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JPH01262461A - Concentration measuring apparatus - Google Patents

Concentration measuring apparatus

Info

Publication number
JPH01262461A
JPH01262461A JP63074894A JP7489488A JPH01262461A JP H01262461 A JPH01262461 A JP H01262461A JP 63074894 A JP63074894 A JP 63074894A JP 7489488 A JP7489488 A JP 7489488A JP H01262461 A JPH01262461 A JP H01262461A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
electrode
platinum
glucose
concentration measuring
working electrode
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP63074894A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Peter Bennet Hugh
ヒュー・ピーター・ベネット
Michel Daileini Gerald
ジェラルド・マイケル・ディレイニー
Richard Mason Jeremy
ジェレミー・リチャード・メイスン
Frank Thurstone Christopher
クリストファー・フランク・サーストン
Laing Stirling John
ジョン・レイング・スティアリング
Robert Dikaiser David
デヴィット・ロバート・ディケイザー
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Cambridge Life Sciences PLC
Original Assignee
Cambridge Life Sciences PLC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Cambridge Life Sciences PLC filed Critical Cambridge Life Sciences PLC
Priority to JP63074894A priority Critical patent/JPH01262461A/en
Publication of JPH01262461A publication Critical patent/JPH01262461A/en
Pending legal-status Critical Current

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  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

PURPOSE: To enhance response and stability by employing a working electrode in which a porous three-dimensional structure composed of carbon particles coated with a platinum group element and a polymer binder is employed as a conductive support and an organic catalyst is fixed thereto. CONSTITUTION: The concentration measuring apparatus is provided with a working electrode 2, a reference electrode 3 and a counter electrode 4 connected with a potentiostat and the electrodes 2, 3, 4 are immersed into a liquid to be examined in a container 5, e.g. a beaker. The electrode 2 employs a porous three-dimensional structure composed of carbon particles and graphite particles fixed through a polymer binder as a conductive support wherein the particles are coated uniformly with a platinum group element. An organic catalyst, e.g. oxygen, is fixed in the pore of a porous carbon substrate to take conformation. This arrangement enhances response and stability.

Description

【発明の詳細な説明】 A、産業上の利用分野 本発明は(被検液に浸した作用電極と対極間に流れる電
流により被験物質の濃度を測定する濃度測定装置に関す
るものであり、特に有機触媒が被験物質に作用して電子
の流れを発生させる濃度測定装置に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION A. Field of Industrial Application The present invention relates to a concentration measuring device for measuring the concentration of a test substance using a current flowing between a working electrode and a counter electrode immersed in a test liquid. This invention relates to a concentration measuring device in which a catalyst acts on a test substance to generate a flow of electrons.

B、従来の技術 例えば、還元性基質であるグルコースの分析は、その臨
床上、産業上、および商業上重要であることから従来よ
り盛んに研究されており、実際に研究や制御の分野では
、pHや酸素の定量等のmm的な分析測定法と同じ位の
頻度で実施しているところも多い。
B. Conventional technology For example, the analysis of glucose, a reducing substrate, has been actively researched due to its clinical, industrial, and commercial importance.In fact, in the fields of research and control, In many places, this is performed as frequently as mm-based analytical measurement methods such as pH and oxygen quantification.

−1に、グルコース分析は、グルコースオキシダーゼが
グルコースに作用して過酸化水素を生ずるという反応を
利用しており、例えば過酸化水素の二次反応を利用する
比色分析法、あるいはグルコノラクトンが速やかに加水
分解されてグルコン酸となることを利用した伝導率測定
法等の物理化学的測定法等が行われている。
-1, glucose analysis uses a reaction in which glucose oxidase acts on glucose to produce hydrogen peroxide; for example, a colorimetric method that uses a secondary reaction of hydrogen peroxide, or a Physicochemical measurement methods such as conductivity measurement methods that utilize the fact that gluconic acid is rapidly hydrolyzed into gluconic acid have been used.

しかしながら、これらの方法では応答速度が遅いことが
多く、また場合によってはかなりの範囲で変動する試料
中の溶存酸素濃度の影響を受けやずいという欠点を有す
る。
However, these methods often have slow response times and have the disadvantage of being sensitive to the dissolved oxygen concentration in the sample, which can vary over a considerable range in some cases.

そこで近年、酵素等の有機触媒を利用した電気式の測定
機器が提案されている。−例として、グルコースの検出
にグルコースオキシダーゼを応用する場合を説明すると
、先ず過酸化水素が定電位にセットされた電極の表面で
酸化されて電子を放出し、この電子の移動に伴って電気
信号が生成される。適当な条件下では、反応に基づく電
流値は被験物質の濃度に比例する。
Therefore, in recent years, electric measuring instruments using organic catalysts such as enzymes have been proposed. - As an example, to explain the case where glucose oxidase is applied to the detection of glucose, first hydrogen peroxide is oxidized on the surface of an electrode set at a constant potential and releases electrons, and as the electrons move, an electrical signal is generated. is generated. Under appropriate conditions, the response-based current value is proportional to the concentration of the test substance.

ただし、前記の反応をそのまま利用したのでは応答速度
が遅いことから、酵素から電極へ直接電子が移動するこ
とによる過酸化水素の副生を利用することが考えられて
いる。そして、この場合、直接的な機構は達成され難い
ため、反応系中に電子キャリアが存在することが必要で
あるとされている。
However, if the above reaction is used as it is, the response speed is slow, so it has been considered to utilize the by-product of hydrogen peroxide due to the direct transfer of electrons from the enzyme to the electrode. In this case, since a direct mechanism is difficult to achieve, it is said that the presence of electron carriers in the reaction system is necessary.

この電子キャリアは、電子受容体である酸素の代役を果
たし、酸化型の時には酵素から電子を奪い、還元型の時
には電子をTLiへ渡し、それ自身は再び酸化型に戻る
0例えば、フェロセンを電子キャリアとするものでは、
試t4中の溶存酸素の影響を比較的少は難いことがわか
っている。
This electron carrier acts as a substitute for oxygen, which is an electron acceptor, and takes electrons from the enzyme when it is in the oxidized form, transfers the electron to TLi when it is in the reduced form, and returns to its oxidized form. As a career,
It has been found that it is difficult to reduce the influence of dissolved oxygen during test t4.

しかしながら、前述の電子キャリアを使用するものでは
、当該電子キャリア自体が不安定であること、電子キャ
リアを電極中に安定に保持することが難しいこと等の問
題がある。
However, those using the above-mentioned electron carriers have problems such as that the electron carriers themselves are unstable and that it is difficult to stably hold the electron carriers in the electrodes.

C8発明が解決しようとする課題 上述のように、従来知られる濃度測定装置の多くは、再
現性、応答性、安定性、111定濃度可能範囲等が限ら
れており、より簡便かつ迅速であり、汎用性のある分析
装置の出現が待たれている。
C8 Problems to be Solved by the Invention As mentioned above, many of the conventionally known concentration measuring devices have limited reproducibility, responsiveness, stability, 111 constant concentration range, etc. , the emergence of a versatile analytical device is awaited.

本発明はかかる従来の実情に鑑みて提案されたものであ
って、高速応答性、長期安定性に優れ、しかも初心者に
も容易に取り扱うことができる濃度測定装置を提供する
ことを目的とする。
The present invention has been proposed in view of the conventional situation, and an object of the present invention is to provide a concentration measuring device that is excellent in high-speed response and long-term stability, and can be easily handled even by beginners.

さらに本発明は、試料中の酸素濃度にほとんど影響され
ない濃度測定装置を提供することを目的とする。
A further object of the present invention is to provide a concentration measuring device that is hardly affected by the oxygen concentration in a sample.

D0課凹を解決するための手段 本発明者等は、前述の目的を達成せんものと長期に亘り
鋭意研究を重ねた結果、作用電極に掻めて触媒活性の高
い白金族元素被膜付きカーボン電iを使用することで、
酸素を共反応物質として電子キャリアを介さずに掻めて
速い電子移動が行われるとの知見を得るに至った。
Means for Solving the D0 Problem The inventors of the present invention have conducted intensive research over a long period of time in order to achieve the above-mentioned objective, and have developed a carbon electrode coated with a platinum group element with high catalytic activity as a working electrode. By using i,
We have come to the knowledge that rapid electron transfer can be achieved by using oxygen as a co-reactant without involving electron carriers.

本発明は、このような知見に基づいて完成されたもので
あって、作用電極、対掻及び参照電橋がポテンショスタ
ンドに接続されてなり、前記作用tiは白金族元素が被
着されたカーボン粒子と高分子結合剤とからなる多孔質
三次元構造体を導電性支持体とし、有機触媒が固定され
ていることを特徴とするものである。
The present invention was completed based on such findings, and consists of a working electrode, a counter electrode, and a reference bridge connected to a potentiometer stand, and the working electrode is made of carbon coated with a platinum group element. It is characterized in that a porous three-dimensional structure consisting of particles and a polymeric binder is used as a conductive support, and an organic catalyst is immobilized thereon.

なお、前記作用電極には、保護膜が形成されていること
が好ましく、かかる保護膜としては被験物質を透過し得
る微細孔を有するポリカーボネート膜が好適である。
In addition, it is preferable that a protective film is formed on the working electrode, and a polycarbonate film having micropores through which the test substance can pass is suitable as such a protective film.

81作用 本発明の濃度測定装置において、特に作用電極の電極基
板材料は、極めて不均一な性質を有している。このこと
は、それだけ架橋構造に多様性をもたらし、三次元構造
にも様々な配向が現れる可能性を高めるものである。架
橋剤を使用しない場合でも表面吸着は強く現れる。
81 Effect In the concentration measuring device of the present invention, the electrode substrate material of the working electrode in particular has extremely non-uniform properties. This brings diversity to the crosslinked structure and increases the possibility that various orientations will appear in the three-dimensional structure. Even when no crosslinking agent is used, surface adsorption appears strongly.

このような炭素質基板の空孔には酸素が入り込むことが
でき、有機触媒(酵素)の表面積を広げ、安定性および
活性に支障をきたさない立体配座をとらせるのに役立つ
、この点は、白金、ガラス状カーボンあるいはグラファ
イトといった比較的平坦ではるかに表面積も小さい面上
に酵素が結合されており、結果として酵素のとり得る立
体配座が制限されているような従来の結合様式との大き
な違いである。しかも、本発明にかかる作用TL掻の応
答性は1〜2秒と極めて早く、酵素活性の高いことはも
ちろん、電極自身に電子受容部位が多く存在することに
より電子移動が極めて速やかに行われていることを物語
っている。このことは、微細構造中の非常に広い面積に
わたって白金被膜付きカーボン粒子が高密度に存在し、
表面の白金と酵素の活性部位とが首゛尾良く接近できる
ようになっているためである。
This point is that oxygen can enter into the vacancies of such carbonaceous substrates, which increases the surface area of the organic catalyst (enzyme) and helps it adopt a conformation that does not interfere with its stability and activity. This is different from traditional binding modes in which the enzyme is attached to a relatively flat surface with a much smaller surface area, such as platinum, glassy carbon, or graphite, which limits the possible conformations of the enzyme. That's a big difference. Furthermore, the responsiveness of the action TL according to the present invention is extremely fast at 1 to 2 seconds, and not only is the enzyme activity high, but also the electrode itself has many electron accepting sites, so electron transfer occurs extremely quickly. It shows that there is. This means that platinum-coated carbon particles exist at a high density over a very wide area in the microstructure.
This is because the platinum on the surface and the active site of the enzyme can successfully approach each other.

F、実施例 以下、本発明を具体的な実施例に基づいて説明する。な
お、本発明がこれら実施例に限定されるものでないこと
は言うまでもない。
F. Examples The present invention will be explained below based on specific examples. It goes without saying that the present invention is not limited to these Examples.

74度測定装置は、基本的には第1図に示すように、ボ
テンシジスタノト(1)と接続される作用電極(2)、
参照電極(3)、対極(4)とからなるものであって、
ビー力等の容器(5)中の被検液(6)にこれら各U*
 (2) 、 (3) 、 (4)を浸漬することで被
験物質の:;度を検出するものである。
The 74 degree measuring device basically consists of a working electrode (2) connected to a potentiometer (1), as shown in FIG.
It consists of a reference electrode (3) and a counter electrode (4),
Add each of these U* to the test liquid (6) in the container (5)
By immersing (2), (3), and (4), the concentration of the test substance is detected.

前記参照電極(3)及び対極(4)は、通常のものがい
ずれも使用でき、例えば参照電極(3)としては恨−塩
化銀電極、対極(4) としては白金箔等である。
As the reference electrode (3) and the counter electrode (4), any conventional electrode can be used, for example, the reference electrode (3) is a silver chloride electrode, and the counter electrode (4) is a platinum foil.

また、ここでは作用電極(2)1参照電極(3)、対極
(4)のいずれも同一の容器(5)内の被検液(6)に
浸漬されているが、特に対極(4)に関しては塩橋を介
して前記容器(5)と接続される別の容器内の緩衝液等
に浸漬するようにしてもよい、さらには、前記参照電極
(3)に対極(4)としての役割を持たせ、当該対極(
4)を省略して2電橿系の装置としてもよい。
In addition, here, the working electrode (2), the reference electrode (3), and the counter electrode (4) are all immersed in the test liquid (6) in the same container (5), but especially regarding the counter electrode (4), The reference electrode (3) may be immersed in a buffer solution or the like in another container connected to the container (5) via a salt bridge. Hold, the opposite pole (
4) may be omitted and a two-electrode type device may be used.

一方、ここで使用される作用電極(2)は、高分子結合
剤により結合されたカーボン粒子あるいはグラファイト
粒子から成る極めて不均一な多孔質三次元構造体をR電
性支持体とするもので、前記カーボン粒子あるいはグラ
ファイト粒子(以下、単にカーボン粒子と言う、)には
白金族元素が被着されていることから、この導電性支持
体には白金族元素が極めて均一に分散された形となって
いる。
On the other hand, the working electrode (2) used here uses an extremely non-uniform porous three-dimensional structure consisting of carbon particles or graphite particles bonded by a polymeric binder as an R-electrode support. Since platinum group elements are adhered to the carbon particles or graphite particles (hereinafter simply referred to as carbon particles), the platinum group elements are extremely uniformly dispersed in this conductive support. ing.

上記カーボン粒子としては、後に行われる有機触媒(酵
素)の固定化に支障を来さないものであれば如何なるも
のを使用してもよく、このためには酸化された官能基を
表面に多く有するものが使用される。このようなカーボ
ン粒子は、酵素を良く吸着することができないガラス状
カーボンとは全く対照的なものである0粒径は3〜50
nm、より好ましくは5〜30nmである。
Any carbon particles may be used as the carbon particles as long as they do not interfere with the subsequent immobilization of the organic catalyst (enzyme). things are used. Such carbon particles are in stark contrast to glassy carbon, which cannot adsorb enzymes well.
nm, more preferably 5 to 30 nm.

上記カーボン粒子上へ白金族元素(例えば白金。A platinum group element (e.g. platinum) is added onto the carbon particles.

パラジウム等、勿論、ルテニウムやロジウム等の他の白
金族元素であってもこれらの代用となり得る。)を析出
させる方法としては、蒸着、電気化学的析出、あるいは
コロイド懸濁液からの単純吸友 着等が考えられ、その析出量の範囲は簡素の重量を基準
として1〜20重量%、より望ましくは5〜15重世%
である。しかし、上記範囲は絶対的なものではな(、実
用上の観点から決められたちのである。白金族元素の析
出量が1重量%未満の場合には、信号強度が低下して測
定困難となる。
Not only palladium, but also other platinum group elements such as ruthenium and rhodium can be substituted for these. ) can be deposited by vapor deposition, electrochemical deposition, or simple adsorption from a colloidal suspension, and the amount of precipitation ranges from 1 to 20% by weight based on the simple weight, and Preferably 5-15%
It is. However, the above range is not absolute (it is determined from a practical point of view). If the amount of precipitated platinum group elements is less than 1% by weight, the signal intensity will decrease and measurement will be difficult. .

逆に、析出量が20重重量よりも大きいと、コスト高と
なる割には応答速度や感度の改善が少なく、実際のとこ
ろ析出量が掻端に多いときにはかえって感度が低下する
。したがって、カーボン粒子上に白金被膜あるいはパラ
ジウム被膜を形成するには、例えば塩化白金酸等の化合
物の酸化分解によるか、あるいは例えば酸化されやすい
配位子を有する白金あるいはパラジウム錯体等を使用し
てコロイド状の白金あるいはパラジウム等を直接にカー
ボン粒子表面へ析出させることが好ましい。
On the other hand, when the amount of precipitation is greater than 20 weight, the improvement in response speed and sensitivity is small in spite of the high cost, and in fact, when the amount of precipitation is extremely large, the sensitivity actually decreases. Therefore, in order to form a platinum film or a palladium film on carbon particles, for example, by oxidative decomposition of a compound such as chloroplatinic acid, or by using, for example, a platinum or palladium complex having a ligand that is easily oxidized, colloidal It is preferable to directly deposit platinum, palladium, etc. on the surface of carbon particles.

このようにして白金あるいはパラジウム等の白金族元素
の被膜を形成したカーボン粒子を、次に適当な高分子結
合剤を使用して成形する。
The carbon particles thus coated with a platinum group element such as platinum or palladium are then molded using a suitable polymeric binder.

この場合、高分子材料を結合剤として上記の白金被膜付
きあるいはパラジウム被膜付きカーボン粒子を主体とす
る完全な自立型多孔質三次元構造体を成形してもよいし
、多孔質三次元構造体層を金属、炭素、グラファイト等
の導電性基板の表面に形成するようにしてもよい、後者
の場合、前記導電性基板として特に好ましいものとして
は、例えばカーボン紙や開花型カーボン布等が挙げられ
る。
In this case, a completely self-supporting porous three-dimensional structure mainly composed of the above-mentioned platinum-coated or palladium-coated carbon particles may be formed using a polymeric material as a binder, or a porous three-dimensional structure layer may be formed. may be formed on the surface of a conductive substrate made of metal, carbon, graphite, etc. In the latter case, particularly preferable materials for the conductive substrate include, for example, carbon paper and flower-shaped carbon cloth.

空孔率をできるだけ大きくとるためには、結合剤として
使用する高分子材料の量を作用電極の構造性と安定性を
確保するために必要最小限とする。
In order to maximize the porosity, the amount of polymeric material used as a binder is minimized to ensure the structural integrity and stability of the working electrode.

このときの作用電極の厚さは、例外もあるが0.1〜0
.5 +n程度かあるいはこれ以下とされるのが普通で
ある。構造性8m械的強度、および空孔率を適性化する
観点から、高分子結合剤の量は白金被膜付きあるいはパ
ラジウム被膜付きカーボン粒子の重量を基準として、最
低でも5〜IO重債%、多くとも80重量%に選ばれ、
通常は30〜70j1量%の範囲とされる。
The thickness of the working electrode at this time is 0.1 to 0, although there are exceptions.
.. It is usually about 5+n or less. From the viewpoint of optimizing structural properties, mechanical strength, and porosity, the amount of polymeric binder should be at least 5 to IO%, or more, based on the weight of the platinum-coated or palladium-coated carbon particles. Both were selected to be 80% by weight,
It is usually in the range of 30 to 70j1% by weight.

高分子結合剤としては、導電性、半導電性のものを含め
てあらゆる種類のものが使用できるが、合成フッ素樹脂
、特にポリテトラフルオロエチレンが好ましい、酸化の
過程を考慮すると、この高分子結合剤は酸素通過性であ
ることが必要である。
All kinds of polymeric binders can be used, including conductive and semiconductive ones, but synthetic fluororesins, especially polytetrafluoroethylene, are preferred. It is necessary that the agent be permeable to oxygen.

このため、上記高分子結合剤は大気圧下で酸素溶解度が
最小でなければならず、その値は常温常圧下で高分子結
合剤!dあたり少なくとも酸素2×10−’−とする。
Therefore, the above polymer binder must have the minimum oxygen solubility under atmospheric pressure, and that value is the same as that of a polymer binder at room temperature and pressure. At least 2×10−'− of oxygen per d.

したがって、使用できる高分子結合剤としては、ポリテ
トラフルオロエチレン等のフッ素樹脂、ポリメタクリル
酸エチル、ポリスチレン、ポリ酢酸ビニル、ポリ塩化ビ
ニル、ポリカーボネート、ポリ (4−メチルペンテン
−1)、ポリイソプレン、ポリクロロプレン、ポリ1.
 3−ブタジェン、シリコンゴム等である。
Therefore, usable polymeric binders include fluororesins such as polytetrafluoroethylene, polyethyl methacrylate, polystyrene, polyvinyl acetate, polyvinyl chloride, polycarbonate, poly(4-methylpentene-1), polyisoprene, Polychloroprene, poly1.
3-butadiene, silicone rubber, etc.

上述のような導電性支持体には、酵素等の有機触媒を固
定化する必要があるが、その固定化の方法としては、カ
ルボジイミドやカルボジイミダゾールを介した共有結合
法、1,6−シニトロー3゜4−ジフルオロベンゼン(
DFDNB)を介した共有結合法、グルタルアルデヒド
を利用した架橋法等を始めとする従来公知のあらゆる方
法を採用することができる。−例として、グルコースオ
キシダーゼを固定化するには、■−シクロへキシル−3
−(2−モルフォリノ)カルボジイミドのp−メチルト
ルエンスルホン酸塩の酢酸緩衝液溶液とグルコースオキ
シダーゼの酢酸緩衝液に順次浸漬するカルボジイミド処
理や、N、N’−力ルボニルジイミダゾールの無水ジメ
チルホルムアミド溶液とグルコースオキシダーゼ溶液に
順次浸漬するカルボニルジイミダゾール処理、1,6−
シニトロー3.4−ジフルオロベンゼンのメタノール溶
液とグルコースオキシダーゼ溶液に順次浸漬するDFD
NB処理等によればよい。
It is necessary to immobilize an organic catalyst such as an enzyme on the conductive support described above, and methods for immobilization include covalent bonding via carbodiimide or carbodiimidazole, and 1,6-sinitroin. 3゜4-difluorobenzene (
Any conventionally known method can be employed, including a covalent bonding method via DFDNB), a crosslinking method using glutaraldehyde, and the like. -For example, to immobilize glucose oxidase, ■-cyclohexyl-3
- (2-morpholino) carbodiimide treatment by immersing p-methyltoluenesulfonate in an acetate buffer solution and glucose oxidase in an acetate buffer solution, or an anhydrous dimethylformamide solution of N,N'-carbonyldiimidazole. Carbonyldiimidazole treatment by sequential immersion in glucose oxidase solution, 1,6-
DFD sequentially immersed in a methanol solution of Sinitro 3.4-difluorobenzene and a glucose oxidase solution
NB processing or the like may be used.

かかる固定化の工程に例えばジメチルマロニミダードや
ジメチルスへりミダードといったシミダート基等の可変
長鎖状を有する二官能基を含む他種の高分子結合剤を用
いることもできる。
Other types of polymeric binders containing bifunctional groups with variable chain lengths such as cimidate groups such as dimethylmalonimidad and dimethylshemidad can also be used in this immobilization step.

また、酵素の種類によっては、架橋法等によらずに導電
性支持体に酵素を物理吸着して固定化する単純吸着が効
果的である場合もある。
Furthermore, depending on the type of enzyme, simple adsorption in which the enzyme is physically adsorbed and immobilized on a conductive support without using a crosslinking method or the like may be effective.

作用電極(2)の表面は通常ポリカーボネート等の適当
な多孔質の保護3膜若しくは保護膜を設けることにより
物理的に保護することができる。もっとも上記の保護薄
膜、保護膜は、定最されるグルコース等の酵素基質をi
3遇させ得るものでなければならないことは言うまでも
ない、これらの保!!!膜を設けると通常は応答速度が
遅くなるので、その点不利といえなくもないが、本発明
にかかる濃度測定装置においてはかかる保護膜が設けら
れていても従来の測定装置に比べてひけを取らぬし、む
しろ多くの場合実質的に優れていると言える。
The surface of the working electrode (2) can usually be physically protected by providing a suitable porous protective layer or protective film such as polycarbonate. However, the above-mentioned protective thin film and protective film are used to protect the fixed enzyme substrate such as glucose.
It goes without saying that these guarantees must be able to give you three benefits! ! ! Providing a film usually slows down the response speed, which can be considered a disadvantage, but the concentration measuring device according to the present invention, even with such a protective film, is still inferior to conventional measuring devices. In fact, it can be said that it is actually superior in many cases.

次に、本発明者等が実際に組立てた濃度測定装置の構成
例並びにこれを使用して測定した測定結果について詳述
する。
Next, an example of the configuration of a concentration measuring device actually assembled by the present inventors and measurement results obtained using the device will be described in detail.

ここで使用したベース電極は、プラチナ被覆カーボンブ
ランク粒子を含有する導電性カーボン紙で出来ている。
The base electrode used here is made of conductive carbon paper containing platinum-coated carbon blank particles.

ここで、上記白金被膜付きカーボン紙に使用されている
白金被膜付きカーボン粒子(パルカンXC−72)は、
過酸化水素による白金CI+)亜硫酸錯体の酸化的分解
によりコロイド状白金(粒径1.5から2.5nm>を
カーボン粒子(公称粒径30nm)の表面に析出させた
ものである。このカーボン粒子は、さらに市販のグラフ
ァイト化カーボン紙の表面に約50ft1%のポリテト
ラフルオロエチレンを使用して形成・結合されている。
Here, the platinum-coated carbon particles (Palcan XC-72) used in the platinum-coated carbon paper are as follows:
Colloidal platinum (particle size 1.5 to 2.5 nm) is precipitated on the surface of carbon particles (nominal particle size 30 nm) by oxidative decomposition of platinum CI+) sulfite complex with hydrogen peroxide. was further formed and bonded to the surface of commercially available graphitized carbon paper using about 50 ft 1% polytetrafluoroethylene.

最終的な白金含量は0.24噌/−である、このカーボ
ン素材は不均一な三次元構造を有し、酸化された表面の
官能基と共に架橋剤の助けを借りて酵素を取り込むのに
役立つ、ベース電極は6.5fi径の円盤状に切り抜き
、後述の方法に従った処理を行った。
The final platinum content is 0.24 oz/-, this carbon material has a non-uniform three-dimensional structure, which together with oxidized surface functional groups helps to incorporate enzymes with the help of cross-linking agents. The base electrode was cut out into a disk shape with a diameter of 6.5 fi, and processed according to the method described below.

酵素は各種の架橋剤を使用してカーボン表面に固定化す
ることができる。使用する架橋剤の効果には一般に大差
なく、したがって架橋剤の1!II頂はヘース電梅の性
質に比べてそれほど重要な意味を持たないものと思われ
る。架橋剤としてはl−シクロへキシル−3−(2−モ
ルフォリノ)カルボジイミドp−メチルトルエンスルホ
ン酸(シグマ製社)が便利であり、本例でもこれを使用
している。グルコースオキシダーゼ(EC1,1,3゜
4、アスペルギルス・ニジエール由来、アンターソン・
ラボラトリーズ)は比活性2601U、−1の標品を使
用した。酵素のストック溶液はその都度Q、 l M酢
酸カリウム緩衝液(pH5,6)を用いてA11製し、
4℃で保存した。
Enzymes can be immobilized on carbon surfaces using various crosslinking agents. There is generally no significant difference in the effectiveness of the crosslinking agents used; The II summit seems to have less significance than the nature of the Hess Denmei. As a crosslinking agent, 1-cyclohexyl-3-(2-morpholino)carbodiimide p-methyltoluenesulfonic acid (manufactured by Sigma) is convenient, and is used in this example as well. Glucose oxidase (EC1,1,3°4, derived from Aspergillus niger, Anderson
Laboratories) used a standard product with a specific activity of 2601 U, -1. Enzyme stock solutions were prepared in each case in A11 using Q, 1M potassium acetate buffer (pH 5,6);
Stored at 4°C.

ri極の作成にあたっては、円盤状に切り抜いたカーボ
ン紙をまずエタノールに5分間浸漬して電極表面を十分
にぬらし、次に蒸溜水で完全に洗浄した。この電極表面
をカルボジイミドで修飾するため、上記p H4,5の
酢酸ナトリウム緩衝液を使用したO、 l Mカルボジ
イミド溶液に室温にて90分間浸漬した。上記円盤を蒸
溜水で完全に洗浄した後、グルコースオキシダーゼ’a
f!Lc酢酸ナトリウム!街液に5. Q tgm 1
2−’の濃度に溶解、p H5゜6)に室温にて90分
間浸漬した。最後に0.1Mの酢酸ナトリウム緩衝液(
pH5,6>で十分に洗浄し、同じ緩衝液に浸漬した状
態で4℃にて保存した。
To create the ri electrode, a carbon paper cut into a disk shape was first immersed in ethanol for 5 minutes to sufficiently wet the electrode surface, and then thoroughly washed with distilled water. In order to modify the electrode surface with carbodiimide, it was immersed for 90 minutes at room temperature in an O, 1 M carbodiimide solution using the above-mentioned pH 4.5 sodium acetate buffer. After thoroughly washing the above disc with distilled water, glucose oxidase'a
f! Lc sodium acetate! 5. To street liquid. Q tgm 1
2-' concentration, pH 5.6), and immersed at room temperature for 90 minutes. Finally, add 0.1M sodium acetate buffer (
It was thoroughly washed at pH 5, 6> and stored at 4°C while immersed in the same buffer.

次いで、これを作用電極として濃度測定装置を組み立て
たが、本装置の中心的な部分は酵素1掻装置(ランク・
ブラザーズ、ボウティスハム、ケンブリッジ)を改造し
たものである。この構造を第2図に示す、ここで、作用
を掻(酵素電極) (11)は試料室底部のプラチナ接
点上にゴム製の〇−リング(12)、(13)により固
定されている。目的に応じて作用′:4極(11)と被
験溶液との間にポリカーボネート膜を挿入して電極(1
1)を保護しても良く、これが妨害物質に対する有効な
スクリーンの役目を果たす、試料室には磁気攪拌装置の
ための棚があり、酵素電極の上部で被験溶液を攪拌でき
るようになっており、上記試料室全体は磁気攪拌装置ベ
ース(ランク・ブラザーズ)の上に来る。白金灯)i(
14)と銀−塩化銀参照電極(15)はストッパーの役
目をするフタに組み込まれている。
Next, a concentration measuring device was assembled using this as a working electrode, but the central part of this device was an enzyme 1 scraping device (rank
Brothers, Bowtisham, Cambridge). This structure is shown in FIG. 2, where the enzyme electrode (11) is fixed on the platinum contacts at the bottom of the sample chamber by rubber rings (12) and (13). Action depending on purpose': A polycarbonate membrane is inserted between the 4 electrodes (11) and the test solution.
1), which serves as an effective screen against interfering substances, has a shelf in the sample chamber for a magnetic stirrer, which allows the test solution to be stirred above the enzyme electrode. , the entire sample chamber rests on a magnetic stirrer base (Rank Brothers). platinum lamp)i(
14) and a silver-silver chloride reference electrode (15) are incorporated into the lid, which serves as a stopper.

これら3つの電極を小型のポテンショスタット(16)
に接続した。ボテフシ3スタンド(16)により、作用
電極(11)は参照電極(15)に対して一定の電位に
保たれ、通常その値は0.4から0.6Vである。
Connect these three electrodes to a small potentiostat (16)
connected to. The working electrode (11) is kept at a constant potential with respect to the reference electrode (15) by means of the 3-stand (16), which typically has a value of 0.4 to 0.6V.

ルーチン分析用には、参照7M、1aj(15)が対極
の機能を兼ねている二電極系に簡易装πを使用して良い
For routine analysis, a simple device π may be used in a two-electrode system in which reference 7M, 1aj (15) also serves as a counter electrode.

一方、試料室は、基板(17)及び環状のウォーターシ
ャケノト(18)を内蔵する環状ジャケット(19)か
ら概略構成されている。これらの基板(17)及びウォ
ーターシャケ・7ト(18)は、互いにねじを切った締
め輪(20)で連結されている。−h記つォーターシャ
ケ;=ト(18)の中央部に位置する貯i[(21)は
本例の場合直径1.6 cmで、1〜4m/の被験溶液
を入れることができるようになされている。
On the other hand, the sample chamber is roughly composed of a substrate (17) and an annular jacket (19) containing an annular water reservoir (18). These base plate (17) and water shaker 7 (18) are connected to each other by a threaded tightening ring (20). - The reservoir i [(21) located in the center of (18) has a diameter of 1.6 cm in this example, and is designed to be able to contain 1 to 4 m/m of the test solution. being done.

上記基板(17)の中央部には白金接点(22)が設け
られ、この白金接点(22)に対向して設けられた作用
1掘(11)がゴム製の0リングシール(12)、 (
13)でシールされている。このうち、上側のOリング
シール(12)は、半分に切って底面が平面となるよう
になされている。なお、上記作用電極(11)と被験溶
液との接触面積は0.14 ciである。
A platinum contact (22) is provided in the center of the substrate (17), and a working hole (11) provided opposite to the platinum contact (22) is a rubber O-ring seal (12), (
13) is sealed. Of these, the upper O-ring seal (12) is cut in half so that the bottom surface is flat. The contact area between the working electrode (11) and the test solution was 0.14 ci.

また、上記貯液槽(21)の上方はスト7バ(23)に
より閉塞されている。そして、上記貯液槽(20)内に
は、白金対極(工4)及び参照電極(I5)とが上記ス
トッパ(23)内を挿通したリード線(24)、 (2
5)を介して位置するようになされている。なお、上記
ストッパ(23)には、可調節継輪(26)が設けられ
この可調節継輪(26)の回動操作により上記ストッパ
(23)の上下動の調製を行い得るようにされている。
Further, the upper part of the liquid storage tank (21) is closed by a stop bar (23). In the liquid storage tank (20), a platinum counter electrode (4) and a reference electrode (I5) are inserted into the stopper (23) and lead wires (24), (2)
5). The stopper (23) is provided with an adjustable coupling ring (26), and the vertical movement of the stopper (23) can be adjusted by rotating the adjustable coupling ring (26). There is.

また、上記白金対極(14)と参照電1(15)はそれ
ぞれ、上記リード線(24) 、 (25)を介してポ
テンショスタンド(16)に接続されるとともに」二足
白金接点(22)も同様にリード線(27)を介してこ
のポテンショスタット(16)に接続されている。これ
は、作用電極(11)を一定の電位にセットし、且つ電
流出力を測定するためである。
In addition, the platinum counter electrode (14) and the reference voltage 1 (15) are connected to the potentiometer stand (16) via the lead wires (24) and (25), respectively, and the two-legged platinum contact (22) is also It is likewise connected to this potentiostat (16) via a lead wire (27). This is to set the working electrode (11) at a constant potential and measure the current output.

測定方法はいたって簡単である。まず、プランり用の緩
1i1 (0,1M或いは1.OMの塩化カリウムを含
有する0、 1 Mリン酸カリウム11街ill、pH
7,0)2m7!を試料室に入れ、参照電極(15)と
対)!ij(+4)とを内蔵するストッパー(23)を
試料室にかぶせ、磁気攪拌装置のスイッチを入れる。次
にポテンショスタットのスイッチを入れ、必要な電位に
セットする。この状態でバックグラウンド電流が低下し
てほぼ一定の値(数μA)となるまで1から2分待つ。
The measurement method is quite simple. First, a 11-well solution of 0.1M potassium phosphate containing 0.1M or 1.OM potassium chloride, pH
7,0) 2m7! into the sample chamber and pair it with the reference electrode (15))! A stopper (23) containing ij (+4) is placed over the sample chamber, and the magnetic stirring device is turned on. Next, turn on the potentiostat and set it to the desired potential. In this state, wait 1 to 2 minutes until the background current decreases to a nearly constant value (several μA).

次にグルコースを含有する被験溶液を適当なンリンジ(
100μlハミルトンなど)を使って試料室内の緩衝液
に注入する。すると、酵素が被験溶液中のグルコースに
作用して電子の流れが起こる0作用型44(11)と対
1(14)との間を流れる電流はポテンショスタット・
メーターによりモニターされ、接続したチャート・レコ
ーダーで記録される。
Next, the test solution containing glucose was added to an appropriate tube (
(100 μl Hamilton, etc.) into the buffer solution in the sample chamber. Then, the current flowing between the 0-acting type 44 (11) and the pair 1 (14), where the enzyme acts on glucose in the test solution and electron flow occurs, is the potentiostat.
Monitored by a meter and recorded by an attached chart recorder.

第3図に、グルコース1度を増加させていった場合の電
極応答の一例を示す。ここに示した例では、矢印で示C
た時点においてloomM?fi度のグルコース溶液を
50μlずつ添加した。グルコース含有被験溶液の添加
に引き続いて起こる電流値の上昇は極めて迅速であり、
保護膜を使用しない場合は通常lから2秒、保護膜のあ
る場合は5から10秒である。溶液を撹拌している場合
には保護膜を使用しても電極応答の信号波形や大きさは
殆ど変化しない、10から20秒後に信号波形が平坦と
なる所で測定した信号の振幅は、第4図に見られるよう
にグルコース濃度20mM程度まではほぼ直線的に増大
する。グルコースの添加濃度が20mMを越えると、こ
の直線性は劣化する。
FIG. 3 shows an example of the electrode response when the glucose level is increased by 1 degree. In the example shown here, C
roomM? 50 μl of a glucose solution of 50 μl was added. The increase in current value following the addition of the glucose-containing test solution is extremely rapid;
It usually takes 1 to 2 seconds when a protective film is not used, and 5 to 10 seconds when a protective film is used. When the solution is stirred, the signal waveform and magnitude of the electrode response hardly change even if a protective film is used.The amplitude of the signal measured at the point where the signal waveform becomes flat after 10 to 20 seconds is As seen in Figure 4, the glucose concentration increases almost linearly up to about 20mM. This linearity deteriorates when the concentration of glucose added exceeds 20 mM.

本測定における電流応答強度は非常に大きいので、測定
できるグルコース濃度範囲はμMのレベルにも及ぶ(第
5図参照)、シかし、このように掻めてグルコース濃度
が低い場合には反応速度論上の変化に起因して較正曲線
の勾配に何らかの変化が現れる0本装置においては、被
験溶液と接触するtffiの有効直径はわずか2龍(し
たがって面積は0.14cm’)程度であるが、設計を
やや変更してもう少し大型の電極を使用すればより低濃
度のグルコース溶液も測定できる。
Since the current response strength in this measurement is very large, the measurable glucose concentration range extends to the μM level (see Figure 5). However, when the glucose concentration is low, the reaction rate is In this device, the effective diameter of the tffi in contact with the test solution is only about 2 L (therefore the area is 0.14 cm'); By slightly modifying the design and using a slightly larger electrode, it is possible to measure glucose solutions with lower concentrations.

上述のように作成した’Wffiは、常にグルコースに
対して良好な応答性を示した。同様の方法で同じ大きさ
に作成した2電極系の装置でも非常に近い結果(同一条
件下で実験した時の電流応答の再が数%以内)が得られ
た。単一の電極を繰り返して使用しても、精度と再現性
は良好であった(第1表参照)。
'Wffi created as described above always showed good responsiveness to glucose. A two-electrode system fabricated using a similar method and having the same size also yielded very similar results (within a few percent of the current response when tested under the same conditions). Even with repeated use of a single electrode, accuracy and reproducibility were good (see Table 1).

第1表は、一定濃度のグルコース溶液中における電極応
答の再現性を示すもので、グルコース含有被験溶液(1
00mM)100μ#を2 のリン酸カリウム緩衝液(
pH7,0)に1回添加して電流値を読み取ったもので
ある。セル内の溶液の終濃度は4.76mM、患l−階
10の各試験は同一日に6時間にわたって行い、I!l
ilと隘12の各試験は翌日行った。
Table 1 shows the reproducibility of the electrode response in a glucose solution with a constant concentration.
00mM) 100μ#2 potassium phosphate buffer (
(pH 7.0) and the current value was read. The final concentration of the solution in the cell was 4.76mM, and each test was performed on the same day over a 6-hour period. l
The 11 and 12 tests were conducted the next day.

第1表 ここで注目すべきは、これらのデータがごく簡単な実験
室レベルの技術で得られたことであり、グルコース濃度
をもっと厳密に制御より精度を向上させることができる
。電機は、1日Hq度の短時間の使用であれば時々較正
するだけで良い。また本電掻は4℃で湿潤状態で保存す
れば極めて安定であるが、室温に保存した場合でも1年
間は良好な応答性を示した(第2表参照)。
Table 1 It should be noted that these data were obtained using very simple laboratory-level techniques, which can improve accuracy by more tightly controlling glucose concentrations. Electrical equipment only needs to be calibrated once in a while if it is used for a short period of time (Hq degrees per day). Furthermore, this electric scraper is extremely stable when stored in a humid state at 4°C, but even when stored at room temperature, it showed good responsiveness for one year (see Table 2).

第2表は4℃で保存した電極の応答安定性を示すもので
、電流値は第1表に示した各試験において4.76mM
のグルコース)容;夜についてS売み取った。
Table 2 shows the response stability of the electrodes stored at 4°C, and the current value was 4.76mM in each test shown in Table 1.
Glucose) volume; S sold at night.

(以下余白) 第2表 電極が?Wil?!状態で保存されていれば、上述のよ
うな長期に亘って断続的な使用に耐えるが、乾燥させる
と酵素活性が失われてしまう。
(Left below) What about the second surface electrode? Will? ! If stored in this condition, it can withstand intermittent use over a long period of time as described above, but if dried, the enzyme activity is lost.

以上、本発明の具体的な実施例について説明したが、本
発明がこの実施例に限定されるものではなく、例えばプ
ローブのような他の応用形態においても良好な結果が得
られる。
Although specific embodiments of the present invention have been described above, the present invention is not limited to these embodiments, and good results can also be obtained in other applications such as probes.

一例として、上記作用電極を電線に接続してガラス管に
封入して直径2mlのプローブを作製し、参照電極、対
掻と共に容器内に挿入すると、溶存酸素を除去しなくて
も信頼性の高い濃度測定を行うことができる。
As an example, by connecting the working electrode to an electric wire and enclosing it in a glass tube to create a probe with a diameter of 2 ml, and inserting it into a container together with a reference electrode and a countershape, a highly reliable probe can be obtained without removing dissolved oxygen. Concentration measurements can be made.

さらに小型化すれば、カテーテル針等に組み込んでプロ
ーブ型センサとして使用することもできる。このような
構成をとると、挿入時には電極がカテーテル針で保護さ
れているうえ、カテーテル針を清浄に保つこともできる
If it is further miniaturized, it can be incorporated into a catheter needle or the like and used as a probe type sensor. With this configuration, the electrode is protected by the catheter needle during insertion, and the catheter needle can also be kept clean.

また、固定化する有機触媒(酵素)にしても、前述のグ
ルコースオキシダーゼに限定されるものではなく、他の
オキシドリダクダーゼを使用することも勿論可能である
。多種の適当なオキシドリダクダーゼには、ラクテート
オキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、コレステロ
ールオキシダーゼやその他の過酸化物を生成する酵素が
含まれる。さらに、オキシダーゼとオキシダーゼ以外の
酵素の組み合わせ等も可能である。かかる組み合わせの
例としては、ラクトース定量のためのβ−ガラクトシダ
ーゼとグルコースオキシダーゼ、あるいはβ−グルカン
定量のためのβ−グルカン解重合酵素、β−グルコシダ
ーゼやグルコースオキシダーゼの組み合わせ等がある。
Further, the organic catalyst (enzyme) to be immobilized is not limited to the above-mentioned glucose oxidase, and it is of course possible to use other oxidoreductases. A wide variety of suitable oxidoreductases include lactate oxidase, galactose oxidase, cholesterol oxidase and other peroxide-producing enzymes. Furthermore, combinations of oxidase and enzymes other than oxidase are also possible. Examples of such combinations include combinations of β-galactosidase and glucose oxidase for quantifying lactose, or combinations of β-glucan depolymerase, β-glucosidase, and glucose oxidase for quantifying β-glucan.

さらに、本発明の濃度測定装置は、研究あるいは品質管
理におけるルーチン分析を念頭においたものではあるが
、臨床サンプルや食品分析等の目的にもかなうことは無
論である。さらには、糖尿病患者用の家庭用バイオセン
サ、発酵槽の高度制御システム、その他グルコースのモ
ニターを要する種々の工業プロセスへの展開が期待され
る。
Further, although the concentration measuring device of the present invention is intended for routine analysis in research or quality control, it is of course suitable for purposes such as clinical sample analysis and food analysis. Furthermore, it is expected to be used in household biosensors for diabetic patients, advanced control systems for fermenters, and various other industrial processes that require glucose monitoring.

G1発明の効果 以上の説明からも明らかなように、本発明の濃度測定装
置においては、新規な炭素基板を作用電極の導電性支持
体として用い、酵素等の有機触媒を効果的に固定化する
ようにしているので、応答性、安定性に優れた濃度測定
が可能となっている。
G1 Effects of the Invention As is clear from the above explanation, in the concentration measuring device of the present invention, a novel carbon substrate is used as a conductive support for the working electrode, and organic catalysts such as enzymes are effectively immobilized. This makes it possible to measure concentration with excellent responsiveness and stability.

また、本発明の装置では、特に電子キャリアは必要なく
、また溶存酸素の存在下でも機能する。
Further, the device of the present invention does not particularly require an electron carrier and functions even in the presence of dissolved oxygen.

さらに、本発明の濃度測定装置は、電流応答性にも優れ
たものであり、電極面積の縮小化も容易である。
Furthermore, the concentration measuring device of the present invention has excellent current responsiveness, and the electrode area can be easily reduced.

さらにまた、特に作用電極の表面にポリカーボネートよ
りなる保護膜を設けることで、信φn性を一層高めるこ
とが可能で、また当該保護膜を設けたことによる応答特
性が低下することもない。
Furthermore, especially by providing a protective film made of polycarbonate on the surface of the working electrode, it is possible to further improve the φn reliability, and the provision of the protective film does not deteriorate the response characteristics.

勿論、適用濃度範囲も広く、保存安定性も優れているこ
とは言うまでもない。
Needless to say, it has a wide applicable concentration range and excellent storage stability.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は本発明を適用した濃度測定装置の位置構成例を
模式的に示す斜視図であり、第2図は実験に使用した濃
度測定装置の構成を示す概略断面図である。 第3図は本発明を適用した濃度測定装置の電流応答特性
を示す特性図であり、第4図はグルコース濃度と電極電
流値の関係を示す特性図、第5図は低濃度?ill域に
おけるグルコース濃度と電極電流値の関係を示す特性図
である。 特許出願人 ケンブリッジ ライフ サイエンシズピー
エルシー 代理人  弁理士  小 池  晃(他2名)第1図 第2図 常 僚−(LIA)−
FIG. 1 is a perspective view schematically showing an example of the positional configuration of a concentration measuring device to which the present invention is applied, and FIG. 2 is a schematic cross-sectional view showing the configuration of the concentration measuring device used in the experiment. FIG. 3 is a characteristic diagram showing the current response characteristics of the concentration measuring device to which the present invention is applied, FIG. 4 is a characteristic diagram showing the relationship between glucose concentration and electrode current value, and FIG. 5 is a characteristic diagram showing the relationship between glucose concentration and electrode current value. FIG. 3 is a characteristic diagram showing the relationship between glucose concentration and electrode current value in the ill region. Patent applicant Cambridge Life Sciences PLC Agent Patent attorney Akira Koike (and 2 others) Figure 1 Figure 2 Staff member (LIA)

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)作用電極、対極及び参照電極がポテンショスタッ
トに接続されてなり、 前記作用電極は白金族元素が被着されたカーボン粒子と
高分子結合剤とからなる多孔質三次元構造体を導電性支
持体とし、有機触媒が固定されていることを特徴とする
濃度測定装置。
(1) A working electrode, a counter electrode, and a reference electrode are connected to a potentiostat. A concentration measuring device characterized by having a support and an organic catalyst fixed thereon.
(2)作用電極の表面が微細孔を有するポリカーボネー
ト膜により保護されていることを特徴とする請求項1記
載の濃度測定装置。
(2) The concentration measuring device according to claim 1, wherein the surface of the working electrode is protected by a polycarbonate film having micropores.
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