JP6814824B2 - アポトーシスを誘導するための組成物及び方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2013年3月12日に出願された米国仮特許出願第61/776,999号の利益を主張する。
本発明は、国立衛生研究所により授与されたGM95606下で政府の支援でなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。
2014年3月11に作成されたものであり、13,576bである、「21101_0283Pl_Sequence_Listing.txt」という名称のテキストファイルとして2014年3月11日に提出された配列表は、37C.F.R.§1.52(e)(5)に従って参照により本開示に組み込まれる。
本発明は、本発明の以下の詳細な説明及びそこに含まれる実施例を参照することによってより容易に理解することができる。
本明細書及び添付の特許請求の範囲において使用されるとき、単数形は、文脈で明確に別段の指示が無い限り、複数の言及を含む。
従来のコポリマーは、世界中の多くの研究室で、及びいくつかの臨床試験でも使用されている。(その全体において参照により本明細書に組み込まれる、米国特許第5,037,883号を参照)。例えば、N−(2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド)(HPMA)コポリマーは、(1)生体適合性であり、十分に確立された安全性プロフィールを有する;(2)水溶性であり、低分子量(遊離型、非結合)薬物と比較したとき良好な薬物動態を有する;及び(3)優れた化学的柔軟性(すなわち、異なる側鎖を含有するモノマーは、容易に合成され、その構造中に組み込まれ得る)を有する。しかしながら、HPMAポリマーは分解性ではなく、HPMAポリマーの分子量は、生体適合性を維持するために、腎閾値未満に保たれるべきである。これは、EPR(血管透過性・滞留性亢進)効果を介して、固形腫瘍におけるHPMAポリマーの血管内半減期及び蓄積を制限する。
本明細書に開示の組成物及び方法は、化学的に修飾された骨格を有する生体適合性の、合成のオリゴヌクレオチド類似体を活用し得る。以下に示す概略図は、いくつかの類似体を一覧表示し、これらの類似体と天然DNAの特性を比較する。
i)標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体
標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体を本明細書に開示する。一態様では、本開示の複合体は、検出可能な標識を含む。検出可能な標識は当業者に周知であり、限定されないが、ローダミン、FITC、Cy3、Cy3.5、Cy5、Texas Red、Alexa Fluor488、Alexa Fluor610、Alexa Fluor647、及びAlexa Fluor750を含む。
コポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む複合体を本明細書に開示する。一態様では、本開示の複合体は、検出可能な標識を含む。検出可能な標識は当該分野で周知であり、限定されないが、ローダミン、FITC、Cy3、Cy3.5、Cy5、Texas Red、Alexa Fluor488、Alexa Fluor610、Alexa Fluor647、及びAlexa Fluor750を含む。
標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体とコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体を含むキットを本明細書に開示する。一態様では、本明細書に開示のキットは、標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体とコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体を投与するための説明書を含み得る。
一つ以上の本開示の複合体を含む本開示の組成物を含む医薬組成物を本明細書に開示する。例えば、一態様では、本開示の医薬組成物は、(i)標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体及び(ii)薬学的に許容され得る担体を含む。一態様では、本開示の医薬組成物は、(i)コポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む複合体及び(ii)薬学的に許容され得る担体を含む。一態様では、本開示の医薬組成物は、(i)標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体、(ii)コポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体、及び(iii)薬学的に許容され得る担体を含む。
i)アポトーシスを誘導する方法
アポトーシスを誘導する方法であって、細胞の集団を標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体と接触させること;細胞の集団をコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体と接触させることを含み、第一の複合体及び第二の複合体と細胞の接触が細胞のアポトーシスを誘導する方法を本明細書に開示する。一態様では、本開示の方法は、細胞の集団を標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体と接触させることを反復することを含み得る。一態様では、本開示の方法は、細胞の集団をコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体と接触させることを反復することを含み得る。一態様では、本開示の方法は、細胞の集団を標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体と接触させること及び細胞の集団をコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体と接触させることを含み得る。一態様では、当業者は、アポトーシスを誘導するように、本開示の組成物または本開示の複合体についての投与の有効用量、有効計画、または有効経路を決定することができる。
アポトーシスを誘導する方法であって、細胞の集団を、標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体とコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む複合体を含む第二の複合体とを含む組成物と接触させることを含み、該組成物と細胞の接触がアポトーシスを誘導する方法を本明細書に開示する。本開示の方法は、細胞と該組成物の接触を反復することを含み得る。本開示の方法は、細胞のアポトーシスを確認することを含み得る。アポトーシスを確認する方法は、当該分野で周知であり、限定されないが、カスパーゼ3活性の測定、アネキシンV/ヨウ化プロピジウム結合の測定、及びターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識の測定を含む。一態様では、アポトーシスの確認は次の一つを含み得る:カスパーゼ3活性の測定、アネキシンV/ヨウ化プロピジウム結合の測定、及びターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識の測定。一態様では、アポトーシスの確認は次の二つを含み得る:カスパーゼ3活性の測定、アネキシンV/ヨウ化プロピジウム結合の測定、及びターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識の測定。一態様では、アポトーシスの確認は次の全てを含み得る:カスパーゼ3活性の測定、アネキシンV/ヨウ化プロピジウム結合の測定、及びターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識の測定。一態様では、当業者は、アポトーシスを誘導するように、本開示の組成物または本開示の複合体についての投与の有効用量、有効計画、または有効経路を決定することができる。
それを必要とする対象の処置方法であって、標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体を含む第一の組成物を対象に投与すること;及びコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む第二の複合体を含む第二の組成物を対象に投与することを含み、第一の組成物及び第二の組成物の投与が、対象における細胞の標的集団のアポトーシスを誘導する方法を本明細書に開示する。一態様では、投与は、静脈内投与を含む。一態様では、本開示の方法は、第一の組成物の投与を反復することを含み得る。一態様では、本開示の方法は、第二の組成物の投与を反復することを含み得る。一態様では、本開示の方法は、第一の組成物の投与を反復すること及び第二の組成物の投与を反復することを含み得る。一態様では、本開示の方法は、細胞の標的集団のアポトーシスを確認することを含み得る。一態様では、当業者は、本開示の組成物または本開示の複合体について、それを必要とする対象を処置するための投与の有効用量、有効計画、または有効経路を決定し得る。
i)標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体の合成
標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体を合成するプロセスであって、標的化部分を得ること、オリゴヌクレオチドを修飾すること、及び標的化部分とオリゴヌクレオチドとをコンジュゲートすることを含むプロセスを本明細書に開示する。一態様では、標的化部分は、チオエーテル結合を介してオリゴヌクレオチドにコンジュゲートされ得る。一態様では、オリゴヌクレオチドはSMCC修飾であり得る。一態様では、オリゴヌクレオチドは、3’−マレイミド基を含有し得る。一態様では、複合体を合成する本開示のプロセスは、検出可能標識を導入することを含み得る。複合体を合成する本開示のプロセスの一態様では、標的化部分は、本開示の標的化部分であり得る。例えば、標的化部分は、CD20に特異的なFab’断片であり得る。複合体を合成する本開示のプロセスの一態様では、オリゴヌクレオチドは、本開示のオリゴヌクレオチドであり得る。例えば、本開示のオリゴヌクレオチドは、10bp〜40bpを含むモルフォリノであり得る。
コポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む複合体を合成するプロセスであって、コポリマー担体を得ること、一つ以上のオリゴヌクレオチドを修飾すること、及びコポリマー担体を一つ以上のオリゴヌクレオチドにコンジュゲートすることを含むプロセスを本明細書に開示する。一態様では、コポリマー担体は、一本の主鎖及び一本以上の側鎖を含み得る。一態様では、RAFT重合を、本開示の主鎖を生成するために使用することができる。一態様では、複合体を合成する本開示のプロセスは、検出可能標識を導入することを含み得る。複合体を合成する本開示のプロセスの一態様では、コポリマー担体は、本開示のコポリマー担体であり得る。例えば、本開示のコポリマー担体は、MA−GG−TTモノマーと共重合したHPMAコポリマーを含み得る。複合体を合成する本開示のプロセスの一態様では、一つ以上のオリゴヌクレオチドは、一つ以上の本開示のオリゴヌクレオチドであり得る。例えば、一つ以上の本開示のオリゴヌクレオチドは、それぞれ10bp〜40bpを含むモルフォリノであり得る。
標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む複合体、及びコポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む複合体を合成するプロセスであって、標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む第一の複合体を、コポリマー担体から一つ以上のオリゴヌクレオチドまでを含む第二の複合体と接触させることを含むプロセスを本明細書に開示する。一態様では、第一の複合体のオリゴヌクレオチドは、第二の複合体の一つ以上のオリゴヌクレオチドにハイブリダイズする。一態様では、本開示のプロセスは、第一の複合体を生成することを含み得る。一態様では、本開示のプロセスは、第二の複合体を生成することを含み得る。一態様では、本開示のプロセスは、第一の複合体を生成すること及び第二の複合体を生成することを含み得る。一態様では、第一の複合体は、標的化部分及びオリゴヌクレオチドを含む任意の本開示の複合体であり得る。一態様では、第二の複合体は、コポリマー担体及び一つ以上のオリゴヌクレオチドを含む任意の本開示の複合体であり得る。例えば、本開示のプロセスの一態様では、標的化部分は、CD20に特異的なFab’断片であり得、コポリマー担体は、MA−GG−TTモノマーと共重合したHPMAコポリマーを含み得、それぞれのオリゴヌクレオチドは、10bp〜40bpを含むモルフォリノであり得、ここで第一の複合体のモルフォリノは、第二の複合体の一つ以上のモルフォリノに相補的である。
以下の実施例は、当業者に、どのようにして本明細書にて特許請求される化合物、組成物、物品、デバイス及び/または方法が作成及び評価されるかについての、完全な開示および説明を提供するように述べられ、純粋に本発明の例示として意図され、発明者が彼らの発明だとみなすものの範囲を限定することを意図しない。しかしながら、当業者は、本開示に照らして、本発明の精神および範囲から逸脱することなく、開示され同様または類似の結果を得る特定の実施形態において多くの変更がなされ得ることを理解するべきである。数字(例えば、量、温度など)に関して正確さを保証するために努力がなされているが、いくらかの誤差および偏差が考慮されるべきである。
a.モルフォリノの設計
25bpの一対の相補的モルフォリノ(MORF1−m=5’GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA3’(配列番号25)及びMORF2−m=5’TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC3’(配列番号26))を設計した。モルフォリノを、コンジュゲーションのために使用される3’第一級アミンで修飾した(図2、Gene Tools,LLC、(オレゴン州フィロマス))。それぞれ25bpを有する二つのモルフォリノ間のハイブリダイゼーションのKdが典型的にPMレベルであるため、25bpのオリゴヌクレオチドを選択することによって、後続の実験のための強い結合親和性が確保された。それぞれのこれらの二つのモルフォリノの配列組成は、最適な結合効率及び特異性を達成するように設計された。ここで、各モルフォリノのGC含有量は約35〜65%であった。良好な水溶解度を確保するために、総G含有量は36%未満であった。急速な腎クリアランスを妨害することによって望ましい薬物動態を確保するために、C核酸塩基の総数は7未満であった。各モルフォリノの塩基組成を決定した後に、公的にアクセス可能な、オンライン配列「スクランブラ―」を、ヒト及びマウスmRNAとの最小のオフターゲット結合を確保するために使用した(www.simawizard.com/scrambled.phpのウェブページ)。さらに、公的にアクセス可能な、オンライン配列解析ソフトウェアを最小の自己相補性を確保するために使用した。(www.basic.northwestern.edu/biotools/oligocalc.htmlのウェブページ)。
マウスの抗CD20IgG抗体(1F5)を、バイオリアクター(CellMax)内でハイブリドーマクローン1F5から調製し、プロテインGカラムで精製した。抗体をペプシンで消化してF(ab’)2断片を得て、さらにトリス(2−カルボキシエチル)ホスフィン(TCEP)によって還元して、Fab’断片を得た。Fab’断片を、次いで、スクシンイミジル−4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボキシレート(SMCC)修飾されたモルフォリノ(すなわち、3’−マレイミド基を有するモルフォリノ)にコンジュゲートした。ここで、モルフォリノは、チオール反応性3’マレイミド基を有する配列番号25によって表され、コンジュゲーションはチオエーテル結合を介して生じた。最終生成物はFab’−MORF1複合体であった(図3A)。Fab’−MORF1複合体を、イメージング目的のためにローダミンを用いて標識した。
アミン反応性チアゾリジン−2−チオン(TT)基を有する側鎖を含有するHPMAコポリマーを、可逆的付加開裂連鎖移動(RAFT)重合によって合成した。RAFT重合は、当該分野で周知である(図3B)。N−メタクリロイルグリシルグリシン−TT(MA−GG−TT)モノマーを使用して、グリシン−グリシンスペーサーを介してTTを導入した。任意選択である、FITC(フルオレセインイソチオシアネート)を含有する少量のコモノマーを、イメージング目的のために添加した。RAFT重合を使用して、狭い分子量分布を有するポリマー骨格を、再現性よく合成した。側鎖のTT基とアミン誘導体化MORF2(配列番号26)との反応は、安定アミド結合を介してMORF2の複数のコピーでグラフトされたHPMAコポリマーを生成した。結果得られた生成物は、コポリマー−MORF2複合体であった。異なる原子価(すなわち、コポリマー鎖でグラフトされたモルフォリノ数)を有するコポリマー−MORF2複合体を合成して、これらの複合体の生物学的効果の比較を可能にした。コポリマー−MORF2複合体を、イメージング目的のためにFITCを用いて標識した(図3B)。
Fab’−MORF1複合体及びコポリマー−MORF2複合体のin vitroハイブリダイゼーションを、次の三つの方法により決定した:(1)可視・紫外分光法(ハイブリダイゼーションが吸光度260nmで淡色効果を引き起こす)、(2)SDS−PAGE(ハイブリダイゼーションがゲル遅延を引き起こす)、及び(3)動的光散乱法(ハイブリダイゼーションが流体力学的有効直径の変化を引き起こす)。細胞レベルでは、ヒトバーキットB細胞非ホジキンリンパ腫Raji細胞(ATCC、メリーランド州ベセスダ)を使用して、Fab’−MORF1複合体及びコポリマー−MORF2複合体の生体認識を試験した。Raji細胞の細胞表面での複合体の認識及び結合を、共焦点蛍光顕微鏡によって決定した。アポトーシス誘導を三つの異なる尺度を使用して解析した:(1)カスパーゼ3活性(すなわち、アポトーシス性遺伝子発現)、(2)アネキシンV/ヨウ化プロピジウム(PI)結合(すなわち、初期アポトーシス事象としての膜反転(membrane flipping))、及び(3)ターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識法(TUNEL)アッセイ(すなわち、後期アポトーシス事象としてのゲノムDNA断片化)。これらの試験全体を通して、ヤギ抗マウス(GAM)二次抗体と高度架橋された1F5mAbを、臨床的に関連する陽性対照として使用した。加えて、CD20発現が低いまたは無いヒトNHL DG−75B細胞を陰性対照細胞系統として使用した。
非ホジキンリンパ腫(NHL)は、高い死亡率を有する世界中で蔓延している癌である。約85%のNHLはB細胞を起源とし、B細胞リンパ腫の95%超は細胞表現抗原CD20を有する。それゆえ、Raji B細胞(すなわち、高CD20発現を伴う細胞)の細胞表面での二つのMORF複合体の生体認識を、共焦点蛍光顕微鏡によって評価した(図5)。図5では、次の略語を適用する:Trans−透過光下で得られた細胞画像;R−赤色チャネル;G−緑色チャネル;O−R及びGのオーバーレイ。B細胞をFab’−MORF1複合体(ローダミンを用いて標識)に曝露することにより、(赤色チャネルによって示されるように)Fab’−MORF1複合体を用いたB細胞の表面の「装飾」を、Fab’−MORF1複合体がCD20に結合すること介してもたらした。コポリマー−MORF2複合体(FITCを用いて標識)に曝露された細胞は、観察可能ないずれの蛍光シグナルも示さず、それは生体認識対がないことによるものだと予想された。しかしながら、両方の複合体(Fab’−MORF1複合体及びコポリマー−MORF2複合体)を使用したとき、両方の処置プロトコル(すなわち、両方の複合体の同時曝露を伴う(「予混合」)処置または各複合体への連続曝露を伴う処置)は、B細胞表面での両方の複合体の共局在をもたらし、それゆえFab’−MORF1複合体及びコポリマー−MORF2複合体のハイブリダイゼーションをもたらす(黄色蛍光で示す)。このハイブリダイゼーションは、B細胞の表面上の蛍光シグナルのオーバーレイによって示される。
a.in vivo実験No.1
進行NHLの動物モデルを提供するために、雌SCID(C.B−17)マウスは、Raji B細胞を静脈内移植され得る。このモデルは、様々な臓器、特に脊髄および骨髄における悪性(NHL)B細胞の播種、浸潤及び増殖を表す。被検体は、後肢麻痺を発症し死亡する。ゆえに、被検体が本開示の組成物または本開示の複合体を用いた処置を受けた後から後肢麻痺の発症するまでに経過する時間の量が決定され得る。ここで、処置後から麻痺の発症前までに経過する時間の量は、治療有効性の指標として使用され得る。
合成及び生物学的ビルディング・ブロックからなるハイブリッドナノマテリアルは、ナノ医療のための高い可能性を有する。標的細胞の表面受容体を架橋しアポトーシスを誘導する免疫エフェクター細胞のメカニズムを模倣する治療プラットフォームを設計した。このプラットフォームを、表面抗原CD20を高度に発現するB細胞リンパ腫に対して試験した。二つのナノコンジュゲートを合成した:(1)一本鎖モルフォリノオリゴヌクレオチド(MORF1)に共有結合した抗CD20Fab’断片、及び(2)相補的オリゴヌクレオチドMORF2の複数のコピーでグラフトされたN−(2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド(HPMA)のリニアポリマー。二つのコンジュゲートは、MORF1−MORF2ハイブリダイゼーションを介して、CD20+悪性B細胞の表面で自己組織化し、それはCD20抗原を架橋し、アポトーシスを開始した。ヒト非ホジキンリンパ腫のマウスモデルにて試験したとき、二つのコンジュゲートは、連続的に投与されても予混合物として投与されても、癌細胞を根絶して、長期生存者を生成した。本明細書に記載の実験は、本開示の方法および本開示の組成物及び複合体が小分子細胞毒性化合物を含有せず、免疫独立性であったことを実証する。
使用したMORFオリゴは、25bpであり、約8.5kDaであった(図10A、図10C、及び図2)。それらの3’末端をコンジュゲーションのために使用された第一級アミンで修飾した。A/T/C/G含有量を、最適な結合効率及び特異性を達成し(GC=35〜65%)、水溶解度を維持し(G<36%(Summertonら、1997))、好ましい薬物動態を提供(急速な腎臓吸収を回避するためにCの数<7(Liuら、2004))するように選択した。塩基組成を決定した後、配列スクランブリングソフトウェアによってヒト及びマウスのmRNAとのオフターゲット結合を最小にするように生成し、さらに自己相補性を防ぐように最適化した。
Fab’−MORF1コンジュゲートを調製するため(図10A)、マウス抗ヒトCD20 IgG2a mAb(1F5)からのFab’断片(Pressら、1987)を、チオエーテル結合を介してMORF1の3’末端に係留した。図10Aでは、*は、SMCCまたはスクシンイミジル−4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボキシレートヘテロ二官能性リンカーを示す。コンジュゲートを、イメージング試験のために任意選択的にローダミン(RHO)を用いて標識した。HPLC(図10B、緩衝液A(H20+0.1%トリフルオロ酢酸v/v)及び緩衝液B(アセトニトリル+0.1%トリフルオロ酢酸v/v)のグラジエントで溶出されたAgilent Zorbax 300SB−C18カラム(4.6×250mm)を活用した)及びサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)(図17A、PBSで溶出されたSephacryl S−100 HR16/60カラムを使用)によって確認されるようにFab’−MORF1は合成に成功した;カップリング反応は、飛行時間型質量分析(図17B)及び可視・紫外分光法(図17C〜図17E)によって特徴付けられるように1:1化学量論に従った。Fab’−MORF1の分子量(MW)は、約57.5kDaであった。図17では、Fab’−MORF1のプロファイルは、AKTA FPLCによる精製のプロセスを実証し、第一のピーク(53mLで溶出)はコンジュゲート(精製中に収集された)を表し;第二のピーク(70mLで溶出)は非コンジュゲートMORF1(除去された)を示した。Fab’−MORF1は、Fab’−SH(56mL)と比較して、より早い溶出体積によって特徴付けられた。図17Bでは、主要画分は分子量が約57.5kDaであることを示し(Fab’:〜48.8kDa、MORF1:〜8.6kDa);ほんのわずかな非コンジュゲートFab’が観察された。精製されたFab’−MORF1(図17C)、非コンジュゲートMORF1(図17D)、及びFab’断片(図17E)の可視・紫外吸収スペクトルも示す。全ての成分の濃度は2.5μMであった。Fab’−MORF1コンジュゲートは、260nm(MORF1によって寄与される)及び280nm(Fab’によって寄与される)での吸光度の組み合わせによって特徴付けられた。
MORF1−MORF2生体認識を介する二つのコンジュゲートのハイブリダイゼーションを、まず紫外・可視分光法によって評価した。二つのコンジュゲートを異なる比率で混合し、260nm(塩基によって寄与される)での光学濃度を測定した。Fab’−MORF1及びP−MORF2を混合する際、「淡色効果」が観察された(図11A);OD260nmは、1:1(MORF1:MORF2)のモル比が使用されたときに、最小に達した。かかる低減は、芳香族環の共鳴を制限する相補的塩基間の水素結合に起因した。同じ方法を使用して、遊離型、非コンジュゲートMORF1及びMORF2のハイブリダイゼーション、及び同一の淡色性が観察された(図19)。図19では、260nmでの光学濃度(OD)は、二つのMORF(PBS中、pH=7.4)が(異なるパーセンテージで)混合されたときに低減した。データを、平均±SD(n=3)として表す。これらの結果は、MORF1−MORF2ハイブリダイゼーションの機能がFab’またはポリマーへのコンジュゲーション後に保存されたことを示した。
ヒトB細胞リンパ腫Raji細胞系統(CD20+)(Stashenkoら、1980;Shanら、1998)を、細胞表面でのFab’−MORF1及びP−MORF2(結合価=2)の生体認識を試験するために使用した。この試験を、共焦点蛍光顕微鏡によって実施した。まず、Raji細胞をローダミンで標識されたFab’−MORF1に曝露することで、CD20へのFab’−MORF1結合により、細胞表面赤色シグナル(RHO)装飾がもたらされた;FITCで標識されたP−MORF2のみに曝露された細胞は、いずれの蛍光シグナルも示さなかった(図12A、0.4μMでのFab’−MORF1または0.4μMでのP−MORF2、MORF2当量)。次に、Raji細胞が両方の蛍光で標識されたコンジュゲート(Fab’−MORF1+P−MORF2)に連続的に(1時間空けて)または予混合物として(すなわち、Fab’−MORF1(0.4μM)及びP−MORF2(0.4μM)の混合物、MORF2当量)のいずれかで曝露されたとき、赤色及び緑色(FITC)シグナルが、B細胞の表面でうまく共局在化した(図12B)。この観察は、細胞表面での好結果のMORF1−MORF2ハイブリダイゼーションを示した。図12Cは、二つの対照群から得られた顕微画像を示す:(1)Fab’−MORF1(ローダミン)及びFITC色素を有するがMORF2を有さないHPMAコポリマー(P−FITC、過剰量)の予混合物に曝露された細胞;(2)連続的にFab’−MORF1(0.5μM)(ローダミン)に、その後過剰の非コンジュゲートMORF1を有するP−MORF2(FITC)の混合物(これが二本鎖MORFでグラフトされたHPMAコポリマー;P−dsMORFを生成する)に細胞を曝露することにより達成された「プレブロッキング」対照。両方の対照処置は、生体認識対が存在しないために、赤色シグナルのみを細胞表面でもたらした(図12C)。これらの対照の結果は、Fab’−MORF1及びP−MORF2の細胞表面生体認識が、確かにMORF1−MORF2ハイブリダイゼーションを媒介したことを確証させた。
ヒトB細胞系統(Raji及びDG75)のアポトーシス誘導を、三つの方法によって評価した:カスパーゼ3の活性化アッセイ、アネキシンV/ヨウ化プロピジウム(PI)結合アッセイ、及びターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼdUTPニック末端標識法(TUNEL)アッセイ。これらの実験では、ヤギ抗マウス二次抗体(2°Ab)と高架橋された抗CD20 1F5 mAbを、FcR+免疫エフェクター細胞の機能を模倣する陽性対照として使用した(Shanら、1998)。この対照は、抗CD20mAbの治療有効性を部分的に反映した。結果は、Fab’−MORF1及びP−MORF2の共処置が、連続的または予混合物としてのいずれかで、効果的にRaji B細胞のアポトーシスを誘導したことを示した(図13)。対照的に、Fab’−MORF1またはP−MORF2のいずれかを用いた単一成分処置は、アポトーシスの開始に失敗した。一連の対照実験(図24)は、CD20抗原の架橋を随伴するMORF1−MORF2ハイブリダイゼーションがアポトーシス誘導の要因であるという仮説を検証した。Raji細胞を(1)Fab’−MORF1及びポリマー前駆体P−TTの混合物;(2)Fab’及びP−MORF2の混合物;(3)そのMORF1またはMORF2結合部位が、過剰な非コンジュゲート相補的MORFによって処置の前にブロックされた「プレブロックされた」コンジュゲートに曝露した。MORF1−MORF2ハイブリダイゼーションが存在しないために、これらの処置のどれもアポトーシスを誘導しなかった(図24A)。さらには、CD20を発現しない(または最小限に発現する)陰性対照B細胞系統(DG75)のアポトーシスを評価した(Ben−Bassatら、1977)。二つのナノコンジュゲートを用いた共処置後のアポトーシスのレベルは非常に低く、未処置細胞のそれに類似していた(図24B)。この結果は、CD20結合がアポトーシス誘導に必要な事象であることを示した。
本開示の治療システムを最適化するために、コンジュゲートの濃度、二つのコンジュゲート間の比率、P−MORF2の結合価、及び曝露時間を含む、いくつかの因子及びRaji B細胞のアポトーシスに及ぼすその影響を検査した。ポリマー鎖当たり約3オリゴを含有するP−MORF2(P−MORF2/v3)をまず使用した。アネキシンV/PI染色アッセイの結果は、1μMのFab’−MORF1及び等モルのP−MORF2/v3(MORF1:MORF2=1:1)が、約40%のアポトーシス細胞(未処置と比較して4倍超)を誘導したことを示した(図13A)。図13Aでは、以下を適用する:未処置:培養培地内の未処置細胞;mAb+2°Ab:1F5 mAb(1μM)、その後(1時間後)ヤギ抗マウス二次抗体(0.5μM);Fab’−MORF1:1μMの単一成分;P−MORF2:1μMのP−MORF2/v3の単一成分(MORF2当量);連続:Fab’−MORF1(1μM)、その後(1時間後)P−MORF2/v3(1μM);予混合:Fab’−MORF1(1μM)及びP−MORF2/v3(1μM)の予混合物。別段の指示が無い限り、各群を未処置と比較することによって統計を実施した(***p<0.0001、n.s.=有意差なし)。
ハイブリダイゼーションを媒介する薬物を含まない高分子治療のin vivo治療有効性を、全身播種性のRaji B細胞を有するSCID(C.B−17)マウスにおいて評価した。この動物モデルは100%に近い腫瘍生着率(Ghetieら、1990)を有し、及び処置後の後肢麻痺のない生存期間は、抗癌有効性を正確に反映する(Ghetieら、1992;Griffithsら、203)。400万個のRaji B細胞を、尾静脈を介して0日目に注射した;後肢麻痺の発生率またはマウスの生存時間を125日目までモニターした。コンジュゲート、Fab’−MORF1及びP−MORF2/v10を、マウスの尾静脈を介して、連続的にまたは予混合物としてのいずれかで注射した。異なる群に分けられたマウス(n=6〜7)は、本開示の組成物及び複合体を含む単回用量または3用量の処置のいずれかを受け、それは腫瘍注射の24時間後に開始した。1日目に単回用量処置;1、3、5日目に3用量処置。動物生存曲線を図14に示す。PBS(n=8)で処置された陰性対照マウスは、癌細胞の注射後17〜35日目に後肢麻痺を発症した;生存期間中央値は24日間であった。この観察は文献と一致した(Griffithsら、2003;Wuら、2012)。連続処置の単回投与(連続×1;MORF1:MORF2=1:1)は実質的に動物生存時間を延長させた(生存期間中央値:81日間)。単回予混合用量(予混合×1;MORF1:MORF2=1:1)は、連続処置と類似の有効性を有し、78日の生存期間中央値をもたらした。同一用量のFab’−MORF1(57.5μg/20g)が与えられるが、その後に5倍過剰のP−MORF2/v10(MORF1:MORF2=1:5)が与えられるとき、有効性は、等モルのMORF1/MORF2処置より有意に改善された。かかる処置の単回投与(連続(1:5)×1)は、67%生存率(4/6長期生存者;125日間)を生成した。in vivo及びin vitroデータ(図13C)間の矛盾は、過剰なP−MORF2が使用されたとき、結合飽和を阻害するコンジュゲートの血液希釈によって説明され得る。要約すると、図14では、以下を適用する:PBS:PBS(n=8)を注射されたマウス;連続×1:Fab’−MORF1及びP−MORF2/v10の連続処置、単回用量(n=7);予混合×1;Fab’−MORF1及びP−MORF2/v10の予混合物、単回用量(n=7);連続(1:5)×1;連続処置、MORF1:MORF2=1:5、単回用量(n=6);連続×3;3用量の連続処置(n=7);予混合×3;3用量の予混合物(n=7);1F5 mAb×3;3用量の1F5 mAb(n=7)。マウスの麻痺無し生存時間を、カプラン・マイヤープロットにて表す。各群における長期生存者の数を示した(もしあれば)。ログランク検定で統計を実施した(*p<0.05、***p<0.0001、n.s.=有意差なし)。
4×106個のRaji B細胞を0日目に静脈内注射されたマウスを、異なる処置に曝露した−PBS:PBSを注射されたマウス;連続×3;1、3、5日目に、Fab’−MORF1及びP−MORF2/v10の連続処置;予混合×3;1、3、5日目に、3用量のFab’−MORF1及びP−MORF2/v10の予混合物。Fab’−MORF1及びP−MORF2を用いた処置後のSCIDマウスにおけるRaji細胞の根絶は、MRI、フローサイトメトリー、及び組織学によって確証された。癌細胞の注射後4〜5週間での、ガドリニウムベースの造影剤を用いるMRIは、PBSで処置された対照マウスが腰髄に腫瘍を発症し(図15A)、一方で3用量の本開示の組成物及び複合体が腫瘍発症を防止した(図15B〜図15C)ことを示した。図15A〜図15Cは、マウスの腰椎に焦点を当てた造影(T1)強調矢状断像MRIを示す。腫瘍小結節(赤矢印)を示す異質な見た目及び不規則な形状の腫瘤が対照マウスの脊髄にて観察された(PBS、n=4、図15A)が、処置マウス(連続×3及び予混合×3、n=4)では観察されなかった。連続×3(図15B)または予混合×3(図15C)で処置された生存マウスは、16週目に再度撮像された;疾患の再発は観察されなかった(図26A〜図26C)。
(a)MORF1及びMORF2
二つの相補的な3’アミン誘導体化25merホスホロジアミデートモルフォリノオリゴマーは、Gene Tools,LLC(オレゴン州フィロマス)からであった。MORF1:5’−GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA−リンカー−アミン−3’(MW=8630.5Da);MORF2:5’−TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC−リンカー−アミン−3’(MW=8438.5Da)。リンカーの構造を図2に示す。塩基配列の設計のために、配列スクランブリングソフトウェア(http://www.sirnawizard.com/scrambled.php)及び配列解析ソフトウェア(http://www.basic.northwestern.edu/biotools/oligocalc.html)を使用した。
1F5 mAbを、マウスのハイブリドーマ細胞サブクローン1F5(ATCC、メリーランド州ベセスダ)からCellMax(登録商標)バイオリアクター(Spectrum Laboratories、カリフォルニア州ランチョ・ドミンゲス)内で調製した。抗体を培養培地から回収し、Protein G Sepharose4Fast Flowカラム(GE Healthcare、ニュージャージー州ピスカタウェイ)で精製した。mAbからのFab’の調製は、Fowersら、2001に明記のプロトコルに従った。簡潔には、mAbをクエン酸緩衝液(pH4.0)中でF(ab’)2へと10%(w/w)ペプシン(Sigma、ミズーリ州セントルイス)を用いて消化した。コンジュゲーションの直前に、F(ab’)2を10mMのトリス(2−カルボキシエチル)ホスフィン(Thermo Scientific、マサチューセッツ州ウォルサム)によってFab’へと還元した。Fab’−MORF1コンジュゲートを調製するため、3’第一級アミンを含有するMORF1オリゴをスクシンイミジル−4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボキシレート(SMCC)と反応させて、末端(チオール反応性)マレイミド基を導入した。これによって3’−マレイミドを有するMORF1(MORF1−mal)を生成した。MORF1−malを次いでFab’(末端チオール基を含有する)にチオエーテル結合を介してコンジュゲートさせて、Fab’−MORF1を得た。コンジュゲートを、SECを用いて精製して遊離型、非コンジュゲートFab’及びMORF1を除去した。
ポリマー前駆体(P−TT及びP−TT−FITC)、いわゆる、N−(2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド(HPMA)、N−メタクリロイルグリシルグリシンチアゾリジン−2−チオン(MA−GG−TT)、及び任意選択的に、N−メタクリロイルアミノプロピルフルオレセインチオウレア(MA−FITC)のコポリマーを、RAFT共重合によって合成した。2,2’−アゾビス[2−(2−イミダゾリン−2−イル)プロパン]ジヒドロクロリド(VA−044;Wako Chemicals、バージニア州リッチモンド)を開始剤として使用し、4−シアノペンタン酸ジチオベンゾアト(CPDB)を連鎖移動剤として使用した。CPDB(Panら、2011)及びモノマーHPMA(Kopecekら、1973)、MA−GG−TT(Subrら、2006)、及びMA−FITC(Omelyanekoら、1998)を合成した。
MORF1及びMORF2オリゴの定量化、ならびにコンジュゲート内のMORFの含有量の決定のために紫外・可視分光法を使用した。MORF1及びMORF2のモル吸光係数(265nmで、0.1N HCl中)は、それぞれ、278,000及び252,000(M-1cm-1)であった。P−MORF2コンジュゲートの結合価を、MORF2の消衰係数及びポリマー骨格のMnを使用して決定した。P−MORF2コンジュゲートのMORF2当量濃度を、紫外・可視分光法を使用して定量化した。Fab’−MORF1コンジュゲートのFab’当量濃度を、ビシンコニン酸(BCA)タンパク質アッセイ(Thermo Scientific Pierce、イリノイ州ロックフォード)によって定量化した。
θ=θmin+(θmax−θmin)/[1+(T/Tm)^H]
式中、θminは曲線における最小モル楕円率(260nmで)であり、θmaxは曲線における最大モル楕円率(260nmで)であり、Hは、Hill slopeである。
ヒトバーキットB細胞非ホジキンリンパ腫Raji細胞系統(ATCC、メリーランド州ベセスダ)を、10%ウシ胎児血清(Hyclone、ユタ州ローガン)を補充されたRPMI−1640培地(Sigma、ミズーリ州セントルイス)において、5%のCO2(v/v)を有する37℃の加湿雰囲気下で培養した。全ての実験は、対数増殖期の細胞を使用して行われた。連続処置については、ウェルあたり106の密度の細胞を0.4mLのFab’−MORF1−RHO(0.4μM Fab’当量)と培養培地にて37℃で一時間インキュベートした;次いで、0.4mLのP−MORF2−FITC(0.4μM MORF2当量)とのさらに1時間にわたるインキュベーションの前に、細胞を2回PBSで洗浄した。予混合処置については、Fab’−MORF1−RHO及びP−MORF2−FITCを最初に培養培地内で等モル濃度(0.4μM)で1時間混合した;次いで、同一密度の細胞を0.4mLの予混合溶液と1時間インキュベートした。インキュベーションの後、細胞をPBSで2回洗浄し(コンジュゲートを含有する培地を捨てるため)、次いで、オリンパス製レーザー走査型共焦点顕微鏡(FV1000)を使用して、イメージングするために、14mmのマイクロウェルを有する滅菌された35mmガラス底培養皿(MatTek Corporation、マサチューセッツ州アッシュランド)上に配置した。対照試験については、全ての対応する成分の濃度を一貫して維持した;過剰量のP−FITC及びP−dsMORFを使用した。解析の前に、FITC標識1F5 mAb、ローダミン標識F(ab’)2、及びPBSとインキュベートされた細胞を、チャネル設定を調整する及びCD20結合を確認するために使用した。
ヒトNHL B細胞のアポトーシスを三つの方法によって評価した:カスパーゼ3アッセイ、アネキシンV/PIアッセイ、及びTUNELアッセイ。これらのアッセイは異なる側面からアポトーシスを評価した−カスパーゼ3活性化のレベルは、アポトーシス性タンパク質発現を表した;アネキシンV/PI結合は、初期アポトーシス事象としての細胞膜反転を特徴付けた;TUNELアッセイは、後期アポトーシス事象としてのゲノムDNA断片化を解析した。アポトーシス活性(アポトーシス細胞%)の定量化をフローサイトメトリーによって実施した。
約7週齢の雌C.B−17SCIDマウス(Charles River Laboratories、マサチューセッツ州ウィルミントン)に尾静脈を介して200μL食塩水中の4×106個のRaji細胞を静脈注射した(0日目)。この動物モデルは、後肢麻痺及びその後の動物の死亡につながる、脊髄を含む様々な臓器におけるリンパ腫細胞の播種、浸潤、及び増殖を表す(Ghetieら、1990、1992;Griffirthsら、2003)。後肢麻痺の発症を実験のエンドポイントとした;加えて、体重損失が>20%となったときマウスを屠殺した。麻痺/病気のサインがない動物は125日目まで維持され、長期生存者と考えられた。コンジュゲート、Fab’−MORF1(57.5μg/20g;1nmolのMORF1)及びP−MORF2/v10(22μg/20g;1nmolのMORF2)、を100μLのPBSに溶解し、尾静脈を介して連続的に(1時間間隔)または予混合物(処置の1時間前に混合)としてのいずれかで注射した。接種マウスを7群に分けた:(1)陰性対照(200μLのPBSを注射)、(2)連続処置の単回投与(連続×1)、(3)予混合処置の単回投与(予混合×1)、(4)3回投与された連続処置(連続×3)(5)3回投与された予混合処置(予混合×3)(6)連続処置の単回投与だが、Fab’−MORF1に対して5倍過剰なP−MORF2/v10(110μg/20g;5nmolのMORF2)を用いる(連続(1:5)×1)、及び(7)3用量(75μg/20g;用量あたり1nmolのFab’当量)の1F5 mAbを尾静脈を介して注射された陽性対照。単回用量群については、コンジュゲートを1日目に投与した(癌細胞投与の24時間後);複数用量群については、コンジュゲート(またはmAb)を1、3、5日目に与えた。疾患進行をモニターするため、マウス(群あたり2〜4匹)をT1強調MRIによって4、5、及び16週目に走査した。ガドベン酸メグルミン(MultiHance(登録商標);Bracco SpA、イタリア、ミラノ)を0.3mmol/kgで撮像の20分前に(静脈内)注射した。造影前画像を比較に使用した。
マウスを屠殺した後、次の臓器/組織を残留Raji細胞についてフローサイトメトリーによって解析した:骨髄(大腿)、腸間膜リンパ節及び鼠径リンパ節、脊髄、及び脾臓。二つの蛍光標識された抗体、R−フィコエリスリン(PE)標識マウス抗ヒトCD10(IgG1、κイソタイプ)及びアロフィコシアニン(APC)標識マウス抗ヒトCD19(IgG1、κイソタイプ)(BD Biosciences、カリフォルニア州サンノゼ)を使用してRaji B細胞を染色した(Chenら、2010)。単細胞懸濁液を次の手順を使用して臓器/組織から調製した。骨髄については、新鮮な大腿部を1mLのPBSでパージして細胞懸濁液を得た。細胞を5mLの赤血球(RBC)溶解バッファーに再懸濁し、室温で5分間インキュベートした。次いで、細胞を5mLのPBSで洗浄し、遠心分離してデブリを除去し、その後400μLの冷たい洗浄バッファーに再懸濁して、4つのチューブに等しく分けた:(1)非染色対照、(2)CD10単独染色、(3)CD19単独染色、及び(4)CD10/CD19二重染色細胞。染色については、20μLの各抗体を、約106個の細胞を含有する100μLの細胞懸濁液に添加した。細胞を30分間4℃で暗所でインキュベートし、解析の前に1.5mLの洗浄バッファーで洗浄した。リンパ節、脊髄及び脾臓については、機械的な方法を使用した。1mLのPBSを含有するシャーレ内のピンセットの助けを借りて組織を優しく脱凝集した。懸濁液を、70μmのFalcon(商標)cell strainer(BD Biosciences)を通過させて大きな凝集塊及びデブリを除去し、次いで細胞を遠心分離して5mLのRBC溶解バッファーに再懸濁した。残りの手順は上述と同じである。フローサイトメトリー解析については、1〜1.5×105個の細胞のデータを記録した。
マウスを屠殺した直後、次の臓器/組織を病理学的評価のために回収した:脳、心臓、肺、肝臓、脾臓、腎臓、脊髄及びリンパ節。これらの臓器/組織を10%ホルマリン中で一晩室温で固定し、それから移動させて70%エタノール中で保存した。病理組織学的検査を盲検獣医病理学者によってARUP Laboratories(ユタ州ソルトレイクシティ)で行った。切片を4μmの厚さで切断し、ガラススライド上に乗せ、ヘマトキシリン及びエオシン(H&E)で染色した。
この試験における全ての実験は少なくとも3回実施された。定量化したデータを、平均±標準偏差(SD)として表した。統計解析は、2群間を比較するためのスチューデントのT検定、または、三つまたはそれを超える群を比較するための一元配置分散分析(ANOVA)によって実施された(p値<0.05は、統計学的に有意な差を示す)。動物の生存解析を、グラフパッドプリズム5ソフトウェアを使用してログランク検定を用いて実施した。
ハイブリダイゼーションを媒介する細胞表面抗原架橋及びアポトーシス誘導を含むシステムを本明細書に開示する。細胞事象(アポトーシス)は、正確に標的された治療の設計に適した分子レベルから規定される特定の生体認識(すなわち、塩基対合)によって引き起こされる。本開示の二つのステップ(連続)処置は、事前標的の機会を提供する(Goodwinら、2001;Gunら、2011;Zhouら、2009)。これは、予混合処置及び他の単一成分抗CD20構築物、例えばリツキシマブポリマー(Zhangら、2005)及び多価抗CD20Fab’官能化ポリマー(Johnsonら、2009、2012;Chuら、2012)と比べて有利である。例えば、架橋用量(P−MORF2)の投与のタイミングは、事前標的用量(Fab’−MORF1)の生体分布に基づいて、個別の患者において最大の腫瘍対組織の蓄積を達成し、より有効な処置を可能にするために最適化され得る。このアプローチは、また、オフターゲット結合に関する有害反応の可能性を制限し、それゆえ固形腫瘍ならびに播種性疾患の処置に有益である。血液系の癌については、Fab’−MORF1の薬物動態及び病気細胞に対するFab’−MORF1の結合速度論は、P−MORF2投与の最良のタイミングを決定するためにさらに研究され得る。
本発明のまた別の態様は、以下のとおりであってもよい。
〔1〕アポトーシスを誘導する方法であって、
(i)細胞の集団を標的化部分及びモルフォリノを含む第一の複合体と接触させる工程、及び
(ii)細胞の集団をコポリマー担体及び一つ以上のモルフォリノを含む第二の複合体と接触させる工程を含み、
前記第一の複合体及び前記第二の複合体と前記細胞との前記接触が、前記細胞のアポトーシスを誘導することを特徴とする、方法。
〔2〕ステップ(i)及びステップ(ii)を反復する工程をさらに含む、前記〔1〕に記載の方法。
〔3〕(iii)前記細胞のアポトーシスを確認する工程をさらに含む、前記〔1〕に記載の方法。
〔4〕前記細胞が、B細胞である、前記〔1〕に記載の方法。
〔5〕前記細胞が、対象内にある、前記〔1〕に記載の方法。
〔6〕前記対象が、非ホジキンリンパ腫を有する、前記〔5〕に記載の方法。
〔7〕前記標的化部分が、非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子に特異的である、前記〔1〕に記載の方法。
〔8〕前記非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子が、CD20受容体、タンパク質チロシンホスファターゼ受容体C型、細胞表面死受容体、前立腺幹細胞抗原受容体、または腫瘍壊死因子受容体スーパーファミリーに属する受容体である、前記〔7〕に記載の方法。
〔9〕前記標的化部分が、多糖類、ペプチドリガンド、アプタマー、Fab’断片、または一本鎖可変部である、前記〔7〕に記載の方法。
〔10〕前記標的化部分が、Fab’断片である、前記〔9〕に記載の方法。
〔11〕前記Fab’断片が、抗CD20受容体抗体に由来する、前記〔10〕に記載の方法。
〔12〕前記抗CD20受容体抗体が、1F5、リツキシマブ、トシツモマブ、イブリツモマブ、オファツムマブ、ベルツズマブ、オクレリズマブ、オカラツズマブ、オビヌツズマブ、PRO131921、BCD−020、IBI−301、ウブリツキシマブ、またはBLX−301である、前記〔11〕に記載の方法。
〔13〕前記第一の複合体のモルフォリノ及び前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、相補的である、前記〔1〕に記載の方法。
〔14〕前記第一の複合体のモルフォリノが、5’GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA3’(配列番号25)であり、前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、5’TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC3’(配列番号26)である、前記〔1〕に記載の方法。
〔15〕アポトーシスを誘導する方法であって、
細胞の集団を、標的化部分及びモルフォリノを含む第一の複合体と、コポリマー担体及び一つ以上のモルフォリノを含む複合体を含む第二の複合体とを含む組成物と接触させる工程を含み、前記細胞の前記組成物との前記接触が、前記細胞のアポトーシスを誘導することを特徴とする、方法。
〔16〕前記組成物と前記細胞の前記接触を反復する工程をさらに含む、前記〔15〕に記載の方法。
〔17〕前記細胞が、B細胞である、前記〔15〕に記載の方法。
〔18〕前記細胞が、対象内にある、前記〔15〕に記載の方法。
〔19〕前記対象が、非ホジキンリンパ腫を有する、前記〔18〕に記載の方法。
〔20〕前記標的化部分が、非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子に特異的である、前記〔15〕に記載の方法。
〔21〕前記非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子が、CD20受容体、タンパク質チロシンホスファターゼ受容体C型、細胞表面死受容体、前立腺幹細胞抗原受容体、または腫瘍壊死因子受容体スーパーファミリーに属する受容体である、前記〔20〕に記載の方法。
〔22〕前記標的化部分が、多糖類、ペプチドリガンド、アプタマー、Fab’断片、または一本鎖可変部である、前記〔15〕に記載の方法。
〔23〕前記標的化部分が、Fab’断片である、前記〔22〕に記載の方法。
〔24〕前記Fab’断片が、抗CD20受容体抗体に由来する、前記〔23〕に記載の方法。
〔25〕前記抗CD20受容体抗体が、1F5、リツキシマブ、トシツモマブ、イブリツモマブ、オファツムマブ、ベルツズマブ、オクレリズマブ、オカラツズマブ、オビヌツズマブ、PRO131921、BCD−020、IBI−301、ウブリツキシマブ、またはBLX−301である、前記〔24〕に記載の方法。
〔26〕前記第一の複合体のモルフォリノ及び前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、相補的である、前記〔15〕に記載の方法。
〔27〕前記第一の複合体のモルフォリノが、5’GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA3’(配列番号25)であり、前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、5’TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC3’(配列番号26)である、前記〔15〕に記載の方法。
〔28〕(i)標的化部分及びモルフォリノを含む第一の複合体と、(ii)コポリマー担体及び一つ以上のモルフォリノを含む第二の複合体とを備えることを特徴とするキット。
〔29〕(iii)前記(i)の複合体及び前記(ii)の複合体を投与するための説明書をさらに備える、前記〔28〕に記載のキット。
〔30〕前記第一の複合体及び前記第二の複合体が、同時に処方される、前記〔28〕に記載のキット。
〔31〕前記標的化部分が、非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子に特異的である、前記〔28〕に記載のキット。
〔32〕前記非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子が、細胞上にある、前記〔31〕に記載のキット。
〔33〕前記細胞が、B細胞である、前記〔32〕に記載のキット。
〔34〕前記非内在化細胞表面分子または緩徐内在化細胞表面分子が、CD20受容体、タンパク質チロシンホスファターゼ受容体C型、細胞表面死受容体、前立腺幹細胞抗原受容体、または腫瘍壊死因子受容体スーパーファミリーに属する受容体である、前記〔31〕に記載のキット。
〔35〕前記標的化部分が、多糖類、ペプチドリガンド、アプタマー、Fab’断片、または一本鎖可変部である、前記〔28〕に記載のキット。
〔36〕前記Fab’断片が、抗CD20受容体抗体に由来する、前記〔35〕に記載のキット。
〔37〕前記抗CD20受容体抗体が、1F5、リツキシマブ、トシツモマブ、イブリツモマブ、オファツムマブ、ベルツズマブ、オクレリズマブ、オカラツズマブ、オビヌツズマブ、PRO131921、BCD−020、IBI−301、ウブリツキシマブ、またはBLX−301である、前記〔36〕に記載のキット。
〔38〕前記第一の複合体のモルフォリノ及び前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、相補的である、前記〔28〕に記載のキット。
〔39〕前記第一の複合体のモルフォリノが、5’GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA3’(配列番号25)であり、前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、5’TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC3’(配列番号26)である、前記〔28〕に記載のキット。
Allison M.(2010) PML problems loom for Rituxan.Nat.Biotechnol.28:105− 106.
Claims (5)
- CD20陽性ヒト細胞においてアポトーシスを誘導するための、コポリマー担体及び一つ以上のモルフォリノを含む第二の複合体と組み合わせて使用される組成物であって、
標的化部分及びモルフォリノを含む第一の複合体を含み、
前記標的化部分が、抗CD20抗体又は抗CD20Fab’断片であり、
前記第一の複合体が、CD20陽性細胞を含むヒト細胞の集団に接触するものであり、前記第二の複合体が、前記ヒト細胞の集団に接触するものであり、
前記第一の複合体のモルフォリノが、5’GAGTAAGCCAAGGAGAATCAATATA3’(配列番号25)であり、前記第二の複合体の一つ以上のモルフォリノが、5’TATATTGATTCTCCTTGGCTTACTC3’(配列番号26)であり、
前記第一の複合体及び前記第二の複合体と前記ヒト細胞との前記接触が、前記CD20陽性ヒト細胞のアポトーシスを誘導することを特徴とする、組成物。 - 前記第一の複合体及び前記第二の複合体と前記ヒト細胞との前記接触が、さらに反復されるものである、請求項1に記載の組成物。
- 前記ヒト細胞が、B細胞である、請求項1に記載の組成物。
- 前記ヒト細胞が、非ホジキンリンパ腫を有する対象内にある、請求項1に記載の組成物。
- 前記第一の複合体及び前記第二の複合体が、単一の組成物に製剤化されている、請求項1に記載の組成物。
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