JP6469655B2 - 代用皮膚および毛包新生の方法 - Google Patents
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Description
本願は、2013年5月3日に出願された米国仮出願番号61/819,332に基づく優先権を主張し、その全体を引用により本明細書の一部とする。
本発明は、部分的に米国政府の支援を受けてなされた。従って、政府は本願に一定の権利を有する。
本発明は、毛包(「HF」)を誘導できる、毛包真皮細胞などの神経堤由来の間葉系細胞、例えば、毛乳頭(「DP」)細胞または真皮毛根鞘細胞(dermal sheath cell)を含む、代用皮膚および微粒子の形態の組成物に関する。本発明は、また、HFの成長および新生を誘導するための方法、使用および組成物に関する。いくつかの実施態様では、本発明は、全層または部分層皮膚喪失、創傷、熱傷、瘢痕、および、完全または部分的脱毛の処置に使用できる。
毛および皮膚の研究は、再生医学の最前線にあり続けている。代用皮膚は、組織工学の原理を使用して開発されるべき最初期の産物の一つであったし、これらの先端的企画の成功は、いくつかの商品の臨床使用から明白である。加えて、毛の回復は、男性および女性の美容的治療の最も急速に成長している領域のひとつである。
出願書類に組み込まれ、その一部を構成する添付の図面は、本発明のいくつかの非限定的な実施態様を例示説明し、明細書と共に、本発明の原理を説明するのに役立つ。
本発明は、上皮細胞および神経堤由来の間葉系細胞を含む代用皮膚を提供する。ある実施態様では、間葉系細胞は毛包真皮細胞であり、それは、例えば、毛乳頭細胞および真皮毛根鞘細胞を包含する。神経堤由来の間葉系細胞は、頭皮または顔に由来するものであり得る。ある実施態様では、神経堤由来の間葉系細胞は、頭皮の前頭部、側頭部、頭皮中央部、頭上部、最頂部、または頭頂部の領域に由来する。いくつかの態様では、神経堤由来の間葉系細胞は、頭皮の後頭部または首筋の領域に由来しない。いくつかの態様では、上皮細胞および神経堤由来の間葉系細胞は、ヒトのものである。いくつかの態様では、上皮細胞は角化細胞または角化細胞様細胞である。代用皮膚は、さらにコラーゲンを含み得る。
本明細書で使用するとき、単数形の「ある(a)」「ある(an)」および「この、その(the)」は、文脈が明らかに否定しない限り、複数形を含むと意図する。さらに、用語「包含する(including、includes)」、「有する(having)」、「共に(with)」またはその変形が明細書および/または特許請求の範囲のいずれかで使用される限り、そのような用語は、用語「含む(comprising)」と同様に排他的ではないと意図する。
驚くべきことに、神経堤由来の間葉系細胞は発毛性であることが見出された。特に、顔または、後頭部または首筋の領域以外の頭皮の領域に由来する間葉系細胞は、毛包を誘導できる。そのような毛包は、Chuong et al., "Defining hair follicles in the age of stem cell bioengineering," J. Invest. Dermatol., 127:2098-100 (2007) により提唱された基準によると、完全である。当該毛包は、毛包の末端から出ている上皮繊維および毛包の基部にある毛乳頭の正常な配置を有する。当該毛包は、毛包の基部で増殖している細胞を有し、外および内毛根鞘、毛小皮および毛皮質の同心円状の層を有する。当該毛包は、外毛根鞘の正常な分化を示し、毛幹および皮脂腺を有する。当該毛は、正常なサイクルを経由し、上皮幹細胞成分を含む。
哺乳類の皮膚は、2つの主な層、即ち、表皮と呼ばれる外層および真皮と呼ばれる内層を含む。表皮は、表皮の深層で有糸分裂により形成され、その後表面に移動する角化細胞を主に含み、最終的にはそこで剥がれ落ちる。真皮は、毛包、皮脂腺、汗腺、アポクリン腺、神経、リンパ管および血管を含む様々な構造を含む。
本発明の代用皮膚は、(1)間葉系細胞、または、(2)間葉系細胞および上皮細胞、のいずれかを含み得る。代用皮膚が間葉系細胞を含み上皮細胞を含まない実施態様では、間葉系細胞は患者の上皮細胞と相互作用して毛包を産生する。代用皮膚が間葉系細胞および上皮細胞を含む実施態様では、代用皮膚中で供給される間葉系および上皮細胞が患者の上皮細胞と相互作用して、またはせずに、毛包を産生する。
間葉系細胞は、通常、ビメンチンを発現する中胚葉性結合組織細胞と考えられるが、これらの特質を有するビメンチン発現細胞は、神経堤由来でもあり得る。細胞の供給源は、毛包の毛乳頭および結合組織鞘の誘導性の多能性細胞を含む。驚くべきことに、ある種の供給源から単離された間葉系細胞(即ち、誘導性の多能性細胞)は発毛性であることが見出された。例えば、本願発明者らは、神経堤由来の間葉系細胞が発毛性であることを見出した。本願発明者らは、また、顔または、後頭部領域または首筋領域以外の領域の頭皮から回収された間葉系細胞、例えば毛包真皮細胞は、発毛性であることを見出した。
一般的に、扁平上皮に重層化できる上皮細胞または細胞株のいかなる供給源も、本発明で有用である。従って、本発明は、扁平上皮に分化できる細胞のいかなる特定の供給源の使用にも限定されない。実際に、本発明は、重層扁平上皮に分化できる様々な細胞株および供給源の使用を企図する。細胞の供給源には、初代および不死化角化細胞、角化細胞様細胞および角化細胞様細胞に分化する能力を有する細胞が含まれ、ヒトおよび死体のドナー(Auger et al., In Vitro Cell. Dev. Biol.--Animal 36:96-103; および米国特許第5,968,546号および第5,693,332号)、新生児包皮(Asbill et al., Pharm. Research 17(9):1092-97 (2000); Meana et al., Burns 24:621-30 (1998);および米国特許第4,485,096号;第6,039,760号;および第5,536,656号)、および不死化角化細胞の細胞株、例えばNM1細胞(Baden, In Vitro Cell. Dev. Biol. 23(3):205-213 (1987))、HaCaT細胞(Boucamp et al., J. Cell. Boil. 106:761-771 (1988));およびNIKS細胞(細胞株BC−1−Ep/SL;米国特許第5,989,837号;ATCC CRL−12191)から得られる。
間葉系および上皮細胞は、任意の適する技法を使用して単離し得る。例えば、間葉系細胞は、組織外植片からの細胞の遊走により単離し得る。あるいは、細胞を皮膚または粘膜のサンプルまたは皮膚の腫瘍から分離させ、間葉系および上皮細胞を単離し得る。加えて、上皮細胞は、多能性幹細胞を誘導して上皮細胞に分化させることにより単離し得る。細胞を単離するための例示的な方法は、実施例に記載されている。
本発明は、注射用の代用皮膚および微粒子製剤に関する。
本発明の代用皮膚は、当業者に公知のものと類似する方法を使用して製造され得るとはいえ、先行技術の代用皮膚とは異なる細胞の種類を含有する。例えば、Greenberg S et al., "In vivo transplantation of engineered human skin," Methods Mol Biol., 289:425-30 (2005) は、インビトロで代用皮膚を創成する方法を開示している。加えて、Shevchenko RV et al., "A review of tissue-engineered skin bioconstructs available for skin reconstruction," J R Soc Interface, 7(43):229-58 (2010) は、代用皮膚の製造に使用し得る様々なアプローチの総説を提供する。例示的な方法は、実施例でも提供される。
本発明は、注射または移植用の微粒子製剤を含む。これらの製剤は、当業者に公知の任意の方法により製造し得る。例示的な方法は、実施例で提供される。ある実施態様では、発毛性細胞は、無菌生理食塩水、リン酸緩衝食塩水、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)、ハンクス平衡塩類溶液、プラズマライト(Plasmalyte)AまたはRPMIなどの、注射に適するバッファー中で提供される。ある実施態様では、発毛性細胞は、マトリックスまたは基底質と共に提供される。マトリックスは、メチルセルロース、コラーゲン、キトサン、ヒアルロン酸、ゼラチン、アルギン酸塩、フィブリン、フィブロネクチンまたはアガロースなどの天然ポリマーであり得る。マトリックスは、マトリゲル(Matrigel)(商標)などの複雑な混合物または合成ポリマーであり得る。他の実施態様では、注射または移植の前に、発毛性細胞は、マトリックスまたは基底質を伴って、または伴わずに、上皮細胞と組み合わせられる。
本発明は、患者においてヒト毛包を誘導できる細胞を患者に移植する方法を提供する。例えば、本発明の代用皮膚を患者に移植し得、本発明の微粒子を患者に注射し得る。
本発明の代用皮膚および微粒子は、全層または部分層皮膚喪失、失活した皮膚、創傷、潰瘍、化学熱傷または熱傷、瘢痕、および、先天性または後天性であり得る、完全または部分的な毛、皮脂腺、またはエクリン腺の喪失または異常を有する患者の処置に有用である。皮膚損傷は、3つのカテゴリーに分類される:表皮、部分層および全層。表皮損傷は、表皮のみが冒され、これは瘢痕形成なく迅速に再生するので、特別な外科的処置を必要としない。部分層創傷は、表皮および真皮を冒す。そのような創傷は、一般的に、創傷の周縁部からの上皮化により治癒し、そこでは、創傷の端からの基底角化細胞、毛包または汗腺が移動し、損傷を受けた領域を覆う。全層損傷は、上皮再生要素の完全な破壊を特徴とする。この種の損傷は収縮により治癒し、創傷の端のみからの上皮化を伴う。部分層損傷および全層損傷は、しばしば皮膚移植を必要とする。
ある実施態様では、当該方法は、本発明の代用皮膚を患者に移植することを含む。本発明の代用皮膚は、当業者に公知の任意の適する技法により投与し得る。
移植部位は、当業者に公知の任意の技法により準備し得る。移植部位は、損傷を受けた皮膚(例えば、部分層または全層の化学熱傷または熱傷、剥皮した皮膚、失活した皮膚)、部分的または完全に皮膚がない創面環境(wound bed)(例えば、皮膚が引き裂かれた、または、潰瘍化した部位)、手術創(例えば、良性または悪性の皮膚増殖物の切除後)、または、先天性(例えば、先天性皮膚欠損症)または後天性(例えば、何らかの原因で瘢痕化した皮膚)の減少、異常のある皮膚、または、毛包、皮脂腺、および/またはエクリン腺のない皮膚であり得る。いくつかの実施態様では、移植部位は、水、抗菌性洗浄液、または、アルコール溶液で洗浄される(アルコール塗布など)。他の実施態様では、手術用マーカーで所望の毛のパターンを移植部位に描く。他の実施態様では、局所麻酔薬が患者に投与される。さらなる麻酔が必要な場合、吸入、静脈または神経ブロックの麻酔薬を患者に投与し得る。
代用皮膚を患者に適用するために、様々な臨床技法を使用し得る。代用皮膚は、修復されている欠損の大きさ、疼痛のレベルおよび全身麻酔の必要性に応じて、外来医院または手術室で適用され得る。代用皮膚を適用する前に、処置者は、代用皮膚の有効期限を調べ、pHを確認し、代用皮膚を視覚的に観察し、その臭いをかいで、細菌汚染または粒子状物質などの汚染がないことを確認することができる。代用皮膚は、使用直前まで、68°F〜73°F(20℃〜23℃)に制御された温度で、ポリエチレン袋中に保存し得る。
本発明の発毛性細胞は、当業者に公知の任意の適する方法で注射し得る。ある実施態様では、当該方法は、発毛性細胞を患者に皮下または皮内で送達することを含む。他の実施態様では、当該方法は、上皮細胞を患者に送達することをさらに含む。細胞は、懸濁液、クラスター、凝集物として、または、生物分解可能な微粒子と組み合わせて送達され得る。懸濁液を注射するとき、各注射部位は、50〜2,000個の細胞を送達し得る。細胞を生物分解可能な微粒子と組み合わせて注射するとき、各注射部位は、1個またはそれ以上のそのような組合せを送達し得る。
移植部位は、水、抗菌性洗浄液、または、アルコール溶液で洗浄され得る(アルコール塗布など)。他の実施態様では、手術用マーカーで所望の毛のパターンを、輪郭をとって、あるいは、各注射部位を示すピクセルとして、移植部位に描き得る。注射のパターンを示す紙のテンプレートまたは他の材料のテンプレートも注射部位に適用し得る。あるいは、ロボット工学または格子中に複数の注射ポートを有する装置の使用により、正確な間隔で注射を送達し得る。他の実施態様では、局所麻酔を患者に投与し得る。さらなる麻酔が必要な場合、吸入、静脈または神経ブロックの麻酔薬を患者に投与し得る。
注射は、皮下または皮内注射のための当分野で公知の技法に従って投与され得る。注射では細胞1,000ないし20,000個/mlの濃度を使用し得る。14〜30ゲージの針を有する1〜3mlのシリンジを使用して、0.05ないし0.1mlの体積を各注射部位に注射し得る。そのような実施態様では、皮膚を引っ張り、針を5°ないし30°の角度で斜めに皮膚に挿入する。次いで、細胞をゆっくりと、穏やかな圧力で注射し、針を抜き、漏れを防ぎ吸収を促進するために、穏やかな圧力をかける。
実施例1
男性1人および女性5人のドナーの側頭部頭皮の真皮から単離されたヒトDP細胞(Promocell, Heidelberg, Germany)を、下記の方法に従ってインビトロで増殖させた。毛を誘導する能力と相関するDPマーカーであるアルカリホスファターゼ活性(Ohyama et al., 2012)を、BCIP/NBT基質(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)を使用して、5回継代したDP細胞で、インビトロで測定した。発毛性をスクリーニングするために、Zheng et al., 2005, および Kang et al., 2012 に記載の再構成を、わずかに改変して使用した。
代用皮膚:確立された方法を本明細書に記載の通りに改変して使用して、移植用の三次元インビトロ構築物を調製した。簡潔に述べると、ヒト毛乳頭細胞を10%FBS/DMEM中で1mg/mlのI型コラーゲン(ラット)(他の実施態様では、コラーゲンはウシのものであり得る)と混合し、6ウェルのトランスウェル(transwell)プレート(Corning Incorporated, Corning, NY)に細胞1.5X105個/cm2の密度で加えた。この真皮等価物を10%FBS/DMEM中で4日間培養し、その後、1X106個の角化細胞を上部に等分した。0.1%FBSを含有するDMEMとHam’sF12(3:1)(GIBCO/Invitrogen, Grand Island, NY)の混合物中でこの構築物を2日間液内培養し、その後、角化細胞を空気−液体界面に置き、1%FBSを含有するDMEMとHam’sF12(3:1)の混合物中で、移植前にさらに2日間培養した。
細胞クラスター:懸滴法(hanging droplet method)を使用して、注射用の細胞凝集物を形成させた。(Qiao J. et al., "Hair follicle neogenesis induced by cultured human scalp dermal papilla cells," Regen Med 4(5): 667-76 (2009)。)簡潔に述べると、ヒト間葉系細胞と角化細胞の混合物(10:1、5:1、1:1、1:5または1:10)をDermal Papilla Medium (Promocell)に懸濁した。液滴が上下逆につり下がる向きにした100mmペトリ皿の蓋に、細胞を10μlの液滴中(各液滴は、1x104または0.5x104個の細胞を含む)でアプライした。リン酸緩衝食塩水10mlをペトリ皿の底に入れた。吊された液滴を、37℃の5%CO2インキュベーター内でインキュベートした。凝集体の形成は18〜20時間以内に完了し、再構成アッセイを播種の48時間後に行った。代替的なアプローチは、0.24%メチルセルロースを含有するChang 培地を使用することである。100mmペトリ皿の底に、細胞を20μlの液滴中(各液滴は、4x104個の細胞を含む)でアプライした。ペトリ皿を裏返し、液滴が上下逆につり下がるようにした。吊された液滴を、37℃の5%CO2インキュベーター内でインキュベートした。凝集体の形成は18〜20時間以内に完了した。凝集体が形成されたら、150μlの Chang 培地を含む96ウェルの丸底アッセイプレートのウェルに個別に移した。ウェルを事前に0.24%メチルセルロース培地で被覆し、原毛(proto-hair)の接着を防止した。培養培地を2〜3日毎に交換した。
複合物の設置:O2およびイソフルラン(2〜4%)の混合物による吸入麻酔を使用して麻酔した6〜8週齢のメスCr:NIH(S)−nu/nuマウス(FCRDC, Frederick, MD)を使用して、水平層流型フード内でマウスに移植した。マウスの背中の移植領域を、注意深く見積もり、ポビドンおよび70%エタノールで洗浄した後、湾曲状のハサミで皮膚を除去した。代用皮膚を移植床に正しい解剖学的配向で置き、無菌のワセリンガーゼで覆い、包帯で固定した。再覚醒後にマウスを無菌のケージに戻した。包帯を2週間で交換し、4週間後に除去した。マウスを移植の4〜18週間後に屠殺した。
6人の側頭部頭皮から成長させたヒト毛乳頭細胞(HDP47、HDP44、HDP41、HDP43、HDP60およびHDP52)および7人の後頭部頭皮から成長させたヒト毛乳頭細胞(1〜7)を使用して、研究を行った。すべての細胞を、実施例1に記載の通りに、ヒト包皮角化細胞およびラットI型コラーゲンと組み合わせた。移植前に、細胞のアルカリホスファターゼ活性を単層培養で測定した。
ヒト真皮および表皮細胞(側頭部頭皮真皮の神経堤由来のヒト毛乳頭細胞および新生児包皮表皮細胞)から構築された、移植された真皮表皮複合物を、ヌードマウスへの移植の8、12および15週間後に評価した。図13は、移植の8週間後にヒト毛包の漏斗状器官から出現している毛幹を示すH&E染色を提供する。図14は、10週間後に光学顕微鏡下で写真撮影した真皮表皮複合物である。移植領域から毛幹が出現しているのが見られる。図15Aは、移植12週間後に見られる毛幹を有する代表的な移植片を提供し、図15Bは、着色した毛幹の存在を示す拡大像を提供する。
++評価した移植片の数:P0、n=6;P1、n=6;P3、n=7。
^評価した移植片の数:P0、n=5;P1、n=5;P3、n=3。
^^評価した移植片の数:P0、n=3;P1、n=3P3、n=2。
#評価した移植片の数:P0、n=6;P1、n=6;P3、n=5。
##評価した移植片の数:P0、n=3;P1、n=5;P3、n=4。
*初代角化細胞より有意に低い、p<0.05。
***初代角化細胞および継代1の角化細胞より有意に低い、p<0.005。
**継代した角化細胞より有意に高い、p<0.02。
Claims (27)
- 懸濁液で、単離された上皮細胞および間葉系細胞を含む代用皮膚であって、
間葉系細胞が、頭皮の側頭部の領域に由来する、
代用皮膚。 - 上皮細胞が角化細胞である、請求項1に記載の代用皮膚。
- 間葉系細胞が毛包真皮細胞である、請求項1または2に記載の代用皮膚。
- 毛包真皮細胞が毛乳頭細胞、真皮毛根鞘細胞または神経堤由来の細胞である、請求項3に記載の代用皮膚。
- 間葉系細胞が遺伝的に改変されていない間葉系細胞である、請求項1−4のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 代用皮膚が、微粒子で提供される、請求項1−5のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 上皮細胞が、1回または2回継代したものである、請求項1−6のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 間葉系細胞が、1回、2回、3回、または4回継代したものである、請求項1−7のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 上皮細胞および間葉系細胞が、角化細胞馴化培地で継代したものである、請求項1−8のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 上皮細胞および間葉系細胞がヒトのものである、請求項1−9のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- コラーゲンをさらに含む、請求項1−10のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- ヒト対象に前記代用皮膚を送達することを含み、ここで、ヒト対象が、部分層皮膚喪失、全層皮膚喪失、創傷、熱傷、瘢痕または脱毛を有する、毛包の新生を誘導することにおける使用のための請求項1−11のいずれか一項に記載の代用皮膚。
- 代用皮膚がエクリン腺および/または皮脂腺を誘導する、請求項12に記載の代用皮膚。
- (a)マトリックスを、初代もしくは継代初期の頭皮の側頭部の領域に由来する間葉系細胞の単離された培養物と混合すること、ここで、培養物が、微粒子で提供され;(b)(a)の培養物を基底質、マトリックスまたは足場に導入または挿入する、または(a)の培養物を基底質、マトリックスまたは足場に置き;および(c)初代または継代初期の上皮細胞の培養物を(b)の混合物にかぶせることを含む、代用皮膚の製造方法。
- 懸濁液で、単離された上皮細胞および間葉系細胞を含む微粒子であって、
間葉系細胞が、頭皮の側頭部の領域に由来する、微粒子。 - 上皮細胞が角化細胞である、請求項15に記載の微粒子。
- 間葉系細胞が毛包真皮細胞である、請求項15または16に記載の微粒子。
- 毛包真皮細胞が毛乳頭細胞または真皮毛根鞘細胞である、請求項17に記載の微粒子。
- 毛包真皮細胞が神経堤由来の細胞である、請求項17に記載の微粒子。
- 間葉系細胞が、遺伝的に改変されていない間葉系細胞である、請求項15−19のいずれか一項に記載の微粒子。
- 上皮細胞が1回または2回継代したものである、請求項15−20のいずれか一項に記載の微粒子。
- 間葉系細胞が、1回、2回、3回、または4回継代したものである、請求項15−21のいずれか一項に記載の微粒子。
- 上皮細胞および間葉系細胞が、角化細胞馴化培地で継代したものである、請求項15−22のいずれか一項に記載の微粒子。
- 上皮細胞および間葉系細胞がヒトのものである、請求項15−23のいずれか一項に記載の微粒子。
- コラーゲンをさらに含む、請求項15−24のいずれか一項に記載の微粒子。
- ヒト対象に前記微粒子を送達することを含み、ここで、ヒト対象が、部分層皮膚喪失、全層皮膚喪失、創傷、熱傷、瘢痕または脱毛を有する、毛包の新生を誘導することにおける使用のための請求項15−25のいずれか一項に記載の微粒子。
- 微粒子がエクリン腺および/または皮脂腺を誘導する、請求項26に記載の微粒子。
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