JPH02109983A - ヒトypt−1様遺伝子 - Google Patents
ヒトypt−1様遺伝子Info
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Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、新規なヒトYPT−1様遺伝子に関するもの
である。
である。
(従来技術及び発明が解決しようとする問題点)197
0年代より、動物細胞を癌化する遺伝子がいくつが単離
・同定されるようになった。その中で、ras遺伝子(
分子量的21.000)は、実際のヒトs(膀胱癌、大
腸癌、肺癌44)において点突然変異により活性化され
癌化の原因となることが知られている。
0年代より、動物細胞を癌化する遺伝子がいくつが単離
・同定されるようになった。その中で、ras遺伝子(
分子量的21.000)は、実際のヒトs(膀胱癌、大
腸癌、肺癌44)において点突然変異により活性化され
癌化の原因となることが知られている。
ras遺伝子のコードする蛋白質(p21)は細胞膜に
局在し、グアノシントIJ7オス7エー)(GTP)と
グ7ノシンジ7オス7エー)(GDP)との結合活性お
よびG T I)加水分解(G T P ase)活性
を持つ、いわゆるG蛋白質の性質を有している。
局在し、グアノシントIJ7オス7エー)(GTP)と
グ7ノシンジ7オス7エー)(GDP)との結合活性お
よびG T I)加水分解(G T P ase)活性
を持つ、いわゆるG蛋白質の性質を有している。
G蛋白質は、ホルモンなどいわゆる第1次情報伝達物質
の刺激を細胞内の真の標的物質へ伝達する仲立ちの役帛
を果すと考えられているが、例えば、ヒト癌から単離さ
れた点突然変異ras蛋白質はそのG T P ase
活性が極めて低い恒常的活性型であり、そのため常に細
胞増殖を促すシグナルを送り続け、細胞を癌化へ導くも
のと41測されている。
の刺激を細胞内の真の標的物質へ伝達する仲立ちの役帛
を果すと考えられているが、例えば、ヒト癌から単離さ
れた点突然変異ras蛋白質はそのG T P ase
活性が極めて低い恒常的活性型であり、そのため常に細
胞増殖を促すシグナルを送り続け、細胞を癌化へ導くも
のと41測されている。
このras遺伝子の機能を詳細に解析するために種々の
検討が行われ、その結果、該遺伝子に近縁な遺伝子がい
くつか同定されている。その1つとしてパン酵母の遺伝
子ライブラリーがらYPT−1遺伝子が単離・同定され
でいる。
検討が行われ、その結果、該遺伝子に近縁な遺伝子がい
くつか同定されている。その1つとしてパン酵母の遺伝
子ライブラリーがらYPT−1遺伝子が単離・同定され
でいる。
YPT−1遺伝子は、分子贋約23,500の蛋白質を
コードしており、細胞膜に局在する点、或いはGTP−
GDP結合活性およびG T P ase活性を有する
点でras遺伝子産物と同様の酵素蛋白質である。その
細胞内での機能はras同様詳細は不明であるが、細胞
骨格の構築、細胞分裂および細胞内蛋白輸送への関与が
M#測されている。
コードしており、細胞膜に局在する点、或いはGTP−
GDP結合活性およびG T P ase活性を有する
点でras遺伝子産物と同様の酵素蛋白質である。その
細胞内での機能はras同様詳細は不明であるが、細胞
骨格の構築、細胞分裂および細胞内蛋白輸送への関与が
M#測されている。
高等哺乳動物細胞のYPT−1様遺伝子としては、)I
anbruckらによりマウス由来の遺伝子[イー エ
ム ビー オー(EMBO)J、(>、、4049−4
053.19871や’l” Bcllotらによりラ
ット由来の遺伝子[プロシーディングズオプザナショナ
ルアカデミーサイエンシズオブザユーエスエー(P r
oe。
anbruckらによりマウス由来の遺伝子[イー エ
ム ビー オー(EMBO)J、(>、、4049−4
053.19871や’l” Bcllotらによりラ
ット由来の遺伝子[プロシーディングズオプザナショナ
ルアカデミーサイエンシズオブザユーエスエー(P r
oe。
N atl、A ead、 S ci、 U S A
)4−4,8210−8214.19871が単離され
ている6そして、Toucbctらは、4種類あるラッ
トYPT−1様遺伝子(rab−1。
)4−4,8210−8214.19871が単離され
ている6そして、Toucbctらは、4種類あるラッ
トYPT−1様遺伝子(rab−1。
−2、+ 3、−4 )のうちrab −1に相当する
ヒト細胞白米相補D N A (cD N A )を単
離したと報告している。
ヒト細胞白米相補D N A (cD N A )を単
離したと報告している。
(問題点を解決するための手段)
本発明者らは、ヒトバーキットリンパ腫における癌化機
構について染色体転座との関連を解析すべく鋭意検討し
ていたところ、新規なし) YPT−1様遺伝子の存在
を初めて見い出し、本発明を完成するに至った。
構について染色体転座との関連を解析すべく鋭意検討し
ていたところ、新規なし) YPT−1様遺伝子の存在
を初めて見い出し、本発明を完成するに至った。
即旭、本発明の要諭は、後述の第1図のアミノ酸配列で
表わされる蛋白質をコードするYPT−1様遺伝子およ
び第2図のDNA配列で表わされる蛋白質をコードする
YPT−1様遺伝子に存する。
表わされる蛋白質をコードするYPT−1様遺伝子およ
び第2図のDNA配列で表わされる蛋白質をコードする
YPT−1様遺伝子に存する。
以下に本発明の詳細な説明する。
本発明のヒトYPT−1様遺伝子は次のようにして得ら
れる。即ち、先ずヒトバーキットリンパ腫細胞、例えば
細胞株KOBK101[ノヤパニーズノヤーナルオブキ
ャンサー リサーチ(J pn、 J 、Cancer
Res、 L″77.24−27.19861、或い
はヒト前骨髄単核球性細胞、例えば細胞株U−937[
インターナシ謄ナルノヤーナルオブキャンサー(I n
t、 J 、Cancer)、37.565−577.
19761等を培養し、全RNAを抽出し、オリゴdT
セルロースカラムでポリA” RNAを単離する。これ
を用いて常法により、例えばλgtl17y−ノにパッ
ケージングしてcDNAライブラリーを作成する。
れる。即ち、先ずヒトバーキットリンパ腫細胞、例えば
細胞株KOBK101[ノヤパニーズノヤーナルオブキ
ャンサー リサーチ(J pn、 J 、Cancer
Res、 L″77.24−27.19861、或い
はヒト前骨髄単核球性細胞、例えば細胞株U−937[
インターナシ謄ナルノヤーナルオブキャンサー(I n
t、 J 、Cancer)、37.565−577.
19761等を培養し、全RNAを抽出し、オリゴdT
セルロースカラムでポリA” RNAを単離する。これ
を用いて常法により、例えばλgtl17y−ノにパッ
ケージングしてcDNAライブラリーを作成する。
得られたeDNAライブラリーを寒天培地上で培養しで
、プラークが出現した時点でニトロセルロースフィルタ
ーに移し、細胞株KOBKIOIのcDNAライブラリ
ーの場合は、ヒト免疫グロブリンに遺伝子、例えばその
コンスタント領域の則90Rg断片を、或いは第4図に
示すDNA配列で表わされるDNAのB sa、r −
1見R1断片を常法に従いラフオアイソトープでラベル
して、それをプローブとして使用し、ハイブリダイズし
て強いシグナルを与えるプラークを得る。尚、本発明に
於いてヒトYPT−1様遺伝子の塩基配列を後述の通り
決定したので、ヒ記プローブとしでかかる塩基配列の一
部のDNA断片、例えば第2図に示すDNA配列で表わ
されるDNAをその3°末端側にある制限酵素切断部忙
Qす11、ki、 i n−d m、む1.1等)で切
断したDNA断片を2個以ト用いることによって、容易
に目的とするcDNAをスクリーニングすることができ
る。
、プラークが出現した時点でニトロセルロースフィルタ
ーに移し、細胞株KOBKIOIのcDNAライブラリ
ーの場合は、ヒト免疫グロブリンに遺伝子、例えばその
コンスタント領域の則90Rg断片を、或いは第4図に
示すDNA配列で表わされるDNAのB sa、r −
1見R1断片を常法に従いラフオアイソトープでラベル
して、それをプローブとして使用し、ハイブリダイズし
て強いシグナルを与えるプラークを得る。尚、本発明に
於いてヒトYPT−1様遺伝子の塩基配列を後述の通り
決定したので、ヒ記プローブとしでかかる塩基配列の一
部のDNA断片、例えば第2図に示すDNA配列で表わ
されるDNAをその3°末端側にある制限酵素切断部忙
Qす11、ki、 i n−d m、む1.1等)で切
断したDNA断片を2個以ト用いることによって、容易
に目的とするcDNAをスクリーニングすることができ
る。
得られたプラークから77−ノDNAを単離し、Eco
RI等でDNAを切断して目的DNA11片を得、これ
を例えばM13ベクター等に組み込み、増幅して該DN
A断片を得てタデオキシ法等の常法に従い塩基配列を決
定する。
RI等でDNAを切断して目的DNA11片を得、これ
を例えばM13ベクター等に組み込み、増幅して該DN
A断片を得てタデオキシ法等の常法に従い塩基配列を決
定する。
本発明のヒトYPT−1様遺伝子は、第2図に示すDN
A配列を有し、ラット由来のras遺伝遺伝子実つであ
るYPT関連遺伝子のral)−2遺伝子と約92.2
%のホモロジーを示す。
A配列を有し、ラット由来のras遺伝遺伝子実つであ
るYPT関連遺伝子のral)−2遺伝子と約92.2
%のホモロジーを示す。
また、本発明のヒトYPT−1様遺伝子がコードする7
ミ/酸配列は第1図に示す通りで、212個のアミノ酸
から成る蛋白質である。そして、このアミノ酸コード領
域中には他のras遺伝遺伝子実様、4つのGTP結合
領域があり、GTP結合蛋白質の1つとして、細胞のシ
グナル伝達の経路に重要な役割をもつものと考えられる
。
ミ/酸配列は第1図に示す通りで、212個のアミノ酸
から成る蛋白質である。そして、このアミノ酸コード領
域中には他のras遺伝遺伝子実様、4つのGTP結合
領域があり、GTP結合蛋白質の1つとして、細胞のシ
グナル伝達の経路に重要な役割をもつものと考えられる
。
しかし、エフェクター領域のras共通のコンセンサス
配列は見い出されないので、本発明のアミノ酸212個
の蛋白質は、YPT−1遺伝子の蛋白質と類似した機能
を有し、狭義のras蛋白質のエフェクターとは異なる
エフェクターにシグナル伝達を行)ものと考えられる。
配列は見い出されないので、本発明のアミノ酸212個
の蛋白質は、YPT−1遺伝子の蛋白質と類似した機能
を有し、狭義のras蛋白質のエフェクターとは異なる
エフェクターにシグナル伝達を行)ものと考えられる。
更に、この212個のアミノ酸から成る蛋白質のC末端
にはりガン 2つの一→−残基が連って見い出された。これはras
遺伝遺伝子実通の性質で、パルミチン酸と結合し、細胞
形質膜の内側にこの蛋白質が局在する可能性を示唆して
いる。
にはりガン 2つの一→−残基が連って見い出された。これはras
遺伝遺伝子実通の性質で、パルミチン酸と結合し、細胞
形質膜の内側にこの蛋白質が局在する可能性を示唆して
いる。
(発明の効果)
本発明のヒトYPT−1様遺伝子は新規であり、該遺伝
子によりコードされている蛋白質はYPT−1蛋白質と
同様、細胞のシグナル伝達に関与し、細胞の情報伝達の
調節剤としての用途が期待される。
子によりコードされている蛋白質はYPT−1蛋白質と
同様、細胞のシグナル伝達に関与し、細胞の情報伝達の
調節剤としての用途が期待される。
(実施例)
以下に実施例を挙げて更に本発明を具体的に説明する。
実施例1
1、ポリA+RNAの単離
(1)バーキラ) +7ンパ肝細胞株KOBKIO1を
細胞培養液(10%牛脂児血清、RPMI1100U/
mlぺ二ンリン、0.002%炭酸水素ナトリウム、5
%二酸化炭素)中、36.5℃で浮遊培養して、約10
6細胞/1の培養液300m1を得た。
細胞培養液(10%牛脂児血清、RPMI1100U/
mlぺ二ンリン、0.002%炭酸水素ナトリウム、5
%二酸化炭素)中、36.5℃で浮遊培養して、約10
6細胞/1の培養液300m1を得た。
この培養液を遠心して細胞を集め、4Mグアニジン溶液
(4Mグアニノンチオシ7ネート、10曽Mトリスー塩
酸(pH7、4)、7%β−フルカプトエタノール)お
よび20%サルコシン溶液を加え、シリンジを用いて1
9デージ、22デーノおよび26デーシ針を3回ずつ通
した。
(4Mグアニノンチオシ7ネート、10曽Mトリスー塩
酸(pH7、4)、7%β−フルカプトエタノール)お
よび20%サルコシン溶液を加え、シリンジを用いて1
9デージ、22デーノおよび26デーシ針を3回ずつ通
した。
得られた処理液を5.7M塩化セシウム溶液1−。
に重層した後、30*000rpmで16時間遠心した
(0守40T10−ター)。
(0守40T10−ター)。
1−清を除去して沈澱したRNAに7.5M塩塩酸グア
ノノン溶液加えて溶解し、IM#酸、エタノールを加え
、−20℃で保存した。
ノノン溶液加えて溶解し、IM#酸、エタノールを加え
、−20℃で保存した。
(2)沈澱した細胞全RNへを遠心して集め、水に溶解
した。ここで得られた細胞全RNAの量は約3.3 m
gであった。
した。ここで得られた細胞全RNAの量は約3.3 m
gであった。
(3)得られた細胞全RNAをオリゴdTセルロースカ
ラムにかけて、溶出am液(10i*M)リス−塩酸(
1)H7,4)、1+*MEDTA)でポリA÷RNA
(約41μg)を得た。
ラムにかけて、溶出am液(10i*M)リス−塩酸(
1)H7,4)、1+*MEDTA)でポリA÷RNA
(約41μg)を得た。
11、cDNAライブラリーの作成
(1) eDN A 5yntl+esis
System Plus (アマジャム社!りを
用いて1−記1.で得たポリA”RNAの2本[eDN
Aを合成した。即ち、該ポリA”RNA5μgに10μ
mの5倍希釈第1鎖合成反応液、2.5μmビロリン酸
ナトリウム、2.5μm ヒト胎盤リボヌクレアーゼ阻
害剤、5μmデオ斗シヌクレオンドトリ7オス7二−ト
混合物、2.5μmオリゴdT、60Uリバーストラン
スクリプターゼおよ11.25μm 5°−[α−”2
P 1clCT P (アマジャム社製)を加え、42
℃で50分間反応させてcDNAの第1鎖を合成した。
System Plus (アマジャム社!りを
用いて1−記1.で得たポリA”RNAの2本[eDN
Aを合成した。即ち、該ポリA”RNA5μgに10μ
mの5倍希釈第1鎖合成反応液、2.5μmビロリン酸
ナトリウム、2.5μm ヒト胎盤リボヌクレアーゼ阻
害剤、5μmデオ斗シヌクレオンドトリ7オス7二−ト
混合物、2.5μmオリゴdT、60Uリバーストラン
スクリプターゼおよ11.25μm 5°−[α−”2
P 1clCT P (アマジャム社製)を加え、42
℃で50分間反応させてcDNAの第1鎖を合成した。
次いで、93.5μmの第2頻今成反応液、5μI5゛
−[α−コ’PldCTP、4U大腸菌RN ase
t−1,115U大vk菌DNAボlj/?−ゼlを加
え、更に水を加えて全量を250μmとして12℃で1
時間、次いで22℃で1時間反応させてcDNA第2鎖
を合成し、更に2Uの74 DNAポリメラーゼを加
え37°Cに保温し、冷却後3.5Uの大腸菌DNAポ
リメラーゼIのクレノー断片、(1,5MEDTAを加
えて良く混合した。
−[α−コ’PldCTP、4U大腸菌RN ase
t−1,115U大vk菌DNAボlj/?−ゼlを加
え、更に水を加えて全量を250μmとして12℃で1
時間、次いで22℃で1時間反応させてcDNA第2鎖
を合成し、更に2Uの74 DNAポリメラーゼを加
え37°Cに保温し、冷却後3.5Uの大腸菌DNAポ
リメラーゼIのクレノー断片、(1,5MEDTAを加
えて良く混合した。
71〕−ル:クロロホルム:イソアミルアルコール(2
5:24:1 )でDNAを抽出し、エタノールで沈澱
させて2本領cDNAを得た。5μdのポリA”RNA
から約2.4μgのcDNAが得られた。
5:24:1 )でDNAを抽出し、エタノールで沈澱
させて2本領cDNAを得た。5μdのポリA”RNA
から約2.4μgのcDNAが得られた。
(2) ヒ記2本41’(cDNAを19μmの水に溶
M!f&、cD N Aクローニングシステム(アマジ
ャム社製)を用いてcDNAライブラリーを得た。即h
、5倍希釈の7チレーシタン溶液6μl、S−7デ7シ
ルメチオニン溶液3μm、50U大腸薗EcaRIメチ
ラーゼを加えて37℃で1時間反応させた後、70°C
で10分間保温しメチラーゼを失活させた。
M!f&、cD N Aクローニングシステム(アマジ
ャム社製)を用いてcDNAライブラリーを得た。即h
、5倍希釈の7チレーシタン溶液6μl、S−7デ7シ
ルメチオニン溶液3μm、50U大腸薗EcaRIメチ
ラーゼを加えて37℃で1時間反応させた後、70°C
で10分間保温しメチラーゼを失活させた。
次いで、10倍希釈のライデージコン溶液4μ11Ec
oRIリンカ−2,5μl、(3UT4 DNAす〃
−ゼを加え、15℃で16時間保温した。ライデースを
失活させた後、EcoRlでリンカ−を切断し、リンカ
−分離用カラム(7マシヤム社製)により cDNAを
分離した。このcDNAの一部を7〃ロース電気泳動に
かけたところ、平均の大きさは約1 、2 kbpであ
った。
oRIリンカ−2,5μl、(3UT4 DNAす〃
−ゼを加え、15℃で16時間保温した。ライデースを
失活させた後、EcoRlでリンカ−を切断し、リンカ
−分離用カラム(7マシヤム社製)により cDNAを
分離した。このcDNAの一部を7〃ロース電気泳動に
かけたところ、平均の大きさは約1 、2 kbpであ
った。
(3)j−記cDNA200ngに1μHのEc。
R1切断5′−脱リン酸λgtllD N Aおよび1
μライプ−ジョン溶液、2,5UT4 DNAリガー
ゼを加え、水で全量10μmとして15℃で16時間反
応した後、Giga Pack Gold (パッケー
ジングキット、ストラテジーン社!りを用いてλ7T−
)にパッケージングして、7アーノcDNAライブラリ
ーを得た。
μライプ−ジョン溶液、2,5UT4 DNAリガー
ゼを加え、水で全量10μmとして15℃で16時間反
応した後、Giga Pack Gold (パッケー
ジングキット、ストラテジーン社!りを用いてλ7T−
)にパッケージングして、7アーノcDNAライブラリ
ーを得た。
[7,eDNAライブラリーのスクリーニング23X2
3c輸角シヤーレにLプロス寒天培地を固めた1−に、
11のブレーティングバクテリアと37℃で20分間反
応させた7T−)cDNAライブラリーを201の(1
,7%アがロースを含む1.ブロスと混合して流しいれ
た。固まった後培重してプラークが出現した時点で4℃
に冷却し、ニトロセルロースメンブレンフィルターに移
した。
3c輸角シヤーレにLプロス寒天培地を固めた1−に、
11のブレーティングバクテリアと37℃で20分間反
応させた7T−)cDNAライブラリーを201の(1
,7%アがロースを含む1.ブロスと混合して流しいれ
た。固まった後培重してプラークが出現した時点で4℃
に冷却し、ニトロセルロースメンブレンフィルターに移
した。
このフィルターを[モレキュラー クローニング1(コ
ールド スプリングハーバ−ラボラトリ−〆、1982
年)に記載の方法に従って変性処理し、ヒト免疫グロブ
リンに遺伝子のコンスタント領域の旦j、ρR12,7
kbp断片をマルチプライマー法でラジオアイソトープ
ラベルしたプローブと65℃で12時闇ハイブリグイズ
させ、強いシグナルを与える約40個のプラークを得た
。これらのプラークより一11記[モレキュラー クロ
ーニング1に記載の方法で77−)DNAを単離した。
ールド スプリングハーバ−ラボラトリ−〆、1982
年)に記載の方法に従って変性処理し、ヒト免疫グロブ
リンに遺伝子のコンスタント領域の旦j、ρR12,7
kbp断片をマルチプライマー法でラジオアイソトープ
ラベルしたプローブと65℃で12時闇ハイブリグイズ
させ、強いシグナルを与える約40個のプラークを得た
。これらのプラークより一11記[モレキュラー クロ
ーニング1に記載の方法で77−)DNAを単離した。
W、cDNAクローンの同定
得られた7T−ノDNAをEcoRIで切断してのクロ
ーンは、免疫グロブリンに鎖C領域の3゛側非翻訳頌域
をアンチセンスに読んだ後方に第4図に示すDNA配列
(直後にポリA及びEeoRIリンカ−が付いている)
が連絡していることが分つた。この塩基配列は、シーン
バンクデータベースのラットのrub−2遺伝子とホモ
ミノ−が高いことが分った。
ーンは、免疫グロブリンに鎖C領域の3゛側非翻訳頌域
をアンチセンスに読んだ後方に第4図に示すDNA配列
(直後にポリA及びEeoRIリンカ−が付いている)
が連絡していることが分つた。この塩基配列は、シーン
バンクデータベースのラットのrub−2遺伝子とホモ
ミノ−が高いことが分った。
V、eDNAライブラリーの作成
上記■、で得られたc D N Aクローンにrab−
2様蛋白質のコーティング領域全長を含んでいるものが
なかったので、ノザン法によるRNAの解析の結果、該
遺伝子mRNAの発現量が多かったヒト前骨髄単核球性
白血病細胞U937のcDNAライブラリーを作成して
、それからスクリーニングすることにした。
2様蛋白質のコーティング領域全長を含んでいるものが
なかったので、ノザン法によるRNAの解析の結果、該
遺伝子mRNAの発現量が多かったヒト前骨髄単核球性
白血病細胞U937のcDNAライブラリーを作成して
、それからスクリーニングすることにした。
(1)約2×10−個のtJ 937 II胞から前記
i、と同様の方法で約28μgのポIJA”RNAを得
た。このうち3μgのポリA”RNAを用い、前記■、
と同様にしてcDNAライブラリーを作成した。3μg
のポリA”RNAより約2μgの2本領cDNAが得ら
れた。
i、と同様の方法で約28μgのポIJA”RNAを得
た。このうち3μgのポリA”RNAを用い、前記■、
と同様にしてcDNAライブラリーを作成した。3μg
のポリA”RNAより約2μgの2本領cDNAが得ら
れた。
このcDNAを前記と同様にしてアマジャム社9!cD
N Aクローニングキットを用いて−pc+>Rrメ
チル化、EcoR1リンカ−付加、EcoRI切断した
後、リンカ−分離用カラムにより cDNAを分離した
。このcDNAの平均の大きさは約1 、5 kbpで
あった。
N Aクローニングキットを用いて−pc+>Rrメ
チル化、EcoR1リンカ−付加、EcoRI切断した
後、リンカ−分離用カラムにより cDNAを分離した
。このcDNAの平均の大きさは約1 、5 kbpで
あった。
このcDNA200ngを前記と同様にしてλHtl1
7y−ジにパッケージングして7アージcDNAライブ
ラリーを得た。
7y−ジにパッケージングして7アージcDNAライブ
ラリーを得た。
(2) このeDNAライブラリーを前記■、と同様に
して培養し、ニトロセルロースメンブレンフィルターに
移した。このフィルターを前記と同様に変性処理し、マ
ルチプライマー法でラジオアイソトープラベルしたPI
S4図に示すDNA配列でりを得た。
して培養し、ニトロセルロースメンブレンフィルターに
移した。このフィルターを前記と同様に変性処理し、マ
ルチプライマー法でラジオアイソトープラベルしたPI
S4図に示すDNA配列でりを得た。
かくして得られたクローンのうち10個を前記■、と同
様にしてDNA配列を決定したところ、その内の1つが
蛋白質コーディング全領域を含んでいることが分った。
様にしてDNA配列を決定したところ、その内の1つが
蛋白質コーディング全領域を含んでいることが分った。
その結果をff13図に示した。
第3図から分るように、本発明の遺伝子は212個のア
ミノ酸をコードしており、4つのGTP結合領域を有し
ている。
ミノ酸をコードしており、4つのGTP結合領域を有し
ている。
第1図は、本発明のYPT−1様遺伝子のコードするア
ミノ酸配列を示す図面である。但し、図中でAはアラニ
ン、Rはフルギニン、Nは7スバラギン、Dはアスパラ
ギン酸、Cはシスティン、Qはグルタミン、Eはグルタ
ミン酸、Gはグリシン、■1はヒスチジン、■はインロ
イシン、Lはロイシン、Kはリジン、Mはメチオニン、
Fはフェニルアラニン、Pはブaリン、Sはセリン、T
はスレオニン、Wはトリプト7Tン、Yはチロシン、■
はバリンのそれぞれのアミノ酸を表わす。 第2図は、本発明のYPT−1様遺伝子のDNA配列を
示す図面である。 #S3図は、実施例1で得られたcD N AのDNA
配列を示す図面である。図中、本発明のYPT−1様遺
伝子のコードするアミノ酸配列を第1図と同様に1文字
表記で塩基配列の対応部分に示した。また、GTP結合
領域を下線で示した。 第4図は、 実施例1の■、で得られた DNA 男 因 の部分DNA配列を示す図面である。
ミノ酸配列を示す図面である。但し、図中でAはアラニ
ン、Rはフルギニン、Nは7スバラギン、Dはアスパラ
ギン酸、Cはシスティン、Qはグルタミン、Eはグルタ
ミン酸、Gはグリシン、■1はヒスチジン、■はインロ
イシン、Lはロイシン、Kはリジン、Mはメチオニン、
Fはフェニルアラニン、Pはブaリン、Sはセリン、T
はスレオニン、Wはトリプト7Tン、Yはチロシン、■
はバリンのそれぞれのアミノ酸を表わす。 第2図は、本発明のYPT−1様遺伝子のDNA配列を
示す図面である。 #S3図は、実施例1で得られたcD N AのDNA
配列を示す図面である。図中、本発明のYPT−1様遺
伝子のコードするアミノ酸配列を第1図と同様に1文字
表記で塩基配列の対応部分に示した。また、GTP結合
領域を下線で示した。 第4図は、 実施例1の■、で得られた DNA 男 因 の部分DNA配列を示す図面である。
Claims (2)
- (1)下記アミノ酸配列で表わされる蛋白質をコードす
るヒトYPT−1様遺伝子。 【遺伝子配列があります】 (式中、Aはアラニン、Rはアルギニン、Nはアスパラ
ギン、Dはアスパラギン酸、Cはシステイン、Qはグル
タミン、Eはグルタミン酸、Gはグリシン、Hはヒスチ
ジン、Iはイソロイシン、Lはロイシン、Kはリジン、
Mはメチオニン、Fはフェニルアラニン、Pはプロリン
、Sはセリン、Tはスレオニン、Wはトリプトファン、
Yはチロシン、Vはバリンのそれぞれのアミノ酸を表わ
す。) - (2)下記DNA配列で表わされるヒトYPT−1様遺
伝子。 【遺伝子配列があります】
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP26207488A JPH02109983A (ja) | 1988-10-18 | 1988-10-18 | ヒトypt−1様遺伝子 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP26207488A JPH02109983A (ja) | 1988-10-18 | 1988-10-18 | ヒトypt−1様遺伝子 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02109983A true JPH02109983A (ja) | 1990-04-23 |
Family
ID=17370668
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP26207488A Pending JPH02109983A (ja) | 1988-10-18 | 1988-10-18 | ヒトypt−1様遺伝子 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02109983A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013238609A (ja) * | 2007-05-18 | 2013-11-28 | Inst Curie | 膀胱癌における治療標的としてのp38α |
-
1988
- 1988-10-18 JP JP26207488A patent/JPH02109983A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013238609A (ja) * | 2007-05-18 | 2013-11-28 | Inst Curie | 膀胱癌における治療標的としてのp38α |
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