JP6618191B2 - 脳マラリアの診断および治療 - Google Patents
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Description
(1)被験体の嗅球(OLF)の状態を脳マラリアの指標とする方法。
(2)前記状態は、嗅覚異常、細胞検査および嗅球の診断画像から選択される少なくとも1つにより判定されることを特徴とする、項目1に記載の方法。
(3)前記嗅覚異常は、基準嗅覚検査および静脈的嗅覚検査からなる群より選択される試験における異常である、項目2に記載の方法。(4)前記診断画像は、核磁気共鳴映像法(MRI)によるものである、項目2または3に記載の方法。
(5)前記MRIは、7T以上の磁力で撮影される、項目4に記載の方法。
(6)前記診断画像において、スポットが観察されることは脳マラリアの指標である、項目2〜5のいずれか1項に記載の方法。
(7)前記細胞検査は、染色または免疫組織化学法で検査される、項目2〜6のいずれか1項に記載の方法。
(8)前記被験体の嗅球の異常は、罹患早期の指標である、項目1〜7のいずれか1項に記載の検出法。
(9)被験体の嗅球(OLF)の状態を測定することを包含する、脳マラリアを診断する方法。
(10)前記被験体の嗅球が異常であることは、該被験体が脳マラリアに罹患していることの指標である、項目9に記載の方法。
(11)嗅球の状態を測定する手段を含む、脳マラリアの検出または診断のための装置。
(12)前記手段は磁気共鳴画像化(MRI)手段である、項目11に記載の装置。
(13)前記MRIは、7T以上のMRIである、項目12に記載の装置。
(14)CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤を含む、脳マラリアの予防または治療剤。
(15)前記CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤は、CCL21、CXCR3およびCCR7、ならびにこれらをコードする核酸からなる群より選択される少なくとも1つ因子の阻害剤を含む、項目14に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
(16)前記阻害剤は、低分子化合物、抗体またはそのフラグメントもしくは機能的等価物、siRNA、shRNA、アンチセンス核酸、アプタマー、それらの薬学的に許容可能な塩もしくは溶媒和物、またはその薬学的に受容可能な塩の溶媒和物を少なくとも1種含む、項目14または15に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
(17)前記阻害剤は、抗CCL21抗体、抗CXCR3抗体、および抗CCR7抗体からなる群より選択される少なくとも1種の抗体、またはそのフラグメントもしくは機能的等価物を含む、項目14〜16のいずれか1項に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
(18)前記阻害剤は、抗CCL21抗体、抗CXCR3抗体および抗CCR7抗体からなる群より選択される少なくとも2種の抗体、またはそのフラグメントもしくは機能的等価物を含む、項目14〜17のいずれか1項に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
(19)前記阻害剤は、抗CCL21抗体、抗CXCR3抗体および抗CCR7抗体の3種の抗体、またはそのフラグメントもしくは機能的等価物を含む、項目14〜18のいずれか1項に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
(20)脳マラリアの予防または治療のための、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤。
(21)項目15〜19のいずれか1項または複数の項における特徴をさらに含む、項目20に記載の阻害剤。
(22)有効量のCCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤を、必要とする被験者に投与することを含む、該被験者の脳マラリアを予防または治療するための方法。
(23)CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子を含む、脳マラリアのマーカー。
(24)前記CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子は、CCL21、CXCR3、CCR7、ならびにそれらをコードする核酸、その発現産物およびその由来物からなる群より選択される少なくとも1つを含む、項目23に記載の脳マラリアのマーカー。
(25)前記CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子は、(1)IP−10(CXCR3リガンド)、CXCL11(I−TAC)、およびCXCL9(MIG)からなる群より選択される少なくとも1つの炎症性サイトカイン、ならびにそれらをコードする核酸、その発現産物およびその由来物からなる群より選択される少なくとも1つ;
(2)CCL21および/またはCCL19
(3)CD8α樹状細胞および他の樹状細胞;ならびに
(4)CD8T細胞および他のT細胞
からなる群より選択される、少なくとも1つの因子を含む、
項目23または24に記載の脳マラリアのマーカー。
(26)(A)嗅球におけるCCL21および/またはCCL19の発現上昇;
(B)皮質におけるIFN−γの発現上昇;
(C)前記CD8α樹状細胞は、CCR7依存的にプライミングされるものが観察されること;および/または
(D)脳または脾臓において活性化CD8T細胞が観察されること
を脳マラリアの発症の指標とする、項目23〜25のいずれか1項に記載の脳マラリアのマーカー。
(27)前記脳マラリアは、P.falciparumからなる群より選択されるマラリア原虫に対応するヒトマラリア原虫によって生じる、項目23〜26のいずれか1項に記載の脳マラリアのマーカー。
(28)前記脳マラリアはげっ歯類または霊長類のものである、項目23〜27のいずれか1項に記載のマーカー。
(29)前記CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子は、配列番号1、3または5に記載の核酸配列もしくはそのフラグメントもしくは改変体または配列番号2、4または6に記載のアミノ酸配列もしくはそのフラグメントもしくは改変体を含む、項目23〜28のいずれか1項に記載のマーカー。
(30)(1)CCL21タンパク質またはこれをコードする核酸;
(2)CXCR3またはこれをコードする核酸;および/または
(3)CCR7タンパク質またはこれをコードする核酸
を含む項目23〜29のいずれか1項に記載のマーカー。
(31)CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子、ならびにそれらをコードする核酸、その発現産物およびその由来物からなる群より選択される少なくとも1つに結合する物質を含む、脳マラリアの検出剤または診断剤。
(32)前記検出剤は、抗体またはそのフラグメントもしくは機能的等価物、あるいは核酸である、項目31に記載の検出剤または診断剤。
(33)前記検出剤または診断剤は、標識されたものである、項目31または32に記載の検出剤または診断剤。
(34)前記検出剤または診断剤は、核酸であり、該核酸はプローブまたはプライマーである、項目31〜33のいずれか1項に記載の検出剤または診断剤。
(35)CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子のいずれかまたはその発現産物に結合する物質を用いる、脳マラリアを識別する方法。
(36)対象検体のCCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子のいずれかの発現が正常検体のものに比べて上昇している場合、該対象検体は脳マラリアを有すると診断されることを特徴とする、項目35に記載の方法。
(37)前記識別は、項目31〜34のいずれか1項に記載の検出剤または診断剤を用いて行われる、項目35または36に記載の方法。
(a)配列番号1に記載の塩基配列またはそのフラグメント配列を有するポリヌクレオチド;
(b)配列番号2に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドまたはそのフラグメントをコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が、置換、付加および欠失からなる群より選択される1つの変異を有する改変体ポリペプチドまたはそのフラグメントであって、生物学的活性を有する改変体ポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド;
(d)配列番号1に記載の塩基配列のスプライス変異体もしくは対立遺伝子変異体またはそのフラグメントである、ポリヌクレオチド;
(e)配列番号2に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドの種相同体またはそのフラグメントをコードする、ポリヌクレオチド;
(f)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドにストリンジェント条件下でハイブリダイズし、かつ生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;または
(g)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドまたはその相補配列に対する同一性が少なくとも70%である塩基配列からなり、かつ、生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CCL21の有する活性をいう。
(a)配列番号2に記載のアミノ酸配列またはそのフラグメントからなる、ポリペプチド;
(b)配列番号2に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が置換、付加および
欠失からなる群より選択される1つの変異を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド;
(c)配列番号1に記載の塩基配列のスプライス変異体または対立遺伝子変異体によってコードされる、ポリペプチド;
(d)配列番号2に記載のアミノ酸配列の種相同体である、ポリペプチド;または
(e)(a)〜(d)のいずれか1つのポリペプチドに対する同一性が少なくとも70%であるアミノ酸配列を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド、であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CCL21の有する活性をいう。
(a)配列番号3に記載の塩基配列またはそのフラグメント配列を有するポリヌクレオチド;
(b)配列番号4に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドまたはそのフラグメントをコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号4に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が、置換、付加および欠失からなる群より選択される1つの変異を有する改変体ポリペプチドまたはそのフラグメントであって、生物学的活性を有する改変体ポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド;
(d)配列番号3に記載の塩基配列のスプライス変異体もしくは対立遺伝子変異体またはそのフラグメントである、ポリヌクレオチド;
(e)配列番号4に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドの種相同体またはそのフラグメントをコードする、ポリヌクレオチド;
(f)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドにストリンジェント条件下でハイブリダイズし、かつ生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;または
(g)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドまたはその相補配列に対する同一性が少なくとも70%である塩基配列からなり、かつ、生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CXCR3の有する活性をいう。
(a)配列番号4に記載のアミノ酸配列またはそのフラグメントからなる、ポリペプチド;
(b)配列番号4に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が置換、付加および欠失からなる群より選択される1つの変異を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド;
(c)配列番号3に記載の塩基配列のスプライス変異体または対立遺伝子変異体によってコードされる、ポリペプチド;
(d)配列番号4に記載のアミノ酸配列の種相同体である、ポリペプチド;または
(e)(a)〜(d)のいずれか1つのポリペプチドに対する同一性が少なくとも70%であるアミノ酸配列を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド、であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CXCR3の有する活性をいう。
(a)配列番号5に記載の塩基配列またはそのフラグメント配列を有するポリヌクレオチド;
(b)配列番号6に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドまたはそのフラグメントをコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号6に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が、置換、付加および欠失からなる群より選択される1つの変異を有する改変体ポリペプチドまたはそのフラグメントであって、生物学的活性を有する改変体ポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド;
(d)配列番号5に記載の塩基配列のスプライス変異体もしくは対立遺伝子変異体またはそのフラグメントである、ポリヌクレオチド;
(e)配列番号6に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドの種相同体またはそのフラグメントをコードする、ポリヌクレオチド;
(f)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドにストリンジェント条件下でハイブリダイズし、かつ生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;または
(g)(a)〜(e)のいずれか1つのポリヌクレオチドまたはその相補配列に対する同一性が少なくとも70%である塩基配列からなり、かつ、生物学的活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CCR7の有する活性をいう。
(a)配列番号6に記載のアミノ酸配列またはそのフラグメントからなる、ポリペプチド;
(b)配列番号6に記載のアミノ酸配列において、1以上のアミノ酸が置換、付加および欠失からなる群より選択される1つの変異を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド;
(c)配列番号5に記載の塩基配列のスプライス変異体または対立遺伝子変異体によってコードされる、ポリペプチド;
(d)配列番号6に記載のアミノ酸配列の種相同体である、ポリペプチド;または
(e)(a)〜(d)のいずれか1つのポリペプチドに対する同一性が少なくとも70%であるアミノ酸配列を有し、かつ、生物学的活性を有する、ポリペプチド、であり得る。ここで、生物学的活性とは、代表的に、CCR7の有する活性をいう。
(1)IP−10(CXCR3リガンド)、CXCL11(I−TAC)、およびCXCL9(MIG)からなる群より選択される少なくとも1つの炎症性サイトカイン、ならびにそれらをコードする核酸、その発現産物およびその由来物からなる群より選択される少なくとも1つ;
(2)CCL21および/またはCCL19(3)CD8α樹状細胞および他の樹状細胞;ならびに
(4)CD8T細胞および他のT細胞。
性は、その二分子の間の結合およびそれによって生じる生物学的変化であり得、そして、例えば、一つの分子を抗体を用いて沈降させたときに他の分子も共沈するとき、2分子は結合していると考えられる。従って、そのような共沈を見ることが一つの判断手法として挙げられる。例えば、ある因子が酵素である場合、その生物学的活性は、その酵素活性を包含する。別の例では、ある因子がリガンドである場合、そのリガンドが対応するレセプターへの結合を包含する。そのような生物学的活性は、当該分野において周知の技術によって測定することができる。従って、「活性」は、結合(直接的または間接的のいずれか)を示すかまたは明らかにするか;応答に影響する(すなわち、いくらかの曝露または刺激に応答する測定可能な影響を有する)、種々の測定可能な指標をいい、例えば、本発明のポリペプチドまたはポリヌクレオチドに直接結合する化合物の親和性、または例えば、いくつかの刺激後または事象後の上流または下流のタンパク質の量あるいは他の類似の機能の尺度が挙げられる。
は、ストリンジェントハイブリダイゼーション、ゲノムDNAをナイロンメンブレン等に貼り付けたマクロアレイまたはガラス板に貼り付けたマイクロアレイ(マイクロアレイアッセイ)、PCRおよびinsituハイブリダイゼーションなどが挙げられるがそれらに限定されない。本明細書において、本発明において使用される遺伝子には、このような電子的検索、生物学的検索によって同定された対応遺伝子も含まれるべきであることが意図される。
本明細書において「アゴニスト」とは、対象となる実体(例えば、レセプター)に対してそのレセプターの生物学的作用を発現またはそれを増強する物質をいう。天然のアゴニスト(リガンドとも称される)のほか、合成されたものや改変されたもの等を挙げることができる。
本明細書において「アンタゴニスト」とは、対象となる実体(例えば、レセプター)に対してそのレセプターの生物学的作用の発現を抑制または阻害する物質をいう。天然のアンタゴニストのほか、合成されたものや改変されたもの等を挙げることができる。アゴニスト(またはリガンド)と競合的に抑制または阻害するもののほか、非競合的に抑制または阻害するもの等がある。アゴニストを改変することによっても得られうる。生理現象を抑制または阻害することから、アンタゴニストは阻害剤(抑制剤)または阻害(抑制)(する)因子の概念に包含されうる。したがって、本明細書においては実質的にアンタゴニストは「阻害剤」と同義で用いられる。
National Institutes of Health,Bethesda,MD.(1991))、またはChothiaの定義(Chothiaet al.,J.Mol.Biol.,1987;196:901−917)を採用してもよい。本発明の一実施形態においては、Kabatの定義を好適な例として採用するが、必ずしもこれに限定されない。また、場合によっては、Kabatの定義とChothiaの定義の両方を考慮して決定しても良く、例えば、各々の定義によるCDRの重複部分を、または各々の定義によるCDRの両方を含んだ部分をCDRとすることもできる。そのような方法の具体例としては、Kabatの定義とChothiaの定義の折衷案である、Oxford Molecular’s AbM antibody modeling softwareを用いたMartinらの方法(Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1989;86:9268−9272)がある。このようなCDRの情報を用いて、本発明に使用されうる変異体を生産することができる。このような抗体の変異体では、もとの抗体のフレームワークに1または数個(例えば、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個)の置換、付加もしくは欠失を含むが、該CDRには変異を含まないように生産することができる。
が挙げられるが、これらに限定されない。本発明のマーカーまたはマーカーの検出剤、検査剤、診断剤(プライマーまたはプローブ等であり得る)にはこのようなタグを結合させてもよい。
以下に本発明の好ましい実施形態を説明する。以下に提供される実施形態は、本発明のよりよい理解のために提供されるものであり、本発明の範囲は以下の記載に限定されるべきでないことが理解される。従って、当業者は、本明細書中の記載を参酌して、本発明の範囲内で適宜改変を行うことができることは明らかである。また、本発明の以下の実施形態は単独でも使用されあるいはそれらを組み合わせて使用することができることが理解される。
1つの局面において、本発明は、被験体の嗅球(OLF)の状態を脳マラリアの指標とする方法を提供する。あるいは、本発明は、被験体の嗅球(OLF)の状態を判定する工程を包含する、脳マラリアの診断方法を提供する。ここで、被験体の嗅球が異常であることは、該被験体が脳マラリアに罹患していることの指標であることが本発明において見出された。このような診断は、脳マラリアの他の症状が出る前に見出すことができることから、脳マラリアの早期診断を可能にするものとして注目されるべきである。すなわち、被験体の嗅球の異常は、脳マラリアの罹患早期の指標といえる。また、嗅球の状態の判定は、種々の手法で行うことが可能であり、脳マラリアの早期診断、および本発明が初めて提供するもののような脳マラリアの予防または治療薬を投与することで、脳マラリアの本格的な処置を可能にするという点でも注目される。
別の局面において、本発明は、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤を含む、脳マラリアの予防または治療剤、予防薬または治療薬、予防または治療のための医薬もしくは医薬組成物(これらの用語は、本明細書において特に断らない限り相互に交換可能に使用され同じ対象を指す。)を提供する。あるいは、本発明は、脳マラリアの予防または治療のための、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子の阻害剤を提供する。この治療または予防薬または特定の治療または予防用の阻害剤を用いれば、脳マラリアを治療または予防することができる。またこの予防または治療薬は、これまで治療・予防法がなかった脳マラリアに初めて予防および治療薬を提供するという点で優れており、好ましい実施形態で使用される場合は抗体を使用するため、安全性の観点から優れている。
別の局面において、本発明は、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子を含む、脳マラリアのマーカーを提供する。あるいは、本発明は、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子のいずれかまたはその発現産物に結合する物質を用いる、脳マラリアを識別または診断する方法を提供する。ここでは、対象検体のCCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子のいずれかの発現が正常検体のものに比べて上昇している場合、該対象検体は脳マラリアを有すると診断される。このような診断は、以下に説明するような結合剤ないし検出剤を用いて行うことができる。したがって、本発明の方法は、対象検体のCCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系の少なくとも1つの因子のいずれかの発現を調べる工程を包含し、その結果によって、脳マラリアの罹患の指標とすることができる。
(1)IP−10(CXCR3リガンド)、CXCL11(I−TAC)、およびCXCL9(MIG)からなる群より選択される少なくとも1つの炎症性サイトカイン、ならびにそれらをコードする核酸、その発現産物およびその由来物からなる群より選択される少なくとも1つ;
(2)CCL21および/またはCCL19
(3)CD8α樹状細胞および他の樹状細胞;ならびに
(4)CD11c+ CD8T細胞(ヒトの場合CD8T細胞)および他のT細胞
からなる群より選択される、少なくとも1つの因子を含む。
(A)嗅球におけるCCL21および/またはCCL19の発現上昇;
(B)皮質におけるIFN−γの発現上昇;
(C)前記CD8α樹状細胞は、CCR7依存的にプライミングされるものが観察されること;および/または
(D)脳または脾臓においてCD11c+ CD8T細胞が観察されることを脳マラリアの発症の指標とすることができるがこれらに限定されない。
(1)CCL21タンパク質またはこれをコードする核酸;
(2)CXCR3またはこれをコードする核酸;および/または
(3)CCR7タンパク質またはこれをコードする核酸
を含む。
本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Sambrook J.et al.(1989).Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harborおよびその3rd Ed.(2001);Ausubel,F.M.(1987).Current Protocols in Molecular Biology,Greene Pub.Associates and Wiley−Interscience;Ausubel,F.M.(1989).Short Protocols inMolecular Biology:A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology,Greene Pub.Associates and Wiley−Interscience;Innis,M.A.(1990).PCR Protocols:A Guide to Methods and Applications,Academic Press;Ausubel,F.M.(1992).Short Protocols in Molecular Biology:A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology,Greene Pub.Associates;Ausubel,F.M.(1995).Short Protocols in Molecular Biology:A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology,Greene Pub.Associates;Innis,M.A.et al.(1995).PCR Strategies,Academic Press;Ausubel,F.M.(1999).Short Protocols in Molecular Biology:A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology,Wiley,and annual updates;Sninsky,J.J.et al.(1999).PCR Applications:Protocols for Functional Genomics,Academic Press、別冊実験医学「遺伝子導入&発現解析実験法」羊土社、1997などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分(全部であり得る)が参考として援用される。
(材料および方法)
P.berghei ANKA(PbA)
2種類の異なるPbA系統を使用した。これらのPbA系統の詳細(GFP有、無)については、以前に記載されている(Coban,C.ら(2007).Int Immunol 19,67−79.;Ishino,T.ら(2006).Mol Microbiol 59,1175−1184.;Zhao,H.ら(2012).Cell Host Microbe 12,705−716.)。
マウス
年齢と性別をマッチさせたC57BL/6(CLEA,Osaka,Japan)または同腹仔マウス(Ccr7+/−)を野生型(WT)群として使用した。C57BL/6バックグラウンドのCcr7−/−マウスは、M.MiyasakaおよびM.H.Jang(大阪大学)によって提供され、以前に記載されたとおりに作製された(Forster,R.ら(1999).Cell 99,23−33.)。Batf3−/−マウスは、Jackson Laboratoriesから購入し、C57BL/6マウスと交配させて、+/−表現型を作製した。
体重5kgの雌性ニホンザル(Macacafuscata)に、以前に記載されたように、1×109の凍結P.coatneyi感染赤血球(CDC系統)をi.v.接種し、毎日追跡した(Kawai,S.およびSugiyama,M.(2010).Acta Trop 114,152−156.)。サルが重篤なマラリアの症状を示し、意識不明となった感染後14日目の終わりに、ケタミン−HCl(15mg/kg)の筋肉内注射により麻酔をかけた後に検死解剖を行った。コントロールとして、P.knowlesiiを感染させたニホンザル1頭と、非感染コントロールとしてのカニクイザル1頭を用いた。
マウス頭部のMRIイメージングは、超高磁場11.7T MRIスキャナ(AVANCE−II 500 WB;Bruker BioSpin)を用いて行った。ナイーブなマウスを、MRI処理手順の間に1.0〜1.5%イソフルランで麻酔することにより、生体からの最初の像と、4%パラホルムアルデヒド(PFA)固定した死亡マウスからの像とを比較した。この比較から、両者に有意な差がないことが示唆された(図1E)。それゆえ、この後の実験においては、深麻酔をかけた感染マウスを、PFA中で固定し、MRIによって可視化した。以下のパラメーターでT2*強調画像(FLASHシーケンス)および拡散強調画像(DWI;スピンエコーシーケンス)を用いて出血を検出した:1)T2*強調細密画像:視野,15mm×15mm;マトリックスサイズ,512×512;スライス厚,0.3mm;繰り返し時間,450ms;エコー時間,6.0ms;平均,64;スキャン時間,4時間5分。2)T2*強調通常画像:視野,20mm×20mm;マトリックスサイズ,256×256;スライス厚,0.5mm;繰り返し時間,400ms;エコー時間,6.0ms;平均,16;スキャン時間,27分。3)DWI:視野,15mm×15mm;マトリックスサイズ,512×512;スライス厚,0.3mm;繰り返し時間,6000ms;エコー時間,21.0ms;b値,1000s/mm2;平均,9;スキャン時間,7時間41分。
生体マウス内のOLFを可視化するために、マウスを、ケタミン(0.13mg/g)およびキシラジン(0.01mg/g)の筋肉内注射により絶えず麻酔しながら、以前に記載された外科的「薄型頭蓋(thinned−skull)」技術をOLF領域用に改良した(Sawada,M.ら、(2011).J Neurosci 31,11587−11596.;Wake,H.ら(2009).J Neurosci 29,3974−3980.)。簡単に述べると、定位固定ステージ上にイヤーバーを用いてマウスの頭部を固定した。双眼実体顕微鏡下で、高速ドリル(Minimo,ミニター株式会社)および手術用メスを用いて、OLF上の頭蓋を注意深く薄く(約20〜30μm)した。その領域上の頭蓋に金属リングを取り付け、実験の間、薄くした領域を湿った状態に維持した。イメージングは、1〜2.5倍のデジタルズームにて、水浸対物レンズ(XLPLN25XWMP,Olympus)を備えた顕微鏡(FV1000MPE,Olympus)を用いて行った。OLFの血管構造をテトラメチルローダミンイソチオシアネート(TRITC)−デキストラン(5mg/マウス)(T1287,Sigma)を静脈内注射することにより可視化し、T細胞を、ブリリアントバイオレット421を結合させたTCR−β(H57−597,Biolegend)10μg、またはCD8α(53−6.7,Biolegend)5μgにより標識した。チタンサファイアレーザー(MaiTai Hp,Spectral Physics)をT細胞および血管用に800nmの励起波長にチューニングし、そして、Chameleonレーザー(Coherent)をGFP−PbA用に950nmの励起波長にチューニングした。30〜80のz平面を含む蛍光画像スタックを連続的に繰り返し取得することによって、小さなOLF領域のコマ撮りイメージング[1.1095秒あたり507.934μm(x),507.934μm(y),5μm(z)]を行った(1つのスタック画像の取得には、取得するz平面の数に応じて約40〜90秒を要する)。典型的なイメージングの深さは、軟膜表面から80〜150μmであり、これは、糸球層に対応していた(図2A〜B)(Chaigneau,E.ら、(2003).Proc Natl Acad Sci U SA 100,13081−13086.)。ケタミンおよびキシラジンの混合物の断続的な筋肉内注射は、動物を1〜2時間にわたりモニタリングすることを可能にした。各マウスについて1回だけイメージングを行った。全てのイメージングデータは、Velocityソフトウェアを用いて処理および分析した。
糸球に近い深部層における血管の直径を、Z像スタックの取得し、これを二次元画像へと投影することによって測定した。次いで、血管の内径を、以前に記載されたとおりに測定した(Chaigneau,E.ら、(2003).Proc Natl Acad Sci U SA 100,13081−13086.)。
BBB透過性の評価
示す時点において、マウスに、1%エバンスブルー染料(Sigma)200μlをi.v.注射した。2時間後にマウスを屠殺し、脳を摘出し、PBSで洗浄し、そして、解剖顕微鏡下で脳の像を撮影した。
脳サンプルをホモジナイズし、総RNAを単離し、そして、q−PCRを以前に記載されたとおりに実施した(Zhao,H.ら(2012).Cell HostMicrobe 12,705−716.)。マラリア感染を、PbA 18S rRNAに特異的なプライマーを用いて定量した。全てのプライマーは、Assays on Demand(Applied Biosystems)から購入した。
食料埋設試験を、以前に記載されたとおりに実施した(Yang,M.およびCrawley,J.N.(2009).Curr Protoc Neurosci Chapter 8,Unit 8 24.)。簡単に述べると、マウスを、18時間にわたって食料の無い状態にし、続いて、床敷きを含み、ケージのランダムなコーナーに、表面からおよそ1cm下に食料が埋設された新しいケージに移した。マウスが埋設された食料を見つけるまでの時間を記録した。15分が経過してもマウスが埋設された食料を見つけられなかった場合、試験を中止し、その時間を900秒(潜伏スコア,>>>)として記録した。
脳を摘出し、以前に報告されたとおりに免疫組織化学(IHC)のために調製した(Zhao,H.ら(2012).Cell HostMicrobe 12,705−716.)。以下の抗体を使用した:抗マウスTER119抗体(Biolegend)、ZO−1抗体(Invitrogen)、CCL21抗体(Peprotech)、PECAM抗体(BD Pharmingen)およびGFAP抗体(Dakocytomation)。切片は、蛍光またはLSM 780共焦点レーザースキャン顕微鏡(Zeiss,Germany)を用いて観察した。
継続的な発熱を記録するために、内製のサーマルモニタリングシステムを備えたマウスのケージを開発した(Aoshiら、論文投稿準備中、特開2012−231725参照)。ケージは、12時間−12時間の明暗サイクルを持ち、そして、食料および水への自由なアクセスが可能な、環境温度が30℃に制御されたインキュベーターのように調製した。マウスの背の毛を電気バリカンで取り除き、背の皮膚温度を、インキュベーターの内側に備え付けたFLIR b60サーマルカメラによって1分間隔で連続的に記録し、そして、データを、QuickPlotソフトウェア(FLIR Systems,Inc.)により分析した。
脾臓および脳の細胞を、以前に記載されたとおりに精製した(Coban,C.ら(2007).Int Immunol 19,67−79.;Zhao,H.ら(2012).Cell Host Microbe 12,705−716.)。細胞表面を、APC−CD11c(HL3)、PE−CD4(RM4−5)、PerCp Cy5.5−CD8α(53−6.7)、PE Cy7−CD3(145−2C11)、APC Cy7−TCRβ(H57−597)、APC−CCR7(4B12)、APC−CD44(IM7)、PE CY7−CD11c(HL3)およびAPC Cy7−CD11b(M1/70)で染色した。これらの抗体は、BD Biosciences(San Jose,CA)およびBioLegend(San Diego,CA)から購入した。サンプルを、BD LSRFortessaフローサイトメーター上に取り込み、FlowJoソフトウェアを用いて分析した。細胞内IFNγ染色には、脾細胞をブレフェルジンA(10μg/ml,Sigma)の存在下で2時間インキュベートし、細胞を回収して、細胞内染色プロトコール(eBioscience)に従ってIFNγで染色した。
48ウェルのトランスウェルプレート(5μm孔径,Costar,Corning Inc.)を、以前に記載されたとおりに、化学走性アッセイに使用した(Rappert,A.ら、(2002).J Immunol 168,3221−3226.)。簡単に述べると、無血清DMEM中に指定した濃度で希釈した組換えタンパク質CCL21および/または抗CCL21抗体(R&D Systems)を、下側の区画に充填した。感染後6日目の感染動物由来の、B細胞およびCD11b+細胞およびCD4+細胞を枯渇させた後に濃縮された脾臓CD8 T細胞を、上側のウェルに三連で加え(5×106/ウェル)、37℃にて2時間無血清DMEM培地中でインキュベートした。リンパ球に対する強力な化学走性リガンドであるヒトSDF−1α(Peprotech,Inc.)をポジティブコントロールとして使用した。CD11c+CXCR3+CD8 T細胞の移動率を、フローサイトメーターにより全細胞をカウントすることによって計算した。ケモカイン誘導性の移動を、非刺激のコントロール群の移動に対して標準化し、コントロールに対する割合(%)として表した。
感染後5日目に採血を行い、マウスBio−Plex(Bio−rad)によってサイトカインおよびケモカインの検出を行った。
PbANKA感染後5日目のRag2−/−マウスから総脾細胞を調製し、脾臓CD8α+DCを濃縮した。簡単に述べると、抗マウスCD11bマイクロビーズ(MACS,Miltenyi Biotec.,Germany)を用いてCD11b−集団をネガティブ選択し、その後、CD4+集団を除去した(L3T4,MACS)。残った濃縮CD8α+DC(20×106細胞)を、0日目にPbA感染の2時間前にレシピエントマウスにi.v.注入した。ポジティブ選択したCD8α+DC細胞集団の純度および表現型は、養子免疫の前にフローサイトメトリーにより評価し、典型的には、95%超の純度であることが分かった(図6I)。
統計解析
2群間の差は、両側対応無しのStudentのt検定またはノンパラメトリックMann−Whitney検定(Prismソフトウェア)のいずれかを用いて統計的有意差について解析した。生存曲線については、Log−rank(Mantel−Cox)検定を行った。p<0.05を統計的に有意とみなした。
実施例1では、マウスモデルを用いて、脳マラリアと嗅球の関係性に関する実験を行った。
本実施例ではまず、超高磁場MRIイメージングは嗅球をP.berghei ANKA寄生虫より引き起こされる脳マラリア中の脳における微小出血の場所として同定した。
本発明者らは次に、BBB崩壊の潜在的な関与を含めて、ECMの間にOLF領域からの出血が何故、そして、どのようにして生じるかを調べた。OLFは、高密度でかつ様々な方向(放射状および接線方向)を向いた柵状の微小血管構造から構成される。このような複雑な血管構造は、神経細胞およびグリア細胞と一緒に糸球内でシナプス性の相互作用を行い、組織内での神経細胞移動のための適切な足場環境として機能し得る(Bovetti,S.ら(2007).J Neurosci 27,5976−5980.;Danielyan,L.ら(2009).Eur J Cell Biol 88,315−324.)。このOLFの独特な血管構造が、PbA感染赤血球ならびに感染に関連する事象のための「脆弱な」スポットとなり得るかどうかを調べるために、OLFを生体内MP顕微鏡により可視化した。GL程度に深い(約150μm)OLF毛細管が可視化され得るOLFのMPイメージングは、これまでに、げっ歯類を用いて実施されている(Chaigneau,E.ら、(2003).Proc Natl Acad Sci USA100,13081−13086.;Petzold,G.C.ら、(2008).Neuron 58,897−910.;Sawada,M.ら、(2011).J Neurosci 31,11587−11596.)(図2A)。本発明者らは、以前に記載されたとおり(Sawada,M.ら、上掲)にマウスの背部OLFの上で薄型頭蓋外科手術を行い、組織をインタクトなまま維持した。OLF血管の生体画像は、この領域が解剖学的に複雑な毛細管構造(直径<5μm)を有しており(Petzold,ら、上掲)、感染から5日後に、PbA寄生虫内で発現されるGFPシグナルとして示される、循環iRBCの付着/閉塞に適していることを示した(図2B、また動画S1(本明細書では示さない)でも確認している)。動画S1では、生体内多光子顕微鏡によって可視化したマウスの嗅球を確認した。マウスにGFP−PbA寄生虫を感染させた。感染後5日目、マウスは目に見えるECMの症状を示さなかったが、血管を赤色TRITC−デキストランで標識し、図2Aに示されるように、30分間にわたって像を取得した。一部の寄生虫が減速し、血管に付着しているのが観察された。撮影した動画は5つあったが、感染後5日目の5匹のマウスにおいて同様であった。この動画S1に見られるように、一部のGFP標識された寄生虫の速度は低減および/または停止され、最終的には閉塞を引き起こした。これは、脳の他の部分と比較して、感染後6日目のOLFにおいて18S rRNAレベルならびにT細胞の蓄積によって測定される寄生虫負荷量が有意により高かったことと一致していた(図2C)。まとめると、これらの結果は、OLFが、おそらくはその柵状の毛細管構造に起因して、ECM発病に特有の領域となり、それによって、循環iRBCが減速し、付着し、そして/または、隔離され得、最終的には出血へと至ることを示唆している。
脳内のCD8 T細胞の血管内蓄積は、ECMの発病において重要な役割を有することが示された(Belnoue,E.ら(2002).J Immunol 169,6369−6375.;Miyakoda,M.ら、(2008).J Immunol 181,1420−1428.)。それゆえ、本発明者らは、CD8 T細胞の補充が、OLFの生体内MPイメージングによって、観察され得るかどうか、そして/または、PbA感染後の微小出血と関連し得るかどうか、を検討した。感染マウスのOLFにおける標識CD8 T細胞およびGFP発現PbA寄生虫の生体内イメージングは、微小出血が分岐毛細管において生じていることをはっきりと示した(図2D、動画S2でも確認している(本明細書では示さない))。動画S2では、嗅球毛細管における新たな微小出血部位を示す、GFP−PbA寄生虫を感染させたマウスの代表的な3D像を撮影した。感染マウスを、感染後6日目に約1時間、生体内多光子顕微鏡によって可視化した。赤色、赤色TRITC−デキストランで標識した血管;緑色、GFPを発現するPbA寄生虫;青色、抗CD8α抗体で標識したCD8 T細胞。一部の赤色領域は、血管の完全性が失われた既に出血した領域を示している;T細胞は組織中をクロールしている。中心部の血管の完全性の突然の喪失は新たな出血が示された。動画S2に見られるように、微小出血の発生中に、赤色のデキストラン標識された毛細管が変更された(赤色色素がほとんど組織内に放出された)。重要なことには、CD8 T細胞は、ECMの発症中、血管内を前後に「クロール」し、数が増加することが分かり(図2D、動画S2、S3およびS4(本明細書では示さない)でも確認している)、一部は、出血領域周囲に付着することが分かった(動画S2(本明細書では示さない))。これらのOLF内でのCD8 T細胞の挙動は、ECMの末期における不安定な血流に受動的に従い得るが、比較的大きな血管(10μm前後)における感染後5日目に本願発明者らが構築した3D動画は、CD8 T細胞が、血管に付着し、血管壁に沿って活発にクロールしている様子をはっきりと示した(動画S3(本明細書では示さない))。動画3Sでは、T細胞が嗅球内の微小血管に沿ってクロールする様子が示され、感染後5日目のGFP−PbA寄生虫を感染させたマウスの嗅球の3D構築した多光子動画が示される。赤色、赤色TRITC−デキストランで標識した血管;緑色、GFPを発現するPbA寄生虫;青色、抗TCRβ抗体で標識したT細胞が示される。T細胞は、微小血管(直径約10μm)の壁に付着し、壁に沿って移動していることが分かった。これらのT細胞によるクロール挙動は、インビボでの抗TCRβまたは抗CD8抗体(これらの抗体は、ナイーブな動物のT細胞に対して影響を有さなかった)標識に因るものではなかった(動画S4(本明細書では示さない)、データ示さず)。それどころか、完全に活性化されたT細胞は、感染後5日目にOLF毛細管内に蓄積し始め、クロールの動きによってその数を大いに増加させた(動画S4(本明細書では示さない))。動画S4では、T細胞が活性化され、嗅球毛細管内をクロールする様子を示す、感染後4〜6日目のナイーブマウスおよびGFP−PbA寄生虫感染マウスの嗅球生体内多光子イメージングが示される。赤色、赤色TRITC−デキストランで標識した血管;緑色、GFPを発現するPbA寄生虫;青色、抗TCRβ抗体で標識したT細胞であるが、これらの動画では、青色チャンネルのみが示される。各動画は約1時間撮影した。青色の円は、血管内で速く流れるT細胞を示し、赤色の円は、減速し、血管内をクロールするT細胞を示す。ナイーブなマウスにおいてT細胞の動きを捉えるのは困難であったが、T細胞数は感染後の日数と共に増加した。その動きはクロール挙動を示す。まとめると、これらのOLFの生体画像は、クロールするCD8 T細胞の数の増加とともに、蓄積したiRBCが、最終的には小さなOLF毛細血管の微小出血によって血管から出ていくにちがいないことを示す。
iRBCならびにCD8 T細胞の蓄積が、ECMの間に段階的に生じ、OLF内の微小出血をもたらすという上記の知見を考慮して、本発明者らは、OLFが化学感受性のための複雑な生理学的シナプスを形成する嗅覚神経を含んでいるために、OLFの機能(嗅覚)が影響を受けると仮説を立てた。OLFの機能を評価するために、本発明者らは、単純な「食料埋設試験」を実施した(Yang,M.およびCrawley,J.N.(2009).Curr Protoc Neurosci Chapter 8,Unit 8 24.)。簡単に述べると、マウスを、18時間にわたって食料の無い状態にし、続いて、床敷きを含み、ケージのランダムなコーナーに、表面からおよそ1cm下に食料が埋設された新しいケージに移した。マウスが埋設された食料を見つけるまでの時間を記録した。OLF機能は、食料を見つけるまでの時間の遅延によって決定した場合、BALB/cまたはRag2−/−マウスまたは致死性のPyL寄生虫に感染したマウスのようなECMに対して抵抗性の正常なマウス(図3B)と比較して、早くも感染後4日目には有意に損なわれていた(図3A)。このように、OLF機能の喪失は、OLF内の出血およびBBBの完全性の潜在的な喪失といったECMの顕在化の予測を可能にし得る。
次に、本実施例では脳マラリアとケモカインとの関係を確認し、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系と脳マラリアとの関係性を解明した。
本発明者らは次に、ECMの間のOLF機能不全に寄与する潜在的な因子を探索した。高熱は、BBB機能喪失の促進因子の一つであることが示された(Kiyatkin,E.A.およびSharma,H.S.(2009).Neuroscience 161,926−939.)。高熱がマラリア性昏睡状態の重要な症状であることを考慮し、本発明者らは、サーマルカメラを用いてPbA感染マウスの体温の連続的な測定を可能にする実験システムを開発した。感染マウスの体温の連続的かつ非侵襲性の測定は、高熱の攻撃が、ECM症状の発症の24時間前(PbA感染後5日目付近)に始まり、24時間持続し、その後、熱損により終結し、最終的には次の12〜24時間以内に死に至ることを明らかにした(図3、動画S5(本明細書では示さない))。動画S5では、サーマルモニターカメラによる、感染/非感染マウスの継続的な発熱の記録がなされた。10日間にわたってケージを継続的にモニターした。動は32秒間撮影され、感染後5〜7日目に対応する。非感染のナイーブコントロールマウス(#1、右上、黄色)、感染マウス(#2、左上;#3、右下;#4、左下)。感染マウス#4は、最終的には熱を失って早期に死亡し、カメラから消えている。感染マウス#3は、感染マウス#4が死亡した翌日に死亡した。動画は、少なくとも10匹のマウスで撮影したところほぼ同様の様子を示した。
脳マラリアを発症しない免疫不全マウスであるRag2−/−マウスに感染させると、これらのマウスは、感染の全体を通じて高熱の徴候を示さず、OLFがインタクトであることがMRIによって確認された(図3Fおよび図3I)。さらに、致死性のPyLまたは非致死性のP.yoelii−NLを感染させたマウスは、感染の間に発熱せず(図3Gおよび図5F〜G)、感染後5日目の熱の上昇はPbA特異的であり得ることが示唆された。高熱がBBBの崩壊とその後のOLF機能不全および出血をトリガーし、そして/または、促進する正確な機構は明らかでないが、データは、高熱がECM関連死の24時間前に生じ、OLFが機能不全となり、出血が促進された後のBBB漏出と相関し得ることを示唆する。特筆すべきことは、PbA感染後5日目に、全身血清サイトカインレベル(大部分は炎症促進性サイトカイン)が上昇しており、サイトカインストームが高熱を伴うという考えを裏付けている(図5F〜G)。
本発明者らはさらに、PbA感染の初期段階における嗅覚の喪失と関連し得る要因を調べた。ケモカインは、感染または炎症の初期メディエーターであり、次第に、発熱の発生に貢献するものと認識されている(Machado,R.R.ら(2007).Brain Res 1161,21−31.)。一部のケモカインおよびサイトカインは、ECMの発症において重要な役割を有するので、本発明者らは、OLFにおいて、インターフェロン(IFN)−γ、IP−10(CXCR3リガンド)、MCP−1(CCR2リガンド)、CCL19およびCCL21(CCR7リガンド)を含むいくつかのサイトカイン/ケモカインmRNAの発現レベルを測定した。CCL21およびCCL19のmRNAおよびタンパク質は、OLFにおいて、早くも感染後3日目に高度に発現されており(図4A〜B)、ケモカインリガンド、特にCCL21の早期発現が、脳への免疫細胞の補充に重要であり得ることが示唆された。
本発明者らは次に、ECMからのCcr7−/−マウスの生存率の増加を担う基礎的な機構を調べた。CCR7は、DCおよびT細胞のような免疫細胞の二次リンパ系器官への移動において重要なケモカイン受容体であるので、本発明者らは、脳内でのT細胞の補充を調べた。PbA感染後6日目の脳から得た免疫細胞のフローサイトメトリー分析は、脳内のCD8 T細胞蓄積が、WTマウスと比較して、Ccr7−/−マウスにおいて50%減少することを示した(*p<0.05;図5A)。特筆すべきことに、近年の報告は、脳内に補充されたCD8 T細胞の中でも、CD11c+CD8 T細胞が、高度に活性化されており、おそらくはIFN−γおよびグランザイム−Bを産生することによって発病に関与していると示唆した(Tamura,T.ら(2011).Infect Immun 79,3947−3956.)。この報告と一致して、本発明者らは、PbA感染したWTマウスの脳におけるCD8 T細胞の大部分がCD11c+であり、この集団は、Ccr7−/−マウスの感染脳(図5A;**p<0.01および***p<0.001)ならびに脾臓(図5B;**p<0.01)においてパーセンテージおよび数が著しく減少していたが、WTマウスとCcr7−/−マウスの間で、脾臓内のCD8 T細胞のパーセンテージおよび数は同等であったことを見い出した。脾臓におけるCD11c+CD8T細胞の活性化もまた、同じ細胞集団からのIFN−γ分泌の減少を伴って、CCR7の非存在(CD44の発現によって決定)下で損なわれた(図5C〜D)。まとめると、これらのデータは、CCR7が、CD8T細胞のごく特定の部分集団である活性型CD11c+CD8 T細胞のPbA感染脳内への誘導および/または移動に関与し、そして、ECMの発病において重要な役割を有し得ることを示唆し得る。このことを確認するために、本発明者らはさらに、PbA感染中のCcr7−/−マウスの脾臓におけるCD11c+CD8 T細胞のパーセンテージの低下が、脾臓における以前のプライミングにおける欠陥によって引き起こされたかどうかを決定した。CD8α+DCは、CD8 T細胞応答をクロスプライミングし得るので、マウス脳マラリアの発病においてCD8 T細胞を病気に罹りやすくすることが示唆されている(Lundie,R.J.ら(2008).Proc NatlAcad Sci U S A 105,14509−14514.;Piva,L.ら(2012).J Immunol 189,1128−1132.)。このことと一致して、本発明者らは、脾臓内にCD8α DCを持たない塩基性ロイシンジッパー転写因子ATF様−3(Batf3)欠失マウス(Hildner,K.ら(2008).Science 322,1097−1100.)を用いて、PbAに感染させたときに、脾臓における活性型CD11c+CD8 T細胞の数および脳におけるその蓄積は、Batf3+/−コントロールと比較してBatf3−/−マウスにおいて有意に損なわれていた(図6EおよびF)。また、Batf3−/−マウスが生存率の改善を示したことを確認した(図6G)。他方、Ccr7−/−マウスが、WTマウスの脾臓内のものとほぼ同等数のCD8α DCを有したことを考慮し(図6E)、本発明者らは、CD8α DC上の機能的なCCR7発現がCD8 T細胞活性化に必要とされるかどうかを理解するための実験を設計した。
本発明者らは、インタクトなDCを有するがT/B細胞を有さない感染Rag2−/−マウスからCDR8α DCを精製した(McLellan,A.D.ら(2002).Blood 99,2084−2093.)。Rag2−/−マウスからの脾臓CD8α+DCは、感染後5日目に高レベルのCCR7を発現したが、CD8α−DCはこれを発現しなかった(図6HおよびI)。これらのDCを精製するために、CD8α+DCをまず、CD11b+ビーズを用いてネガティブ選択によって濃縮し、次いで、NK細胞、マクロファージおよび顆粒球を除去し、そして、さらなるCD4+細胞枯渇の後に純粋なCD8α+DC集団を得た(95%超の純度、図6B)。その後、高度に濃縮したCCR7+CD8α+DCを、Ccr7−/−マウスに養子免疫した。濃縮CD8α+DCの養子免疫は、Ccr7−/−マウスにおいて、脳内の活性型CD11c+CD8 T細胞(Ccr7−/−マウス起源のもの)の補充を効率的に復活させ、ECMを加速させた(図5E)。まとめると、これらの知見は、PbA感染中の活性型CD8α+DC上の高レベルでの機能的CCR7発現が、おそらくは、CD11c+CD8T細胞とその膨張を活性化することによって、ECMの発病において重要な役割を有することを示唆する。しかしながら、CD11c+CD8 T細胞上のCCR7発現は、脳内へのこれらの病原性細胞の移動には不必要である。
CCR7がCD11c+CD8 T細胞のOLF内への移動に不必要であるとの知見は、CD8 T細胞のプライミング中のCCL21の重要性を意味している。しかしながら、CCL21の発現もまた、3日目から最終段階までPbA感染したOLFにおいて観察されたので、本発明者らはさらに、CCL21が、CCR7以外の代替的なケモカイン受容体相互作用を介してOLF内へのCD8T細胞の補充に関してさらなる役割を有し得るという仮説を立てた。CXCR3が、特に小膠細胞および星状細胞においてCCL21の代替的ケモカイン受容体となり得ること(Rappert,A.ら、(2002).J Immunol 168,3221−3226.;vanWeering,H.R.ら(2010).Brain Behav Immun 24,768−775.)、そして、CD8 T細胞の脳内への移動を担う重要なケモカイン受容体であること(Campanella,G.S.ら(2008).ProcNatl Acad Sci U S A 105,4814−4819.;Hansen,D.S.ら(2007).J Immunol 178,5779−5788.;Van denSteen,P.E.ら(2008).Eur J Immunol 38,1082−1095.)を考慮し、本発明者らはさらに、感染したOLFにおけるCCL21の局在性および/または供給源を分析した。OLF内でCCL21を発現する細胞型を扱うことは困難であったが、CCL21染色は、星状細胞がしばしば同時局在化する炎症を起こした血管の内皮に限定されていた(図6A)。星状細胞は、そのエンドフィートを介して血管の変化を監視し、感知する特殊化された細胞であり、ECMの間には、網膜におけるその再分配が関係付けられている(Medana,I.M.ら、(1996).Glia 16,51−64.)。感染後6日目には、OLFにおける星状細胞の形態変化(例えば、不十分な分布、厚くより長い突起)が明らかとなり、星状細胞とPECAM染色との相互関係は、大きく乱されていた(図6B)。興味深いことに、特にその線維様構造によるCCL21染色は、OLF内のCD8 T細胞と密接に相互関係していた(図は示さず、この省略した図ではCD8 T細胞がOLF内のCCL21と関連する様子が示される。感染後6日目の、PbA感染したWTマウスからのOLF切片を、抗CCL21(緑色)および抗CD8(赤色)抗体で染色した。核をDAPI(青色)により可視化した。スケールバーは10μmである。)矢印はCD8T細胞と相互作用するCCL21の線維様構造を示す。CCL21とCXCR3発現CD11c+CD8 T細胞との間に化学走性相互作用が存在するかどうかを検討するために、本発明者らは次に、インビトロトランスウェル移動アッセイを行った。その結果に見られるように、CXCR3+CD11c+CD8 T細胞はCCL21に向かって用量依存性に移動したが、この移動は、抗CCL21抗体によって特異的にブロックされ(図は省略する)、CCL21が、ECMの間にCXCR3にとっての代替的ケモカインリガンドとして機能し得ることを示唆する。省略した図では、増加する濃度(0、0.1、1および2μg/ml)のCCL21に応じた、感染したWTマウスからの精製脾臓CD11c+CXCR3+CD8 T細胞の移動を示される。ポジティブコントロールとしてヒトSDF1−α(80ng/ml)を使用し、(E)CCL21(1μg/ml)および/または抗CCL21抗体(1および5μg/ml)に対する応答を検討した。移動した細胞を三連のウェルから回収し、フローサイトメーターでカウントし、そして、ケモカイン誘導性の移動を、非刺激のコントロール(灰色の点線)に対して標準化し、非刺激コントロールの移動に対する割合(%)として示し、抗CCL21抗体によって特異的にブロックされることが示された。
次に、CCL21−CXCR3−CCR7シグナル伝達系をブロックすることで、脳マラリアが予防および治療することができるのではないかと考え、その例として抗体を用いた実験を行った。
CCL21−CCR7−CXCR3軸がCD8α DC−CD8 T細胞媒介性のECM免疫病理において重要な役割を有することを考慮し、本発明者らは、CCL21がECMの治療のための治療標的として利用されうるかどうかを評価した。感染の最初の3日間の、抗CCL21抗体でのOPbA感染マウスのインビボ処置は、アイソタイプコントロールで処置したマウスと比較して、マウスにおける有意に良好な生存につながった(図6F、**p<0.01)。しかしながら、感染後4日目の抗CCL21抗体処置は、ECMの進行に対して顕著な効果を有さず(データ示さず)、ECMの後期段階の間のCCL21の関与が、他のエフェクター機構の活性化によって損なわれ得ることが示唆された。それゆえ、本発明者らは、CCR21とCXCR3の標的化の組み合わせを行った。概念実証として、感染後4日目および5日目における準最適用量の抗体(100μg)によるCXCR3のブロッキングは、WTの対応マウスと比較して、Ccr7−/−マウスにおいてECMからの有意な生存をもたらした(図6D)。同様に、嗅覚を喪失した日(感染後4日目)の抗CXCR3+CCL21抗体混合物による組み合わせ抗体治療は、抗CXCR3抗体単独治療よりも良好なECMからの生存をもたらした(図は示さず)。これらのデータは、ケモカインの組み合わせブロッキングがECMからの脱出を導き得る新規治療ストラテジーとして活用され得ることを示唆した。省略した図では、組み合わせ抗ケモカイン抗体治療の生存曲線を示が示される。抗CXCR3および抗CCL21抗体の混合物を、嗅覚の喪失が始まった感染後4日目に注射した。抗CCL21抗体注射は5日目にも繰り返した。Log−rank(Mantel−Cox)検定により、コントロール 対 抗CXCR3抗体群、そして、コントロール 対 組合せ治療群で*p<0.05(各群n=5)。その結果、抗CXCR3抗体単独治療よりも良好なECMからの生存をもたらしたことが示された。
次に、本実施例では、脳マラリアと嗅球の関係性に関する実験を霊長類で行う。
本発明者らは最後に、我々の知見が非ヒト霊長類のOLFのMRIを行うことによって、ヒトにも応用可能であるかどうかを検討する。ニホンザル(Macaca fuscata)のP.coatneyi感染は、脳マラリアの霊長類モデルである(Kawai,S.およびSugiyama,M.(2010).Acta Trop 114,152−156.)。P.coatneyi感染した赤血球のi.v.接種後、サルを毎日追跡し、血液スメアから寄生虫血症レベルをカウントする。寄生虫血症レベルが低く、おそらくは毛細血管内に隔離されており、サルが典型的な症状を示し、昏睡状態となった終わりに、検死解剖を行う。頭蓋を摘出した後、頭部を4% パラホルムアルデヒド中で固定し、7T MRIを用いて全頭部のイメージングを行う。7TMRIは、OLF内でいくつかの疑わしい出血スポットを検出すること、および脳の他の部分には出血の徴候を確認することができる。出血スポットの存在を確認するために、OLFを取り出し、11.7T MRIによるイメージングを行う。超高磁場イメージングは、マウスと同様に、P.coatneyi感染後のサルのOLF内で出血が生じることを確認することができる。これに対して、ナイーブなサル、ならびに、重篤なマラリアモデルであるが脳マラリアではないP.knowlesii感染サルからのOLFでは低密度な領域は存在しないことを確認することが出来る(White,N.J.(2008).Clin Infect Dis 46,172−173.)。
脳は、BBBの破壊、血管漏出、免疫細胞の蓄積(特に、CD8 T細胞の浸潤)といった多数の病理学的事象に起因してECM中に重度に機能不全となるが、脳が破壊される正確な位置はあまり理解されていない。本研究において、本発明者らは、マウスおよび非ヒト霊長類の両方において、OLF領域がECM中の血管漏出の攻撃を受けやすい場所であることを同定したが、この発見は、超高磁場MRIを、MP生体イメージング顕微鏡と組み合わせて用いることによってのみ可能となり得た。本発明者らはさらに、ECMにおいて昏睡状態の開始前に、初期の症状である嗅覚の喪失が存在することを同定した。1日でも早いマラリア性昏睡の検出が治療の成功率を劇的に増大させ得ることを考慮すると、マラリア感染中のこの以前には気付かれていなかった真に見過ごされていた位置と、嗅覚の喪失の検出は、ECMの早期の安価でかつ容易な診断を提供し得、昏睡状態とその後の状態が確立する前の早期治療を可能にし得る。OLFを介したECMの病理の基礎的機構の探求において、本発明者らは、OLFの星状細胞から分泌されたCCL21が、CXCR3ケモカイン軸を利用することにより、病理学的なCD11c+CD8 T細胞の脳内への補充において役割を有し得ることを見い出した(図7)。本発明者らはさらに、この新たな理解を、ECMの初期症状である嗅覚の喪失が顕らかとなった時点で、抗体の組み合わせによりケモカイン−受容体相互作用をブロックすることによる新規治療ストラテジーへと発展させた。
配列番号2:CCL21の代表的アミノ酸配列
配列番号3:CXCR3の代表的核酸配列
配列番号4:CXCR3の代表的アミノ酸配列
配列番号5:CCR7の代表的核酸配列
配列番号6:CCR7の代表的アミノ酸配列
[配列表]
Claims (6)
- CCL21、CXCR3およびCCR7からなる群から選択される少なくとも2つの因子の阻害剤を含む、脳マラリアの予防または治療剤であって、該阻害剤は、抗体またはそのフラグメントもしくは機能的等価物、siRNA、shRNA、アンチセンス核酸、アプタマー、それらの薬学的に許容可能な塩もしくは溶媒和物、またはその薬学的に受容可能な塩の溶媒和物である、予防または治療剤。
- 前記阻害剤は、CCL21タンパク質、CXCR3タンパク質およびCCR7タンパク質からなる群より選択される因子の阻害剤を含む、請求項1に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
- 前記阻害剤は、CCL21タンパク質をコードする核酸、CXCR3タンパク質をコードする核酸およびCCR7タンパク質をコードする核酸からなる群より選択される因子の阻害剤を含む、請求項1または2に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
- 前記阻害剤は、抗体を含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
- 前記阻害剤は、抗CCL21抗体、抗CXCR3抗体および抗CCR7抗体からなる群より選択される少なくとも2種の抗体、またはそのフラグメントもしくは機能的等価物を含む、請求項1に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
- 前記阻害剤は、抗CCL21抗体、抗CXCR3抗体および抗CCR7抗体の3種の抗体、またはそのフラグメントもしくは機能的等価物を含む、請求項1に記載の脳マラリアの予防または治療剤。
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