JP6779627B2 - 月下美人のカルス作出方法及び、その抽出物を有効成分とする皮膚外用剤や内用剤など - Google Patents
月下美人のカルス作出方法及び、その抽出物を有効成分とする皮膚外用剤や内用剤など Download PDFInfo
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Description
(1)月下美人のカルスであって、オーキシン及びサイトカイニンを含有する培地で培養することを特徴とする月下美人のカルス。
(2)月下美人のカルスであって、オーキシンがインドール酢酸、インドール酪酸、α―ナフタレン酢酸、2,4−ジクロロフェノキシ酢酸及び2,6−ジクロロ安息香酸から一種又は二種以上選択され、サイトカイニンがゼアチン、フルフリルアミノプリン(カイネチン)、ベンジルアデニン、イソペンテニルアデニン及びジメチルアミノプリンから一種又は二種以上選択されることを特徴とする、(1)記載の月下美人のカルス。
(3)月下美人のカルスの製造方法であって、オーキシン及びサイトカイニンを含有する培地で培養することを特徴とし、オーキシンがインドール酢酸、インドール酪酸、α―ナフタレン酢酸、2,4−ジクロロフェノキシ酢酸及び2,6−ジクロロ安息香酸から一種又は二種以上選択され、サイトカイニンがゼアチン、フルフリルアミノプリン(カイネチン)、ベンジルアデニン、イソペンテニルアデニン及びジメチルアミノプリンから一種又は二種以上選択され、それぞれ10−10〜10−2Mの濃度でMS培地及び/又はB5培地を用いて培養することを特徴とする月下美人のカルスの製造方法。
(4)月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする皮膚外用剤。
(5)月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする医薬品。
(6)月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする食品。
一例としては、カルスを誘導する培養では、月下美人の葉、茎、根などの組織を30〜95%エタノール水溶液、0.1〜5%次亜塩素酸ナトリウム水溶液などによってその植物体の表面を殺菌してから特定の培地にてカルスを誘導し、培養することができる。
また、オーキシン類やサイトカイニンの含有量は、10−10〜10−2Mが好ましく、10−6〜10−4Mがより好ましい。
月下美人の果実から種子を無菌的に取り出し、ホルモンを添加していないMS寒天培地に播種して無菌的に培養し、子葉を得る。この子葉の切片を10−5Mのα―ナフタレン酢酸及び10−5Mのベンジルアデニンを含むMS寒天培地に置床し、明期16時間でカルスを誘導した。一ヶ月後、このカルスを前記のMS液体培地75mLに入れて明期24時間で2週間、100rpmで回転振とう培養し、その懸濁培養細胞を調製した。この培養細胞を10−5Mのα―ナフタレン酢酸及び10−5Mのベンジルアデニンを含むMS液体培地0.75Lに接種し、明期24時間で2週間、100rpmで回転振とう培養した。得られた培養細胞を精製水で十分に洗浄し、カルスを得た(湿潤物)。
製造例Aで得たカルス20gに精製水200mLを加え、95〜100℃で2時間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥して熱水抽出物を0.2g得た。
製造例Aで得たカルス20gに50%エタノール水溶液200mLを加え、常温で1〜7日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥して50%エタノール抽出物を0.2g得た。
製造例Aで得たカルス20gにエタノール200mLを加え、常温で1〜7日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥してエタノール抽出物を0.18g得た。
月下美人の花20g又は、月下美人の葉・茎混合物の乾燥物20gに精製水400mLを加え、95〜100℃で2時間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥して熱水抽出物をそれぞれ、5.9g、3.6g得た。
月下美人の花20g又は、月下美人の葉・茎混合物の乾燥物20gに50%エタノール水溶液400mLを加え、常温で1〜7日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥して50%エタノール抽出物をそれぞれ、1.8g、0.8g得た。
月下美人の花20g又は、月下美人の葉・茎混合物の乾燥物20gにエタノール水溶液400mLを加え、常温で1〜7日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮し、凍結乾燥してエタノール抽出物をそれぞれ、0.4g、0.3g得た。
フリーラジカル捕捉除去作用の評価を行った。陽性対照としてはアスコルビン酸を用いた。フリーラジカルのモデルとしては、安定なフリーラジカルであるα,α−ジフェニル−β−ピクリルヒドラジル(以下DPPHとする)を用い、試料と一定の割合で一定時間反応させ、減少するラジカルの量を波長517nmの吸光度の減少量から測定した。
各試料を、最終濃度0.005〜0.02mg/mL(アスコルビン酸は0.01mg/mL)となるように加えた0.1M酢酸緩衝液(pH5.5)2mLに無水エタノール2mL及び0.5mM DPPH無水エタノール溶液1mLを加えて反応液とした。その後、37℃で30分間反応させ、水を対照として波長517nmの吸光度(A)を測定した。また、ブランクとして試料の代わりに精製水を加えた反応液を用いて吸光度(B)を測定した。フリーラジカル補足除去率が50%のときの試料の濃度(IC50)を算出した。
フリーラジカル補足除去率(%)=(1−A/B)×100
試料液50μL(最終濃度が5mg/mL)に酵素液として50U/mLのコラゲナーゼType IV(シグマ製)水溶液を50μL加えた。基質溶液として0.39mg/mLのPz−ペプタイド(Pz−Pro−Leu−Gly−Pro−D−Arg−OH、シグマ製)を含む20mM塩化カルシウム入りトリス塩酸緩衝液(pH7.1)を400μL加えて混合し、37℃、30分反応させた後、25mMクエン酸0.5mLを加えて反応を停止させた。酢酸エチル2.5mLを加え、酢酸エチル層について320nmにおける吸光度を測定した。また、各試料の阻害作用は、次の式から求められる阻害率で算出した。なお、対照には試料の代わりに精製水を用い、ブランクとしてコラゲナーゼの代わりに20mM塩化カルシウム入りトリス塩酸緩衝液(pH7.1)を用いた。
阻害率(%)=〔1−(C−D)/(A−B)〕×100
A:対照の320nmにおける吸光度(O.D.320)
B:対照ブランクのO.D.320
C:試料のO.D.320
D:試料ブランクのO.D.320
対数増殖期にあるB16マウスメラノーマ細胞を60mm dishに3×104個播種し、各試料(最終濃度10μg/mL)を含むEagles’MEM(10%牛胎児血清含有)培地にて、37℃、5%CO2条件下で5日間培養した。次に、細胞をdishから剥離し、超音波破砕した後、4N NaOHを加え60℃で2時間の処理を行い、分光光度計でO.D.475nmを測定した。尚、超音波処理後の細胞破砕液についてLowryの方法(J.Biol.Chem.,193,265−275,1951)にてタンパク定量し、タンパク量当りのメラニン量を算出、試料未添加のメラニン生成量をコントロールとし、コントロールに対する試料添加時のメラニン生成量の値からメラニン生成抑制率を算出した。
NMF(天然保湿因子)の前駆物質であるフィラグリン生成への影響をフィラグリン遺伝子(FLG)のmRNA発現量を指標として評価した。すなわち、ケラチノサイト由来HaCaT細胞を6wellプレートに1wellあたり5×104個播種し、10%FBSを含むDMEM培養液にて、37℃、5%CO2条件下で4日間培養した。次に、各試料(最終濃度10μg/mL)を添加したDMEM培養液にて、24時間培養した後、総RNAの抽出を行った。細胞からの総RNAの抽出はTRIZOL Reagent(Invitrogen)を用いて行い、総RNA量は分光光度計(NanoDrop)を用いて260nmにおける吸光度により求めた。mRNA発現量の測定は、細胞から抽出した総RNAを基にしてリアルタイムRT−PCR法により行った。リアルタイムRT−PCR法には、SuperScriptIII Platinum Two−Step qRT−PCR Kit with SYBR Green(Invitrogen)を用いた。すなわち、500ngの総RNAを逆転写反応後、PCR反応(95℃:15秒間、60℃:30秒間、40cycles)を行った。その他の操作は定められた方法に従い、FLG mRNAの発現量を、内部標準であるGAPDH mRNAの発現量に対する割合として求めた。FLG発現量は、コントロールのFLG mRNAの発現量に対する試料添加群のFLG mRNAの発現量の比率として算出した。なお、FLG用のプライマーは、以下に示したものを使用した。
GGATCACTTGGATATAGACCACAACA(配列番号1)
TGAGCCAACTTGAATACCATCAGA(配列番号2)
GAPDH用のプライマーセット
TGCACCACCAACTGCTTAGC(配列番号3)
TCTTCTGGGTGGCAGTGATG(配列番号4)
界面活性剤であるsodium dodecyl sulfate(SDS)曝露によるケラチノサイトにおける炎症性サイトカイン、IL−1α発現亢進に対する抑制作用を指標に抗炎症効果を評価した。すなわち、ケラチノサイト由来HaCaT細胞を、60mm dishに1×105個播種し、10%FBSを含むDMEM培養液にて、37℃、5%CO2条件下で培養した。コンフルエントな状態になったところで、20μg/mLのSDSおよび10μg/mLの試料を添加した2%FBSを含むDMEM培養液にてさらに6時間培養した後、総RNAの抽出を行った。細胞からの総RNAの抽出はTRIZOL Reagent(Invitrogen)を用いて行い、総RNA量は分光光度計(NanoDrop)を用いて260nmにおける吸光度により求めた。mRNA発現量の測定は、細胞から抽出した総RNAを基にしてリアルタイムRT−PCR法により行った。リアルタイムRT−PCR法には、SuperScriptIII Platinum Two−Step qRT−PCR Kit with SYBR Green(Invitrogen)を用いた。すなわち、500ngの総RNAを逆転写反応後、PCR反応(95℃:15秒間、60℃:30秒間、40cycles)を行った。その他の操作は定められた方法に従い、IL−1α mRNAの発現量を、内部標準であるGAPDH mRNAの発現量に対する割合として求めた。尚、IL−1α用のプライマーは、以下に示したものを使用した。
ATTGTATGTGACTGCCCAAGATGA(配列番号5)
AGTTTCCCAGAAGAAGAGGAGGTT(配列番号6)
GAPDH用のプライマーセット
TGCACCACCAACTGCTTAGC(配列番号3)
TCTTCTGGGTGGCAGTGATG(配列番号4)
IL−1α産生阻害率(%)=(試料未添加SDS添加のIL−1α mRNA発現量−試料・SDS添加のIL−1αmRNA発現量)/(試料未添加SDS添加のIL−1αmRNA発現量−コントロールのIL−1αmRNA発現量)×100
ケラチノサイト由来HaCaT細胞を96wellプレートに1wellあたり5×103個播種し、各試料(最終濃度1μg/mL)を添加した0.1%FBSを含むDMEM培養液にて、37℃、5%CO2条件下で3日間培養した。細胞数の測定は、MTT法により行った。すなわち、培養終了後、培養液を除き、500μg/mLの濃度にて、MTT(3−[4,5−dimethylthiazol−2−yl]−2,5−diphenyl tetrazolium bromide)を溶解させたDMEMに培地を入れ替え、2時間培養した後、150μLのisopropanolに細胞を溶解させ、マイクロプレートリーダーを用いて570及び630nmにおける吸光度を測定した。細胞数は、570nmの吸光度値から、630nmの吸光度値を引いた値にて算出し、試料未添加の細胞数をコントロールとし、コントロールに対する試料添加時の細胞数から試料の細胞増殖促進効果を評価した。
I型コラーゲン(COL1A)のmRNA発現量の測定を行った。ヒト皮膚線維芽細胞(NB1RGB)を60mm dishに1×105個播種し、10%FBSを含むDMEM培養液にて、37℃、5%CO2条件下で培養した。コンフルエントな状態になったところで、COL1A mRNA発現量測定では各試料を最終濃度1μg/mLを添加したDMEM培養液にて、24時間培養した後、総RNAの抽出を行った。細胞からの総RNAの抽出はTRIZOL Reagent(Invitrogen)を用いて行い、総RNA量は分光光度計(NanoDrop)を用いて260nmにおける吸光度により求めた。mRNA発現量の測定は、細胞から抽出した総RNAを基にしてリアルタイムRT−PCR法により行った。リアルタイムRT−PCR法には、SuperScriptIII Platinum Two−Step qRT−PCR Kit with SYBR Green(Invitrogen)を用いた。すなわち、500ngの総RNAを逆転写反応後、PCR反応(95℃:15秒間、60℃:30秒間、40cycles)を行った。その他の操作は定められた方法に従い、COL1A mRNAの発現量を、内部標準であるβ―actin mRNAの発現量に対する割合として求めた。COL1A発現量は、コントロールのCOL1A mRNAの発現量に対する試料添加群のCOL1A mRNAの発現量の比率として算出した。なお、各遺伝子の発現量の測定に使用したプライマーは次の通りである。
AGGACAAGAGGCATGTCTGGTT(配列番号7)
TTGCAGTGGTAGGTGATGTTCTG(配列番号8)
β―Actin用のプライマーセット
CACTCTTCCAGCCTTCCTTCC(配列番号9)
GTGTTGGCGTACAGGTCTTTG(配列番号10)
HaCaT細胞を60mm dishに1×105個播種し、10%FBSを含むDMEM培地にて37℃、5% CO2条件下で4日間培養した。PBS(−)にて2回洗浄後、試料を最終濃度として10μg/mLとなるように添加したFBSを含まないDMEMにてさらに24時間培養し、総RNAを抽出した。総RNAの抽出には、RNAiso Plus(タカラバイオ)を用いた。細胞から抽出した総RNAをもとに、RT−PCR法によりHAS1およびHAS3 mRNA発現量の測定を行った。RT−PCR法にはPrimeScript RT Master Mix(タカラバイオ)及びSYBR Select Master Mix(ライフテクノロジーズ)を用い、HAS1及びHAS3のプライマーは、以下に示したものを使用した。PCR反応は、95℃:2分の初期変性を行った後、95℃:15秒、60℃:60秒を1cycleとして40cycle行った。また、内部標準としては、GAPDHを用いた。その他の操作は、定められた方法に従い、HAS1及びHAS3 mRNAの発現量を、内部標準であるGAPDH mRNA発現量に対する割合として求めた。
AATGTGGAGCGGGCTTGTC(配列番号11)
AGGCCTAGAGGACCGCTGAT(配列番号12)
HAS3用のプライマーセット
GACATGGCCCCCAAGCA(配列番号13)
TCCCCTTCCCTCCCTTACC(配列番号14)
GAPDH用のプライマーセット
TGCACCACCAACTGCTTAGC(配列番号3)
TCTTCTGGGTGGCAGTGATG(配列番号4)
処方 含有量(部)
1.製造例1の抽出物 1.0
2.1,3‐ブチレングリコール 8.0
3.グリセリン 2.0
4.キサンタンガム 0.02
5.クエン酸 0.01
6.クエン酸ナトリウム 0.1
7.エタノール 5.0
8.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
9.ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(40E.O.) 0.1
10.香料 適量
11.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分1〜6及び11と、成分7〜10をそれぞれ均一に溶解し、両者を混合し濾過して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例2の抽出物 0.5
2.スクワラン 5.5
3.オリーブ油 3.0
4.ステアリン酸 2.0
5.ミツロウ 2.0
6.ミリスチン酸オクチルドデシル 3.5
7.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.) 3.0
8.ベヘニルアルコール 1.5
9.モノステアリン酸グリセリン 2.5
10.香料 0.1
11.パラオキシ安息香酸メチル 0.25
12.1,3‐ブチレングリコール 8.5
13.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜9を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1及び11〜13を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら冷却し、45℃で成分10を加え、更に30℃まで冷却して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例1の抽出物 1.0
2.スクワラン 5.0
3.オリーブ油 5.0
4.ホホバ油 5.0
5.セタノール 1.5
6.モノステアリン酸グリセリン 2.0
7.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.) 3.0
8.ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート(20E.O.) 2.0
9.香料 0.1
10.プロピレングリコール 1.0
11.グリセリン 2.0
12.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
13.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜8を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1及び10〜13を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら冷却し、45℃で成分9を加え、更に30℃まで冷却して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例3の抽出物 0.001
2.エタノール 5.0
3.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
4.ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(60E.O.) 0.1
5.香料 適量
6.1,3‐ブチレングリコール 5.0
7.グリセリン 5.0
8.キサンタンガム 0.1
9.カルボキシビニルポリマー 0.2
10.水酸化カリウム 0.2
11.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜5と、成分1及び6〜11をそれぞれ均一に溶解し、両者を混合して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例1の抽出物 0.1
2.製造例2の抽出物 0.1
3.ポリビニルアルコール 12.0
4.エタノール 5.0
5.1,3‐ブチレングリコール 8.0
6.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
7.ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(20E.O.) 0.5
8.クエン酸 0.1
9.クエン酸ナトリウム 0.3
10.香料 適量
11.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分1〜11を均一に溶解し製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例3の抽出物 1.0
2.ステアリン酸 2.4
3.ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート(20E.O.) 1.0
4.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.) 2.0
5.セタノール 1.0
6.液状ラノリン 2.0
7.流動パラフィン 3.0
8.ミリスチン酸イソプロピル 6.5
9.カルボキシメチルセルロースナトリウム 0.1
10.ベントナイト 0.5
11.プロピレングリコール 4.0
12.トリエタノールアミン 1.1
13.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
14.二酸化チタン 8.0
15.タルク 4.0
16.ベンガラ 1.0
17.黄酸化鉄 2.0
18.香料 適量
19.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜8を加熱溶解し、80℃に保ち油相とする。成分19に成分9をよく膨潤させ、続いて、成分1及び10〜13を加えて均一に混合する。これに粉砕機で粉砕混合した成分14〜17を加え、ホモミキサーで撹拌し75℃に保ち水相とする。この油相に水相をかき混ぜながら加え、乳化する。その後冷却し、45℃で成分18を加え、かき混ぜながら30℃まで冷却して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例1の抽出物 5.0
2.製造例2の抽出物 1.0
3.炭酸水素ナトリウム 50.0
4.黄色202号(1) 適量
5.香料 適量
6.硫酸ナトリウムにて全量を100とする
[製造方法]成分1〜6を均一に混合し製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例3の抽出物 0.5
2.ポリオキシエチレンセチルエーテル(30E.O.) 2.0
3.モノステアリン酸グリセリン 10.0
4.流動パラフィン 5.0
5.セタノール 6.0
6.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
7.プロピレングリコール 10.0
8.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜5を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1及び6〜8を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら30℃まで冷却して製品とする。
処方 含有量(部)
1.製造例1の抽出物 20.0
2.乾燥コーンスターチ 30.0
3.微結晶セルロース 50.0
[製造方法]成分1〜3を混合し、散剤とする。
Claims (8)
- 月下美人の種子から子葉を得た後、その子葉から、10 −5 Mのα―ナフタレン酢酸及び10 −5 Mのベンジルアデニンを含有するMS培地及び/又はB5培地を用いて誘導したカルスであって、新しい同培地に移植したとき、さらに増殖することができることを特徴とする月下美人のカルス。
- 月下美人の種子から子葉を得た後、その子葉から、10 −5 Mのα―ナフタレン酢酸及び10 −5 Mのベンジルアデニンを含有するMS培地及び/又はB5培地を用いて培養することを特徴とする月下美人のカルスの製造方法。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする活性酸素消去剤。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とするコラゲナーゼ活性阻害剤。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする美白剤。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とするIL−1α産生阻害剤。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とするコラーゲン産生促進剤。
- 請求項1に記載の月下美人のカルス及び/又はその抽出物を含有することを特徴とする皮膚外用剤。
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JP2016011683A JP6779627B2 (ja) | 2016-01-25 | 2016-01-25 | 月下美人のカルス作出方法及び、その抽出物を有効成分とする皮膚外用剤や内用剤など |
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2016
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