cancer-associated SOM-recognition factors purified from plasma of breast cancer patients decided to become The results are shown in Table 1. RP-) purified by IPLC Freeze-dried samples of the factors were dissolved in 6N HO4 in sealed glass ampoules under a nitrogen atmosphere. Hydrolyzed with 2% glycolic acid at 110°C for 24 hours.

加水分解後、試料を凍結乾燥した。残留分は0.04Mのホウ酸ナトリウム緩衝 液中2%のドデシル硫酸ナトリウムで溶解させた。アミノ酸は1次の刊行物に記 載されているHPLOによって分離後それらの螢光によりO−フタルジアルデヒ ド誘導体として決定した: B、N、Jones、 S、Paabo and  S、5lein、”Am1n。After hydrolysis, the samples were lyophilized. Residue is 0.04M sodium borate buffer It was dissolved with 2% sodium dodecyl sulfate in the solution. Amino acids are listed in the primary publication. After separation by HPLO, O-phthaldialdehyde is detected by their fluorescence. Determined as a derivative: B, N. Jones, S., Paabo and S,5lein,”Am1n.

Ac1d Analysis and Enzymatic 5equence  Determinationof Peptjdes by an Impr oved 54−PhathaldialdehydePrecolumn L abeling Procedure、 ” J、Liquid Ohroma t。Ac1d Analysis and Enzymatic 5equence Determination of Peptide by an Impr oved 54-PhthaldialdehydePrecolumn L abeling Procedure, “J, Liquid Ohroma t.

Analysis by HPLC”、 Altex Division、 B eckmanInstruments、 Inc、、 Berkeley、 C a1ifornia 94710゜第1表 S0M因子の相対モルのアミノ酸組戊 アミノ酸         相対モル組設As x               2.10Glx              3.20Set               1.27His              O,65Gl)1              4.60Thr              1. 11Arg                 0.86Ala               z60Tyr              O,94Met               1.58Val              3.2 2Phe              3.0711e               O,86Leu              2.87アミノ酸組成は窒 素雰囲気下密封ガラス・アンプル中で6NのHot中2%チオグリコール酸で乾 燥したペプチドを加水分解後決定した。加水分解後、試料を1¥結乾燥し、残留 分を0.04 Mのホウ酸ナトリウム中2%のSDS緩衝液で溶解させた。アミ ノ酸は、前記ベックマン・インスッルメンツ社の仕様ジアルデヒド誘導体として 決定した。アミノ酸のCysおよびProは決定しなかった。Analysis by HPLC”, Altex Division, B eckman Instruments, Inc., Berkeley, C. a1ifornia 94710゜Table 1 Relative molar amino acid composition of S0M factor Amino acid Relative molar assembly As x 2.10Glx 3.20Set 1.27His 0,65Gl)1 4.60Thr 1. 11Arg 0.86Ala       z60Tyr             1.58 Val 3.2 2Phe 3.0711e O, 86 Leu 2.87 Amino acid composition is nitrogen Dry with 2% thioglycolic acid in 6N hot in a sealed glass ampoule under an elementary atmosphere. The dried peptides were determined after hydrolysis. After hydrolysis, the sample was dried for 1 yen and the remaining 2% SDS buffer in 0.04 M sodium borate. Ami No acids are used as dialdehyde derivatives according to Beckman Instruments specifications. Decided. Amino acids Cys and Pro were not determined.

第1表のアミノ酸組成データは活性因子がペプチドであることを示す。そのデー タは近似のアミノ酸部g (Asg、Glxm、Ser、His、Glg、Th r、Arg。The amino acid composition data in Table 1 indicates that the active agent is a peptide. that day ta is the approximate amino acid part g (Asg, Glxm, Ser, His, Glg, Th r, Arg.

AIam、Tyr、Metl、Valm、Phea、 Ile、Leum、Ly sm)をもったペプチドと最もよく一致した。AIam, Tyr, Metl, Valm, Phea, Ile, Leum, Ly The best match was with the peptide with sm).

80M因子の異なる2つの試料から単離されたセグメントのアミノ酸配列は、オ ンライン120APTH−アミノ酸分析装置と結合したタンパク質配列決定装置 (App目ed Biosystem 477人型)を使用して自動エドマン分 解法を行なうことによって決定した。2.3の種類の癌1例えば乳癌、肺癌、大 腸癌。The amino acid sequences of segments isolated from two different samples of factor 80M are In-line 120APTH - Protein Sequencing Device Combined with Amino Acid Analyzer Automatic Edman minutes using (App ed Biosystem 477 human type) It was determined by solving the problem. 2.3 types of cancer 1 such as breast cancer, lung cancer, large Intestinal cancer.

気管支癌又は頚癌の患者から単離したSOM因子全体をエドマン分解法にかけた とき1反応は起きず。Whole SOM factors isolated from patients with bronchial cancer or cervical cancer were subjected to Edman degradation method. Time 1: No reaction occurred.

80M因子のアミノ酸末端が遮断されていることがわかった。従って、分子のセ グメントの配列を決めるためには、遊離アミノ酸末端のアミノ酸をもったフラグ メントを得る必要があった。かかるフラグメントは、トリプトシンの消化、続い て以下の実施例で詳述するように逆相高圧液体クロマトグラフィーによるトリプ トシン・フラグメントの精製によって因子の別の精製試料から得た。これらフラ グメントの1つは肺癌患者の血漿からの因子試料から、そして他は乳癌患者の血 漿から得た。It was found that the amino acid terminus of factor 80M was blocked. Therefore, the molecule's To determine the sequence of a fragment, a flag with the amino acid at the free amino acid end must be used. I needed to get some ment. Such fragments are prepared by trypsin digestion followed by triplication by reversed-phase high-pressure liquid chromatography as detailed in the Examples below. The factor was obtained from another purified sample by purification of the tocin fragment. These hula one from factor samples from the plasma of lung cancer patients, and the other from blood from breast cancer patients. Obtained from serum.

それぞれの場合の特定フラグメント(後で80M活性を有することが示された) は、約30μtの全体積において相Aの30.4体積チ、相Bの69.6体積チ で溶離した。配列決定のために、SCM−活性トリプトシンの7ラグメントは配 列決定装置のディスク上に直接点在させ、エドマン分解法、続いて生成したPT H−アミノ酸を結合されたオンラインのPTH−アミノ酸分析装蓋において同定 する逐次サイクルによってコンピュータ管理自動配列決定分析を行なった。Specific fragments in each case (later shown to have 80M activity) is 30.4 volume chips of phase A and 69.6 volume chips of phase B in a total volume of about 30 μt. It was eluted with For sequencing, the seven fragments of SCM-active tryptosin were The generated PTs were directly interspersed on the disk of the column determiner, followed by the Edman decomposition method. Identification of H-amino acids in a coupled online PTH-amino acid analysis instrument Computer-managed automated sequencing analysis was performed by sequential cycles of

配列決定装置の配列呼出しコンピュータプログラムは肺癌患者の血漿から単離し た80M因子の7ラグメントの配列として16個のアミノ酸配列を同定した。そ の配列はPhe −Asn−Lys−Pro−f’he−Va I−Phe − Leu−Me t−Asp−Gl n−Asn−Phe−8e r−Lysであ った。同様に、コンピュータプログラムは乳癌患者の血漿から単離した因子のフ ラグメントの配列として15個のアミノ酸の配列を同定した。その配列はPhe −Asn−Lys−Pro−Phe −Va 1−Phe−Leu −Me t −I 1 e−Asp −Gln−Asn−Thr−Lysであった。The sequencer's sequence calling computer program was isolated from the plasma of lung cancer patients. We identified 16 amino acid sequences as the sequences of 7 fragments of factor 80M. So The sequence is Phe-Asn-Lys-Pro-f'he-VaI-Phe- Leu-Me t-Asp-Gl n-Asn-Phe-8e r-Lys It was. Similarly, a computer program generates a sample of factors isolated from the plasma of breast cancer patients. A 15 amino acid sequence was identified as the fragment sequence. The sequence is Phe -Asn-Lys-Pro-Phe -Va 1-Phe-Leu -Met -I1e-Asp-Gln-Asn-Thr-Lys.

これら2つのトリプトシン・フラグメントにおける最初の13個のアミノ酸は同 一である。それらのカルボキシ末端は異なるけれども、1つの欠落のアミノ酸P heを短い方のフラグメントに挿入すると。The first 13 amino acids in these two trypsin fragments are identical. It is one. Although their carboxy termini differ, one missing amino acid P If we insert he into the shorter fragment.

唯一の差はSetに対するThrの置換となり、極めて保存性の置換はペプチド の機能に影響を与えないよ精製された80M因子は、数種の異なる悪性腫瘍をも った患者から単離したリンパ球に対する刺激剤として使用したとIJSCM試験 において完全に活性である。この活性は因子の精製中食ての点での検定法によっ て示すことができる。その検定法の結果の詳細は以下の実施例に示す。最高の活 性は最終精製工程の逆相高圧液体クロマトグラフィーで得られる。The only difference is the substitution of Thr for Set, a highly conservative substitution in the peptide 80M factor, which has been purified so as not to affect the function of The IJSCM study showed that it was used as a stimulant for lymphocytes isolated from patients with fully active in This activity was determined by the assay method used during the purification of the factor. It can be shown as follows. Details of the results of the assay are shown in the Examples below. best life The quality is obtained in the final purification step, reversed-phase high-pressure liquid chromatography.

ペプチド40μMのタンパク質含有を有する乙の画分1/10 mは、癌患者か ら単離したSOM−反応リンパ球の刺激に使用したとき細胞内螢光偏光を44, 6チ程減少させるが、健康なドナーから単離したリンパ球の同−細画分を刺激し たとき細胞内螢光偏光作用は減少しなかった。Fraction 1/10m of O containing 40 μM of peptide was determined from cancer patients. When used to stimulate SOM-reactive lymphocytes isolated from 6 cells, but stimulated the same subfraction of lymphocytes isolated from healthy donors. The intracellular fluorescence polarization effect was not reduced.

性 乳癌患者の血漿から単離した80M因子から切断した15個のアミノ酸トリプト シン・ヘプチド・フラグメント(乳房フラグメント)と、i癌患者の血漿から単 離した80M因子から切断した16個のアミノ酸トリプトシン・ペプチド・フラ グメント(肺フラグメント)ハ共に80M試験において完全(”ffxわち、5 X10  P、又は約16,000分子)は。sex 15 amino acid trypto cleaved from factor 80M isolated from plasma of breast cancer patients Synheptide fragments (breast fragments) and i 16 amino acids tryptosine peptide fluorinated from isolated factor 80M Both lung fragments were completely tested in the 80M test. X10 P, or about 16,000 molecules).

80M試験において癌患者のリンパ球に対する刺激剤として使用したとき完全活 性を示した。肺フラグメントは肺癌および乳癌の患者からのリンパ球で等しくよ く反応したが、正常なドナーからのリンパ球の刺激に使用したとき80M試験に おいて反応しなかった。In the 80M study, it showed complete activity when used as a stimulant for lymphocytes in cancer patients. showed his sexuality. Lung fragments are equally well represented in lymphocytes from lung and breast cancer patients. 80M test when used to stimulate lymphocytes from normal donors. I didn't react.

肺フラグメントおよび乳房フラグメントは共に80M試験において完全に活性で あってそれらの配列の最初の13個のアミノ酸のみを共有するから。Both lung and breast fragments were fully active in the 80M test. Because they share only the first 13 amino acids of their sequences.

この13個のアミノ酸の共通配列は80M活性の発生において最も重要な配列で ある。従って、「コア」と呼ぶこれら13個のアミノ酸だけの配列、 Phe  −Asn−Lys−Pro−Phe −Va l−Phe−Leu−Met−1 1e−Asp−Gin−Asnは80M活性を有すると考えられる。This common sequence of 13 amino acids is the most important sequence in the generation of 80M activity. be. Therefore, the sequence of only these 13 amino acids, called "core", Phe -Asn-Lys-Pro-Phe -Va l-Phe-Leu-Met-1 1e-Asp-Gin-Asn is believed to have 80M activity.

この配列は80M活性を有すると考えられる13個のアミノ酸の唯一の配列では ない。あるアミノ酸の置換、「保存性」と呼ぶアミノ酸の置換はペプチドの立体 配座又は機能を変えることなくペプチドにおいてしばしば行われることはタンパ ク質およびぺブチドの化学のよく確立されている原理である。コアの配列におけ るそのようなアミノ酸に影響を与える変化a、Val  に対するIleとLe uおよびその逆。This sequence is the only sequence of 13 amino acids thought to have 80M activity. do not have. Certain amino acid substitutions, called “conservative” amino acid substitutions, are What is often done in peptides without changing conformation or function is It is a well-established principle of protein and peptide chemistry. In the array of cores Changes affecting such amino acids a, Ile and Le for Val u and vice versa.

Gluに対するAspおよびその逆、およびGinに対するAsnおよびその逆 を含む。従って、前記保存性アミノ酸置換のいずれか又は全てが行われるコア構 造を有する変ったペプチド分子が80M活性を示すと考えられ、従って本発明の 一部と考えられる。Asp to Glu and vice versa and Asn to Gin and vice versa including. Therefore, the core structure in which any or all of the above conservative amino acid substitutions are made It is believed that an unusual peptide molecule with a structure exhibits 80M activity and therefore It is considered to be a part of it.

肺および乳房フラグメントは共により大きい一般的な癌−関連80M−認識分子 の部分として単離される。かかるフラグメントは、よシ大きな分子に組み込″1 nたときにそれらの80M活性を保持できることは明白である。従って、上記の 保存性アミノ酸置換を有する又は有さない13個のアミノ酸コア配列を組み込む 大きなペプチドも80M活性を示すことが期待さね、る。Lung and Breast Fragments are Both Larger Common Cancer-Related 80M-Recognition Molecules isolated as part of Such fragments can be incorporated into larger molecules''1 It is clear that their 80M activity can be retained when n. Therefore, the above Incorporates a 13 amino acid core sequence with or without conservative amino acid substitutions It is expected that large peptides will also exhibit 80M activity.

コア配列のこれら2つのタイプの修飾の発生は本発明のさらに別の重要な面を与 える。これは定義された配列のペプチドのみからなるSCM=活性因子であシ、 それらのペプチドは80M活性を有することが直接水されているか、又は該活性 を有すると考えられる。かかる因子は最も広くは、実質的にPhe−R1−Ly s−Pro−Phe−R4−Phe−R1−Met−几4−Rs −R6−R?  (但し%RIはAsnとGlnからなる群から選び、R1,R,およびR4は それぞれ独立にVa1%LeuおよびIleからなる群から選び、RうはAsp 、とGluからなる群から選び、R6とR?はそれぞれ独立にAsnとGluか らなる群から選ぶ〕の配列を含む少なくとも13個のアミノ酸残基を有するペプ チドのみからなる。この因子は実質的に該ペプチド1つのみを含むことが望まし い。The occurrence of these two types of modifications of the core sequence provides yet another important aspect of the invention. I can do it. This is an SCM consisting of only peptides with a defined sequence = active factor; Those peptides have been directly hydrated to have 80M activity or It is thought that it has. Such factors most broadly include substantially Phe-R1-Ly s-Pro-Phe-R4-Phe-R1-Met-几4-Rs-R6-R? (However, %RI is selected from the group consisting of Asn and Gln, and R1, R, and R4 are Each independently selected from the group consisting of Va1%Leu and Ile, and R is Asp. , and Glu, R6 and R? are Asn and Glu independently? a peptide having at least 13 amino acid residues comprising the sequence selected from the group consisting of Consists only of chido. Preferably, this factor contains substantially only one of the peptides. stomach.

肺および乳房フラグメントからの完全配列情報が利用されるとき、それは2つの 異なる平行なりラスの80M因子を生じる。そして各々はコア配列またはコア配 列から保存性置換によって誘導された配列を含む。これらの長いペプチドは、そ れぞれ保存性アミノ酸置換に対してさらに1つの可能性、すなわちSerの代シ のThrおよびその逆を有する。これらアミノ酸の等価は、肺フラグメントがS etであるが。When complete sequence information from lung and breast fragments is utilized, it is This results in an 80M factor of different parallel laths. and each Contains sequences derived from the sequence by conservative substitutions. These long peptides One further possibility for each conservative amino acid substitution, namely the replacement of Ser. of Thr and vice versa. The equivalent of these amino acids is that the lung fragment is S Although it is et.

乳房フラグメントがThrを有することによって示される。これらアミノ酸のそ れぞれの7ラグメントにおける位置は肺フラグメンFの位置14のPheを削除 することによって整列することができる。The breast fragment is indicated by having Thr. These amino acids The position in each of the 7 fragments is the deletion of Phe at position 14 of lung fragment F. You can align them by doing this.

こね、ら因子の第1のクラスは乳房フラグメントの配列、Phe−Asn−Ly s−Pro−Phe −Va 1−Phe−Leu−Met−11e−Asp− Gin−Asn−Thr−Lysから誘導される。このクラスに最も広くは、実 質的にPhe −R1−Lys−Pro−Phe−凡1−P h e −FLs  −Me t −R4−R11−R4−R,7−R6−Lysの配列を含む少な くとも15個のアミノ酸残基を有するペプチドのみからなる。この配列に、おい て、Rs〜Rフは前に定義したものそしてコア配列において可能なアミノ酸の置 換をもたらす、R8はSerとThrからなる群から選ぶ。この因子は実質的に 1つのペプチドのを含むことが望ましこの第1のクラスの中でさらに明確に限定 された因子は、実質的にPhe−Asn−Lys−Pro−Phe −Va I Phe−Leu−Met−11e−Asp−Gin−Asn−Thr−Lysの 配列を含むペプチドのみからなる。これは乳房フラグメントの元の配列である。The first class of factors is the sequence of the breast fragment, Phe-Asn-Ly. s-Pro-Phe-Va 1-Phe-Leu-Met-11e-Asp- Derived from Gin-Asn-Thr-Lys. This class most commonly includes Qualitatively Phe -R1-Lys-Pro-Phe-1-Ph e -FLs -Me t -R4-R11-R4-R, 7-R6-Lys containing sequence It consists only of peptides having at least 15 amino acid residues. In this array, , Rs to R are defined above and possible amino acid placements in the core sequence. R8 is selected from the group consisting of Ser and Thr. This factor is essentially Within this first class, it is desirable to include one peptide and to further specifically limit the The factor is substantially Phe-Asn-Lys-Pro-Phe-VaI Phe-Leu-Met-11e-Asp-Gin-Asn-Thr-Lys Consists only of peptides containing the sequence. This is the original sequence of the breast fragment.

これらのペプチドは特定の配列のいずれかの側にさらにフランキング配列を含む ことができる。そしてこれらのフランキング配列は中空の長さのものにできる。These peptides contain additional flanking sequences on either side of the specific sequence be able to. These flanking sequences can then be of hollow length.

この因子も実質的に1つだけのペプチドを含むことが望ましい。Desirably, this factor also contains substantially only one peptide.

この第1のクラス内で最も狭く限定された因子は。The most narrowly defined factor within this first class is.

本質的にPRe−Aan−Lys−Pro−Phe −Va l −Phe − Leu−Me t−I Ie−Asp−Gl n−Asn−Thr−Lysのア ミノ酸配列からなる実質的に純粋なペプチドからなる。これはフランキング配列 をもたない乳房フラグメントの正確な配列である。Essentially PRe-Aan-Lys-Pro-Phe-Val-Phe- Leu-Me t-I Ie-Asp-Gl n-Asn-Thr-Lys Consists of substantially pure peptides consisting of amino acid sequences. This is flanking array This is the exact sequence of the breast fragment that does not have .

これら因子の第2のクラスは、肺フラグメントの配列、Phe−Asn−Lys −Pro−Phe −Va l−Phe−LeuMe t−I Ie−Asp− Gl n−Asn−Phe−8e r−Lysから誘導される。このクラスは最 も広は実質的に、 Phe −R4−Lys−Pro−Phe−R1−Phe− Rs −Me t R4−Rs −Rs−Rtr −Phe−Rg −Ly s の配列を含む少なくとも16個のアミノ酸残基を有するペプチドのみからなる。The second class of these factors is the sequence of lung fragments, Phe-Asn-Lys -Pro-Phe -Va -Phe-LeuMe -I Ie-Asp- It is derived from Gln-Asn-Phe-8er-Lys. This class is the Mohiro is essentially Phe-R4-Lys-Pro-Phe-R1-Phe- Rs-Met R4-Rs-Rs-Rtr-Phe-Rg-Lys It consists only of peptides having at least 16 amino acid residues containing the sequence.

この配列において、Rs〜R−rは前に定義したもの、そしてコア配列における 可能なアミノ酸置換をもたらす、R8はSerとThrからなる群から選ぶ。こ の因子は実質的[1つだけのペプチドを含むことが望ましい。In this sequence, Rs~R-r are defined previously, and in the core sequence R8 is selected from the group consisting of Ser and Thr, resulting in a possible amino acid substitution. child The factor contains substantially [preferably, only one peptide].

この第2のクラスの中でさらに明確に限定された因子は、実質的にPhe−As n−Lys−Pro−Phe −Va 1−Phe−Leu−Met−11e− Asp−Gln−Asn−Phe−8er−Ly sの配列を含むペプチドのみ からなる。これらのペプチドは特定の配列のいずれかの側にさらに7ランキング 配列を含むことができる。そしてこれらのフランキング配列は中間の長さのもの にできる。More specifically defined agents within this second class are substantially Phe-As n-Lys-Pro-Phe-Va 1-Phe-Leu-Met-11e- Only peptides containing the sequence Asp-Gln-Asn-Phe-8er-Ly s Consisting of These peptides rank an additional 7 on either side of a particular sequence. Can contain arrays. and these flanking sequences are of intermediate length Can be done.

この因子も実質的IC1つだけのペプチドを含むことが望ましい。Preferably, this factor also contains a peptide with only one substantial IC.

この第2のクラス内で最も狭く限定された因子は。The most narrowly defined factors within this second class are:

本質的にPhe−Asr+−Lys−Pro−Phe −Va 1−Phe − Leu−Met−11e−Asp−Gin−Asn−Phe−8er−Lysの アミノ酸配列からなる実質的に純粋なペプチドからなる。これはフランキング配 列をもたない肺フラグメントの正確な配列である。Essentially Phe-Asr+-Lys-Pro-Phe-Va 1-Phe- Leu-Met-11e-Asp-Gin-Asn-Phe-8er-Lys Consists of a substantially pure peptide consisting of an amino acid sequence. This is the flanking arrangement. Accurate arrangement of lung fragments without columns.

これらの因子は全<80M活性を有することが期待され、る、そして本発明の範 囲内にある。These factors are expected to have a total activity of <80M and are within the scope of the present invention. It is within the surrounding area.

5、8 CM因子の交差反応性 全ての種類の癌をもったドナーからそれぞれ単離されたリンパ球が80M試験に おいて因子に反応するので、その因子は一般的な癌−関連80M因子と定義され る。リンパ球のドナーを侵す癌の種類は。5, 8 Cross-reactivity of CM factors Lymphocytes isolated from donors with all types of cancer were tested in the 80M study. The factor is defined as a common cancer-related 80M factor. Ru. What type of cancer affects the lymphocyte donor?

80M因子が精製される体液のドナーを侵す癌の種類と同一である必要はない。It is not necessary that the type of cancer affecting the donor of the body fluid from which Factor 80M is purified is the same.

以下に検討するように。As discussed below.

異なる19種類の癌患者から得た血漿からの因子の精製は常に逆相高圧液体クロ マトグラフィーにおける同じ位置で溶離する因子をもたらした。これは同−分子 又は橿めて似た分子がこれら患者の全てから単離されたことを示唆する。実際に 、肺癌および乳癌の患者の血漿から単離した80M因子からのトリプシン・フラ グメントのアミノ酸配列はフラグメントの最初の13個のアミノ酸か同一である ことを示している。2つの配列の唯一の相違は、肺フラグメントの位置14にあ るフェルアラニン残基の欠失および次の位置におけるセリンに対するスレオニン の保存性置換である。80M因子の交差反応性の立証についての詳細は以下の「 実施例」に示す。Purification of factors from plasma obtained from patients with 19 different types of cancer was always performed using reverse-phase high-pressure liquid chromatography. This resulted in factors eluting at the same position in the chromatography. This is the same molecule Alternatively, this suggests that similar molecules were isolated from all of these patients. actually , Trypsin Fluorase from factor 80M isolated from plasma of lung and breast cancer patients. The amino acid sequence of the fragment is identical to the first 13 amino acids of the fragment. It is shown that. The only difference between the two sequences is at position 14 of the lung fragment. Deletion of a feralanine residue and threonine for serine at the next position This is a conservative substitution. For more information on demonstrating the cross-reactivity of Factor 80M, see below. Examples.

6、一般的な癌−関連80M因子によるSCM反応の修飾 −ff的な癌−関連80M因子は、癌のないドナーから得た潜在的にSCMに反 応するリンパ球をその因子と接触させるとそれらリンパ球の反応を修飾できる性 質を有する。接触の前に、それらのリンパ球は80M試験においてマイトジェン のみに反応して、癌に関連した抗原に反応しない。しかしながら。6. Modification of SCM response by common cancer-associated 80M factors -ff-like cancer-associated 80M factor is potentially anti-SCM obtained from cancer-free donors. The ability to modify the response of corresponding lymphocytes by bringing them into contact with the factor. have quality. Prior to contact, the lymphocytes were mitogen-treated in the 80M test. It reacts only with cancer-related antigens and does not react with cancer-related antigens. however.

80M因子との長期間の接触後、細胞のSCM反応は修飾されて癌に関連した抗 原のみに反応し、マイトゲンに反応しない。換言すると、80M因子とかかるリ ンパ球による接触は、80M試験におけるそれらの反応を悪性腫瘍のないドナー からのリンパ球の正常な反応から癌に侵されたドナーからのリンパ球で見られる 反応に変える。癌のないドナーからのリンパ球のSCM反応の修飾の立証は以下 の「実施例」で詳述する。After long-term contact with factor 80M, the SCM response of cells is modified to produce cancer-related anti-inflammatory agents. It reacts only with atomic agents and does not react with mitogens. In other words, the 80M factor and the Contact with lymphocytes may reduce their response in the 80M test to malignancy-free donors. seen in lymphocytes from cancer-affected donors from the normal reaction of lymphocytes from Turn it into a reaction. Demonstration of modification of the SCM response of lymphocytes from cancer-free donors is as follows. This will be explained in detail in the "Example" section.

80M因子は、潜在的にSCMに反応するリンパ球の試験管内の自然細胞毒性を 著しく下げる性質がつる。この性質に基づいて、一般的な癌−関連ScM認識因 子分子はキラーリンパ球の攻撃に対して癌細胞の防御に参加して、癌細胞の無制 限成長を助けると考えられる。癌細胞の成長抑制における免疫系の正常な機能の 重要性は、免疫抑制を受けている患者に癌の異常な形がしばしば発生することに よって示される。この重要な例は、後天性免疫不全症候群(AIDS)に苦しむ 患者において普通はむしろゆつくシ広がる癌であるカボシ(Kaposi’s) 肉腫の攻撃的形態の発生である。Factor 80M potentially inhibits the in vitro innate cytotoxicity of lymphocytes that respond to SCM. The property of significantly lowering the vine. Based on this property, a common cancer-associated ScM recognition factor The molecular molecules participate in the defense of cancer cells against the attack of killer lymphocytes, causing cancer cells to become uncontrollable. It is thought to help limit growth. The normal function of the immune system in suppressing the growth of cancer cells The importance lies in the fact that abnormal forms of cancer often occur in patients receiving immunosuppression. Therefore, it is shown. An important example of this is suffering from acquired immunodeficiency syndrome (AIDS). Kaposi's is a cancer that usually spreads rather slowly in patients. It is the occurrence of an aggressive form of sarcoma.

一般的な癌−関連80M因子は健康なドナーからのリンパ球のSOM反応を修飾 して、骨髄細胞へのキラーリンパ球の自然細胞毒性を下げるから、因子を選択的 に不活性にさせ、続いてSOM−認識因子を含有する体液を患者に戻すことによ って、SCM−認識因子を含有する体液を処理してその因子の生体内作用を低下 させることは、病気に対する自然抵抗を増すために癌の管理に使用できると考え られる。Common cancer-associated factor 80M modifies the SOM response of lymphocytes from healthy donors selectively reduces the natural cytotoxicity of killer lymphocytes to bone marrow cells. by inactivating the SOM-recognizing factor and subsequently returning the body fluid containing the SOM-recognizing factor to the patient. Therefore, body fluids containing SCM-recognized factors can be treated to reduce the in vivo effects of the factors. thought to be able to be used in cancer management to increase natural resistance to disease. It will be done.

体液力;末梢血液の場合、体液の処理工程は末梢血液を透析して1000ダルト ン以下の見掛は分子量のペプチドを除去することからなる。これとは別に。Body fluid power: In the case of peripheral blood, the body fluid treatment process involves dialysis of peripheral blood for 1000 Daltons. The appearance of the following steps consists of removing molecular weight peptides. Aside from this.

体液の処理工程は因子をそれに特定の抗体、又は該抗体のフラグメント、例えば Fab (抗体結合性)フラグメントで中和することからなる。該Fabフラグ メントは、各フラグメント分子が因子の1つの分子だけを結合するように一価の 結合ができる。これは。The process of processing the body fluids may be carried out in such a way that the agent is isolated from antibodies specific for it, or fragments of said antibodies, e.g. It consists of neutralization with Fab (antibody-binding) fragments. The Fab flag The ment is monovalent so that each fragment molecule binds only one molecule of the factor. Can be combined. this is.

大きな因子−抗体複合体の形成が望ましくない場合には、用途によって完全な抗 体の使用が望ましい。If the formation of large factor-antibody complexes is undesirable, complete anti-antibody Use of the body is preferred.

この一般的な癌−関連SOM癌認識因子の使用は以下に詳述する。The use of this general cancer-associated SOM cancer recognition factor is detailed below.

80M因子の精製における第1の工程は癌に侵されたドナーの体液から限外f液 を得ることである。The first step in the purification of factor 80M is to extract ultra-f fluid from the body fluids of cancer-affected donors. It is to obtain.

体液は末梢血液、血漿又は尿にすることができる、その体液が末梢血液の場合、 その血液は遠心分離によって血漿から赤血球を分離しなければならない。The body fluid can be peripheral blood, plasma or urine; if the body fluid is peripheral blood, The blood must be centrifuged to separate red blood cells from plasma.

80M因子の単離に使用される体液のドナーは80M試験に使用されるリンパ球 に関して同−又は異種にすることができる。The donor of the body fluid used for isolation of factor 80M is the lymphocyte used in the 80M test. They can be the same or different with respect to each other.

限外−過去は、1000ダルトン以上の見掛は分子量を有する分子からなる体液 の第1の画分を1000ダルトン以下の見掛は分子量を有する分子からなる第2 の画分から分離する。本発明の一般的な癌−関連80M因子は限外P液の第2の 画分に見られる。Limit - In the past, body fluids consisting of molecules with an apparent molecular weight of 1000 daltons or more The first fraction is divided into a second fraction consisting of molecules having an apparent molecular weight of less than 1000 Daltons. Separate from the fraction. The general cancer-related 80M factor of the present invention is the second component of the ultra-P fluid. Found in fractions.

用語「見掛は分子量」および「公称分子量カットオフ」は、限外濾過がこの分子 量の範囲で分子量に従って分子を分離する方法としては若干不正確な方法であり 、1000ダルトンの公称分子量カットオフのフィルターによって除去される正 確な分子量は分子の立体配座に若干依存するので1本願明細書において用いてい る。実際の分子量において1000ダルトンより大きい分子は1例えば分子が比 較的長くて狭い場合には1000ダルトンの公称分子量カットオフのフィルター を通過することができる。The terms "apparent molecular weight" and "nominal molecular weight cutoff" mean that ultrafiltration It is a somewhat imprecise method for separating molecules according to their molecular weight within a range of quantities. , positive removed by a filter with a nominal molecular weight cutoff of 1000 daltons. The exact molecular weight depends somewhat on the conformation of the molecule, so it is not used in this specification. Ru. Molecules larger than 1000 daltons in actual molecular weight are 1 e.g. Filters with a nominal molecular weight cutoff of 1000 daltons for relatively long and narrow cases can pass through.

第1の画分から第2の画分の分離は公称1000ダルトンの分子量カットオフの 限外フィルターを介して体液を濾過することによって行うことが望ましい。The separation of the second fraction from the first fraction is performed at a nominal molecular weight cutoff of 1000 Daltons. Preferably, this is done by filtering the body fluid through an ultrafilter.

限外f液段階又はそれ以後における該因子の調製品の純度はその比活性によって 記載することができる。本願明細書における用語「比活性」は、特定の画分を8 0M試験におけるSOMに反応するリンパ球の刺激に使用するとき細胞内の螢光 偏光値を特定の減少度1例えば20%を与えるのに必要なタンパク質の量の逆数 として定義される。80M因子の精製目的は粗P液に見られる比活性以上に80 M因子の比活性を高めることである。従って、精製プロセスは精製された画分の 比活性の決定工程が後に続く。The purity of the preparation of the factor at the ultraf liquid stage or beyond depends on its specific activity. can be described. As used herein, the term "specific activity" refers to a specific fraction of 8 Intracellular fluorescence when used to stimulate lymphocytes that respond to SOM in the 0M test The reciprocal of the amount of protein required to reduce the polarization value to a certain degree, e.g. 20%. is defined as The purpose of purifying factor 80M is to increase the specific activity of factor 80 to more than the specific activity found in crude P solution. The goal is to increase the specific activity of factor M. Therefore, the purification process A step of determining specific activity follows.

ここに報告された実施例におけるタンパク質の濃度は望ましくは220nmの波 長において紫外線吸光度によって近似的に決定されるだけであシ、かつ因子の線 量−反応曲線は末だ決まっていないから、比活性に関してここに記載された80 M因子の各種精製工程のキャラクタリゼーションは近似的のみである。しかしな がら、タンパク質濃度は因子が種々の精製工程を通して移動すると著しく減少す るが。The concentration of protein in the examples reported herein is preferably at 220 nm. is determined only approximately by the ultraviolet absorbance at the length, and the factor line Since the dose-response curve is not finalized, the 80% concentration described here in terms of specific activity The characterization of the various purification steps for Factor M is only approximate. However However, protein concentration decreases significantly as the factor moves through various purification steps. Ruga.

活性は比較的影響されず、それによって80M因子の比活性の増大をもたらすこ とは明白である。にもかかわらず、1oooダルトンの公称分子量カットオフの 膜を介した限外濾過が生物流体から全てのタンパク質および大きなペプチドを含 む特定の生物活性をもった分子の圧倒的多数を除去する限り、そのf液は実質的 に純粋の一般的な癌関連SOM−認識因子から本質的になると記載することがで きる。activity is relatively unaffected, thereby leading to an increase in the specific activity of factor 80M. It is obvious. Despite the nominal molecular weight cutoff of 1ooo daltons, Ultrafiltration through membranes removes all proteins and large peptides from biological fluids. As long as it removes the vast majority of specific biologically active molecules, the f-fluid is essentially can be described as consisting essentially of pure common cancer-associated SOM-recognition factors. Wear.

一般的な癌−関連80M因子の精製における次の段階は、脱塩工程であって限外 濾過から得られた第2の画分が塩類を分離できるクロマトグラフのカラムに負荷 される。カラムに負荷された物質は次に蒸留水でカラムから溶離される。そして クロマトグラフの床体積の約0.3〜0.5倍の間の溶離体積で溶離する部分( 80M因子を含む)を収集する。この工程に使用するカラムは、O〜約700ダ ルトンの分画範囲をもったゲル濾過カラム、例えば商品名5ephadex G −10である。The next step in the purification of common cancer-associated factor 80M is a desalting step and an ultraviolet The second fraction obtained from the filtration is loaded onto a chromatographic column that can separate salts. be done. The material loaded onto the column is then eluted from the column with distilled water. and The fraction that elutes with an elution volume of between about 0.3 and 0.5 times the chromatographic bed volume ( 80M factor). The column used in this step has a range of 0 to about 700 da Gel filtration column with a fractionation range of Luton, such as the product name 5ephadex G -10.

精製工程の次の段階は大きさに従って再び分離する別のゲイ過工程である。脱塩 工程から得られたSOM−含有状料は、約1500〜30.000ダルトンの分 画範囲をもった別のゲル濾過カラム、例えば商品名5ephadex G−50 に負荷される。そのカラムに負荷された物質は次にアンモニウム塩の弱い水溶液 で溶離される。アンモニウム塩は重炭酸アンそニウム、好適には50mMの重炭 酸アンモニウムが望ましい。クロマトグラフの全床体積の約0.4〜0.6倍の 範囲内の溶離体積で溶離する部分が80M因子を含み、収集される。The next step in the purification process is another sieving step that separates again according to size. Desalination The SOM-containing material obtained from the process has a content of approximately 1500 to 30,000 Daltons. Another gel filtration column with a coverage area, such as 5ephadex G-50 is loaded. The material loaded onto the column is then treated with a weak aqueous solution of ammonium salts. eluted at The ammonium salt is amthonium bicarbonate, preferably 50mM bicarbonate. Ammonium acid is preferred. Approximately 0.4 to 0.6 times the total bed volume of the chromatograph The fraction that elutes within the range of elution volumes contains the 80M factor and is collected.

精製の次の段階は、電荷によって分離する陰イオン−交換クロマトグラフィ一工 程である。前のゲル濾過工程からの80M因子含有材料を陰イオン交換カラム( 望ましくは、ジエチルアミンエチル・セルロース(DEARセルロース))上に 負荷fる。カラムに負荷さね、た物質は次にアンモニウム塩の濃度を増してカラ ムから溶離される。そのアンモニウム塩は重炭酸アンモニウムが望ましく、アン モニウム塩の増加濃度は10mM〜1.0 Mの重炭酸アンモニウムである。約 0.28〜0.31 Mの重炭酸アンモニウムでカラムから溶離する画分は80 M因子を含み、収集される。The next step in purification is anion-exchange chromatography, which separates by charge. That's about it. The 80M factor-containing material from the previous gel filtration step was transferred to an anion exchange column ( Preferably, on diethylamine ethyl cellulose (DEAR cellulose) Load f. The material loaded onto the column is then colored with increasing concentrations of ammonium salts. eluted from the system. The ammonium salt is preferably ammonium bicarbonate; The increasing concentration of monium salt is 10 mM to 1.0 M ammonium bicarbonate. about The fraction eluting from the column with 0.28-0.31 M ammonium bicarbonate is 80 Contains M factors and is collected.

精製の最終段階は逆相高圧液体クロマトグラフ(FLP−HPLO)であって、 それは電荷および/または疎水性によって分離する。典型的に、 DEAE−セ ルロースカラム溶出液からの80M因子含有材料は寸法が220 m X Z  101のRP−HPLC!カラム(商品名Aquapore RP−300)   に負荷される。次に溶離は2つの溶媒を組み合せで行い、最初に70チ水性ア セトニトリル中0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸(TFA)90体積チと0 .09体積チのTFAIO体積チで体積−てそのアセトニトリルを含有する溶液 の高濃度勾配をつけて行う。全ての出発材料からの80M因子は、水性70%ア セトニトリル中0.1体積チの水性TFAの26体積チおよび0.09体積チの 水性TFAの74体積チの溶媒組成において均一ピークとして溶離する、これと は別に、FLP−HPLOはペックマンの商名名Ultrasphere OD Sなる逆相高圧液体クロマトグラフィー・カラムで行うことができる。このカラ ムの場合、溶離は若干具なる溶媒の組合せで行われ、最初に水性70%アセトニ トリル中0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸の70体積チと0.1体積チ水性 トリフルオロ酢酸の30体積チ、続いてそのアセトニトリルを含有する溶媒の高 濃度勾配によって行う。80M因子はこのカラムおよびこの溶構系を用いる場合 常に、水性70%アセトニトリル中0.1%水性トリフルオロ酢酸の43.7体 積チおよび0.1水性トリフルオロ酢酸の56.3体積チの溶媒組成において均 一ピークとして溶離する。The final stage of purification is reverse phase high pressure liquid chromatography (FLP-HPLO), It separates by charge and/or hydrophobicity. Typically, DEAE-Se The 80M factor-containing material from the lurose column eluate has dimensions of 220 m x z. 101 RP-HPLC! Column (product name Aquapore RP-300) is loaded on. Elution was then carried out using a combination of two solvents, starting with 70% aqueous 90 volumes of aqueous trifluoroacetic acid (TFA) and 0.1 volumes of water in setonitrile .. A solution containing acetonitrile with a volume of 0.09 volumes of TFAIO A high concentration gradient is applied. The 80M factor from all starting materials is 70% aqueous. 26 volumes and 0.09 volumes of aqueous TFA in 0.1 volumes in setonitrile. Eluting as a homogeneous peak in the solvent composition of 74 volumes of aqueous TFA, this Apart from this, FLP-HPLO is Peckman's commercial name Ultrasphere OD. It can be carried out on a reverse phase high pressure liquid chromatography column. this color In the case of aqueous 70% acetonate, elution was performed with a few specific solvent combinations, starting with aqueous 70% acetonyl 70 volumes of trifluoroacetic acid and 0.1 volumes of aqueous trifluoroacetic acid in Trill 30 volumes of trifluoroacetic acid followed by a high concentration of the acetonitrile-containing solvent. Performed by concentration gradient. 80M factor when using this column and this solution system Always 43.7 forms of 0.1% aqueous trifluoroacetic acid in aqueous 70% acetonitrile The solvent composition of 56.3 volumes of volume and 0.1 aqueous trifluoroacetic acid Elutes as one peak.

80M因子の使用 80M因子の活性は1次の刊行物に記載さねている一般的な試験方法に従って可 変の潜在的にSCMに反応するリンパ球に及ぼすその影響によって確認される:  L、0erck and B、0ercek、  ”App目cation  ofthe Phenomenon of Changes in the 5 trncturednessof Oyloplasmic (SOM) in  the Diagnosis ofMalignant Disorders :a Review、” Europ、 J、Cancer13、903−91 5(1977)。 本発明の一般的な癌−関連SOM−認識因子は、癌患者ドナ ーからの潜在的に反応するリンパ球を上記刊行物に記載されているようKSC! M試験において該リンパ球の刺激に使用すると該リンパ球の細胞内螢光側光値を 著しく下げる。Use of 80M factor The activity of Factor 80M can be determined according to the general test method described in the primary publication. This is confirmed by its effect on lymphocytes potentially reactive to SCM: L, 0erck and B, 0ercek, “App cation” of the Phenomenon of Changes in the 5 truncatedness of Oyloplastmic (SOM) in the Diagnosis of Malignant Disorders :a Review, ”Europ, J, Cancer13, 903-91 5 (1977). The general cancer-related SOM-recognition factor of the present invention can be applied to cancer patient donors. - potentially reactive lymphocytes from KSC! as described in the above publication. When used to stimulate the lymphocytes in the M test, the intracellular fluorescence level of the lymphocytes increases. significantly lower.

該刺激されたリンパ球の細胞内螢光偏光値の低下度は、該リンパ球の刺激にP液 を使用したときでも実質的に少なくとも20%、そして最も精製さねたHPLc 画分を使用すると50チ以上である。The degree of decrease in the intracellular fluorescence polarization value of the stimulated lymphocytes is determined by the degree of decrease in the intracellular fluorescence polarization value of the stimulated lymphocytes. substantially at least 20% even when using If fractions are used, the amount is 50 or more.

これに報告した80M試験の適切な実施に既に確立されている2つの方法が重要 である。これらの方法は潜在的にSCMに反応するリンパ球の単離と、螢光備光 値自身の測定法およびそれらの80M試験に意味のある数に変換することである 。これらの方法は次の論議に要約されている。Two established methods are important for the proper implementation of the 80M test reported here. It is. These methods involve the isolation of lymphocytes potentially reactive to SCM and the use of fluorophores. The value is to measure itself and convert them into a meaningful number for the 80M test. . These methods are summarized in the following discussion.

(1)  潜在的にSCMに反応するリンパ球の単離潜在的にSOMに反応する リンパ球の単離は、also in a prior patent appl ication by B、 0ercek& L、0ercek、 5eri al No、 838,264.  filed March 10゜1986 、 entitled″Automated Co11ection Buoy antDensity 5pecifio Ce1Is from Densi ty Gradjents″〇一般的なリンパ球集団からのこれらリンパ球の分 離は、比較的小比率(約20〜25%)のリンパ球のみが80M試験に反応する ので、80M試験の適切な実施に重要である。従って、非分画リンパ球について 試験を行なうことは、80M試験において実際に反応できるリンパ球が完全に反 応したときでも。(1) Isolation of lymphocytes that potentially react to SCM and potentially react to SOM Isolation of lymphocytes is also performed in a prior patent appl. cation by B, 0ercek & L, 0ercek, 5eri al No, 838,264.   March 10゜1986 , entitled"Automated Co11ection Buoy antDensity 5 specifio Ce1Is from Densi ty Gradjents''〇The fraction of these lymphocytes from the general lymphocyte population However, only a relatively small proportion of lymphocytes (approximately 20-25%) respond to the 80M test. Therefore, it is important for proper implementation of the 80M test. Therefore, for undifferentiated lymphocytes The test is to ensure that the lymphocytes that can actually react in the 80M test have completely reacted. Even when I responded.

細胞内偏光値の減少は極小さく観察されることになる。The decrease in the intracellular polarization value will be observed to be extremely small.

潜在的にSCMに反応するリンパ球を単離するために、ドナーから末梢血液試料 を採取してヘパリン添加チューブに収集する。収集後、その末梢血液は鉄粉又は カルボニル鉄粉で処理し、血液と鉄粉の混合体を含有するチューブを磁石の上に 置いて血液試料から鉄粉と共に食細胞を分離する。次にその血液試料の一部を密 度勾配溶液(商品名フィコール−トリオシル(Ficel 1−Trios口) )に移して遠心分離によって密度差に基づいた潜在的にSCMに反応するリンパ 球の分離をする。この分離方法は25℃で1.081t/cdの密度と0.32 00sr+yt1 の浸透圧を有する密度勾配溶液を使用する遠心分離は25℃ の温度において550X#で20分間行なう。潜在的にSOMに反応するリンパ 球はパスツール・ピペットを使用し密度勾配材料の上に分離された細胞層を除去 することによって回収される。この材料は、試験結果を妨害する種々のより重い 血漿および細胞広分を含むので、密度勾配材料の除去をできる限り避けるように 注意しなければならない。より軽い血漿材料の除去も汚染物質やSOMに反応し ない細胞の試験試料への導入を排除するためにできる限り回避すべきである。Peripheral blood samples from donors to isolate lymphocytes potentially reactive to SCM Collect in a heparinized tube. After collection, the peripheral blood is treated with iron powder or Treated with carbonyl iron powder, the tube containing the blood and iron powder mixture is placed on top of a magnet. to separate phagocytes along with iron powder from the blood sample. Then a portion of the blood sample is Gradient solution (trade name: Ficoll 1-Trios) ) and centrifugation to remove potentially SCM-reactive lymph based on density differences. Separate the spheres. This separation method has a density of 1.081 t/cd and 0.32 t/cd at 25°C. Centrifugation using a density gradient solution with an osmotic pressure of 00sr+yt1 at 25°C 550X# for 20 minutes at a temperature of . Lymph potentially responsive to SOM Remove the sphere separated cell layer onto the density gradient material using a Pasteur pipette. be recovered by doing so. This material has a variety of heavier Avoid removing density gradient material as much as possible as it contains plasma and cell fractions. Must be careful. Removal of lighter plasma material also reacts with contaminants and SOM. The introduction of non-existent cells into the test sample should be avoided as much as possible to exclude.

分離の次に潜在的に8CMに反応するリンパ球は。Lymphocytes potentially reactive to 8CM are then isolated.

2.3の洗浄工程、最初は保存剤を含まない0.9%塩化す) IJウム溶液中 で、次にDulbeccoの完全リン酸塩緩衝化塩類溶液(PBS)中で洗浄し て。2.3 washing step, initially in 0.9% chloride solution without preservative) and then washed in Dulbecco's complete phosphate buffered saline (PBS). hand.

80M試験法における次の使用のために37℃に保持する。Hold at 37°C for subsequent use in the 80M test method.

球の螢光偏光値の測定方法は次の刊行物に記載されby B、0ercek &  L、Cercek、 5erial No、 867.079゜filed  May 27.1986. entitled″Method formeas uring Pa1arized Fluorescence Emissio ns” 。A method for measuring the fluorescence polarization value of a sphere is described in the following publication by B, Oercek & L, Cercek, 5erial No, 867.079゜filed May 27.1986. entitled Method formas uring Pa1arized Fluorescence Emissio ns”.

これらの文献に記載されているように、被検者の末梢血液から予め分離さねたS CMに反応するリンパ球は37℃の無菌ガラス管内で既知濃度のマイトジェン、 例えばフィトヘマグルチニン又は本発明の主題である一般的な癌−関連SCM− 認識因子のような癌に関係した抗原と共に温度する。コンカナバリンAおよびア メリカヤマゴボウの根茎マイトジェンのようなフィトヘマグルチニン(P)IA )以外のマイトジェンが使用されてきたが、80M試験にはPHAが望ましbo この温#は、6xlO細胞/aの細胞懸濁液1−に適当に希釈したマイトジェン 又は抗原0.1dを添加することによって開始される。As described in these documents, S Lymphocytes reacting to CM were placed in a sterile glass tube at 37°C with a known concentration of mitogen, For example, phytohemagglutinin or the common cancer-related SCMs that are the subject of the present invention. Temperature with cancer-related antigens such as recognition factors. Concanavalin A and A Phytohemagglutinin (P) IA as a rhizome mitogen of P. americana ) have been used, but PHA is preferred for the 80M test. This temperature is mixed with mitogens appropriately diluted in a cell suspension of 1-6 x 10 cells/a. or by adding 0.1 d of antigen.

その装置は30〜60分間行なう。The device runs for 30-60 minutes.

温冒されたリンパ球は次に懸濁液中で螢光発生化合物に細胞内で加水分解できる 適当な非螢光化合物(以下螢光発生剤前駆物質と呼ぶ)1例えばフルオレセイ/ ・ジアセテー)(FDA)と混和される。The warmed lymphocytes can then be intracellularly hydrolyzed to fluorogenic compounds in suspension. Suitable non-fluorescent compounds (hereinafter referred to as fluorescein precursors) 1 such as fluorescein/ - diacetate) (FDA).

そのフルオロセイン・ジアセアートは、pH7,4および浸透圧0.330os 即勾の完全PBS中0.25mMの最終濃度で使用されるそしてアセトン又は氷 酢酸中で調製さねた濃縮貯蔵溶液から希釈される。The fluorescein diaceate has a pH of 7.4 and an osmolality of 0.330 os Used at a final concentration of 0.25mM in complete PBS and acetone or ice. Diluted from a concentrated stock solution prepared in acetic acid.

対照又は刺激されたリンパ球懸濁液0.21117のアリコートを注射器でFD A基質溶液31を含有するビーカーにゆっくり注入する。FD a 0.21117 aliquot of control or stimulated lymphocyte suspension with a syringe. Slowly pour into the beaker containing A substrate solution 31.

細胞はFDAに十分な時間(約5分)さらして。Expose cells to FDA for sufficient time (approximately 5 minutes).

PDA基質溶液をリンパ球内に浸透させる。それらの細胞内で、非螢光発生のフ ルオレセイン・ジアセテート分子は酵素加水分解によってフルオレセイン分子に 転化される。Infiltrate the PDA substrate solution into the lymphocytes. Within those cells, a non-fluorescent film Luorescein diacetate molecules are converted to fluorescein molecules by enzymatic hydrolysis. be transformed.

螢光を含有するリンパ球は、励起光の偏光作用に対する発光した螢光の偏光作用 はリンパ球を励起するために使用した面備光の方向に依存しないから、偏光に対 するそれらの反応は等方性である。しかしながら、こねらの測定に使用される従 来の螢光偏光作用測定装置はリンパ球を励起するために鉛直方向に偏光された励 起光を使用しているので、その測定法は鉛直方向に偏光された励起光に関して記 載されている。Fluorescent-containing lymphocytes are characterized by the polarizing effect of emitted fluorescent light on the polarizing effect of excitation light. does not depend on the direction of the surface light used to excite the lymphocytes, so it is sensitive to polarized light. Those reactions that occur are isotropic. However, the standard used to measure Current fluorescence polarization measurement devices use vertically polarized excitation light to excite lymphocytes. Because it uses excitation, the measurement method is described in terms of vertically polarized excitation light. It is listed.

鉛直方向に偏光された光の形で励起エネルギーにさらされると、フルオレセイン 分子は螢光を発光する。鉛直方向に偏光された発光と水平方向に偏光された発光 間の関係を測定する。これは、鉛直および水平面における偏光された螢光の強さ を測定し1次の関係に従って偏光値(P値)を決定することによって行なうこと ができる: 但し、工 およびXHはそれぞれ鉛直面と水平面に■ おける偏光された螢光の強さである。セしてGは使用する特定装置の光学系を通 過する偏光の水平および鉛直成分の不等透過に対する補正係数である。Gの値は 、水平方向に偏光された光の強さを80M測定用に使用する波長と同一波長の水 平方向に偏光された光で励起されたPBSにおけるフルオレセインの10  M 溶液から放射された鉛直方向の強さで割ることによって決定される。ここで報告 される測定のG値は0.42である。When exposed to excitation energy in the form of vertically polarized light, fluorescein The molecules emit fluorescence. Vertically polarized and horizontally polarized emissions measure the relationship between This is the intensity of polarized fluorescence in the vertical and horizontal planes. This is done by measuring the polarization value (P value) according to the linear relationship. Can: However, engineering and XH are on the vertical and horizontal planes, respectively. is the intensity of polarized fluorescence at G passes through the optical system of the specific device used. is a correction factor for unequal transmission of horizontal and vertical components of polarized light. The value of G is , water with the same wavelength as that used for measuring the intensity of horizontally polarized light at 80M. 10 M of fluorescein in PBS excited with squarely polarized light It is determined by dividing by the vertical intensity emitted from the solution. report here The measured G value is 0.42.

刺激されたリンパ球、すなわち本発明の一般的なSOM−関連癌認識因子にさら されたリンパ球のP値は同一ドナーからの刺激されないリンパ球の対照懸濁液の P値と比較される。そして対照リンパ球のP値と比較した刺激されたリンパ球の P値の減少率が癌抗原に対するSCM−反応の表示である。stimulated lymphocytes, i.e. the general SOM-associated cancer recognition factors of the present invention. The P value for the lymphocytes determined was that of a control suspension of unstimulated lymphocytes from the same donor. It is compared with the P value. and the P value of stimulated lymphocytes compared to that of control lymphocytes. The percentage decrease in P value is an indication of the SCM-response to the cancer antigen.

SOM反応は励起および発光波長のある範囲に渡って観察できるけれども、螢光 発生剤前駆物質としてFDAを使用するときには470nmの励起波長と510 nmの発光波長を使用することが極めて望ましい。しかしながら、良好な結果は 442nmの励起波長と527nmの発光波長を使用しても得られ念。Although SOM reactions can be observed over a range of excitation and emission wavelengths, fluorescence When using FDA as the generator precursor, an excitation wavelength of 470 nm and 510 nm It is highly desirable to use an emission wavelength of nm. However, good results It was also possible to obtain this using an excitation wavelength of 442 nm and an emission wavelength of 527 nm.

SOMの螢光測定に利用する分光光度計は高感度で高安定性でなけねばならない 、そして偏光された螢光発光の強さが時間の関数として記録されると共に80M 測定におけるフルオレセインの沖合(バルク)濃度がIOM〜10  Mの桁の みであるから励起光の強さの変動を補償できなければならない。また、広帯域フ ィルター装置は、SOM反応は狭い波長領域内のみで検出されるからSCMの測 定用には適さない。励起モノクロメータ−を470nmにそして発光モノクロメ ータ−を510nmにセットするとき、励起モノクロメータ−の最大光学的スリ ット幅は20nmに、そして発光モノクロメータ−の最大光学的スリット幅は1 0nmにする必要がある。The spectrophotometer used to measure SOM fluorescence must be highly sensitive and stable. , and the intensity of the polarized fluorescence emission was recorded as a function of time at 80 M The offshore (bulk) concentration of fluorescein in measurements is on the order of IOM ~ 10 M. Therefore, it is necessary to be able to compensate for fluctuations in the intensity of the excitation light. Also, broadband The filter device is difficult to measure in SCM because the SOM response is detected only within a narrow wavelength range. Not suitable for regular use. Set the excitation monochromator to 470 nm and the emission monochromator to 470 nm. When setting the excitation monochromator to 510 nm, the maximum optical threshold of the excitation monochromator is The slit width was 20 nm, and the maximum optical slit width of the luminescence monochromator was 1. It is necessary to set it to 0 nm.

分光光度計は、偏光された螢光発光が極めて温度依存性であるので熱的に安定に 制御されたキュベツト・ホールダも備えるべきである。さらに分光光度計は螢光 発光の水平および鉛直偏光成分を測定する手段も備える必要がある。Spectrophotometers are thermally stable because the polarized fluorescent light emission is extremely temperature dependent. A controlled cuvette holder should also be provided. Furthermore, the spectrophotometer uses fluorescent light. It is also necessary to provide means for measuring the horizontal and vertical polarization components of the emitted light.

以後示す実施例において我々は熱安定的に制御されたキュベツト・ホールダを備 えたパーキン−ニルマーMPF−4分光光度計を使用した。測定は全て27℃で 行なった。光源はキセノン・ランプであった。In the examples presented hereafter, we equipped a thermostably controlled cuvette holder. A Perkin-Nilmer MPF-4 spectrophotometer was used. All measurements were taken at 27℃ I did it. The light source was a xenon lamp.

螢光偏光作用の測定において、鉛直励起光ビームに対して平行および垂直の発光 強度が自動側光子変換器で交互に約6分間、又は鉛直方向に励起する光ビームに 垂直の発光強度が記録計の全スケール振れの80〜90%になる1で記録される 。In the measurement of fluorescence polarization, the emission parallel and perpendicular to the vertical excitation light beam The intensity is alternately increased for approximately 6 minutes with an automatic side photon converter, or to a vertically excited light beam. The vertical emission intensity is recorded at 1, which is 80-90% of the total scale deflection of the recorder. .

細胞からのフルオレセインの漏れおよび基質溶液におけるフルオレセインのパッ クグラウンドに対してこれらの読み値を補正する必要がある。この補正を行なう ために、細胞は適当なフィルター・ヘッドに取り付けた穴径0.22μmのニト ロセルロース・フィルター上で溶液からr過される。同一の螢光偏光作用測定装 置を使用して、励起光に平行および垂直な螢光が得られる。次に細胞の補正フル オレセイン強度はf過のハーフタイムに外挿した全螢光強度からF液より得られ た値を差引くことによって得らねる。この外挿は、細胞からのフルオレセインの 漏出およびFDAの自然加水分解のため温度中にパックグラウンドが高くなるの で必要である。Fluorescein leakage from cells and fluorescein packaging in substrate solutions. These readings need to be corrected for background noise. Make this correction For this purpose, the cells were filtered using a 0.22 μm nitrate filter attached to a suitable filter head. The solution is filtered over a cellulose filter. Same fluorescence polarization measuring device Fluorescence parallel and perpendicular to the excitation light is obtained using the Then cell correction full The olecein intensity is obtained from the F solution from the total fluorescence intensity extrapolated to the half time of the F period. It can be obtained by subtracting the values. This extrapolation shows that the amount of fluorescein from cells Due to leakage and natural hydrolysis of FDA, the packground becomes high during temperature. It is necessary.

これとは別に、 0erceksの先細特許出願(SerialNo、867. 079. filed May 27.1986. entitled“Met hod for Measuring Po1arized Fluoresc enceEmissions″)に記載されているバッググラウンドの螢光補償 方法を用いることができる。要約すると。Separately, 0erceks tapered patent application (Serial No. 867. 079. filed May 27.1986. entitled “Met” hod for Measuring Po1arized Fluoresc enceEmissions'') A method can be used. In summary.

この方法は51つ以上の波長で水平および鉛直方向に偏光された螢光発光を測定 しそれらから細胞内の螢光発光を計算することによって各試例をf過する必要を なくしている。This method measures horizontally and vertically polarized fluorescence at more than 51 wavelengths. The need to evaluate each example by calculating the intracellular fluorescence from them I've lost it.

前記のプロトコールに従って、6X10  細胞/Nのリンパ球懸濁液1.0  mとマイトジエ/又は抗原0、1 rLl、螢光発生剤先駆物質としてFDAを 使用し。Lymphocyte suspension 1.0 at 6X10 cells/N according to the above protocol. m and mitogens/or antigens 0, 1 rLl, FDA as fluorogen precursor. use.

470nmの励起波長と510nmの発行波長を使用して行った80M試験をこ こで「標準80M試験」一般的な癌−関連50M因子(その精製法をここで記載 する)は、癌の検出のために80M試験において有効な刺激剤として使用される 。従って、癌に侵すflでいないドナーからの細胞は、80M試験において刺激 剤として使用する癌抗原によって刺激されたときSCM反応に著しい変化を示さ ないが。The 80M test was performed using an excitation wavelength of 470nm and an emission wavelength of 510nm. Here, the "standard 80M test" is a common cancer-related 50M factor (its purification method is described here). ) is used as an effective stimulant in the 80M test for the detection of cancer . Therefore, cells from cancer-affected non-fl donors were stimulated in the 80M test. showed significant changes in SCM responses when stimulated by cancer antigens used as agents. Not though.

癌に侵されているドナーの細胞はSCM反応に著しい変化を示す。この変化は、 癌に侵されているドナーの細胞が癌−関連抗原で刺激されるときにP値の減少と して見られる。説明したように、80M因子は検出さね、る癌の種類に関して特 定的でな(,80M試験において80M因子で刺激さf1*!jンパ球は。Cancer-affected donor cells exhibit significant changes in SCM response. This change is When cancer-affected donor cells are stimulated with cancer-associated antigens, the P value decreases and It can be seen as As explained, factor 80M does not detect specific cancer types. (in the 80M test, the f1*!j lymphocytes stimulated with the 80M factor.

80M因子がくる体液のドナーと同種の癌をもったドナーからくる必要はない。Factor 80M does not need to come from a donor with the same type of cancer as the donor of the body fluid it comes from.

80M試験に刺激剤として使用したとき、 SC!M因子はP値を少なくとも1 0チ、場合によっては44.6%も減少させる。Psが刺激されたリンパ球のア リコートのP値であF)、Pcが80M因子で刺激されなかったリンパ球の了り フートのP値であるとすると、約0.9以上のP s / P cの比は刺激さ れたリンパ球のドナーの体に悪性腫瘍が存在することを示す。When used as a stimulant in the 80M test, SC! The M factor has a P value of at least 1 0chi, in some cases as much as 44.6%. Ps-stimulated lymphocyte activation Recoat P value (F) indicates that Pc was not stimulated by factor 80M for lymphocytes. If Hoot's P value is taken as This indicates the presence of a malignant tumor in the body of the donor of the collected lymphocytes.

80M試験において刺激剤として80M因子を使用する望ましい方法は、Psと マイトジェンと接触されたリンパ球のもう1つのアリコートの螢光偏光(作用) 値PMとを比較してSOM反応比、 RR8oMを決定することからなる。ここ で ” R80M = Ps 72M 約0.9以上のFLRはリンパ球のドナーに悪性腫CM が存在していることを示す。The preferred method of using factor 80M as a stimulant in the 80M test is to use Ps and Fluorescence polarization of another aliquot of lymphocytes contacted with mitogen (effect) It consists of determining the SOM reaction ratio, RR8oM, by comparing it with the value PM. here in ” R80M = Ps 72M An FLR of approximately 0.9 or higher indicates that the lymphocyte donor has malignant tumor CM. indicates that it exists.

2癌の管理における使用 一般的な癌−関連SCM−認識因子はキラー・リンパ球の生体内枚重に対して癌 細胞の防御に参加すると考えらね、るから、当然の帰結として80M因子の生体 内活性を選択的に下げる手段は癌細胞のキラー・リンパ球による枚重を受は易さ を増すことによって癌の管理に有用にすることができる。「生体内活性jとは、 scM−認識因子の悪性腫瘍へのキラー・リンパ球の細胞毒性を下げる能力を意 味する。2 Use in cancer management Common Cancer-Related SCM-Recognizing Factors for Killer Lymphocytes In Vivo Since it is not thought that it participates in the defense of cells, it is a natural consequence that the 80M factor Methods for selectively lowering endogenous activity are easily influenced by killer lymphocytes of cancer cells. can be useful in cancer management by increasing the “What is in-vivo activity? The ability of scM-recognition factors to reduce the cytotoxicity of killer lymphocytes to malignant tumors Taste.

かかる方法の第1の工程として、一旦既知又は疑のある癌患者のリンパ球が80 M試験において刺激剤として一般的な癌−関連SOM−認識因子で陽性反応があ ることが示されたら、体液の試料を患者から採取し、1000ダルトンの公称分 子量カットオフのフィルターに通し、フィルターを通過する画分を収集し、80 M試験における同一の患者からのリンパ球の刺激に使用してその画分に癌−関連 SOM−認識因子の存在を確認する。特に、他の臨床表示装置が癌の存在を示す 場合には、この試験を常に行なう必要はない。As a first step in such a method, once the lymphocytes of a known or suspected cancer patient are There was a positive reaction with a common cancer-related SOM-recognition factor as a stimulant in the M test. If indicated, a sample of body fluid is taken from the patient and a nominal dose of 1000 Daltons is Pass through a filter with a molecular weight cutoff, collect the fraction passing through the filter, and The fraction was used to stimulate lymphocytes from the same patient in the M study Confirm the presence of SOM-recognition factor. In particular, other clinical indicators indicate the presence of cancer In some cases, it is not necessary to always carry out this test.

癌患者の体液に80M因子の存在が一旦示される又は推断されたら、その体液は 因子の生体内作用を下げる方法により因子を選択的に不活性にさすことによって 処理することができる、そして次にその体液は患者に戻すことによって患者の癌 に対する抵抗を高めることができる。一般的な癌−関連80M因子は患者を苦し める癌の種類に関係なく80M試験での反応を与走るから、当然の帰結として8 0M因子の生体内作用は最初に診断された特定タイプの癌のみならず、後で発生 する恐れのある別のタイプの癌に対しても患者の抵抗を高めることができる。こ れは、免疫抑制作用のある薬剤で患者を治療したとき、又はエイズのような状態 のために既に弱体化した免疫系をもった患者を治療するときに意義がある。Once the presence of factor 80M in the body fluids of cancer patients is demonstrated or inferred, the body fluids By selectively inactivating the factor by reducing the in vivo action of the factor. that body fluid can then be returned to the patient to treat the patient's cancer. can increase resistance to Common Cancer-Related 80M Factors Affect Patients The natural conclusion is that the response in the 80M test will be affected regardless of the type of cancer treated. The in-vivo effects of 0M factors are not limited to the specific type of cancer initially diagnosed, but also to cancers that develop later. It can also increase a patient's resistance to other types of cancer at risk. child This occurs when a patient is treated with immunosuppressive drugs or when a condition such as AIDS occurs. This is of interest when treating patients with already weakened immune systems.

体液が末梢血液の場合、80M因子の生体内活性を下げる1つの方法は、末梢血 液を透析して1000ダルトン以下の見掛は分子量をもったペプチドを除去する (因子ll:c1000ダルトンの公称分子量カットオフする限外フィルターを 通過できるから)ことによってそれを物理的に除去する方法である。When the body fluid is peripheral blood, one way to reduce the in vivo activity of factor 80M is to The solution is dialyzed to remove peptides with an apparent molecular weight of less than 1000 Daltons. (Factor II: Use an ultrafilter with a nominal molecular weight cutoff of c1000 daltons. This is a method of physically removing it (because it can pass through).

体液における80M因子の生体内活性を下げるもう1つの方法はそれをその因子 に特定の抗体によって中和又は不活性にする方法である。80M因子はポリリシ ンおよび複合体に調製される抗体のようなより大きな担体分子に共有結合させる ことができる。Another way to reduce the in vivo activity of factor 80M in body fluids is to reduce the in vivo activity of factor 80M in body fluids. This is a method of neutralizing or inactivating the virus using specific antibodies. The 80M factor is a polylithic covalently attached to larger carrier molecules such as antibodies and antibodies prepared into complexes. be able to.

かかる抗体が一旦調裂されたら、従来の方法を用いて抗体形成細胞を単離しハイ ブリドーマとの細胞融合によってモロクローナル抗体を生成する。ポリクローナ ル又はモノクローナルの抗体が一旦形成されたら、それを80M因子の中和に使 用することができる。Once such antibodies have been cleaved, antibody-forming cells can be isolated and purified using conventional methods. Monoclonal antibodies are produced by cell fusion with a bullidoma. Polykrona Once a monoclonal or monoclonal antibody has been formed, it can be used to neutralize factor 80M. can be used.

これとは別に、一旦抗体が形成されたら、それをタンパク質加水分解酵素パパイ ンで一価のFabフラグメントに切断することができる。かかる切断によって生 成された各フラグメント分子は、因子の異なる2つの分子を結合する部位を有す る処女抗体と対照的に因子の1つの分子だけを結合することができる。大きな因 子−抗体複合体の形成が望ましくない場合には、フラグメントρ使用は用途によ って処女抗体を使用することが望ましい。末梢血液にかかる大きな抗原−抗体複 合体の存在は血清の病気および他のアレルギー反応をもたらす可能性がある。Separately, once the antibodies are formed, they are treated with the protein hydrolase papaya can be cleaved into monovalent Fab fragments with a single molecule. Such cutting results in Each fragment molecule created has a site that binds two molecules of different factors. In contrast to virgin antibodies, which are capable of binding only one molecule of the factor. big reason If the formation of antibody-antibody complexes is undesirable, the use of fragment ρ may depend on the application. Therefore, it is preferable to use virgin antibodies. Large antigen-antibody complexes in peripheral blood The presence of coalescence can lead to serum illnesses and other allergic reactions.

3、8 CM因子に対する抗体のさらに別の使用癌の管理において生成した抗体 をSCMに使用するさらに別の方法は、抗癌物質を癌の部位へ向けることに癌の 部位における抗癌物質の有効濃度を高めるために、抗癌活性をもった物質を抗体 に付加することである。この方法は、抗癌物質が大量投与時に副作用を起すもの であるときに特に有利である。3,8 Further uses of antibodies against CM factors Antibodies generated in the management of cancer Yet another method for using cancer in SCM involves targeting anticancer agents to the cancer site. In order to increase the effective concentration of anticancer substances at the site, antibodies with substances with anticancer activity are used. It is to add to. This method uses anti-cancer substances that cause side effects when administered in large doses. It is particularly advantageous when

抗−8℃M抗体は、放射線免疫検定法、螢光免疫検定法又は酵素−結合免疫吸収 検定法のような方法。Anti--8°C antibodies can be prepared by radioimmunoassay, fluorescence immunoassay or enzyme-linked immunoabsorption. Methods such as the probate method.

又は比濁分析法のような沈殿検定法(80M因子が一価の抗原でないと仮定した 場合)によって末梢血液又は他の体液中の80M因子の水準の決定にも使用でき る。80M因子がなんらかの方法で癌細胞と物理的に会合すると仮定すると、螢 光染料や放射性同位元素のような画像診断物質で標識化した抗体は。or precipitation assays such as nephelometry (assuming that the 80M factor is not a monovalent antigen). It can also be used to determine the level of factor 80M in peripheral blood or other body fluids depending on the Ru. Assuming that factor 80M physically associates with cancer cells in some way, Antibodies are labeled with imaging agents such as photodyes or radioactive isotopes.

癌細胞が生検において検出できるように癌細胞の画像診断に使用することもでき る。また、螢光標識化抗体は流動細胞計測法によって癌細胞の自動検出用に使用 できる。It can also be used for cancer cell imaging so that cancer cells can be detected in biopsies. Ru. In addition, fluorescently labeled antibodies are used for automatic detection of cancer cells by flow cytometry. can.

実   施   例 次の実施例は80M因子、その単離および精製。Example The following example is Factor 80M, its isolation and purification.

並びにその使用方法を説明する。しかしながら1次の実施例は説明のためだけで あって限定のためでないことを理解されたい。and how to use it. However, the first example is for illustrative purposes only. Please understand that this is not a limitation.

製 活性癌、倒置ば乳房、肺、結腸、卵巣、頚、子宮。made Active cancer, inverted breast, lung, colon, ovary, cervix, uterus.

喉頭又は皮膚(基底細胞癌および悪性黒色腫)の癌を有すると陽性診断された患 者の血液試料をベパリンを添加したガラスびん(例えば、商品名Vacutai nner)に収集した。そえらの血液試料の2011Jずつを約1zooxpで 約40分間遠心分離した。沈降した血球の上の血漿を収集して、10000ダル トンの分子量カットオフの多孔質膜フイルタ−(例えば。Patients with a positive diagnosis of cancer of the larynx or skin (basal cell carcinoma and malignant melanoma) A blood sample of a person was collected in a glass bottle containing beparin (e.g., the product name Vacutai). (nner). Approximately 1 zooxp each of 2011 J of Soera's blood samples. Centrifugation was performed for approximately 40 minutes. Collect the plasma above the sedimented blood cells and collect 10,000 dal. A porous membrane filter with a molecular weight cut-off of 1000 m (e.g.

商品名Am1co U M 2又はYM2フィルター)に圧力を加えてf過した 。これらのP液は、さらに精製するまで凍結乾燥又は4℃で貯蔵した。Pressure was applied to the product (product name Am1co U M2 or YM2 filter) and filtered. . These P solutions were lyophilized or stored at 4°C until further purification.

実施例2 : 初精製SCM因子の試験実施例1の各試料からの限外F液のアリ コートは、同一ドナーから得た潜在的にSCMに反応するリンパ球および前記8 0M試験に従ってそれらのSCM反応を検査したリンパ球と共に装置した。いず れの場合においても、限外f液はSOMに反応するリンパ球に特徴的に反応して P値を減少させた(第2表参照) 第   2   表 実施例1の限外f液の80M活性 悪性黒色腫   悪性黒色腫    757悪性黒色腫  基底細胞癌     SZO喉  頭 喉頭癌  62−9 乳     癌   乳    癌     76.0第2表のデータは、粗限 外f液に存在するときでも、80M因子は癌患者からのSCMに反応するリンパ 球のP値の減少をリンパ球が癌にかかった組織の粗抽出物又はその組織自身によ って刺激されるときに見られるP値の減少に少なくとも等しくさせた。Example 2: Test of initial purified SCM factor Aliquot of ultra-F solution from each sample of Example 1 The coat contains potentially SCM-reactive lymphocytes obtained from the same donor and the 8 They were set up with lymphocytes whose SCM responses were tested according to the 0M test. Izu In both cases, ultraf fluid reacts characteristically with lymphocytes that react with SOM. Reduced P value (see Table 2) Table 2 80M activity of ultraf liquid of Example 1 Malignant melanoma Malignant melanoma 757 Malignant melanoma Basal cell carcinoma SZO Throat Head Laryngeal Cancer 62-9 Breast Cancer Breast Cancer 76.0 The data in Table 2 are rough limits. Even when present in external fluid, factor 80M is present in lymph nodes that respond to SCM from cancer patients. The decrease in the P value of lymphocytes can be detected by using crude extracts of cancerous tissue or the tissue itself. was made to be at least equal to the decrease in P value seen when stimulated with

限外f液による刺激でのP値の減少は少なくとも10チ(それは該SOM陽性反 応の特徴である)であつた。しかしながら、80M因子は公称500ダルトンの 分子量をカットオフするフィルター(商品名Am1con UMO5)  を通 過しなかった。これらのデータは、活性が単一のアミノ酸のような小分子よシ大 きいことを示しながら、因子の小サイズを立証している。The decrease in P value upon stimulation with ultraf-fluid is at least 10 times (that is, the SOM-positive reaction ), which is a characteristic of response. However, the 80M factor is nominally 500 Daltons. Pass through a filter that cuts off molecular weight (product name Am1con UMO5). I didn't pass. These data demonstrate that the activity varies from small molecules such as a single amino acid to large molecules. It demonstrates the small size of the factor while showing that it is large.

実施例1の試料からの凍結乾燥粉末を注入すために無菌の保存剤を含まない水2 dに溶解させた。この段階で、調製品の80M活性を確認した。そして同一タイ プおよび部位の癌をもったドナーからの活性試料をプールした。プールした試料 は0〜700ダルトンの分画範囲を有する商品名5ephadex G−10な る0、9x18crnカラム上で脱塩した。カラムのクロマトグラフ実験毎の試 料体積はカラム容積の25チを越えなかった。溶離は2重蒸留水で8〜9crI V′hrの直線溶離速度で実施した。脱塩は室温(21〜23℃)で行なった。Sterile preservative-free water 2 for injecting the lyophilized powder from the sample of Example 1 It was dissolved in d. At this stage, the 80M activity of the preparation was confirmed. and the same tie Active samples from donors with cancer of each type and site were pooled. pooled sample is the product name 5ephadex G-10 which has a fractionation range of 0 to 700 Daltons. Desalted on a 0.9x18 crn column. Samples for each column chromatographic experiment The sample volume did not exceed 25 inches of column volume. Elution is 8-9 crI with double distilled water. A linear elution rate of V'hr was performed. Desalting was performed at room temperature (21-23°C).

クロマトグラフ床の全容積の0.3〜0.5倍の間で溶離する1dの画分を集め て1画分の光学密度を決定した。80M活性は最初の溶離ピーク内に含まれた。Collect 1d fractions eluting between 0.3 and 0.5 times the total volume of the chromatographic bed. The optical density of one fraction was determined. 80M activity was contained within the first eluting peak.

そのピークに80M活性が存在することは80M試験によって確認された。乳癌 患者の血漿から最初に得た限外P溶から調製された最初の溶離ピークのアリコー トは、乳癌患者からのすンパ球のP値を80M試験における対服値の86.3チ に減少させた。これは80M活性の存在を示す。The presence of 80M activity in the peak was confirmed by the 80M test. breast cancer An aliquot of the first eluting peak prepared from the ultra-P solution initially obtained from the patient's plasma. The P value of lymphocytes from breast cancer patients was 86.3 points, which was the drug value in the 80M study. decreased to This indicates the presence of 80M activity.

こねらの画分は収集して凍結乾燥した。The dough fractions were collected and lyophilized.

その溶離液はさらに商品名5ephadex G−50なるゲルf過方ラム(こ れは1500〜30,000ダルトンの分画範囲を有する)で分画することによ ってさらに精製した。凍結乾燥し脱塩した試料は50mMのN H4HCOsに 溶解させ、0.9x18crnの5ephadexG−50カラム上でカラム容 積の5%以下に負荷させ。The eluent was further used as a gel fester ram (trade name: 5ephadex G-50). This has a fractionation range of 1500 to 30,000 Daltons). I further refined it. Lyophilized and desalted samples were added to 50mM NH4HCOs. Dissolve and transfer column volume onto a 0.9x18crn 5ephadexG-50 column. The load should be less than 5% of the product.

3 cm / hr  の溶離直線速度であった。溶離は室温で行った。そして クロマトグラフの床容積の0.4〜06倍でカラムから溶離する11の画分を収 集した。これらの画分け80M活性を試験した。こわらの試験結果は実施例4に 示す。SCM−活性の画分け。The linear elution rate was 3 cm/hr. Elution was performed at room temperature. and Eleven fractions were collected that eluted from the column at 0.4 to 0.6 times the chromatographic bed volume. collected. These fractions were tested for 80M activity. The stiffness test results are in Example 4. show. SCM-activity fractionation.

80M試験における画分の試験後に1−の画分の光学密度によって決定した最初 の溶離ピーク内に含まれた。The first determined by the optical density of the fraction 1- after testing the fraction in the 80M test. was included in the eluted peak.

一旦それら画分の80M活性を試験したら、同一の癌からの活性画分はプールし て凍結乾燥した。Once the fractions were tested for 80M activity, active fractions from the same cancer were pooled. and lyophilized.

さらに精製するために、凍結乾燥した試料は10m M  N H4HCOsに 溶解させて商品名ワットマン(Wha tman ) DE−52なる微粒DE AE−セルロースの0.8x26crnカラムにカラム容積の4%以下に負荷さ れた。そのカラムは10mMの水性N )14 HC0x1Qiuで、10mM からIMのN H4)(00mまで0108チ/分濃度を上げて洗浄した。1d の画分を収集して、各画分について220nmの波長における光学吸収を決定し た。その光学吸収に基づいて、全クロマトグラフ床容積の4.5〜4.7倍でカ ラムから溶離する活性画分を試験およびさらに精製するためにプールして凍結乾 燥した。For further purification, the lyophilized sample was added to 10 mM NH4HCOs. It is dissolved to produce fine particles of DE-52 (trade name: Whatman). AE-Cellulose 0.8x26 crn column loaded to less than 4% of column volume. It was. The column contained 10mM aqueous N)14HC0x1Qiu, 10mM From IM N H4) (washed by increasing the concentration to 0108 cm/min. 1d fractions were collected and the optical absorption at a wavelength of 220 nm was determined for each fraction. Ta. Based on its optical absorption, 4.5 to 4.7 times the total chromatographic bed volume The active fractions eluting from the rum were pooled and lyophilized for testing and further purification. It was dry.

第3表は、最初に種々のタイプの癌をもったドナーから実施例3の5ephad ex G−50画分のアリコートを80M試験において使用してドナーからのり ンノ々球の刺激をしたときの結果を示す。潜在的にSCMに反応するリンパ球は それらが前に特徴付けられた癌−関連抗原したと同じ特徴的な反応をG−50画 分に示すことがわかる。この脱塩した部分的精製のタンパク質を含む材料は、結 果を第2表に示した粗限外f液と比較して一般に高いSCM反応を示す。Table 3 shows that the 5ephads of Example 3 were initially obtained from donors with various types of cancer. An aliquot of the ex G-50 fraction was used in the 80M test to The results are shown when stimulating the nno-no-ball. Lymphocytes that potentially respond to SCM are G-50 images show the same characteristic responses as they did to previously characterized cancer-related antigens. You can understand what is shown in minutes. This desalted, partially purified protein-containing material is Compared to the crude ultraf liquids whose results are shown in Table 2, they generally exhibit a higher SCM response.

この高いSOM反応は減少したP値によって示される。This high SOM response is indicated by a decreased P value.

第   3   表 実施例3の5ephadex ()−50画分のSCM活性肺    癌    乳    癌        73.0肺    癌   頚    癌         69.6肺   癌  気管支径     73.6喉頭癌 気管癌    77.6 乳 癌 気管癌   80.2 結 腸 癌   乳    癌        63.5喉頭癌 乳 癌  6 3.0 悪性黒色腫  悪性黒色腫      74.9健康なドナー   悪性黒色腫 99゜3健康なドナー   結 腸 癌       98.0結腸炎  結h @!i98.9 g4表U、DEAE−セルロースを介して精製後に種々のタイプの悪性腫瘍をも ったドナーから得た80M因子を使用して種々のタイプの悪性腫瘍のドナー又は 80M試験において悪性腫瘍のないドナーから単離され九すンノく球を刺激した ときの結果を示す。予想されるように、癌患者からの1ノンノ(球はDEAE− セルロース・カラムから精製されたscN+因子に反応してP値がかなり減少す るが、悪性腫瘍のないドナーのリンパ球はそのようなP値の減少を示さなかった 。Table 3 Example 3 5ephadex ()-50 fractions of SCM active lung cancer Breast Cancer 73.0 Lung Cancer Cervical Cancer 69.6 Lung cancer Bronchial diameter 73.6 Laryngeal cancer Tracheal cancer 77.6 Breast cancer Tracheal cancer 80.2 Colon cancer Breast cancer 63.5 Laryngeal cancer Breast cancer 6 3.0 Malignant melanoma Malignant melanoma 74.9 Healthy donor Malignant melanoma 99.3 Healthy donor Colon Intestinal cancer 98.0 Colitis Colitis @! i98.9 g4 Table U, various types of malignant tumors after purification via DEAE-cellulose using factor 80M obtained from a donor with various types of malignant tumors or In the 80M study, it was isolated from a malignant tumor-free donor and stimulated the 90-year-old gland. The results are shown below. As expected, one non-no from a cancer patient (the ball is DEAE- There is a significant decrease in P values in response to scN+ factors purified from cellulose columns. However, lymphocytes from donors without malignancy did not show such a decrease in P values. .

、第  4  表 実施例3のDEAE−セルロース画分のSCM活性乳     癌   乳      癌       6L2乳  癌 気管支炎   69.5 乳     癌   頚     癌      69.0基底細胞皮膚癌    基底細胞皮膚癌      SZO健康なドナー  結 腸 癌     9 8.6胆の う 炎  悪性黒色腫   100.0尿  道  炎   頚      癌      99.8虫  垂  炎   結  腸  癌       980良性乳房戊長   乳    癌     97.0良性下垂体腺腫    脳    癌     1’ 80.0実施例4のDE−52一般的帰一 関連SCM−活性画分は次に再構成し、Z 1 m x 22 crnHPLc カラムを使用して逆相高圧液体クロマトグラフィー(RP−HPLO) によっ て均一に精製した。そのカラムは商品名Aquapore RP−300(7ミ クロン)を充てんした。RP−HPLCの精製に使用された移動相は次の通りで あった: 相A:0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸(TFA)。, Table 4 SCM activity of DEAE-cellulose fraction of Example 3 Cancer Milk Cancer 6L2 Breast Cancer Bronchitis 69.5 Breast Cancer Cervical Cancer 69.0 Basal cell skin cancer Basal cell skin cancer SZO healthy donor Conclusion Intestinal cancer 9 8.6 Biliary cystitis Malignant melanoma 100.0 Urine Canal inflammation Neck Cancer 99.8 Insects Tumor Inflammation Intestinal Cancer 980 Benign Breast Long Breast Cancer 97.0 Benign Pituitary Adenoma Brain Cancer Cancer 1’ 80.0 DE-52 General Identification of Example 4 The relevant SCM-active fractions were then reconstituted and Z 1 m x 22 crnHPLc By reverse phase high pressure liquid chromatography (RP-HPLO) using a column It was purified to homogeneity. The column is a product name Aquapore RP-300 (7mm). filled with Chron). The mobile phase used for RP-HPLC purification was as follows: there were: Phase A: 0.1 volume aqueous trifluoroacetic acid (TFA).

相B:水性70チアセトニトリル中0.09体積チの水性TFA。Phase B: 0.09 vol. aqueous TFA in aqueous 70 thiacetonitrile.

凍結乾燥したDB−52のSCM−活性画分は注入のために無菌水(保存剤を含 まず)で再構成し竜250μtのアリコートをRP−HPLOカラムに注入した 。移動相の流量は50μt/分であったそしてその組成プロフィールは相Aの9 0体積チ、相Bの10体積チの10分1次に3体積チ/分の速度で相Bの直線的 増加30分であった。220nmの波長における光学吸収によって検出された光 学密度ピークは、「ナノボア(nanobore)Jテフロン・チューブを介し て1.5コの円すい形のプラスチックエペンドルフ遠心分離チューブの中に手で 収集された。そして溶媒は真空遠心分離機内で蒸発させた。全ての場合に、一般 的な癌−関連SOM−認識因子は相Bの74体積チでカラムから溶離した。The lyophilized SCM-active fraction of DB-52 was washed with sterile water (containing preservatives) for injection. First, a 250-μt aliquot was reconstituted with ) and injected into the RP-HPLO column. . The mobile phase flow rate was 50 μt/min and its composition profile was 9 0 volume chi, 10 minutes of phase B's 10 volume chi, then phase B linearly at a rate of 3 volume chi/min. The increase was 30 minutes. Light detected by optical absorption at a wavelength of 220 nm The chemical density peak was detected through a ``nanobore J'' Teflon tube. manually into a 1.5 conical plastic Eppendorf centrifuge tube. collected. The solvent was then evaporated in a vacuum centrifuge. In all cases, the general Cancer-associated SOM-recognition factors were eluted from the column in 74 volumes of phase B.

実施例6  :  80M因子の別のap−HpLc精製別に、80M因子は、 ベックマン・インスツルメンツ社販売の商品名Ultrasphere ODS  (5ミクロン)を充テi’v L fC4,6wa x 25 Crn HP LOカラムと実施例4のDEAE−528OM−活性画分を使用してHPLOを 行なうことによって精製することができる。このカラムで使用された移動相は次 の通シであった:相A:0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸(TFA)。Example 6: Another ap-HpLc purification of Factor 80M. Product name Ultrasphere ODS sold by Beckman Instruments (5 microns) i’v L fC4,6wa x 25 Crn HP HPLO using LO column and DEAE-528OM-active fraction from Example 4. It can be purified by The mobile phase used with this column was The following was followed: Phase A: 0.1 volume of aqueous trifluoroacetic acid (TFA).

相B:水性70%アセトニトリル中0.1体積%TFA。Phase B: 0.1 vol% TFA in aqueous 70% acetonitrile.

アクアボア(Aquapore)  カラムに関して移動相の流量がx、oom //分であったこと、およびその組成プロフィールが相Aの70体積%、相Bの 30体積チの5分、続いて3.5体積%/分の流量で相Bの直線的増加の20分 であったことを除いて、このカラムで同一の一般法に従った。光学密度ピークは 220nmで検出し、ケイ素化ガラス試験管の中に手で収集し、その溶媒は真空 遠心分離機内で蒸発させた。このHPLC系を使用したとき全ての場合に、頚の 鱗状細胞癌、乳腺癌、気管支線癌、および悪性黒色腫を含む19種の癌からの一 般的癌一関連SOM認識因子の精製は常に活性の単一光学密度ピークを生じ。Aquapore The mobile phase flow rate for the column is x, oom //min and that its compositional profile was 70% by volume of phase A and 70% by volume of phase B. 5 min of 30 vol. CH followed by 20 min of linear increase in phase B at a flow rate of 3.5 vol.%/min. The same general procedure was followed for this column, except that The optical density peak is Detected at 220 nm and collected manually in a silicided glass test tube, the solvent was Evaporated in a centrifuge. When using this HPLC system, in all cases the cervical One of 19 types of cancer, including squamous cell carcinoma, breast carcinoma, bronchial carcinoma, and malignant melanoma. Purification of common cancer-related SOM recognition factors always yields a single optical density peak of activity.

相Bの56.3体積チで溶離した。Eluted with 56.3 volumes of phase B.

実施例6においてUltrasphereカラムでFLP−HPLOによって単 離されたペプチドの80M活性試験のために、ペプチドは注入のため保存剤を使 用することなく無菌水で再構成した。これらの試料で製置後。In Example 6, the method was carried out by FLP-HPLO on an Ultrasphere column. For 80M activity testing of isolated peptides, peptides were preservative-free for injection. Reconstituted in sterile water without using. After manufacture with these samples.

SOM−反応リンパ球の80M活性を第5表に示す。The 80M activity of SOM-reactive lymphocytes is shown in Table 5.

この画分け、癌患者からのリンパ球の刺激に使用したとき偏光作用値に最大の減 少を示す。80M因子の3つの調製品の2つが他の画分で値よシ著しく低い40 チ以上もの偏光作用値の減少を示した。精製された因子は予想の通シ使用したリ ンパ球のドナーを苦しめる癌のタイプに関して非特定的であった。This fractionation showed the greatest decrease in polarization efficacy values when used to stimulate lymphocytes from cancer patients. Indicates low Two of the three preparations of factor 80M had significantly lower values than the other fractions. It showed a decrease in the polarization effect value by more than 1. As expected, the purified factor is It was nonspecific regarding the type of cancer afflicting the lymphocyte donor.

また、精製された因子は健康なドナーからのリンパ球の刺激に使用したとき反応 を示さなかった。The purified factor also showed a response when used to stimulate lymphocytes from healthy donors. did not show.

実施例60RP−HPLO画分のSCM活性乳    癌    乳   癌          58.9乳    癌    肺   癌          57.3結腸癌 乳 癌   55.4 乳  癌  気管支癌      68.0健康なドナー    乳   癌          99.8健康なドナー    肺   @          101.0実施例8   :   80M因子からのSCM−活性トリプシン・ 16個のアミノ酸長いトリプシン(trytic)  フラグメントは実施例5 の精ffsCM因子から単離した。Example 60 SCM activity of RP-HPLO fraction Milk Cancer Breast Cancer 58.9 Breasts Cancer Lung Cancer 57.3 Colon cancer Breast cancer 55.4 Breast cancer Bronchial cancer 68.0 Healthy donor Breast cancer 99.8 Healthy donor Lungs @ 101.0 Example 8: SCM-Activated Trypsin from Factor 80M 16 amino acid long trytic fragment Example 5 isolated from the seminal ffsCM factor.

このフラグメントはより大きいペプチドの全80M活性を有することを示し、自 動式エドマン分解法によって配列を決定した。精製された80M因子のトリプシ ンでの切断および活性フラグメントの精製は次の方法によって行った: 凍結乾燥中のペプチドの吸収損失を防ぐために。This fragment was shown to have the total 80M activity of the larger peptide and The sequence was determined by dynamic Edman decomposition. Trypsy of purified factor 80M The cleavage and purification of active fragments were performed by the following method: To prevent absorption loss of peptides during lyophilization.

80M因子をHPLC溶出液の存在下でトリプシンで消化させた。トリプシンの 消化は10重量%のトリプシンを使用して37℃において24時間0.1 Mの トリス−HCt緩衝液(pH=8.3)中で行った。80M factor was digested with trypsin in the presence of HPLC eluate. trypsin Digestion was performed using 10 wt% trypsin at 0.1 M for 24 h at 37°C. Performed in Tris-HCt buffer (pH=8.3).

消化物は0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸で4倍に希釈した、そしてミクロ フローHPLO分離装置(Applied Biosystems)  に注入 した。トリプシン・フラグメントはアクアボアRP−300コラム(2000x  2. I N罵)を使用して分離した。それらフラグメントの溶離のために、 移動相の溶媒は次の通シであった: 相A : 0.1体積チの水性トリフルオロ酢酸(TFA)相B:水性70%ア セトニトリル中0.09体積チのTFAその移動相の流量は50μt/分、そし てその組成プロフィールは10分の96体積チの相A、4体積チの相B、続いて 3体積チ/分の割合で相Bの30分の直線的増加からなる直線的溶離勾配であっ た。The digestate was diluted 4 times with 0.1 volume of aqueous trifluoroacetic acid and Injected into flow HPLO separation device (Applied Biosystems) did. Tryptic fragments were collected using an Aquabore RP-300 column (2000x 2. Separation was performed using IN. For elution of those fragments, The mobile phase solvent was as follows: Phase A: 0.1 vol. aqueous trifluoroacetic acid (TFA) Phase B: 70% aqueous aqueous 0.09 vol. TFA in setonitrile, the mobile phase flow rate was 50 μt/min, and Its composition profile is 96/10 volume Ti of phase A, 4 volume Ti of phase B, followed by A linear elution gradient consisting of a 30 min linear increase in phase B at a rate of 3 vol/min. Ta.

SCM−活性トリプシン・ペプチド・フラグメントは相Bの69.6体積チおよ び相人の30.4体積チ(全体積は約30μt)で溶離した。SCM-active tryptic peptide fragments are added to 69.6 volumes of phase B and The sample was eluted with a total volume of 30.4 μt (total volume approximately 30 μt).

第6表は、80M試験における刺激剤として実施例1,3および6から種々の精 製段階における一般的な癌−関連SOM−認識因子の調製品を使用することによ って得られた結果を要約する。多くの異なる悪性腫瘍に苦しむドナーのリンパ球 を80M試験において本発明の因子と共に使用したとき、全ての場合に著しい反 応が見られた。この反応を第6表にその因子と製置しなかった同一のリンパ球に ついてs c bi測測定行なうことによって得られた対照偏光値のチとして示 す。その値が小さくなる程、80M試験における因子に対する反応は大きくなる 。試験した因子の最も粗い調製品でも、限外F液は18.0チ〜37.lチの偏 光値の減少を示し、FLP−HPLOで精製した最も高精製画分は44.6%と 偏光値の大きな減少を示した。本発明の因子は特異であって。Table 6 lists the various essences from Examples 1, 3 and 6 as stimulants in the 80M test. By using preparations of common cancer-associated SOM-recognition factors at the manufacturing stage. The results obtained are summarized below. Lymphocytes from donors suffering from many different malignancies When used with the inventive factor in the 80M test, there was a significant reaction in all cases. There was a response. This reaction is shown in Table 6 for the same lymphocytes that were not treated with the factors. It is shown as the contrast polarization value obtained by performing the sc bi measurement. vinegar. The smaller the value, the greater the response to the factor in the 80M test. . Even with the coarsest preparations of the factors tested, the Ultra-F solution ranged from 18.0 to 37. lchi bias The most highly purified fraction purified by FLP-HPLO showed a decrease in light value and was 44.6%. It showed a large decrease in polarization value. The factors of this invention are unique.

癌患者のリンパ球を刺激するために使用したときのみ偏光値の減少をもたらす。It only results in a decrease in polarization values when used to stimulate lymphocytes in cancer patients.

R,P−HPLC精製画分でも健康なドナーのリンパ球の刺激に使用したとき偏 光値の減少をもたらさなかった。R,P-HPLC-purified fractions also showed bias when used to stimulate lymphocytes from healthy donors. did not result in a decrease in light value.

第6表 種々の糖果段階における80M活性の例(実施例9)Sephadex G−5 0画分       19.8−37.0DE−5,2七にロース画分         18.0−31.0RP−HPLO画分          310− 44.6健康なドナー又は悪性腫瘍でない病気のドナーからのリンパ球に試験し たとき、いずれの画分も活性を示さなかった。Table 6 Example of 80M activity at various sugar fruit stages (Example 9) Sephadex G-5 0 fraction     19.8-37.0DE-5,27 and loin fraction 18.0-31.0RP-HPLO fraction 310- 44.6 Lymphocytes from healthy donors or non-malignant diseased donors are tested. None of the fractions showed any activity.

その精製を実施例8に記載したトリプシン・ペプチドは標準80M試験において 完全活性である。約5X10fPのこのフラグメント(すなわち、5×10 ? 、又は16. OO0分子のフラグメント)は試験において完全活性を示した。The tryptic peptide, the purification of which is described in Example 8, was tested in the standard 80M test. Fully active. This fragment of approximately 5×10 fP (i.e. 5×10? , or 16. A fragment of the OO0 molecule) showed full activity in the test.

そのフラグメントを肺癌患者から単離したとき、それは80M試験において小さ な細胞肺癌患者のリンパ球に試験したとき活性を立証し、第7図に示すように乳 腺癌患者のリンパ球と完全に交差反応した。しかしながら健康なドナーのリンパ 球を使用したとき反応は見られな肺癌の実施例8におけるトリプシン・フラグメ ントの80M活性小細胞肺癌         70.0  :  68.0乳 腺癌    67.5 : 68.0健康なドナー          101 0:  104.0次の実施例は、異なるタイプの癌患者から得たリンパ球の刺 激に使用したとき80M試験における80M因子の反応能力を示す。この交差反 応性を示すために、癌患者からの多数の血液試料の各々から2 mlの細胞を含 まない血漿を得た。その血液試料はに収集された。それらの試料は1000ダル トンの公称分子量カットオフのフィルター(商品名(AniconUM2又はY M2)を通して少なくとも12時間限外f過し、4℃で無菌状態下に貯蔵した。When the fragment was isolated from a lung cancer patient, it was found to be small in the 80M test. activity was demonstrated when tested on lymphocytes of lung cancer patients, and as shown in Figure 7. Completely cross-reacted with lymphocytes from adenocarcinoma patients. However, healthy donor lymph Trypsin fragmentation in Example 8 of lung cancer where no reaction was observed when spheres were used. 80M active small cell lung cancer 70.0: 68.0 milk Adenocarcinoma 67.5: 68.0 Healthy donor 101 0: 104.0 The following example demonstrates the stimulation of lymphocytes obtained from patients with different types of cancer. Figure 2 shows the response capacity of the 80M factor in the 80M test when used vigorously. This intersection To demonstrate the response, 2 ml of cells from each of multiple blood samples from cancer patients were collected. Obtained plasma that did not contain any The blood sample was collected on. Those samples cost 1000 Dal A filter with a nominal molecular weight cutoff of M2) for at least 12 hours and stored under sterile conditions at 4°C.

癌患者、健康なドナーおよび非悪性腫瘍患者のヘパリン添加血液試料から潜在的 にSOMに反応するリンパ球を単離した。限外f液を含有する一般的な癌−関連 SCM−認識因子の活性および癌特異性を試験する念めに、潜在的VC8CMに 反応するリンパ球(5xlo細胞/MlinPBS)の0.75j!/7リコー トをその限外P液と共に37℃において40分間温装置た。0.07517の限 外f液はそれぞれの検定法に使用した。SCMの測定は次の刊行物に既に記載し たように行った: L、0ercek and B、0ercek。potential from heparinized blood samples from cancer patients, healthy donors, and patients with non-malignant tumors. We isolated lymphocytes that reacted with SOM. Common Cancers Containing Ultra F Fluid-Related To test the activity and cancer specificity of SCM-recognition factors, potential VC8CMs were 0.75j of reactive lymphocytes (5xlo cells/MlinPBS)! /7 Ricoh The sample was incubated with the ultra-P solution at 37° C. for 40 minutes. 0.07517 limit The external f solution was used for each assay method. Measurements of SCM have already been described in the following publications: I went like this: L, 0ercek and B, 0ercek.

“Application of the Phenomenon of Ci hanges 1nthe 5tructuredness of Cytop lasmic Matrjx(SCM)in the Diagnosis o f Malignant Disorders : aReview、 ”Eu rop、 J、 Cancer 13.903−915(1977)and i n the prior patent application by B。“Application of the Phenomenon of Ci Hanges 1nthe 5structuredness of Cytop lasmic Matrjx (SCM) in the Diagnosis f Malignant Disorders: aReview,”Eu rop, J, Cancer 13.903-915 (1977) and i n the prior patent application by B.

0ercek and L、Cercek、 5erial No、867.0 79. filedMay 27.1986. and entitled″M ethod forMeasuring Po1arized Fluores cence Emissions、”80M検定において、細胞内螢光偏光作用 値(P値)の少なくとも10%の減少は、刺激用限外f液の陽性反応とした。0ercek and L, Cercek, 5erial No, 867.0 79. filedMay 27.1986. and entitled″M method for Measuring Po1arized Fluores ence Emissions, “Intracellular fluorescence polarization effect in 80M assay A decrease of at least 10% in the value (P value) was considered a positive response to the stimulating ultraf fluid.

第8表のデータが示すように、8つの異なる癌タイプの患者からの潜在的にSC Mに反応するリンパ球は9つの異なる癌タイプからの一般的な癌−関連SOM− 認識因子を含有する限外P液に反応する。As the data in Table 8 shows, potentially SC from patients with eight different cancer types M-reactive lymphocytes are common cancer-associated SOMs from nine different cancer types. Reacts to ultra-P solution containing recognition factors.

これと対照的に、健康なドナーおよび癌でない病気のドナーからの限外F液は陽 性のSCM反応を示さなかった。また、健康なドナーからの潜在的にSCMに反 応するリンパ球も非悪性状態のリンパ球も80M試験においていずれの限外P波 に反応しなかった。In contrast, ultra-F fluids from healthy donors and non-cancerous diseased donors are positive. No sexual SCM reaction was observed. Also, potentially anti-SCM from healthy donors. Both non-malignant and non-malignant lymphocytes showed no extreme P waves in the 80M test. did not react to.

飾 80M因子との温度によって悪性腫瘍を含まないリンパ球のSOM反応を修飾す るためにs EuropeanJournal of Cancer arti cle、 5upra、および1986年3月10日付は出願第838.264 号(B、 0ercek)に記載されているように、潜在的にSCMに反応する リンパ球を健康なドナーの血液試料から単離して、ダルベツコの完全リン酸塩緩 衝化塩類溶液(PBS)に5×lO細胞/ jjlで懸濁させた。これら細胞の アリコートは次の(al〜(h)の3ゴ中に温度した=(a)癌患者からの細胞 を含まない血漿:(b)1000ダルトンの分子量カットオフのAm1con   U M 2フイルターを通して12時間限外濾過した癌患者からの血漿=(c 1500ダルトンの公称分子量カットオフのAm1con 0M5  フィルタ ーを通して12時間限外濾過した癌患者からの血漿:(d)脱塩又は5epha dex CT−10カラム・ステージを介して精製された一般的な癌−関連80 M因子: (e)Sephdex G−50カラム−ステージを介して精製され た因子: (fl D E A E−セルロース・カラム工程を介して精製され た因子: (gl RP−HPLO工程を介して最終的に精製した因子:および (h) 10000ダルトンの公称分子量カットオフのAm1con 0M2  フィルターを介して限外濾過された健康なドナーからの血漿。これらの温度け2 5時間行った。Decoration Modifying the SOM response of lymphocytes that do not contain malignant tumors by temperature with factor 80M European Journal of Cancer arti cle, 5upra, and application no. 838.264 dated March 10, 1986. Potentially responsive to SCM, as described in issue (B, 0ersek) Lymphocytes were isolated from healthy donor blood samples and treated with Dulbecco's complete phosphate buffer. The cells were suspended in buffered saline solution (PBS) at 5×10 cells/jjl. of these cells The aliquots were heated during the following three times (al to (h) = (a) cells from cancer patients). Plasma without: (b) Am1con with a molecular weight cutoff of 1000 daltons Plasma from cancer patients ultrafiltered through UM2 filter for 12 hours = (c Am1con 0M5 filter with a nominal molecular weight cutoff of 1500 daltons Plasma from cancer patients ultrafiltered for 12 hours through (d) desalted or 5epha Common cancer-related 80 purified via dex CT-10 column stage Factor M: (e) purified via Sephdex G-50 column-stage Factors: (fl D E A E-purified via cellulose column process Factors: (gl Factors finally purified via RP-HPLO step: and (h) Am1con 0M2 with a nominal molecular weight cutoff of 10,000 daltons Plasma from a healthy donor ultrafiltered through a filter. These temperatures 2 I went for 5 hours.

健康なドナーからのリンパ球のSCM反応を修飾する80M因子の能力は、前記 の画分の各々との温度の前後にリンパ球のSCM反応比(FLR80M)を決定 することによって示した。RRの決定をする80M ためにマイトジェン又は80M因子と接触させる前に、装置した細胞を十分に洗 浄した。修飾の存在又は不在は、植物凝集素(PHA)との短接触期間後のリン パ球懸濁液の偏光作用値と80M因子を含有する基質との短接触期間後のリンパ 球懸濁液の偏光作用値との比によって決定された。80M試験法に従って、1. 0以下のRRはドナーに悪性腫瘍が80M 存在する陽性表示であり、一方1.1以上のRR8CMは悪性腫瘍の存在しない ことを示す。The ability of factor 80M to modify the SCM response of lymphocytes from healthy donors has been demonstrated previously. Determine the SCM reaction ratio (FLR80M) of lymphocytes before and after temperature with each of the fractions of It was shown by doing. 80M to decide on RR Thoroughly wash the mounted cells before contacting them with mitogens or 80M factor. Purified. The presence or absence of modification determines the phosphorus content after a short period of contact with phytoagglutinin (PHA). Polarizing effect values of paracytic suspensions and lymphocytes after short contact periods with substrates containing factor 80M. It was determined by the ratio of the polarization effect value of the sphere suspension. According to the 80M test method, 1. An RR of 0 or less indicates that the donor has a malignant tumor of 80M. A positive indication that RR8CM is present, while RR8CM of 1.1 or higher indicates the absence of malignant tumor. Show that.

第9表 健康なドナーからのリンパ球のSOM反応の80M因子による調節(実施例12 ) 細胞を含まない癌血漿             1.3B    0.80S ephadex G−10(SOM−活性)          1.40    0.80Sephadex G−50(SCM−活性)           1.38   0.73DEAE−セルロース(SCM−活性)             1.39   0.70RP −HP LC(SOM−活性)               1.40   0.65第9表は、 RRに反映される ように、SOMCM 因子又は植物凝集素に対するリンパ球の反応に及ぼすSOM因子含有画分との温 度の影響を示す。前温度しなかったリンパ球、又は公称1000ダルトンの分子 量カットオフのフィルターを通して濾過された健康なドナーからの限外f液と前 温度されたリンパ球、又は公称500ダルトンの分子量カットオフのフィルター を通して沢過された癌をもったドナーからの限外F液と前装置されたリンパ球は 予想通り1.35以上のRRを示した。一方、SOM因子OM を含有する画分と前装置されたリンパ球は全て、RR8C!Mの値を悪性腫瘍の 患者から最初に単離されたリンパ球の特徴である0、65〜O,S OO値に減 少悪性腫瘍細胞への潜在的にSCMに反応するリンパ球の自然細胞毒性に及ぼす 80M因子の影響を示すために健康なドナーから得られたかかるリンパ球を癌患 者の血液試料から前に記載したように単離した80M因子を含有する血漿と共に 37℃で25時間温装置た。また、これらのリンパ球のアリコートは対照品とし て保持して温室しなかった。さらに。Table 9 Modulation of SOM responses of lymphocytes from healthy donors by factor 80M (Example 12) ) Cancer plasma without cells 1.3B 0.80S ephadex G-10 (SOM-active) 1.40 0.80 Sephadex G-50 (SCM-active) 1.38 0.73 DEAE-cellulose (SCM-active) 1.39 0.70RP-HP LC (SOM-Activity) 1.40 0.65 Table 9 is reflected in RR Like, SOMCM Effect of temperature with SOM factor-containing fractions on the response of lymphocytes to factors or phytoagglutinin shows the influence of degree. Lymphocytes that were not pre-temperatured or molecules of nominal 1000 daltons Ultraf fluid from a healthy donor filtered through a filter with a volume cut-off and pre- Temperatured lymphocytes or filters with a nominal 500 Dalton molecular weight cutoff. The ultra-F fluid from the donor with cancer and the pre-equipped lymphocytes were purified through As expected, it showed an RR of 1.35 or more. On the other hand, the SOM factor OM The fraction containing RR8C! M value of malignant tumor The characteristic of lymphocytes initially isolated from patients is reduced to 0,65 to O,SOO values. Effects on innate cytotoxicity of lymphocytes potentially responding to SCM on oligomalignant tumor cells To demonstrate the influence of factor 80M, such lymphocytes obtained from healthy donors were used in cancer patients. with plasma containing factor 80M isolated as previously described from a blood sample of a person. Incubate at 37°C for 25 hours. Aliquots of these lymphocytes were also used as controls. I didn't keep it in a greenhouse. moreover.

潜在的にSCMに反応するリンパ球は癌をもったドナーから得て、同様に(ある アリコートは80M因子を含有する血漿と共に温室し、別のアリコートは対照品 として保持して温室しなかった)処理した。Lymphocytes potentially reactive to SCM were obtained from donors with cancer and similarly (some An aliquot was greenhoused with plasma containing 80M factor, and another aliquot was kept as a control. It was kept as a greenhouse and not treated).

製置後、リンパ球の細胞毒性は刊行物(M、 R。After incubation, the cytotoxicity of lymphocytes was determined by the publication (M, R.

Potter and M、 Moore+ ”Natural Cytoxi c Reactivityof Human Lymphocyte 5ubp opulations、 ’ Imy+unology37、187−194( 1979))に記載された方法に従って試験した。この公開された方法に従って 、検定のための標的細胞として Or  で標識化したに562のヒトの骨髄細 胞系を使用した。エフェクター細胞として潜在的にSCMに反応するリンパ球を 使用した。Potter and M, Moore+”Natural Cytoxi c Reactivity of Human Lymphocyte 5ubp opulations, 'Imy+unology37, 187-194 ( 1979)). According to this published method , 562 human bone marrow cells labeled with Or as target cells for assay. A cell system was used. Lymphocytes that potentially respond to SCM as effector cells used.

標的細胞/エフェクター細胞の比は1/20であった。 Cr  の放出は、エ フェクター細胞が標的細胞に有毒であることを示す。細胞毒性のチは次のように 決定される: 但し、上式のR8は試料における Or  の放出チ、Roは対照品における  crの放出チ、そしてRTは洗浄剤(商品名Triton X−Zoo  )の 存在下での51Cr の放出チである。それらの結果を第1O表に示す。これら の結果は、健康なドナーからの潜在的にSCMに反応するリンパ球の公称100 0ダルトンの分子量カットオフのフィルターを通してF遇された限外f液との温 室はそれらの細胞毒性を90%以上壕で低下させたことを示す。そのm置を癌患 者からの潜在的KS CMに反応するリンパ球と行ったとき、細胞毒性の低下は 40〜90%と少なかった。The target cell/effector cell ratio was 1/20. The release of Cr is Indicates that the effector cells are toxic to the target cells. Cytotoxicity is as follows It is determined: However, R8 in the above formula is the release rate of Or in the sample, and Ro is the release rate of Or in the control product. The release rate and RT of cr are determined by the cleaning agent (trade name: Triton X-Zoo). The release of 51Cr in the presence of The results are shown in Table 1O. these The results indicate a nominal 100% of potentially SCM-reactive lymphocytes from healthy donors. The temperature of the ultraf liquid passed through a filter with a molecular weight cutoff of 0 daltons The cells show that their cytotoxicity was reduced by more than 90% in vitro. The m position is cancerous. When used with lymphocytes reacting to latent KS CM from individuals, the decrease in cytotoxicity was The percentage was low at 40-90%.

しかしながら、かかる癌患者のリンパ球は製置前の細胞毒性はよシ低かった、そ して限外P液との温室後に残る細胞毒性の残留水準は健康なドナーのリンパ球の 温室後に残る値に四速した。癌患者の細胞に存在する細胞毒性の低い水準(11 本発明の一般的な癌−関連SCM−認識因子のような因子に生体内でさらすこと によってもたらされた細胞毒性の低下と一致した。However, the cytotoxicity of lymphocytes from such cancer patients was very low before treatment; The residual level of cytotoxicity remaining after greenhouse treatment with ultra-P fluid is similar to that of healthy donor lymphocytes. Four speeds were made to the value remaining after the greenhouse. Low levels of cytotoxicity present in cancer patient cells (11 In vivo exposure to factors such as the common cancer-associated SCM-recognition factors of the present invention This was consistent with the decrease in cytotoxicity brought about by

第  10  表 に562のヒトの骨髄細胞系に対する自然リンパ球に以上、望ましい実施態様に 関して本発明の詳細な説明したが、他の実施態様も可能である。従って請求の範 囲の意図および範囲はここに記載した望ましい実施態様の記載に限定されるもの ではない。Table 10 In a preferred embodiment, the innate lymphocytes for human bone marrow cell lines of 562 Although the invention has been described in detail in connection with the invention, other embodiments are possible. Therefore, the scope of claim The intent and scope of the following is limited to the description of the preferred embodiments set forth herein. isn't it.

国際調査報告 国際調査報告 PCT/υ5 g9100961international search report international search report PCT/υ5 g9100961

Claims (52)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.公称1000ダルトンの分子量をカットオフするフィルターを通過し公称5 00ダルトンの分子量をカットオフするフィルターによって保持される低分子量 のペプチドから本質的になり、標準SCM試験により測定した場合に癌に苦しめ られているドナーからのSCMに反応するリンパ球の細胞内の螢光偏光作用値を 少なくとも10%減少させることを特徴とする、実質的に純粋な一般的な癌−関 連SCM−認識因子。1. It passes through a filter that cuts off the molecular weight of nominally 1000 daltons and has a nominal molecular weight of 5. Low molecular weight retained by a filter with a molecular weight cutoff of 0.00 Daltons consists essentially of peptides that cause cancer as measured by standard SCM tests. The intracellular fluorescence polarization effect value of lymphocytes that respond to SCM from a given donor is determined. Substantially pure common cancer-related drug characterized by reducing at least 10% Associated SCM-recognition factor. 2.実質的に均一に精製された請求の範囲第1項記載の因子。2. The factor of claim 1 purified to substantially homogeneity. 3.実質的に、Phe−R1−Lys−Pro−Phe−R2−Phe−R3− Met−R4−R6−R6−R7〔但し、R1はAsnとGlnからなる群から 選び、R2、R3およびR4はそれぞれ独立にVal、Leu、およびIleか らなる群から選び、R5はAspとGlnからなる群から選び、そしてR6とR 7はそれぞれ独立にAsnとGlnからなる群から選ぶ)の配列を含む少なくと も13個のアミノ酸残基を有するペプチドのみからなることを特徴とする一般的 な癌−関連SCM−認識因子。3. Substantially, Phe-R1-Lys-Pro-Phe-R2-Phe-R3- Met-R4-R6-R6-R7 [However, R1 is from the group consisting of Asn and Gln R2, R3 and R4 are each independently Val, Leu, and Ile. R5 is selected from the group consisting of Asp and Gln, and R6 and R 7 each independently selected from the group consisting of Asn and Gln). A general peptide characterized by consisting only of peptides having 13 amino acid residues. Cancer-related SCM-recognition factors. 4.前記因子が悪性腫瘍を含まないドナーから得たSCMに反応するリンパ球と 接触されたときに、リンパ球がSCM試験において癌−関連抗原に反応するがマ イトジエンには反応しないところのSCMに反応するリンパ球のSCM反応を修 飾する性質を有する請求の範囲第3項記載の因子。4. the factor is a lymphocyte that reacts with SCM obtained from a donor free of malignant tumor; When contacted, lymphocytes react with cancer-associated antigens in the SCM test, but Modify the SCM response of lymphocytes that respond to SCM but do not respond to itodienes. The factor according to claim 3, which has decorative properties. 5.ヒトの骨髄細胞系K562ヘの潜在的にSCMに反応するリンパ球の自然試 験管内毒性を51Crの放出で測定した場合少なくとも90%低下させる性質を 有する請求の範囲第3項記載の因子。5. Natural assay of potentially SCM-reactive lymphocytes to the human bone marrow cell line K562 The property of reducing in vitro toxicity by at least 90% as measured by the release of 51Cr. The factor according to claim 3 comprising: 6.(Asx2、Glx3、Ser、His、Gly5、Thr、Arg、Al a3、Tyr、Met、Val3、Phe2、Ile、Leu3、Lys8)の 近似的アミノ酸組成を有する請求の範囲第3項記載の因子。6. (Asx2, Glx3, Ser, His, Gly5, Thr, Arg, Al a3, Tyr, Met, Val3, Phe2, Ile, Leu3, Lys8) 4. The factor according to claim 3, which has an approximate amino acid composition. 7.因子内の16個のアミノ酸セグメントが、アミノ酸配列Phe、Asn−L ys−Pro−Phe−Val、Phe−Leu−Met−Ile−Asp−G in−Asn−Phe−Ser−Lysを有し、因子のアミノ末端を含まない請 求の範囲第3項記載の因子。7. A 16 amino acid segment within the factor has the amino acid sequence Phe, Asn-L ys-Pro-Phe-Val, Phe-Leu-Met-Ile-Asp-G in-Asn-Phe-Ser-Lys and does not contain the amino terminus of the factor. The factor described in item 3 of the desired range. 8.因子内の15個のアミノ酸セグメントが、アミノ酸配列Phe−Asn−L ys−Pro−Phe−Val−Phe−Leu−Met−Ile−Asp−G ln−Asn−Thr−Lysを有し、因子のアミノ末端を含まない請求の範囲 第3項記載の因子。8. A 15 amino acid segment within the factor has the amino acid sequence Phe-Asn-L ys-Pro-Phe-Val-Phe-Leu-Met-Ile-Asp-G Claims having ln-Asn-Thr-Lys and not including the amino terminus of the factor The factor described in Section 3. 9.実質的に1つのペプチドのみを含有する請求の範囲第3項記載の因子。9. 4. The factor according to claim 3, which contains substantially only one peptide. 10.実質的に、Phe−R1−Lys−Pro−Phe−R2−Phe−R3 −Met−R4−R5−R6−R7−R8−Lys〔但し、R8はSerとTh rからなる群から選ぶ〕の配列を含有する少なくとも15個のアミノ酸残基を有 するペプチドのみからなる請求の範囲第3項記載の因子。10. Substantially, Phe-R1-Lys-Pro-Phe-R2-Phe-R3 -Met-R4-R5-R6-R7-R8-Lys [However, R8 is Ser and Th at least 15 amino acid residues containing the sequence selected from the group consisting of The factor according to claim 3, which comprises only a peptide that 11.実質的に1つのペプチドのみを含有する請求の範囲第10項記載の因子。11. 11. The factor according to claim 10, which contains substantially only one peptide. 12.実質的に、Phe−Asn−Pro−Phe−Val−Phe−Leu− Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Thr−Lysの配列を含有するペ プチドのみからなる請求の範囲第10項記載の因子。12. Substantially, Phe-Asn-Pro-Phe-Val-Phe-Leu- Peptide containing the sequence Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Thr-Lys 11. The factor according to claim 10, which comprises only peptide. 13.実質的に1つのペプチドのみを含有する請求の範囲第2項記載の因子。13. 3. The factor according to claim 2, which contains substantially only one peptide. 14.実質的に、Phe−Asn−Lys−Pro−Phe−Val−Phe− Leu−Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Thr−Lysの配列を含 有するペプチドのみからなる請求の範囲第13項記載の因子。14. Substantially, Phe-Asn-Lys-Pro-Phe-Val-Phe- Contains the sequence Leu-Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Thr-Lys. 14. The factor according to claim 13, which consists only of a peptide having the following. 15.実質的に、Phe−R2−Lys−Pro−Phe−R3−Phe−R3 −Met−R4−R5−R6−R7−R8−Lys〔但し、R8はSerとTh rからなる群から選ぶ〕の配列を含有する少なくとも16個のアミノ酸残基を有 するペプチドのみからなる請求の範囲第3項記載の因子。15. Substantially, Phe-R2-Lys-Pro-Phe-R3-Phe-R3 -Met-R4-R5-R6-R7-R8-Lys [However, R8 is Ser and Th at least 16 amino acid residues containing the sequence selected from the group consisting of The factor according to claim 3, which comprises only a peptide that 16.実質的に1つのペプチドのみを含有する請求の範囲第15項記載の因子。16. 16. The factor according to claim 15, which contains substantially only one peptide. 17.実質的に、Phe−Asn−Lys−Pro−Phe−Val−Phe− Lru−Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Thr−Lysの配列を含 有するペプチドのみからなる請求の範囲第15項記載の因子。17. Substantially, Phe-Asn-Lys-Pro-Phe-Val-Phe- Contains the sequence Lru-Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Thr-Lys. 16. The factor according to claim 15, which consists only of a peptide having the following. 18.実質的に1つのペプチドのみを含有する請求の範囲第17項記載の因子。18. 18. The factor according to claim 17, which contains substantially only one peptide. 19.本質的に、アミノ酸Phe−Asn−Lys−Pro−Phe−Val− Phe−Leu−Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Phe−Ser− Lysからなる実質的に純粋なペプチドからなる請求の範囲第18項記載の因子 。19. Essentially, the amino acid Phe-Asn-Lys-Pro-Phe-Val- Phe-Leu-Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Phe-Ser- The factor according to claim 18, consisting of a substantially pure peptide consisting of Lys. . 20.5×10−2フエトグラムのペプチドが、SCM試験において癌に苦しん でいるドナーからのSCM−関連リンパ球の刺激に使用されたとき少なくとも3 0%の偏光作用値を減少させる請求の範囲第19項記載のペプチド。20.5 x 10-2 fetograms of peptides suffered from cancer in the SCM test at least 3 when used to stimulate SCM-associated lymphocytes from donors in 20. A peptide according to claim 19, which reduces the polarization effect value by 0%. 21.(a)哺乳類ドナーから得たリンパ球の懸濁液を請求の範囲第1項又は第 3項の一般的な癌−関連SCMの認識因子と接触させる工程;および (b)該リンパ球の懸濁液を接触させる工程から得られるリンパ球の細胞形質マ トリックスの組織化度の減少を決定する工程、からなることを特徴とする哺乳類 ドナーから得たリンパ球からドナーに悪性腫瘍が存在するか否かを試験する方法 。21. (a) A suspension of lymphocytes obtained from a mammalian donor as claimed in claim 1 or contacting the common cancer-associated SCM recognition factor of item 3; and (b) Cytoplasmic map of lymphocytes obtained from the step of contacting the suspension of lymphocytes. a step of determining a decrease in the degree of organization of trix. A method of testing whether a donor has a malignant tumor using lymphocytes obtained from the donor . 22.因子が、実質的に、Phe−R1−Lys−Pro−Phe−R2−Ph e−R3−Met−R4−R5−R6−R7〔但し、R1はAsnとGlnから なる群から選び、R2、R3およびR4はそれぞれ独立にVal、Leuおよび Ileからなる群から選び、R5はAspとGlnからなる群から選び、そして R6とR7はそれぞれ独立にAsnとGlnからなる群から選ぶ〕の配列を含む 少なくとも13個のアミノ酸残基を有するペプチドのみからなる請求の範囲第2 1項記載の方法。22. The factor is substantially Phe-R1-Lys-Pro-Phe-R2-Ph e-R3-Met-R4-R5-R6-R7 [However, R1 is from Asn and Gln R2, R3 and R4 are each independently selected from the group consisting of Val, Leu and R5 is selected from the group consisting of Asp and Gln, and R6 and R7 each contain a sequence independently selected from the group consisting of Asn and Gln. Claim 2 consisting only of peptides having at least 13 amino acid residues The method described in Section 1. 23.因子が本質的に、アミノ酸配列Phe−Asn−Lys−Pro−Phe −Val−Phe−Leu−Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Thr −Lysからなる実質的に純粋なペプチドからなる請求の範囲第22項記載の方 法。23. The factor essentially has the amino acid sequence Phe-Asn-Lys-Pro-Phe -Val-Phe-Leu-Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Thr - The method according to claim 22, comprising a substantially pure peptide consisting of Lys. Law. 24.因子が、本質的に、アミノ酸Phe−Asn−Lys−Pro−Phe− Val−Phe−Leu−Met−Ile−Asp−Gln−Asn−Phe− Ser−Lysからなる実質的に純粋なペプチドからなる請求の範囲第22項記 載の方法。24. The factor essentially consists of the amino acids Phe-Asn-Lys-Pro-Phe- Val-Phe-Leu-Met-Ile-Asp-Gln-Asn-Phe- Claim 22 consisting of a substantially pure peptide consisting of Ser-Lys How to put it on. 25.因子内の16個のアミノ酸セグメントが、アミノ酸配列Phe−Asn− Lys−Pro−Phe−Val−Phe−Leu−Met−Ile−Asp− Gln−Asn−Phe−Ser−Lysを有し、因子のアミノ末端を含まない 請求の範囲第21項記載の方法。25. A 16 amino acid segment within the factor has the amino acid sequence Phe-Asn- Lys-Pro-Phe-Val-Phe-Leu-Met-Ile-Asp- Gln-Asn-Phe-Ser-Lys and does not contain the amino terminus of the factor The method according to claim 21. 26.因子内の15個のアミノ酸セグメントが、アミノ酸配列Phe−Asn− Lys−Pro−Phe−Val−Phe−Leu−Met−Ile−Asp− Gln−Asn−Thr−Lysを有し、因子のアミノ末端を含まない請求の範 囲第21項記載の方法。26. A 15 amino acid segment within the factor has the amino acid sequence Phe-Asn- Lys-Pro-Phe-Val-Phe-Leu-Met-Ile-Asp- Claims having Gln-Asn-Thr-Lys and not including the amino terminus of the factor The method according to paragraph 21. 27.細胞形質マトリックスの組織化度の減少を決定する工程が、 (a)既に因子に接触されているリンパ球のアリコートの螢光偏光作用Psを測 定する工程:(b)末だ因子に接触されていないリンパ球の第2のアリコートの 螢光偏光作用Pcを測定する工程;および (c)約0.9以下のPs/Pcの比がリンパ球の提供者に悪性腫瘍が存在する ことを示すところのPs/Pcの比を決定する工程、からなる請求の範囲第21 項記載の方法。27. Determining a decrease in the degree of organization of the cytoplasmic matrix comprises: (a) Measuring the fluorescence polarization effect Ps of an aliquot of lymphocytes that have already been contacted with the factor. (b) determining a second aliquot of lymphocytes that has not been contacted with terminal factors; Measuring fluorescence polarization effect Pc; and (c) A malignant tumor is present in the lymphocyte donor with a Ps/Pc ratio of approximately 0.9 or less. Claim 21, comprising the step of determining a ratio of Ps/Pc indicating that The method described in section. 28.細胞形質マトリックスの組織化度の減少を決定する工程が、 (a)既に因子と接触されているリンパ球のアリコートの螢光偏光作用Psを測 定する工程:(b)フイトヘマグルニチン、コンカナバリンAおよびアメリカヤ マゴボウのマイトジエンからなる群から選んだマイトジエンと接触されたリンパ 球の第2のアリコートの螢光偏光作用PMを測定する工程:および (c)約0.9以下のRRSCMがリンパ球のドナーに悪性腫瘍が存在すること を示すPS/PMの比として、SCMの反応比RRSCMを決定する工程、から なる請求の範囲第21項記載の方法。28. Determining a decrease in the degree of organization of the cytoplasmic matrix comprises: (a) Measuring the fluorescence polarization effect Ps of an aliquot of lymphocytes that has already been contacted with the factor. Step of determining: (b) phytohemaglunitin, concanavalin A and Americana Lymph that has been contacted with a mitogen selected from the group consisting of mitogenes measuring the fluorescence polarizing PM of a second aliquot of spheres; and (c) The lymphocyte donor has a malignant tumor with an RRSCM of approximately 0.9 or less. Determining the reaction ratio RRSCM of SCM as the ratio of PS/PM showing 22. The method according to claim 21. 29.(a)血液試料から潜在的にSCMに反応するリンパ球を分離する工程: (b)分離したリンパ球を請求の範囲第1項又は第3項の因子と接触させること によってリンパ球を刺激する工程: (c)刺激したリンパ球を螢光発生剤前駆物質と該前駆物質がリンパ球に浸透し て細胞内酵素加水分解により螢光発生化合物に加水分解させるのに十分な時間接 触させることによって、刺激された螢光を含有するリンパ球を生成させる工程: (c)刺激された螢光を含有するリンパ球を偏光で励起させることによってリン パ球に螢光を発生させる工程: (e)螢光を発生するリンパ球から鉛直方向に偏光された、および水平方向に偏 光された螢光発光を測定して螢光を発光するリンパ球の偏光作用値を決定する工 程:および (f)刺激された螢光を含有するリンパ球の決定された偏光作用値と、工程(b )を除いた工程(a)、(c)、(d)および(e)の操作を受けた同一ドナー からのリンパ球の対照アリコートの偏光作用値と比較し、それによってリンパ球 ドナーの体に癌の存在又は不在を示す工程からなることを特徴とする、血液試料 のドナーの体に悪性腫瘍の存否を示す血液試料のスクリーニング方法。29. (a) Separating potentially SCM-reactive lymphocytes from a blood sample: (b) Contacting the separated lymphocytes with the factor set forth in claim 1 or 3. The process of stimulating lymphocytes by: (c) The stimulated lymphocytes are treated with a fluorophore precursor and the precursor penetrates into the lymphocytes. for a sufficient time to hydrolyze the fluorogenic compound by intracellular enzymatic hydrolysis. A step of producing stimulated fluorescent-containing lymphocytes by touching: (c) stimulated fluorescence-containing lymphocytes by exciting them with polarized light; Process of generating fluorescent light in the bulb: (e) Vertically and horizontally polarized light from fluorescent lymphocytes. A method for determining the polarizing action value of lymphocytes that emit fluorescent light by measuring the emitted fluorescent light. degree: and (f) Determined polarization effect values of stimulated fluorescence-containing lymphocytes and step (b) ) The same donor underwent steps (a), (c), (d) and (e) except for compared to the polarization effect value of a control aliquot of lymphocytes from A blood sample characterized in that it consists of a step that indicates the presence or absence of cancer in the donor's body. A method of screening blood samples to indicate the presence or absence of malignant tumors in a donor's body. 30.リンパ球が鉛直方向に偏光された光で励起され、偏光作用値が次の関係式 に従って螢光分光光度計で測定される請求の範囲第29項記載の方法:P=(I V−GIH)/(IV+GIH)但し、上式のIVとIHはそれぞれ鉛直面と水 平面における偏光された螢光の強さ、そしてGは分光光度計の光学系を通る偏光 の水平および鉛直成分の不等透過に対する補正係数である。30. Lymphocytes are excited by vertically polarized light, and the polarization effect value is expressed by the following relational expression: The method according to claim 29, wherein P=(I V-GIH)/(IV+GIH) However, IV and IH in the above equation correspond to the vertical plane and water, respectively. The intensity of the polarized fluorescence in the plane, and G is the polarization passing through the optics of the spectrophotometer. is a correction factor for unequal transmission of horizontal and vertical components of . 31.工程(b)と工程(c)が同時に生じる請求の範囲第29項記載の方法。31. 30. The method of claim 29, wherein step (b) and step (c) occur simultaneously. 32.(a)SCM−認識因子を含有する体液を処理して選択的に不活性にさせ ることによって該因子の生体内作用を低下させる工程:および (b)前記処理された体液を患者に戻すことによって癌に対する患者の抵抗を高 める工程からなることを特徴とする、患者の体液の少なくとも1つが一般的な癌 −関連SCM−認識因子を含む癌患者を治癒する方法。32. (a) Treating body fluids containing SCM-recognition factors to selectively inactivate them. reducing the in vivo action of the factor by: and (b) increasing the patient's resistance to cancer by returning said treated body fluid to the patient; at least one of the body fluids of the patient is a common cancer. - A method of curing cancer patients comprising related SCM-recognition factors. 33.体液が末梢血液であり、体液を処理する工程が1000ダルトン以下の見 掛け分子量のペプチドを除去する末梢血液の透析からなり、その血液からの除去 によってSCM−認識因子を選択的に不活性する請求の範囲第32項記載の方法 。33. If the body fluid is peripheral blood and the process for processing the body fluid is less than 1000 daltons, Consists of dialysis of peripheral blood to remove peptides with multiplied molecular weight; their removal from the blood The method according to claim 32, wherein the SCM-recognition factor is selectively inactivated by . 34.体液を処理する工程が、体液中のSCM−認識因子を該因子に特有の抗体 で中和することからなる請求の範囲第32項記載の方法。34. The step of treating the body fluid involves converting the SCM-recognizing factor in the body fluid into an antibody specific to the factor. 33. The method of claim 32, comprising neutralizing with. 35.体液を処理する工程が、体液中のSCM−認識因子をSCM−認識因子と 一価の結合することができるSCM−認識因子に特有の抗体のFabフラグメン トで中和することからなる請求の範囲第32項記載の方法。35. The step of treating the body fluid converts the SCM-recognition factor in the body fluid into an SCM-recognition factor. Fab fragments of antibodies specific to SCM-recognition factors capable of monovalent binding 33. The method of claim 32, comprising neutralizing with 36.(a)請求の範囲第1項又は第3項の一般的な癌−関連SCM−認識因子 に対する抗体をイメージング物質で標識化する工程:および (b)標識化した抗体を利用して癌細胞を画像診断する工程からなることを特徴 とする、癌細胞の画像診断方法。36. (a) A general cancer-related SCM-recognition factor according to claim 1 or 3. Labeling an antibody against with an imaging substance: and (b) It is characterized by a step of performing image diagnosis of cancer cells using labeled antibodies. An image diagnosis method for cancer cells. 37.(a)請求の範囲第1項又は第3項の一般的な癌−関連SCM−認識因子 に対する抗体に標識を付けて、抗癌物質を癌細胞に向ける工程:および(b)標 識を付けた抗体が患者の癌細胞に結合できるように標識を付けた抗体を癌患者に 投与する工程からなることを特徴とする、抗癌物質を癌細胞に向ける方法。37. (a) A general cancer-related SCM-recognition factor according to claim 1 or 3. and (b) labeling an antibody against cancer cells to direct the anticancer substance to cancer cells. A labeled antibody is given to a cancer patient so that the labeled antibody can bind to the patient's cancer cells. A method for directing an anticancer substance to cancer cells, the method comprising the step of administering an anticancer substance to cancer cells. 38.免疫検定において請求の範囲第1項又は第3項の一般的な癌一関連SCM −認識因子を使用して体液中の一般的な癌−関連SCM−認識因子の水準を決定 する方法。38. General cancer-related SCM of claim 1 or 3 in immunoassay - Using recognition factors to determine levels of common cancer-related SCM-recognition factors in body fluids how to. 39.免疫検定が放射線免疫検定である請求の範囲第38項記載の方法。39. 39. The method of claim 38, wherein the immunoassay is a radioimmunoassay. 40.免疫検定が螢光免疫検定である請求の範囲第38項記載の方法。40. 39. The method of claim 38, wherein the immunoassay is a fluorescent immunoassay. 41.免疫検定が酵素結合免疫吸収検定である請求の範囲第38項記載の方法。41. 39. The method of claim 38, wherein the immunoassay is an enzyme-linked immunosorbent assay. 42.免疫検定が沈殿免疫検定である請求の範囲第38項記載の方法。42. 39. The method of claim 38, wherein the immunoassay is a precipitation immunoassay. 43.沈殿免疫検定が比濁分析検定である請求の範囲第42項記載の方法。43. 43. The method of claim 42, wherein the precipitation immunoassay is a turbidimetric assay. 44.沈殿免疫検定が濁り測定検定である請求の範囲第42項記載の方法。44. 43. The method of claim 42, wherein the precipitation immunoassay is a turbidity assay. 45.(a)癌で苦しんでいるドナーの体液を得る工程:(b)1000ダルト ンより大きい見掛け分子量を有する分子からなる体液の第1の面分を1000ダ ルトン以下の見掛け分子量を有する分子からなる第2の面分から分離する工程: および (c)第2の画分を精製して実質的に純粋な一般的な癌−関連SCM−認識因子 を得る工程からなることを特徴とする一般的な癌−関連SCM−認識因子を製造 する方法。45. (a) Obtaining body fluids of a donor suffering from cancer: (b) 1000 Dalt. A first surface of body fluid consisting of molecules having an apparent molecular weight greater than 1000 da Separating from a second surface consisting of molecules having an apparent molecular weight of less than or equal to Luton: and (c) purifying the second fraction to substantially pure common cancer-associated SCM-recognition factors; Manufacturing a general cancer-related SCM-recognition factor characterized by the step of obtaining how to. 46.体液は末梢血液、尿および血漿からなる群から選ぶ請求の範囲第45項記 載の方法。46. Claim 45, wherein the body fluid is selected from the group consisting of peripheral blood, urine, and plasma. How to put it on. 47.第1の面分から第2の面分の分離が、公称1000ダルトンの分子量カッ トオフの限外フィルターを通して体液のろ過によって行なう請求の範囲第45項 記載の方法。47. The separation of the second plane from the first plane is achieved by a nominal molecular weight cutoff of 1000 Daltons. Claim 45: By filtration of body fluids through a to-off ultrafilter. Method described. 48.さらに、0〜700ダルトンの分画範囲を有し塩類を分離できるゲルろ過 カラムに第2の画分を負荷し、負荷された材料を蒸留水で溶離し、クロマトグラ フィーの全床容積の約0.3〜約0.5の間の溶離体積で溶離する部分を収集す ることによって第2の画分を脱塩する工程からなり、それによって請求の範囲第 45項の第2の画分における比活性に対する収集した脱塩部分における一般的に 癌−関連SCM−認識因子の比活性を増す請求の範囲第45項記載の方法。48. In addition, gel filtration has a fractionation range of 0 to 700 Daltons and can separate salts. Load the column with the second fraction, elute the loaded material with distilled water, and chromatograph. Collect the portion that elutes at an elution volume between about 0.3 and about 0.5 of the total bed volume of the feed. desalting the second fraction by Generally in the collected desalted portion for the specific activity in the second fraction of Section 45 46. The method of claim 45, which increases the specific activity of cancer-associated SCM-recognition factors. 49.さらに、 (a)約1500〜約30,000ダルトンの分画範囲を有する濾過カラムに収 集した脱塩部を負荷する工程: (b).工程(a)でカラムに負荷された材料をアンモニウム塩の弱い水溶液で カラムから溶離する工程:および (c)クロマトグラフの全床容積の約0.4〜約0.6倍の間の溶離体積で溶離 する部分を収集する工程からなり、それによって請求の範囲第48項の収集され た脱塩部における比活性に対して収集された溶離液における一般的な癌−関連S CM−認識因子の比活性を高める請求の範囲第48項記載の方法。49. moreover, (a) collected in a filtration column with a fractionation range of about 1500 to about 30,000 Daltons; Process of loading the collected desalination section: (b). The material loaded onto the column in step (a) is treated with a weak aqueous solution of ammonium salts. Elution from the column: and (c) Elute with an elution volume between about 0.4 and about 0.6 times the total bed volume of the chromatograph. the collected portion of claim 48. Common cancer-related S in eluate collected for specific activity in desalted areas 49. The method according to claim 48, which increases the specific activity of CM-recognition factor. 50.さらに、 (a)収集された溶離液をジエチルアミノエチル・セルロース陰イオン交換カラ ムに負荷する工程:(b)工程(a)でカラムに負荷された材料を高濃度のアン モニウム塩でカラムから溶離する工程:および (c)約0.28M〜約0.31Mのアンモニウム塩でカラムから溶離する部分 を収集する工程からなり、それによって請求の範囲第49項の収集された溶離液 における比活性に対して収集された溶離液における一般的な癌−関連SCM−認 識因子の比活性を高める請求の範囲第49項記載の方法。50. moreover, (a) Transfer the collected eluent to a diethylaminoethyl cellulose anion exchange column. (b) The material loaded onto the column in step (a) is loaded onto the column at a high concentration. Elution from the column with a monium salt: and (c) the portion eluting from the column with about 0.28M to about 0.31M ammonium salt; 49, thereby collecting the collected eluent of claim 49. Common Cancer-Related SCM-Recognition in Eluates Collected for Specific Activity in 50. The method according to claim 49, wherein the specific activity of the cognitive factor is increased. 51.さらに、逆相高圧液体クロマトグラフィーによって、請求の範囲第50項 の収集された溶離液からの一般的な癌−関連SCM−認識因子を実質的に均一に 精製する工程からなる請求の範囲第50項記載の方法。51. Furthermore, by reverse phase high pressure liquid chromatography, claim 50 Substantially uniform distribution of common cancer-associated SCM-recognizing factors from collected eluates of 51. The method of claim 50, comprising the step of purifying. 52.請求の範囲第45項、第48項、第49項、第50項又は第51項の方法 によって製造された実質的に純粋で一般的な癌−関連SCM−認識因子。52. The method according to claim 45, 48, 49, 50 or 51. Substantially pure generic cancer-associated SCM-recognition factor manufactured by.
JP1504282A 1988-03-11 1989-03-09 Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors, Preparations and Methods of Use Pending JPH03503763A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16700788A 1988-03-03 1988-03-03
US167,007 1988-03-11

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH03503763A true JPH03503763A (en) 1991-08-22

Family

ID=22605568

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1504282A Pending JPH03503763A (en) 1988-03-11 1989-03-09 Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors, Preparations and Methods of Use

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP0407451A1 (en)
JP (1) JPH03503763A (en)
WO (1) WO1989008662A1 (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5516643A (en) * 1987-03-06 1996-05-14 Cercek; Boris Immunochemical assays for cancer-associated SCM-recognition factor
US5580561A (en) * 1987-03-06 1996-12-03 Cercek; Boris Methods and pharmaceutical compositions for blocking suppression of immune defense mechanisms using an antibody, a factor, or an antisense peptide
US5270171A (en) * 1987-03-06 1993-12-14 Boris Cercek Cancer-associated SCM-recognition factor, preparation and method of use
RU2065307C1 (en) * 1994-12-13 1996-08-20 Александр Васильевич Тихонов Method of primary liver cancer treatment and kit for primary liver cancer treatment

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0260315B1 (en) * 1986-03-10 1991-12-11 CERCEK, Boris Separation and method of use of density specific blood cells
US4835103A (en) * 1986-11-24 1989-05-30 Boris Cercek Differential binding of membrane potential sensitive materials to lymphocytes
KR890700605A (en) * 1987-03-06 1989-04-26 보리스 체르첵 Conventional cancer sympathetic SCM recognition factors, their manufacture and use

Also Published As

Publication number Publication date
EP0407451A1 (en) 1991-01-16
WO1989008662A1 (en) 1989-09-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0537276B1 (en) Cancer-associated scm-recognition factor, preparation and method of use
US5866690A (en) Detection of malignant tumor cells
US4298590A (en) Detection of malignant tumor cells
US4486538A (en) Detection of malignant tumor cells
US4196186A (en) Method for diagnosing malignant gliol brain tumors
US4195017A (en) Malignin, derived from brain tumor cells, complexes and polypeptides thereof
JPH03503763A (en) Common Cancer-Related SCM-Recognition Factors, Preparations and Methods of Use
CA2844126C (en) Microvesicle membrane protein and application thereof
CN101665537A (en) Novel apoptosis test regent and related kit
AU624071B2 (en) General cancer-associated scm-recognition factor, preparation and method of use
Toh et al. Smooth-muscle-associated contractile protein in renal mesenchymal tumour cells and in transformed cells from DMN-injected rats
EP0771877A1 (en) Gene coding for modified bone morphogenic protein receptor
DE68904904T2 (en) SYNTHETIC SCM-ACTIVE, CANCER-DETECTING PEPTIDES.
JPH03503051A (en) Synthetic SCM-Active Cancer Recognition Peptide
JPH0257671B2 (en)
ZHANG et al. Expression and purification of goose HSP70 and compound formation with virus polypeptide
Fong et al. Infrared Spectroscopy of Crystalline Albumin in Human Neoplasia 1, 2
CN110862449A (en) SSX-derived tumor antigen short peptides
CN111138522A (en) Tumor Antigen Short Peptides Derived from AFP
Hoober The Differential Incorporation Of Amino Acids (in Vivo) Into Proteins Of The Newborn Rat Epidermis.
KEFALIDES Characterization of Canine Glomerular Basement Membrane
JPH0260983B2 (en)
JPS61158927A (en) Composition containing recognin and related substances